يعرض 1 - 20 نتائج من 104 نتيجة بحث عن '"I V Kim"', وقت الاستعلام: 0.72s تنقيح النتائج
  1. 1
    Academic Journal
  2. 2
    Academic Journal
  3. 3
    Academic Journal
  4. 4
    Academic Journal
  5. 5
    Academic Journal
  6. 6
    Academic Journal

    المؤلفون: N S Kuznetsov, V E Vanushko, I V Kim

    المصدر: Эндокринная хирургия, Vol 1, Iss 1, Pp 13-18 (2007)

    مصطلحات موضوعية: Surgery, RD1-811

    وصف الملف: electronic resource

  7. 7
    Academic Journal
  8. 8
    Academic Journal
  9. 9
    Academic Journal
  10. 10
    Academic Journal
  11. 11
    Academic Journal
  12. 12
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 2 (2024); 100-105 ; Овощи России; № 2 (2024); 100-105 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2375/1549; Quina F.H., Moreira J.P.F., Vautier-Giongo C., Rettori D., Rodrigues R., A. Freitas et al. Photochemistry of anthocyanins and their biological role in plant tissues. Pure Appl. Chem. 2009;81(9):1687-1694. doi:10.1351/PAC-CON-08-09-28.; Onslow M.W. The anthocyanin pigments of plants. Second ed. Cambrige: University Press; 2014.; Mierziak J., Kostyn K., Kulma A. Flavonoids as important molecules of plant interactions with the environment. Molecules. 2014;19(10):16240-16265. doi:10.3390/molecules191016240.; Kalita D., Jayanty S.S. Comparison of polyphenol content and antioxidant capacity of colored potato tubers, pomegranate and blueberries. J. Food Proc. Technol. 2014;(5):358. doi:10.4172/2157-7110.1000358.; Schieber A., Saldana M.A. Potato peels: a source of nutritionally and pharmacologically interesting compounds – a review. Food. 2009;3(2):23-29. https://doi.org/10.7939/R33T9DM0H.; Zhang Y., Jung C.S., De Jong W.S. Genetic analysis of pigmented tuber flesh in potato. Theor. Appl. Genet. 2009;119(1):143-150. doi:10.1007/s00122-009-1024-3.; Поливанова О.Б., Гинс Е.М. Антиоксидантная активность пигментированного картофеля (Solanum tuberosum L.), содержание антоцианов, их биосинтез и физиологическая роль. Овощи России. 2019;(6):84-90. doi:10.18619/2072-9146-2019-6-84-90. EDN ITVJJO.; Eichhorn S., Winterhalter P. Anthocyanins from pigmented potato (Solanum tuberosum L.) varieties. Food Res. Int. 2005;38(8/9):943-948. doi:10.1016/j.foodres.2005.03.011.; Козлова Л.Н., Пискун Г.И., Корзан А.А., Незаконова О.Б., Рядинская Е.А. Взаимосвязь между суммарной антиоксидантной способностью и морфологическими характеристиками клубней картофеля. Картофелеводство. 2020;27(2):37-41. EDN: LNBJEK.; Choi M.K., Park S.J., Eom S.H., Kang M.H. Anti-diabetic and hypolipidemic effects of purple-fleshed potato in streptozotocin-induced diabetic rats. Food Sci. Biotechnol. 2013; 22: 1-6. doi:10.1007/s10068-013-0231-5.; Kaspar K.L., Park J.S., Brown C.R., Mathison B.D., Navarre D.A., Chew B.P. Pigmented potato consumption alters oxidative stress and inflammatory damage in men. J. Nutr. 2011;141:108-111. doi:10.3945/jn.110.128074.; Lemos M.A., Aliyu M.M., Hungerford G. Influence of cooking on the levels of bioactive compounds in Purple Majesty potato observed via chemical and spectroscopic means. Food Chem. 2015;173:462-467. doi:10.1016/j.foodchem.2014.10.064.; Bellumori M., Innocenti M., Michelozzi M., Cerretani L., Mulinacci N. Coloured-fleshed potatoes after boiling: Promising sources of known antioxidant compounds. J. Food Composit. Anal.2017;59:1-7. doi:10.1016/j.jfca.2017.02.004.; Bellumori M., Nancy A., Silva Ch., Vilca L., Andrenelli L., Cecchi L. et al. A Study on the Biodiversity of Pigmented Andean Potatoes: Nutritional Profile and Phenolic Composition. Molecules. 2020;25(3169):1-17. doi:10.3390/molecules25143169.; Ezekiel R., Singh N., Sharma S., Kaur A. Beneficial phytochemicals in potato – a review. Food Res. Int. 2013;50:487-496. doi:10.1016/j.foodres.2011.04.025.; Мелешина О.В., Мелешин А.А. Создание картофеля с повышенной антиоксидантной активностью – перспективное направление в селекции современных сортов. В кн.: Материалы научно-практической конференции «Современное состояние и перспективы развития селекции и семеноводства картофеля». М. 2018. С. 129-139. EDN: XSIMQP.; Гинс Е.М., Москалев Е.А., Поливанова О.Б., Митюшкин А.В., Симаков Е.А. Оценка содержания веществ с антиоксидантной активностью в образцах картофеля коллекции исходных родительских форм Федерального исследовательского центра картофеля имени А.Г. Лорха. Вестник РУДН. Серия: Агрономия и животноводство. 2020;15(3):242-252. doi:10.22363/2312-797X-2020-15-3-242-252. EDN: IHYMLA.; Tian J., Chen J., Ye X., Chen S. Health benefits of the potato affected by domestic cooking : a review. Food Chem. 2016;202:165-175. doi:10.1016/j.foodchem.2016.01.120.; Стрыгина К.В., Хлесткина Е.К. Синтез антоцианов у картофеля (Solanum tuberosum L.): генетические маркеры для направленного отбора. Сельскохозяйственная биология. 2017;52(1):37-49. doi:10.15389/agrobiology.2017.1.37rus. EDN: YFQFCR.; Feller A., Machemer K., Braun E.L., Grotewold E. Evolutionary and comparative analysis of MYB and bHLH plant transcription factors. Plant J. 2011;66(1) 94-116. doi:10.1111/j.1365-313X.2010.04459.x.; Andre C.M., Ourfir M., Guignard C., Hoffman L., Hausman J.F., Evers D. et al. Antioxidant profiling of native Andean potato tubers (Solanum tuberosum L.) reveals cultivars with high levels of beta-carotene, alpha-tocopherol, chlorogenic acid, and petanin. J. Agric. Food Chem. 2007;55(26):10839-10849. doi:10.1021/jf0726583.; Симаков Е.А., Митюшкин А.В., Журавлев А.А., Митюшкин Ал-др В., Гайзатулин А.С. Сравнительная оценка исходного материала картофеля в селекции на повышение питательной ценности клубней. Картофелеводство. 2020;27(2):30-36.; Ким И.В., Клыков А.Г. Перспективы развития картофелеводства на Дальнем Востоке. Вестник Дальневосточного отделения Российской академии наук. 2018;3(199):12-15. EDN: VPWXQW.; Lewis C.E., Walker J.R.L., Lancaster J.E., Sutton K.H. Determination of anthocyanins, flavonoids and phenolic acids in coloured potatoes. I: Coloured cultivars of Solanum tuberosum L. J. Sci. Food Agric. 1998;77(1):45-57. doi:10.1002/(SICI)1097-0010(199805)77:13.0.CO;2-S; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2375

  13. 13
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 2 (2024); 21-26 ; Овощи России; № 2 (2024); 21-26 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2362/1538; Zhou T., King Q., Huang J., Dai R., Li Q. Characterization of nutritional components and utilization of pumpkin. Food. Global Science books. 2007;1(2):313-321.; Корнилова М.С., Курунина Д.П., Варивода Г.В. Создание конкурентоспособных сортов дыни и тыквы с ценными хозяйственными признаками. Овощи России. 2021;(6):36-41. doi:10.18619/2072-9146-2021-6-36-41. EDN: TMSUZO.; Sharma S. Rao Nutritional quality characteristics of pumpkin fruit as revealed by its biochemical analysis. International Food Research Journal. 20(5):2309-2316. 2013;20(5):2309-2316.; Рядинская А., Кощаева О. Использование продуктов переработки тыквы. Комбикорма. 2019;(2):56-58. doi:10.25741/2413-287X-2019-02-3-045. EDN: VVBNXB.; Немтинов В.И., Констанчук Ю.Н., Сейтумеров Э. И. Пути развития семеноводства овощебахчевых культур и картофеля в Крыму. Известия сельскохозяйственной науки Тавриды. 2015;2(165):15-24. EDN: WFDTTB.; Коротцева И.Б. Основные направления и задачи селекции тыквенных культур ФГБНУ «Федеральный научный центр овощеводства». Овощи России. 2022;(4):5-10. doi:10.18619/2072-9146-2022-4-5-10. EDN: EPRGYQ.; Хлебородов А.Я., Почицкая И.М., Провоторова О.С., Юденко А.Н. Корреляции хозяйственно биологических признаков твердокорой тыквы (Cucurbita pepo L.). Овощеводство. 2021;(29):211-221.; Масленникова Е.С., Варивода Е.А. Изучение селекционно значимых признаков межсортовых гибридов тыквы крупноплодной Cucurbita maxima и тыквы мускатной Cucurbita moschata. Овощи России. 2022;(5):54-57. doi:10.18619/2072-9146-2022-5-54-57. EDN: NYVVDG.; Артемьева А.М., Пискунова Т.М., Гашкова И.В., Хмелинская Т.В., Храпалова И.А., Агеева Т.Т., Тайпакова А.А., Киселева Н.А., Мамырбеков Ж.Ж. Местные сорта овощных и бахчевых культур Казахстана в коллекции ВИР как источники для селекции. Овощи России. 2018;(3):60-66. doi:10.18619/2072-9146-2018-3-60-66. EDN: XTXEIX.; Пивоваров В.Ф., Солдатенко А.В., Пышная О.Н., Гуркина Л.К., Науменко Т.С. Селекция – основа импортозамещения в отрасли овощеводства. Овощи России. 2017;(3):3-15. doi:10.18619/2072-9146-2017-3-3-15. EDN: ZBHGEB.; Сакара Н.А., Бардина Н.В. Улучшение основных показателей тыквы крупноплодной сорта-популяции Бананная 42 в Приморском крае. Картофель и овощи. 2022;(8):29-31. DOI:10.25630/PAV.2022.23.35.006. EDN: OHVUCV.; Жученко А.А. Экологическая генетика культурных растений. Адаптация, рекомбиногенез, агробиоценоз. Кишинев: Штиинца, 1980. 588 с.; Селекция бахчевых культур : метод. указания. сост. Т.Б. Фурса, М.И. Малинина, Л.М. Юлдашева и др. ВАСХНИЛ. ВИР. Л. : ВИР. 1988. 78 с.; Положение о производстве семян элиты овощных, бахчевых культур, кормовых корнеплодов и кормовой капусты. Сост. В.Ф. Пивоваров, Л.В. Павлов, М.С. Бунин. М., 2000. 24 с.; Литвинов С.С. Методика полевого опыта в овощеводстве. Россельхозакадемия. ВНИИО. М. 2011. 648 с.; Доспехов Б.А. Методика полевого опыта: (с основами статистической обработки результатов исследований). 4-е изд., перераб. и доп. М.: Колос. 1979. 416 с.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2362

  14. 14
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 1 (2024); 74-80 ; Овощи России; № 1 (2024); 74-80 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2334/1532; Alegbeleye O., Odeyemi O.A, Strateva M., Stratev D. Microbial spoilage of vegetables, fruits and cereals. Appl. Food Res. 2022;2(1):100122. DOI:10.1016/j.afres.2022.100122.; Shahzad A., Sharma S., Parveen S. Historical perspective and basic principles of plant tissue culture. Plant Biotechnology: principles and applications. 2017; Springer: Singapore: 1-36.; Hameed A., Mehmood M.A., Shahid M., Fatma S., Khan A., Ali S. Prospects for potato genome editing to engineer resistance against viruses and cold-induced sweetening. GM Crops Food. 2020;(11):185-205. DOI:10.1080/21645698.2019.1631115.; Игнатов А.Н., Панычева Ю.С., Воронина М.В., Васильев Д.М., Джалилов Ф.С.-У. Динамика видового состава патогенов картофеля в европейской части РФ. Картофель и овощи. 2019;(9):28-32. DOI:10.25630/PAV.2019.57.62.003. EDN BLIXJR.; Панычева Ю.С., Васильев Д.М., Супрунова Т.П., Сахарова А.Н., Игнатов А.Н. Динамика поражения сортов картофеля вирусом Y в полевых условиях. Картофель и овощи. 2019;(5):25–29. DOI:10.25630/PAV.2019.45.82.006. EDN YDIQDQ.; Rojas M.R., Gilbertson R.L. Emerging Plant Viruses: a Diversity of Mechanisms and Opportunities. Plant Virus Evolution. 2008. P.27-51. Springer-Verlag Berlin: Heidelberg.; Kolychikhina M.S., Beloshapkina O.O., Phiri C. Change in potato productivity under the impact of viral diseases. IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science. 2021;663(1):012035. DOI:10.1088/1755-1315/663/1/012035.; Kumar R., Jeevalatha A. Viral diseases and their management in potato production. Summer School on «Current Trends in Quality Potato Production, Processing & Marketing». 2014. CPRI: Shimla: P.115-127.; Zvereva A.S., Pooggin M.M. Silencing and Innate Immunity in Plant Defense Against Viraland Non Viral Pathogens. Viruses. 2012;(4):2578-2597. DOI:10.3390/v4112578.; Brown J.K.M., Tellier A. Plant-Parasite Coevolution: Bridging the Gap between Genetics and Ecology. Annu. Rev. Phytopathol. 2011;(49):345-367. DOI:10.1146/annurev-phyto-072910-095301.; Whitfield A.E., Falk B.W., Rotenberg D. Insect vector-mediated transmission of plant viruses. Virology. 2015;(479-480):278-289. DOI:10.1016/j.virol.2015.03.026.; Cunniffe N.J., Taylor N.P., Hamelin F.M., Jeger M.J. Epidemiological and ecological consequences of virus manipulation of host and vector in plant virus transmission. PLoS Comput Biol. 2021;17(12):e1009759. DOI:10.1371/journal.pcbi.1009759.r001.; Дьяконов К.П., Волков Ю.Г., Какарека Н.Н., Романова С.А. Взаимоотношения в системе "вирус - вектор - агробиоценоз". Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2005;(3):107-115. EDN HVJGHT.; Yvon R., Danièle B. Aphid Transmission of Potato Viruses. Virus and Virus-like Diseases of Potatoes and Production of Seed-Potatoes. 2001; Springer Nature: Switzerland. P.195-225. DOI:10.1007/978-94-007-0842-6.; Giner A., Lakatos L., García-Chapa M., López-Moya J.J., Viral J.B. Protein Inhibits RISC Activity by Argonaute Binding through Conserved WG/G.W Motifs. PLoS Pathog. 2010;6(7):e1000996. DOI:10.1371/journal.ppat.1000996.; Malko A., Frantsuzov P., Nikitin M., Statsyuk N., Dzhavakhiya V., Golikov A. Potato Pathogens in Russia’s Regions: An Instrumental Survey with the Use of Real-Time PCR/ RT-PCR in Matrix Format. Pathogens. 2019;8(1):18. DOI:10.3390/pathogens8010018.; Bragard C., Dehnen-Schmutz K., Gonthier P., Jacques M.-A.,. Miret J.A.J, Justesen A.F. et al. Pest categorisation of potato virus M (non-EU isolates) / EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health). EFSA Journal. 2020;18(1):5854. DOI:10.2903/j.efsa.2020.5854.; Bragard C., Dehnen-Schmutz K., Gonthier P., Jacques M.-A., Miret J.A.J., Justesen A.F. et al. Pest categorisation of potato virus S (non-EU isolates) / EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health). EFSA Journal. 2020;18(1):5855. DOI:10.2903/j.efsa.2020.5855.; Bragard C., Dehnen-Schmutz K., Gonthier P., Jacques M.-A., Miret J.A.J., Justesen A.F. et al. Pest categorisation of potato virus X (non-EU isolates) / EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health). EFSA Journal. 2020;18(1):5937. DOI:10.2903/j.efsa.2020.5937.; Bragard C., Dehnen-Schmutz K., Gonthier P., Jacques M.-A., Miret J.A.J., Justesen A.F. et al. Pest categorisation of potato virus Y (non-EU isolates) / EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health). EFSA Journal. 2020;18(1):5938. DOI:10.2903/j.efsa.2020.5938.; Bragard C., Dehnen-Schmutz K., Gonthier P., Jacques M.-A., Miret J.A.J., Justesen A.F. et al., Pest categorisation of potato virus A (nonEU isolates) / EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health). EFSA Journal. 2020;18(1):5935. DOI:10.2903/j.efsa.2020.5935.; Fingu-Mabola Ju.C., Francis F. Aphid–Plant–Phytovirus Pathosystems: Influencing Factors from Vector Behaviour to Virus Spread. Agriculture. 2021;11(6):502. DOI:10.3390/agriculture11060502.; Kakabayev A., Suraganov M., Abdurahmanov I., Belgibayeva A., Kakabayev N., Auzhanova M, Sharipova B. The yield of elite potato varieties for primary seed production using precision agriculture technologies in the conditions of Northern Kazakhstan. E3S Web of Conferences. 2023;(386):03001. DOI:10.1051/e3sconf/202338603001.; Wu C., Ma H., Fang X., Liu R., Shi X., Zhang K. et al., Differences in Dry Matter Accumulation and Distribution Patterns between Pre-Elite Seed and Certified Seed of Virus-Free Potato. Horticulturae. 2023;(9):644. DOI:10.3390/horticulturae9060644.; Жевора С.В., Федотова Л.С., Старовойтов В.И. Методика проведения агротехнических опытов, учетов, наблюдений и анализов на картофеле. ФГБНУ ВНИИКХ. М.: ФГУП "Издательство "Наука", 2019. 120 с. ISBN 978-5-901282-26-7. EDN DMROXP.; Ануфриев Г.А., Винокуров Н.Н., Голуб В.Б. Определитель насекомых Дальнего Востока СССР. Т II: Равнокрылые и полужосткокрылые. Л.: Наука. 1988. 972 с. EDN TMSAYL.; Грачев В.Г., Дубровин Н.Н., Егоров А.Б. Определитель насекомых Дальнего Востока СССР. Т. III, ч. 2: Жесткокрылые или жуки. СПб.: Наука. 1992. 704 с.; Стороженко С.Ю., Кузнецов В.Н. Насекомые – вредители сельского хозяйства Дальнего Востока. Владивосток: Дальнаука. 1995. 276 с.; Bock C.H., Poole G.H., Parker P.E., Gottwald T.R. Plant Disease Severity Estimated Visually, by Digital Photography and Image Analysis, and by Hyperspectral Imaging. Critical Reviews in Plant Sciences. 2010;29(2):59-107. DOI:10.1080/07352681003617285.; Kreuze J.F., Souza-Dias J.A.C., Jeevalatha A., Figueira A.R., Valkonen J.P.T., Jones R.A.C. Viral Diseases in Potato. The Potato Crop. 2020; Springer Nature. P.389-430. DOI:10.1007/978-3-030-28683-5_11.; Yardımci N., Çulal Kılıç H., Özdemir T. Detection of PVY (potato y potyvirus), on potato cultivars using biological and molecular methods growing in south-west turkey. J. Anim. Plant Sci. 2014;24(5):1525-1530.; Khamphirapaeng P., Cheewangkoon R., McGovern R.J., Wong S.- M., To-Anun C. Detection of Tobacco mosaic virus in Petunia and Tobacco by light microscopy using a simplified inclusion body staining technique. J. Agr. Techn. 2017;13(2):163-168.; Sobko O.A., Fisenko P.V., Kim I.V., Matsishina N.V. Potato viruses of 7 commercial cultivars grown in field Primorsky Krai of Russia. Vegetable Crops of Russia. 2022;(1):79-85. DOI:10.18619/2072-9146-2022-1-79-85. EDN DINLHG.; Ермак М.В., Мацишина Н.В. Картофельная коровка Henosepilachna vigintioctomaculata (Motsch.): систематика, морфология и её вредоносность (литературный обзор). Овощи России. 2022;(6):97-103. DOI:10.18619/2072-9146-2022-6-97-103. EDN RVRLJD.; Shah M.A., Kumar R., Kaundal P., Sharma S. Prevalence of Natural Infection of Potato Viruses in Weeds and Other Crops. J. Mycol. Pl. Pathol. 2020;50(1):105-109.; Sobko O.A., Matsishina N.V., Fisenko P.V., Kim I.V., Didora A.S., Boginskay N.G., Volkov D.I. Viruses in the agrobiocenosis of the potato fields. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2021;(677):52093. DOI:10.1088/1755-1315/677/5/052093; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2334

  15. 15
    Academic Journal
  16. 16
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 3 (2023); 5-9 ; Овощи России; № 3 (2023); 5-9 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2176/1464; Семеноводство картофеля в России: инновационные технологии, регламенты качества, новые перспективные сорта: монография. Владикавказ. 2022. С. 5-17.; Симаков Е.А. Конкурентоспособность новых сортов картофеля российской селекции. Аграрная политика. 2020;9(31):58-63. EDN KYXTUL.; Landrum J., Bone R. Lutein, zeaxanthin and macular pigment. Arch. Biochem. 2001;(385):28-40.; Brawn C.R., Wrolstadt R., Durst C.P. Breeding studies in potato containing high concentraitions of anthocyanins. Am. Potato J. 2003;(8):241-250.; Пыльнев В.В., Березкин А.Н. Основы селекции и семеноводства. Санкт-Петербург: Лань. 2022. 216 с.; Молявко А.А., Еренкова Л.А., Антощенко Ф. Е., Свист В.Н. Селекция и размножение сортов картофеля на Брянщине. Картофелеводство: Сборник научных трудов. Материалы координационного совещания и научно-практической конференции, посвященной 120-летию со дня рождения А.Г. Лорха / Рос. акад. с.-х. наук, Всерос. НИИ картоф. хозва; под ред Е.А. Симакова. М. 2009. С. 112-116.; Новоселов А.К., Новоселова Л.А., Ильяшик Т.М., Волик Н.М. Результаты практической селекции картофеля в Приморском. Картофелеводство: сбор. Науч. Статей, под ред. Е.А. Симакова. М., 2011. С. 123-127.; Методические указания по технологии селекционного процесса картофеля / сост. Е.А Симаков, Н.П. Скляров, И.М. Яшина. М.: ВНИИКХ. 2006. 72 с.; Методика селекционных работ до 2010 г. по созданию высокопродуктивных, комплексно-ценных сортов зерновых, сои, многолетних трав, картофеля, овощей и плодово-ягодных культур в зоне Дальнего Востока/ ВАСХНИЛ. Сиб. отд-ние, ДальНИИСХ. Дальневост. селекцентр. Новосибирск, 1990. 208 с.; Ягодин Б.А. и др. Практикум по агрохимии. М.: Агропромиздат, 1987. С. 197-198.; Доспехов Б.А. Методика полевого опыта: (с основами статистической обработки результатов исследований). М.: Колос. 1985. 416 с.; Пшеченков К.А., Давыденкова О.Н., Седова В.И. Методические указания по оценке сортов картофеля на пригодность к переработке и хранению / изд. 2-ое, перераб. и доп. М., ВНИИКХ. 2008. 39 с.; Методические указания по поддержанию и изучению мировой коллекции картофеля / сост. С.Д. Киру, Л.И. Костина, Э.В. Трускинов, Н.М. Зотеева и др. СПб.: ВИР, 2010. 32 с.; Методика проведения агротехнических опытов, учётов, наблюдений и анализов на картофеле / сост. С.В. Жевора, Л.С. Федотова, В.И. Старовойтов, В.Н. Зейрук, А.В. Коршунов, К.А. Пшеченков, Н.А. Тимошина, С.В. Мальцев, О.А. Старовойтова, С.В. Васильева, С.В. Васильева, А.Э. Шабанов, М.К. Деревягина, Г.Л. Белов, А.И. Киселев, Е.В. Князева М.: ФГБНУ ВНИИКХ, 2019. 120 с.; Симаков Е.А. Сорта картофеля российской селекции. Москва. 2018. 120 с.; Вознюк В.П., Ким И.В., Корнилова Т.О., Мороз А.А. Характеристика перспективных генотипов картофеля селекции ФНЦ агробиотехнологий Дальнего Востока им. А.К. Чайки в условиях муссонного климата Приморского края. Вестник ДВО РАН. 2022;3(223):49-60. DOI 10.37102/0869-7698_2022_223_03_5. EDN HLBQDS.; Росс Х. Селекция картофеля: проблемы и перспективы. М.: ВО Агропромиздат. 1989. 183 с.; Анисимов Б.В., Симаков Е.А. Картофель как продукт питания и его роль в здоровой диете современного человека. Селекция и семеноводство картофеля (монография). Чебоксары. 2020. С.6-14.; Волков Д.И., Ким И.В., Гисюк А.А., Клыков А.Г. Оценка клубней сортов картофеля на содержание редуцирующих сахаров и лежкость. Дальневосточный аграрный вестник. 2021;1(57):5-13. DOI 10.24412/1999-6837-2021-1-5-13. EDN YZYJHN.; Ramakrishnan A.P., Ritland C.E., Blas Sevillano R.H., Riseman A.A. Review of Potato Molecular Markers to Enhance Trait Selection. Amer. J. Potato Res. 2015;(92):455-472.; Simakov E., Anisimov B., Yashina L., Uskov A., Yurlova S., Oves E. Potato breeding and seed production system development in Russia. Potato Research. 2008;(51):313-326.; Методическое положение по оценке продуктивности и столовых качеств картофеля (кулинарный тип), /ФГБНУ ВНИИКХ; А.Э. Шабанов, Б.В. Анисимов, А.И. Киселев, Н.П. Попова, Т.И. Долгова, О.В. Малютин. М., 2017. 20 с.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2176

  17. 17
    Academic Journal

    المصدر: Marine Medicine; Том 9, № 1 (2023); 32-38 ; Морская медицина; Том 9, № 1 (2023); 32-38 ; 2587-7828 ; 2413-5747

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://seamed.bmoc-spb.ru/jour/article/view/623/553; Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Бургасова О.А., Кружкова И.С., Малеев В.В. COVID-19: этиология, клиника, лечение // Инфекция и иммунитет. 2020. Т. 10, № 3. С. 421–445. doi:10.15789/2220-7619-CEC-1473.; Мурашко М.А. Первая пандемия цифровой эпохи: уроки для национального здравоохранения // Национальное здравоохранение. 2020. № 1. С. 4–8.; Kursumovich E. Lennane S., Cook T. Deaths in healthcare workers due to COVID-19: the need for robust data and analysis. Anaesthesia. 2020. № 75. pp. 989–992.; Treibel T.A., Manisty C., Burton M., McKnight Á., Lambourne J., Augusto J.B., Couto-Parada X., Cutino-Moguel T., Nour-sadeghi M., Moon J.C. COVID-19: PCR screening of asymptomatic health-care workers at London hospital. Lancet. 2020, Vol. 10237, № 395, pp. 1608–1610.; Wang X., Liu W., Zhao J., Lu Y., Wang X., Yu C., Hu S., Shen N., Liu W., Z. Sun, W. Li Clinical characteristics of 80 hospitalized frontline medical workers infected with COVID-19 in Wuhan, China. Journal of Hospital Infection. 2020, Vol. 105, № 3, рр. 399–403.; Брико Н.И., Каграманян И.Н., Никифоров В.В., Суранова Т.Г., Чернявская О.П., Полежаева Н.А. Пандемия COVID-19. Меры борьбы с ее распространением в Российской Федерации // Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2020. Т. 19, № 2. C. 4–12. doi:10.31631/2073-3046-2020-19-2-4-12; Сизоненко Н.А., Барсукова И.М., Балюра О.В. Влияние ограничительных мероприятий на показатели работы многопрофильных стационаров Санкт-Петербурга по оказанию неотложной хирургической помощи пациентам с острой хирургической патологией органов брюшной полости в 2020 году // Национальные проекты: новое качество жизни для всех поколений. Ульяновск: И.П. Петрова, 2021, С. 70.; Барсукова И.М., Хоминец В.В., Тявокина Е.Ю., Степанова М.Н., Ким И.В. Коечный фонд страны в эпоху пандемии // VI неделя образования в Елизаветинской больнице. Сборник трудов многопрофильного медицинского форума. Москва. 2022. С. 4–6. EDN: IOOYNY.; Махновский А.И., Барсукова И.М., Стожаров В.В. Структура повторной госпитализации пациентов после обследования и лечения на койках скорой медицинской помощи в условиях пандемии COVID-19 // Скорая медицинская помощь. 2022. Т. 23, № 1. С. 4–10. doi 10.24884/2072-6716-2022-23-1-4-10. EDN SYZECS; Хоминец В.В., Барсукова И.М., Лукогорская Н.Н. Особенности работы стационаров в современных условиях // Джанелидзевские чтения – 2023: Сборник научных трудов научно-практической конференции, Санкт-Петербург, 01–03 марта 2023 года. Санкт-Петербург: Государственное бюджетное учреждение «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт скорой помощи им. И.И. Джанелидзе”, 2023. С. 222–224; https://seamed.bmoc-spb.ru/jour/article/view/623

  18. 18
    Academic Journal
  19. 19
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 4 (2022); 33-39 ; Овощи России; № 4 (2022); 33-39 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2004/1381; Buléon A., Colonna P., Planchot V., Ball S. Starch granules: structure and biosynthesis. Int. J. Biol. Macromol. 1998;23(2):85-112. DOI:10.1016/s0141-8130(98)00040-3; Hancock R.D., Tarbet B.J. The other double helix – the fascinating chemistry of starch. J. Chem. Educ. 2000;77:988-992. DOI: http://dx.doi.org/10.1021/ed077p988.; Nakamura Y. Towards a better understanding of the metabolic system for amylopectin biosynthesis in plants: rice endosperm as a model tissue. Plant Cell Physiol. 2002;43:718-725. DOI: https://doi.org/10.1093/pcp/pcf091.; James M.G., Denyer K., Myers A.M. Starch synthesis in the cereal endosperm. Curr. Opin. Plant Biol. 2003;6:215-222. DOI: https://doi.org/10.1016/S1369-5266(03)00042-6.; Sakamoto W., Miyagishima S.Y., Jarvis P. Chloroplast biogenesis: control of plastid development, protein import, division and inheritance. Arab. Book. 2008;6.e0110. DOI:10.1199/tab.0110.; Fajardo D., Haynes K.G. Jansky S. Starch Characteristics of Modern and Heirloom Potato Cultivars. Am. J. Potato Res. 2013; 90: 460–469. DOI: https://doi.org/10.1007/s12230-013-9320-5.; Matsushima R., Maekawa M., Fujita N., Sakamoto W. A rapid, direct observation method to isolate mutants with defects in starch grain morphology in rice. Plant Cell Physiol. 2010;51:728-741. DOI:10.1093/pcp/pcq040.; Harz C.O. Beiträge zur systematik der Gramineen. Linnaea. 1880;43(9):1- 30. 9. Tateoka T. On the systematic significance of starch grains of seeds in Poaceae. J. Jap. Bot. 1954;29:341-347.; Tateoka T. Further studies on starch grains of seeds in Poaceae from the view point of systematic. J. Jap. Bot. 1955;30:199-208.; Czaja A.T. Structure of starch grains and the classification of vascular plant families. Taxon. 1978; 7(5-6):463-470. DOI: https://doi.org/10.2307/1219895.; Jane J.-L., Kasemsuwan T., Leas S. et al. Anthology of starch granule morphology by scanning electron microscopy. Starch-Starke. 1994;46(4):121- 129. DOI: https://doi.org/10.1002/star.19940460402.; Shapter F.M., Henry R.J., Lee L.S. Endosperm and starch granule morphology in wild cereal relatives. Plant Genet. Res. 2008;6:85-97. 14. Tateoka T. Starch grains of endosperm in grass systematic. Bot. Mag. Tokyo. 1962;75(892):377-383. DOI: https://doi.org/10.15281/jplantres1887.75.377.; Barker N.P., Clark L.G., Davis J.I. et al. Phylogeny and subfamilial classification of the grasses (Poaceae). Ann. Missouri Bot. Garden. 2001;88(3):373-457. DOI: https://doi.org/10.2307/3298585.; Cabálková J., Přibyl J., Skládal P., Kulich P, Chmelík J. Size, shape and surface morphology of starch granules from Norway spruce needles revealed by transmission electron microscopy and atomic force microscopy: effects of elevated CO2 concentration. Tree Physiology. 2008;28(10):1593-1599. DOI: https://doi.org/10.1093/treephys/28.10.1593.; Psota V., Bohaèenko I., Hartmann J. Budinská M. ,Chmelík J. Comparison of the GFFF and LALLS methods for the measurement of starch granule size distribution in spring barley caryopses. J. Inst. Brew. 2002;108(2):200-203. DOI: https://doi.org/10.1002/j.2050-0416.2002.tb00541.x.; Belitz H.-D., Grosch W., Schieberle P. Food Chemistry. 4th revis. expand. ed. Leipzig: Springer-Verlag, 2009. 1070 p.; Pérez S., Bertoft E. The molecular structures of starch components and their contribution to the architecture of starch granules: a comprehensive review. Starch/Starke. 2010;62(8):389-420. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/star.201000013.; Sjöö M.E., Eliasson A.-C., Autio K. Comparison of Different Microscopic Methods for the Study of Starch and Other Components within Potato Cells. Food. 2009;3(Special Is. 1):39-44.; Jagadeesan S., Govindaraju I., Mazumder N. Insight into the Ultrastructural and Physiochemical Characterization of Potato Starch: A Review. Am. J. Potato Res. 2020;97:464-476. DOI: https://doi.org/10.1007/s12230-020-09798-w.; Литвяк В.В., Заболотец А.А., Симаков Е.А., Митюшкин А.В., Журавлев А.А., Костенко В.Г. Особенности морфологической структуры гранул крахмала различных сортов картофеля. Достижения науки и техники АПК. 2019;33(11):55-59. EDN: THPMQH. DOI:10.24411/0235-2451-2019- 11112; Li X.-Q., Zhang, J. Luo S., Liu G., Murphy A., Leclerc Y., Xing T. Effects of sampling methods on starch granule size measurement of potato tubers under a light microscope. Int. J. Plant Biol. 2011;2:14-18. DOI: http://dx.doi.org/10.4081/pb.2011.e5; Хлесткин В.К., Эрст Т.В. Практическое руководство по оценке морфологии гранул картофельного крахмала методом микроскопирования. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2017.21.(6):728-734. DOI:10.18699/VJ17.290; The new and improved Countess® II FL Automated Cell Counter. https://www.thermofisher.com/ru/ru/home/references/newsletters-and-journals/bioprobes-journal-of-cell-biology-applications/bioprobes-70/countess-iifl-automated-cell-counter.html; Moroney M.J. Facts from figures. 3rd ed. Harmondsworth. Middlesex: Penguin Books Ltd., 1956. 472 p.; Eliasson A.C. Starch in food: structure, function and application. Cambridge: Woodhead Publishing ltd, 2004. 590 p. 28. Volkov D., Kim I. Klykov A., Matsishina N. Comparative Evaluation of Different Potato Varieties for Their Suitability for Starch Processing. Lecture Notes in Networks and Systems. 2022;353:443-45; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2004

  20. 20
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 5 (2022); 29-34 ; Овощи России; № 5 (2022); 29-34 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2029/1394; Рябцева Т.В., Куликова В.И., Илькевич О.Г. Оздоровление картофеля методом химиотерапии в культуре in vitro. Международный научноисследовательский журнал. 2015;10(41)3:66-68. https://doi.org/10.18454/IRJ.2015.41.127; Симаков Е.А., Анисимов Б.В., Жевора С.В., Митюшкин А.В., Журавлев А.А., Митюшкин А.В., Гайзатулин А.С. Актуальные направления развития селекции и семеноводства картофеля в России. Картофель и овощи. 2020;(12):22-26. https://doi.org/10.25630/PAV.2020.49.70.005; Ким И.В., Клыков А.Г. Результаты и направления исследований по картофелеводству на Дальнем Востоке России. Достижения науки и техники АПК. 2017;(10):36-39.; Гнутова Р.В. Разнообразие вирусов растений в Восточно-азиатском регионе России: итоги 50-летнего изучения. Сельскохозяйственная биология. 2014;(5):16-27. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2014.5.16rus; Volkov Y.G., Kakareka N.N., Kozlovskaya Z.N., Balabanova L.A., Sapotskij M.V. Characterization of a Novel Far Eastern Potato Virus Y. Isolates. Plant Pathology Journal. 2009;8(2):62-67.; Плешакова Т.И. Мониторинг вирусных инфекций картофеля на юге Приморского края / Материалы II Международной научной конференции «Современные исследования в естественных науках», Владивосток, 26–28 августа 2015 г. [Электронный ресурс] / под общ. ред. В.А. Семаль; Электрон. дан. Владивосток: Изд-во Дальневост. ун-та, 2015. С.186-189. ISBN 978-5-906739-79-7; Овэс Е.В., Гаитова Н.А. Новые элементы технологии оздоровления и получения базовых клонов перспективных сортов и гибридов картофеля. Достижения науки и техники АПК. 2016;30(11):60-62.; Жевора С.В., Анисимов Б.В., Симаков Е.А., Овэс Е.В., Зебрин С.Н. Картофель: проблемы и перспективы. Картофель и овощи. 2019;(7):2-7.; Овэс Е.В., Гаитова Н.А., Шишкина О.А., Фенина Н.А. Результаты отбора базовых клонов картофеля в условиях европейского севера и высокогорья Северного Кавказа. Земледелие. 2020;(4):29-32.; Yang L., Nie B., Liu J., Song B. A Reexamination of the effectiveness of ribavirin on eradication of viruses in potato plantlets in vitro using ELISA and quantitative RTPCR. Am. J. Potato Res. 8 p. (published online 15 November 2013).; Gong H., Igiraneza C., Dusengemungu L. Major In Vitro Techniques for Potato Virus Elimination and Post Eradication Detection Methods. A Review. Am. J. Potato Res. 2019;(96):379–389. https://doi.org/10.1007/s12230-019-09720-; Яловик А.В., Федорова Ю.Н., Яловик Л.И. Эффективность действия химиотерапии на растениях картофеля в условиях in vitro. Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2019;10(180):28-33. EDN SWVPLP.; Беспалова Е.С., Агаханов М.М., Архимандритова С.Б., Ерастенкова М.В., Ухатова Ю.В. Оздоровление сортов картофеля из коллекции ВИР от вирусов. Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2020;181(4):164-172. https://doi.org/10.30901/2227-8834-2020-4-164-172; Cassells A.C., Long R.D. The elimination of potato viruses X, Y, S and M in meristem and explant cultures of potato in the presence of Virazole. Potato Res. 1982;(25):165-173.; Власов Ю.И., Ларина Э.И., Трускинов Э.В. Сельскохозяйственная фитовирусология СПб.- Пушкин: ВИЗР, 2016. 236 с.; Лапшинов Н.А., Куликова В.И., Рябцева Т.В. и др. Технология оздоровления и ускоренного размножения картофеля (методическое пособие). ФГБНУ «Кемеровский НИИСХ». Кемерово, 2014. 44 с.; Mahmoud S.Y.M., Hosseny M.H., Abdel-Ghaffar M.H. Evaluation of some therapies to eliminate Potato Y potivirus from potato plants. Int. J. Virol. 2009;5(2):64-76. https://doi.org/10.3923/ijv.2009.64.76; Bădărău C.L., Chiru N. Effect of some therapies on potato plantlets infected with potato virus X (PVX). Journal of EcoAgriTourism. 2014;10(1/28):11-17.; Система ведения агропромышленного производства Приморского края. РАСХН, ДВ НМЦ, ПримНИИСХ. Новосибирск. 2001. 364 с.; ГОСТ 33996-2016 Картофель семенной. Технические условия и методы определения качества. Введ. 2018.01-01. М.: Стандартинформ. 2017. 41 с.; Диагностика вирусов и бактериозов в процессе оздоровления и размножения семенного картофеля в оригинальном семеноводстве: метод. рекомендации. сост. В.И. Куликова и др.; Кемеровский НИИСХ. Кемерово, 2008. 36 с.; Bekesiova I., Nap J.-P., Mlynarova L. Isolation of high quality DNA and RNA from leaves of the carnivorous plant Drosera rotundifolia. Plant Mol. Biol. Rep. 1999;(17):269-277.; Барсукова Е.Н., Чекушкина Т.Н., Ким И.В. Оздоровление и микроразмножение in vitro сортов картофеля для безвирусного семеноводства. Дальневост. аграр. вестн. 2018;4(48):20-26.; Юрьева Н.О., Воронкова Е.В., Терешонок Д.В. и др. Введение в асептическую культуру дигаплоидов картофеля с использованием адвентивных побегов и химиотерапии. Защита картофеля. 2017;(2):23-27.; Рябцева Т.В., Куликова В.И., Ходаева В.П. Оценка питательных сред при размножении сортов картофеля в культуре in vitro. Международный научно-исследовательский журнал. 2018;12(66)3:134-137. https://doi.org/10.23670/IRJ.2017.66.099; Dhital S.P., Sakha B.M., Lim H.T. Utilization of shoot cuttings for elimination of PLRV and PVY by thermotherapy and chemotherapy from potato (Solanum tuberosum L.). Nepal J. Sci. Technol. 2006;(7):1-6.; Kim I.V., Chibizova A.S., Shischenko E.V., Fisenko P.V., Chekushkina T.N., Barsukova E.N., Volkov D.I., Klykov A.G. Methods of biotechnology in the improvement of promising potato hybrids (Solanum tuberosum L.). Research on Crops. 2021;(22):96-99. https://doi.org/10.31830/2348-7542.2021.023.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2029