المؤلفون: Kolker, D. B., Sherstov, I. V., Boyko, A. A., Nyushkov, B. N., Erushin, E. Y., Kostyukova, N. Y., Akhmathanov, A. I., Kiryakova, A. Y., Pavluck, A. V.

المصدر: J. Phys. Conf. Ser. ; Journal of Physics: Conference Series

مصطلحات موضوعية: GAS DETECTORS, GASES, INFRARED DEVICES, METHANE, QUANTUM CASCADE LASERS, COMPONENT BASED, EXPERIMENTAL APPROACHES, GAS ANALYZERS, GAS COMPONENT, GAS DETECTION, MID-INFRARED LASER SOURCES, NARROW-LINE WIDTH, TRACE CONCENTRATIONS, TRACE GAS ANALYSIS, TUNABLES, OPTICAL PARAMETRIC OSCILLATORS

وصف الملف: application/pdf

Relation: Tunable Mid-Infrared Laser Sources for Trace-Gas Analysis / D. B. Kolker, I. V. Sherstov, A. A. Boyko et al. // Journal of Physics: Conference Series. — 2021. — Vol. 2067. — Iss. 1. — 012013.; All Open Access, Bronze; http://elar.urfu.ru/handle/10995/112045; 85120490633

الاتاحة: http://elar.urfu.ru/handle/10995/112045
https://doi.org/10.1088/1742-6596/2067/1/012013

المؤلفون: Erushin, E. Yu.^1,2,3 (AUTHOR) render2012@yandex.ru, Kostyukova, N. Yu.^1,2,3 (AUTHOR) n.duhovnikova@gmail.com, Boyko, A. A.^1,2 (AUTHOR) baa.nsk@gmail.com, Miroshnichenko, I. B.^1,3 (AUTHOR)

المصدر: Instruments & Experimental Techniques. Jun2024, Vol. 67 Issue 3, p505-510. 6p.

مصطلحات موضوعية: *OPTICAL parametric oscillators, *PROCESS control systems, *PHOTOACOUSTIC detectors, *PHOTOACOUSTIC spectroscopy, *LASER spectroscopy

المؤلفون: N. Kostyukova N., V. Bekhalo A., Н. Костюкова Н., В. Бехало А.

المصدر: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 20, № 4 (2021); 103-113 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 20, № 4 (2021); 103-113 ; 2619-0494 ; 2073-3046

مصطلحات موضوعية: new meningococcal vaccines, conjugated polysaccharide vaccines, meningococcal protein vaccines, новые менингококковые вакцины, конъюгированные полисахаридные вакцины, белковые менингококковые вакцины

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1324/770; Gotschlich E.C., Liu T., Artenstein M.S. Human immunity to meningococcus. III. Preparation and immunological properties of the group A, group B and group C meningococcal polysaccharides. J.Exp.Med. 1969. 128:1369–1365.; Костюкова Н. Н., Бехало В. А. Современные менингококковые вакцины: сильные и слабые стороны, ближайшие перспективы. Эпидемиология и Вакинопрофилактика. 2016;4:64–73.; Устинникова О. Б., Алексеева И. А., Абрамцева М. В., Немировская Т. И., Мовсесянц А. А. Полисахаридные вакцины. Актуальные подходы к вопросам экспертной оценки качества. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2020;5:104–111.; Колесников А. В., Козырь А. Н., Шемякин И. Г., Дятлов И. А. Современные представления о механизме активации иммунного ответа конъюгированными полисахаридными вакцинами. Журн. микробиол., 2015; №3:97–10.; Абрамцева М. В., Тарасов А. П., Немировская Т. И. Менингококковая инфекция: конъюгированные полисахаридные менингококковые вакцины и вакцины нового поколения. Сообщение 3. Биопрепараты, профилактика, диагностика, лечение. 2016, 6 (1):3 –13.; Харсеева Г. Г., Тюкавкина С. Ю. Основы вакцинологии. Оценка поствакцинального иммунитета (материал для подготовки лекций). Инфекционные болезни, 2020, 9(3):106–118.; Meningococcal vaccines: WHO position paper. Weekley epid. record. 2011; .86. (47):521–540.; Ladhani S.N. Two decades of experience with Haemophilus influenzae serotype b vaccine in United Kingdom. Clin. Ther., 2012, 34:385–399.; Костинов М. П. Новая конъюгированная вакцина Превенар – эффективная защита детей от пневмококковых заболеваний. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2011;6:99–107.; Извекова И. Я., Намазова-Баранова Л. С., Гоголев А. В., Дубова Л. В., Романенко В. В., Зиннатова Е. В. и др. Наблюдательное исследование безопасности менингококковой конъюгированной вакцины против серогрупп А, С, W и Y (МЕНАКТРА), используемой в условиях рутинной клинической практики у лиц в возрасте от 2 до 55 лет в Российской Федерации. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2018;6:19–34.; Dreiter A.W., Rouphael N.G., Stephens D.S. Progress toward the global control of Neisseria meningitidis: 21st century vaccines, current guidelines, and challenges for future vaccine development. Hum.Vaccines & Immunuther. 2018, 14(5):1146–1160.; Королева И. С., Королева М. А., Грицай М. И. Менингококковая инфекция и актуальность мер профилактики. Поликлиника. 2020;1(20):47–50.; Balmer P., Burman C., Sierra L. York L.J. Impact of meningococcal vaccination on carriage and disease transmission: review of the literature. Hum. Vaccines & Immunuther. 2018;14(5):1119–1130.; Invasive meningococcal disease in England: annual laboratory confirmed reports for epidemiological year 2017 to 2018. Health Protection. Rep. 2018;12(38):1–6.; Acevedo R., Bai X., Borrow R., et al. The Global Meningococcal Initiative meeting on prevention of meningococcal disease worldwide: epidemiology; surveillance hypervirulent strains, antibiotic resistance and high-risk population. Expert Rev. Vac., 2019;18:15–30.; Whittaker R., Dias J.G., Ramliden M., et al. The epidemiology of invasive meningococcal disease in EU/EEA countries, 2004–2014. Vaccine. 2017;35:2034 –2041.; Wang X., Shutt K.A., Vuong J.T., et al. Changes in population structure of invasive Neisseria meningitidis in the United States after quadrivalent meningococcal conjugated vaccine license. J.Infect. Dis., 2015;211:1887–1894.; Booy R., Gentile A., Nissen V., et al. Recent changes in epidemiology of Neisseria meningitides serogroupW across the world, current vaccination policy choices and possible future strategies. Hum.Vaccines & Immunuther., 2019;15(20):470–480.; Memish Z.,Hakeem R.Al., Neel O.Al., et al. Laboratory-confirmed invasive meningococcal disease: effect of the Hajj vaccination policy, Saudi Arabia, 1995 to 2011. Eur.Surveil. 2013;18(37):pii-20581.; Покровский В. И., Фаворова Л. А., Костюкова Н. Н. Менингококковая инфекция. М., «Медицина», 1976, 275 с.; Parkin S., Campbell H., Bettinger J.A., et al. The everchanging epidemiology of meningococcal disease worldwide and the potential for prevention trough vaccination. J. Infect. 2020;81(4):483–498.; Mustapha M.N., Harrison L.H. Vaccine prevention of meningococcal disease in Africa: major advances, remaining challengers. Hum.Vaccines & Immunuther., 2018; j14 (5);1107–1115.; Bwaka A., Bita A., Landhani C., et al. Status of rollout of the meningococcal serogroup A conjugate vaccine in African Meningococcal Belt countries in 2018. J. Infect. Dis., 2019, Suppl.4,(Dec.):S140–147.; Trotter C., Lingani C.,Fernandes K., et al. Impact of MenAfriVac in nine countries of the African meningitis belt, 2010-2015; an analysis of surveillance data. Lancet Infect. Dis., 2017;17:867–872.; Yaro S., Lafourcade B.M. Quangaqua S., et al. Antibody persistence at the population level 5 years after vaccination with serogroup A conjugate vaccine (PsA-NN) in Burkina- Faso: need for a booster campaign? Clin. Infect, Dis.,2019, 68, iss.3:435–443.; Soeters H.M., Qumar D.A., Bicade B., et al. Bacterial meningitis epidemiology in five countries of the Meningococcal Belt of Sub-Sacharian Africa, 2015-17. J. Infect. Dis. 2019;220, Suppl.4 S 165–174.; Sidikou F., Pots C.C., Zaneidou M., et al. Epidemiology of bacterial meningitis in the nine years since meningococcal serogroup A conjugate vaccine introduction, 2010-2018., J. Infect. Dis. 2019; 220, Suppl.4, S206–215.; Chen W., Neucil K.M., Boyce C.R., et al. Safety and immunogenicity of pentavalent meningococcal conjugate vaccine containing serogroups A, C, Y, W, and X in healthy adults; a phase 1, single-centre, double-blind, randomized, controlled study. Lancet Infect, Dis., 2018;18:1088–1096.; Mounkoro D., Nikiema Ch.S., Maman I., et al. Neisseria meningitidis serogroup W epidemic in Togo, 2016. J. Infect. Dis., 2019, 220, Suppl.4:S 216–22.; Maiden V.C.J., Ibarz-Pavon A.B., Urwin R., et al. Impact of meningococcal serogroup C conjugate vaccine in carriage and herd immunity. J. Infec. Diseases, 2008, v.197:737–743.; MacLennon J.M., Rodrigues Ch.M., Batcher H. B. et al. Meningococcal carriage in period of high and low invasive meningococcal disease incidence in the UK: comparison UK MenCar 1–4 cross sectional survey results. Lancet Infect. Dis., 2021, 19 Janv, https://doi.org.//10.1016 /S1473-3099(20)30842-2.; Cooper L.V., Kristiansen P.A., Christensen H., et al. Meningococcal carriage by age in the African Meningitis Belt: a systematic review and meta-analysis. Epid. Infect., 2019;147:e228, 1–9.; Van Revenhorst M. B., den Hartog G., van der Klis F.R.M., et al. Induction of salivary antibody levels in Dutch adolescents after immunization with monovalent meningococcal serogroup C or quadrivalent meningococcal serogroup A, C, W and Y conjugate vaccine. PLOS one, 2018, April 19:1–15.; Van Revenhorst M.B., van der Kis H.M., van Rogen D.M., et al. Use saliva to monitor meningococcal vaccine responses: proposing a threshold in saliva as surrogate protection. BMC Med. Res. Methods, 2019;19:1–6.; Zang Q., Finn A. Mucosal immunology of vaccines against pathogenic nasopharyngeal bacteria. J.Clin. Pathol., 2004;57(10):1015–1025.; Vianson V., Illek B., Voe C.R. Effect of vaccine elicited antibodies on colonization of Neisseria meningitidis serogroups B and C strains in a human bronchial epithelium cells culture model. Clin. Vaccine Immunol., 2017, 24(10): e00188-17; Dellicour S., Greenwood B. Systematic review: impact of meningococcal vaccination on nasopharyngeal carriage of meningococci. Trop. Med. Int. Health, 2007;12:1409–1421.; Campbell H., Andrews N., Borrow R., et al. Updated postlicenzure surveillance of the meningococcal conjugate vaccine in England and Wales: validation of serological correlates of protection, modeling predictions of the duration of herd immunity. Clin.Vaccine. Immunol., 2010;17:840–847.; Ramsay M.E., Andrews N,J., Trotter C.L., et al. Herd immunity from meningococcal serogroup C conjugate vaccination in England: data base analysis. Br.Med.J., 2003;326:365–361.; Bijlsma. M.W., Browner M.S,, Spanjaard L., et al., A decade of herd protection after introduction of meningococcal serogroup C conjugate vaccine. Clin. Infect. Dis. 2014;59:1216–1221.; Clark S.A., Borrow R, Herd protection against meningococcal disease after vaccination. Microorganisms, 2020;8:1675–1691.; Campbell H., Edelstein M., Andrews N., et al. Emergence meningococcal ACWY vaccination program for teenagers to control group W meningococcal disease, England, 2015-2016. Emerg. Infect. Dis., 2017;23(7):1184–1195.; Villena R., Valenzuela M.T., Bastias M., Santolaya M.E. Meningococcal invasive disease by serogroup W and use of ACWY conjugate vaccines as control strategy in Chile. Vaccine 2019;37:6915–6921; Perez O., del Campo J. Cuddlo V., et al. Mucosal approaches in Neisseria vaccinology. Vaccimonitor, 2009;V.18. P.55–57.; Petoussis-Harris E., Painter J., Morgan J., et al. Effectiveness of group B outer membrane vesicle meningococcal vaccine against gonorrhea in New Zealand: a retrospective case-control study. The Lancet, 2017;390(30):1603–1610.; Pizza M., Bekkat-Berkani R., Rappuoli R. Vaccines against meningococcal disease. Microorganisms, 2020;8:1521.; Nadel S. Prospects for eradication of meningococcal disease. Arch. Dis.Child. 2012;97:993–998.; Pizza M., Scarlato V., Masignani V., et al. Identification of vaccine candidate against serogroup B meningococcus by whole-genome sequesing. Science, 2009;287(5459):1816–18.; Rappuoli R. Reverse vaccinology. Curent Opinion in Microbiology. 2000;3: 445–450.; Платонов А. Е., Харит С. М., Платонова О. В. Вакцинопрофилактика менингококковой инфекции в мире и в России. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2009; 5:32–46.; Borrow R. Advances with vaccination against Neisseria meningitidis. Trop. Med. International. 2012;17(12):1478–1491.; Tan L.K.K., Carlone G.M., Borrow R. Advances in the development of vaccines against Neisseria meningitidis. New Engl. J. Med. 2010;362(16):1511–1520.; Riveiro-Calle I., Raguindin P.F., Rial J.G., et al. Meningococcal group B vaccine for the prevention of invasive meningococcal disease caused by Neisseria meningitidis serogroup B. Infect. Drug Res., 2019;12:3169–3188.; Richmond P.C., Marshall H.S., Nissen M.A., et al. Оn behalf of 2001 study Investigators. Safety, immunogenicity and tolerability of meningococcus serogroup B bivalent recombinant lipoprotein 2086 vaccine in healthy adolescents: a randomised single-blind, placebo-controlled phase 2 trial. Lancet Infect. Dis. 2012; 12( 8):97–6074.; Nolan T., Santolaya M.E., de Looze F., et al. Antibody persistence and booster response in adolescents and young adults 4 and 7,5 years after immunization with 4CMemB vaccine. Vaccine, 2019;37(9):1209–1218.; Deceuninck G., Lefebre B., Tzang R., et al. Impact of the mass vaccination campaign against serogroup B meningococcal disease in Sanguenes-Lac-Saint- Jean region of Quebec for years after its launch. Vaccine. 2019;37:4243–4245.; Ladhani S.N., Andrews N., Parkin S.R., et al. Vaccination of infants with meningococcal group B vaccine (4CMenB) in England. N. Engl. J. Med., 2020; 382:309–317.; Soeters H.M., McNamara L.A., Blain A.E., et al. University-based outbreaks of meningococcal disease caused by serogroup B, United States, 2013 -2018. Emerg. Infect.Dis., 2019;25(3):434–440.; Ladhani S.M., Giuliani M.M., Biolchi A., et al. Effectiveness of meningococcal B vaccine against endemic hypervirulent Neisseria meningitidis W strain, England. Emerg. Infect. Dis, .2016;22(2):309–311.; Biolchi A., De Angelis G., Moschioni M., et al. Multicomponent meningococcal serogroup B vaccine elicits cross-reactive immunity in infants against genetically diverse serogroup C, W and Y invasive disease isolate. Vaccine, 2020;38:7542–7550.; Harris S.L., Ton C., Andrew L., et al. The bivalent factor H binding protein meningococcal serogroup B vaccine elicits bactericidal antibodies against non-serogroup meningococci. Vaccine, 2018;36:6867–6879.; Beeslaar J., Absalon J., Anderson A.S., et al. MenB-FHbp vaccine protects against diverse meningococcal strains in adolescents and young adults: post-hoc analysis of two phase 3 studies. Infect. Dis. Ther., 2020;9(1):641–656.; Whelan J., Klovstad H.,Haugen L., et al. Ecologic study of meningococcal vaccine and Neisseria gonorrhoeae infection, Norway. Emerg. Infect. Dis., 2018; 22(86):1137–1139.; Langtin J., Dion R., Simard M., et al. Possible impact of large scale vaccination against serogroup B Neisseria meningitidis on gonorrhea incidence rates in one a region of Quebec, Canada. Open Forum Infect. Dis., 2017;7:734–735.; Semchenko E.A., Mubaiva T.D., Day Ch.J., Seib K.L. Role of the gonococcal heparin binding antigen in microcolony formation, and serum resistance and adherence to epithelial cells. J.Infect. Dis., 2020; 221:1612–1622.; Semchenko E.A., Day Ch.J., Seib K.L. The Neisseria gonorrhoeae vaccine candidate NHBA elicits antibodies that are bactericidal, opsonophagocytic and that reduce gonococcal adherence to epithelial cells. Vaccines. 2020;8:219–233.; Marjuki H., Topaz N., Josef S.J., et al. Genetic similarity of gonococcal homologs to meningococcal outer membrane proteins of serogroup B vaccine. mBio, 2019; 10, iss. 5, e 01668-19; Read R.C., Baxter D., Hadwick D.R., Faust S.N., FinnA., Gordon St.-B., et al. Effect of quadrivalent meningococcal A, C, W, Y glycoconjugate or serogroup B meningococcal vaccine on meningococcal carriage: a observer blind phase randomized clinical trail. Lancet, 2014;384:2123–2131.; Marshall A.S., McMillan M., Koehler A.P., et al. Meningococcal B vaccine and meningococcal carriage in alolescents in Ausrtalia. N. Engl.J.Med., 2020; 382(4):318–327.; Bai X, Borrow R, Bukovski S., et al. Prevention and control of meningococcal disease: updates from the Global Meningococcal Initiative in Eastern Europe. J. Infect., 2019;79:528–641.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1324

الاتاحة: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1324
https://doi.org/10.31631/2073-3046-2021-20-4-103-113

المؤلفون: Erushin, E. Yu., Yakovin, M. D., Latkin, N. I., Podzyvalov, S. N., Kostyukova, N. Yu., Boyko, A. A.

المصدر: Bulletin of the Lebedev Physics Institute; 2024 Suppl 1, Vol. 51 Issue 1, pS39-S50, 12p

المؤلفون: Erushin, E. Yu.^1,2 (AUTHOR) render2012@yandex.ru, Kostyukova, N. Yu.^1,2 (AUTHOR) n.duhovnikova@gmail.com, Boyko, A. A.^1,2 (AUTHOR) baa.nsk@gmail.com, Miroshnichenko, I. B.² (AUTHOR), Verbovaty, D. M.² (AUTHOR), Kiryakova, A. Yu.¹ (AUTHOR)

المصدر: Instruments & Experimental Techniques. Apr2024, Vol. 67 Issue 2, p298-302. 5p.

مصطلحات موضوعية: *REFRACTIVE index, *CRYSTAL optics, *ZINC selenide

المؤلفون: Boyko, A. A., Kiryakova, A. Yu., Erushin, E. Yu., Kostyukova, N. Yu.

المصدر: Instruments & Experimental Techniques; Apr2024, Vol. 67 Issue 2, p358-363, 6p

مصطلحات موضوعية: LEAK detectors, DIODES, ABSORPTION, SPECTROMETRY, RADIATION sources, METHANE, METHANE as fuel

المؤلفون: Kolker, Dmitri, Kostyukova, N., Boyko, A., Badikov, V., Badikov, D., Shadrintseva, A., Tretyakova, N., Zenov, K., Karapuzikov, A., Zondy, Jean-Jacques

مصطلحات موضوعية: BaGa4Se7, nonlinear chalcogenide, optical parametric oscillator, OPO, mid-infrared, mid-IR, Research Subject Categories::NATURAL SCIENCES::Physics::Other physics::Optics, Research Subject Categories::TECHNOLOGY::Engineering physics::Optical physics

Relation: Journal of Physics Communications; Kolker, D. B., Kostyukova, N. Y., Boyko, A. A., Badikov, V. V., Badikov, D. V., Shadrintseva, A. G., … Zondy, J.-J. (2018). Widely tunable (2.6–10.4μm) BaGa4Se7optical parametric oscillator pumped by a Q-switched Nd:YLiF4laser. Journal of Physics Communications, 2(3), 35039. https://doi.org/10.1088/2399-6528/aab007; https://iopscience.iop.org/article/10.1088/2399-6528/aab007/pdf; http://nur.nu.edu.kz/handle/123456789/4545

الاتاحة: http://nur.nu.edu.kz/handle/123456789/4545
https://doi.org/10.1088/2399-6528/aab007
https://iopscience.iop.org/article/10.1088/2399-6528/aab007/pdf

المؤلفون: N. Kostyukova N., V. Bechalo A., Н. Костюкова Н., В. Бехало А.

المصدر: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 17, № 5 (2018); 60-70 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 17, № 5 (2018); 60-70 ; 2619-0494 ; 2073-3046 ; 10.31631/2073-3046-2018-17-5

مصطلحات موضوعية: diphtheria carriage, colonization with Corynebacterium diphtheriae, colonization factors of Corynebacterium diphtheriae, immune protection from colonization, antitoxic immunity at diphtheria carriers, дифтерийное бактерионосительство, колонизация ротоглотки дифтерийными бактериями, факторы колонизации дифтерийных бактерий, иммунологическая защита от кологизации, антитоксин у дифтерийных носителей

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/578/470; Бухарин О. В., Усвяцов Б.Я. Бактерионосительство (медико-экологические аспекты). Екатеринбург: УрО РАН. 1996.; Сохин А. А. Парадокс инфекционного процесса. Журнал микробиологии. 1988, (1):73–80.; Control of communicable diseases. Manual, 17-th edition. Ed.: J. Chiu, Washington E.C. Amer. Publ. Health Association. 2000.; Покровский В. И., Фокина Г. Г. Дифтерия: болезнь забытая, но не исчезнувшая. Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2016, (4): 4–11.; Беляева Н. М., Турьянов М. Х., Царегородцев А. Д. Дифтерия. Санкт-Петербург. Нестор-История; 2012.; Both l., Collins S., de Zoysa A., White Y., Mandel W., Efstratiou A. Molecular and epidemiological review of toxigenic diphtheria infections in England between 2007 and 2013. J. Clin. Microbiol. 2015, 53 (2): 567–572.; Oliveira A., Oliveira L.C., Aburjail F., Benefides L., Tiwari S., Jamel S.B., et al. Insight of genus Corynebacterium: ascertaining the role of pathogenic and nonpathogenic species. Frontiers in Micribiology.2017; 8: 1–18.; Руководство по медицинской микробиологии. Книга II. Частная медицинская микробиология и этиологическая диагностика инфекций. А. С. Лабинcкая, и др. ред. Москва. Бином. 2013.; Holmes R.K. Biology and molecular epidemiology of diphtheria toxin and the tox gene. J.Infect. Dis. 2000; 181: 152–155.; Дифтерия. Л. А. Фаворова, Н. В. Астафьева, М. П. Крылова и др., ред. Москва. 1988.; Комбарова С. Ю., Борисова О. Ю., Мельников В. Г., Наумов А. С., Нарвская О. В., Волжанцев И. В. и др. Наблюдения за циркуляцией штаммов Corynebacterium diphtheriae, различающихся по признаку токсигенности. Мед. Альманах, 2009; 2 (7): 108–111.; Краева Л. А., Ценева Г. Я. Особенности биологических свойств Corynebacterium diphtheriae, циркулирующих в настоящее время. Журнал микробиологии., 2009, (3): 3–6.; Мельников В. Г., Комбарова С. Ю., Борисова О. Ю., Воложанцев Н. В., Веревкин В. В., Волковой К. И. и др. Характеристика нетоксигенных штаммов Corynebacterium diphtheriaе, несущих ген дифтерийного токсина. Журнал микробиологии. 2004, (1): 3–7.; Краева Л. А. Биологические основы разработки новых технологий для диагностики и мониторинга дифтерии. Автореф. дисс. … докт. мед. наук. СанктПетербург. 2011.; Сальникова Г. П. Микробиологическая диагностика и эпидемиологическая характеристика дифтерийной инфекции в г. Москве. Автореф. дисс. … канд. мед. наук. Москва. 1970.; Чагина И. А., Борисова О. Ю., Кафарская Л. И., Афанасьев С. С., Алешкин В. А., Несвижский Ю. В. и др. Состав популяции штаммов возбудителя дифтерии, циркулирующих в России. Журнал микробиологии. 2016; (5): 50–60.; Костюкова Н. Н., Гукасян Л. А. Патогенез дифтерийного носительства в иммунологическом аспекте. Журнал гигиены, эпидемиологии, микробиологии, иммунологии. 1977; 21 (4): 394–398.; Костюкова Н. Н., Фаворова Л. А. Патогенные свойства дифтерийных бактерий, выделяемых в течение эпидемического процесса. Журнал микробиологии. 1968; (5): 69–75.; Кветная А. С., Иванова В. В., Корженевская Г. Б., Родионова О. В., Быценко Д. С., Волкова М. О. Адаптационные механизмы формирования бактерионосительства Corynebacterium diphtheriae. Журнал микробиологии. 2000; 940. Приложение: 31–36.; Харсеева Г. Г., Алиева А. А. Адгезия Corynebacterium diphtheriae: роль поверхностных структур и механизм формирования. Журнал микробиологии. 2014; 4: 109–117.; Ton-That Y., Schneefeld O. Assembli on surface Corynebacterium diphtheriae. Mol. Microbiol. 2003; 50: 1429–1438.; Mandlik A., Swerczinsky A., Das A., Ton-That H. Corynebacterium diphtheriae employs specific minor pilins to target human pharyngeal epithelium cells. Mol. Microbiol. 2007; 64: 111–124.; Ott L., Höller M.,Gorbach R.D.G., Hensel M., Rheinlaender J., Schäfler A. et al. Corynebacterium diphtheriae invasion-associated protein (DIP 1281) is involved in cell surface organization, adhesion and internalization in epithelial cells. BMC Microbiology. 2010; 10: 2.; Subbadini P.S., Assis M.C., Frost E., Comes D.L.R., Moreira L.O., dos Santоs C.S., et al. Corynebacterium diphtheriae 67-72p hemagglutinin, characterized as the protein DIP0733, contributes to invasion and induction of apoptosis in Hep-2 cells. Microbiol. Pathol. 2012; 52: 165–176.; Tauch A., Burkovsky A. Molecular armory of niche factors: virulence determinants of Corynebacterium diphtheriae. FEMS Microbiol. letters. 2015; 362.; Antunes C.A., dos Santоs L.C., Hacher E., Köler K., Ott l., de Lina M. et al. Characterization DIP 0733, a multi-functional virulence factor of Corynebacterium diphtheriae. Microbiology. 2015; 161: 639–647.; Morreira L.O, Mattos-Guaraldi A.L. , Andrede A.F.B. Novel lipoarabinomannan-like lipogliccan (CdiLAM) contributes to the adherence of Corynebacterium diphtheriae to epithelial cells. Arch. Microbiol. 2008; 190 (5): 521–530.; Костюкова Н. Н., Карась С. Р. Адгезивная активность дифтерийных штаммов в зависимости от особенностей вызываемого ими инфекционного процесса. Журнал микробиологии. 1991; (11): 24–27.; Iwarki N.,Komiya T., Yamamoto A., Ishiva A., Nagata N., Arakawa Y.,Takahashi M. Genom organization and pathogenicity of Corynebacterium diphtheriae C7(-) and PW-8 strains. Infect.Immun., 2010; 78 (9): 3791–3800.; Dudley S.F., May T.N., O’Flinn J. Active immuization against diphtheria. Med. Res. Counc. 1935; 195.; Hirata R Jr., Napoleão T., Monteiro-Leal L.M., Andrade A.F.B., Nagao J.E., Formiga et al. Intracellular viability of toxigenic Corynebacterium diphtheriae strains in Hep-2 cells. FEMS Microbiol. Lett. 2002; 215: 115–119.; Алиева А. А., Харсеева Г. Г., Лабушкина А. В. Воронина Н. А., Тюкавкина С. Ю. Способность к адгезии и инвазии типовых биопленочных культур токсигенных штаммов Corynebacterium diphtheriae. Проблемы медицинской микологии. 2017; 10 (2): 32.; De Winter L.M., Bernard K.A., Romney M.D. Human clinical isdolates of Corynebacterium diphtheriae and Corynebacterium ulcerans collected in Canada from 1999 to 2003 but not fitting reporting criteria for cases of diphtheria. J.Clin. Microbiol. 2005; 43 (7): 2447–3449.; Reacher M., Ramsay M., White J., Zoiza De A., Efstratiou A., Mann . et al. Nontoxigenic Corynebacterium diphtheriae: an emerging pathogen in England and Wales? Emerg. Infect. Dis. 2000; 6 (6): 640–645.; Romney M.D., Roscoe D.L., Bernard K.Lai S., Estratiou A.,Clarce A.M. Emergence of an clone of nontoxigenic Corynebacterium diphtheriae in the urban poor population of Vancouver, Canada. J. Clin. Microbiol. 2006; 44 (5): 1625–1629.; Peixoto R.S., Hacker E., Antunes C.A., Weerasecera D., de Oliveira Dias AA de S., Martins C.A., et al. Pathogenic properties of Corynebacterium diphtheriae strain isolated from a case of osteomyelitis. J. Clin. Microbiol. 2016; 65: 1311–1321.; Dos Santos L.S., Antunes C.A., dos Santos C.S., Pereira Y.A.A., Sabbadini P.S., de Luna M. et al. Corynebacterium diphtheriae putative tellurito-resistance protein (CDeE 8392 D813) contributes to the intracellular survival in human epithelial cells and lethality of Caenorhabditis elegans. Mem. Inst. Osvaldo Cruz, Rio de Janeiro. 2015; 110 (5): 662–668.; Bertuccini L., Baldassaric L., von Hinolstein Ch. Internalization of nontoxigenic Corynebacterium diphtheriae by cultured human respiratory epithelial cells. Microbiol. Path. 2004; 37 (3): 111–118.; Dos Santos C.S., de Sousa M.C., dos Santos D.F., de Oliveira Dias de Zouza., Sabbadini A.A., Pereira G.A, et al. Non opsonic phagocytosis nontoxigenic and toxigenic Corynebacterium diphtheriae strain by human V-37 macrophages. Microbiol. Immunol. 2010; 54: 1–10.; Харсеева Г.Г., Алутина Э.Л., Васильева Г.Г., Апоптоз макрофагов как один из механизмов патогенного действия возбудителя дифтерии. Журнал микробиологии. 2012; (5): 63–66.; Ильина Т. С., Романова Ю. М. Гинцбург А. Л. Биопленки как способ существования бактерий в окружающей среде и организме хозяина:феномен, генетический контроль и система регуляции и биопленкообразования. Генетика, 2004; 40 (11): 1445–1456.; Мельников В.Г. Поверхностные структуры грампозитивных бактерий в межклеточном взаимодействии и биопленкообразовании. Журнал микробиологии. 2010; 1: 119–123.; Харсеева Г. Г., Миронов А. Ю., Фролова Я. Н., Лабушкина А. В. Способность к формированию биопленки возбудителем дифтерии. Клин. Лаб. Диагностика, 2013; (3): 36–38.; Manual for surveillance of vaccine-preventable diseases. CDC. 2015; Девятова Н. И. Состояние бактерионосительства при разных уровнях заболеваемости дифтерией и роль бактерионосителей в эпидемическом процессе. Автореф. дисс. … канд. мед. наук, М., 1967; Костюкова Н. Н. , Блюменталь К. В. Антитоксический иммунитет при разных формах дифтерийной инфекции. Журнал микробиологии. 1968; (8): 7–12.; Сухорукова Н. Л. Эпидемиологическая оценка дифтерийной инфекции в условиях высокого уровня противодифтерийного иммунитета. Автореф. дисс. … докт мед. наук. Москва. 1978.; Костюкова Н. Н., Фаворова Л. А.Динамика антитоксического иммунитета у носителей дифтерийных бактерий в коллективах. Журнал микробиологии. 1970; (1): 117–121.; Костюкова Н. Н., Блюменталь К. В., Леонова Н.А. Реакция агглютинации при различных формах дифтерий ной инфекции. Журнал микробиологии. 1969; (12): 33–38.; Бочкова В. А. Антибактериальный иммунитет при дифтерийной инфекции и его роль в патогенезе носительства коринебактерий дифтерии. Автореф. дисс. . докт. мед. наук. Москва. 1978: 33.; Сависько А.А., Харсеева Г.Г., Лабушкина А.В. Состояние противодифтерийного местного иммунитета у детей с аллергическими заболеваниями. Казанский Журнал микробиологии. 2011; 92 (3): 384–387.; Шмелева Е. А., Макарова С. И., Батурина И. Г., Корженкова М. П., Чистякова Г. Г., Ксенофонтова М .П. и др. Специфические антитела и их роль в формировании противодифтерийного иммунитета. Журнал микробиологии. 2005; (1): 38–43.; Еремина О. Ф., Ющук Н. Д., Шмелева Е. А. Влияние противодифтерийной бактериальной вакцины Кодивак на результаты санации и иммунный статус бактерионосителей С. diphtheriae. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2007; 2 (23): 55–58.; Mandlik A., Swerczinski F., Das A., Ton-That H. Pili in gram-positive bacteria assembly, involvement in colonization and biofilm development. Trends in Microbiol. 2007; 16 (1): 33–40.; Barocci M.A., Ries J., Zogar X. A pneumococcal pilus influences virulence and host inflammatory responses. Proc. Natl, Acad. Sci. 2006; 19 (3): 2857–2862.; Mазурова И. К., Комбарова С. Ю., Борисова О. Ю., Мельников В. Г., Максимова Н. М., Гадуа Н. Т. и др. Мониторинг возбудителя дифтерийной инфекции. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2009; 3 (45): 17–22.; Фаворова Л. А. О риске заражения при капельных инфекциях. Журн. гиг., эпид., микробиол., иммунол. 1968; 12: 391–399.; Трифонов В. И. Количественная характеристика некоторых этапов передачи возбудителей дифтерии от различных источников инфекции. Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Москва. 1968.; Костюкова Н. Н., Гукасян Л. А. Некоторые особенности течения дифтерийного носительства и биологические свойства Cor. diphtheriae. Журнал микробиологии. 1972; (8): 71–74.; Максимова Н. М., Якимова Т. Н., Маркина С. С., Яцковский К. А., Адугюзелов С. Э. Дифтерия в России в ХХI веке. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2017; 5 (96): 4–15.; Здродовский П. Ф. К проблеме ликвидации дифтерии. Журнал микробиологии. 1960; (1): 3–8.; Санитарно-эпидемиологические правила. . СП 3.1.2.3109-13 «Профилактика дифтерии». 09.10.2013.; Мельников В. Г., Мазурова И. К., Платонова Т. В., Комбарова С. Ю., Феоктистова Г. Н., Звонарева С. В. и др. Микрофлора ротоглотки у дифтерийных бактерионосителей до и после антибиотикотерапии. В сборнике: «Вакцинопрофилактика». МНИИЭМ им. Г. Н. Габричевского Москва. 1997: 32–35.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/578

الاتاحة: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/578
https://doi.org/10.31631/2073-3046-2018-17-5-60-70

المؤلفون: Kolker, D., Pronyushkina, A., Boyko, A., Kostyukova, N., Trashkeev, S., Nuyshkov, B., Shur, V., Шур, В. Я.

المصدر: Journal Of Physics Conference Series

وصف الملف: application/pdf

Relation: Experimental investigations of 3 mm aperture PPLN structures / D. Kolker, A. Pronyushkina, A. Boyko [et al.] // Journal Of Physics Conference Series. — 2017. — Vol. 793. — UNSP 012014. — DOI:10.1088/1742-6596/793/1/012014.; http://iopscience.iop.org/article/10.1088/1742-6596/793/1/012014/pdf; 8a1de4db-8189-4bab-bccd-21c170e25f21; http://www.scopus.com/inward/record.url?partnerID=8YFLogxK&scp=85016117808; http://elar.urfu.ru/handle/10995/72901; 85016117808; 000404044300014

الاتاحة: http://elar.urfu.ru/handle/10995/72901
http://iopscience.iop.org/article/10.1088/1742-6596/793/1/012014/pdf
http://www.scopus.com/inward/record.url?partnerID=8YFLogxK&scp=85016117808
https://doi.org/10.1088/1742-6596/793/1/012014

المؤلفون: N. Kostyukova N., V. Bekhalo A., Н. Костюкова Н., В. Бехало А.

المصدر: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 16, № 5 (2017); 87-97 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 16, № 5 (2017); 87-97 ; 2619-0494 ; 2073-3046 ; 10.31631/2073-3046-2017-16-5

مصطلحات موضوعية: Neisseria meningitidis, менингококк, менингококковое носительство, эпидемический процесс менингококковой инфекции, иммунитет при менингококковом носительстве, борьба с менингококковом носительством, Nesseria meningitidis, meningococcal carriage, immunity at meningococcal carriage, local mucosal immunity at meningococcal carriage, principles of the meningococcal carriage control

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/327/328; Королева И.С., Королева М.А., Белошицкий Г.В. Современная эпидемиологическая ситуация по менингококковой инфекции в Российской Федерации и возможности вакцинопрофилактики. Медицинский алфавит. Эпидемиология и гигиена 2016; (6): 15 - 17.; Caugant D.A., Maiden M.C.J. Meningococcal carriage and disease - population biology and evolution. Vаccine. 2009; 27 (4): B64 - B70.; Horton R.E.,Stuart H.,Christensen H., Borrow R., Guthrie T.,Davenport V. et al. Influence of age and carriage status on salivary IgA to Neisseria meningitidis. Epidemiol. Infect. 2005; 133: 883 - 889.; Caughant D.A., Hoiby E.A., Magnus P., Scheel O., Hoel F., Bjuna G. et al. Asymptomatic carriage of Neisseria meningitidis in randomly sampled population. J. Clin. Microbiol. 1994; 32 (2):323 - 330.; Stephens D. Onloaking the meningococci: dynamics of carriage and disease. Lancet, 1999, 353: 941 - 942.; Neal K.R., Nguen-Van-Tam S., Jeffrey N., Black R.C.B., Madely R., Ait-Tahar K. et al. Changing carriage rate of Neisseria meningitidis among university students during the first week of term: cross-sectional study. Brit. Med. J., 2000, 320: 846 - 849.; Trotter C.L., Gay N.J., Edmunds WJ. The natural history of meningococcal carriage and disease. Epidemiol. Infect. 2006; 134: 556 - 566.; Claus H., Maiden M.C.J., Wilson D.J., McCarthy N.G., Jolley K.A,. Urvin R. et al. Genetic analysis of meningococci, carried by children and young adults. J.Infect. Dis., 2005; 191: 1263 - 1271; Sim R.J., Harrison M.M., Moxon E.R., Tang C.M. Underestimation of meningococcus in tonsillar tissue by nasopharyngeal swabbing. Lancet, 2000, 326, iss. 9242: 1653 - 1654.; Caughant D.A., Tsanakaki G., Kriz P. Lessons from meningococcal carriage studies. FEMS Microbiol. Rev. 2007; 31: 52 - 63.; Lappan M., Vogel U. Biofilm formation by the human pathogen Neisseria meningitdis. Med. Microbiol., Immunol. 2010; 199: 173 - 183.; Покровский В.И., Фаворова Л.А., Костюкова Н.Н. Менингококковаая инфекция. Москва; Медицина. 1976.; Мильдзихова И.Б. Эпидемиологическая и микробиологическая характеристика менингококкового носительства в период спада заболеваемости. Автореф. дис. канд. мед. наук. Москва; 1994.; Максина Т.А. Эпидемиологическая значимость носителей менингококка в очагах менингококковой инфекции. Автореф. дис. канд. мед. наук. Москва; 2011.; Jordens J.Z., Williams J.N., Jones G.R. , Christidoulides M., Heckels J.E. Development of immunity to serogroup B meningococci during carriage Neisseria meningitidis in a cohort of university students. Infect. Immun., 2004, 72 :6503 - 6510.; Yarzdankhan S.P, Caugant D.A. Neisseria meningitidis: an overview of the carrier state. J. Med. Microbiol 2004; 53: 821 - 832.; Jones G.R., Christodoulides M., Brooks J.L., Miller A.R.O., Cartwright K.A.V., Heckels J.E. Dynamics of carriage in a group of military recruits: subtype stability and specifity of immune response, following colonization. J. Infect. Dis., 1998; 178: 451 - 459.; Robinson K., Neal K.R., Howard C., Stockton J., Atkinson K., Searth E., et al. Characterization of humural and cellular immune response elicited by meningococcal carriage. Infect. Immun., 2002; 70: 1301 - 1309.; Bidmos F.A., Neal K.R., Oldfield N.J., Turner D.P.J., Ala’Aldeen D.A.A., Bayliss Ch. Persistence, replacement and rapid clonal expansion of meningococcal carriage isolates in 2008 university students cohort. J. Clin. Microbiol., 2011; 49 (2): 506 - 512.; Mulhall R.M., Brehony C., O’Connor L., Meiler K., Jolley K.A., Bray J. et al. Resolution of a protected serogroup B meningococcal outbreak with whole genome sequencing shows interspecies genetic transfer. J. Clin. Microbiol. 2016; 54 (12): 2891 - 2898.; Дударева В.В. Характер эпидемического процесса менингококковой инфекции в Ленинграде. Автореф. дис. канд. мед. наук. Ленинград; 1974.; Фаворова Л.А., Генчиков Л.А. О распространенности носительства менингококка. Журн. микробиол. 1966 : 9: 25 - 29.; Christensen H., May M., Bowen J., Hickman M., Trotter C.L. Meningococcal carriage by age: a systematic review. Lancet Infect. Dis., 2010, 10, (12):853 - 861.; Glitza I.C., Miller-Pebody B., Reintjes R., Breuer T., Ammon A., Sonntag H.G. Longitudinal study of meningococcal carrier rate in teenagers. Int. J. Hyg. Environ Health. 2008; 211 (3 - 4): 263 - 272.; Kostyukova N.N., Alexeev A.B., Gorlina M.Ck., Mironova T.K., Klitsunova N.V., Gorokhova L.V., Gosteva V.V. A study on meningococcal colonization of epithelium. In: Neisseria 1990, ed. M. Achtman et al. Walter de Gruiter. Berlin New-York 1991: 609 - 6114.; Миронов. К.О., Тагаченкова Т.А., Королева И.С., Платонов А.Е., Шипулин Г.А. Генетическая характеристика штаммов Neisseria meningitides, выделенных от здоровых носителей в очагах менингококковой инфекции. Журн. микробиол., 2011, 2:22-27; Ala’Aldeen D.A.A., Neal K.R., Ait-Tahar K., Nguen-van-Tam J.S., English A., Falla T.J. et al. Dynamics of meningococcal long-time carriage among university students and their implication for mass vaccination. J. Clin. Microbiol. 2000; 36 (6): 2311 - 2316.; Claus H., Maiden V.C.J., Maag K., Frosh M., Vogel H. Many carried meningococci lack the genes required for capsule synthesis and transport. Med. Microbiol. 2002;148, iss. 6: 1813 - 1819.; Tsai C.-M., Frash C.E., Maag K., Vogel H., Structural classes of major outer membrane proteins in Neisseria meningitidis. J. Bacteriol. 1981; 146, (4): 169 - 178.; Костюкова Н.Н., Бехало В.А. Современные менингококковые вакцины: сильные и слабые стороны, ближайшие перспективы. Эпидемиология и вакцинопрофилактика, 2016; (4): 64 - 73.; Neil R.V., Apicella M.A. Clinical and laboratory evidence for Neisseria meningitidis biofilms. Future Micribiol. 2009; 4: 555 - 563.; Романова Ю.М., Гинцбург А.Л. Бактериальные биопленки как естественная форма существования бактерий в окружающей среде и организме хозяина. Журн. микробиол. 2011; (3): 99 - 109.; Горлина М.Х , Костюкова Н.Н., Мильдзихова И.Б., Чернышева Т.Ф., Мишина А.И., Скирда Т.А., Kayhthy H. Серотипы и субтипы Neisseria meningitidis, циркулирующих среди бактерионосителей в Москве (1989 - 1991). Журн. микробиол. 1994: 44 - 48.; Костюкова Н.Н., Бехало В.А. Менингококковое носительство: загадки и разгадки. Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2009; (1): 30 - 34.; Миронов К.О Платонов А.Е., Королева И.С., Тагаченкова И.Ф., Браславская С.И., Шипулин Г.А. Генетическая характеристика московских штаммов Neisseria meningitidis. Клин. микробиол. антимикр. терапия, 2011; 13 (2): 135 - 148.; Josef B., Schneiker-Bekel S., Schramm-Gluck A., Blom J., Claus H. Linke B. et al. Comparative genome biology of a serogroup B carriage and disease strains supports a polygenic nature of meningococcal virulence. J. Bacteriol. 2010; 192 (20): 5363 - 5377.; Clonal complex designation. Доступно на: http://pubmlst.org./neisseria/info/complexes.shtml; Holmes E.C., Urvin R., Maiden M.C.J. The influence of recombination on the population structure and evolution of the human pathogen Neisseria meningitidis. Mol. Biol. Evol. 1999; 16 (6): 741 - 749.; Weiland N.J., Wertheimer A.M., Hobbs Th.R., Sisko L., Taky N., Gregson L.D., Clary S. Neisseria infection of rhesus macaques as a model to study colonization, transmission, persistence and horizontal gene transfer. PNAS. 2013; 110 (8): 3059 - 3064.; Yi K., Stephens D., Stojiljkovic J. Development and evaluation of an improved mouse model of meningococcal colonization. Infect. Immun. 2003; 71 (4): 1849 - 1855.; Johswich K.O., McCaw S.E., Islam E., Sintsova A., Gu A., Shively J.E., Gray-Owen S.D. In vitro adaptation and persistence of Neisseria meningitidis within the nasopharyngeal mucosa. PLOS Pathogens. 2013; 9 (7): e1003509.; Exley K.M., Sim R., Goodwin L., Winterbotham M., Schneider M.C., Read R.C., Tang Ch.M. Identification of meningococcal genes for colonization of human upper airway tissue. Infect. Immun. 77 (1):45 - 51.; Hey A., Li M.Sh., Hudson M.J., Langford PR., Kroll J.S. Transcriptional profiling of Neisseria meningitidis interacting with human epithelium cells in a long-term in vitro colonization model. Infect. Immun. 2013; 81 (11): 4149 - 4159.; Goldschneider J., Gotschlich E.C., Artenstein M.S. Human immunity to meningococcus. I. The role of humoral antibodies. J. Exper. Med. 1969; 129: 1307 - 1326.; Jarvis G.A. Recognition and control of neisserial infections by antibody and complement. Trends Microbiol. 1995; 3: 198 - 201.; Johswich K.O., McCaw S.E., Strobel L., Frosch M., Gray-Owen S.D. Sterilizing immunity elicited by Neisseria meningitidis carriage shows broader protection than predicted by serum antibody-cross reactivity in CEACAM-humanized mice. Infect. Immun. 2015; 83 (2): 354 - 363.; Guttormsen H.-K., Wetzler L.M., Solberg C.O. Humoral immune response to class1 outer membrane protein during the course of meningococcal disease. Infect. Immun. 1994; 62; (4): 1437 - 1443.; Williams J.N., Jones G.R., M., Christodoulides M., Heckels J. Serologocal correlates of protection against meningococci in a cohort of university students, before and during an outbreak of serogroup B infection. J. Infect. Dis. 2003; 187: 1433 - 1441.; Neal K.R., Nguen-Van-Tam J.S., Slack R.C.B., Kaczmarsky E.B., White A., Ala’Aldeen D.A.A. Seven week interval between acquisition of a meningococcus and the onset of invasive disease. Epidemiol. Infect. 1999; 123: 507 - 509.; Kristiansen D.-E., Lind K.W., Mevold K.,S rensen B., Froholm L.O., Bryn K. et al. Meningococcal phenotyping and genotyping characteristics and human antibody. J.Clin.Microdiol.1888; 26 (10): 1988 - 1992.; Zorgani A.A., Stewart J., Blackwall C.C., Elton R.A., Weir D.M. Inhibitory effect of saliva from secretors and nonsecretors on binding of meningococci to epithelial cells. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 1994; 9 (2): 135 - 142.; Davenport V., Guthrie T., Findlow J., Borrow R., Williams N.A., Heyderman R.S. Evidence for naturally acquired T cell-mediated mucosal immunity to Neisseria meningitidis by Neisseria meningitidis. J. Immunol. 2003; 171: 4263 - 4270.; Borrow R., Fox A.J., Cartwright K., Begg N.N., Jones D.M. Salivary antibodies following parenteral immunization of infants with a meningococcal seerogroupA and C conjugated vaccine. Epidemiol. Infect. 1999; 123: 201 - 208.; Davenport V., Groves E., Horton R.E., Hobbs C.D., Guthrie T., Findlow J., et al. Mucosal immunity in healthy adults after parenteral vaccination with outer membrane vesicles from Neisseria meningitidis serogroup B. J.Infect. Dis., 2008; 19 (5): 731 - 740.; Zang Q., Finn A. Mucosal immunology of vaccines against pathogenic nasopharyngeal bacteria. J.Clin. Pathol. 2004; 57 (10): 1015 - 1025.; Woodhams K.L., Chan J.M., Lenz D., Hackett K.F., Dullard J. Peptidoglycan fragment release from Neisseria meningitidis. Infect. Immun., 2013; 81 (9): 3490 - 3498.; Sjolinder H., Eriksson J., Maudsdotter L., Aro H., Jonsson A.-B. Meningococcal outer membrane protein NnhhA is essential for colonization and disease by preventing phagocytosis and complement attack. Infect. Immun. 2008; 76 (11): 5412 - 5420.; Wang X., Sj linder M., Gao Y., Sjolinder H. Immune homeostatic macrophages programmed by the bacterial surface protein NhhA potentiate nasopharyngeal carriage of Neisseria meningitidis. mBio 2016; 7 iss. 1: e01670 - 15.; Almaro M., Bidmos F.A., Chan H., Oldfield N., Newton E., Bai X. et al. Phase variation mediates reduction in expression of surface proteins during persistent meningococcal carriage. Infect. Immun. 2014; 82 (6): 2472 - 2484.; Arenas J., Nijland R., Rodrigues F.J., Rosma T.N.R., Tomassen J. Involvement of three meningococcal surface-exposed proteins, the heparin-binding NhbA, the α-peptide of IgA protease and the aututransporter protease NalP, in initiation of biofilm formation. Mol. Microbiol. 2013; 87 (2): 254 - 268.; Королева М.А., Королева И.С., Закроева И.М., Грубер И.М. Динамика чувствительности к атибактериальным препаратам московских инвазивных штаммов Neisseria meningitidis в 2006 - 2015 годы. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2016; 15 (3): 7 - 16.; Санитарно-эпидемиологические правила «Профилактика менингококковой инфекции». СП 3.1.2.2512-09.; Maiden M.C.J., Frosch M. Can we, should we eradicate the meningococcus? Vaccine. 2012; 30 (6): 652 - 656.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/327

الاتاحة: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/327
https://doi.org/10.31631/2073-3046-2017-16-5-87-97

المؤلفون: Petrova, Galina Ivanovna, Gural, S. K., Kornienko, Anna Anatolievna, Kostyukova, N. A., Kachalov, Nikolay Aleksandrovich

مصطلحات موضوعية: Idea of university, spirituality, faculty of theology, philosophy, mind, духовность, университеты, философия, философский подход, сравнительный метод, преобразования

Relation: Procedia - Social and Behavioral Sciences. Vol. 166: Proceedings of The International Conference on Research Paradigms Transformation in Social Sciences 2014 (RPTSS-2014), 16–18 October 2014, Tomsk, Russia, 2015.; Historical Retrospective Review of Idea of University: Complementarily of Reason and Spirituality [Electronic resource] / G. I. Petrova [et al.] // Procedia - Social and Behavioral Sciences . — 2015 . — Vol. 166 : Proceedings of The International Conference on Research Paradigms Transformation in Social Sciences 2014 (RPTSS-2014), 16–18 October 2014, Tomsk, Russia . — [P. 639-646] .; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/35460

الاتاحة: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/35460
https://doi.org/10.1016/j.sbspro.2014.12.588

المؤلفون: Kolker, D. B., Sherstov, I. V., Boiko, A. A., Kostyukova, N. Yu., Erushin, E. Yu., Pavlyuk, A. V.

المصدر: Journal of Applied Spectroscopy ; volume 89, issue 4, page 742-747 ; ISSN 0021-9037 1573-8647

الاتاحة: http://dx.doi.org/10.1007/s10812-022-01419-0
https://link.springer.com/content/pdf/10.1007/s10812-022-01419-0.pdf
https://link.springer.com/article/10.1007/s10812-022-01419-0/fulltext.html

المؤلفون: Erushin, E., Nyushkov, B., Ivanenko, A., Korel, I., Boyko, A., Kostyukova, N., Kolker, D.

المساهمون: Russian Foundation for Basic Research, Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation

المصدر: 2021 Conference on Lasers and Electro-Optics Europe & European Quantum Electronics Conference (CLEO/Europe-EQEC) ; page 1-1

الاتاحة: http://dx.doi.org/10.1109/cleo/europe-eqec52157.2021.9542063
http://xplorestaging.ieee.org/ielx7/9541543/9541265/09542063.pdf?arnumber=9542063

المؤلفون: Zondy, Jean-Jacques, Vedenyapin, V., Boyko, A., Kolker, Dmitri, Isaenko, L., Lobanov, S., Kostyukova, N., Yelisseyev, A., Petrov, V.

مصطلحات موضوعية: optical parametric oscillator, mid-infrared, lithium gallium selenide

Relation: Zondy, J-J., Vedenyapin, V., Boyko, A., Kolker, D., Isaenko, L., Lobanov, S., . Petrov, V. (2016). LiGaSe2 optical parametric oscillator pumped by a Q-switched Nd:YAG laser. Laser Physics Letters, 13, 115401. [115401].; http://nur.nu.edu.kz/handle/123456789/2205

الاتاحة: http://nur.nu.edu.kz/handle/123456789/2205

المؤلفون: N. Kostyukova N., V. Bekhalo A., Н. Костюкова Н., В. Бехало А.

المصدر: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 15, № 4 (2016); 64-73 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 15, № 4 (2016); 64-73 ; 2619-0494 ; 2073-3046 ; 10.31631/2073-3046-2016-15-4

مصطلحات موضوعية: менингококковые вакцины, полисахаридные вакцины, конъюгированные вакцины, генно-инженерные вакцины, обратная вакцинология, the meningococcal vaccines, the polysaccharide vaccines, the conjugated vaccines, the vesicle vaccines, the geneticengineering vaccines, reverse vaccinology

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/184/185; Goldschneider J., Gotschlich E.C., Artenstein M.S. Human immunity to meningococcus. I. The role of humoral antibodies. J. Exp. Med. 1969; 129: 1307 -1326.; Gotschlich E.C., Liu T.Y., Artenstein M.S. Human immunity to meningococcus. III. Preparation and immunological properties of the groupA, group B and group C meningococcal polysaccharides. J. Exp. Med. 1969; 120: 1349 - 1365.; Artenstein M.S., Gold R., Zimmerly J.G., Whyle F.A., Schneider Y., Harkins Ch. Prevention of meningococcal disease by group C polysaccharide. N. Engl. J. Med. 1979; 272: 417 - 420.; Fierbig T., Bertri F., Freiberger F., Pinto V., Claus H., Romano M.R., Proietti D., Brogioni B., Stummeyer K., Berger M. et al. Functional expression of the capsule polymerase of Neisseria meningitidis serogroup X: a new perspective for vaccine development. Glycobiology. 2014; 24 (2): 150 - 158.; Nadel S. Prospects for eradication of meningococcal disease. Arch. Dis. Child. 2012;97: 993 - 998.; Stein M.D., Robbins J. Miller M.A. Are the antibodies to the capsular polysaccharide of Neisseria meningitidis group B and Escherichia coli K1 associated with immunopathology? Vaccine. 2006; 24: 221 - 228.; Lapessonie L. Sur la vaccination antimeningococcique. Med. Trop. 1977; 37: 203 - 213.; Peltola H. Group A meningococcal polysaccharide vaccination and course of group A meningococcal epidemic in Finland. Scand. J. Infect. Dis. 1978; 10. Iss.1: 41 - 44; Harrison L.H. Epidemiological profile of meningococcal disease in the United States. Clin. Infect. Dis. 2010; 50 (52): S37 - S44.; Bilucha O.O., Rosenstein N. Prevention and control of meningococcal disease. Recommendations of the Advisory Committee on Immunization Practice (ACIP). MMWR Recommen. Rep. 2005; 54: 1 - 21; Колесников А.В., Козырь А.В., Шемякин И.Г., Дятлов И.А. Современные представления о механизме активации иммунного ответа конъюгированными полисахаридными вакцинами. Журн. Микробиол. 2015; 3: 97 - 106.; Stephens D.S. Protecting the herd: the remarkable effectiveness of bacterial meningitis polysaccharide-protein conjugate vaccines. Transactions of the American clinical and climatological association. 2011; 122: 115 - 123.; Ishola D.A., Borrow R., Findlow H., Findlow J., Trotter C.L., Ramsay M. Prevalenct of serum bactericidal antibodies to serogroup C Neisseria meningitidis in England a Decade after vaccine introduction. Clin. Vaccine Immunol. 2012;19 (8): 1126 - 1130.; Trotter C.L., Ramsay M.E. Vaccination against meningococcal disease in Europe: review and recommendations for the use of conjugate vaccine. FEMS Microbiol. Rev. 2007; 31: 101 - 107.; Maiden M.C.J. The endgame for serogroup A meningococcal disease in Africa? Clin. Infect. Dis. 2013; 46 (3): 364 - 366.; Cardoso C.W., Ribeiro G.S., Reis M.G., Flannery B., Reis J.M. Effectiveness of meningococcal conjugate vaccine in Salvador, Brazil: a case-control study. PLOS one. 2015; 10. Iss. 4: e0123734.; Frota A.C,C., Milagres L.G., Harrison L.M., Ferreira B., Barroto D.M., Pereira G.S., Cruz A.C., Pereiro-Manfro W., de Oliveiro R.H., Abren T. et al. Immunogenicity and safety of meningococcal conjugate vaccine in children and adolescents infected and uninfected with HIV in Rio de Janeiro, Brazil. Pediatric Infect. Dis. J. 2015; 34. N 5. E 113-118.; Gasparini R., Pannato D., Bragazzi N.L, Lai P.L., Bechini A., Levi M., Durando P, Amicizia D. How the knowledges of interaction between the meningococcus and human immune system has been used to prepare effective Neisseria meningitis vaccine. Hindawi Publ. Corp. J. Immunol. Res. 2015. V. 2015/Article ID 189153. http/dx.doi.org/10.1155/2015/189153/; Broderick M.P., Phillips Ch., Faix D. Meningococcal disease in US military personnel before and after adoption of conjugate vaccines. Emerg. Infect. Dis. 2015; 21; 2: 377 - 379.; Meningococcal vaccines: WHO position paper. Weekley epid. record. 2011; 86 (47): 521 - 540.; Borrow R. Advances with vaccination against Neisseria meningitidis. Trop. Med. International. 2012; 17 (12): 1478 - 1491.; Novak R.T., Kambou J.L., Dimand F.V., TarbangdoT.F., Qu drago-Traore R., Sangar L., Lingani C., Martin S.W., Hatcher S., Mayer L.W. et al. Serogroup A meningococcal conjugate vaccination in Burkina Faso: analysis of national surveillance data. Lancet. Infect. Dis. 2012; 12: 354 - 363.; Kristiansen PA., Diomand T., Tarbangdo T.F., Ku Ba A., Qu draogo A.-S., Qu draogo R., Sangar L.,Kandolo D., Ak F.,Saga G.M., et al. Impact of the serogroup A meningococcal conjugate vaccine, MenAfriVac, on carriage and herd immunity. Clin. Infect. Dis. 2013; 56: 354 - 363.; Фаворова Л.А., Телешевская Э.Я. Эпидемиология и профилактика менингококковой инфекции. Сов. Медицина. 1971; 11: 113 - 118.; Kulkarni H.M., Jagannadham M.V. Biogenesis and multifaceted roles of outer membrane vesicles from Gram-negative bacteria. Microbiology. 2014; 160: 2109 - 2121.; Sierra G.V., Campa N.C., Varcacel N.M., Garcia I.L., Isquierdo P.L., Sotolongo PF., Gazanueva G.V., Rico C.O., Rodriges C.R., Ferry M.H. Vaccine against group B Neisseria meningitidis: protection trail and mass vaccination results in Cuba. NIPH Ann. 1991; 14: 195 - 210.; Galloway Y., Stehr-Green P, McNicolas A., O Hallahan J. Use and observational cohort study to estimate the effectiveness of the New Zealand group B meningococcal vaccine in children aged under 5 years. Int. J. Epid. 2009; 38: 413 - 418.; Thomas M. Prevention of group B meningococcal disease by vaccination: a difficult task. J. New Zealand Med. Ass. 2004; 117 (1200).; Devoy A.F., Dyet K.N., Martin D.R. Stability of Por A during a meningococcal disease epidemic. J. Clin. Microbiol. 2005; 43 (2): 832 - 837.; Rappuoli R. Reverse vaccinology. Curent Opinion in Microbiology. 2000; 3: 445 - 450.; Pizza M., Scarlato V., Masignani V., Frico B., Comanducci M., Jenings G.T., Giolani M.M., Baldi L., Bacdini E., Capeci B. et al. Identification of vaccine candidate against serogroup B meningococci by whole-genome sequesing. Science. 2000; 287 (5459): 1816 - 1820.; Comanducci V., Bambini S., Caugant D., Mora M., Brunelli B.,Capecci B., Chiucci L., Rappuoli R., Pizza M. Nad A diversity and carriage in Neisseria meningitidis. Infect. Immun. 2004; 72 (7): 4217 - 4223.; Tan L.K.K., Carlone G.M., Borrow R. Advances in the development of vaccines against Neisseria meningitidis. New Engl. J. Med. 2010; 362 (16): 1511 - 1520.; Schneider M.S., Prosser B.E., Caesar J.J., Kugelsberg E., Zhang Q., Quoraishi S., Lovett J.E., Deane J.E., Sim R.B., Rodersi P. et al. Neisseria meningitidis recruits factor H using protein mimicry of host carbohydrates. Nature. 2009; 458: 890 - 893.; Платонов А.Е, Харит С.М., Платонова О.В. Вакцинопрофилактика менингококковой инфекции в мире и в России. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2009; 5: 32 - 46.; Granoff D.M., Welsch J.A., Ram S. Binding of complement factor H (fH) to Neisseria meningitidis is specific for human fH and inhibits complement activation by rat and rabbit sera. Infect. Immun. 2009; 27 (2): 764 - 769.; Madico G., Welsch J.A., Lewis L.A., McNaughton A., Perlman D.N., Costello C.E., Ngampasutadol J., Vogel U., Granoff D.M., Ram S. The meningococcal vaccine candidate GNA1870 binds the complement regulatory protein factor H and enhances serum resistance. J. Immunol. 2006; 177: 501 - 510.; Harris S.L., Zhu D., Murphy E., McNeil L.K., Wang X., Mager L.W., Harrison L.H., Jansen K.U. Anderson A.S. Principal evidence for the potential of a bivalent fHbp vaccine to protect from Neisseria meningitidis serogroup C. Human Vaccines. 2011; 7. Suppl. 1: 68 - 74.; Serruto D., Spadafina T., Ciucci L., Lewis L.A., Ram S., Tontini M., Santini L., Biolchi A., Seib K.L., Giulliani M.M. et al. Neisseria meningitidis GNA2132, a heparin-binding protein that induces protective immunity in humans. PNAS. 2010; 107 (8): 3770 - 3775.; Bambini S., Piet J., Muzzi A., Keijzers W., Comandi S. De Tora L., Pizza M., Rappuoli R., van de Beek D., van der Ende A., Comanduccci M. An analysis of the sequence variability of meningococcal fHbp, NadA and NHBA over 50-year period in the Netherlands. PloS one. 2013; 8. Iss. 5. e 65043; McIntosh E.X., Carey V., Toneatto D., Dull P., James W. Prevention of rare diseases: how revolutionary techniques can help vulnerable individuals - the example of serogroup B meningococcal infection. Ther. Adv. Vaccines. 2015; 3 (1): 13 - 23.; Richmond PC., Marshal H.S., Nissen M.A., Jiang Q., Jansen K.U., Garcies-Sanches M., Martinon-Torres F., Boeslar J., Szeszek L., Wisocki J. et al., on behalf of 2001 study Investigators. Safety, immunogenicity and tolerability of meningococcus serogroup B bivalent recombinant lipoprotein 2086 vaccine in healthy adolescents: a randomised single-blind, placebo-controlled phase 2 trial. Lancet Infect. Dis. 2012; 12 (8): 97 - 6074.; Follarmini T., Rubin L., Martin S.W., Patel M., MacNeil J.R. Use of serogroup B meningococcal vaccines in persons aged >10 years at increased risk for serogroup B meningococcal disease: recommendatons of the Divisory Committee of immunization practice. MMMR. 2015; 64 (22): 608 - 612.; Kristiansen PA., Ku Ba A., Sanon I., Qu draogo A.S., Qu draogo R.,Sangar L., Diomand F.,Kandolo D.,Thomas J.D., Clark Th.A. et al. Phenotyping and genotyping characterization of meningococcal carriage and disease isolates in Burkina Faso after mass vaccination with a serogroup A conjugate vaccine. BMC Infect. Dis. 2013; 13: 363 - 373.; Swartley J.S., Martin A.A., Edupugantii S., Liu L.J., Cieslak P., Perkins B., Wenger J.D., Stephens D.S. Capsule switching of Neisseria meningitidis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997; 94: 271 - 276.; Stephanelli P., Fazio C., Neri A., Sofia T., Mastrantonio Fi First report of capsule replacement among electrophoretic type strains in Italy. J. Clin. Microbiol. 2003; 4 (12): 5783 - 5786.; Harrison L.H., Schutt R.A., Schmink S.E., Marsch J.W., Harcoart B.H., Wang X., Whitney A.M., Stephens D.S., Cohn A., Messionnier N.E., Mayer L.W. Population structure and capsular switching of invasive Neisseria meningitidis isolates in the pre-meningococcal conjugate vaccine era - United States, 2000-2005. J. Infect. Dis. 2010; 201: 1208 - 1224.; Wang Q., Shao Z., Wang X., Gao Y., Li M., Xu J., Wang L. Genetic study of capsular switching between Neisseria meningitidis seequence type 7 serogroupA and C strains. Infect. Immun. 2010; 78 (9): 3883 - 3888.; Alcala B., Arreaza L., Salcedo C., Uria M.J., De La Fuente L., V zques L.A. Capsule switching among C:2b:P1.2,5 meningococcal epidemic strains after mass immunization campaign, Spain. Emerg. Infect. Dis. 2002; V.8: 1512 - 1514.; Ibarz-Pav n A.B., MacLennan J., Andrews N.J., Gray S., Urwin R., Clarc S.C., Walker A.M., Evans M.R., Kroll J.S., Neal K.R. et al. Changes in serogroup and genotype prevalence among carried meningococci in the United Kingdom during vaccine implementation. J. Infect. Dis. 2011; 204: 1046 - 1053.; Vincente D., Esnal O., de Goicoechia J.L., Cisterna R., P rez-Trallero E. Influence of two vaccination campaigns on genetic diversity of invasive Neisseria meningitidis isolates in Nothern Spain (1997 - 2008). PloS one. 2009; 4. Iss. 12. e8501; Block S.L., Szenborn L., Daly N., Jackowska T., D Agastorn D., Han L., et al. A comparative evaluation of two investigational meningococcal ABCWY vaccine formulations: results of a phase 2 randomized controlled trial. Vaccine. 2015; 33 (21): 2500 - 2510.; Weynants V., Deho l P., Devos N., Janssens D., Feron C., Goraj K., Momin P, Monnom D., Tans C., Vandercammen A. et al. Genetically modified L3,7 and L2 lipoolygosaccharides from Neisseria meningitidis serogroup B confer a broad cross-bactericidal response. Infect. Immun. 2009; 87: 2084 - 2093.; Hung M.-C., Heckels J.E., Christodoulides M. Adhesin complex protein (ACP) of Neisseria meningitidis is a new adhesin with vaccine potential. mBIO. 2013; 4; Iss. 2. e00041-13; Peak J.R., Srikhanta J.N., Weynants V.E., Feron Ch., Poolman J.V. Jennings M.N. Evaluation of truncated NhhA protein as a candidate meningicoccal vaccine antigen. PloS one. 2013; V.8; Iss. 9. e72003; Lewis L.A., Ngampasutadol J., Wallace R., Reid J.E.A., Vogel U., Ram S. The meningococcal vaccine candidate neisserial surface protein A (NspA) binds to factor H and enhances meningococcal resistance to complement. PloS pathogens. 2010; 6; Iss. 7. e10001027; Halperin S.A., Langley J.M., Smith B., Wunderli P., Kaufman L., Kimura A., Martin D. Phase 1 first-in-human studies of the reactogenicity and immunogenicity of a recombinant meningococcal NspA vaccine in healthy adults. Vaccine. 2007; 25: 450 - 475.; Li Y., Sun Y.-H., Ison C., Levine M., Tang Ch.M. Vaccination with attenuated Neisseria meningitidis strains protects against challenge with live meningococcci. Infect. Immun. 2004; 72 (1): 345 - 350.; Bennet J.S., Calligan M.J., Derrich J.P., Maiden M.C.J. Variation of the Neisseria lactamica porin and its relationship to meningococcal PorB. Microbiology. 2008; 154: 1525 - 1534.; Evans C.M., Prett C.B., Matheson M., Vaughan T.E., Findlow J., Borrow R., Gorringe A.R., Read R.C. Nasopharyngeal colonization by Neisseria lactamica and induction of protective immunity against Neisseria meningitidis. Clin. Infect. Dis. 2011; 52 (1): 70 - 77.; Костюкова Н.Н., Бахаев Ю.П., Беломестных Е.Л., Дуплищева В.А., Кирпичникова Е.Н., Кузмин Ю.К. и др. Опыт массовой вакцинопрофилактики менингококковой инфекции среди детей. В кн.: Острые менингиты. Москва. 1982: 31 - 37; Костюкова Н.Н., Бехало В.А., Чернышева Т.Ф. Менингококковая инфекция в России - прошлое и ближайшие перспективы. Эпидемиол. инфекц. бол. Актуальные вопросы. 2014; 2: 73 - 79.; Королева И.С., Белошицкий Г.В., Королева М.А., Закроева И.М., Спирихина Л.В., Миронов К.О., Шипулин Г.А. Менингококковая инфекция и гнойные бактериальные менингиты в Российской Федерации: десятилетнее эпидемиологическое наблюдение. Эпидемиол. инфекц. бол. Актуальные вопросы. 2013; 2: 14 - 20.; Санитарно-эпидемиологические правила СП.3.1.2.2512-09. Профилактика менингококковой инфекции.; Приказ Министерства здравоохранения от 21 марта 2014 г. № 125н: Об утверждении национального календаря прививок и профилактических прививок по эпидемиологическим показаниям.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/184

الاتاحة: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/184
https://doi.org/10.31631/2073-3046-2016-15-4-64-73

المؤلفون: Kostyukova, N. Yu.¹ (AUTHOR) n.duhovnikova@gmail.com, Erushin, E. Yu.¹ (AUTHOR), Boyko, A. A.¹ (AUTHOR), Kolker, D. B.¹ (AUTHOR)

المصدر: Instruments & Experimental Techniques. Dec2022, Vol. 65 Issue 6, p934-941. 8p.

مصطلحات موضوعية: *BRAGG gratings, *OPTICAL parametric oscillators, *LITHIUM niobate, *REFLECTANCE, *RADIATION sources, *QUALITY factor

المؤلفون: Boyko, A. A., Kostyukova, N. Yu., Erushin, E. Yu., Miroshnichenko, I. B., Kolker, D. B.

المصدر: Russian Physics Journal ; volume 64, issue 8, page 1517-1521 ; ISSN 1064-8887 1573-9228

الاتاحة: http://dx.doi.org/10.1007/s11182-021-02485-1
https://link.springer.com/content/pdf/10.1007/s11182-021-02485-1.pdf
https://link.springer.com/article/10.1007/s11182-021-02485-1/fulltext.html

المؤلفون: Erushin, E, Nyushkov, B, Ivanenko, A, Akhmathanov, A, Shur, V, Boyko, A, Kostyukova, N, Kolker, D

المصدر: Laser Physics Letters ; volume 18, issue 11, page 116201 ; ISSN 1612-2011 1612-202X

الاتاحة: http://dx.doi.org/10.1088/1612-202x/ac2585
https://iopscience.iop.org/article/10.1088/1612-202X/ac2585
https://iopscience.iop.org/article/10.1088/1612-202X/ac2585/pdf

المؤلفون: Tukhvatulin, A., Logunov, D., Gitlin, I., Shmarov, M., Kudan, P., Adzhieva, A., Moroz, A., Kostyukova, N., Burdelya, L., Naroditsky, B., Gintsburg, A., Gudkov, A.

مصطلحات موضوعية: PATTERN-RECOGNITION RECEPTORS,TOLL-LIKE RECEPTORS,NODL-RECEPTOR,TRANSCRIPTIONAL FACTOR NF-KB,PEPTIDOGLYCAN OF GRAM-NEGATIVE BACTERIA

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/a-in-vitro-and-in-vivo-study-of-the-ability-of-nod1-ligands-to-activate-the-transcriptional-factor-nf-kb
http://cyberleninka.ru/article_covers/14379458.png

المؤلفون: Романюк, О. Н., Обідник, М. Д., Романюк, О. В., Костюкова, Н. С., Романюк, А. Н., Обиднык, М. Д., Романюк, А. В., Romanyuk, O. N., Obidnuk, M. D., Romanyuk, A. V., Kostyukova, N. S.

مصطلحات موضوعية: архітектурна побудова, формування тривимірних зображень

وصف الملف: application/pdf

Relation: Інформатика, кібернетика та обчислювальна техніка; Особливості архітектурної побудови систем формування тривимірних зображень [Текст] / О. Н. Романюк, М. Д. Обідник, О. В. Романюк, Н. С. Костюкова // Наукові праці Донецького національного технічного університету. Серія "Інформатика, кібернетика та обчислювальна техніка". — 2010. — Вип. 12(165). — С. 87-93.; http://ir.lib.vntu.edu.ua/handle/123456789/3709; 004.925

الاتاحة: http://ir.lib.vntu.edu.ua/handle/123456789/3709