المؤلفون: O. Ekaterincheva L., A. Malkova M., V. Karev E., I. Kudryavtsev V., Yu. Zinchenko S., T. Potepun B., D. Kudlai A., A. Starshinova A., О. Екатеринчева Л., А. Малкова М., В. Карев Е., И. Кудрявцев В., Ю. Зинченко С., Т. Потепун Б., Д. Кудлай А., А. Старшинова А.

المصدر: Journal Infectology; Том 13, № 1 (2021); 117-123 ; Журнал инфектологии; Том 13, № 1 (2021); 117-123 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2021-13-1

مصطلحات موضوعية: tuberculosis, diagnosis, new coronavirus infection, COVID-19, SARS-CoV-2, pandemic, туберкулез, диагностика, новая коронавирусная инфекция, пандемия

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1186/881; Stochino C, Villa S, Zucchi P, Parravicini P, Gori A, Raviglione MC. Clinical characteristics of COVID-19 and active tuberculosis co-infection in an Italian reference hospital. Eur Respir J. 2020;56(1):2001708. doi:10.1183/13993003.01708-2020.; Glaziou P. Predicted impact of the COVID-19 pandemic on global tuberculosis deaths in 2020. medRxiv and bioRxiv. DOI:10.1101/2020.04.28.20079582; WHO guidelines on tuberculosis infection prevention and control. – Geneva: WHO (2019) 265.; World Health Organization. Global tuberculosis report 2018. – Geneva: WHO (2018) 270.; WHO consolidated guidelines on drug-resistant tuberculosis treatment. – 2019. – 96p. ISBN 978-92-4-155052-9.; Guglielmetti L, Veziris N, Aubry A, Brossier F, Bernard C, Sougakoff W, Jarlier V, Robert J. Risk factors for extensive drug resistance in multidrug-resistant tuberculosis cases: a casecase study. Int J Tuber. and lung dis. 2018; 22(1):54–59. DOI:10.5588/ijtld.17.0387.; World Health Organization. Global tuberculosis report 2017. – Geneva: WHO, 2017. – 250p.; Al-Omari A, Alhuqbani WN, Zaidi ZRA, Al-Subaie FM, Alanoud M, Hindi AM, Abogosh KA et al. Clinical characteristics of non-intensive care unit COVID-19 patients in Saudi Arabia: A descriptive cross-sectional study. Journal of Infection and Public Health. 2020; 1876-0341. doi.org/10.1016/j.jiph.2020.09.003; Cantini F, Niccoli L, Matarrese D, Nicastri E, Stobbione P, Goletti D. Baricitinib therapy in COVID-19: A pilot study on safety and clinical impact. J Infect. 2020. doi:10.1016/j.jinf.2020.04.017; Hilda JN, Das S, Tripathy SP, Hanna LE. Role of neutrophils in tuberculosis: A bird’s eye view. Innate Immun. 2020;26(4):240-247. doi:10.1177/1753425919881176; Huang C, Wang Y, Li X, Ren L, Zhao J, Hu Y, Zhang L, Fan G, Xu J, Gu X, Cheng Z, Yu T, Xia J, Wei Y, Wu W, Xie X, Yin W, Li H, Liu M, Xiao Y, Gao H, Guo L, Xie J, Wang G, Jiang R, Gao Z, Jin Q, Wang J, Cao B. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China. The Lancet. 2020;395(10223):497-506. doi:10.1016/S01406-736(20)30183-5.; Faqihi F., Alharthy A., Noor A., Balshi A., Balhamar A., Karakitsos D. COVID-19 in a patient with active tuberculosis: A rare case-report RSS . Respiratory Medicine Case Reports, 2020; 31: https://doi.org/10.1016/j.rmcr.2020.101146).; Временные методические рекомендации «Профилактика, диагностика и лечение новой коронавирусной инфекции (COVID-19)» (версия 6 от 24.04.2020). – 165 с.; Довгалюк, И.Ф. Патоморфоз и диагностика туберкулёза внутригрудных лимфатических узлов у детей / И.Ф. Довгалюк [и др.] // Проблемы туберкулеза и болезней лёгких. – 2004. – № 1. – С. 33–36.; Starshinova A., Zhuravlev V., Dovgaluk I., Panteleev A., Manina V., Zinchenko U., Istomina E., Pavlova M., Yablonskiy P. A Comparison of Intradermal Test with Recombinant Tuberculosis Allergen (Diaskintest) with Other Immunologic Tests in the Diagnosis of Tuberculosis Infection. International Journal of Mycobacteriology. 2018; 1(2):32–39.; Starshinova A.A., Dovgalyk I., Malkova A.M., Zinchenko Yu.S., Pavlova M.V., Belyaeva E., Basantsova N.Yu., Nazarenko M., Kudlai D.A., Yablonskiy P. Recombinant tuberculosis allergen (Diaskintest ®) in tuberculosis diagnostic in Russia (meta-analysis). International Journal of Mycobacteriology. 2020. Т. 9. № 4. С. 335-346.; Старшинова, А.А. Туберкулез в структуре коморбидной патологии у больных COVID-19 / А.А. Старшинова, И.Ф. Довгалюк // Тихоокеанский журнал. – 2021. – № 1. – С. 1609–1175.; Hogan BA, Jewell BL, Sherrard-Smith E, Vesga JF, Watson OJ, Whittaker Ch, Hamlet A, Smith JA, Winskill P, Verity R, Baguelin M, et al. Potential impact of the COVID-19 pandemic on HIV, tuberculosis, and malaria in low-income and middle-income countries: a modelling study. Lancet Glob Health 2020; 8: e1132–41 Published Online July 13, 2020 https://doi.org/10.1016/S2214-109X(20)30288-6.; World Health Organization. Global tuberculosis report 2020. – Geneva: WHO. 232. ISBN 978-92-4-001313-1; Xu B, Fan CY, Wang AL, Zou YL, Yu YH, He C, Xia WG, Zhang JX, Miao Q. Suppressed T cell-mediated immunity in patients with COVID-19: A clinical retrospective study in Wuhan, China. J Infect. 2020;81(1):e51-e60. doi:10.1016/j.jinf.2020.04.012; Zhang B, Zhou X, Zhu Ch, Feng F, Qiu Y, Feng J, Jia Q et al. Immune phenotyping based on neutrophil-to-lymphocyte ratio and IgG predicts disease severity and outcome for patients with COVID-19. Front Mol Biosci. 2020; 7: 157. doi:10.3389/fmolb.2020.00157.; Xu Z, Shi L, Wang Y, Zhang J, Huang L, Zhang C, Liu S, Zhao P, Liu H, Li Zhu, Tai Y, Bai C, Gao T, Song J, Xia P, Dong J, Zhao J, Wang F-S. Pathological findings of COVID-19 associated with acute respiratory distress syndrome. Lancet Respir. Med. 2020;8:420–422. doi:10.1016/S2213-2600(20)30076-X.; Moore JB, June CH. Cytokine release syndrome in severe COVID-19. Science 2020. 10.1126/science.abb8925.; Ciceri F., Beretta L, Scandroglio AM, Colombo S, Landoni G, Ruggeri A, Peccatori J, D’Angelo A, De Cobelli F, Rovere-Querini P, Tresoldi M, Dagna L, Zangrillo A. Microvascular COVID-19 lung vessels obstructive thromboinflammatory syndrome (MicroCLOTS): an atypical acute respiratory distress syndrome working hypothesis. Critical Care and Resuscitation: Journal of the Australasian Academy of Critical Care Medicine. 2020;22(2):95-97. PMID: 32294809.; Старшинова, А.А. Новая коронавирусная инфекция: особенности клинического течения, возможности диагностики, лечения и профилактики инфекции у взрослых и детей / А.А. Старшинова [и др.] // Вопросы современной педиатрии. – 2020. – № 19 (2). – С. 42–50.; Chen Y., Wang Y., Fleming J., Yu Y., Gu Y., Liu Ch., Fan L., Wang X., Cheng M., Lijun Bi L., Liu Y. Active or latent tuberculosis increases susceptibility to COVID-19 and disease severity. MedRxiv.2020; doi.org/10.1101/2020.03.10.20033795.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1186

الاتاحة: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1186
https://doi.org/10.22625/2072-6732-2021-13-1-117-123

المؤلفون: A. Starshinova A., A. Malkova M., Yu. Zinchenko S., N. Basantsova Yu., D. Kudlay A., P. Yablonskiy K., А. Старшинова А., А. Малкова М., Ю. Зинченко С., Н. Басанцова Ю., Д. Кудлай А., П. Яблонский К.

المصدر: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 98, № 5 (2020); 54-62 ; Туберкулез и болезни легких; Том 98, № 5 (2020); 54-62 ; 2542-1506 ; 2075-1230

مصطلحات موضوعية: sarcoidosis, autoimmune disease, etiology, саркоидоз, аутоиммунное заболевание, этиология

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1427/1429; Визель А. А., Визель И. Ю. Лефлуномид как потенциальный препарат второго ряда в лечении саркоидоза // Туб. и болезни легких. ‒ 2019. ‒ Т. 97, № 8. ‒ С. 52-58.; Ершов Г. А., Чурилов Л. П. О возможности аутоиммунной природы саркоидоза: какие аутоантигены вовлечены и почему? // Клин. патофизиология. ‒ 2017. ‒ Т. 3. ‒ С. 77-82.; Зинченко Ю. С., Басанцова Н. Ю., Старшинова А. А., Гилбурд Б., Яблонский П. К. Аутоиммунный/провоспалительный синдром, индуцированный адъювантами, и саркоидоз // Медицинский альянс. ‒ 2019. ‒ № 3. ‒ С. 16-21.; Зинченко Ю. С., Старшинова А. А., Филатов М. В., Истомина Е. В., Бурдаков В. С. Денисова Н. В., Ланда С. Б., Бурдаков В. С., Степаненко Т. А., Яблонский П. К. Аутоиммунная природа саркоидоза: определение специ-; фических иммунных комплексов у больных саркоидозом органов дыхания // Медицинская иммунология. ‒ 2019. ‒ Т. 3. ‒ С. 479-486.; Илькович М. М. (под ред.). Интерстициальные и орфанные заболевания легких. ‒ М.: ГЭОТАР-Медиа, 2016. ‒ С. 560.; Кудрявцев И. В., Лазарева Н. М., Баранова О. П., Серебрякова М. К., Сесь Т. П., Илькович М. М., Тотолян А. А. Особенности экспрессии CD57 цитотоксическими Т-лимфоцитами при саркоидозе // Российский иммунологический журнал. ‒ 2018. ‒ Т. 12, № 21. ‒ С. 329-334.; Лазарева Н. М., Кудрявцев И. В., Баранова О. П., Серебрякова М. К., Сесь Т. П., Илькович М. М., Тотолян А. А. Субпопуляционный состав цитотоксических Т-лимфоцитов периферической крови при саркоидозе // Российский иммунологический журнал. ‒ 2018. ‒ Т. 12, № 21. ‒ С. 348-353.; Ahmadzai H., Cameron B., Chui J., Lloyd A., Wakefield D., Thomas P. Peripheral blood responses to specific antigens and CD28 in sarcoidosis // J. Respir. Med. ‒ 2012. ‒ Vol. 106, № 5. ‒ Р. 701-709. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0154716.; Ang S. C., Moscovic E. A. Cross-reactive and species specific mycobacterium tuberculosis antigens in the immunoprofile of Schaumann bodies: a major clue to the etiology of sarcoidosis // J. Histol. histopathol. ‒ 1996, Vol. 11, № 1. ‒ P. 125-134.; Arango M., Perricone C., Kivity S., Cipriano E., Ceccarelli F., Valesini G., Shoenfeld Y. HLA-DRB1 the notorious gene in the mosaic of autoimmunity // J. Immunol. Res. ‒ 2017. ‒ Vol. 65, № 1. ‒ P. 82-98. DOI:10.1007/s12026-016-8817-7.; Armbruster C., Dekan G., Hovorka A. Granulomatous pneumonitis and mediastinal lymphadenopathydue to photocopier toner dust // Lancet. ‒ 1996. ‒ Vol. 348, № 9028. ‒ Р. 690. DOI:10.1016/S0140-6736(05)65119-7.; Balk E. M., Earley A., Avendano E. A., Raman G. Long-termhealth outcomes in women with silicone gel breast implants: a systematic review // Ann. Intern. Med. ‒ 2016. ‒ Vol. 164. ‒ P. 164-175. doi:10.7326/M15-1169.; Baughman R. P., Lower E. E. Leflunomide for chronic sarcoidosis. Sarcoidosis Vasc // Dif. Lung Dis. ‒ 2004. ‒ Vol. 21, № 1. ‒ P. 43-48.; Belhomme N., Jouneau S., Bouzillé G., Decaux O., Lederlin M., Guillot S., Perlat A., Jégo P. Role of serum immunoglobulins for predicting sarcoidosis outcome: A cohort study // PLoS One. ‒ 2018. ‒ Vol. 13, № 4. ‒ e0193122. DOI:10.1371/journal.pone.0193122.; Bindoli S., Dagan A., Torres-Ruiz J. J., Perricone C., Bizjak M., Doria A., Shoenfeld Y. sarcoidosis and autoimmunity: from genetic background to environmental factors // Isr. Med. Assoc. J. ‒ 2016. ‒ Vol. 18, № 3-4. ‒ P. 197-202.; Bowers B., Hasni S., Gruber B. L. Sarcoidosis in world trade center rescue workers presenting with rheumatologic manifestations // J. Clin. Rheumatol. ‒ 2010. ‒ Vol. 16, № 1. ‒ P. 26-27.; Cain H., Kraus B. Immunofluorescence microscopic demonstration of vimentin filaments in asteroid bodies of sarcoidosis. A comparison with electron microscopic findings // J. Virchows Arch B Cell Pathol. Incl. Mol. Pathol. ‒ 1983. ‒ Vol 42, № 2. ‒ P. 213-226. DOI:10.1007/bf02890384.; Cohen Tervaert J. W., Colaris M. J., van der Hulst R. R. Silicone breast implants and autoimmune rheumatic diseases: myth or reality // Curr. Opin. Rheumatol. ‒ 2017. ‒ Vol. 29. ‒ P. 348-354. DOI:10.1097/BOR.0000000000000391.; Darlington P., Tallstedt L., Padyukov L., Kockum I., Cederlund K., Eklund A. et al. HLA-DRB1 alleles and symptoms associated with Рeerfordt’s syndrome in sarcoidosis // J. Eur. Respire. ‒ 2011. ‒ Vol. 38. ‒ P. 1151-1157. DOI:10.1183/09031936.00025011.; Denic A., Wootla B., Rodriguez M. CD8(+) T cells in multiple sclerosis // Expert. Opin. Ther. Targets. ‒ 2013. ‒ Vol. 17, № 9. ‒ P. 1053-1066. DOI:10.1517/14728222.2013.815726.; Drake W. P., Dhason M. S., Nadaf M., Shepherd B. E., Vadivelu S., Hajizadeh R., Newman L. S., Kalams S. A. Cellular recognition of mycobacterium tuberculosis ESAT-6 and KATG peptides in systemic sarcoidosis // J. Infectimmun. ‒ 2007. ‒ Vol. 75. ‒ P. 527-530 doi:10.1007/s10875-009-9311-y.; Dua A., Manadan A. Images in clinical medicine. Heerfordt’s syndrome, or uveoparotid fever // N. Engl. J. Med. ‒ 2013. ‒ Vol. 369, № 5. ‒ P. 458. doi:10.1056/NEJMicm1303454.; Ewers U., Nowak D. Gesundheitsschäden und Erkrankungen durch Emissionen aus Laserdruckern und Kopiergeräten? // Gefahrstoffe. Reinhalt. Luft. ‒ 2006. ‒ Vol. 66. ‒ P. 203-210.; Fagan E. A., Moore-Gillon J. C., Turner-Warwick M. Multiorgan granulomas and mitochondrial antibodies // J. Med. ‒ 1983. ‒ Vol. 308. ‒ P. 572-575. DOI:10.1056/NEJM198303103081006.; Farhat S. C., Silva C. A., Orione M. A., Campos L. M., Sallum A. M., Braga A. L. Air pollution in autoimmune rheumatic diseases: a review // Autoimmun. Rev. ‒ 2011. ‒ Vol. 11, № 1. ‒ P. 14-21. DOI:10.1016/j.autrev.2011.06.008.; Fingerlin T. E., Hamzeh N., Maier L. A. Genetics of sarcoidosis // J. Clin. Chest Med. ‒ 2015. ‒ Vol. 36. ‒ P. 569-584. DOI:10.1016/j.ccm.2015.08.002.; Georas S. N., Chapman T. J., Crouser E. D. Sarcoidosis and T-helper cells. Th1, Th17, or Th17.1? // Am. J. Respir. Crit. Care Med. ‒ 2016. ‒ Vol. 193, № 11. ‒ P. 1198-200.; Hu Y., Yibrehu B., Zabini D., Kuebler W. M. Animal models of sarcoidosis // J. Cell Tissue Res. ‒ 2017. ‒ Vol. 367, № 3. ‒ P. 651-661 DOI:10.1007/s00441-016-2526-3.; Huang H., Lu Z., Jiang C., Liu J., Wang Y., Xu Z. Imbalance between Th17 and regulatory T-cells in sarcoidosis // J. Mol. Sci. ‒ 2013. ‒ Vol. 14, № 11. ‒ P. 21463-21473. doi:10.3390/ijms141121463.; Kamphuis L. S., van Zelm M. C., Lam K. H., Rimmelzwaan G. F., Baarsma G. S., Dik W. A., Thio H. B., van Daele P. L., van Velthoven M. E., Batstra M. R., van Hagen P. M., van Laar J. A. Perigranuloma localization and abnormal maturation of B cells: emerging key players in sarcoidosis? // Am. J. Respir. Crit. Care Med. ‒ 2013. ‒ Vol. 187, № 4. ‒ P. 406-416. DOI:10.1164/rccm.201206-1024OC.; Katchar K., Soderstrom K., Wahlstrom J., Eklund A., Grunewald J. Characterization of natural killer cells and CD56+ T-cells in sarcoidosis patients // Eur. Respir. J. ‒ 2005. ‒ Vol. 26, № 1. ‒ P. 77-85. DOI:10.1183/09031936.05.00030805.; Kobak S. Sarcoidosis: a rheumatologist’s perspective // J. Ther. Adv. Musculoskel. Dis. ‒ 2015. ‒ Vol. 7, № 5. ‒ P. 196-205. doi:10.1177/1759720X15591310.; Kobak S., Yilmaz H., Sever F., Duran A., Sen N. Anti-cyclic citrullinated peptide antibodies in patients with sarcoidosis // J. Vasc. Diffuse Lung Dis. ‒ 2014. ‒ Vol. 31, № 3. ‒ P. 206-210.; Kobak S., Yilmaz H., Sever F., Duran A., Sen N., Karaarslan A. The prevalence of antinuclear antibodies in patients with sarcoidosis // Autoimmune Dis. ‒ 2014:351852. doi:10.1155/2014/351852.; Levin A. M., Iannuzzi M. C., Montgomery C. G., Trudeau S., Datta I., McKeigue P. Association of ANXA11 genetic variation with sarcoidosis in African Americans and European Americans // Genes Immun. ‒ 2013. ‒ Vol. 4. ‒ P. 13-18.; Maddrey W. C., Johns C. J., Boitnott J. K., Iber F. L. Sarcoidosis and chronic hepatic disease: a clinical and pathological study of 20 patients // J. Medicine. ‒ 1970. ‒ Vol. 49. ‒ P. 375-395. DOI:10.1097/00005792-197009000-00002.; Miro-Mur F., Hindie M., Kandhaya-Pillai R., Tobajas V., Schwartz S. Jr., Alijotas-Reig J. Medical-grade silicone induces release of proinflammatory cytokines in peripheral blood mononuclear cells without activating T cells // J. Biomed. Mater. Res. B Appl. Biomater. ‒ 2009. ‒ Vol. 90, № 2. ‒ P. 510-520. DOI:10.1002/jbm.b.31312.; Musaelyan A., Lapin S., Nazarov V., Tkachenko O., Gilburd B., Mazing A., Mikhailova L., Shoenfeld Y. Vimentin as antigenic target in autoimmunity: a comprehensive review // J. Autoimmun. Rev. ‒ 2018. ‒ Vol. 17, № 9. ‒ P. 926-934. DOI:10.1016/j.autrev.2018.04.004.; Nanke Y., Kobashigawa T., Yago T., Kawamoto M., Yamanaka H., Kotake S. Detection of IFN-γ+IL-17+ cells in salivary glands of patients with Sjögren's syndrome and Mikulicz's disease: Potential role of Th17•Th1 in the pathogenesis of autoimmune diseases // Nihon Rinsho Meneki Gakkai Kaishi. ‒ 2016. ‒ Vol. 39, № 5. ‒ P. 473-477. DOI:10.2177/jsci.39.473; Nistala K., Adams S., Cambrook H., Ursu S., Olivito B., de Jager W., Evans J.G., Cimaz R., Bajaj-Elliott M., Wedderburn L.R. Th17 plasticity in human autoimmune arthritis is driven by the inflammatory environment // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. ‒ 2010. ‒ Vol. 107, № 33. ‒ P. 14751-14756. DOI:10.1073/pnas.1003852107.; Petrelli A., van Wijk F. CD8(+) T cells in human autoimmune arthritis: the unusual suspects // Nat. Rev. Rheumatol. ‒ 2016. ‒ Vol. 12, № 7. ‒ P. 421-428. DOI:10.1038/nrrheum.2016.74.; Ping W., Song G. Zh. Regulatory T cells and B cells: implication on autoimmune diseases // Int. J. Clin. Exp. Pathol. ‒ 2013. ‒ Vol. 6, № 12. ‒ P. 2668-2674.; Prasse A., Georges C. G., Biller H., Hamm H., Matthys H., Luttmann W., Virchow J. C. Jr. Th1 cytokine pattern in sarcoidosis is expressed by bronchoalveolar CD4+ and CD8+ T cells // Clin. Exp. Immunol. ‒ 2000. ‒ Vol. 122, № 2. ‒ P. 241-248. DOI:10.1046/j.1365-2249.2000.01365.x.; Rigby M. R., Ehlers M. R. Targeted immune interventions for type 1 diabetes: not as easy as it looks! // Curr. Opin. Endocrinol. Diabetes Obes. ‒ 2014. ‒ Vol. 21, № 4. ‒ P. 271-278. DOI:10.1097/MED.0000000000000075.; Rose N. R., Bona C. Defining criteria for autoimmune diseases (witebsky's postulates revisited) // J. Immunol today. ‒ 1993. ‒ Vol. 14. ‒ P. 426-430.; Rossman M. D., Thompson B., Frederick M., Iannuzzi M. C., Rybicki B. A., Pander J. P. HLA and environmental interactions in sarcoidosis // J. Sarcoidosis. Vasc. Diffuse Lung Dis. ‒ 2008. ‒ Vol. 25. ‒ P. 125-132.; Rossman M. D., Thompson B., Frederick M., Maliarik M., Iannuzzi M. C., Rybicki B. A. HLA-DRB1*1101: a significant risk factor for sarcoidosis in blacks and whites // J. Hum. Genet. ‒ 2003. ‒ Vol. 73. ‒ P. 720-735. DOI:10.1086/378097.; Sahoo D. H., Bandyopadhyay D., Xu M., Pearson K., Parambil J. G., Lazar C. A., Chapman J. T., Culver D. A. Effectiveness and safety of leflunomide for pulmonary and extrapulmonary sarcoidosis // Eur. Respir. J. ‒ 2011. ‒ Vol. 38, № 5. ‒ P. 1145-1150. doi:10.1183/09031936.00195010.; Sakthivela P., Brudera B. Mechanism of granuloma formation in sarcoidosis // Curr. Opin. Hematol. ‒ 2017. ‒ Vol. 24, № 1. ‒ P. 59-65. DOI:10.1097/MOH.0000000000000301.; Santiago T., Santiago M., Rovisco J., Ferreira J., Duarte C., Malcata A., Da Silva J. Coexisting primary Sjögren’s syndrome and sarcoidosis: coincidence, mutually exclusive conditions or syndrome? // J. Rheumatology International. ‒ 2014. ‒ Vol. 34, № 11. ‒ P. 1619-1622. DOI:10.1007/s00296-014-3024-0.; Shoenfeld Y., Agmon-levin N. ASIA ‒ autoimmune/inflammatory syndrome induced by adjuvants // J. Autoimmun. ‒ 2011. ‒Vol. 36. ‒ P. 4-8. DOI:10.1016/j.jaut.2010.07.003.; Soto-Gomez N., Peters J. I., Nambiar A. M. Diagnosis and management of sarcoidosis // J. Am. Family Physician. ‒ 2015. ‒ Vol. 93. ‒ P. 840-850. https://www.aafp.org/afp/2016/0515/p840.html.; Stanca C. M., Fiel I. M., Allina J., Caracta C. F., Odin J. A. Liver failure in an antimitochondrial antibody-positive patient with sarcoidosis: primary biliary cirrhosis or hepatic sarcoidosis? // J. Semin. Liver Dis. ‒ 2005. ‒ Vol. 25, № 3. ‒ P. 364-370. DOI:10.1055/s-2005-916327.; Vitali C., Bombardieri S., Jonsson R. et al. Classification criteria for Sjogren’s syndrome: a revised version of the european criteria proposed by the american-european consensus group // J. Ann. Rheum Dis. ‒ 2002. ‒ Vol. 61, № 6. ‒ P. 554-558. DOI:10.1136/ard.61.6.554.; Wahlström J., Dengjel J., Persson B., Duyar H., Rammensee H., Stevanovic´ S., Eklund A., Weissert R., Grunewald J. Identification of HLA‒DR-bound peptides presented by human bronchoalveolar lavage cells in sarcoidosis // J. Clin. Invest. ‒ 2007. ‒ Vol. 117. ‒ P. 3576-3582. DOI:10.1172/JCI32401.; Wahlström J., Dengjel J., Winqvist O., Targoff I., Persson B., Duyar H., Rammensee H.G., Eklund A., Weissert R., Grunewald J. Autoimmune T cell responses to antigenic peptides presented by bronchoalveolar lavage cell HLA-DR molecules in sarcoidosis // J. Clin. Immunol. ‒ 2009. ‒ Vol. 133, № 3. ‒ P. 353-363. DOI:10.1016/j.clim.2009.08.008.; Watad A., Rosenberg V., Tiosano S. et al. Silicone breast implants and the risk of autoimmune diseases: real world analysis // Ann. Rheum. Dis. ‒ 2018, Vol. 77. ‒ P. 1191-1192. doi:10.1093/ije/dyy217.; Wesemann D. R., Costenbader K. H., Coblyn J. S. Co-existing sarcoidosis, systemic lupus erythematosus and the antiphospholipid antibody syndrome case reports and discussion from the brigham and women’s hospital lupus center // J. Lupus. ‒ 2009. ‒ Vol. 18. ‒ P. 202-205. DOI:10.1177/0961203308100483.; Wu J. J., Schiff K. R. Sarcoidosis // J. Fam. Physician. ‒ 2004. ‒ Vol. 70, № 2. ‒ P. 312-322.; Zolotykh V. G., Kim А. Y., Shoenfeld Y., Churilov L. P. Galactorrhea following silicone breast implant placement // Israel Med. Association J. ‒ Vol. 21, № 8. ‒ Р. 523.; https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1427

الاتاحة: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1427
https://doi.org/10.21292/2075-1230-2020-98-5-54-62

المؤلفون: A. Starshinova A., Yu. Zinchenko S., E. Istomina V., N. Basantsova Yu., M. Filatov V., E. Belyaeva N., M. Nazarenko M., S. Landa B., V. Burdakov S., M. Pavlova V., D. Alekseev Yu., D. Kudlay A., P. Yablonskiy K., А. Старшинова А., Ю. Зинченко С., Е. Истомина В., Н. Басанцова Ю., М. Филатов В., Е. Беляева Н., М. Назаренко М., С. Ланда Б., В. Бурдаков С., М. Павлова В., Д. Алексеев Ю., Д. Кудлай А., П. Яблонский К.

المساهمون: The study was conducted without external funding., Исследование проводилось без спонсорской поддержки.

المصدر: BIOpreparations. Prevention, Diagnosis, Treatment; Том 19, № 3 (2019); 178-184 ; БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение; Том 19, № 3 (2019); 178-184 ; 2619-1156 ; 2221-996X ; 10.30895/2221-996X-2019-19-3

مصطلحات موضوعية: latent tuberculosis infection, Diaskintest, tuberculosis institutions, diagnosis of tuberculosis, risk group, borderline state, immune complexes, латентная туберкулезная инфекция, проба с Диаскинтестом, учреждения фтизиатрического профиля, диагностика туберкулеза, группа риска, пограничное состояние, иммунные комплексы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/244/227; Bothamley G. The Tuberculosis Network European Trials Group (TBNET): new directions in the management of tuberculosis. Breathe (Sheff). 2017;13(3):e65–e71. https://doi.org/10.1183/20734735.005517; Dhega K, Gumbo T, Gandhi NR, Murray M, Theron G, Udwadia Z, et al. Global control of tuberculosis: from extensively drug-resistant to untreatable tuberculosis. Lancet Respir Med. 2014;2(4):321–38. https://doi.org/10.1016/S2213-2600(14)70031-1; Нечаева ОБ. Эпидемическая ситуация по туберкулезу в России. Туберкулез и болезни легких. 2018;96(8):15–24. https://doi.org/10.21292/2075-1230-2018-96-8-15-24; Zellweger J-P. Current options for the management of multidrug-resistant tuberculosis (review). Медицинский альянс. 2017;1:22–8.; Зинченко ЮС, Басанцова НЮ, Старшинова АЯ, Умутбаева ГБ, Чурилов ЛП. Туберкулез сегодня: основные направления исследований по профилактике, диагностикеи лечению. Российские биомедицинские исследования. 2018;3(4):24–34.; Старшинова АА, Павлова МВ, Довгалюк ИФ, Овчинникова ЮЭ, Ялфимов АН. Влияние факторов риска на развитие и течение туберкулезной инфекции у детей из семейного контакта в современной социально-эпидемической ситуации. Туберкулез и болезни легких. 2010;87(6):34–9.; Аксенова ВА, Барышникова ЛА, Клевно НИ, Сокольская ЕА, Долженко ЕН, Шустер А и др. Новые возможности скрининга и диагностики различных проявлений туберкулезной инфекции у детей и подростков в России. Вопросы современной педиатрии. 2011;10(4):16–22.; Васильева EА, Вербов НВ, Тотолян АА. Иммунологические методы в дифференциальной диагностике активного туберкулеза легких и латентной туберкулезной инфекции. Медицинский альянс. 2015;1:92–3.; Слогоцкая ЛВ. Кожные иммунологические пробы при туберкулезе — история и современность. Туберкулез и болезни легких. 2013;(5):39–46.; Моисеева НН, Одинец ВС. Анализ результатов применения аллергена туберкулезного рекомбинантного «Диаскинтеста» для массовой диагностики. Медицинский альянс. 2015;1:132–3.; Slogotskaya LV, Litvinov V, Ovsyankina E, Seltsovsky P, Kudlay DA. Results of QuantiFeron-TB Gold in tube and skin testing with recombinant proteins CFP-10-ESAT-6 in children and adolescents with TB or latent TB. Paediatric Respiratory Reviews. 2013;14(2):S65.; Slogotskaya LV, Bogorodskaya Е, Ivanova D, Makarova M, Guntupova L, et al. Sensitivity and specificity of new skin test with recombinant protein CFP10-ESAT6 in patients with tuberculosis and individuals with non-tuberculosis diseases. European Respiratory Journal. 2013;42(S57):1995.; Slogotskaya LV, Bogorodskaya E, Sentchichina O, Ivanova D, Nikitina G, et al. Effectiveness of tuberculosis detection using a skin test with allergen recombinant (CFP-10-ESAT-6) in children. European Respiratory Journal. 2015;46(S59):РА4524.; Shovkun L, Aksenova V, Kudlay D, Sarichev A. The role of immunological tests in the diagnosis of tuberculosis infection in children with juvenile idiopathic arthritis (JIA). European Respiratory Journal. 2018;52(S62):A2733.; Аксенова ВА, Барышникова ЛА, Долженко ЕН, Кудлай ДА. Актуальные вопросы массового обследования детского населения на туберкулез в современных условиях. Доктор.Ру. 2012;8(76):27–9.; Слогоцкая ЛИ, Литвинов ВИ, Сельцовский ПП, Шустер АМ, Мартьянов ВА, Кудлай ДА и др. Применение кожной пробы с аллергеном туберкулезным рекомбинантным (Диаскинтест ® ) для диагностики туберкулезной инфекции у больных с ВИЧ-инфекцией. Пульмонология. 2011;1:60–4. https://doi.org/10.18093/0869-0189-2011-0-1-60-64; Старшинова АА, Истомина ЕВ, Зинченко ЮС, Филатов МВ, Ланда СБ, Бурдаков ВС и др. Диагностическое значение специфических иммунных комплексов в определении активности туберкулезной инфекции. Медицинская иммунология. 2019;21(2):269–78. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-2-269-278; Яблонский ПК. Фтизиатрия. Национальные клинические рекомендации. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2016.; Филатов МВ, Ланда СБ. Способы определения характеристики изотипического состава иммунных комплексов и их применение при терапии и диагностике. Патент Российской Федерации № 2634861; 2018.; Ланда СБ, Филатов МВ, Арутюнян АВ, Варфоломеева ЕВ. Исследование образования мегамолекулярных комплексов в плазме крови методом лазерной корреляционной спектроскопии. Клиническая лабораторная диагностика. 2008;4:37–41.; Кораблев ПВ, Ланда СБ, Семенова ЕВ, Филатов МВ. Динамическое светорассеяние — простой и чувствительный метод, позволяющий определять появление иммунных комплексов в биологических жидкостях. БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2015;(2):53–8.; Мамаев АН, Кудлай ДА. Визуализация данных в презентациях, отчетах и исследованиях. М.: Практическая медицина; 2011.; https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/244

الاتاحة: https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/244
https://doi.org/10.30895/2221-996X-2019-19-3-178-184