يعرض 1 - 20 نتائج من 431 نتيجة بحث عن '"L A Dmitrieva"', وقت الاستعلام: 0.98s تنقيح النتائج
  1. 1
    Academic Journal
  2. 2
    Academic Journal
  3. 3
  4. 4
    Academic Journal
  5. 5
    Academic Journal

    المؤلفون: L. V. Dmitrieva

    المصدر: Вестник Российского экономического университета имени Г. В. Плеханова, Vol 0, Iss 3, Pp 92-104 (2024)

    وصف الملف: electronic resource

  6. 6
    Academic Journal

    المصدر: Вестник медицинского института «Реавиз»: Реабилитация, врач и здоровье, Vol 13, Iss 6, Pp 48-51 (2024)

    وصف الملف: electronic resource

  7. 7
    Academic Journal
  8. 8
    Academic Journal
  9. 9
    Academic Journal

    المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 1 (2024); 102-112 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 1 (2024); 102-112 ; 2658-719X ; 0370-1069

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1949/1455; Burchard G.D., Grobusch M.P. Chapter 7. Central Africa. In: Petersen E., Chen L.H., Schlagenhauf-Lawlor P., editors. Infectious Diseases: A Geographic Guide. 2nd ed. John Wiley & Sons Inc.; 2017. P. 78–92.; Mikounou Louya V., Vouvoungui C., Koukouikila-Koussounda F., Veas F., Kobawila S.C., Ntoumi F. Molecular characterization of norovirus infection responsible for acute diarrhea in Congolese hospitalized children under five years old in Brazzaville, Republic of Congo. Int. J. Infect. Dis. 2019; 88:41–8. DOI:10.1016/j.ijid.2019.07.034.; Nguekeng Tsague B., Mikounou Louya V., Ntoumi F., Adedoja A., Vouvoungui C.J., Peko S.M., Abena A.A. Occurrence of human astrovirus associated with gastroenteritis among Congolese children in Brazzaville, Republic of Congo. Int. J. Infect. Dis. 2020; 95:142–7. DOI:10.1016/j.ijid.2020.02.056.; WHO. Health data overview for the Republic of the Congo. (Cited 22 Jan 2024). [Internet]. Available from: https://data.who.int/countries/178.; The World Bank. Congo, Rep. (Cited 22 Jan 2024). [Internet]. Available from: https://data.worldbank.org/country/congo-rep?view=chart.; Assounga A.G., Assambo-Kieli C., Mafoua A., Moyen G., Nzingoula S. Etiology and outcome of acute renal failure in children in Congo-Brazzaville. Saudi J. Kidney Dis. Transpl. 2000; 11(1):40–3.; Brainard J., D’hondt R., Ali E., Van den Bergh R., De Weggheleire A., Baudot Y., Patigny F., Lambert V., Zachariah R., Maes P., Kuma-Kuma Kenge D., Hunter P.R. Typhoid fever outbreak in the Democratic Republic of Congo: Case control and ecological study. PLoS Negl. Trop. Dis. 2018; 12(10):e0006795. DOI:10.1371/journal.pntd.0006795.; Azmatullah A., Qamar F.N., Thaver D., Zaidi A.K., Bhutta Z.A. Systematic review of the global epidemiology, clinical and laboratory profile of enteric fever. J. Glob. Health. 2015; 5(2):020407. DOI:10.7189/jogh.05.020407.; Wain J., Hosoglu S. The laboratory diagnosis of enteric fever. J. Infect. Dev. Ctries. 2008; 2(6):421–5.; Wong V.K., Baker S., Pickard D.J., Parkhill J., Page A.J., Feasey N.A., Kingsley R.A., Thomson N.R., Keane J.A., Weill F.X., Edwards D.J., Hawkey J., Harris S.R., Mather A.E., Cain A.K., Hadfield J., Hart P.J., Thieu N.T., Klemm E.J., Glinos D.A., Breiman R.F., Watson C.H., Kariuki S., Gordon M.A., Heyderman R.S., Okoro C., Jacobs J., Lunguya O., Edmunds W.J., Msefula C., Chabalgoity J.A., Kama M., Jenkins K., Dutta S., Marks F., Campos J., Thompson C., Obaro S., MacLennan C.A., Dolecek C., Keddy K.H., Smith A.M., Parry C.M., Karkey A., Mulholland E.K., Campbell J.I., Dongol S., Basnyat B., Dufour M., Bandaranayake D., Naseri T.T., Singh S.P., Hatta M., Newton P., Onsare R.S., Isaia L., Dance D., Davong V., Thwaites G., Wijedoru L., Crump J.A., De Pinna E., Nair S., Nilles E.J., Thanh D.P., Turner P., Soeng S., Valcanis M., Powling J., Dimovski K., Hogg G., Farrar J., Holt K.E., Dougan G. Phylogeographical analysis of the dominant multidrugresistant H58 clade of Salmonella Typhi identifies inter-and intracontinental transmission events. Nat. Genet. 2015; 47(6):632–9. DOI:10.1038/ng.3281.; ReliefWeb. 04 Subject: PRO/EDR> Cholera, diarrhea & dysentery update (19): Africa Archive Number: 20170504.5012967. (Cited 29 Oct 2023). [Internet]. Available from: https://reliefweb.int/sites/reliefweb.int/files/resources/WCA%20Cholera_Update_W14.pdf.; Nkala O. Cholera outbreaks haunt Central and West Africa. (Cited 22 Jan 2024). [Internet]. Available from: https://outbreaknewstoday.com/cholera-outbreaks-haunt-central-west-africa59418/.; Kevin N.H., Feng L.J. Health challenges and environmental problems of the city of Pointe-Noire, Republic of Congo. J. Stud. Soc. Sci. 2017; 16(2):105–26.; Barkume C., Date K., Saha S.K., Qamar F.N., Sur D., Andrews J.R., Luby S.P., Khan M.I., Freeman A., Yousafzai M.T., Garrett D. Phase I of the Surveillance for Enteric Fever in Asia Project (SEAP): An overview and lessons learned. J. Infect. Dis. 2018; 218(suppl. 4):S188-S194. DOI:10.1093/infdis/jiy522.; Britto C.D., Wong V.K., Dougan G., Pollard A.J. A systematic review of antimicrobial resistance in Salmonella enterica serovar Typhi, the etiological agent of typhoid. PLoS Negl. Trop. Dis. 2018; 12(10):e0006779. DOI:10.1371/journal.pntd.0006779.; Al-Emran H.M., Eibach D., Krumkamp R, , Ali M., Baker S., Biggs H.M., Bjerregaard-Andersen M., Breiman R.F., Clemens J.D., Crump J.A., Cruz Espinoza L.M., Deerin J., Dekker D.M., Gassama Sow A., Hertz J.T., Im J., Ibrango S., von Kalckreuth V., Kabore L.P., Konings F., Løfberg S.V., Meyer C.G., Mintz E.D., Montgomery J.M., Olack B., Pak G.D., Panzner U., Park S.E., Razafindrabe J.L., Rabezanahary H., Rakotondrainiarivelo J.P., Rakotozandrindrainy R., Raminosoa T.M., Schütt-Gerowitt H., Sampo E., Soura A.B., Tall A., Warren M., Wierzba T.F., May J., Marks F. A multicountry molecular analysis of Salmonella enterica serovar Typhi with reduced susceptibility to ciprofloxacin in Sub-Saharan Africa. Clin. Infect. Dis. 2016; 62 Suppl. 1:S42-6. DOI:10.1093/cid/civ788.; International Typhoid Consortium; Wong V.K., Holt K.E., Okoro C., Baker S., Pickard D.J., Marks F., Page A.J., Olanipekun G., Munir H., Alter R., Fey P.D., Feasey N.A., Weill F.-X., Le Hello S., Hart P.J., Kariuki S., Breiman R.F., Gordon M.A., Heyderman R.S., Jacobs J., Lunguya O., Msefula C., MacLennan C.A., Keddy K.H., Smith A.M., Onsare R.S., De Pinna E., Nair S., Amos B., Dougan G., Obaro S. Molecular surveillance identifies multiple transmissions of typhoid in West Africa. PLoS Negl. Trop. Dis. 2016; 10(9):e0004781. DOI:10.1371/journal.pntd.0004781.; Vlieghe E., Phoba M.F., Tamfun J.J., Jacobs J. Antibiotic resistance among bacterial pathogens in Central Africa: a review of the published literature between 1955 and 2008. Int. J. Antimicrob. Agents. 2009; 34(4):295–303. DOI:10.1016/j.ijantimicag.2009.04.015.; WHO. Disease Outbreak News. Suspected triple outbreak of typhoid fever, shigellosis and cholera – Congo 23 September 2023. (Cited 22 Jan 2024). [Internet]. Available from: https://www.who.int/ru/emergencies/disease-outbreak-news/item/2023-DON488.; WHO. Weekly bulletin on outbreaks and other emergencies. Week 30: 24–30 July 2023. (Cited 22 Jan 2024). [Internet]. Available from: https://iris.who.int/bitstream/handle/10665/372200/OEW30-2430072023.pdf.; SITREP N° 03 DU 19 au 20 JUILLET 2023 Epidémies de Choléra, Shigellose et Salmonellose à Dolisie, département du Niari. (Cited 22 Jan 2024). [Internet]. Available from: https://sante.gouv.cg/sitrep-n-03-du-19-au-20-juillet-2023-epidemies-de-cholerashigellose-et-salmonellose/.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1949

  10. 10
    Academic Journal

    المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 2 (2024); 167-177 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 2 (2024); 167-177 ; 2658-719X ; 0370-1069

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2011/1488; Kim J.H., Im J., Parajulee P., Holm M., Cruz Espinoza L.M., Poudyal N., Mogeni O.D., Marks F. A systematic review of typhoid fever occurrence in Africa. Clin. Infect. Dis. 2019; 69(Suppl. 6):S492S498. DOI:10.1093/cid/ciz525.; GBD 2017 Typhoid and Paratyphoid Collaborators. The global burden of typhoid and paratyphoid fevers: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2017. Lancet. Infect. Dis. 2019; 19(4):369–81. DOI:10.1016/S1473-3099(18)30685-6.; Mogasale V., Maskery B., Ochiai R.L., Lee J.S., Mogasale V.V., Ramani E., Kim Y.E., Park J.K., Wierzba T.F. Burden of typhoid fever in low-income and middle-income countries: a syste¬ matic, literature-based update with risk factor adjustment. Lancet. Glob. Health. 2014; 2(10):e570-80. Lancet. Glob. Health. 2014; 2(10):e570-80. DOI:10.1016/S2214-109X(14)70301-8.; Antillón M., Warren J.L., Crawford F.W., Weinberger D.M., Kürüm E., Pak G.D., Marks F., Pitzer V.E. The burden of typhoid fever in lowand middle-income countries: a meta-regression approach. PLoS Negl. Trop. Dis. 2017; 11(2):e0005376. DOI:10.1371/journal.pntd.0005376.; Kim J.H., Mogasale V., Im J., Ramani E., Marks F. Updated estimates of typhoid fever burden in sub-Saharan Africa. Lancet. Glob. Health. 2017; 5(10):e969. DOI:10.1016/S2214-109X(17)30328-5.; Cholera Outbreaks in Central and West Africa: 2017 Regional Update – Week 14. [Электронный ресурс]. URL: http://reliefweb.int/sites/reliefweb.int/files/resources/WCA%20Cholera_Update_W14.pdf (дата доступа 12.03.2024).; Shahapur P.R., Shahapur R., Nimbal A., Suvvari T.K., Silva R.G.D., Kandi V. Traditional Widal agglutination test versus rapid immunochromatographic test in the diagnosis of enteric fever: A prospective study from South India. Cureus. 2021; 13(10):e18474. DOI:10.7759/cureus.18474.; Kim H.J., Jung Y., Kim M.J., Kim H.Y. Novel heptaplex PCRbased diagnostics for enteric fever caused by typhoidal salmonella serovars and its applicability in clinical blood culture. J. Microbiol. Biotechnol. 2023; 33(11):1457–66. DOI:10.4014/jmb.2307.07031.; Rigby J., Elmerhebi E., Diness Y., Mkwanda C., Tonthola K., Galloway H., Miles R., Henrion M.Y.R., Edwards T., Gauld J., Msefula C., Johnston R., Nair S., Feasey N., Elviss N.C. Optimized methods for detecting Salmonella Typhi in the environment using validated field sampling, culture and confirmatory molecular approaches. J. Appl. Microbiol. 2022; 132(2):1503–17. DOI:10.1111/jam.15237.; Antillon M., Saad N.J., Baker S., Pollard A.J., Pitzer V.E. The relationship between blood sample volume and diagnostic sensitivity of blood culture for typhoid and paratyphoid fever: a systematic review and meta-analysis. J. Infect. Dis. 2018; 218(suppl_4):S255S267. DOI:10.1093/infdis/jiy471.; Carey M.E., Dyson Z.A., Ingle D.J., Amir A., Aworh M.К., Chattaway M.A., Chew K.L., Crump J.A., Feasey N.A., Howden B.P., Keddy K.H., Maes M., Parry C.M., Van Puyvelde S., Webb H.E., Afolayan A.O., Alexander A.P., Anandan S., Andrews J.R., Ashton P.M., Basnyat B., Bavdekar A., Bogoch I.I., Clemens J.D., da Silva K.E., De A., de Ligt J., Diaz Guevara P.L., Dolecek C., Dutta S., Ehlers M.M., Francois Watkins L., Garrett D.O., Godbole G., Gordon M.A., Greenhill A.R., Griffin C., Gupta M., Hendriksen R.S., Heyderman R.S., Hooda Y., Hormazabal J.C., Ikhimiukor O.O., Iqbal J., Jacob J.J., Jenkins C., Jinka D.R., John J., Kang G., Kanteh A., Kapil A., Karkey A., Kariuki S., Kingsley R.A., Koshy R.M., Lauer A.C., Levine M.M., Lingegowda R.K., Luby S.P., Mackenzie G.A., Mashe T., Msefula C., Mutreja A., Nagaraj G., Nagaraj S., Nair S., Naseri T.K., Nimarota-Brown S., Njamkepo E., Okeke I.N., Perumal S.P.B., Pollard A.J., Pragasam A.K., Qadri F., Qamar F.N., Rahman S.I.A., Rambocus S.D., Rasko D.A., Ray P., Robins-Browne R., Rongsen-Chandola T., Rutanga J.P., Saha S.K., Saha S., Saigal K., Sajib M.S.I., Seidman J.C., Shakya J., Shamanna V., Shastri J., Shrestha R., Sia S., Sikorski M.J., Singh A., Smith A.M., Tagg K.A., Tamrakar D., Tanmoy A.M., Thomas M., Thomas M.S., Thomsen R., Thomson N.R., Tupua S., Vaidya K., Valcanis M., Veeraraghavan B., Weill F.-X., Wright J., Dougan G., Argimón S., Keane J.A., Aanensen D.M., Baker S., Holt K.E.; Global Typhoid Genomics Consortium Group Authorship. Global diversity and antimicrobial resistance of typhoid fever pathogens: Insights from a meta-analysis of 13,000 Salmonella Typhi genomes. eLife. 2023; 12:e85867. DOI:10.7554/eLife.85867.; Пшеничная Н.Ю., Найденова Е.В., Гопаца Г.В., Кузнецова Д.А., Дмитриева Л.Н., Евтеев А.В., Тушинский А.А., Портенко С.А., Obissa N., Mpompolo M., Elenga-Bongo Sh.L., Inana M., Mobousse Misse J.-C., Кутырев В.В., Смоленский В.Ю. Результаты работы инфекционистов и эпидемиологов Роспотребнадзора во время вспышки острых кишечных инфекций в Республике Конго (Браззавиль) в 2023 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2024; 1:102–12. DOI:10.21055/0370-1069-2024-1-102-112.; Посольство Российской Федерации в Республике Конго. Общая информация о Конго. [Электронный ресурс]. URL: https://congo.mid.ru/ru/o_kongo/obshchaya_informatsiya_o_kongo/.; Kolmogorov M., Yuan J., Lin Y., Pevzner P.A. Assembly of long, error-prone reads using repeat graphs. Nat. Biotechnol. 2019; 37(5):540–6. DOI:10.1038/s41587-019-0072-8.; Yan S., Zhang W., Li C., Liu X., Zhu L., Chen L., Yang B. Serotyping, MLST, and core genome MLST analysis of Salmonella enterica from different sources in China during 2004–2019. Front. Microbiol. 2021; 12:688614. DOI:10.3389/fmicb.2021.688614.; EnteroBase. Salmonella. [Электронный ресурс]. URL: https://enterobase.warwick.ac.uk/species/index/senterica.; Alcock B.P., Huynh W., Chalil R., Smith K.W., Raphenya A.R., Wlodarski M.A., Edalatmand A., Petkau A., Syed S.A., Tsang K.K., Baker S.J.C., Dave M., McCarthy M.C., Mukiri K.M., Nasir J.A., Golbon B., Imtiaz H., Jiang X., Kaur K., Kwong M., Liang Z.C., Niu K.C., Shan P., Yang J.Y.J., Gray K.L., Hoad G.R., Jia B., Bhando T., Carfrae L.A., Farha M.A., French S., Gordzevich R., Rachwalski K., Tu M.M., Bordeleau E., Dooley D., Griffiths E., Zubyk H.L., Brown E.D., Maguire F., Beiko R.G., Hsiao W.W.L., Brinkman F.S.L., Van Domselaar G., McArthur A.G. CARD 2023: expanded curation, support for machine learning, and resistome prediction at the Comprehensive Antibiotic Resistance Database. Nucleic Acids Res. 2023; 51(D1):D690-D699. DOI:10.1093/nar/gkac920.; DTU. Center for Genomic Epidemiology. [Электронный ресурс]. URL: http://genepi.food.dtu.dk/resfinder.; Basic Local Alignment Search Tool. [Электронный ресурс]. URL: https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi.; Егорова С.А., Кулешов К.В., Кафтырева Л.А., Матвеева З.Н. Чувствительность к антибиотикам, механизмы резистентности и филогенетическая структура популяции S. Typhi, выделенных в 2005–2018 гг. в Российской Федерации. Инфекция и иммунитет. 2020; 10(1):99–110. DOI:10.15789/2220-7619-ASM-1171.; Павлова А.С., Бочарова Ю.А., Кулешов К.В., Подколзин А.Т., Чеботарь И.В. Молекулярные детерминанты резистентности Salmonella enterica к антибиотикам. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2021; 98(6):721–30. DOI:10.36233/0372-9311-140.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2011

  11. 11
    Academic Journal
  12. 12
    Academic Journal
  13. 13
    Academic Journal

    المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 4 (2021); 16-26 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 4 (2021); 16-26 ; 2658-719X ; 0370-1069

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1586/1249; Онищенко Г.Г., Попова А.Ю., Топорков В.П., Смоленский В.Ю., Щербакова С.А., Кутырев В.В. Современные угрозы и вызовы в области биологической безопасности и стратегия противодействия. Проблемы особо опасных инфекций. 2015; 3:5–9. DOI:10.21055/0370-1069-2015-3-5-9.; Брико Н.И., Покровский В.И. Глобализация и эпидемический процесс. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2010; 4:4–10.; Онищенко Г.Г., Кутырев В.В., редакторы. Санитарная охрана территории Российской Федерации в современных условиях. Саратов: Буква; 2014. 460 с.; Worldometers. Coronavirus. [Электронный ресурс]. URL: https://www.worldometers.info/coronavirus/ (дата обращения 01.07.2021).; Кутырев В.В., редактор. Распространение в мире инфекционных болезней, значимых для обеспечения эпидемиологического благополучия международных сообщений. Справочное эпидемиологическое издание. Т. 1. Восточно-Средиземноморский регион. [Электронный ресурс]. URL: http://www.microbe.ru/files/Reference_book_Vol1.pdf (дата обращения 01.07.2021).; United Nations. Department of Economic and Social Affairs. World Population Prospects 2019. [Электронный ресурс]. URL: https://population.un.org/wpp/Download/Standard/Population/ (дата обращения 18.06.2021).; Попова А.Ю., Кутырев В.В., редакторы. Кадастр эпидемических и эпизоотических проявлений чумы на территории Российской Федерации и стран ближнего зарубежья (с 1876 по 2016 год). Саратов: Амирит; 2016. 248 с.; Садовская В.П., Кузнецов А.Н., Мека-Меченко В.Г., Асылбек А.М., Егизтаева Б.Т. Совершенствование эпидемиологического надзора за природными очагами чумы с использованием ГИС -технологий. Карантинные и зоонозные инфекции в Казахстане. 2019; 1(38):105–9.; Попова А.Ю., Кутырев В.В., редакторы. Реализация Международных медико-санитарных правил (2005 г.) на пространстве Восточной Европы и Центральной Азии. Саратов: Амирит; 2019. С. 129–30.; Дятлов А.И., Антоненко А.Д., Грижебовский Г.М., Лабунец Н.Ф. Природная очаговость чумы на Кавказе. Ставрополь; 2001. 345 с.; Козлов М.П., Султанов Г.В. Чума (природная очаговость, эпизоотология). Т. 3. Махачкала: Дагестанское книж. Изд-во; 2000. 304 с.; Pollitzer R. Plague studies. 1. A summary of the history and survey of the present distribution of the disease. Bull World Health Organ. 1951; 4(4):475–533.; Oprea M., Njamkepo E., Cristea D., Zhukova A., Clark C.G., Kravetz A.N., Monakhova E., Ciontea A.S., Cojocaru R., Rauzier J., Damian M., Gascuel O., Quilici M.L., Weill F.X. The seventh pandemic of cholera in Europe revisited by microbial genomics. Nat. Commun. 2020; 11(1):5347. DOI:10.1038/s41467-020-19185-y.; Maгдей M.B., Слюсарь В.Н., Гуцу А.В., Кику В.Ф., Кожокару Р.И., Сохоцкий В.В. Проявления VII пандемии холеры в Республике Молдова. Проблемы особо опасных инфекций. 2002; 2(84):84–92.; Tarantola A., Ioos S., Rotureau B., Paquet C., Quilici M.L., Fournier J.M. Retrospective analysis of the cholera cases imported to France from 1973 to 2005. J. Travel. Med. 2007; 14(4):209–14. DOI:10.1111/j.1708-8305.2007.00129.x.; Blake P.A., Rosenberg M.L., Costa J.B., Ferreira P.S., Guimaraes C.L., Gangarosa E.J. Cholera in Portugal, 1974.I. Modes of transmission. Am. J. Epidemiol. 1977; 105(4):337–43. DOI:10.1093/oxfordjournals.aje.a112391.; Ciofi Degli Atti M., Finarelli A.C., Pompa M.G., Toni F., Bella A., Callipari O., Luzzi I. A case of cholera imported from Senegal to Rimini, Italy, June 2005. Euro Surveill. 2005; 10(6):E050630.6. DOI:10.2807/esw.10.26.02739-en.; Kokashvili T., Elbakidze T., Jaiani E., Janelidze N., Kamkamidze G., Whitehouse C., Huq A., Tediashvili M. Comparative phenotypic characterization of Vibrio cholerae isolates collected from aquatic environments of Georgia. Georgian Med. News. 2013; 224:55–62.; Kandelaki G., Butsashvili M., Kalandadze I., Iosava M., Avaliani N., Imnadze P. Elimination of malaria in country Georgia. Acta Trop. 2012; 123(1):47–8. DOI:10.1016/j.actatropica.2012.02.068.; Askling H.H., Bruneel F., Burchard G., Castelli F., Chiodini P.L., Grobusch M.P., Lopez-Vélez R., Paul M., Petersen E., Popescu C., Ramharter M., Schlagenhauf P. Management of imported malaria in Europe. Malar. J. 2012; 11:328. DOI:10.1186/1475-2875-11-328.; Isaäcson M. Airport malaria: a review. Bull. World Health Organ. 1989; 67(6):737–43.; Chancey C., Grinev A., Volkova E., Rios M. The global ecology and epidemiology of West Nile virus. Biomed Res. Int. 2015; 2015:376230. DOI:10.1155/2015/376230.; Т опорков А.В., редактор. Лихорадка Западного Нила. Волгоград: Волга-Пресс; 2017. 304 с.; Halstead S.B., Papaevangelou G. Transmission of dengue 1 and 2 viruses in Greece in 1928. Am. J. Trop. Med. Hyg. 1980; 29(4):635–7. DOI:10.4269/ajtmh.1980.29.635.; Сычева К.А., Швец О.Г., Медяник И.М., Журенкова О.Б., Федорова М.В. Итоги мониторинга ареала комара Aedes albopictus (Skuse, 1895) в Краснодарском крае в 2019 г. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2020; 2:3–8. DOI:10.33092/0025-8326mp2020.2.03-08.; Gözalan A., Akin L., Rolain J.M., Tapar F.S., Oncül O., Yoshikura H., Zeller H., Raoult D., Esen B. [Epidemiological evaluation of a possible outbreak in and nearby Tokat province]. Mikrobiyol. Bul. 2004; 38(1-2):33–44. [In Turkish].; Gozalan A., Esen B., Fitzner J., Tapar F.S., Ozkan A.P., Georges-Courbot M.C., Uzun R., Gumuslu F., Akin L., Zeller H. Crimean-Congo haemorrhagic fever cases in Turkey. Scand. J. Infect. Dis. 2007; 39(4):332–6. DOI:10.1080/00365540601053014.; Тураев Р.А., Зиёев О.М., Андамов И.Ш., Субботина И.А. Зооантропонозные болезни в Республике Таджикистан и меры борьбы с ними. Ученые записки учреждения образования «Витебская государственная академия ветеринарной медицины». 2019; 55(2):72–6.; Kuchuloria T., Imnadze P., Chokheli M., Tsertsvadze T., Endeladze M., Mshvidobadze K., Clark D.V., Bautista C.T., Abdel Fadeel M., Pimentel G., House B., Hepburn M.J., Wölfel S., Wölfel R., Rivard R.G. Viral hemorrhagic fever cases in the country of Georgia: Acute febrile illness surveillance study results. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2014; 91(2):246–8. DOI:10.4269/ajtmh.13-0460.; Palomar A.M., Portillo A., Santibáñez S., García-Álvarez L., Muñoz-Sanz A., Márquez F.J., Romero L., Eiros J.M., Oteo J.A. Molecular (ticks) and serological (humans) study of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in the Iberian Peninsula, 2013–2015. Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. 2017; 35(6):344–47. DOI:10.1016/j.eimc.2017.01.009.; Filipe A.R., Calisher C.H., Lazuick J. Antibodies to Congo-Crimean haemorrhagic fever, Dhori, Thogoto and Bhanja viruses in southern Portugal. Acta Virol. 1985; 29(4):324–8.; Serić-Haracić S., Salman M., Fejzić N., Cavaljuga S. Brucellosis of ruminants in Bosnia and Herzegovina: disease status, past experiences and initiation of a new surveillance strategy. Bosn. J. Basic Med. Sci. 2008; 8(1):27–33. DOI:10.17305/bjbms.2008.2991.; Fouskis I., Sandalakis V., Christidou A., Tsatsaris A., Tzanakis N., Tselentis Y., Psaroulaki A. The epidemiology of Brucellosis in Greece, 2007–2012: a ‘One Health’ approach. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 2018; 112(3):124–35. DOI:10.1093/trstmh/try031.; Kutlu M., Cevahir N., Erdenliğ-Gürbilek S., Akalın Ş., Uçar M., Sayın-Kutlu S. The first report of Brucella suis biovar 1 isolation in human in Turkey. J. Infect. Public Health. 2016; 9(5):675–8. DOI:10.1016/j.jiph.2016.01.011.; Doganay M., Metan G. Human anthrax in Turkey from 1990 to 2007. Vector Borne Zoonotic Dis. 2009; 9(2):131–40. DOI:10.1089/vbz.2008.0032.; Patra G., Vaissaire J., Weber-Levy M., Le Doujet C., Mock M. Molecular characterization of Bacillus strains involved in outbreaks of anthrax in France in 1997. J. Clin. Microbiol. 1998; 36(11):3412–4. DOI:10.1128/JCM.36.11.3412-3414.1998.; Супотницкий М.В. Героиновая сибирская язва в Шотландии и Германии. Биопрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2011; 1:40–4.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1586

  14. 14
    Academic Journal

    المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 7, № 6 (2022); 102-110 ; 2587-9596 ; 2541-9420

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3886/2468; Чепелева М.В., Швед Н.С. Иммунологические особенности остеоартроза крупных суставов различной этиологии. Гений ортопедии. 2012; 2: 107-111.; Мамонова И.А., Пучиньян Д.М., Гладкова Е.В., Бабушкина И.В., Норкин И.А. Особенности клеточного иммунитета у больных с коксартрозом. Медицинская иммунология. 2015; 17(S): 337.; Lotz M, Martel-Pelletier J, Christiansen C, Brandi M-L, Bruyère O, Chapurlat R, et al. Value of biomarkers in osteoarthritis: Current status and perspectives. Ann Rheum Dis. 2013; 72(11): 1756-1763. doi:10.1136/annrheumdis-2013-203726; Papalia R, Vadalâ G, Torre G, Perna M, Saccone L, Cannata F, et al. The cytokinome in osteoarthritis, a new paradigm in diagnosis and prognosis of cartilage disease. J Biol Regul Homeost Agents Dis. 2016; 30(4): 77-83.; Mabey T, Honsawek S, Tanavalee A, Yuktanandana P, Wilairatana V, Poovorawan Y. Plasma and synovial fluid inflammatory cytokine profiles in primary knee osteoarthritis. Biomarkers. 2016; 21(7): 639-644. doi:10.3109/1354750X.2016.1171907; Парахонский А.П. Методологические принципы изучения иммунной системы человека. Наука 21 века: вопросы, гипотезы, ответы. 2014; 3: 21-26.; Останин А.А., Гельфгат Е.Л., Леплина О.Ю., Шевела Е.Я., Черных Е.Р. Оценка состояния иммунитета и баланса цитокинов методами системного математического анализа (на примере больных с гнойно-хирургической патологией). Медицинская иммунология. 2000; 2(3): 279-290.; Симбирцев А.С. Цитокины в патогенезе и лечении заболеваний человека. СПб.: Фолиант; 2018.; Дмитриева Л.А., Пивоваров Ю.И., Лебедев В.Ф., Арсентьева М.Л. Адаптационные возможности иммунной системы у пациентов с коксартрозом после эндопротезирования тазобедренного сустава. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2019; 8: 54-59.; Веселов А.А. Иммунная система человека. Наука, образование и инновации: сборник статей международной научно-практической конференции. 2016: 145-147.; Черешнев В.А., Юшков Б.Г, Черешнева М.В. Иммунная система с позиции теории функциональных систем П.К. Анохина. Материалы XXIII съезда Физиологического общества им. И.П. Павлова с международным участием. 2017: 2169-2170.; Крыжановский Г.Н. Основы общей патофизиологии регуляции. М.: Медицинское информационное агентство; 2011.; Hirahara K, Nakayama T. CD4+ T-cell subsets in inflammatory diseases: beyond the Th1/Th2 paradigm. Int Immunol. 2016; 28(4): 163-171. doi:10.1093/intimm/dxw006; Fas S, Fritzsching B, Suru-Payer E, Krammer PH. Death receptor signaling and its function in the immune system. Curr Dir Autoimmun. 2006; 9: 13-19. doi:10.1159/000090767; Сепиашвили Р.И., Шубич М.Г., Колесникова Н.В., Славянская Т.А., Ломтатидзе Л.В. Апоптоз в иммунологических процессах. Аллергология и иммунология. 2015; 16(1): 101-107.; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3886

  15. 15
    Academic Journal

    المصدر: PULMONOLOGIYA; № 4 (1999); 11-17 ; Пульмонология; № 4 (1999); 11-17 ; 2541-9617 ; 0869-0189

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/3113/2517; Александрова A.B., Дмитриева Л.И., Кондря С.С. Рентгенодиагностика поражений органов дыхания при диффузном фиброзирующем альвеолите (болезни Хаммена-Рича) / / Вестн. рентгенол.— 1980.— № 4.— С .10.; Гедымин Л.Е., Дмитриева Л.И., Ерохин В.В. Морфофункциональная перестройка сосудов и бронхов при фиброзирующем альвеолите / / Диффузные и гранулематозные поражения легких. (Сборник трудов Ц НИ И туберкулеза РА М Н . Т.8).— М., 1993.— С.116.; Дмитриева Л.И., Гапонько Г.A. Vergleichende Rontgensemiotik der idiopatischen Lungenfibrose und der exogenen allergischen Alveolitis / / Radiol. Diagn.— 1988.— Bd 29, № 2.— S.319.; Заболевания органов дыхания / Под ред. Ильковича М .М .— СПб.: Нормед-издат., 1998.; Сигаев А.Т., Мурсалова Т.Х. Функциональное состояние альвеол и капиллярной сети у больных фиброзирующим альвеолитом с помощью радионуклидной диагностики / / Диффузные и гранулематозные поражения легких. (Сборник трудов ЦНИИ туберкулеза РА М Н . Т.8).— М ., 1993.— С.111.; Сигаев А.Т., Озерова Л.В., Мохрякова Т.Е. Сцинтиграфическая оценка цитрата 67-Ga в комплексном исследовании диффузных поражений легких / / Пробл. туб.— 1996.— N° 6.— С.68.; Тюрин И.E., Heüuimadm A.C., Сигина O.A. Диссеминированный туберкулез легких. Данные КТ с высоким разрешением. Материалы V II Всероссийского конгресса рентгенологов и радиологов / / Вестн. рентгенол.— 1996.— N ° 4.— С.53.; Тюрин И.Е. Компьютерная томография при метастатическом поражении легких (обзор литературы и собственные данные). Часть 1. Патогенез и КТ-семиотика / / Там же.— 1998.— N° 2.— С.38.; Тюрин И.Е. Компьютерная томография при метастатическом поражении легких (обзор литературы и собственные данные). Часть 2. Выявление и дифференциальная диагностика / / Там же.— С.45.; Харченко В.П., Гуревич Л.А., Мелентьева Е.Г. и др. Клиникорентгенологическая диагностика диссеминированных и диффузных поражений легких / / Там же.— 1990.— № 4.— С.5.; Хоменко А.Г., Дмитриева Л.И., Хиккель Х.Г., Степанян И.Э. Рентгенологическая диагностика гистиоцитоза X / / Тер. арх.— 1988.— № 10.— С.132.; Хоменко А.Г., Дмитриева Л.И., Хиккель Х.Г. Дифференциальная рентгенодиагностика диссеминированного туберкулеза и саркоидоза легких / / Пробл. туб.— 1989.— № 1.— С. 16.; Хоменко А.Г., Дмитриева Л.И., Хиккель Х.Г., Мюллер С. Сравнительная оценка результатов классического рентгенологического исследования и компьютерной томографии у больных экзогенным аллергическим альвеолитом / / Вестн. рентгенол.— 1989.— № 1.— С.14.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/3113

  16. 16
    Academic Journal

    المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 6, № 4 (2021); 114-122 ; 2587-9596 ; 2541-9420

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/2979/2196; Siew CN, Hai YS, Nima H, Underwood FE, Tang W, Benchimol EI, et al. Worldwide incidence and prevalence of inflammatory bowel disease in the 21st century: A systematic review of population-based studies. Lancet. 2018; 390(10114): 2769-2778. doi:10.1016/S0140–6736(17)32448-0; Ивашкин В.Т., Шелыгин Ю.А., Халиф И.Л., Белоусова Е.А., Шифрин О.С., Абдулганиева Д.И., и др. Клинические рекомендации российской гастроэнтерологической ассоциации и ассоциации колопроктологов России по диагностике и лечению язвенного колита. Колопроктология. 2017; 1(59): 6-30.; Стяжкина С.Н., Канбекова О.Г., Лёзина А.С. Этиологические и патогенетические аспекты болезни Крона и язвенного колита. Авиценна. 2018; 18: 36-38.; Кузнецов В.И., Моррисон В.В., Лиско О.Б., Царева Т.Д., Сретенская Д.А., Гаврилова И.Б. и др. Липиды в структуре и функционировании биологических мембран (обзор). Саратовский научно-медицинский журнал. 2014; 10(2): 262-266.; Бочаров Э.В., Павлов К.В. Липидопосредованный механизм в функционировании белков. Цитология. 2018; 7(60): 510-518. doi:10.31116/tsitol.2018.07.04; Чашкова Е.Ю., Коротаева Н.С., Горохова В.Г., Кузнецова Э.Э., Пак В.Е., Григорьев Е.Г. Повреждение клеточных мембран у пациентов с язвенным колитом. Колопроктология. 2010; (2): 30-35.; Болдырев А.А., Кяйвяряйнен Е.И., Илюха В.А. Биомембранология: учебное пособие. Петрозаводск: Изд-во Кар НЦ РАН; 2006: 226.; Сергеева А.С., Пивоваров Ю.И., Дмитриева Л.А., Сай О.В. Эффекты взаимодействия белковых компонентов мембраны эритроцитов у здоровых лиц и больных язвенным колитом. Acta biomedica scientifica. 2020; 5(5): 39-46. doi:10.29413/ABS.2020-5.5.5; Dodge J, Mitchell C, Hanahan D. The preparation and chemical characteristics of hemoglobinfree ghosts of human erythrocytes. Arch Biochem Biophys. 1963; 100(1): 119-130. doi:10.1016/0003-9861(63)90042-0; Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head bacteriophage T4. Nature. 1970; 227(5259): 680-685. doi:10.1038/227680a0; Молочкина Е.М. Количественное определение состава фосфолипидов методом тонкослойной хроматографии. Исследование синтетических и природных антиоксидантов in vitro и in vivo: сборник научных трудов. М.: Наука; 1992: 100-102.; Пивоваров Ю.И., Мухомедзянова С.В., Дмитриева Л.А. Способ математической обработки фосфолипидов, полученных методом тонкослойной хроматографии. Сибирский медицинский журнал. 2019; 3(158): 41-45.; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/2979

  17. 17
    Academic Journal
  18. 18
  19. 19
  20. 20
    Academic Journal