يعرض 1 - 12 نتائج من 12 نتيجة بحث عن '"A. V. Boyarko"', وقت الاستعلام: 0.48s تنقيح النتائج
  1. 1
    Academic Journal
  2. 2
    Academic Journal

    المصدر: The Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 38, № 2 (2023); 248-252 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 38, № 2 (2023); 248-252 ; 2713-265X ; 2713-2927

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/1811/833; Дюбкова Т.П., Жерносeк В.Ф. Синдром Стивенса – Джонсона – токсический эпидермальный некролиз у детей. Минск: РИВШ; 2013:205.; Жерносек В.Ф., Дюбкова Т.П. Клиническая классификация и критерии диагностики синдрома Стивенса – Джонсона – токсического эпидермального некролиза у детей: обзор иностранной литературы. Педиатрия. Восточная Европа. 2014;5(1):118–133. URL: https://elib.bsu.by/bitstream/123456789/215567/1/82_%D0%9A%D0%BB%D0%B8%D0%BD%D0%B8%D1%87%D0%B5%D1%81%D0%BA%D0%B0%D1%8F_%D0%BA%D0%BB%D0%B0%D1%81%D1%81%D0%B8%D1%84%D0%B8%D0%BA%D0%B0%D1%86%D0%B8%D1%8F.pdf (14.12.2022).; Григорьев Д.В. Многоформная экссудативная эритема, синдром Стивенса – Джонсона и синдром Лайелла – современная трактовка проблемы. Русский медицинский журнал. 2013;22:1073–1083.; Барденникова С.И., Пеньтковская О.С., Исаева Е.К. Синдром Стивенса – Джонсона – иммунная катастрофа. Русский медицинский журнал. Мать и дитя. 2019;2(1):66–72. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/sindrom-stivensa-dzhonsona-immunnaya-katastrofa (14.12.2022).; Верткин А.Л., Дадыкина А.В. Синдром Стивенса – Джонсона. Лечащий врач. 2006;4:79–82. URL: https://www.lvrach.ru/2006/04/4533749 (14.12.2022).; Повзун А.С., Крылов К.М., Крылов П.К., Фурман И.Б., Белоусова И.Э., Мичунский К.Э. и др. Токсический эпидермальный некролиз: проблемы диагностики и терапия. Вестник интенсивной терапии. 2017;2:66–75. DOI:10.21320/1818-474X2017-2-69-75.; Schöpf E., Stühmer A., Rzany B., Victor N., Zentgraf R., Kapp J.F. Toxic Epidermal Necrolysis and Stevens-Johnson Syndrome: An Epidemiologic Study From West Germany. Arch Dermatol. 1991;127(6):839–842. DOI:10.1001/archderm.1991.01680050083008.; Marxer C., Frey N., Bircher A. Survival after Stevens-Johnson Syndrome or Toxic Epidermal Necrolysis: A UK-based Cohort Study. Journal of Investigative Dermatology. 2020;141(6): 1016–1022. DOI:10.1016/j.jid.2020.09.034.; Kim H.I., Kim S.W., Park G.Y., Kwon E.G., Kim H.H., Jeong J.Y. et al. Causes and treatment outcomes of Stevens-Johnson syndrome and toxic epidermal necrolysis in 82 adult patients. Korean J. Intern. Med.2012;27(2):203–210. DOI:10.3904/kjim.2012.27.2.203.; Frey N., Jossi J., Bodmer M., Bircher A., Jick S.S., Meier C.R. et al. The epidemiology of Stevens-Johnson syndrome and toxic epidermal necrolysis in the UK. J. Invest. Dermatol. 2017;137(6):1240–1247. DOI:10.1016/j.jid.2017.01.031.; Yang S.C., Hu S., Zhang S.Z., Huang J.W., Zhang J., Ji C. et al. The Epidemiology of Stevens-Johnson Syndrome and Toxic Epidermal Necrolysis in China. J. Immunol. Res. 2018:4320195. [published correction appears in Journal of Immunology Research. 2018:4154507]. DOI:10.1155/2018/4320195.; Нуртдинова Г.М., Галимова Е.С., Кучер О.И., Муслимова В.К. Синдром Стивенса – Джонсона. Русский медицинский журнал. 2020;4(1):52–57. DOI:10.32364/2587-6821-2020-4-1-52-57.; Федеральные клинические рекомендации по ведению больных синдромом Стивенса – Джонсона/ Токсическим эпидермальным некролизом: Федеральные клинические рекомендации. Российское общество дерматовенерологов и косметологов. М.; 2015:11. URL: https://www.cnikvi.ru/docs/clinic_recs/bolezni-kozhi-i-pridatkov-kozhi/%D0%A1%D0%B8%D0%BD%D0%B4%D1%80%D0%BE%D0%BC%20%D0%A1%D1%82%D0%B8%D0%B2%D0%B5%D0%BD-c%D0%B0-%D0%94%D0%B6%D0%BE%D0%BD-%D1%81%D0%BE%D0%BD%D0%B0.doc. (14.12.2022).; Некролиз токсический эпидермальный (синдром Стивенса – Джонсона): Клинические рекомендации. Российское общество дерматовенерологов и косметологов. М.; 2016:28.; Hirahara K., Kano Y., Sato Y., Horie C., Okazaki A., Ishida T. et al. Methylprednisolone pulse therapy for Stevens – Johnson syndrome/ toxic epidermal necrolysis: clinical evaluation and analysis of biomarkers. J. Am. Acad. Dermatol. 2013;(69):496–498. DOI:10.1016/j.jaad.2013.04.007.; Yamane Y., Matsukura S., Watanabe Y., Yamaguchi Y., Nakamura K., Kambara T. et al. Retrospective analysis of Stevens - Johnson syndrome and toxic epidermal necrolysis in 87 Japanese patients – Treatment and outcome. Allergol. Int. 2016;65(1):74–81. DOI:10.1016/jalit.2015.09.001.; Lee H.Y., Dunant A., Sekula P., Mockenhaupt M., Wolkenstein P., Valeyrie-Allanore L. et al. The role of prior corticosteroid use on the clinical course of Stevens - Johnson syndrome and toxic epidermal necrolysis: a case-control analysis of patients selected from the multinational EuroSCAR and RegiSCAR studies. Br. J. Dermatol. 2012;167(3):555–562. DOI:10.1111/j.1365-2133.2012.11074.x.; Pereira F.A., Mudgil A.V., Rosmarin D.M. Toxic epidermal necrolysis. J. Am. Acad. Dermatol. 2007;56(2):181–200. DOI:10.1016/j.jaad.2006.04.048.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/1811

  3. 3
    Academic Journal

    المصدر: The Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 37, № 4 (2022); 63-69 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 37, № 4 (2022); 63-69 ; 2713-265X ; 2713-2927

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/1621/759; Beyerstedt S., Casaro E.B., Rangel É.B. COVID-19: Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) expression and tissue susceptibility to SARSCoV-2 infection. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2021;40(5):905–919. DOI:10.1007/s10096-020-04138-6.; Azkur A.K., Akdis M., Azkur D., Sokolowska M., van de Veen W., Brüggen M.C. et al. Immune response to SARS-CoV-2 and mechanisms of immunopathological changes in COVID-19. Allergy. 2020;75(7):1564– 1581. DOI:10.1111/all.14364.; Feng Y., Ling Y., Bai T., Xie Y., Huang J., Li J. et al. COVID-19 with Different Severities: A Multicenter Study of Clinical Features. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2020;201(11):1380–1388. DOI:10.1164/rccm.202002-0445OC.; Kalyanaraman Marcello R., Dolle J., Grami S., Adule R., Li Z., Tatem K. et al. Characteristics and outcomes of COVID-19 patients in New York City’s public hospital system. PLoS One. 2020;15(12):e0243027. DOI:10.1371/journal.pone.0243027.; Guan W.J., Ni Z.Y., Hu Y., Yu Q., Liu W., Pu J. et al. Clinical characteristics of coronavirus disease 2019 in China. N. Engl. J. Med. 2020;382(18):1708–1720. DOI:10.1056/NEJMoa2002032.; Gerayeli F.V., Milne S., Cheung C., Li X., Yang C.W.T., Tam A. et al. COPD and the risk of poor outcomes in COVID-19: A systematic review and meta-analysis. EClinicalMedicine. 2021;33:100789. DOI:10.1016/j.eclinm.2021.100789.; Wu F., Zhou Y., Wang Z., Xie M., Shi Z., Tang Z. et al. Clinical characteristics of COVID-19 infection in chronic obstructive pulmonary disease: A multicenter, retrospective, observational study. J. Thorac. Dis. 2020;12(5):1811–1823. DOI:10.21037/jtd-20-1914.; Richardson S., Hirsch J.S., Narasimhan M., Crawford J.M., McGinn T., Davidson K.W. et al. Presenting characteristics, comorbidities, and outcomes among 5700 patients hospitalized with COVID-19 in the New York City area. JAMA. 2020;323(20):2052–2059. DOI:10.1001/jama.2020.6775.; Chhiba K.D., Patel G.B., Vu T.H.T., Chen M.M., Guo A., Kudlaty E. et al. Prevalence and characterization of asthma in hospitalized and nonhospitalized patients with COVID-19. J Allergy Clin. Immunol. 2020;146(2):307–314.e4. DOI:10.1016/j.jaci.2020.06.010.; Liu S., Cao Y., Du T., Zhi Y. Prevalence of Comorbid Asthma and Related Outcomes in COVID-19: A Systematic Review and Meta-Analysis. J. Allergy Clin. Immunol. Pract. 2021;9(2):693–701. DOI:10.1016/j.jaip.2020.11.054.; Luo J., Chen Y.L., Chen W., Duncan D.A., Hussain H., Sohail B. et al. Pre-existing asthma as a comorbidity does not modify cytokine responses and severity of COVID-19. Allergy Asthma Clin. Immunol. 2021;17(1):67. DOI:10.1186/s13223-021-00569-8.; Beurnier A., Jutant E.M., Jevnikar M., Boucly A., Pichon J., Preda M. et al. Characteristics and outcomes of asthmatic patients with COVID-19 pneumonia who require hospitalisation. Eur. Respir. J. 2020;56(5):2001875. DOI:10.1183/13993003.01875-2020.; Yang J., Zheng Y., Gou X., Pu K., Chen Z., Guo Q. et al. Prevalence of comorbidities and its effects in patients infected with SARS-CoV-2: A systematic review and meta-analysis. Int. J. Infect. Dis. 2020;94:91–95. DOI:10.1016/j.ijid.2020.03.017.; Zhou F., Yu T., Du R., Fan G., Liu Y., Liu Z. et al. Clinical course and risk factors for mortality of adult inpatients with COVID-19 in Wuhan, China: A retrospective cohort study. Lancet. 2020;395(10229):1054–1062. DOI:10.1016/S0140-6736(20)30566-3.; Müllerova H., Agusti A., Erqou S., Mapel D.W. Cardiovascular comorbidity in COPD: Systematic literature review. Chest. 2013;144(4):1163– 1178. DOI:10.1378/chest.12-2847.; Lee H.M., Truong S.T., Wong N.D. Association of adult-onset asthma with specific cardiovascular conditions. Respir. Med. 2012;106(7):948– 953. DOI:10.1016/j.rmed.2012.02.017.; Matsushita K., Ding N., Kou M., Hu X., Zhang L., Huo P. et al. The Relationship of COVID-19 Severity with Cardiovascular Disease and Its Traditional Risk Factors: A Systematic Review and Meta-Analysis. Glob. Heart. 2020;15(1):64. DOI:10.5334/gh.814.; Jacobs M., Van Eeckhoutte H.P., Wijnant S.R.A., Janssens W., Joos G.F., Brusselle G.G. et al. Increased expression of ACE2, the SARSCoV-2 entry receptor, in alveolar and bronchial epithelium of smokers and COPD subjects. Eur. Respir. J. 2020;56(2):2002378. DOI:10.1183/13993003.02378-2020.; Peters M.C., Sajuthi S., Deford P., Christenson S., Rios C.L., Montgomery M.T. et al. COVID-19-related genes in sputum cells in asthma. Relationship to demographic features and corticosteroids. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2020;202(1):83–90. DOI:10.1164/rccm.202003-0821OC.; Dahan S., Segal G., Katz I., Hellou T., Tietel M., Bryk G. et al. Ferritin as a marker of severity in COVID-19 patients: A fatal correlation. Isr. Med. Assoc. J. 2020;22(8):494–500.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/1621

  4. 4
    Academic Journal

    المصدر: PULMONOLOGIYA; № 2 (2004); 78-83 ; Пульмонология; № 2 (2004); 78-83 ; 2541-9617 ; 0869-0189

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/2534/1983; Авдеев С.Н., Анаев Э.Х., Чучалин А.Г. Применение метода индуцированной мокроты для оценки интенсивности воспаления дыхательных путей. Пульмонология 1998; 2: 81-87.; Djukanovic R., S terk P.J., Fahy J.V., Hapgreave F.E. Standardised methodology of sputum induction and processing. Eur. Respir. J. 2002; 20: 1-2.; Keatings V.M., Colling P.D., Scott D M . Differences in interleukin-8 and tumor necrosis factor in induced sputum from patients with chronic obstructive pulmonary disease or asthma. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1996; 153: 530-534.; Pin I., Gibson P.G., Kolendowiz R. et al. Use of induced sputum cell counts to investigate airway inflammation in asthma. Thorax 1992; 47: 25-29.; О глоблина О.Г., Платонова Jl.В., Пасхина Т.С. Измерение активности трипсина и эластазоподобных протеиназ поли­ морфно-ядерных лейкоцитов и уровня их кислотостабильных ингибиторов в бронхиальном секрете человека: Метод, рекомендации. М.: М ГУ, 1984.; Шутов Е.В. Протеиназы и их ингибиторы у больных хронической почечной недостаточностью: Автореф. дис. . канд. мед. наук. М.; 1981.; Нартикова В.Ф., Пасхина Т.С. Унифицированный метод определения активности а г антитрипсина и а 2-макроглобулина в сыворотке (плазме) крови человека. Вопр. мед. химии 1979; 25: 494-499.; Меньшиков В.В. Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник. М.: Медицина, 1987.; Astaldi G., Verga L. Acta haematol. (Basel) 1957; 17: 129-136.; Belda J., Leigh R., Sears M. Induced sputum cell counts in healthy adults. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2000; 161: 475-478.; Jayaram L. et al. Induced sputum cell counts: their usefulness in clinical practice. Eur. Respir. J. 2000; 16: 150-158.; Hagreave F.H., Leigh R. Induced sputum, eosinophilic bronchi­ tis and chronic obstructive pulmonary disease. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1999; 160: 553-557.; Holz O., Kips J., Magnussen H. Update on sputum methodology. Eur. Respir. J. 2000; 16: 355-359.; Lensm ar C., Elmberger G. et al. Leukocyte counts and macrophage phenotypes in induced sputum and bronchoalveolar lavage fluid from normal subjects. Eur. Respir. J. 1998; 12: 595-600.; Kips I., Peleman R., Rauwels R. Methods of examining induced sputum: do differences matter? Eur. Respir. J. 1998; 11: 529-533.; Доренко В.Л., Нешкова E.A., Чеботарь И.В. и др. Секретирование сериновой связанной с мембраной протеиназы полиморфноядерными лейкоцитами в условиях адгезии на различных типах рецепторзависимых и рецепторнезависимых сорбентов. Вопр. мед. химии 1994; 40: 385-390.; Barnes P.I. The role of anticholinergics in chronic obstructive pulmonary disease and chronic asthma. London: National Heart and Lung Institute; 1985.; Magnussen H., Hayrgreave F.E. Noninvasive monitoring of airway inflammation. Eur. Respir. J. 2000; 16: 1-2.; Saetta M. Airway inflammation in COPD. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1999; 160(5): 17-20.; Maestrlli P., Saetta M. Remodeling in response to infection and injury airway inflammation and hypersecretion of mucus in smoking subjects with COPD. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2001; 164: 76-80.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/2534

  5. 5
    Academic Journal

    المصدر: Pharmacogenetics and Pharmacogenomics; № 1 (2020); 19-25 ; Фармакогенетика и фармакогеномика; № 1 (2020); 19-25 ; 2588-0527 ; 2686-8849

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.pharmacogenetics-pharmacogenomics.ru/jour/article/view/183/183; Ponikowski P, Voors AA, Anker SD, et al 2016 ESC Guidelines for the diagnosis and treatment of acute and chronic heart failure. Eur. Heart J. 2016;37:2129-2200m. 10.1093/eurheartj/ehw128; Williams B, Mancia G, Spiering W, et al 2018 ESC/ESH Guidelines for the management of arterial hypertension. Eur Heart J. 2018;39:3021–3104. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehy339; Rodgers JE, Patterson JH (2001) Angiotensin II-receptor blockers: Clinical relevance and therapeutic role. Am. J. Heal. Pharm. 2001;58:671–683; Сычев Д.А., Раменская Г.В., Игнатьев И.В., Кукес В.Г. Клиническая фармакогенетика: Учебное пособие / Под ред. В.Г. Кукеса, Н.П. Бочкова.- М.:ГЭОТАР Медиа. 2007. [Sychev D.A., Ramenskaya G.V., Ignat'ev I.V., Kukes V.G. Klinicheskaya farmakogenetika: Uchebnoe posobie / Ed by V.G. Kukes, N.P. Bochkova.- M.:GEOTAR Media. 2007 (In Russ).]; Isvoran A, Louet M, Vladoiu DL, et al. Pharmacogenomics of the cytochrome P450 2C family: impacts of amino acid variations on drug metabolism. Drug Discov Today. 2017;22:366–376. https://doi.org/10.1016/j.drudis.2016.09.015; Spiering W, Kroon AA, Fuss-Lejeune MJMJ, De Leeuw PW. Genetic contribution to the acute effects of angiotensin II type 1 receptor blockade. J Hypertens. 2005;23:753–758. https://doi.org/10.1097/01.hjh.0000163143.66965.06; Wang B, Wang J, Huang S-Q, et al. Genetic Polymorphism of the Human Cytochrome P450 2C9 Gene and Its Clinical Significance. Curr Drug Metab. 2009;10:781–834. https://doi.org/10.2174/138920009789895480; Zhou Y, Ingelman-Sundberg M, Lauschke VM (2017) Worldwide Distribution of Cytochrome P450 Alleles: A Meta-analysis of Population-scale Sequencing Projects. Clin Pharmacol Ther. 2017;102:688–700. https://doi.org/10.1002/cpt.690; Мирзаев К.Б., Федоринов Д.С., Иващенко Д.В., Сычев Д.А. Мультиэтнический анализ кардиологических фармакогенетических маркеров генов цитохрома Р450 и мембранных транспортеров в российской популяции. Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии 2019;15(3):393-406. [Mirzaev K.B., Fedorinov D.S., Ivashchenko D.V., Sychev D.A. Multi-Ethnic Analysis of Cardiac Pharmacogenetic Markers of Cytochrome p450 and Membrane Transporters Genes in the Russian Population. Rational Pharmacotherapy in Cardiology 2019;15(3):393-406. (In Russ).] DOI:10.20996/1819-6446-2019-15-3-393-406; Карева Е.Н. Эволюция сартанов или все ли сартаны одинаковы? Клин. фармакол. тер., 2016, 25 (3), 11-21. [Kareva E.N. Evolution of angiotensin receptor blockers. Clin. Pharmacol. Ther. 2016;25(3):11-21. (In Russ).]; Redon J, Fabia JM. Efficacy in angiotensin receptor blockade: A comparative review of data with olmesartan. JRAAS - J. Renin-Angiotensin-Aldosterone Syst. 2009;10:147–156; Cabaleiro T, Román M, Ochoa D, et al. Evaluation of the relationship between sex, polymorphisms in CYP2C8 and CYP2C9, and pharmacokinetics of angiotensin receptor blockers. Drug Metab Dispos. 2013;41:224–229. https://doi.org/10.1124/dmd.112.046292; Sica DA, Gehr TWB, Ghosh S. Clinical pharmacokinetics of losartan. Clin Pharmacokinet. 2005;44:797–814. https://doi.org/10.2165/00003088-200544080-00003; Yasar U, Forslund-Bergengren C, Tybring G, et al. Pharmacokinetics of losartan and its metabolite E-3174 in relation to the CYP2C9 genotype. Clin Pharmacol Ther. 2002;71:89–98. https://doi.org/10.1067/mcp.2002.121216; Babaoglu MO, Yasar U, Sandberg M, et al. CYP2C9 genetic variants and losartan oxidation in a Turkish population. Eur J Clin Pharmacol. 2004;60:337–342. https://doi.org/10.1007/s00228-004-0785-5; Allabi AC, Gala JL, Horsmans Y, et al. Functional impact of CYP2C9*5, CYP2C9*6, CYP2C9*8, and CYP2C9*11 in vivo among black Africans. Clin Pharmacol Ther. 2004;76:113–118. https://doi.org/10.1016/j.clpt.2004.04.001; Lee CR, Pieper JA, Hinderliter AL, et al. Losartan and E3174 pharmacokinetics in cytochrome P450 2C9*1/*1, *1/*2, and *1/*3 individuals. Pharmacotherapy. 2003;23:720–725. https://doi.org/10.1592/phco.23.6.720.32187; Леонова М.В. Сартаны в лечении артериальной гипертонии: преимущества кандесартана. Consilium Medicum. 2019;21(1):25–30. [Leonova M.V. Sartany v lechenii arterial'noi gipertonii: preimushchestva kandesartana. Consilium Medicum. 2019;21(1):25–30. (in Russ.)] DOI:10.26442/20751753.2019.1.190280; Hallberg P, Karlsson J, Kurland L, et al. The CYP2C9 genotype predicts the blood pressure response to irbesartan: Results from the Swedish Irbesartan Left Ventricular Hypertrophy Investigation vs Atenolol (SILVHIA) trial. J Hypertens. 2002;20:2089–2093. https://doi.org/10.1097/00004872-200210000-00030; Hong X, Zhang S, Mao G, et al. CYP2C9*3 allelic variant is associated with metabolism of irbesartan in Chinese population. Eur J Clin Pharmacol. 2005;61:627–634. https://doi.org/10.1007/s00228-005-0976-8; Hanatani T. CYP2C9*3 influences the metabolism and the drug-interaction of candesartan in vitro. Pharmacogenomics J. 2001;1:288–292. https://doi.org/10.1038/sj.tpj.6500063; Procopciuc L, Popescu T, Jebeleanu G, et al. Essential arterial hypertension and polymorphism of angiotensinogen M235T gene. J Cell Mol Med. 2002;6:245–250. https://doi.org/10.1111/j.1582-4934.2002.tb00191.x; Zhou A, Carrell RW, Murphy MP, et al. A redox switch in angiotensinogen modulates angiotensin release. Nature. 2010;468:108–111. https://doi.org/10.1038/nature09505; Муженя Д.В. Патофизиологическая роль и прогностическая значимость М235Т полиморфизма гена ангиотензиногена (AGТ) при болезнях сердечного континуума (БСК) // Вестн. Адыгейского гос. ун-та. Сер. 4: Естеств.-матем. и техн. науки. 2011. № 3. С. 69–81. [Pathophysiological role and the prognostic importance of the angiotensinogen (AGT) gene M235T polymorphism at illnesses of a heart continuum. Vestnik Adygeiskogo gosudarstvennogo universiteta, seriya «Estestvenno-matematicheskie i tekhnicheskie nauki 2011;(3):69–81. (in Russ.)]; Страмбовская Н.Н. Прогностическая роль полиморфных вариантов генов-кандидатов у больны ишемическим инсультом в Забайкалье // Фундам. исследования. 2015. № 1. С. 140–144. [Strambovskaya N.N Рrognostic role genetic polymorphisms for ischemic stroke patients in transbaikal region. 2015;(1):140-144.(in Russ.)]; Watkins WS, Hunt SC, Williams GH, et al. Genotype-phenotype analysis of angiotensinogen polymorphisms and essential hypertension: The importance of haplotypes. J Hypertens. 2010;28:65–75. https://doi.org/10.1097/HJH.0b013e328332031a; Зотова Т.Ю., Кубанова А.П., Азова М.М., Аит Аисса Амира. Особенности клинического течения артериальной гипертензии в зависимости от полиморфного варианта гена AGTR1. Клин. мед. 2017; 95(5):404-407. [Zotova T.Yu., Kubanova A.P., Azova M.M., Aut Aissa Amira Peculiarities of the clinical picture of arterial hypertension depending on polymorphic variant of AGTR1 gene. Klin. med. 2017;95(5):404-407. DOI http://dx.doi.org/10.18821/0023-2149-2017-95-5-404-407(in Russ.)]; Redon J, Luque-Otero M, Martell N, et al. Renin-angiotensin system gene polymorphisms: Relationship with blood pressure and microalbuminuria in telmisartan-treated hypertensive patients. Pharmacogenomics J. 2005;5:14–20. https://doi.org/10.1038/sj.tpj.6500280; Van De Wal RMA, Van Veldhuisen DJ, Van Gilst WH, Voors AA. Addition of an angiotensin receptor blocker to full-dose ACE-inhibition: Controversial or common sense? Eur. Heart J. 2005;26:2361–2367; Zhang H, Sun M, Sun T, et al. Association between angiotensin II type 1 receptor gene polymorphisms and ischemic stroke: A meta-analysis. Cerebrovasc Dis. 2011;32:431–438. https://doi.org/10.1159/000330655; Szolnoki Z, Havasi V, Talián G, et al. Angiotensin II type-1 receptor A1166C polymorphism is associated with increased risk of ischemic stroke in hypertensive smokers. J Mol Neurosci. 2006;28:285–290. https://doi.org/10.1385/JMN:28:3:285; Rubattu S, Di Angelantonio E, Stanzione R, et al. Gene polymorphisms of the renin-angiotensin-aldosterone system and the risk of ischemic stroke: A role of the A1166C/AT1 gene variant. J Hypertens. 2004;22:2129–2134. https://doi.org/10.1097/00004872-200411000-00015; Weekers L, Bonhanick B, Hadjadj S, et al. Modulation of the renal response to ACE inhibition by ACE insertion/deletion polymorphism during hyperglycemia in normotensive, normoalbuminuric type 1 diabetic patients. Diabetes. 2005;54:2961–2967. https://doi.org/10.2337/diabetes.54.10.2961; Arnett DK, Davis BR, Ford CE, et al. Pharmacogenetic association of the angiotensin-converting enzyme insertion/deletion polymorphism on blood pressure and cardiovascular risk in relation to antihypertensive treatment: The Genetics of Hypertension-Associated Treatment (GenHAT) study. Circulation. 2005;111:3374–3383. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.104.504639; Kurland L, Melhus H, Karlsson J, et al. Polymorphisms in the angiotensinogen and angiotensin II type 1 receptor gene are related to change in left ventricular mass during antihypertensive treatment: Results from the Swedish Irbesartan Left Ventricular Hypertrophy Investigation versus Atenolol (SILVHIA) trial. J Hypertens. 2002;20:657–663. https://doi.org/10.1097/00004872-200204000-00023; Conrady AO, Kiselev IO, Usachev NI, et al. (2005) Effect of 24-week treatment with telmisartan on myocardial structure and function: Relationship to insertion/deletion polymorphism of the angiotensin-converting enzyme gene. J Int Med Res. 2005;33 Suppl 1:30A-38A. https://doi.org/10.1177/14732300050330s105; Jia M, Yang B, Li Z, et al. Computational analysis of functional single nucleotide polymorphisms associated with the CYP11B2 gene. PLoS One. 2014; 7;9(8):e104311. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0104311; Heller S, Linhart A, Jindra A, et al. Association of -344/T/C aldosterone synthase polymorphism (CYP11B2) with left ventricular structure and humoral parameters in young normotensive men. Blood Press. 2004;13:158–163. https://doi.org/10.1080/08037050410035554; Ortlepp JR, Hanrath P, Mevissen V, et al. Variants of the CYP11B2 gene predict response to therapy with candesartan. Eur J Pharmacol. 2002;445:151–152. https://doi.org/10.1016/S0014-2999(02)01766-1; Wang L, Zhang Z, Liu D, et al (2020) Association of −344C/T polymorphism in the aldosterone synthase (CYP11B2) gene with cardiac and cerebrovascular events in Chinese patients with hypertension. J Int Med Res. 2020;48(9):300060520949409. https://doi.org/10.1177/0300060520949409; Pi Y, Zhang L li, Chang K, et al. Lack of an Association between CYP11B2 C-344T Gene Polymorphism and Ischemic Stroke: A Meta-Analysis of 7,710 Subjects. PLoS One. 2013;8(8):e68842. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0068842; Androulakis E, Tousoulis D, Miliou A, et al. The impact of an aldosterone synthase (CYP11B2) polymorphism on vascular function and inflammatory biomarkers in essential hypertension. J Am Coll Cardiol. 2012;59:E1634. https://doi.org/10.1016/s0735-1097(12)61635-0; Chandra S, Saluja D, Narang R, et al. Atrial natriuretic peptide and aldosterone synthase gene in essential hypertension: A case-control study. Gene. 2015;567:92–97. https://doi.org/10.1016/j.gene.2015.04.062; Byrd JB, Auchus RJ, White PC (2015) Aldosterone Synthase Promoter Polymorphism and Cardiovascular Phenotypes in a Large, Multiethnic Population-Based Study. J Investig Med. 2015;63:862–866. https://doi.org/10.1097/JIM.0000000000000220; https://www.pharmacogenetics-pharmacogenomics.ru/jour/article/view/183

  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    المصدر: Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 33, № 1 (2018); 79-85 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 33, № 1 (2018); 79-85 ; 2713-265X ; 2713-2927 ; 10.29001/2073-8552-2018-33-1

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/425/356; Черняев А. Л., Самсонова М. В. Варианты хронической обструктивной болезни легких с позиции патологоанатома. Пульмонология. 2013; 3: 93–96 [Chernyaev A. L., Samsonova M. V. Different types of chronic obstructive pulmonary disease in term of pathologist’s view. Pul’monologiya = Pulmonology. 2013; 3: 93–96] (In Russ).; Геренг Е. А., Суходоло И. В., Плешко Р. И., Огородова Л. М., Букреева Е. Б., Селиванова П. А., Дзюман А. Н., Кремис И. С., Еремина Т. А. Сравнительная ультраструктурная характеристика слизистой оболочки бронхов при различных типах воспаления дыхательных путей. Вестник Волгоградского государственного медицинского университета. 2011; 1(37): 70–73 [Gereng E. A., Suhodolo I. V., Pleshko R. I., Ogorodova L. M., Bukreyeva E. B., Selivanova P. A., Dziuman A. N., Kremis I. V., Eremina T. A. Comparative ultrasound characteristics of bronchial mucosa in various types of airway inflammation. Vestnik Volgogradskogo gosudarstvennogo meditsinskogo universiteta = Bulletin of Volgograd State Medical University. 2011; 1(37): 70–73] (In Russ).; Цветкова О. А., Мустафина М. Х. Полиморфизм гена ADRВ2: роль в предрасположенности к заболеванию, тяжести течения и терапевтическом ответе при хронической обструктивной болезни легких. Пульмонология. 2013; 2: 5–9 [Tsevtkova O. A., Mustafina M. Kh. ADRB2 gene polymorphism: a role for predisposition, course and therapeutic response in chronic obstructive pulmonary disease. Pul’monologiya = Pulmonology. 2013; 2: 5–9] (In Russ).; Кадушкин А. Г., Таганович А. Д., Картун Л. В., Ходосовская Е. В., Чупик В. Н. Уровень цитокинов в плазме крови некурящих и курящих пациентов с хронической обструктивной болезнью легких. Пульмонология. 2013; 6: 27–32 [Kadushkin А. G., Taganovich А. D., Kartun L. V., Hodosovskaya Е. V., Chupik V. N. Plasma cytokine levels in non-smoking and smoking patients with chronic obstructive pulmonary disease. Pul’monologiya = Pulmonology. 2013; 6: 27–32] (In Russ).; Кузубова Н. А., Лебедева Е. С., Золотницкая В. П., Двораковская И. В., Федин А. Н., Титова О. Н. Сосудистые нарушения в легких при хронической обструктивной болезни легких как мишень для терапевтического воздействия. Пульмонология. 2012; 4: 71–77 [Kuzubova N. A., Lebedeva E. S., Zolotnitskaya V. P., Dvorakovskaya I. V., Fedin A. N., Titova O. N. Pulmonary vascular disorders in chronic obstructive pulmonary disease as a target for therapeutic intervention. Pul’monologiya = Pulmonology. 2012; (4): 71–77] (In Russ).; Непомнящих Г. И. Биопсия бронхов: морфогенез общепатологических процессов в легких. М.: Издательство РАМН; 2010 [Nepomnyashchikh G. I. Bronchial biopsy: morphogenesis of general pathological processes in the lungs. Мoscow: RAMS Publishing House; 2010] (In Russ).; Автандилов Г. Г. Основы количественной патологической анатомии. М.: Медицина; 2002: 240 [Avtandilov G. G. Fundamentals of quantitative pathological anatomy. Мoscow: Medicina; 2002: 240] (In Russ).; Автандилов Г. Г. Диагностическая медицинская плоидометрия. М.: Медицина; 2006: 192 [Avtandilov G. G. Diagnostic medical ploidiometry. Мoscow: Medicina; 2006: 192] (In Russ).; Глаголев В. В. Геометрические методы количественного анализа агрегатов под микроскопом. Львов; 1968: 263 [Glagolev V. V. Geometric methods of quantitative analysis of aggregates under a microscope. Lvov; 1968: 263] (In Russ).; Казанская Г. М., Непомнящих Л. М., Лушникова Е. Л., Волков А. М. Ультраструктурная организация капилляров в разных отделах сердца собак при искусственной иммерсионной гипотермии. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2009; 2: 211–216 [Kazanskaja G. M., Nepomnjashhih L. M., Lushnikova E. L., Volkov A. M. Ultrastructural organization of capillaries in different parts of the heart of dogs with artificial immersion hypothermia. Bjulleten’ jeksperimental’noj biologii i mediciny = Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2009; 2: 211–216] (In Russ).; Holgate S. T. The Epithelium and airway remodeling. Eur. Respir. J. 2012; 6(29): 7–43.; Kubo H., Takahashi T. The role of microparticles in chronic obstructive pulmonary disease. International Journal of Chronic Obstructive Pulmonary Disease. 2014; 9: 303–314. DOI:10.2147/copd.s38931.; Kosciuch J., Krenke R., Gorska K., Baran W., Kujawa M., Hildebrand K., Chazan R. Comparison of airway wall remodeling in asthma and COPD: biopsy findings. Respiratory Care. 2012; 57(4): 557–564. DOI:10.4187/respcare.01359.; Rodella L. F., Favero G., Rossini C., Foglio, E., Reiter R. J., Rezzani R. Endothelin-1 as a potential marker of melatonin’s therapeutic effects in smoking-induced vasculopathy. Life Sci. 2010; 87(17– 18): 558–564. DOI:10.1016/j.lfs.2010.09.011.; Soltani A., Reid D., Sohal S., Wood-Baker R., Weston S., MullerH. K., Walters E. H. Basement membrane and vascular remodeling in smokers and chronic obstructive pulmonary disease: a crosssectional study. Respiratory Research. 2010; 11(1): 105. DOI:10.1186/1465-9921-11-105.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/425

  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
    Academic Journal

    المصدر: Bulletin of Siberian Medicine; Том 6, № 4 (2007); 17-21 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 6, № 4 (2007); 17-21 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2007-6-4

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/3312/2092; Авдеев С.И., Анаев Э.Х., Чучалин А.Г. Применение метода индуцированной мокроты для оценки интенсивности воспаления дыхательных путей // Пульмонология. 1998. № 2. С. 81-85. 2.; Анаев Э.Х., Чучалин А.Г. Исследование конденсата выдыхаемого воздуха в пульмонологии (обзор зарубежной литературы) // Пульмонология. 2002. № 1. С. 57-66.; Гельцер Б.И., Петешова Е.А., Кочеткова Е.В., Елисеева Е.В. Определение метаболитов оксида азота в конденсате выдыхаемого воздуха как способ оценки NO-реактивности дыхательных путей у больных бронхиальной астмой // Пульмонология. 2003. № 10. С. 91-94.; Глобальная стратегия лечения и профилактики бронхиальной астмы / Под ред. А.Г. Чучалина. М.: Изд-во «Атмосфера», 2002.; Назаретян Э.Е., Нариманян М.З., Мартиросян Т.В., ГаспарянА.Ю. Содержание окиси азота в слюне и легочная гипертензия у больных с различной степенью тяжести бронхиальной астмы // Пульмонология. 2000. № 2. С. 23-27.; Невзорова В.А., Майстровская Ю.В., Чкаловец И.В. и др. Исследования содержания метаболитов оксида азота, a1-кислого гликопротеина и его гликоформ в конденсате выдыхаемого воздуха больных бронхиальной астмой // Пульмонология. 2003. № 6. С. 46-51.; Barnes P.J. The effect of drugs on exhaled nitric oxide // ERR. 1999. V. 68. P. 231-233.; Barnes P.J., Pedersen S., Busse W.W. Efficacy and safety of inhaled corticosteroids // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1998. V. 157. P. 1-53.; Fahy J.V., Boushey H.A. Effect of low-dose beclomethasone dipropionate on asthma control and airway inflammation // ERJ. 1998. V. 11. P. 1240-1247.; Ho L.P., Innes J.A., Greening A.P. Nitrite levels in breath condensate of patients with cystic fibrosis is elevated in contrast to exhaled nitric oxide // Thorax. 1998. V. 53. P. 680-684.; Holz O., Magnussen H. Update of sputum methodology // ERJ. 2000. V. 16. P. 355-359.; Jatakanon A., Kharitonov S.A., Lim S., Barnes P.J. Effect of different doses of inhaled budesonide on markers of airway inflammation in patients with mild asthma // Thorax. 1999. V. 54. P. 108-114.; Jayaram L., Parameswaran K., Sears M.R., Hargreave F.E. Induced sputum cell counts: their usefulness in clinical practice // ERJ. 2000. V. 16. P. 150-158.; Kharitonov S.A., Barnes P.J. Exhaled markers of pulmonary disease// Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2001. V. 163. P. 1693- 1722.; Kharitonov S.A., Wells A.U., O'Connor B.J. et al. Elevated levels of exhaled nitric oxide in bronchiectasis // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1995. V. 151. P. 1889-1893.; Kharitonov S.A., Yates D.H., Chung K.F., Barnes P.J. Changes in the dose of inhaled steroids affect exhaled nitric oxide levels in asthmatic patients // ERJ. 1996. V. 9. P. 196-201.; Lim S., Chung K.F. Potential role of noninvasive markers of inflammation in clinical management of asthma // ERR. 1998. V. 64. P. 1103-1107.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/3312

  12. 12