يعرض 1 - 20 نتائج من 124 نتيجة بحث عن '"S. Savina"', وقت الاستعلام: 0.78s تنقيح النتائج
  1. 1
    Academic Journal
  2. 2
  3. 3
    Academic Journal
  4. 4
    Academic Journal

    المصدر: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; 12-15 ; Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии; 12-15

    وصف الملف: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907411-41-8; https://phsreda.com/e-articles/10265/Action10265-98863.pdf; Вергунов А.П. Ландшафтное проектирование / А.П. Вергунов, М.Ф. Денисов, С.С. Ожегов. – М.: Высшая школа, 1991. – 235 с.; Градостроительный кодекс РФ по состоянию на 01.03.2021 с таблицей изменений: официальный текст. – М.: Проспект, 2021. – 400 с.; Ерохина В.И. Озеленение населенных мест: справочник / В.И. Ерохина, Г.П. Жеребцова, Т.И. Вольфтруб [и др.]; под ред. В.И. Ерохиной – М.: Стройиздат, 1987. – 480 с.; Маленький город большой судьбы. К 45-летию города Нижневартовска (из фондов нижневартовского городского архива) [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://arhivugra.admhmao.ru/virtualnye-vystavki-arkhivnykh-dokumentov/k-yubileyam-gorodov-i-rayonov-yugry-/752965/malenkiy-gorod-bolshoy-sudby-k-45-letiyu-goroda-nizhnevartovska-iz-fondov-nizhnevartovskogo-gorodsko/; Марков Ю.Г. Социальная экология. Взаимодействие общества и природы: учебное пособие / Марков Ю.Г. – Новосибирск: Сибирское университетское издательство, 2017. – 544 c.; МДС 13–5.2000 Правила создания, охраны и содержания зеленых насаждений в городах российской федерации [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://docs.cntd.ru/document/1200041607; Перькова М.В. Формирование рекреационных зон на нарушенных территориях / М.В. Перькова, Е.И. Ладик // Синергия наук. – 2017. – №16. – С. 427–436 [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://synergy-journal.ru/archive/article1073; Российская Федерация. Конституция (1993). Конституция Российской Федерации: офиц. текст. – М.: Инфра-М, 2008. – 200 с.; Рыжова Т.С. Природно-пейзажная основа пространственной структуры малых городов России / Т.С. Рыжова // Материалы Научно-технической конференции ННГАСУ. – Н. Новгород, 2001. – С. 36–37.; Трунценский Ю.В. Экологическое право: учебное пособие / Ю.В. Трунецкий, Н.Е. Саввич. – М.: АО «Центр ЮрИнфоР», 2001. – 302 с.; Федеральный Закон №33-фз от 14 марта 1995 г «Об особо охраняемых природных территориях» [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://yugyd-va.ru/Napravleniya-deyatelnosti/Ohrana-prirodi-i-territorii/FEDERALNIY-ZAKON--33-FZ-OT-14-MARTA-1995-g-OB-OSOBO-OHRANYaEMIH-PRIRODNIH-TERRITORIYaH; Фокина Н.Н. Рекреационные территории как культурное пространство города в системе социально-культурной деятельности / Н.Н. Фокина // Молодежь в науке и культуре XXI века: материалы международного научно-творческого форума. – Челябинск, 2013. – С. 307–310.Шуваев, т. д. Нижневартовск (материалы из истории города) / т. д. Шуваев // [Электронный ресурс] / Режим доступа: https://w.histrf.ru/articles/article/show/nizhnievartovsk; https://phsreda.com/files/Books/60f53889203a6.jpeg?req=98863; https://phsreda.com/article/98863/discussion_platform; https://doi.org/10.31483/r-98863

  5. 5
    Academic Journal

    المصدر: PULMONOLOGIYA; № 1 (1997); 68-70 ; Пульмонология; № 1 (1997); 68-70 ; 2541-9617 ; 0869-0189

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/3386/2780; Габриэлян Н.И., Дмитриев A.A., Краков Г.П. и др. Диагностическая ценность определения средних молекул в плазме крови при нефрологических заболеваниях / / Клин. мед.— 1981.— № 10.— С.38—42.; Гембицкий Е.В., Гайдук В.А. Острая дыхательная недостаточность при отравлениях фосфорорганическими инсектицидами / клиника, патогенез, дифференцированная терапия / / Тер. арх.— 1977.— № 1.— С.75—80.; Голиков С.И. ПатоморсЬологические механизмы заболеваний химической этиологии / / Экзотоксичекий шок.— М., 1980.— С.58—61.; Зильбер А.П. Регионарные функции легких.— Петрозаводск, 1971.; Карабиненко A.A., Бобкова В.И., Киркин Б.В., Гендлин Г.Е. Состояние легочного кровотока у больных острой пневмонией / / Сов. мед.— 1981.— № 1.— С.31—35.; Лужников Е.А., Костомарова Л.Г. Острые отравления: Руководство.— М.: Медицина. 1989.; Лужников Е.А., Гольдфарб Ю.С. Коррекция нарушений химического гомеостаза при острых экзогенных отравлениях / / Эфферентная тер.— 1995.— Т.1, № 3.— С.З—13.; Мамонов A.B. Острая пневмония как осложнение отравлений психотропными препаратами (клинико-иммунологические параллели: новые стороны патогенеза, возможности оптимизации прогноза, диагностики и лечения) / / Пульмонология.— 1989.— № 1.— С.20—23.; Парин В.В., Карпман В.Л. Физиология кровообращения, физиология сердца.— JI.: Медицина, 1980.— С.215—240.; Поцхверия М.М., Гольдфарб Ю.С. Специфическое лечебное действие ультрафиолетовой гемотерапии при отравлениях психотропными средствами / / Физиогемотерапия при острых экзои эндотоксикозах.— М., 1991.— С. 14—20.; Цой И.Г., Овчинникова В.В. Использование теста восстановления нитросинего тетразолия для определения характера гуморальных взаимодействий активированных лимфоцитов с гранулоцитами / / Лаб. дело.— 1983.— № 1.— С.31—33.; Mancini G., Carbonara A., Heremans J. Immunochemical quantitation of antigens by single radial immunodiffusion// Immunochemistry.— 1965.— Vol.2.— P.235—254.; Nota N.R., Liacopulos-Briot M., Stiffel C. et at. L'immunocytoadherence une méthode simple et quantitative pour L‘etude in vitro des cellules productrites d'auticorps / / C. R. Acad. Sei. Paris.— 1964.— Vol.259, № 3.— P.1277—1280.; Park В.И. The use and limitations of the introblue tetrasolium test as a diagnostic aid / / Pediatrics.— 1970.— Vol.78, № 2.— P.376—378.; Zaalberg O.B. A simple method for detecting singlr antibody.— forming / / Nature.— 1964.— Vol.202, № 4938.— P .1231 — 1232.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/3386

  6. 6
    Academic Journal
  7. 7
    Academic Journal
  8. 8
    Academic Journal
  9. 9
    Academic Journal

    المساهمون: The work was supported by RFBR 18-34-00485 and the project 0324-2019-0040-С-01 from the Russian State Budget

    المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 24, № 1 (2020); 102-107 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 24, № 1 (2020); 102-107 ; 2500-3259 ; 2500-0462 ; 10.18699/VJ20.604

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2486/1353; Band L.R., Wells D.M., Fozard J.A., Ghetiu T., French A.P., Pound M.P., Wilson M.H., Yu L., Li W., Hijazi H.I., Oh J. Systems analysis of auxin transport in the Arabidopsis root apex. Plant Cell. 2014;26(3):862-875.; Bellomo N., Carbonaro B. Toward a mathematical theory of living systems focusing on developmental biology and evolution: a review and perspectives. Phys. Life Rev. 2011;8(1):1-8.; Brunel G., Borianne P., Subsol G., Jaeger M., Caraglio Y. Automatic characterization of the cell organization in light microscopic images of wood: application to the identification of the cell file. Proc. of the 4th Int. Symp. on Plant Growth Modeling, Simulation, Visualization and Applications. IEEE. 2012;58-65.; Cerutti G., Ali O., Godin C. DRACO-STEM: an automatic tool to generate high-quality 3D meshes of shoot apical meristem tissue at cell resolution. Front. Plant Sci. 2017;8:353. de Reuille P.B., Routier-Kierzkowska A.L., Kierzkowski D., Bas-sel G.W., Schupbach T., Tauriello G., Bajpai N., Strauss S., Weber A., Kiss A., Burian A. MorphoGraphX: a platform for quantifying morphogenesis in 4D. Elife. 2015;4:e05864.; Eckardt N.A. A useful model of auxin transport in the root apex. Plant Cell. 2014;26:843.; Economou A.D., Ohazama A., Porntaveetus T., Sharpe P.T., Kondo S., Basson M.A., Gritli-Linde A., Cobourne M.T., Green J.B. Periodic stripe formation by a Turing mechanism operating at growth zones in the mammalian palate. Nat. Genet. 2012;44(3):348.; Federici F., Dupuy L., Laplaze L., Heisler M., Haseloff J. Integrated genetic and computation methods for in planta cytometry. Nat. Methods. 2012;9(5):483.; Hong J.H., Savina M., Du J., Devendran A., Ramakanth K.K., Tian X., Sim W.S., Mironova V.V., Xu J. A sacrifice-forsurvival mechanism protects root stem cell niche from chilling stress. Cell. 2017; 170(1):102-113.; Jonsson H., Heisler M.G., Shapiro B.E., Meyerowitz E.M., Mjols-ness E. An auxin-driven polarized transport model for phyllotaxis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2006;103(5):1633-1638.; Lacalli T.C. Modeling the Drosophila pair-rule pattern by reaction-diffusion: gap input and pattern control in a 4-morphogen system. J. Theor. Biol. 1990;144(2):171-194.; Lewis J. Autoinhibition with transcriptional delay: a simple mechanism for the zebrafish somitogenesis oscillator. Curr. Biology. 2003; 13(16):1398-1408.; Likhoshvai V., Ratushny A. Generalized Hill function method for modeling molecular processes. J. Bioinform. Comput. Biol. 2007; 5(02b):521-531.; Lobet G., Draye X., Perilleux C. An online database for plant image analysis software tools. Plant Methods. 2013;9(1):38.; Merks R.M., Guravage M., Inze D., Beemster G.T. VirtualLeaf: an open-source framework for cell-based modeling of plant tissue growth and development. Plant Physiol. 2011;155(2):656-666.; Mironova V.V., Omelyanchuk N.A., Novoselova E.S., Doroshkov A.V., Kazantsev F.V., Kochetov A.V., Kolchanov N.A., Mjolsness E., Likhoshvai V.A. Combined in silico/in vivo analysis of mechanisms providing for root apical meristem self-organization and maintenance. Ann. Bot. 2012;110(2):349-360.; Pound M.P., French A.P., Wells D.M., Bennett M.J., Pridmore T.P. Cell Set: novel software to extract and analyze structured networks of plant cells from confocal images. Plant Cell. 2012;24(4):1353-1361.; Pradal C., Dufour-Kowalski S., Boudon F., Fournier C., Godin C. OpenAlea: a visual programming and component-based software platform for plant modelling. Funct. Plant Biol. 2008;35(10): 751-760.; Raspopovic J., Marcon L., Russo L., Sharpe J. Digit patterning is controlled by a Bmp-Sox9-Wnt Turing network modulated by morphogen gradients. Science. 2014;345(6196):566-570.; Schmidt T., Pasternak T., Liu K., Blein T., Aubry-Hivet D., Dovzhenko A., Duerr J., Teale W., Ditengou F.A., Burkhardt H., Ronneber-ger O. The iRoCS Toolbox - 3D analysis of the plant root apical meristem at cellular resolution. Plant J. 2014;77(5):806-814.; Shampine L.F., Reichelt M.W. The MATLAB ODE suite. SIAM J. Sci. Comput. 1997;18(1):1-22.; Shampine L.F., Reichelt M.W., Kierzenka J.A. Solving index-1 DAEs in MATLAB and Simulink. SIAM Rev. 1999;41(3):538-552.; Shapiro B.E., Meyerowitz E., Mjolsness E. Using cellzilla for plant growth simulations at the cellular level. Front. Plant Sci. 2013;4:408.; Shimojo H., Kageyama R. Oscillatory control of Deltalike1 in somi-togenesis and neurogenesis: a unified model for different oscillatory dynamics. Semin. Cell Dev. Biol. 2016;49:76-82.; Smith R.S., Guyomarc’h S., Mandel T., Reinhardt D., Kuhlemeier C., Prusinkiewicz P. A plausible model of phyllotaxis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2006;103(5):1301-1306.; Tomlin C.J., Axelrod J.D. Biology by numbers: mathematical modelling in developmental biology. Nat. Rev. Genet. 2007;8(5):331.; Turing A.M. The chemical basis of morphogenesis. Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 1952;237:37-72.; Zubairova U.S., Verman P.Y., Oshchepkova P.A., Elsukova A.S., Doroshkov A.V. LSM-W2: laser scanning microscopy worker for wheat leaf surface morphology. BMC Syst. Biol. 2019;13(1):22.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2486

  10. 10
    Academic Journal
  11. 11
    Academic Journal

    المصدر: A breakthrough in science: development strategies; 41-44 ; Новое слово в науке: стратегии развития; 41-44

    وصف الملف: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-6041314-3-5; https://interactive-plus.ru/e-articles/552/Action552-472517.pdf; Адлер А. Наука жить / Пер. с англ. Е.О. Любченко, пер. с нем. А.А. Юдина. – Киев: Port-Royal, 1997. – 288 с.; Вилюнас В.К. Психологические механизмы мотивации человека [Текст] / В.К. Вилюнас. – М.: Изд-во МГУ 1990. – 288с.; Глоссарий по политической психологии [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://2013lib.ru/dictionary/8/word/motivacija; Жукова В.И. Общая и прикладная политология [Текст]: Учебное пособие / Под общ. ред. В.И. Жукова, Б.И. Краснова. – М.: МГСУ; Союз, 1997. – 992с.; Макклелланд, Д. Мотивация человека [Текст] / Д. Макклелланд. – СПб.: Питер, 2007. – 672 с.; О полуфинале конкурса «Лидеры России» // ВГТРК «Россия-24» [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.youtube.com/watch?v=lLGg9ijmsEQ; Путин назвал качества, которыми должен обладать политический деятель // «Международное информационное агентство «Россия сегодня» [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://ria.ru/politics/20140117/989802686.html; Речь Владимира Путина на церемонии вступления в должность президента России // Федеральное государственное унитарное предприятие «Информационное телеграфное агентство России (ИТАР-ТАСС)» [Электронный ресурс] – Режим доступа: http://tass.ru/politika/5180768; Фромм Э. Избавление от иллюзий: сопоставление взглядов Маркса и Фрейда [Текст] / Э. Фромм; пер. с англ. Н.Г. Кротовской [и др.]. – М.: Айрис-пресс, 2005. – 344 с.; https://interactive-plus.ru/files/Books/Cover-552.jpeg?req=472517; https://interactive-plus.ru/article/472517/discussion_platform; https://doi.org/10.21661/r-472517

  12. 12
    Academic Journal
  13. 13
    Academic Journal

    المصدر: Scientific studies: theory, methodology and practice; № 1; 175-177 ; Научные исследования: теория, методика и практика; № 1; 175-177

    وصف الملف: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-9500297-4-5; https://interactive-plus.ru/e-articles/410/Action410-461336.pdf; 1. Есин Р.Г. Алекситимия – основные направления изучения / Р.Г. Есин, Е.А. Горобец, К.Р. Галиуллин, О.Р. Есин // Журнал неврологии и психиатрии. – 2014. – №12. – С. 148–151.; 2. Барабошин А.Т. Алекситимия и психологические защиты: возрастные и гендерные аспекты у пациентов соматического профиля // Психология совладающего поведения. – Кострома, 2010. – С. 76–78.; 3. Брель Е.Ю. Проблема изучения алекситимии в психологических исследованиях // Вестник КемГУ. – 2012. – №3. – С. 173–176.; 4. Коваль Н.А. Процесс и содержание эмоционального развития / Н.А. Коваль, О.И. Шмырева // Мир психологии. – М. – Воронеж, 2015. – №3 (83).; 5. Трунов Д.Г. Виды и механизмы функциональной алекситимии // Вестник Пермского университета. Философия. Психология. Социология. – 2010. – Вып. 2.; 6. Николаева В.В. О психологической природе алекситимии // Психология телесности и психосоматика. – 2007 [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://www.gestaltlife.ru/publications/13/view/126; https://interactive-plus.ru/files/Books/Cover-410.jpg?req=461336; https://interactive-plus.ru/article/461336/discussion_platform

  14. 14
  15. 15
  16. 16
    Academic Journal

    المساهمون: РНФ

    المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 20, № 4 (2016); 460-474 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 20, № 4 (2016); 460-474 ; 2500-3259 ; 2500-0462

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/697/800; Поплавская Г.И. Водные растения. М.: Сов. энцикл., 1971. Т. 5. Aichinger E., Kornet N., Friedrich T., Laux T. Plant stem cell niches. Ann. Rev. Plant Biol. 2012;63:615-636. DOI 10.1146/annurevarplant-042811-105555.; Atta R., Laurens L., Boucheron-Dubuisson E., Guivarc’h A., Carnero E., Giraudat-Pautot V., Rech P., Chriqui D. Pluripotency of Arabidopsis xylem pericycle underlies shoot regeneration from root and hypocotyl explants grown in vitro. Plant J. 2009;57:626-644. DOI 10.1111/j.1365-313x.2008.03715.x.; Baima S., Nobili F., Sessa G., Lucchetti S., Ruberti I., Morelli G. The expression of the Athb-8 homeobox gene is restricted to provascular cells in Arabidopsis thaliana. Development. 1995;121(12):4171-4182.; Bennett T., van den Toorn A., Sanchez-Perez G.F., Campilho A., Willemsen V., Snel B., Scheres B. SOMBRERO, BEARSKIN1, and BEARSKIN2 regulate root cap maturation in Arabidopsis. Plant Cell. 2010;22:640-654.; Bennett T., van den Toorn A., Willemsen V., Scheres B. Precise control of plant stem cell activity through parallel regulatory inputs. Development. 2014;141(21):4055-4064. DOI 10.1242/dev.110148.; Boyer F., Simon R. Asymmetric cell divisions constructing Arabidopsis stem cell niches: the emerging role of protein phosphatases. Plant Biol. (Stuttg.) 2015;17(5):935-945. DOI 10.1111/plb.12352.; Breuninger H., Rikirsch E., Hermann M., Ueda M., Laux T. Differential expression of WOX genes mediates apical-basal axis formation in the Arabidopsis embryo. Dev. Cell. 2008;14(6):867-876.; Brunoud G., Wells D.M., Oliva M., Larrieu A., Mirabet V., Burrow A.H., Beeckman T., Kepinski S., Traas J., Bennett M.J., Vernoux T. A novel sensor to map auxin response and distribution at high spatio-temporal resolution. Nature. 2012;482(7383):103-106.; Cao X., Li K., Suh S.G., Guo T., Becraft P.W. Molecular analysis of the CRINKLY4 gene family in Arabidopsis thaliana. Planta. 2005;220(5):645-657.; Capella M., Ribone P.A., Arce A.L., Chan R.L. Arabidopsis thaliana HomeoBox 1 (AtHB1), a Homedomain-Leucine Zipper I (HD-Zip I) transcription factor, is regulated by PHYTOCHROME-INTERACTING FACTOR 1 to promote hypocotyl elongation. New Phytol. 2015;207(3):669-682.; Carlsbecker A., Lee J.Y., Roberts C.J., Dettmer J., Lehesranta S., Zhou J., Lindgren O., Moreno-Risueno M.A., Vatén A., Thitamadee S., Campilho A., Sebastian J., Bowman J.L., Helariutta Y., Benfey P.N. Cell signalling by microRNA165/6 directs gene dosedependent root cell fate. Nature. 2010;465(7296):316-321.; Chatfield S.P., Capron R., Severino A. Incipient stem cell niche conversion in tissue culture: using a sys tems approach to probe early events in WUSCHEL dependent conversion of lateral root primordia into shoot meristems. Plant J. 2013;73:798-813.; Che P., Lall S., Howell S.H. Developmental steps in acquiring competence for shoot development in Arabidopsis tissue culture. Planta. 2007;226:1183-1194. DOI 10.1007/s00425-007-0565-4.; Chen S.K., Kurdyukov S., Kereszt A., Wang X.D., Gresshoff P.M., Rose R.J. The association of homeobox gene expression with stem cell formation and morphogenesis in cultured Medicago truncatula. Planta. 2009;230(4):827-840. DOI 10.1007/s00425-009-0988-1.; Clapier C.R., Cairns B.R. The biology of chromatin remodeling complexes. Annu. Rev. Biochem. 2009;78:273-304.; Clark N.M., de Luis Balaguer M.A., Sozzani R. Experimental data and computational modeling link auxin gradient and development in the Arabidopsis root. Front. Plant. Sci. 2014;5:328. DOI 10.3389/fpls.2014.00328.; Della Rovere F., Fattorini L., D’Angeli S., Veloccia A., Falasca G., Altamura M.M. Auxin and cytokinin control formation of the quiescent centre in the adventitious root apex of Arabidopsis. Ann. Bot. 2013;112(7):1395-1407. DOI 10.1093/aob/mct215.; Ding Z., Friml J. Auxin regulates distal stem cell differentiation in Arabidopsis roots. Proc. Natl Acad. Sci. 2010;107(26):12046-12051.; Ditengou F.A., Teale W.D., Kochersperger P., Flittner K.A., Kneuper I., van der Graaff E., Nziengui H., Pinosa F., Li X., Nitschke R., Laux T., Palme K. Mechanical induction of lateral root initiation in Arabidopsis thaliana. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2008;2;105(48):18818-18823. DOI 10.1073/pnas.0807814105.; Dorantes-Acosta A.E., Vielle-Calzada J.P. The male gametophytic mutant tepitzin1 indicates a requirement of the homeobox gene WOX5 for pollen tube growth in Arabidopsis. Sex. Plant Reprod. 2006;1;19(4):163-173.; Duvall M.R., Learn G.H. Jr, Eguiarte L.E., Clegg M.T. Phylogenetic analysis of rbcL sequences identifies Acorus calamus as the primal extant monocotyledon. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1993;15; 90(10):4641-4644.; Forzani C., Aichinger E., Sornay E., Willemsen V., Laux T., Dewitte W., Murray J.A. WOX5 suppresses CYCLIN D activity to establish quiescence at the center of the root stem cell niche. Curr. Biol. 2014;24(16):1939-1944. DOI 10.1016/j.cub.2014.07.019.; Gagne J.M., Song S.K., Clark S.E. POLTERGEIST and PLL1 are required for stem cell function with potential roles in cell asymmetry and auxin signaling. Commun. Integr. Biol. 2008;1(1):53-55.; Gao B., Wen C., Fan L., Kou Y., Ma N., Zhao L. A Rosa canina WUSCHEL-related homeobox gene, RcWOX1, is involved in auxin-induced rhizoid formation. Plant Mol. Biol. 2014;86(6):671-679. DOI 10.1007/s11103-014-0255-0.; Gaut B.S., Doebley J.F. DNA sequence evidence for the segmental allotetraploid origin of maize. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1997; 94(13):6809-6814.; Gonzali S., Novi G., Loreti E., Paolicchi F., Poggi A., Alpi A., Perata P. A turanose-insensitive mutant suggests a role for WOX5 in auxin homeostasis in Arabidopsis thaliana. Plant J. 2005;44(4):633-645.; Grigg S.P., Galinha C., Kornet N., Canales C., Scheres B., Tsiantis M. Repression of apical homeobox genes is required for embryonic root development in Arabidopsis. Curr. Biol. 2009;19(17):1485-1490.; Haecker A., Gross-Hardt R., Geiges B., Sarkar A., Breuninger H., Herrmann M., Laux T. Expression dynamics of WOX genes mark cell fate decisions during early embryonic patterning in Arabidopsis thaliana. Development. 2004;131(3):657-668.; Haider N. The origin of the B-genome of bread wheat (Triticum aestivum L.). Genetika. 2013;49(3):303-314.; Hawker N.P., Bowman J.L. Roles for class III HD-Zip and KANADI genes in Arabidopsis root development. Plant Physiol. 2004;135(4): 2261-2270.; He C., Chen X., Huang H., Xu L. Reprogramming of H3K27me3 is critical for acquisition of pluri potency from cultured Arabidopsis tissues. PLoS Genet. 2012;8:e1002911. DOI 10.1371/journal.pgen.1002911.; Hedman H., Zhu T., von Arnold S., Sohlberg J.J. Analysis of the WUSCHEL-RELATED HOMEOBOX gene family in the conifer Picea abies reveals extensive conservation as well as dynamic patterns. BMC Plant Biol. 2013;13:89. DOI 10.1186/1471-2229-13-89.; Hiratsu K., Matsui K., Koyama T., Ohme-Takagi M. Dominant repression of target genes by chimeric repressors that include the EAR motif, a repression domain, in Arabidopsis. Plant J. 2003;34(5): 733-739.; Ikeda M., Mitsuda N., Ohme-Takagi M. Arabidopsis WUSCHEL is a bifunctional transcription factor that acts as a repressor in stem cell regulation and as an activator in floral patterning. Plant Cell. 2009;21(11):3493-3505. DOI 10.1105/tpc.109.069997.; Imin N., Nizamidin M., Wu T., Rolfe B.G. Factors involved in root formation in Medicago truncatula. J. Exp. Bot. 2007;58(3): 439-451.; Iwata Y., Takahashi M., Fedoroff N.V., Hamdan S.M. Dissecting the interactions of SERRATE with RNA and DICER-LIKE 1 in Arabidopsis microRNA precursor processing. Nucl. Acids Res. 2013;41(19):9129-9140. DOI 10.1093/nar/gkt667.; Ji H., Wang S., Li K., Szakonyi D., Koncz C., Li X. PRL1 modulates root stem cell niche activity and meristem size through WOX5 and PLTs in Arabidopsis. Plant J. 2015;81(3):399-412.; Jia Y., Tian H., Li H., Yu Q., Wang L., Friml J., Ding Z. The Arabidopsis thaliana elongator complex subunit 2 epigenetically affects root development. J. Exp. Bot. 2015. DOI 10.1093/jxb/erv230.; Johannesson H., Wang Y., Hanson J., Engström P. The Arabidopsis thaliana homeobox gene ATHB5 is a potential regulator of abscisic acid responsiveness in developing seedlings. Plant Mol. Biol. 2003;51(5):719-729.; Joshi T., Valliyodan B., Wu J.H., Lee S.H., Xu D., Nguyen H.T. Genomic differences between cultivated soybean, G. max and its wild relative G. soja. BMC Genomics. 2013;14(1):S5. DOI 10.1186/1471-2164-14-S1-S5.; Kamiya N., Nagasaki H., Morikami A., Sato Y., Matsuoka M. Isolation and characterization of a rice WUSCHEL-type homeobox gene that is specifically expressed in the central cells of a quiescent center in the root apical meristem. Plant J. 2003;35(4):429-441.; Kasahara H. Current aspects of auxin biosynthesis in plants. Biosci. Biotech. Bioch. 2016;80(1):34-42.; Kita Y., Kato M. Seedling developmental anatomy of an undescribed Malaccotristicha species (Podostemaceae, subfamily Tristichoideae) with implications for body plan evolution. Plant Syst. Evol. 2005;1;254(3-4):221-232.; Kumar S., Stecher G., Tamura K. MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 7.0 for bigger datasets. Mol. Biol. Evol. 2016;22.; Lastdrager J., Hanson J., Smeekens S. Sugar signals and the control of plant growth and development. J. Exp. Bot. 2014;65(3):799-807.; Laux T., Mayer K.F., Berger J., Jürgens G. The WUSCHEL gene is required for shoot and floral meristem integrity in Arabidopsis. Development. 1996;122:87-96.; Lee J., Lee I. Regulation and function of SOC1, a flowering pathway integrator. J. Exp. Bot. 2010;61(9):2247-2254.; Lee M.M., Schiefelbein J. WEREWOLF, a MYB-related protein in Arabidopsis, is a position-dependent regulator of epidermal cell patterning. Cell. 1999;99(5):473-483.; Lian G., Ding Z., Wang Q., Zhang D., Xu J. Origins and evolution of WUSCHEL-related homeobox protein family in plant kingdom. Sci. World J. 2014;2014:534140. DOI 10.1155/2014/534140.; Liu W., Han X., Zhan G., Zhao Z., Feng Y., Wu C. A Novel sucroseregulatory MADS-box transcription factor GmNMHC5 promotes root development and nodulation in Soybean (Glycine max [L.] Merr.). Int. J. Mol. Sci. 2015;16(9):20657-20673. DOI 10.3390/ijms160920657.; Lohmann J.U., Hong R.L., Hobe M., Busch M.A., Parcy F., Simon R., Weigel D. A molecular link between stem cell regulation and floral patterning in Arabidopsis. Cell. 2001;105(6):793-803.; Mashiguchi K., Tanaka K., Sakai T., Sugawara S., Kawaide H., Natsume M., Hanadaa A., Yaenoa T., Shirasua K., Yaod H., McSteend P., Zhaoe Y., Hayashif K., Kamiyaa Y., Kasahara H. The main auxin biosynthesis pathway in Arabidopsis. Proc. Natl Acad. Sci. 2011;108(45):18512-18517.; Mayer K.F., Schoof H., Haecker A., Lenhard M., Jürgens G., Laux T. Role of WUSCHEL in regulating stem cell fate in the Arabidopsis shoot meristem. Cell. 1998;95(6):805-815.; Meyer M.R., Shah S., Zhang J., Rohrs H., Rao A.G. Evidence for intermolecular interactions between the intracellular domains of the Arabidopsis receptor-like kinase ACR4, its homologs and the WOX5 transcription factor. PLoS ONE. 2015;10(3). DOI 10.1371/journal.pone.0118861.; Michaels S.D., Amasino R.M. Memories of winter: vernalization and the competence to flower. Plant Cell Environ. 2000;23(11):1145-1153.; Mikkelsen M.D., Naur P., Halkier B.A. Arabidopsis mutants in the C–S lyase of glucosinolate biosynthesis establish a critical role for indole-3-acetaldoxime in auxin homeostasis. Plant J. 2004;37(5): 770-777.; Muller B., Sheen J. Cytokinin and auxin interaction in root stem-cell specification during early embryogenesis. Nature. 2008; 453(7198): 1094-1097. DOI 10.1038/nature06943.; Muller C.J., Valdes A.E., Wang G., Ramachandran P., Beste L., Uddenberg D., Carlsbecker A. PHABULOSA mediates an auxin signaling loop to regulate vascular patterning in arabidopsis. Plant Physiol. 2016;170(2):956-970. DOI 10.1104/pp.15.01204.; Napsucialy-Mendivil S., Alvarez-Venegas R., Shishkova S., Dubrovsky J.G. Arabidopsis homolog of trithorax1 (ATX1) is required for cell production, patterning, and morphogenesis in root development. J. Exp. Bot. 2014. DOI 10.1093/jxb/eru355.; Nardmann J., Reisewitz P., Werr W. Discrete shoot and root stem cellpromoting WUS/WOX5 functions are an evolutionary innovation of angiosperms. Mol. Biol. Evol. 2009;26(8):1745-1755. DOI 10.1093/molbev/msp084.; Nardmann J., Werr W. The invention of WUS-like stem cell-promoting functions in plants predates leptosporangiate ferns. Plant. Mol. Biol. 2012;78(1-2):123-134. DOI 10.1007/s11103-011-9851-4.; Nardmann J., Zimmermann R., Durantini D., Kranz E., Werr W. WOX gene phylogeny in Poaceae: a comparative approach addressing leaf and embryo development. Mol. Biol. Evol. 2007;24(11): 2474-2484.; Ng M., Yanofsky M.F. Function and evolution of the plant MADS-box gene family. Nat. Rev. Genet. 2001;2(3):186-195.; Nonhebel H., Yuan Y., Al-Amier H., Pieck M., Akor E., Ahamed A., Cohen J.D., Celenza J.L., Normanly J. Redirection of tryptophan metabolism in tobacco by ectopic expression of an Arabidopsis indolic glucosinolate biosynthetic gene. Phytochemistry. 2011;72(1): 37-48.; Olsen J.L., Rouzé P., Verhelst B., Lin Y.C., Bayer T., Collen J., Dattolo E., De Paoli E., Dittami S., Maumus F., Michel G., Kersting A., Lauritano C., Lohaus R., Töpel M., Tonon T., Vanneste K., Amirebrahimi M., Brakel J., Boström C., Chovatia M., Grimwood J., Jenkins J.W., Jueterbock A., Mraz A., Stam W.T., Tice H., BornbergBauer E., Green P.J., Pearson G.A., Procaccini G., Duarte C.M., Schmutz J., Reusch T.B., Van de Peer Y. The genome of the seagrass Zostera marina reveals angiosperm adaptation to the sea. Nature. 2016;18(530(7590)):331-335. DOI 10.1038/nature16548.; Osipova M.A., Mortier V., Demchenko K.N., Tsyganov V.E., Tikhonovich I.A., Lutova L.A., Dolgikh E.A., Goormachtig S. Wuschelrelated homeobox5 gene expression and interaction of СLE peptides with components of the systemic control add two pieces to the puzzle of autoregulation of nodulation. Plant Physiol. 2012;158(3):1329-1341. DOI 10.1104/pp.111.188078.; Pi L., Aichinger E., van der Graaff E., Llavata-Peris C.I., Weijers D., Hennig L., Groot E. Organizer-derived WOX5 signal maintains root columella stem cells through chromatin-mediated repression of CDF4 expression. Dev. Cell. 2015;33(5):576-588. DOI 10.1016/j.devcel.2015.04.024.; Qiu Y.L., Dombrovska O., Lee J., Li L., Whitlock B.A., BernasconiQuadroni F., Rest J.S., Davis C.C., Borsch T., Hilu K.W., Renner S.S. Phylogenetic analyses of basal angiosperms based on nine plastid, mitochondrial, and nuclear genes. Int. J. Plant Sci. 2005;166(5): 815-842.; Quittenden L.J., Davies N.W., Smith J.A., Molesworth P.P., Tivendale N.D., Ross J.J. Auxin biosynthesis in pea: characterization of the tryptamine pathway. Plant Physiol. 2009;151(3):1130-1138.; Rubio V., Linhares F., Solano R., Martín A.C., Iglesias J., Leyva A., Paz-Ares J. A conserved MYB transcription factor involved in phosphate starvation signaling both in vascular plants and in unicellular algae. Genes Dev. 2001;15(16):2122-2133.; Sabatini S., Beis D., Wolkenfelt H., Murfett J., Guilfoyle T., Malamy J., Benfey P., Leyser O., Bechtold N., Weisbeek P., Scheres B. An auxin-dependent distal organizer of pattern and polarity in the Arabidopsis root. Cell. 1999;99(5):463-472.; Sablowski R. Plant stem cell niches: from signalling to execution. Curr. Opin. Plant. Biol. 2011;14(1):4-9. DOI 10.1016/j.pbi.2010.08.001.; Sang Y., Silva-Ortega C.O., Wu S., Yamaguchi N., Wu M.F., Pfluger J., Gillmor C.S., Gallagher K.L., Wagner D. Mutations in two noncanonical Arabidopsis SWI2/SNF2 chromatin remodeling ATPases cause embryogenesis and stem cell maintenance defects. Plant J. 2012;72(6):1000-1014.; Sarkar A.K., Luijten M., Miyashima S., Lenhard M., Hashimoto T., Nakajima K., Scheres B., Heidstra R., Laux T. Conserved factors regulate signalling in Arabidopsis thaliana shoot and root stem cell organizers. Nature. 2007;446:811-814. DOI 10.1038/nature05703.; Sauer M., Robert S., Kleine-Vehn J. Auxin: simply complicated. J. Exp. Bot. 2013;64(9):2565-2577.; Scheres B. Stem-cell niches: nursery rhymes across kingdoms. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2007;8:345-354.; Scheres B., Wolkenfelt H., Willemsen V., Terlouw M., Lawson E., Dean C., Weisbeek P. Embryonic origin of the Arabidopsis primary root and root meristem initials. Development. 1994;120:2475-2478.; Sharma S.K., Yamamoto M., Mukai Y. Immuno-cytogenetic manifestation of epigenetic chromatin modification marks in plants. Planta. 2015;241:291-301.; Skirycz A., Reichelt M., Burow M., Birkemeyer C., Rolcik J., Kopka J., Zanor M.I., Gershenzon J., Strnad M., Szopa J., Mueller-Roeber B., Witt I. DOF transcription factor AtDof1. 1 (OBP2) is part of a regulatory network controlling glucosinolate biosynthesis in Arabidopsis. Plant J. 2006;47(1):10-24.; Smith Z.R., Long J.A. Control of Arabidopsis apical–basal embryo polarity by antagonistic transcription factors. Nature. 2010; 464(7287):423-426.; Song S.K., Hofhuis H., Lee M.M., Clark S.E. Key divisions in the early Arabidopsis embryo require POL and PLL1 phosphatases to establish the root stem cell organizer and vascular axis. Dev. Cell. 2008;15(1):98-109.; Soukup A., Seago J.L. Jr., Votrubová O. Developmental anatomy of the root cortex of the basal monocotyledon, Acorus calamus (Acorales, Acoraceae). Ann. Bot. 2005;96(3):379-385.; Stahl Y., Grabowski S., Bleckmann A., Kühnemuth R., WeidtkampPeters S., Pinto K.G., Kirschner G.K., Schmid J.B., Wink R.H., Hülsewede A., Felekyan S., Seidel C.A., Simon R. Moderation of Arabidopsis root stemness by CLAVATA1 and ARABIDOPSIS CRINKLY4 receptor kinase complexes. Curr. Biol. 2013;23(5):362-371.; Stahl Y., Simon R. Is the Arabidopsis root niche protected by sequestration of the CLE40 signal by its putative receptor ACR4? Plant Signal. Behav. 2009;4(7):634-635.; Sugawara S., Hishiyama S., Jikumaru Y., Hanada A., Nishimura T., Koshiba T., Zhao Y., Kamiya Y., Kasahara H. Biochemical analyses of indole-3-acetaldoxime-dependent auxin biosynthesis in Arabidopsis. Proc. Natl Acad. Sci. 2009;106(13):5430-5435.; Sugimoto K., Jiao Y., Meyerowitz E.M. Arabidopsis regeneration from multiple tissues occurs via a root developmental pathway. Dev. Cell. 2010;18:463-471.; Tian H., Jia Y., Niu T., Yu Q., Ding Z. The key players of the primary root growth and development also function in lateral roots in Arabidopsis. Plant Cell Rep. 2014a;33(5):745-753.; Tian H., Wabnik K., Niu T., Li H., Yu Q., Pollmann S., Vanneste S., Govaerts W., Rolcík J., Geisler M., Friml J., Ding Z. WOX5–IAA17 feedback circuit-mediated cellular auxin response is crucial for the patterning of root stem cell niches in Arabidopsis. Mol. Plant. 2014b;7(2):277-289.; Van den Berg C., Willemsen V., Hendriks G., Weisbeek P., Scheres B. Short-range control of cell differentiation in the Arabidopsis root meristem. Nature. 1997;390(6657):287-289.; Van der Graaff E., Laux T., Rensing S.A. The WUS homeobox-containing (WOX) protein family. Genome Biol. 2009;10:248. DOI 10.1186/gb-2009-10-12-248.; Vilarrasa-Blasi J., González-García M.P., Frigola D., Fàbregas N., Alexiou K.G., López-Bigas N., Rivas S., Jauneau A., Lohmann J.U., Benfey P.N., Ibañes M., Caño-Delgado A.I. Regulation of plant stem cell quiescence by a brassinosteroid signaling module. Dev. Cell. 2014;30(1):36-47. DOI 10.1016/j.devcel.2014.05.020.; Vinogradova A.P., Lebedeva M.A., Lutova L.A. Meristematic characteristics of tumors initiated by Agrobacterium tumefaciens in pea plants. Russ. J. Genet. 2015;51(1):46-54.; Ward J.M., Cufr C.A., Denzel M.A., Neff M.M. The Dof transcription factor OBP3 modulates phytochrome and cryptochrome signaling in Arabidopsis. Plant Cell. 2005:17(2):475-485.; Wenzel C.L., Schuetz M., Yu Q., Mattsson J. Dynamics of MONOPTEROS and PIN-FORMED1 expression during leaf vein pattern formation in Arabidopsis thaliana. Plant J. 2007;49(3):387-398.; Willemsen V., Bauch M., Bennett T., Campilho A., Wolkenfelt H., Xu J., Haseloff J., Scheres B. The NAC domain transcription factors FEZ and SOMBRERO control the orientation of cell division plane in Arabidopsis root stem cells. Dev. Cell. 2008;15:913-922.; Won C., Shen X., Mashiguchi K., Zheng Z., Dai X., Cheng Y., Kasahara H., Kamiya Y., Chory J., Zhao Y. Conversion of tryptophan to indole-3-acetic acid by tryptophan aminotransferases of Arabidopsis and YUCCAs in Arabidopsis. Proc. Natl Acad. Sci. 2011;108(45):18518-18523. DOI 10.1073/pnas.1108436108.; Yadav R.K., Perales M., Gruel J., Girke T., Jönsson H., Reddy G.V. WUSCHEL protein movement mediates stem cell homeostasis in the Arabidopsis shoot apex. Genes. Dev. 2011;25(19):2025-2030. DOI 10.1101/gad.17258511.; Yadav R.K., Tavakkoli M., Reddy G.V. WUSCHEL mediates stem cell homeostasis by regulating stem cell number and patterns of cell division and differentiation of stem cell progenitors. 2010;137(21):3581-3589. DOI 10.1242/dev.054973.; Yu C., Liu Y., Zhang A., Su S., Yan A., Huang L., Ali I., Liu Y., Forde B.G., Gan Y. MADS-box transcription factor OsMADS25 regulates root development through affection of nitrate accumulation in rice. PLoS ONE. 2015;10(8):e0135196. DOI 10.1371/journal.pone.0135196.; Zhang W., Swarup R., Bennett M., Schaller G.E., Kieber J.J. Cytokinin induces cell division in the quiescent center of the Arabidopsis root apical meristem. Curr. Biol. 2013;23(20):1979-1989.; Zhang Y., Jiao Y., Liu Z., Zhu Y.X. ROW1 maintains quiescent centre identity by confining WOX5 expression to specific cells. Nat. Commun. 2015. DOI 10.1038/ncomms7003.; Zhao S., Jiang Q.T., Ma J., Zhang X.W., Zhao Q.Z., Wang X.Y., Wang C.S., Cao X., Lu Z.X., Zheng Y.L., Wei Y.M. Characterization and expression analysis of WOX5 genes from wheat and its relatives. Gene. 2014;537(1):63-69. DOI 10.1016/j.gene.2013.12.022.; Zhao Y., Hull A.K., Gupta N.R., Goss K.A., Alonso J., Ecker J.R., Normanly J., Chory J., Celenza J.L. Trp-dependent auxin biosynthesis in Arabidopsis: involvement of cytochrome P450s CYP79B2 and CYP79B3. Gene Dev. 2002;16:3100-3112.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/697

  17. 17
    Academic Journal

    المصدر: Doklady of the National Academy of Sciences of Belarus; Том 59, № 5 (2015); 62-67 ; Доклады Национальной академии наук Беларуси; Том 59, № 5 (2015); 62-67 ; 2524-2431 ; 1561-8323 ; undefined

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/144/146; Шалыго, Н. В. Функционирование защитной системы растительной клетки в условиях окислительного стресса / Н. В. Шалыго // Годневские чтения «Фотобиология растений и фотосинтез». – Минск: Право и экономика, 2015.; Козел, Н. В. Аскорбат-глутатионовый цикл в растениях табака с повышенной экспрессией аскорбатпероксидазы при абиотическом стрессе / Н. В. Козел, В. П. Доманский // Вестн. Фонда фундаментальных исследований. – 2012. – № 1(59). – С. 89–100.; Бараненко, В. В. Супероксиддисмутаза в клетках растений / В. В. Бараненко // Цитология. – 2006. – Т. 48, № 6. – C. 465–473.; Increased resistance to oxidative stress in transgenic plants that overexpress chloroplastic Cu/Zn superoxide dismutase / A. Sen Gupta [et al.] // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 1993. – Vol. 90. – P. 1629–1633.; Enhanced oxidative stress defence in transgenic potato plants expressing tomato Cu/Zn-superoxide dismutase / A. Perl [et al.] // Theor. Appl. Genet. – 1993. – Vol. 85. – P. 568–576.; Трансформанты табака с геном Fe-СОД1 как модель для изучения формирования алюмоустойчивости / И. Г. Широких [и др.] // Агрохимия. – 2015. – № 2. – С. 79–85.; Expression of SOD and APX genes positively regulates secondary cell wall biosynthesis and promotes plant growth and yield in Arabidopsis under salt stress / A. Shafi [et al.] // Plant Mol. Biol. – 2015. – Vol. 87, Iss. 6. – P. 615–631.; Enhanced salt tolerance of transgenic polar plants expressing manganese superoxide dismutase from Tamarix Androssowii / Y. C. Wang [et al.] // Mol. Bio. Rep. – 2010. – Vol. 35. – P. 1119–1124.; Kingston-Smith, A. Overexpression Mn-superoxide dismutase in maize leaves leads to increased monodehydroascorbate reductase, dehydroascorbate reductase and glutathione reductase activities / A. Kingston-Smith, Ch. Foyer // J. Exp. Bot. – 2000. – Vol. 51, Iss. 352. – Р. 1867–1877.; Overproduction of Arabidopsis thaliana FeSOD confers oxidative stress tolerance to transgenic maize / F. Van Breusegem [et al.] // Plant Cell Physiol. – 1999. – Vol. 40. – P. 515–523.; Павлючкова, С. М. Функционирование антиоксидантной системы в растениях табака (Nicotiana tabacum), трансформированных смысловым геном супероксиддисмутазы, при низкотемпературном стрессе / С. М. Павлючкова, Н. В. Шалыго // Весці Нац. акад. навук Беларусі. Сер. біял. навук. – 2012. – № 2. – С. 91–95.; Mittler, R. Detection of ascorbate peroxidase activity in native gels by inhibition of the ascorbate-dependent reduction of nitroblue tetrazolium / R. Mittler, B. Zilinskas // Anal. Biochem. – 1993. – Vol. 212. – P. 540–546.; Спектрофлуориметрический метод определения окисленного и восстановленного глутатиона в растениях / Н. В. Шалыго [и др.] // Физиол. и биохим. культ. раст. – 2007. – Т. 39, № 3. – С. 264–270.; Law, M. Y. Glutathione and ascorbic acid in spinach (Spinacia oleracea) chloroplasts. The effect of hydrogen peroxide and of Paraquat / M. Y. Law, S.A. Charles, B. Halliwell // Biochem. J. – 1983. – Vol. 210. – P. 899–903.; Запрометов, М. Н. Основы биохимии фенольных соединений / М. Н. Запрометов. – М.: Высш. шк., 1974. – 214 с.; A highly sensitive fluorescent micro-assay of H2O2 release from activated human leukocytes using a dihydroxyphenoxazine derivative / J. G. Mohanty [et al.] // J. Immunol. Methods. – 1997. – Vol. 202, Iss. 2. – P. 133–141.; Структурная организация хлоропластов растений томата Solanum lycopersicum, трансформированных геном Fe-зависимой супероксиддисмутазы / Е. К. Серенко [и др.] // Биол. мембраны. – 2011. – Т. 28, № 3. – С. 215–223.; Catalase function in plants: a focus on Arabidopsis mutants as stress-mimic models / A. Mhamdi [et al.] // J. Exp. Bot. – 2010. – Vol. 61, Iss. 15. – P. 4197–4220.; Павлючкова, С. М. Внутриклеточная локализация супероксиддисмутазы в трансгенных по Fe-СОД и по Mn-СОД растениях табака / С. М. Павлючкова, Н. В. Шалыго // Молекулярные, мембранные и клеточные основы функционирования биосистем: сб. ст. XI съезда Белорус. обществ. объедин. фотобиол. и биофиз., Минск, 17–20 июня 2014 г.: в 2 т. / Ин-т биофиз. и клет. инж. НАН Беларуси, Белорус. гос. ун-т, Белорус. обществ. объедин. фотобиол. и биофиз.; редкол.: И. Д. Волотовский [и др.]. – Минск: Изд. центр БГУ, 2014. – Т. 2. – С. 119–121.; Колупаев, Ю. Е. Антиоксидантная система растений: участие в клеточной сигнализации и адаптации к действию стрессоров / Ю. Е. Колупаев, Ю. В. Карпец, А. И. Обозный // Вісн. харків. Нац. аграр. ун-ту. Сер. біологія. – 2011. – Вип. 1, № 22. – С. 6–34.; https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/144; undefined

  18. 18
  19. 19
  20. 20