يعرض 1 - 20 نتائج من 1,529 نتيجة بحث عن '"семейство"', وقت الاستعلام: 0.65s تنقيح النتائج
  1. 1
  2. 2
    Academic Journal
  3. 3
    Academic Journal
  4. 4
    Academic Journal
  5. 5
    Academic Journal

    المصدر: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 1 (2024); 271-279 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 1 (2024); 271-279 ; 2072-6724

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2265/1000; Динамика биоразнообразия медоносных ресурсов в структуре березняков / И.Д. Самсонова, Д.В. Тхао, Н.Т. Зыонг, П.В. Сидаренко // Лесотехнический журнал. – 2019. – Т. 9, № 4 (36). – С. 73–81.; Самсонова И.Д. Особенности цветения медоносных растений травяно-кустарничкового яруса в березняках // Пчеловодство. – 2020. – № 7. – С. 22–25.; Плахова А.А. Освоение северных районов Западной Сибири для производства экологически безопасной продукции пчеловодства: дис. … д-ра биол. наук. – Владикавказ, 2019. – 220 с.; Плахова А.А. Медоносы Васюганских болот // Пчеловодство. – 1998. – № 6. – С. 19–21.; Медоносные растения европейской части России и их пыльца / Н.И. Кривцов, А.П. Савин, С.С. Сокольский [и др.]. – Рязань-Рыбное: ФГОУ ВПО РГАТУ, ГНУ НИИП, 2009. – 328 с.; Чекрыга Г.П., Плахова А.А. Характеристика основных медоносов Западной Сибири по пыльцевой обножке, собранной Apis mellifera: монография. – Новосибирск: Ареал, 2018. – 156 с.; Кашковский В.Г. Содержание и разведение медоносных пчел Apis mellifera L. – СПб.: С.-Петербург. фил. ФГУП «Изд-во Наука», 2021. – 423 с.; Параева Л.К. Медоносные растения Западной Сибири. – Новосибирск: Зап.-Сиб. кн. изд-во, 1970. – 167 с.; Пономарева Е.Г. Кормовая база пчеловодства и опыление сельскохозяйственных растений. – М.: Колос, 1980. – 256 с.; Самсонова И.Д., До В.Т., Плахова А.А. Оценка медоносных растений березняков и ресурсный потенциал лесных угодий для медосбора Ленинградской области: монография. – Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2021. – 198 с.; Карташова Н.Н. Медоносные и пергоносные растения Томской области и пути развития пчеловодства. – Томск: Тип. Том. гос. ун-та, 1952. – 13 с.; Пельменев В.К. Медоносные растения. – М.: Россельхозиздат, 1985. – 144 с.; Самсонова И.Д., До В.Т. Сравнительный анализ продуктивности медоносных угодий под пологом березняка и на опушках леса // Известия Горского государственного аграрного университета. – 2021, – Т. 58–2. – С. 133–139.; И.Д. Самсонова, В.Ю. Нешатаев, Ван Т. До, Тхи З. Нгуен Эколого-биологический анализ медоносов березняков // Известия Санкт-Петербургской лесотехнической академии. – 2019. – Вып. 229. – С. 104–117.; Самсонова И.Д., До В.Т. Ресурсы березняков и их продуктивность для медосбора в условиях Ленинградской области // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2021. – № 2 (59). – С. 149–155.; Плахова А.А. Биологический способ оценки экологии // Пчеловодство. – 2009. – № 9. – С. 14–15.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2265

  6. 6
    Academic Journal
  7. 7
    Academic Journal

    المؤلفون: Алексанов, В. В.

    Relation: Алексанов, В.В. Цикада Asiraca clavicornis (Fabricius, 1794) (Hemiptera, Delphacidae) в Калужской области / В.В. Алексанов; Дирекция парков, Калуга // Полевой журнал биолога. - 2024. - Т.6, №1.-С. 42-51. - Doi:10.52575/2712-9047-2024-6-1-42-51. - Библиогр.: с. 49-51.; http://dspace.bsu.edu.ru/handle/123456789/62626

  8. 8
  9. 9
    Academic Journal
  10. 10
    Academic Journal
  11. 11
    Academic Journal
  12. 12
    Academic Journal
  13. 13
    Academic Journal
  14. 14
  15. 15
    Academic Journal
  16. 16
    Academic Journal

    المصدر: Материалы XIX Всероссийской (национальной) научно-технической конференции студентов и аспирантов

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Научное творчество молодежи – лесному комплексу России : материалы XIX Всероссийской (национальной) научно-технической конференции студентов и аспирантов. – Екатеринбург, 2023; Шашина, А. В. Состояние древесных растений семейства Oleaceae в коллекциях Ботанического сада Уро РАН = The state of woody plants of the Oleaceae family in the collections of the Botanical garden of the Ural branch of the Russian Academy of Sciences / А. В. Шашина, Д. В. Фарфель, Е. А. Тишкина. – Текст : электронный // Научное творчество молодежи – лесному комплексу России : материалы XIX Всероссийской (национальной) научно-технической конференции студентов и аспирантов / Министерство науки и высшего образования Российской Федерации, Уральский государственный лесотехнический университет; [ответственный за выпуск Л. В. Малютина]. – Екатеринбург, 2023. – С. 381–384.; https://elar.usfeu.ru/handle/123456789/12322

  17. 17
    Academic Journal
  18. 18
    Academic Journal

    المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 27, № 6 (2023); 676-683 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 27, № 6 (2023); 676-683 ; 2500-3259

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3939/1753; Adaimy L., Chouery E., Megarbane H., Mroueh S., Delague V., Nicolas E., Belguith H., de Mazancourt P., Megarbane A. Mutation in WNT10A is associated with an autosomal recessive ectodermal dysplasia: the odonto-onycho-dermal dysplasia. Am. J. Hum. Genet. 2007;81(4):821-828. DOI:10.1086/520064.; Asano N., Yasuno S., Hayashi R., Shimomura Y. Characterization of EDARADD gene mutations responsible for hypohidrotic ectodermal dysplasia. J. Dermatol. 2021;48(10):1533-1541. DOI:10.1111/1346-8138.16044.; Atukorala A., Inohaya K., Baba O., Tabata M., Ratnayake R., Abduweli D., Kasugai S., Mitani H., Takano Y. Scale and tooth phenotypes in medaka with a mutated ectodysplasin-A receptor: implications for the evolutionary origin of oral and pharyngeal teeth. Arch. Histol. Cytol. 2010;73(3):139-148. DOI:10.1679/aohc.73.139.; Bayés M., Hartung A., Ezer S., Pispa J., Thesleff I., Srivastava A., Kere J. The anhidrotic ectodermal dysplasia gene (EDA) undergoes alternative splicing and encodes ectodysplasin-A with deletion mutations in collagenous repeats. Hum. Mol. Genet. 1998;7(11):16611669. DOI:10.1093/hmg/7.11.1661.; Bryk J., Hardouin E., Pugach I., Hughes D., Strotmann R., Stoneking M., Myles S. Positive selection in East Asians for an EDAR allele that enhances NF-κB activation. PLoS One. 2008;3(5):e2209. DOI:10.1371/journal.pone.0002209.; Cai Z., Deng X., Jia J., Wang D., Yuan G. Ectodysplasin A/ectodysplasin A receptor system and their roles in multiple diseases. Front. Physiol. 2021;12:788411. DOI:10.3389/fphys.2021.788411.; Cañueto J., Zafra-Cobo M., Ciria S., Unamuno P., González-Sarmiento R. A novel EDA gene mutation in a Spanish family with X-linked hypohidrotic ectodermal dysplasia. Actas Dermosifiliogr. 2011; 102(9):722-725. DOI:10.1016/j.adengl.2011.11.012.; Casal M., Scheidt J., Rhodes J., Henthorn P., Werner P. Mutation identification in a canine model of X-linked ectodermal dysplasia. Mamm. Genome. 2005;16(7):524-531. DOI:10.1007/s00335-004-2463-4.; Castori M., Castiglia D., Brancati F., Foglio M., Heath S., Floriddia G., Madonna S., Fischer J., Zambruno G. Two families confirm Schöpf–Schulz–Passarge syndrome as a discrete entity within the WNT10A phenotypic spectrum. Clin. Genet. 2011;79(1):92-95. DOI:10.1111/j.1399-0004.2010.01513.x.; Chaudhary A.K., Gholse A., Nagarajaram H.A., Dalal A.B., Gupta N., Dutta A.K., Danda S., Gupta R., Sankar H.V., Bhavani G.S., Girisha K.M., Phadke S.R., Ranganath P., Bashyam M.D. Ectodysplasin pathogenic variants affecting the furin-cleavage site and unusual clinical features define X-linked hypohidrotic ectodermal dysplasia in India. Am. J. Med. Genet. A. 2022;188(3):788-805. DOI:10.1002/ajmg.a.62579.; Chen Y., Molloy S., Thomas L., Gambee J., Bächinger H., Ferguson B., Zonana J., Thomas G., Morris N. Mutations within a furin consensus sequence block proteolytic release of ectodysplasin-A and cause X-linked hypohidrotic ectodermal dysplasia. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001;98(13):7218-7223. DOI:10.1073/pnas.131076098.; Clouston H. The major forms of hereditary ectodermal dysplasia. (With an autopsy and biopsies on the anhydrotic type). Can. Med. Assoc. J. 1939;40(1):1-7.; Cluzeau C., Hadj-Rabia S., Bal E., Clauss F., Munnich A., Bodemer C., Headon D., Smahi A. The EDAR370A allele attenuates the severity of hypohidrotic ectodermal dysplasia caused by EDA gene mutation. Br. J. Dermatol. 2012;166(3):678-681. DOI:10.1111/j.13652133.2011.10620.x.; Epub 2011 Dec. 5. Crocker M., Cattanach B.M. The genetics of Sleek: a possible regulatory mutation of the tabby-crinkled-downless syndrome. Genet. Res. 1979;34(3):231. DOI:10.1017/s0016672300019479.; Deshmukh S., Prashanth S. Ectodermal dysplasia: a genetic review. Int. J. Clin. Pediatr. Dent. 2012;5(3):197-202. DOI:10.5005/jp-journals-10005-1165.; Drögemüller C., Distl O., Leeb T. Partial deletion of the bovine ED1 gene causes anhidrotic ectodermal dysplasia in cattle. Genome Res. 2001;11(10):1699-1705. DOI:10.1101/gr.182501.; Drögemüller C., Kuiper H., Peters M., Guionaud S., Distl O., Leeb T. Congenital hypotrichosis with anodontia in cattle: a genetic, clinical and histological analysis. Vet. Dermatol. 2002;13(6):307-313. DOI:10.1046/j.1365-3164.2002.00313.x.; Elomaa O. Ectodysplasin is released by proteolytic shedding and binds to the EDAR protein. Hum. Mol. Genet. 2001;10(9):953-962. DOI:10.1093/hmg/10.9.953. Felsher Z. Hereditary ectodermal dysplasia: report of a case, with experimental study. Arch. Derm. Syphilol. 1944;49(6):410-414. DOI:10.1001/archderm.1944.01510120024005.; Ferguson B., Brockdorff N., Formstone E., Ngyuen T., Kronmiller J., Zonana J. Cloning of Tabby, the murine homolog of the human EDA gene: evidence for a membrane-associated protein with a short collagenous domain. Hum. Mol. Genet. 1997;6(9):1589-1594. DOI:10.1093/hmg/6.9.1589.; Freire-Maia N. Ectodermal dysplasias. Hum. Hered. 1971;21(4):309312. DOI:10.1159/000152419.; Freire-Maia N., Pinheiro M. Ectodermal dysplasias – some recollections and a classification. Birth Defects Orig. Artic. Ser. 1988;24: 3-14.; Han Y., Wang X., Zheng L., Zhu T., Li Y., Hong J., Xu C., Wang P., Gao M. Pathogenic EDA mutations in Chinese Han families with hypohidrotic ectodermal dysplasia and genotype-phenotype: a correlation analysis. Front. Genet. 2020;11:21. DOI:10.3389/fgene.2020.00021.; Harris M., Rohner N., Schwarz H., Perathoner S., Konstantinidis P., Nüsslein-Volhard C. Zebrafish eda and edar mutants reveal conserved and ancestral roles of ectodysplasin signaling in vertebrates. PLoS Genet. 2008;4(10):e1000206. DOI:10.1371/journal.pgen.1000206.; Headon D., Overbeek P. Involvement of a novel Tnf receptor homologue in hair follicle induction. Nat. Genet. 1999;22(4):370-374. DOI:10.1038/11943.; Itin P., Fistarol S. Ectodermal dysplasias. Am. J. Med. Genet. C Semin. Med. Genet. 2004;131C(1):45-51. DOI:10.1002/ajmg.c.30033.; Kataoka K., Fujita H., Isa M., Gotoh S., Arasaki A., Ishida H., Kimura R. The human EDAR 370V/A polymorphism affects tooth root morphology potentially through the modification of a reactiondiffusion system. Sci. Rep. 2021;11(1):5143. DOI:10.1038/s41598021-84653-4.; Kere J., Srivastava A.K., Montonen O., Zonana J., Thomas N., Ferguson B., Munoz F., Morgan D., Clarke A., Baybayan P., Chen E.Y., Ezer S., Saarialho-Kere U., de la Chapelle A., Schlessinger D. X- linked anhidrotic (hypohidrotic) ectodermal dysplasia is caused by mutation in a novel transmembrane protein. Nat. Genet. 1996; 13(4):409-416. DOI:10.1038/ng0895-409.; Kozlova S.I., Demikova N.S. Hereditary Disorders and Genetic Counseling: Guide Atlas. Moscow: KMK–Avtorskaya Akademiya Publ., 2007. (in Russian); Kuramoto T., Morimura K., Nomoto T., Namiki C., Hamada S., Fukushima S., Sugimura T., Serikawa T., Ushijima T. Sparse and wavy hair: a new model for hypoplasia of hair follicle and mammary glands on rat chromosome 17. J. Hered. 2005;96(4):339-345. DOI:10.1093/jhered/esi053.; Kuramoto T., Yokoe M., Hashimoto R., Hiai H., Serikawa T. A rat model of hypohidrotic ectodermal dysplasia carries a missense mutation in the Edaradd gene. BMC Genet. 2011;12(1):91. DOI:10.1186/1471-2156-12-91.; Mikkola M. Molecular aspects of hypohidrotic ectodermal dysplasia. Am. J. Med. Genet. A. 2009;149A(9):2031-2036. DOI:10.1002/ajmg.a.32855.; Mikkola M., Thesleff I. Ectodysplasin signaling in development. Cytokine Growth Factor Rev. 2003;14(3-4):211-224. DOI:10.1016/s1359-6101(03)00020-0.; Morlon A., Munnich A., Smahi A. TAB2, TRAF6 and TAK1 are involved in NF-κB activation induced by the TNF-receptor, Edar and its adaptator Edaradd. Hum. Mol. Genet. 2005;14(23):3751-3757. DOI:10.1093/hmg/ddi405.; Mostowska A., Biedziak B., Zadurska M., Dunin-Wilczynska I., Lianeri M., Jagodzinski P. Nucleotide variants of genes encoding components of the Wnt signalling pathway and the risk of non-syndromic tooth agenesis. Clin. Genet. 2012;84(5):429-440. DOI:10.1111/cge.12061.; Mues G., Tardivel A., Willen L., Kapadia H., Seaman R., Frazier-Bowers S., Schneider P., D’Souza R. Functional analysis of Ectodysplasin-A mutations causing selective tooth agenesis. Eur. J. Hum. Genet. 2010;18(1):19-25. DOI:10.1038/ejhg.2009.127.; Newton K., French D., Yan M., Frantz G., Dixit V. Myodegeneration in EDA-A2 transgenic mice is prevented by XEDAR deficiency. Mol. Cell. Biol. 2004;24(4):1608-1613. DOI:10.1128/MCB.24.4.16081613.2004.; Nguyen-Nielsen M., Skovbo S., Svaneby D., Pedersen L., Fryzek J. The prevalence of X-linked hypohidrotic ectodermal dysplasia ( XLHED) in Denmark, 1995–2010. Eur. J. Med. Genet. 2013;56(5): 236-242. DOI:10.1016/j.ejmg.2013.01.012.; O’Brown N., Summers B., Jones F., Brady S., Kingsley D. A recurrent regulatory change underlying altered expression and Wnt response of the stickleback armor plates gene EDA. eLife. 2015;4:e05290. DOI:10.7554/eLife.05290.; Pantalacci S., Chaumot A., Benoît G., Sadier A., Delsuc F., Douzery E., Laudet V. Conserved features and evolutionary shifts of the EDA signaling pathway involved in vertebrate skin appendage development. Mol. Biol. Evol. 2008;25(5):912-928. DOI:10.1093/molbev/msn038.; Park J.H., Yamaguchi T., Watanabe C., Kawaguchi A., Haneji K., Takeda M., Kim Y.I., Tomoyasu Y., Watanabe M., Oota H., Hanihara T., Ishida H., Maki K., Park S.B., Kimura R. Effects of an Asian-specific nonsynonymous EDAR variant on multiple dental traits. J. Hum. Genet. 2012;57(8):508-514. DOI:10.1038/jhg.2012.60.; Sadier A., Viriot L., Pantalacci S., Laudet V. The ectodysplasin pathway: from diseases to adaptations. Trends Genet. 2014;30(1):24-31. DOI:10.1016/j.tig.2013.08.006.; Sadier A., Lambert E., Chevret P., Décimo D., Sémon M., Tohmé M., Ruggiero F., Ohlmann T., Pantalacci S., Laudet V. Tinkering signaling pathways by gain and loss of protein isoforms: the case of the EDA pathway regulator EDARADD. BMC Evol. Biol. 2015;15:129. DOI:10.1186/s12862-015-0395-0.; Siemens H.W. Studien über Vererbung von Hautkrankheiten. XII. Anhidrosis hypotrichotica. Arch. Dermat. Syph. 1937;175:565-577. DOI:10.1007/BF02058385.; Smahi A., Courtois G., Rabia S., Döffinger R., Bodemer C., Munnich A., Casanova J., Israël A. The NF-κB signalling pathway in human diseases: from incontinentia pigmenti to ectodermal dysplasias and immune-deficiency syndromes. Hum. Mol. Genet. 2002;11(20): 2371-2375. DOI:10.1093/hmg/11.20.2371.; Srivastava A., Pispa J., Hartung A., Du Y., Ezer S., Jenks T., Shimada T., Pekkanen M., Mikkola M., Ko M., Thesleff I., Kere J., Schlessinger D. The Tabby phenotype is caused by mutation in a mouse homologue of the EDA gene that reveals novel mouse and human exons and encodes a protein (ectodysplasin-A) with collagenous domains. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997;94(24):13069-13074. DOI:10.1073/pnas.94.24.13069.; Trzeciak W., Koczorowski R. Molecular basis of hypohidrotic ectodermal dysplasia: an update. J. Appl. Genet. 2015;57(1):51-61. DOI:10.1007/s13353-015-0307-4.; Vincent M., Biancalana V., Ginisty D., Mandel J., Calvas P. Mutational spectrum of the ED1 gene in X-linked hypohidrotic ectodermal dysplasia. Eur. J. Hum. Genet. 2001;9(5):355-363. DOI:10.1038/sj.ejhg.5200635.; Wahlbuhl-Becker M., Faschingbauer F., Beckmann M., Schneider H. Hypohidrotic ectodermal dysplasia: breastfeeding complications due to impaired breast development. Geburtshilfe Frauenheilkd. 2017;77(4):377-382. DOI:10.1055/s-0043-100106.; Wang K., Yamada S., Izumi H., Tsukamoto M., Nakashima T., Tasaki T., Guo X., Uramoto H., Sasaguri Y., Kohno K. Critical in vivo roles of WNT10A in wound healing by regulating collagen expression/synthesis in WNT10A-deficient mice. PLoS One. 2018;13(3): e0195156. DOI:10.1371/journal.pone.0195156.; Weech A. Hereditary ectodermal dysplasia (congenital ectodermal defect): a report of two cases. Am. J. Dis. Child. 1929;37(4):766-790. DOI:10.1001/archpedi.1929.01930040075005.; Wohlfart S., Meiller R., Hammersen J., Park J., Menzel-Severing J., Melichar V., Huttner K., Johnson R., Porte F., Schneider H. Natural history of X-linked hypohidrotic ectodermal dysplasia: a 5-year follow-up study. Orphanet J. Rare Dis. 2020;15(1):7. DOI:10.1186/s13023-019-1288-x.; Wright J.T., Fete M., Schneider H., Zinser M., Koster M.I., Clarke A.J., Hadj-Rabia S., Tadini G., Pagnan N., Visinoni A.F., Bergendal B., Abbott B., Fete T., Stanford C., Butcher C., D’Souza R.N., Sybert V.P., Morasso M.I. Ectodermal dysplasias: classification and organization by phenotype, genotype and molecular pathway. Am. J. Med. Genet. A. 2019;179(3):442-447. DOI:10.1002/ajmg.a.61045.; Xu M., Horrell J., Snitow M., Cui J., Gochnauer H., Syrett C.M., Kallish S., Seykora J.T., Liu F., Gaillard D., Katz J.P., Kaestner K.H., Levin B., Mansfield C., Douglas J.E., Cowart B.J., Tordoff M., Liu F., Zhu X., Barlow L.A., Rubin A.I., McGrath J.A., Morrisey E.E., Chu E.Y., Millar S.E. WNT10A mutation causes ectodermal dysplasia by impairing progenitor cell proliferation and KLF4-mediated differentiation. Nat. Commun. 2017;8:15397. DOI:10.1038/ncomms15397.; Yan M., Zhang Z., Brady J., Schilbach S., Fairbrother W., Dixit V. Identification of a novel death domain-containing adaptor molecule for ectodysplasin-A receptor that is mutated in crinkled mice. Curr. Biol. 2002;12(5):409-413. DOI:10.1016/s0960-9822(02)00687-5.; Yang J., Huang T., Petralia F., Long Q., Zhang B., Argmann C., Zhao Y., Mobbs C., Schadt E., Zhu J., Tu Z., GTEx Consortium. Synchronized age-related gene expression changes across multiple tissues in human and the link to complex diseases. Sci. Rep. 2015;5:15145. DOI:10.1038/srep15145.; Erratum in: Sci. Rep. 2016;6:19384. [corrected to Goldmann J.]. Yu M., Wong S., Han D., Cai T. Genetic analysis: Wnt and other pathways in nonsyndromic tooth agenesis. Oral Dis. 2019;25(3):646651. DOI:10.1111/odi.12931.; Zhang L., Yu M., Wong S.W., Qu H., Cai T., Liu Y., Liu H., Fan Z., Zheng J., Zhou Y., Feng H., Han D. Comparative analysis of rare EDAR mutations and tooth agenesis pattern in EDAR- and EDAassociated nonsyndromic oligodontia. Hum. Mutat. 2020;41(11): 1957-1966. DOI:10.1002/humu.24104.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3939

  19. 19
    Academic Journal

    المصدر: Russian Journal of Parasitology; Том 17, № 2 (2023); 276-283 ; Российский паразитологический журнал; Том 17, № 2 (2023); 276-283 ; 2541-7843 ; 1998-8435 ; 10.31016/1998-8435-2023-17-2

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vniigis.elpub.ru/jour/article/view/1047/763; Агаева Э. З., Ибадуллаева С. Дж. Нетрадиционные методы лечения растениями в ветеринарии // Азербайджанская аграрная наука. Баку, 2012. Вып. 2 (225).; Ибадуллаева С. Ч., Джафарли И. А. Эфирные масла и ароматерапия. Баку: Наука, 2007. 115 с.; Которков Н. И., Бакраков Е. А. Лекарственные травы в профилактике болезней новорожденных телят // Ветеринария. 1988. № 1. С. 14.; Магеррамов С. Г. Особенности ферментации сложной гельминтофауны овец Нахчыванской Автономной Республики, применение антигельминтных растений против желудочно-кишечных нематод и их токсикологическая оценка: автореф. дис. … д-ра биол. наук. Баку, 2011. 58 с.; Новрузова Л. A. Перспективы использования некоторых астровых растений, распространенных во флоре Нахчыванской Автономной Республики // Научные труды, серия естественных наук и медицины. Нахчыван, НГУ, 2015. №7 (72). С. 49-55.; Ятусевич А. И. Лекарственные средства в ветеринарии / Справочник. Минск: Уражай, 2006. 410 с.; Agayeva E. Z., İbadullayeva S. C., Asgerov A. A., Isayeva G. A. Analysis of plants in veterinary research of Azerbaycan on ethnobotanical materials. American Journal of Research Communication. 2013; 1 (4): 51-59.; Lans C., Georges K., Brown G. Non experimental validation of ethnoveterinary plants and indigenous knowledge used for backyard pigs and chickens in Trinidad and Tobago. Trop. Animal Health and Prod. 2007; 39: 375–385.; Marley C. L., Cook R., Keatinge R., Lampkin N. H. The effect of birdsfoot trefoil (Lotus corniculatus) and chicory (Cichorium intybus) on parasite intensities and performance of lambs naturally infected with helminth parasites. Vet. Parasitol. 2003; 112 (1-2): 147-155. doi:10.1016/s0304-4017(02)00412-0; Miner J. H., Li C., Mudd J. L. et al. Compositional and structural requirements for laminin and basement membranes during mouse embryo implantation and gastrulation. Development. 2004; 131 (10): 2247-2256. doi:10.1242/dev.01112; Mustafayeva S. J. Bakhshaliyeva K. F. Essential oil and antimycotic properties of Matricaria recutita L. AMEA-nın “Məruzələr”i. 2015; LXXI. 1: 98-102.; Rashid M. H., Tanzin R., Ghosh K. et. al. An ethnoveterinary survey of medicinal plants used to treat cattle diseases in Birishiri area, Netrakona district, Bangladesh. Advances in Natural and Applied Sciences. 2010; 4 (1): 10–13.; Souto W. M. S., Mourao J. S., Barboza R. R. D., Alves R. R. N. Parallels between zootherapeutic practices in ethnoveterinary and human complementary medicine in northeastern Brazil. J. Ethnopharmacol. 2011; 134: 753–767.; https://vniigis.elpub.ru/jour/article/view/1047

  20. 20
    Academic Journal

    المصدر: Drug development & registration; Том 12, № 3 (2023); 96-103 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 12, № 3 (2023); 96-103 ; 2658-5049 ; 2305-2066

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1547/1155; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/downloadSuppFile/1547/1751; Yasmin G., Khan M. A., Shaheen N., Hayat M. Q., Zafar M., Ahmad M. Pollen morphological diversity in selected species of Persicaria Mill. (Family; Polygonaceae). Medicinal Plants Research. 2010;4(10):862–870.; Маевский П. Ф. Флора средней полосы европейской части России. 11-е испр. и доп. изд. Москва: КМК; 2014. 635 с.; Высочина Г. И. Фенольные соединения в систематике и филогении семейства гречишные (Polygonaceae juss.). Сообщ. III. Род горец – Persicaria Mill. Turczaninowia. 2008;11(4):129–137.; Высочина Г. И. Флавоноиды сибирских видов рода Polygonum L. в связи с систематикой рода. Дис. … канд. биол. наук. Томск; 1969. 23 с.; Тахтаджян А. Л. Система магнолиофитов. Ленинград: Наука; 1987. 439 с.; Хромых Е. Г., Гудкова А. А., Чистякова А. С., Щепилова О. Н., редакторы. Теоретический подход к идентификации представителей рода Persicaria Mill. по морфологическим признакам. В сб.: Пути и формы совершенствования фармацевтического образования. Актуальные вопросы разработки и исследования новых лекарственных средств. Материалы 7-й Международной научно-методической конференции «Фармобразование-2018». 28–30 марта 2018 г. Воронеж.; Гудкова А. А., Чистякова А. С., Сорокина А. А., Кузнецов А. Ю., Хромых Е. Г. Идентификация представителей рода Persicaria Mill. по морфологическим признакам. Фармация. 2019;68(1):10–19. DOI:10.29296/25419218-2019-01-02.; Ворошилов В. Н. О принципах классификации полезных растений. Бюллетень Главного ботанического сада АН СССР. 1953;16:42–51.; Тупицына Н. Н. Ревизия семейства Polygonaceae Juss. во флоре южной части Красноярского края. Turczaninowia. 2012;15(2):44–48.; Keskin M., Severoğlu Z. The genus Persicaria (Polygonaceae) in Turkey with a new taxon record. EMU Journal of Pharmaceutical Sciences. 2020;3(2):97–105.; Алявдина К. П., Виноградова В. П. Определитель растений. Ярославль: Верхне-Волжское книжное издательство; 1972. 399 с.; Губанов И. А., Киселёва К. В., Новиков В. С., Тихомиров В. Н., Октябрёва Н. Б. Иллюстрированный определитель растений Средней России. Т. 2. Москва: КМК; 2003. 665 с.; Acheroyd J. R. New nomenclatural combinations in Persicaria Miller and a new hybrid name in Rumex L. (Polygonaceae). Contribuţii Botanice. 2013;48:15–21.; Allen L., Kershaw L. An illustrated key to the Polygonaceae of Alberta. Alberta Native Plant Counci; 2019. 14 p.; Kubinova R., Porizkova R., Bartl T., Navratilova A., Cizek A., Valentova M. Biological activities of polyphenols from Polygonum lapathifolium. Latin American and Caribbean Bulletin of Medicinal and Aromatic Plants. 2014;13(6):506–516.; Bomble F. W. Persicaria-Arten der Waldwege im Aachener Raum. Jahrbuch des Bochumer Botanischen Verein. 2016;7:267–281.; Timson J. The taxonomy of Polygonum lapathifolium L., P. nodosum Pers., and P. tomentosum Schrank. Watsollia. 1963;5(6):386–395.; Harold R. H., Craig C. F. Hinds Persicaria lapathifolia (Linnaeus) Gray. Journal Flora of North America. 2015;5:302.; Wilcox M., Yorkshire W. Recording Persicaria maculosa and P. lapathifolia (Polygonaceae). UK: British & Irish Botany; 2021;3(3):349–361.; Гудкова А. А. Фармакогностическое изучение представителей рода горец (Persicaria Mill.) как перспективного источника получения лекарственных препаратов. Дис. … канд. фарм. наук. Москва; 2020. 450 с. Доступно по: https://www.dissercat.com/content/farmakognosticheskoe-izuchenie-predstavitelei-roda-gorets-persicaria-mill-kak-perspektivnogo. Ссылка активна на 28.11.2022.; Гудкова А. А., Чистякова А. С., Сорокина А. А., Щепилова О. Н., Коренская И. М., Сливкин А. И. Анатомо-диагностические маркеры в определении подлинности представителей рядов Persicariaeformes Kom. и Lapathiiformes Worosch. семействa Polygonaceae lindl. Фармация. 2019;68(8):15–21. DOI:10.29296/25419218-2019-08-03.; Гудкова А. А., Агафонов В. А., Негробов В. В., Щепилова О. Н., Чистякова А. С., Сорокина А. А., Сливкин А. И. Изучение подлинности растительного сырья методом петиолярной анатомии на примере некоторых видов рода горец Persicária Mill. Биофармацевтический журнал. 2020;12(6):75–80. DOI:10.30906/2073-8099-2020-12-6-75-80.; Keshavarzi M., Mosaferi S., Shojaii M. Leaf anatomical studies of the annual species of Polygonum s.l. (Polygonaceae) in Iran. Phytologia Balcanica. 2012;18(2):127–133.; Shiha M. A. Tepal surface micromorphology and its taxonomic implications in some species of Polygonaceae in Egypt. Journal of Experimental Biology (Botany). 2019;5(2):261–268.; Чистякова А. С., Гудкова А. А., Кузнецов А. Ю., Васильева С. А. Количественное определение простых сахаров в траве некоторых видов рода Persicaria Mill. В сб.: IV Гаммермановские чтения: Сборник научных трудов. 30–31 января 2019. Санкт-Петербург: ООО «РУСАЙНС». 345–348 с.; Кузнецов А. Ю., Хромых Е. Г., Гудкова А. А., Чистякова А. С., Васильева С. А. Количественное определение аскорбиновой кислоты в некоторых представителях рода Persicariae Mill. В сб.: IV Гаммермановские чтения: Сборник научных трудов. 30–31 января 2019. Санкт-Петербург: ООО «РУСАЙНС». 171–175 с.; Чистякова А. С., Гудкова А. А. Сравнительное изучение водорастворимых витаминов в растительном сырье (на примере травы горца почечуйного (Polygonum Persicaria L. ) и горца щавелелистного Polygonum lapathifolium L.). В сб.: Перспективы лекарственного растениеведения: Материалы Международной научной конференции, посвященной 100-летию со дня рождения профессора Алексея Ивановича Шретера. 01–02 ноября 2018. Москва: Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений». 348–352 с.; Чистякова А. С., Гудкова А. А., Сорокина А. А., Сливкин А. И. Сравнительное изучение аминокислотного состава представителей рядов Persicariaeformes Kom. и Lapathiiformes Worosch. Химия растительного сырья. 2019;4:157–162. DOI:10.14258/jcprm.2019044347.; Лукша Е. А., Погодин И. С., Иванова Е. В. Оценка содержания фитоменадиона в надземной части растений семейства гречишные флоры Сибири. Бутлеровские сообщения. 2015;41(3):103–108.; Редкокашин Д. Е. Фитохимическое исследование сырья фармакопейных растений рода Polygonum. Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции: сборник научных трудов. 2010;65:102–104.; Abd-ElGawad A. M., Bonanomi G., Al-Rashed S. A., Elshamy A. I. Persicaria lapathifolia Essential Oil: Chemical Constituents, Antioxidant Activity, and Allelopathic Effect on the Weed Echinochloa colona. Plants. 2021;10(9):1798. DOI:10.3390/plants10091798.; Чистякова А. С., Гудкова А. А., Сливкин А. И., Чупандина Е. Е. Изучение профиля органических кислот видов рода горец (Persicaria mill.). Фармация и фармакология. 2022;10(1):44–54. DOI:10.19163/2307-9266-2022-10-1-44-54.; Пименова И. А., Гудкова А. А., Чистякова А. С. Количественное содержание суммы флавоноидов в некоторых представителях рода Polygonum L. В сб.: Пути и формы совершенствования фармацевтического образования. Актуальные вопросы разработки и исследования новых лекарственных средств: Материалы 7-й Международной научно-методической конференции «Фармобразование-2018». 28–30 марта 2018. Воронеж: Воронежский государственный университет. 287–290 с.; Grudzinskaya L., Gemejiyeva N., Karzhaubekova Zh., Nelina N. Botanical coverage of the leading families of medicinal flora of Kazakhstan. BIO Web Conf. 2021;31:00007. DOI:10.1051/bioconf/20213100007.; Smolarz H. D. Chromatographical analysis of phenolic acids in some species of Polygonum L. genus. Quantitative determination of the major components by high performance liquid chromatography (HPLC). Acta Societatis Botanicorum Poloniae. 2000;69(1):21–23.; Smolarz H. D. Comparative study on the free flavonoid aglycones in herbs of different species of Polygonum L. Acta Poloniae Рharmaceutica – Drug Rescarch. 2002;59:145–148.; Smolarz H. D. Flavonoids from Polygonum lapathifolium ssp. tomentosum. Pharmaceutical Biology. 2002;40(5):390–394.; Smolarz H. D. Сhromatographical analysis of phenolic acids in some species of Polygonum L. Genus part 1 qualitative analysis by Two-Dimensional Thin Layer Chromatography (TLC). Acta Societatis Botanicorum Poloniae. 1999;68(4):287–290.; Гудкова А. А., Перова И. Б., Эллер К. И., Чистякова А. С., Сливкин А. И., Сорокина А. А. Фенольные соединения в траве горца почечуйного, произрастающего в Воронежской области. Химико-фармацевтический журнал. 2020;54(3):37–41. DOI:10.30906/0023-1134-2020-54-3-37-41.; Чистякова А. С., Гудкова А. А. Содержание дубильных веществ в представителях рода Persicaria mill. В сб.: От растения до лекарственного препарата: Материалы международной научной конференции. 04–05 июня 2020. Москва: Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений». 281–285 с.; Лукша Е. А., Корнеева И. Н., Савченко И. А., Иванова Е. В., Калинкина Г. И., Коломиец Н. Э. Минеральный состав некоторых видов семейства Polygonaceae флоры Сибири. Растительный мир Азиатской России. 2018;3(31):102–106. DOI:10.21782/RMAR1995-2449-2018-3(102-106).; Лазарев А. В., Недопекина C. В. Обзор рода Polygonum L. Региональные геосистемы. 2009;11(66):18–24.; Muatasim J., Tawseef A. M., Rakesh K. K. Traditional use of medicinal plants among the indigenous communities in Baramulla district, Jammu and Kashmir, India. Nordic Journal of Botany. 2022;2022(6):e03387. DOI:10.1111/njb.03387.; Husain F., Ahmad B., Hameed I., Dastagir G., Sanaullah P., Azam S. Antibacterial, antifungal and insecticidal activities of some selected medicinal plants of Polygonaceae. African Journal of Biotechnology. 2010;9(31):5032–5036.; Hailemariam A., Feyera M., Deyou T., Abdissa N. Antimicrobial Chalcones from the Seeds of Persicaria lapathifolia. Biochemistry & Pharmacology: Open Access. 2018;7(1):1000237. DOI:10.4172/2167-0501.1000237.; Bulbul L. Phytochemical and pharmacological evaluations of Polygonum lapathifolium stem extract for anthelmintic and antiemetic activity. International Current Pharmaceutical Journal. 2013;2(3):57–62.; Gudkova A. A., Buzlama A. V., Slivkin A. I. Preclinical studies of pharmacological activity of Persicaria maculosa herb extract. Reviews on clinical pharmacology and drug therapy. 2019. 25 p.; Kim Y., Jang D.-S., Park S.-H., Yun J., Min B. K., Min K.-R., Min K., Lee H.-K. Flavonol glycoside gallate and ferulate esters from Persicaria lapathifolia as inhibitors of superoxide production in human monocytes stimulated by unopsonized zymosan. Planta Medica. 2009;6(01):72–74. DOI:10.1055/s-0029-1243112.; Seimandi G., Alvarez N., Stegmayer M. I., Fernandez L., Ruiz V., Favaro M. A., Derita M. An Update on Phytochemicals and Pharmacological Activities of the Genus Persicaria and Polygonum. Molecules. 2021;26(19):5956. DOI:10.3390/molecules26195956.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1547