يعرض 1 - 20 نتائج من 127 نتيجة بحث عن '"соленые озера"', وقت الاستعلام: 0.55s تنقيح النتائج
  1. 1
    Academic Journal
  2. 2
    Conference

    Relation: IOP Conference Series: Materials Science and Engineering. Vol. 754 : High Technology: Research and Applications (HTRA-2019). — Bristol, 2020.; Hydrochemical Research and Geochemical Classification of Salt Lakes in the Pavlodar Region / A. Ubaskin, A. Zh. Kasanova, A. Lunkov [et al.] // IOP Conference Series: Materials Science and Engineering. — Bristol : IOP Publishing, 2020. — Vol. 754 : High Technology: Research and Applications (HTRA-2019) : VIIIth International Conference for Young Scientists, 30 September-5 October 2019, Tomsk, Russian Federation : [proceedings]. — [012009, 6 p.].; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/58041

  3. 3
    Academic Journal

    المصدر: Известия Томского политехнического университета ; Bulletin of the Tomsk Polytechnic University

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: info:eu-repo/grantAgreement/RFBR//21-54-52001; info:eu-repo/grantAgreement/RFBR//19-05-50046; Известия Томского политехнического университета [Известия ТПУ]. Инжиниринг георесурсов. 2021. Т. 332, № 12; Сезонная изменчивость седиментационных потоков в соленом меромиктическом озере Шира (Хакасия) / В. В. Бабич, А. В. Дарьин, И. А. Калугин [и др.] // Известия Томского политехнического университета [Известия ТПУ]. Инжиниринг георесурсов. — 2021. — Т. 332, № 12. — [С. 22-34].; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/69333

  4. 4
    Academic Journal
  5. 5
    Academic Journal

    المساهمون: The work of N.A. Chernykh carried out with the partial financial support of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation.

    المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 25, № 2 (2021); 224-233 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 25, № 2 (2021); 224-233 ; 2500-3259 ; 2500-0462 ; 10.18699/VJ21.016

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2981/1500; Banciu H.L., Enach M., Rodriguez R.M., Oren A., Ventosa A. Ecology and physiology of halophilic microorganisms – Thematic issue based on papers presented at Halophiles 2019 – 12th International Conference on Halophilic Microorganisms, Cluj-Napoca, Romania, 24–28 June, 2019. FEMS Microbiol. Lett. 2020;366(23):1-4. DOI 10.1093/femsle/fnz250.; Вaumann P., Baumann L. The marine gram-negative Eubacteria. In: Starr M.P., Stolp H., Trüper H.G., Balows A., Schlegel H.G. (Eds.). The Prokaryotes. A handbook on habitats, isolation nd identification of bacteria. Berlin: Springer-Verlag, 1986;2:1302-1331.; Begmatov Sh.A., Selitskaya O.V., Vasileva L.V., Berestovskaja Yu.Yu., Manucharova N.A., Drenova N.V. Morphophysiological features of some cultivable bacteria from saline soils of the Aral Sea region. Eur. J. Soil Sci. 2020;53(1):90-96. DOI 10.1134/S1064229320010044.; Birnboim H.C., Doly J. A rapid alkaline extraction procedure for screening recombinant plasmid DNA. Nucleic Acids Res. 1979; 7(6):1513-1523.; Bonch-Osmolovskaya E.A., Atomi H. Editorial overview: Extremophiles: from extreme environments to highly stable catalysts. Curr. Opin. Microbiol. 2015;25:88-96.; Bulygina E.S., Kuznetsov B.B., Marusina A.I., Kravchenko I.K., Bykova S.A., Kolganova T.V., Galchenko V.F. Study of nucleotide sequences of nif H genes in methanotrophic bacteria. Mikrobiologiya = Microbiology. 2002;71(4):425-432.; Camacho C., Coulouris G., Avagyan V., Ma N., Papadopoulos J., Bealer K., Madden T.L. BLAST+: architecture and applications. BMC Bioinform. 2009;10(421):1-9. DOI 10.1186/1471-2105-10-421.; Chernousova E.Yu., Akimov V.N., Gridneva E.V., Dubinina G.A., Grabovich M.Yu. Phylogenetic in situ/ex situ analysis of a sulfur mat microbial community from a thermal sulfide spring in the North Caucasus. Mikrobiologiya = Microbiology. 2008;77(2):219-223. DOI 10.1134/S002626170802015X.; Cira-Chávez L.A., Guevara-Luna J., Soto-Padilla M.Y., RománPonce B., Vásquez-Murrieta M.S., Estrada-Alvarado M.I. Kinetics of halophilic enzymes. In: Rajendran L., Fernandez C. (Eds.). Kinetics of Enzymatic Synthesis. IntOpen, 2018;1-25. DOI 10.5772/intechopen.81100.; Corral P., Amoozegar M.A., Ventosa A. Halophiles and their biomolecules: recent advances and future applications in biomedicine. Marine Drugs. 2020;18:2-33. DOI 10.3390/md18010033.; Delgado-García M., Valdivia-Urdiales B., Aguilar-Gonzalez C.N., Contreras-Esquivel J.C., Rodriguez-Herrera R. Halophilic hydrolases as a new tool for the biotechnological industries. J. Sci. Food Agric. 2012;92(13):2575-2580. DOI 10.1002/jsfa.5860.; De Lourdes Moreno M., Pérez D., García M.T., Mellado E. Halophilic bacteria as a source of novel hydrolytic enzymes. Life. 2013;3(1): 38-51. DOI 10.3390/life3010038.; Di Donato P., Buono A., Poli A., Finore I., Abbamondi R.G., Nicolaus B., Lama L. Exploring marine environments for the identification of extremophiles and their enzymes for sustainable and green bioprocesses. Sustainability. 2019;11:149-169. DOI 10.3390/su11010149.; Franzmann P.D., Wehmeyer U., Stackebrandt E. Halomonadaceae fam. nov., a new family of the class Proteobacteria to accommodate the genera Halomonas and Deleya. Syst. Appl. Microbiol. 1988;11: 16-19.; Ghosh S., Kumar S., Kumar Khare S. Microbial diversity of saline habitats: an overview of biotechnological applications. In: Giri B., Varma A. (Eds.). Microorganisms in Saline Environments: Strategies and Functions (Ser. Soil Biology. 56). Cham: Springer, 2019;65-92. DOI 10.1007/978-3-030-18975-4_4.; Gordon R.E., Smith M.M. Rapidly growing, acid fast bacteria. I. Species descriptions of Mycobacterium phlei Lehmann and Neumann and Mycobacterium smegmatis (Trevisan) Lehmann and Neumann. J. Bacteriol. 1953;66(1):41-48.; Gridneva E.V., Grabovich M.Yu., Dubinina G.A., Chernousova E.Yu., Akimov V.N. Ecophysiology of lithotrophic sulfur-oxidizing Sphaerotilus species from sulfide springs in the Northern Caucasus. Mikrobiologiya = Microbiology. 2009;78(1):76-83.; Heyndrickx M., Lebbe L., Kersters K., De Vos P., Forsyth G., Logan N.A. Virgibacillus: a new genus to accommodate Bacillus pantothenticus (Proom and Knight 1950). Emended description of Virgibacillus pantothenticus. Int. J. Syst. Bacteriol. 1998;48(1):99-106. DOI 10.1099/00207713-48-1-99.; Heyrman J., Logan N.A., Busse H.-J., Balcaen A., Lebbe L., RodriguezDiaz M., Swings J., De Vos P. Virgibacillus carmonensis sp. nov., Virgibacillus necropolis sp. nov. and Virgibacillus picturae sp. nov., three novel species isolated from deteriorated mural paintings, transfer of the species of the genus Salibacillus to Virgibacillus, as Virgibacillus marismortui comb. nov. and Virgibacillus salexigens comb. nov., and emended description of the genus Virgibacillus. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2003;53(2):501-511. DOI 10.1099/ijs.0.02371-0.; Holt J.R., Corey D.P., Eatock R.A. Mechanoelectrical transduction and adaptation in hair cells of the mouse utricle, a low-frequency vestibular organ. J. Neurosci. 1997;17:8739-8748.; Hua N.P., Hamza-Chaffai A., Vreeland R.H., Isoda H., Naganuma T. Virgibacillus salarius sp. nov., a halophilic bacterium isolated from a Saharan salt lake. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2008;58:2409-2414. DOI 10.1099/ijs.0.65693-0.; Kaitouni L.B.D., Anissi J., Sendide K., Hassouni M.E. Diversity of hydrolase-producing halophilic bacteria and evaluation of their enzymatic activities in submerged cultures. Annals Microbiol. 2020; 70:33. DOI 10.1186/s13213-020-01570-z.; Khalilova E.A., Kotenko S.Ts., Islammagomedova E.A., Hasanov R.Z., Abakarova A.A., Aliverdiyeva D.A. Extremophilic microbial communities of saline soils and their diversity in the regions of the Caspian depression. Aridnye Ekosistemy = Arid Ecosystems. 2017;7(2): 116-120. DOI 10.1134/S2079096117020068.; Khalilova E.A., Kotenko S.Ts., Islammagomedova E.A., Hasanov R.Z., Abakarova A.A., Aliverdiyeva D.A. Halophilic microbial communities and their biodiversity in the arid regions of the Caspian Lowland. Aridnye Ekosistemy = Arid Ecosystems. 2020;10(1):79-85. DOI 10.1134/S2079096120010084.; Khalilova E.A., Nuratinov R.A., Kotenko S.Ts., Islammagomedova E.A. Hydrocarbon-oxidizing microorganisms of hot springs and their significance in the assessment of the biodiversity of microbial communities. Aridnye Ekosistemy = Arid Ecosystems. 2014;4(1): 25-30. DOI 10.1134/S2079096114010028.; Kindzierski V., Raschke S., Knabe N., Siedler F., Scheffer B., Grau K.P., Pfeiffer F., Oesterhelt D., Marin-Sanguino A., Kunte H.J. Osmoregulation in the halophilic bacterium Halomonas elongata: a case study for integrative systems biology. PLoS One. 2017;12(1):1-22. DOI 10.1371/journal.pone.0168818.; Kolganova T.V., Kuznetsov B.B., Turova T.P. Designing and testing of oligonucleotide primers for amplification and sequencing of 16S rRNA genes of archaea. Mikrobiologiya = Microbiology. 2002; 71(2):243-246.; Kushner D.J., Kamekura M. Physiology of halophilic eubacteria. In: Rodríguez-Varela F. (Ed.). Halophilic Bacteria. Boca Raton, FL, USA: CRC Press, 1988;1:109-138.; Kuznetsov A.E., Kalenov S.V. Russian Federation Patent RU 2323226. Method for preparing halophilic bacterium biomass. Bull. No. 12. 2008;6. (in Russian); Lalov V.V., Osokina N.V., Piorunskij D.A., Chizhikov M.A. Russian Federation Patent RU 2115722 C1. Method of halophilic microorganism culturing. 1998;5 (in Russian); Lane D.J. 16S/23S rRNA sequencing. Nucleic acid techniques in bacterial systematics. In: Stackebrandt E., Goodfellow M. (Eds.). New York: John Wiley & Sons, 1991;115-175.; Lee S.-Y., Kang C.-H., Oh T.K., Yoon J.H. Virgibacillus campisalis sp. nov., from a marine solar saltern. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2012;62:347-351. DOI 10.1099/ijs.0.033084-0.; Liu C., Baffoe D.K., Zhang M. Halophile, an essential platform for bioproduction. J. Microbiol. Methods. 2019;166:105704. DOI 10.1016/j.mimet.2019.105704.; Marmur J. A procedure for the isolation of deoxyribonucleic acid from microorganisms. J. Mol. Biol. 1961;3:208-218. DOI 10.1016/S0022-2836(61)80047-8.; Namsaraev Z.B., Babasanova O.B., Dunaevsky Y.E., Akimov V.N., Barkhutova D.D., Gorlenko V.M., Namsaraev B.B. Anoxybacillus mongoliensis sp. nov., a novel thermophilic proteinase producing bacterium isolated from alkaline hot spring, Central Mongolia. Microbiology. 2010;79(4):491-499.; Netrusov A.I., Egorova M.A., Zakharchuk L.M. Laboratory Manual on Microbiology for college students. Moscow: Akademiya Publ., 2005. (in Russian); Owen R.J., Hill L.R., Lapage S.P. Determination of DNA base composition from melting profiles in dilute buffers. Biopolimers. 1969; 7:503-516.; Sanger F., Nicklen S., Coulson A.R. DNA sequencing with chainterminating inhibitors. Proс. Natl. Acad. Sci. USA. 1977;84:5463-5467.; Schwibbert K., Marin-Sanguino A., Bagyan I., Heidrich G., Lentzen G., Seitz H., Rampp M., Schuster S.C., Klenk H.P., Pfeiffer F., Oesterhelt D., Kunte H.J. A blueprint of ectoine metabolism from the genome of the industrial producer Halomonas elongata DSM 2581T. Environ. Microbiol. 2011;13:1973-1994. DOI 10.1111/j.1462-2920.2010.02336.; Steel K.J. The oxidase reaction as a taxonomic tool. J. Gen. Microbiol. 1961;25:297-306.; Tamura K., Nei M. Estimation of the number of nucleotide substitutions in the control region of mitochondrial DNA in humans and chimpanzees. Mol. Biol. Evol. 1993;10:512-526.; Tamura K., Stecher G., Peterson D., Filipski A., Kumar S. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 6.0. Mol. Biol. Evol. 2013;30:2725-2729.; Thomas J.C., Khour R., Neeley C.K., Akroush A.M., Davies E.C. A fast CTAB method of human DNA isolation for polymerase chain reaction applications. Biochem. Educ. 1997;25(4):233-235. DOI 10.1016/S0307-4412(97)00122-2.; Van de Peer Y., De Wachter R. TREECON for Windows: a software package for the construction and drawing of evolutionary trees for the Microsoft Windows environment. Comput. Appl. Biosci. 1994; 10:569-570. DOI 10.1093/bioinformatics/10.5.569.; Varrella S., Tangherlini M., Corinaldesi C. Deep hypersaline anoxic basins as untapped reservoir of polyextremophilic prokaryotes of biotechnological interest. Mar. Drugs. 2020;18(2):91. DOI 10.3390/md18020091.; Vreeland R.H., Litchfield C.D., Martin E.L., Elliot E. Halomonas elongata, a new genus and species of extremely salt-tolerant bacteria. Int. J. Syst. Bacteriol. 1980;3(2):485-495. DOI 10.1099/00207713-30-2-485.; Wang T., Zhang L., Bo L., Zhu Y., Tang X., Liu W. Simultaneous heterotrophic nitrification and aerobic denitrification at high concentrations of NaCl by Halomonas nacteria. IOP Conf. Ser: Earth. Environ. Sci. 2019;237(5):052033. DOI 10.1088/1755-1315/237/5/052033.; Zavarzin G.A. Microbial diversity studies at the Winogradsky Institute of Microbiology. Mikrobiologiya = Microbiology. 2004;73(5):509-522. DOI 10.1023/B:MICI.0000044242.93603.00.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2981

  6. 6
    Academic Journal

    المصدر: Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya; Том 74, № 2 (2019); 73–79 ; Вестник Московского университета. Серия 16. Биология; Том 74, № 2 (2019); 73–79 ; 0137-0952

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/738/461; Bilanenko E.N., Sorokin D.Y., Ivanova M.L., Kozlova M.V. Heleococcum alkalinum, a new alkalitolerant ascomycete from saline soda soils // Mycotaxon. 2005. Vol. 91. N 1. Р. 497-507.; Georgieva M.L., Lebedeva M.P., Bilanenko E.N. Mycelial fungi in saline soils of the western Transbaikal region // Eurasian Soil Sci. 2012. Vol. 45. N 12. P. 1159-1168.; Grum-Grzhimaylo A.A., Debets A.J.M., van Diepeningen A.D., Georgieva M.L., Bilanenko E.N. Sodiomyces alkalinus, a new alkaliphilic ascomycete within the Plectosphaerellaceae // Persoonia. 2013. Vol. 31. P. 147-158.; Grum-Grzhimaylo A.A., Georgieva M.L., Debets A.J.M, Bilanenko E.N. Are alkalitolerant fungi of the Emericellopsis lineage (Bionectriaceae) of marine origin // IMA fungus. 2013. Vol. 4. N 2. P. 213-228.; Grum-Grzhimaylo A.A., Georgieva M.L., Bondarenko S.A., Debets A.J.M., Bilanenko E.N. On the diversity of fungi from soda soils // Fungal Divers. 2016. Vol. 76. N 1. P. 27-74.; Bondarenko S.A., Georgieva M.L., Bilanenko E.N.Fungi inhabiting the coastal zone of Lake Magadi // Contemp. Probl. Ecol. 2018. Vol. 11. N 5. P. 439-448.; Bondarenko S.A., Georgieva M.L., Bilanenko E.N. Alkalitolerant micromycetes in acidic and neutral soils of the temperate zone // Microbiology. 2016. Vol. 85. N 6. P. 737-744.; Зеленковский П.С., Куриленко В.В. Природно-техногенная система соляного озера Баскунчак и особенности эксплуатации её ресурсов // Вестн. С.-Петерб. ун-та. Сер. 7. Геол. Геогр. 2013. № 4. С. 33-52.; Bataeva Y.V., Dzerzhinskaya I.S., Astafyeva O.V., Satkalieva Ы.С., Yakovleva L.V., Kondratenko E.I., Magzanova D.K., Baimuhambetova A.S. Investigation of specific microorganisms in the salt lakes of Southern Russia // Afr. J. Microbiol. Res. 2015. Vol. 38. N 9. P. 2051-2056.; Buchalo A.S., Nevo E., Wasser S.P., Oren A., Molitoris H.P. Fungal life in the extremely hypersaline water of the Dead Sea: first records // Proc. Biol. Sci. 1998. Vol. 265. N 1404. P. 1461-1465.; Kis-Papo T., Oren A., Wasser S.P., Nevo E. Survival of filamentous fungi in hypersaline Dead Sea water // Microbial Ecol. 2003. Vol. 45. N 2. P. 183190.; Smolyanyuk E.V., Bilanenko E.N. Communities of halotolerant micromycetes from the areas of natural salinity // Microbiology. 2011. Vol. 80. N 6. P. 877-883.; Oren A., Gunde-Cimerman N. Fungal life in the Dead Sea // Biology of Marine Fungi / Eds. C. Raghukumar. Berlin, Heidelberg: Springer, 2012. P. 115-132.; Grishkan I., Nevo E., Wasser S.P. Soil micromycete diversity in the hypersaline Dead Sea coastal area, Israel // Mycol. Prog. 2003. Vol. 2. N 1. P. 19-28.; Grum-Grzhimaylo A.A., Falkoski D.L., van den Heuvel J., et al. The obligate alkalophilic soda-lake fungus Sodiomyces alkalinus has shifted to a protein diet // Mol. Ecol. 2018. Vol. 27. N 23. P. 4808-4819.; Kevbrin V.V. Isolation and cultivation of alkaliphiles // Advances in Biochemical Engineering / Biotechnology / Eds. T. Scheper. Berlin, Heidelberg: Springer, 2019. P. 1-32.; Carreira C., Staal M., Falkoski D., Vries R.P., Middelboe M., Brussaard C.P. Disruption of photoautotrophic intertidal mats by filamentous fungi // Environ. Microbiol. 2015. Vol. 17. N 8. P. 29102921.; Rogozhin E.A., Sadykova V.S., Baranova A.A., Vasilchenko A.S., Lushpa V.A., Mineev K.S., Georgieva M.L., Kul’ko A.B., Krasheninnikov M.E., Lyundup A.V., Vasilchenko A.V., Andreev Y.A. A novel lipopeptaibol emericellipsin A with antimicrobial and antitumor activity produced by the extremophilic fungus Emericellopsis alkalina // Molecules. 2018. Vol. 23. N 11. Е2785.; Domsch K.H., Gams W, Anderson T.H. Compendium of soil fungi. Second edition. Eching: IHW-Verlag & Verlagsbuchhadlung, 2007. 700 pp.; Zare R, Gams W.D., Starink-Willemse M, Summerbell R.C. Gibellulopsis, a suitable genus for Verticillium nigrescens, and Musicillium, a new genus for V. theobromae // Nova Hedwigia. 2007. Vol. 85. N 3-4. P. 463-489.; Giraldo A., Gem J., Sutton D.A., Madrid H., De Hoog G.S., Cano J., Decock C., Crous P.W., Guarro J. Phylogeny of Sarocladium (Hypocreales) // Persoonia. 2015. Vol. 34. P. 10-24.; https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/738

  7. 7
  8. 8
    Academic Journal
  9. 9
  10. 10
    Conference

    المساهمون: Shvartsev, Stepan Lvovich, Matveenko, Irina Alekseevna

    Relation: Проблемы геологии и освоения недр : труды XXI Международного симпозиума имени академика М. А. Усова студентов и молодых ученых, посвященного 130-летию со дня рождения профессора М. И. Кучина, Томск, 3-7 апреля 2017 г. Т. 2. — Томск, 2017.; Evgrafova V. I. Migration pattern of chemical elements in saline lakes of Kulunda plain (Altai region) based on chemical type / V. I. Evgrafova, M. N. Kolpakova; sci. adv. S. L. Shvartsev, I. A. Matveenko // Проблемы геологии и освоения недр : труды XXI Международного симпозиума имени академика М. А. Усова студентов и молодых ученых, посвященного 130-летию со дня рождения профессора М. И. Кучина, Томск, 3-7 апреля 2017 г. : в 2 т. — Томск : Изд-во ТПУ, 2017. — Т. 2. — [С. 938-940].; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/42340

  11. 11
    Conference

    المساهمون: Шварцев, Степан Львович

    Relation: Проблемы геологии и освоения недр : труды XXI Международного симпозиума имени академика М. А. Усова студентов и молодых ученых, посвященного 130-летию со дня рождения профессора М. И. Кучина, Томск, 3-7 апреля 2017 г. Т. 1. — Томск, 2017.; Евграфова В. И. Формы миграции химических элементов в соленых озерах Кулундинской равнины с учетом химической типизации / В. И. Евграфова, М. Н. Колпакова; науч. рук. С. Л. Шварцев // Проблемы геологии и освоения недр : труды XXI Международного симпозиума имени академика М. А. Усова студентов и молодых ученых, посвященного 130-летию со дня рождения профессора М. И. Кучина, Томск, 3-7 апреля 2017 г. : в 2 т. — Томск : Изд-во ТПУ, 2017. — Т. 1. — [С. 542-543].; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/41913

  12. 12
    Academic Journal
  13. 13

    مصطلحات موضوعية: Целью исследования является изучение химического состава озерных вод и донных отложений для определения минерализации редких металлов и других видов полезных ископаемых. В результате проведенных экспедиционных исследований на территории района определен гидрохимический состав рек и озер по основным показателям, классификация, гидрогеохимия, hydrogeochemistry, оценка перспектив, macro-component composition, макрокомпонентті құрам, гидротермалиты, East Kazakhstan, нитритов, mineralization, кремния, нитратов, в числе которых, марганца и редких металлов. В качестве основных объектов исследования были взяты минерализованные (соленость выше 1 г/л) озера в пределах участков Бурабай, pH, магния, фосфатов, көлдер геохимиясы, минерализация, граниты, Дельбегетей и Шаган-Шар, соленые озера, геохимия озер, salt lakes, кадмия, минерализация ионов калия, classification, hydrothermalites, расположенных в Восточно-Казахстанской области, тұзды көлдер, Восточный Казахстан, редкие металлы, грейзендер, аммония, geochemistry of lakes, меди, никеля, граниттер, rare metals, железа, натрия, алюминия, жіктеу, granites, грейзены, assessment of prospects, минералдандыру, гидротермалиттер, greysens, свинца, макрокомпонентный состав, цинка, Шығыс Қазақстан, сирек металдар, перспективаларды бағалау

  14. 14
    Academic Journal

    المصدر: Известия Томского политехнического университета

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Известия Томского политехнического университета [Известия ТПУ]. Инжиниринг георесурсов. 2016. Т. 327, № 9; Уран и торий в донных отложениях соленых озер Ишимской степи (Северный Казахстан) / А. В. Карпов [и др.] // Известия Томского политехнического университета [Известия ТПУ]. Инжиниринг георесурсов. — 2016. — Т. 327, № 9. — [С. 6-17].; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/32576

  15. 15
    Academic Journal
  16. 16
    Conference

    المؤلفون: Евграфова, В. И.

    المساهمون: Колпакова, Марина Николаевна

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Проблемы геологии и освоения недр : труды XVIII Международного симпозиума имени академика М. А. Усова студентов и молодых ученых, Томск, 7-11 апреля 2014 г. Т. 1. — Томск, 2014; Евграфова В. И. Химический состав соленых озер Кулундинской равнины / В. И. Евграфова; науч. рук. М. Н. Колпакова // Проблемы геологии и освоения недр : труды XVIII Международного симпозиума имени академика М. А. Усова студентов и молодых ученых, Томск, 7-11 апреля 2014 г. : в 2 т. — Томск : Изд-во ТПУ, 2014. — Т. 1. — [С. 513-514].; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/65407

  17. 17
    Report

    المساهمون: Колпакова, Марина Николаевна

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Зинченко Е. А. Геохимическая модель поведения элементов в озерных системах Ишимской степи (Северный Казахстан) : магистерская диссертация / Е. А. Зинченко; Национальный исследовательский Томский политехнический университет (ТПУ), Институт природных ресурсов (ИПР), Кафедра гидрогеологии, инженерной геологии и гидрогеоэкологии (ГИГЭ); науч. рук. М. Н. Колпакова. — Томск, 2017.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/40130

  18. 18
  19. 19
  20. 20