-
1Academic Journal
المؤلفون: М.Г. Евдокимов, Л.В. Мешкова, В.С. Юсов
المصدر: Письма в Вавиловский журнал генетики и селекции, Vol 10, Iss 3, Pp 166-176 (2024)
مصطلحات موضوعية: бурая ржавчина, стеблевая ржавчина, мучнистая роса, твердая головня, пыльная головня, поражение, температура воздуха, осадки, относительная влажность воздуха, Genetics, QH426-470
وصف الملف: electronic resource
-
2Academic Journal
المؤلفون: G. V. Volkova, O. A. Kudinova, O. O. Ignatieva, V. D. Agapova, E. V. Gladkova, O. F. Vaganova, I. P. Matveeva, Г. В. Волкова, О. А. Кудинова, О. О. Игнатьева, В. Д. Агапова, Е. В. Гладкова, О. Ф. Ваганова, И. П. Матвеева
المساهمون: The research was carried out in accordance with the State Assignment of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation within the framework of research on the topic No FGRN‐2022‐0004, Исследования выполнены согласно Государственному заданию Министерства науки и высшего образования РФ в рамках НИР по теме № FGRN‐2022‐0004
المصدر: South of Russia: ecology, development; Том 18, № 4 (2023); 161-172 ; Юг России: экология, развитие; Том 18, № 4 (2023); 161-172 ; 2413-0958 ; 1992-1098
مصطلحات موضوعية: популяция, triticale, leaf rust, stripe rust, stem rust, Puccinia triticina, Puccinia striiformis, Puccinia graminis, resistance, population, тритикале, бурая ржавчина, желтая ржавчина, стеблевая ржавчина, устойчивость
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/3007/1392; Jambuthenne D.T., Riaz A., Athiyannan N., Alahmad S., Ng W.L., Ziems L., Afanasenko O., Periyannan S.K., Aitken E., Platz G., Godwin I. Mining the Vavilov wheat diversity panel for new sources of adult plant resistance to stripe rust // Theoretical and Applied Genetics. 2022. V. 135. N 4. P. 1355–1373. doi:10.1007/s00122-022-04037-8; Mergoum M., Sapkota S., ElDoliefy A.E.A., Naraghi S.M., Pirseyedi S., Alamri M.S., AbuHammad W. Triticale (x Triticosecale Wittmack) Breeding // Advances in Plant Breeding Strategies: Cereals. 2019. V. 5. P. 405–451. URL: https://www.researchgate.net/publication/336312409_Triticale_X_Triticosecale_Wittmack_Breeding; Kwiatek M.T., Noweiska A., Bobrowska R., Czapiewska A., Aygün M., Munyamahoro F.D.A., Mikołajczyk S., Tomkowiak A., Kurasiak‐Popowska D., Poślednik P. Novel Tetraploid Triticale (Einkorn Wheat× Rye) ‐ A Source of Stem Rust Resistance // Plants. 2023. V. 12(2). P. 278. doi:10.3390/plants12020278; Волкова Г.В., Кудинова О.А., Ким Ю.С., Агапова В.Д., Ваганова О.Ф. Иммунологическая оценка сортов озимой тритикале к Pyrenophora tritici‐repentis и Puccinia triticina в условиях юга России // Достижение науки и техники АПК. 2023. T. 37. N 5. C. 39–44. URL: http://i.uran.ru/webcab/journals/journal/dostizheniya-nauki-i-tehniki-apk/dostizheniya-nauki-i-tehniki-apk-2023-t37-n-5; Калмыш А.П., Ковтуненко В.Я., Панченко В.В. Роль озимой тритикале в сохранении и улучшении экологического состояния агрофитоценозов и снижении пестицидной нагрузки на здоровье человека (обзор) // Аграрная Россия. 2023. N 2. С. 8–15. URL: http://agros.folium.ru/index.php/agros/article/view/3391; Матвеева И.П., Ким Ю.С., Ваганова О.Ф., Мирошниченко О.О., Кремнева О.Ю., Волкова Г.В. Устойчивость широко районированных сортов озимой пшеницы различной селекции к эпифитотийно опасным заболеваниям: бурой, желтой, стеблевой ржавчине и желтой пятнистости листьев пшеницы в Краснодарском крае // Международный научно‐исследовательский журнал. 2018. N 12–2(78). С. 40–44. doi:10.23670/IRJ.2018.78.12.044; Wellings C.R. Global status of stripe rust : a review of historical and current threats // Euphytica. 2011. V. 179(1). P. 129–141. doi:10.1007/s10681-011-0360-y; Айнур М.К. Фитопатологическая оценка влияния желтой ржавчины на генотипы мягкой пшеницы (Triticum aestivum L.) Азербайджанского происхождения // Аграрный научный журнал. 2023. N 5. С. 16–23. doi:10.28983/asj.y2023i5pp16-23; Prank M., Kenaley S.C., Bergstrom G.C., Acevedo M., Mahowald N.M. Climate change impacts the spread potential of wheat stem rust, a significant crop disease // Environmental Research Letters. 2019. V. 14. N 12. Article ID: 124053. doi:10.1088/1748-9326/ab57de; Soko T., Bender C.M., Pretorius Z.A. Yield Loss Associated with Different Levels of Stem Rust Resistance in Bread Wheat // Plant Disease. 2018. N 102(12). P. 2531–2538. doi:10.1094/PDIS-02-18-0307-RE; Жуковский А.Г., Крупенько Н.А. Изменение фитопатологической ситуации в посевах зерновых культур // Наше сельское хозяйство. 2020. N 5. С. 60–65.; Шаманин В.П., Потоцкая И.В., Шепелев С.С., Пожерукова В.Е., Трущенко А.Ю., Чурсин А.С., Моргунов А.И. Оценка линий синтетической пшеницы (Triticum durum/Aegilops tausсhii) по вегетационному периоду и устойчивости к болезням // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2017. T. 21. N 3. C. 347–353. doi:10.18699/VJ17.252; Баранова О.А., Сибикеев С.Н., Конькова Э.А. Анализ устойчивости к стеблевой ржавчине и идентификация Sr‐генов у интрогрессивных линий яровой мягкой пшеницы // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2023. Т. 184. N 1. С. 177–186. doi:10.30901/2227-8834-2023-1-177-186; Беспалова Л.А., Аблова И.Б., Худокормова Ж.Н., Пузырная О.Ю., Набоков Г.Д., Агаева Е.В. Тархов А.С. Генетическая защищенность сортов озимой пшеницы от ржавчинных болезней // Рисоводство. 2019. N 4. С. 30–37.; Лапочкина И.Ф., Баранова О.А., Гайнуллин Н.Р., Волкова Г.В., Гладкова Е.В., Ковалева Е.О., Осипова А.В. Создание линий озимой пшеницы с несколькими генами устойчивости к Puccinia graminis Pers. f. sp. tritici для использования в селекционных программах России // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018. T. 22. N 6. С. 676–684. doi:10.18699/VJ18.410; Shamanin V.P., Pototskaya I.V., Shepelev S.S., Pozherukova V.E., Salina Е.A., Skolotneva Е.S., Hodson D., Hovmøller M., Patpour M., Morgounov A.I. Stem rust in Western Siberia – race composition and effective resistance genes // Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2020. N 24. P. 131–138. doi:10.18699/VJ20.608; Rahmatov M., Rouse M.N., Steffenson B.J., Andersson S.C., Wanyera R., Pretorius Z.A., Houben A., Kumarse N., Bhavani S., Johansson E. Sources of stem rust resistance in wheat‐alien introgression lines // Plant Disease. 2016. V. 100(6). P. 1101–1109. doi:10.1094/PDIS-12-15-1448-RE; Ali S., Rodriguez‐Algaba J., Thach T., Sørensen C.K., Hansen J.G., Lassen P., Nazari K., Hodson D.P., Justesen A.F., Hovmøller M.S. Yellow rust epidemics worldwide were caused by pathogen races from divergent genetic lineages // Frontiers in Plant Science. 2017. N 8. P. 1057. doi:10.3389/fpls.2017.01057; Hubbard A., Lewis C.M., Yoshida K., Ramirez‐Gonzalez R.H., de Vallavieille‐Pope C., Thomas J., Kamoun S., Bayles R., Uauy C., Saunders D.G. Field pathogenomics reveals the emergence of a diverse wheat yellow rust population // Genome biology. 2015. N 16. P. 1–15. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25723868/.; Матвеева И.П., Волкова Г.В. Желтая ржавчина пшеницы. Распространение, вредоносность, меры борьбы (обзор) // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2019. N 2(46). С. 102–116. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/zheltaya-rzhavchina-pshenitsy-rasprostranenie-vredonosnost-mery-borby-obzor?ysclid=lr7qkrkoa4546735477; Beddow J.M., Pardey P.G., Chai Y., Hurley T.M., Kriticos D.J., Braun H.J., Park R.F., Cuddy W.S., Yonow T. Research investment implications of shifts in the global geography of wheat stripe rust // Nature Plants. 2015. V. 1(10). P. 1–5. doi:10.1038/nplants.2015.132; Volkova G.V., Kudinova O.A., Matveeva I.P. Virulence and diversity of Puccinia striiformis in South Russia // Phytopathologia Mediterranea. 2021. V. 60(1). P. 119–127. DOI:10.36253/phyto-12396.; Kumar K., Jan I., Saripalli G., Sharma P.K., Mir R.R., Balyan H.S., Gupta P.K. An update on resistance genes and their use in the development of leaf rust resistant cultivars in wheat // Frontiers in Genetics. 2022. N 13. Article ID: 816057. doi:10.3389/fgene.2022.816057; Hussain M., Khan M.A., Hussain M., Javed N., Khaliq I. Monitoring of rust virulence pattern through avirulence/virulence formula // Archives of Phytopathology and Plant Protection. 2016. N 48. P. 421–433. doi:10.1080/03235408.2014.893635; Ali Y., Khan M.A., Aatif H.M., Ijaz M., Atiq M., Bashair M, Mansha M.Z., Khan A.A., Hussain M. Quantification of leaf rust resistance source in wheat germplasm in relation to epidemiological factors // Arab Journal of Plant Protection. 2020. V. 38. N 4. P. 344–353. URL: https://www.researchgate.net/publication/346967888_Quantification_of_Leaf_Rust_Resistance_Source_in_Wheat_Germplasm_in_Relation_to_Epidemiological_Factors; Khan M.H., Bukhari A., Dar Z.A., Rizvi S.M., Status and strategies in breeding for rust resistance in wheat // Agricultural Sciences. 2013. V. 4(06). P. 292. doi:10.4236/as.2013.46042; Манукян И.Р., Абиева Т.С., Догузова Н.Н. Скрининг сортов озимой мягкой пшеницы российской и зарубежной селекции на устойчивость к бурой ржавчине в условиях предгорной зоны Центрального Кавказа // Аграрный научный журнал. 2022. N 10. С. 55–61. doi:10.28983/asj.y2022i10pp55-61; Евдокимов М.Г., Юсов В.С., Кирьякова М.Н., Мешкова Л.В., Пахотина И.В. Глушаков Д.А. Перспективные генетические источники для селекции яровой твердой пшеницы в Западной Сибири // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2022. Т. 26. N 7. С. 609–621. doi:10.18699/VJGB-22-75; Митрофанова О.П. Генетические ресурсы пшеницы в России: состояние и предселекционное изучение // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2014. T. 16. N 1. C. 10–20.; Кашуба Ю.Н., Мешкова Л.В., Плотникова Л.Я. Источники устойчивости к бурой ржавчине озимой мягкой пшеницы из коллекции ВИР для Западной Сибири // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. 2019. N 7(148). C. 17–23.; Tyryshkin L.G., Lysenko N.S., Kolesova M.A. Effective Resistance to Four Fungal Foliar Diseases in Samples of Wild Triticum L. Species from the VIR (NI Vavilov All‐Russian Institute of Plant Genetic Resources) Collection: View from Vavilov’s Concepts of Plant Immunity // Plants. 2022. V. 11. Iss. 24. P. 3467. doi:10.3390/plants11243467; Zadoks J.C., Chang T.T., Konzak C.F. A decimal code for the growth stages of cereals // Weed research. 1974. V. 14. N 6. P. 415–421.; Анпилогова Л.К., Волкова Г.В. Методы создания искусственных инфекционных фонов и оценки сортообразцов пшеницы на устойчивость к вредоносным болезням (фузариозу колоса, ржавчинам, мучнистой росе). Краснодар: РАСХН, ВНИИБЗР, 2000. 28 с.; Roelfs A.P., Singh R.P., Saari E.E. Rust Diseases of Wheat: Concept and Methods of Disease Management. Mexico: CIMMYT, 1992. 81 p.; Bariana H.S., McIntosh R.A. Cytogenetic studies in wheat XV. Location of rust resistance genes in VPM1 and their genetic linkage with other disease resistance genes in chromosome 2A // Genome. 1993. V. 36. N 3. P. 476–482. doi:10.1139/g93-065; Волкова Г.В., Кудинова О.А., Гладкова Е.В., Ваганова О.Ф., Данилова А.В., Матвеева И.П. Вирулентность популяций возбудителей ржавчины зерновых колосовых культур (учебное пособие). Краснодар, 2018. 38 с.; Gassner G., Straib W. Die Bestimmung der biologischen Rassen des Weizengelbrostes Puccinia glumarum f. sp. tritici Schmidt Erikss. u. Henn. 1932.; Mains E.B., Jackson H.C. Physiologic specialization in the leaf rust of wheat: Puccinia triticina Erikss. // Phytopathology. 1926. V. 16. N 1. P. 89–120.; Stakman E.S., Levine M.N. The determination of biologic forms of Puccinia graminis on Triticum ssp. // Minnesota Agricultural Experiment Station Technical Bulletin. 1922. V. 8. P. 3–10.; Gultyaeva E., Shaydayuk E., Gannibal P. Leaf rust resistance genes in wheat cultivars registered in Russia and their influence on adaptation processes in pathogen populations // Agriculture. 2021. V. 11. N 4. P. 319. doi:10.3390/agriculture11040319; Volkova G.V., Kudinova O.A., Vaganova O.F. Postulation of leaf rust resistance genes of 20 wheat cultivars in southern Russia // Journal of Plant Protection Research. 2020. V. 3. N 3. P. 225–232. URL: https://www.researchgate.net/publication/344428476_Postulation_of_leaf_rust_resistance_genes_of_20_wheat_cultivars_in_southern_Russia; Volkova G., Kudinova O., Vaganova O., Agapova V. Effectiveness of leaf rust resistance genes in the adult and juvenile stages in southern Russia in 2011–2020 // Plants. 2022. V. 11. Iss. 6. P. 793. doi:10.3390/plants11060793; Baranova O., Solyanikova V., Kyrova E., Kon’kova E., Gaponov S., Sergeev V., Shevchenko S., Mal’chikov P., Dolzhenko D., Bespalova L., Ablova I. Evaluation of Resistance to Stem Rust and Identification of Sr Genes in Russian Spring and Winter Wheat Cultivars in the Volga Region // Agriculture. 2023. V. 13. Iss. 3. P. 635. doi:10.3390/agriculture13030635; Гультяева Е.И., Шайдаюк Е.Л. Идентификация генов устойчивости к бурой ржавчине у новых российских сортов мягкой пшеницы // Биотехнология и селекция растений. 2021. T. 4. N 2. C. 15–27. doi:10.30901/2658-6266-2021-2-o2; Skowrońska R., Tomkowiak A., Nawracała J., Kwiatek M.T. Molecular identification of slow rusting resistance Lr46/Yr29 gene locus in selected triticale (× Triticosecale Wittmack) cultivars // Journal of Applied Genetics. 2020. V. 61. N 3. P. 359–366. doi:10.1007/s13353-020-00562-8; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/3007
-
3Academic Journal
المؤلفون: T. A. Timoshenkova, Т. А. Тимошенкова
المصدر: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 1 (2024); 150-160 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 1 (2024); 150-160 ; 2072-6724
مصطلحات موضوعية: сортообразец, brown leaf rust, resistance, virulence, variety specimen, бурая листовая ржавчина, устойчивость, вирулентность
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2251/986; Лухменёв В.П. Защита зерновых культур от вредителей болезней и сорняков на Южном Урале. – Оренбург: Изд. центр ОГАУ, 2000. – С. 44–57.; Пересыпкин В.Ф. Болезни зерновых культур. – М.: Колос, 1979. – 280 с.; Колесниченко Т.В. Анализ вредоносности и распространённости бурой ржавчины в Краснодарском крае на 2018–2022 // Тенденции развития науки и образования. – 2022. – № 90–4. – С. 17–19.; Лухменёв В.П. Разработка интенсивной технологии возделывания зерновых культур, кукурузы на зерно в юго-западной зоне Оренбургской области // Обзор результатов научных исследований по защите растений в научных учреждениях Европейской части РСФСР за 1988 год: Информация ВНИИЗР. – Воронеж, 1988. – С. 36.; Структура популяций листовых патогенов яровой пшеницы в западно-азиатских регионах России и Северном Казахстане в 2017 г. / Е.И. Гультяева, Н.М. Коваленко, В.П. Шаманин [и др.] // Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2018. – Т. 22, № 3. – С. 363–369. – DOI:10.18699/VJ18.372.; Кекало А.Ю, Зарганян Н.Ю., Немченко В.В. Распространение фитопатогенов на зерновых яровых культурах в Уральском регионе // Аграрный вестник Урала. – 2022. – № 11 (226). – С. 14–22.; Максимович М.М. Селекция и семеноводство полевых культур. – М: Сельхозиздат, 1962. – 408 с.; Структура российских популяций гриба Pucnia triticin Eriks / Е.И. Гультяева, Е.Л. Шайдаюк, И.А. Казарцев [и др.] // Вестник защиты растений. – 2015. – № 3 (85). – С. 5–10.; Рипбергер Е.И., Боме Н.А., Траутц Д. Устойчивость к листовым фитопатогенам гибридных (F4,F5) форм яровой мягкой пшеницы (Triticum aestivum L.) в различных эколого-географических условиях // Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2016. – Т. 20, № 5. – С. 629–635. – DOI:10.18699/VJ16.184.; Источники и доноры для селекции яровой пшеницы на устойчивость к стрессорным факторам среды / Ю.В. Зеленева, В.П. Судникова, В.В. Плахотник [и др.] // Вопросы современной науки и практики. – 2017. – № 3 (65). – С. 17–25.; Кочмарский В.С., Хоменко С.О., Федоренко И.В. Оценка коллекционных образцов пшеницы мягкой по устойчивости к листовым грибным болезням в лесостепи Украины // Земледелие и селекция в Белоруси. – 2015. – № 51. – С. 320–326.; Маркелова Т.С. Скрининг мирового о генофонда яровой пшеницы по устойчивости к бурой ржавчине и идентификация LR-генов у некоторых сортов и селекционных линий // Аграрный научный журнал. – 2016. – № 5. – С. 18–21.; Писарев В.В., Зуев Е.В., Брыкова А.Н. Исходный материал для селекции яровой мягкой пшеницы в условиях Новосибирской области // Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2018. – № 7 (22). – С. 784–794.; Исходный материал для селекции мягкой пшеницы в условиях Кировской области / О.С. Амунова, Л.В. Волкова, Е.В. Зуев [и др.] // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. – 2021. – Т. 22, № 5. – С. 661–675. – DOI:10.30766/2072-9081.2021.22.5.661-675.; Гультяева Е.И., Казарцева И.А. Молекулярно-генетические подходы в изучении популяций возбудителя бурой ржавчины пшеницы // Вестник защиты растений. – 2018. – № 2 (96). – С. 5–12.; Identification of leaf rust resistance genes in selected wheat cultivars and development of multiplex PCR / A. Tomkowiak, R. Skowroǹska, A. Buda [et al.] // Open Life Sciences. – 2019. – Vol. 14 (1). – P. 327–334. – DOI:10.1515/boil-2019-0036.; Genome-wide association mapping for resistance to leaf, stem, and yellow rusts of common wheat under field conditions of South Kazakhstan / Y. Genievskaya, Y. Turuspekov, A. Rsaliyev, S. Abugalieva // Peer J. – 2020. – Vol. 8. – P. 9820. – DOI:10.7717/peerj.9820.; Breeding Wheat for Durable Leaf Rust Resistance in Southern Africa: Variability, Distribution, Current Control Strategies, Challenges and Future Prospects / S. Figlan, K. Ntushelo, L. Mwadzingeni [et al.] // Front Plant Sci. – 2020. – Vol. 11. – P. 549. – DOI:10.3389/fpls.2020.00549.; Mining of leaf rust resistance genes content in Egyptian bread wheat collection / M.A.M. Atia, E.A. ElKhateeb, R.M. Abd El-Maksoud [et al.] // Plants. – 2021. – Vol. 10 (7). – P. 1378. – DOI: 10/3390/plants10071378.; Harnessing genetic resistance to rusts in wheat and integrated rust management methods to develop more durable resistant cultivars / J. Mapuranga, N. Zhang, L. Zhang [et al.] // Front Plant Sci. – 2022. – Vol. 13. – P. 951095. – DOI:10.3389/fpls.2022.951095.; Михайлова Л.А. Генетика взаимоотношений возбудителя бурой ржавчины и пшеницы / под. ред. акад. РАСХН М.М. Левитина. – СПб.: ВИЗР, 2006. – 80 с.; Фенотипический состав Puccinia triticina на образцах мягкой пшеницы в Омской области в 2016 г. / Е.И. Гультяева, В.П. Шаманин, Е.Л. Шайдаюк [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2017. – № 2 (43). – С. 16–23.; Гультяева Е.И., Шайдаюк Е.Л. Идентификация генов устойчивости к бурой ржавчине у новых российских сортов мягкой пшеницы // Биотехнология и селекция растений. – 2021. – Т. 4, № 2. – С.15–27. – DOI:10.30901/2658-6266-2021-2-о2.; Разнообразие новых российских сортов мягкой пшеницы по генам устойчивости к бурой ржавчине / Е.И. Гультяева, Е.Л. Шайдаюк, В.В. Веселова [и др.] // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. – 2022. – Т. 183, № 4. – С. 208–218. – DOI:10.30901/2227-8834-2022-4-208-218.; Сидоров А.В., Лебедева Т.В., Тырышкин Л.Г. Эффективная ювенильная устойчивость сортов яровой пшеницы к листовой ржавчине и мучнистой росе // Известия Петербургского государственного аграрного университета. – 2018. – № 2 (51). – С. 84–88.; Сочалова Л.П., Пискарев В.В. Устойчивость образцов мягкой пшеницы к Blumeria graminis и Puccinia recondita с известными генами устойчивости // Достижения науки и техники АПК. – 2019. – Т. 33, № 11. – С. 34–42. – DOI:10.24411/0235-2451-2019-11108.; Селекция яровой мягкой пшеницы на устойчивость к листостебельным болезням на Южном Урале / Е.И. Гультяева, В.А. Тюнин, Е.Р. Шрейдер [и др.] // Российская сельскохозяйственная наука. – 2021. – № 1. – С. 8–12. – DOI:10.31857/S2500262721020026.; Пополнение, сохранение в живом виде и изучение мировой коллекции пшеницы, эгилопса и тритикале: метод. указания / А.Ф. Мережко [и др.]. – СПб., 1999. –82 с.; Изучение генетических ресурсов зерновых культур по устойчивости к вредным организмам: метод. пособие / Е.Е. Радченко [и др.]. – М.: РАСХН, 2008. – С. 5–31.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2251
-
4Academic Journal
المؤلفون: Агеева Е.В, Капко Т.Н., Советов В.В.
المصدر: Письма в Вавиловский журнал генетики и селекции, Vol 9, Iss 1, Pp 21-29 (2023)
مصطلحات موضوعية: устойчивость, яровая пшеница, мучнистая роса, бурая ржавчина, пыльная головня, Genetics, QH426-470
وصف الملف: electronic resource
-
5Conference
المؤلفون: Болдаков Дмитрий Максимович, Давоян Эдвард Румикович, Зубанова Юлия Сергеевна, Давоян Румик Оганесович, Басов Владимир Игоревич
مصطلحات موضوعية: мягкая пшеница, стеблевая ржавчина, Ae. tauschii, молекулярные маркеры, Sr-гены
Relation: https://doi.org/10.5281/zenodo.8251459; https://doi.org/10.5281/zenodo.8251460; oai:zenodo.org:8251460
-
6Academic Journal
المؤلفون: L. P. Sochalova, V. A. Aparina, N. I. Boyko, E. V. Zuev, E. V. Morozova, E. V. Musinov, N. A. Vinichenko, I. N. Leonova, V. V. Piskarev, Л. П. Сочалова, В. А. Апарина, Н. И. Бойко, Е. В. Зуев, Е. В. Морозова, К. К. Мусинов, Н. А. Виниченко, И. Н. Леонова, В. В. Пискарев
المساهمون: The study of spring wheat varieties samples for quality traits and the content of micro- and macroelements was carried out with the financial support of the Russian Science Foundation (project 23-16-00041, https://rscf.ru/project/23-16-00041/). Genotyping and assessment of susceptibility to leaf rust was carried out with the support of the budget project of the Institute of Cytology and Genetics SB RAS (FWNR-2022-0037).
المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 27, № 8 (2023); 988-999 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 27, № 8 (2023); 988-999 ; 2500-3259
مصطلحات موضوعية: клейковина, leaf rust, population, isolate, virulence, resistance gene, yield, microelement, macroelement, protein, gluten, бурая ржавчина, популяция, изолят, вирулентность, ген устойчивости, урожайность, микроэлемент, макроэлемент, белок
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4010/1786; Aktar-Uz-Zaman M., Tuhina-Khatun М., Hanafi M.M., Sahebi M. Genetic analysis of rust resistance genes in global wheat cultivars: an overview. Biotechnol. Biotechnol. Equip. 2017;31(3):431445. DOI 10.1080/13102818.2017.1304180; Adonina I.G., Bukatich E.Y., Salina E.A., Piskarev V.V., Tyunin V.A., Shreyder E.R. Inheritance of the translocation in chromosome 2D of common wheat from Aegilops speltoides Tausch with leaf rust resistance gene. Russ. J. Genet. 2018;54(8):989993. DOI 10.1134/S1022795418080021; Brevis J.C., Chicaiza O., Khan I.A., Jackson L., Morris C.F., Dubcovsky J. Agronomic and quality evaluation of common wheat nearisogenic lines carrying the leaf rust resistance gene Lr47. Crop Sci. 2008;48(4):14411451. DOI 10.2135/cropsci2007.09.0537; Chełkowski J., Golka L., Stepień Ł. Application of STS markers for leaf rust resistance genes in nearisogenic lines of spring wheat cv. Thatcher. J. Appl. Genet. 2003;44(3):323338; Davoyan R.O., Bebyakina I.V., Davoyan E.R., Zinchenko A.S., Zubanova Yu.S., Mikov D.S. Introgressive lines of common wheat with the genetic material of Agropyron glaucum. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2015;19(1):8390. DOI 10.18699/VJ15.010 (in Rus sian); Davydova N.V., Kazachenko A.O. Peculiarities of selection of initial material for selection of spring soft wheat in the conditions of the Central NonChernozem Region. Vestnik Altayskogo Gosudarstvennogo Agrarnogo Universiteta = Bulletin of Altai State Agrarian University. 2013;103(5):59 (in Russian); Friebe B., Jiang J., Raupp W.J., McIntosh R.A., Gill B.S. Characte ri zation of wheatalien translocations conferring resistance to diseases and pests: current status. Euphytica. 1996;91:5987. DOI 10.1007/BF00035277; Germplasm releases from the wheat genetics resource center. Available: https://www.kstate.edu/wgrc/genetic_resources/germ_plasm_releases_from_the_wgrc.html (Accessed 07.10.2022).; Grib S.I. Strategy and priorities of crop breeding in Belarus. Proceedings of the International Conference “Breeding process optimization: factor of the stabilization and increase of plant production in Siberia”. Krasnoyarsk, Kirenskiy Institute of Physics, 2019;23-28 (in Russian); GRIS. Genetic Resources Information System for Wheat and Triticale. Available: http://www.wheatpedigree.net/ (Accessed 07.10.2022).; Gryaznov A.A., Pigorev I.Ya. Source material for breeding spring wheat for leaf rust resistance. Vestnik Kurskoy Gosudarstvennoy Sel’skohozyaystvennoy Akademii = Bulletin of the Kursk State Agricultural Academy. 2019;5:4552 (in Russian); Gultyaeva E.I. Methods for identifying wheat resistance genes to leaf rust using DNA markers and characterizing the effectiveness of Lrgenes. St. Petersburg: VNIIZR Publ., 2012 (in Russian); Gultyaeva E.I. The diversity of Russian soft wheat varieties in genes for brown rust. Proceedings of the International Conference “Current issues in plant immunity against pests”. St. Petersburg: AllRussia Plant Protection Institute, 2016;24 (in Russian); Gultyaeva E.I. The genetic structure of Puccinia triticina populations in Russia and its variability induced by the host plant. Doct. Biol. Sci. Diss. St. Petersburg, 2018 (in Russian); Gultyaeva E.I., Shaydayuk E.L. Identification of leaf rust resistance genes in the new Russian varieties of common wheat. Biotekhnologiya i Selektsiya Rasteniy = Plant Biotechnology and Breeding. 2021;4(2):1527. DOI 10.30901/2658626620212o2 (in Russian); Gultyaeva E.I., Shaydayuk E.L., Shamanin V.P., Аkhmetova А.К., Tyunin V.A., Shreyder E.R., Kashina I.V., Eroshenko L.A., Sereda G.A., Morgunov A.I. Genetic structure of Russian and Kazakhstani leaf rust causative agent Puccinia triticina Erikss. populations as assessed by virulence profiles and SSR markers. Agric. Biol. 2018;53(1):8595. DOI 10.15389/agrobiology.2018.1.85eng; Gultyaeva E.I., Sibikeev S.N., Druzhin A.E., Shaydayuk E.L. Enlargement of genetic diversity of spring bread wheat resistance to leaf rust (Puccinia triticina Eriks.) in Lower Volga region. Sel’sko khozyaistvennaya Biologia = Agricultural Biology. 2020; 55(1):2744. DOI 10.15389/agrobiology.2020.1.27rus (in Russian); Imbaby I.A., Mahmoud M.A., Hassan M.E.M., AbdElAziz A.R.M. Identification of leaf rust resistance genes in selected egyptian wheat cultivars by molecular markers hindawi publishing corporation. Sci. World J. 2014;2014:574285. DOI 10.1155/2014/574285; Knott D.R. Translocations involving Triticum chromosomes and Agropyron chromosomes carrying leaf rust resistance. Can. J. Genet. Cytol. 1968;10(3):695696. DOI 10.1139/g68087; Kolmer J.A., Kabdulova M.G., Mustafina M.A., Zhemchuzhina N.S., Dubovoy V. Russian populations of Puccinia triticina in distant regions are not differentiated for virulence and molecular genotype. Plant Pathol. 2015;64(2):328336. DOI 10.1111/ppa.12248; Kon’kova E.A., Lyashcheva S.V., Sergeeva A.I. Screening of the world winter bread wheat collection for leafstem disease resistance in the Lower Volga region. Zernovoe Hozyaystvo Rossii = Grain Economy of Russia. 2022;14(2):3640. DOI 10.31367/2079872520228023640 (in Russian); Koyshybaev M. Reaction of isogenes thathcher wheat lines on the NorthKazakhstan population of Puccinia triticina and resistance of wheat cultivars. Mikologiya i Fitopatologiya = Mycology and Phytopathology. 2019;53(3):162169. DOI 10.1134/S0026364819030073 (in Russian); Krupin P.Yu., Divashuk M.G., Karlov G.I. Gene resources of perennial wild cereals involved in breeding to improve wheat crop. Sel’skokhozyaistvennaya Biologiya = Agricultural Biology. 2019; 54(3):409425. DOI 10.15389/agrobiology.2019.3.409rus (in Russian); Kumlay A.M., Baenziger P.S., Gill K.S., Shelton D.R., Graybosch R.A., Lukaszewski A.J., Wesenberg D.M. Understanding the effect of rye chromatin in bread wheat. Crop Sci. 2003;43(5); 1651. DOI 10.2135/cropsci2003.1643; Leonova I.N. Influence of alien genetic material on the manifestation of agronomically important traits of common wheat (T. aestivum L.). Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2018;22(3):321328. DOI 10.18699/VJ18.367 (in Russian); Leonova I.N., Piskarev V.V., Boiko N.I., Stasyuk A.I., Adonina I.G., Salina E.A. Development and study of new spring wheat lines containing aliengenetic material from Th. intermedium and Ae. spel toides. In: Current Challenges in Plant Genetics, Genomics, Bioinformat ics, and Biotechnology. Proceedings of the Fifth International Scient ific Conference PlantGen2019. Novosibirsk: ICG SB RAS, 2019;61-63; Mains E.B., Jackson H.S. Physiologic specialization in leaf of wheat Puccinia triticina Erikss. Phytopathology. 1926;1(16):89120 Mal’chikov P.N., Myasnikova M.G. Relative development of durum wheat productivity traits in the breeding process. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2012;16(4/2):987997 (in Russian); Marais G.F. The modification of a common wheat-Thinopyrum distichum translocated chromosome with a locus homeoallelic to Lr19. Theor. Appl. Genet. 1992;85(1):73-78. DOI 10.1007/BF00223847; Marchenko D.M., Ivanisov M.M., Rybas’ I.A., Nekrasov E.I., Romanyukina I.V., Chuhnenko Yu.Yu. The results of breeding work with the winter bread wheat for nonfallow forecrops in the Agricultural Research Center “Donskoy”. Zernovoe Khozyays tvo Rossii = Grain Economy of Russia. 2020;72(6):39. DOI 10.31367/20798725202072639 (in Russian); Markelova T.S. Use of wild wheat species and relatives for introgression of disease resistance genes. AGRO XXI. 2007;46:1618 (in Russian); Mebrate S.A., Oerke E.C., Dehne H.W., Pillen K. Mapping of the leaf rust resistance gene Lr38 on wheat chromosome arm 6DL using SSR markers. Euphytica. 2008;162:457466. DOI 10.1007/s106810079615z; Merezhko A.F., Udachin R.A., Zuev V.E., Filatenko A.A., Ser bin A.A., Lyapunova O.A., Kosov V.Yu., Kurkiev U.K., Okhotnikova T.V., Navruzbekov N.A., Boguslavskiy R.L., Abdulaeva A.K., Chikida N.N., Mitrofanova O.P., Potokina S.A. Replenishment, preservation in live form and study the world collection of wheat, triticale and Aegilops. St.Peterburg: VIR Publ., 1999 (in Russian); Meshkova L.V., Rosseeva L.P., Sidorov A.V., Sabaeva O.B., Zverov skaya T.S., Belan I.A. Physiological specialization of brown rust pathogen on the wheat in Krasnoyarsk region. Vestnik KrasGAU = Bulletin of the Krasnoyarsk State Agrarian University. 2019;142(1):2936 (in Russian); Meshkova L.V., Rosseeva L.P., Shmakova O.A., Belan I.A. Influence of varieties of soft spring wheat with gene Lr26 on the virulence of the agent of brown rust in the Omsk region. Uspekhi Sovremennogo Estestvoznaniya = Successes of Modern Natural Science. 2021;10:2025. DOI 10.17513/use.37693 (in Russian); Mihaylova L.A., Kvitko K.V. Laboratory methods for cultivation of the leaf rust pathogen Puccinia recondita Rob. ex. Desm. f. trit ici. Mikologiya i Fitopatologiya = Mycology and Phytopathology. 1979;4(3):269273 (in Russian); Peterson R.F., Cambell A.B., Hannah A.E. A diagrammatic scale for estimating rust intensity on leaves and stems of cereals. Can. J. Res. 1948;26(5):496500. DOI 10.1139/cjr48c033; Piskarev V.V., Aparina V.A., Boyko N.I., Morozova E.V., Timofeev A.A. Influence translocation from Secale cereale and Aegilops speltoides to agronomic traits of spring wheat breeding lines. In: AGRO BIOTECHNOLOGY-2021. Collection of articles of the international scientific conference. Moscow: Russian State Agrarian University Publ., 2021;778782 (in Russian); Plaschke J., Ganal M.W., Röder M.S. Detection of genetic diversity in closely related bread wheat using microsatellite markers. Theor. Appl. Genet. 1995;91(6-7):1001-1007. DOI 10.1007/BF00223 912; Pozherukova V.E., Shamanin V.P., Gladkih M.S., Chursin A.S., Gul’tyaeva E.I. Evaluation of the collection of varieties of the KASIB network in the conditions of the southern forest-steppe of Western Siberia. Vestnik Omskogo GAU = Bulletin of the Omsk State Agrarian University. 2019;33(1):3037 (in Russian); Pryanishnikov A.I. Scientific foundations of adaptive breeding in the Volga region. Moscow: RAS Publ., 2018 (in Russian); Qiu J.W., Schürch A.C., Yahiaoui N., Dong L.L., Fan H.J., Zhang Z.J., Keller B., Ling H.Q. Physical mapping and identification of a candidate for the leaf rust resistance gene Lr1 of wheat. Theor. Appl. Genet. 2007;115(2):159168. DOI 10.1007/s001220070551z; Roshan K., Rathore K.S., Bharkatiya M., Goel P.K., Naruka P.S., Saurabh S.S. Therapeutic potential of Triticumaestivum Linn. (Wheat Grass or Green Blood Therapy) in the treatment and prevention of Chronic and Acute Diseases: an overview. Pharma Tutor. 2016;4(2):1927; Schachermayr G., Siedler H., Gale M.D., Winzeler H., Winzeler M., Keller B. Identification and localization of molecular markers linked to the Lr9 leaf rust resistance gene of wheat. Theor. Appl. Genet. 1994;88(1):110-115. DOI 10.1007/BF00222402; Shishkin N.V., Derova T.G., Gultyaeva E.I., Shaydayuk E.L. Determination of leaf rust resistance genes in winter soft wheat varieties using traditional and modern research methods. Zernovoe Khozyaystvo Rossii = Grain Economy of Russia. 2018;59(5):6367 (in Russian); Sibikeev S.N., Druzhin A.E., Badaeva E.D., Shishkina A.A., Dragovich A.Y., Gultyaeva E.I., Kroupin P.Y., Karlov G.I., Khuat T.M., Divashuk M.G. Comparative analysis of Agropyron intermedium (host) beauv 6Agi and 6Agi2 chromosomes in bread wheat cultivars and lines with wheat–wheatgrass substitutions. Russ. J. Genet. 2017; 53(3):314324. DOI 10.1134/S1022795417030115; Singh R.P., HuertaEspino J., Rajaram S., Crossa J. Agronomic effects from chromosome translocations 7DL.7Ag and 1BL.1RS in spring wheat. Crop Sci. 1998;38(1):2733. DOI 10.2135/cropsci1998.0011183X003800010005x; Singh S., Bowden R.L. Molecular mapping of adult-plant race-specific leaf rust resistance gene Lr12 in bread wheat. Mol. Breed. 2011;28:137142. DOI 10.1007/s1103201094674; Skolotneva E.S., Leonova I.N., Bukatich E.Yu., Salina E.A. Methodical approaches to identification of effective wheat genes providing broadspectrum resistance against fungal diseases. Vavi lov skii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2017;21(7):862869. DOI 10.18699/VJ17.307 (in Russian); Sochalova L.P., Musinov K.K., Piskarev V.V. Gene pool of spring and winter soft wheat resistance sources to fungal phytopathogens. In: Gene pool and plant breeding. Materials of the 6th International Conference. Novosibirsk, 2022;187191 (in Russian); Souza E., Sorrells M.E. Prediction of progeny variation in oat from parental genetic relationships. Theor. Appl. Genet. 1991;82(2): 233-241. DOI 10.1007/BF00226219; Stasyuk A.I., Leonova I.N., Salina E.A. Variability of agronomically important traits in spring wheat hybrids obtained by markerassisted selection from crosses of winter wheat with spring wheat donors of resistance genes. Sel’skokhozyaistvennaya Biologiya = Agri cul tural Biology. 2017;52(3):526534. DOI 10.15389/agro biology.2017.3.526rus (in Russian); Timonova E.M., Leonova I.N., Belan I.A., Rosseeva L.P., Salina E.A. Influence of individual regions of Triticum timopheevii chromosomes on the formation of resistance to diseases and quantitative traits of common wheat. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2012;16(1):142159 (in Russian); Tomkowiak A., Skowrońska R., Buda A., Kurasiak-Popowska D., Nawracała J., Kowalczewski P.Ł., Pluta M., Radzikowska D.; Identification of leaf rust resistance genes in selected wheat cultivars and development of multiplex PCR. Open Life Sci. 2019;14: 327334. DOI 10.1515/biol20190036; Volkova G.V., Kremneva O.Yu., Shumilov Yu.V., Gladkova E.V., Vaganova O.F., Mitrofanova O.P., Lysenko N.S., Chikida N.N., Hakimova A.G., Zuev E.V. Immunological assessment of wheat samples, its rare species, Aegilops from the collection Federal research center “Vavilov All-Russian Institute Of Genetic Resources” and selection of sources with group resistance. Vestnik Za shchity Rasteniy = Plant Protection News. 2016;89(3):3839 (in Russian); Vyushkov A.A. Breeding of spring wheat in the Middle Volga region. Samara, 2004 (in Russian) Zhang W., Lukaszewski A.J., Kolmer J., Soria M.A., Goyal S., Dubcovsky J. Molecular characterization of durum and common wheat recombinant lines carrying leaf rust resistance (Lr19) and yellow pigment (Y ) genes from Lophopyrum ponticum. Theor. Appl. Genet. 2005;111(3):573582. DOI 10.1007/s001220052048y; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4010
-
7Academic Journal
المؤلفون: M. S. Ahmed, M. Qamar, S. Waqar, A. Naeem, R. A. Javaid, S. K. Tanveer, I. Hussain, М. Ш. Ахмед, М. Камар, С. Вакар, А. Наим, Р. А. Джавайд, С. Х. Танвир, И. Хусейн
المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 27, № 6 (2023); 609-622 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 27, № 6 (2023); 609-622 ; 2500-3259
مصطلحات موضوعية: индекс устойчивости к ржавчине, combining ability, mid-parent heterosis, stripe rust, rust resistance index, комбинационная способность, гетерозис, желтая ржавчина злаков
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3932/1747; Afzal S.N., Haque M.I., Ahmedani M.S., Munir M., Firdous S.S., Rauf A., Ahmad I., Rattu A.R., Fayyaz M. Resistance potential of wheat germplasm (Triticum aestivum L.) against stripe rust disease under rainfed climate of Pakistan. Pak. J. Bot. 2009;41(3):14631475.; Ahmad M.W., Ahmed M.S., Tahir H.N. Combining ability analysis for achene yield and related traits in sunflower (Helianthus annuus L.). Chil. J. Agric. Res. 2012;72(1):2126. DOI:10.4067/S071858392012000100004.; Ahmadi J.A., Zali A., YazdiSamadi B., Talaie A., Ghannadha M.R., Saeidi A. A study of combining ability and gene effect in bread wheat under drought stress condition by diallel method. Iranian J. Agric. Sci. 2003;34(1):18.; Akhtar M.A., Ahmad I., Mirza J.I., Rattu A.R., Hakro A.A., Jaffery A.H. Evaluation of candidate lines against stripe and leaf rusts under national uniform wheat and barley yield trial 2000–2001. Asian J. Plant Sci. 2002;1:450453. DOI:10.3923/ajps.2002.450.453.; Ali F.K.H., Abdulkhaleq D.A. Inheritance of some growth and yield traits in bread wheat using line × tester analysis. J. Zankoy Sulaimani. 2019;21(2):131149. DOI:10.17656/jzs.10763.; Ali Y., Khan M.A., Hussain M., Sabir W., Atiq M., Aatif H.M., Ahmad S., Ijaz M., Ahmad J.N. Virulence analysis of leaf and stripe rust populations in Pakistan through avirulence to virulence formula. Arch. Phytopathol. Plant Prot. 2020;53(1718):844855. DOI:10.1080/03235408.2020.1802565.; Almutairi M.M. Genetic parameters estimation for some wild wheat species and their F1 hybrids grown in different regions of Saudi Arabia. Saudi J. Biol. Sci. 2022;29(1):521525. DOI:10.1016/j.sjbs.2021.09.015.; Arshad M., Chowdhry M.A. Impact of environment on the combining ability of bread wheat genotypes. Pak. J. Biol. Sci. 2002;5(12): 13161320. DOI:10.3923/pjbs.2002.1316.1320.; Arzu K. Gene action and combining ability in line × tester population of safflower (Carthamus tinctorius L.). Turk. J. Field Crops. 2017; 22(2):197203. DOI:10.17557/tjfc.356216.; Awan S.I., Malik F.A., Siddique M. Combining ability analysis in intervarietal crosses for component traits in hexaploid wheat. J. Agric. Soc. Sci. 2005;1(4):316317.; Babar M., Ullah H., Afridi K., Raza H., Ali S., Ali M., Subhan G., Khan J., Khan H. Line × tester analysis for combining ability and identification of gene action in F2 populations of bread wheat. Int. J. Agric. Biol. 2022;27(6):381392. DOI:10.17957/IJAB/15.1938.; BarbosaNeto J., Sorrells M., Cisar G. Prediction of heterosis in wheat using coefficient of parentage and RFLPbased estimates of genetic relationship. Genome. 1996;39(6):11421149. DOI:10.1139/g96144.; Basnet B.R., Crossa J., Dreisigacker S., PérezRodríguez P., Manes Y., Singh R.P., Rosyara U.R., CamarilloCastillo F., Murua M. Hybrid wheat prediction using genomic, pedigree, and environmental covariables interaction models. Plant Genome. 2019;12(1):180051. DOI:10.3835/plantgenome2018.07.0051.; Burton G., Devane H. Estimating heritability in tall fescue (Festuca arundinacea), from replicated clonal material. Agron. J. 1953; 45(10):478481. DOI:10.2134/agronj1953.00021962004500100005x.; Chen X., Penman L., Wan A., Cheng P. Virulence races of Puccinia striiformis f. sp. tritici in 2006 and 2007 and development of wheat stripe rust and distributions, dynamics, and evolutionary relationships of races from 2000 to 2007 in the United States. Can. J. Plant. Pathol. 2010;32(3):315333. DOI:10.1080/07060661.2010.499271.; Chowdhary M.A., Sajad M., Ashraf M.I. Analysis on combining ability of metric traits in bread wheat, Triticum aestivum. J. Agric. Res. 2007:45(1):1117.; Comstock R., Robinson H. Genetic parameters, their estimation and significance. In: Proceedings of the Sixth International Grassland Congress (Pennsylvania, August 17–23, 1952). Pennsylvania: State College, 1952;248291.; De Mendiburu F., Simon R. Agricole – ten years of an open source statistical tool for experiments in breeding, agriculture and biology. PeerJ PrePrints. 2015:3:e1404v1. DOI:10.7287/peerj.preprints.1404v1.; Dragov R.G. Combining ability for quantitative traits related to productivity in durum wheat. Vavilov J. Genet. Breed. 2022;26(6):515 523. DOI:10.18699/VJGB2263.; Dreisigacker S., Melchinger A., Zhang P., Ammar K., Flachenecker C., Hoisington D., Warburton M.L. Hybrid performance and heterosis in spring bread wheat, and their relations to SSRbased genetic distances and coefficients of parentage. Euphytica. 2005;144:5159. DOI:10.1007/s1068100540532.; Fakthongphan J., Graybosch R.A., Baenziger P.S. Combining ability for tolerance to preharvest sprouting in common wheat (Triticum aestivum L.). Crop Sci. 2016;56(3):10251035. DOI:10.2135/cropsci2015.08.0490.; FAOSTAT. Food and Agriculture Organization of the United Nations. Rome (Italy): FAOSTAT, 2016. Fasahat P., Rajabi A., Rad J.M., Derera J. Principles and utilization of combining ability in plant breeding. Biom. Biostat. Int. J. 2016; 4(1):122. DOI:10.15406/bbij.2016.04.00085.; Fellahi Z.E.A., Hannachi A., Bouzerzour H., Boutekrabt A. Line × tester mating design analysis for grain yield and yield related traits in bread wheat (Triticum aestivum L.). Int. J. Agron. 2013;2013:201851. DOI:10.1155/2013/201851.; Figueroa M., Dodds P.N., Henningsen E.C. Evolution of virulence in rust fungi – multiple solutions to one problem. Curr. Opin. Plant Biol. 2020;56:2027. DOI:10.1016/j.pbi.2020.02.007.; Fonseca S., Patterson F.L. Hybrid vigour in seven parent diallel crosses in common wheat (Triticum aestivum L.). Crop Sci. 1968;8(1):8589. DOI:10.2135/cropsci1968.0011183X000800010025x.; Gorjanović B.M., KraljevićBalalić M.M. Inheritance of plant height, spike length and number of spikelets per spike in durum wheat. Proc. Nat. Sci. Matica Srpska Novi Sad. 2007;112:2733. DOI:10.2298/ZMSPN0712027G.; Gowda M., Kling C., Würschum T., Liu W., Maurer H.P., Hahn V., Reif J.C. Hybrid breeding in durum wheat: heterosis and combining ability. Crop Sci. 2010;50(6):22242230. DOI:10.2135/cropsci2009.10.0637.; Hallauer A.R., Carena M.J., Miranda Filho J.D. Quantitative Genetics in Maize Breeding: Handbook of plant breeding. Springer, 1988.; Hasnain Z., Abbas G., Saeed A., Shakeel A., Muhammad A., Rahim M.A. Combining ability for plant height and yield related traits in wheat (Triticum aestivum L.). J. Agric. Res. 2006;44(3): 167173.; Hassan G., Muhammad F., Afridi S.S., Khalil I.H. Combining ability in F1 generations of diallel cross for yield components in wheat. Sarhad J. Agric. 2007;23(4):937942.; Intikhab A., Awan S.I., Mur L.A.J., Saeed M.S., Ahmed M.S. Molecular and phenotypic analysis of bread wheat varieties in relation to durable rust resistance. Int. J. Agric. Biol. 2021;26(2):329336. DOI:10.17957/IJAB/15.1841.; Iqbal A., Khalil I.H., Shah S.M., Kakar A.M.S. Estimation of heritability, genetic advance and correlation for morphological traits in spring wheat. Sarhad J. Agric. 2017;33(4):674679. DOI:10.17582/journal.sja/2017/33.4.674.679.; Iqbal M.M. Combining ability analysis in wheat. Pak. J. Agric. Sci. 2007;44(1):15.; Ishaq M., Ahmad G., Afridi K., Ali M., Khan T.U., Shah I.A., Ahmad B., Ahmad N., Ahmad I., Saleem A., Miraj M. Combining ability and inheritance studies for morphological and yield contributing attributes through line × tester mating design in wheat (Triticum aestivum L.). Pure Appl. Biol. 2018;7(1):160168.; Javaid M.M., Zulkiffal M., Ali Y., Mehmood A., Ahmed J., Hussain M., Muhammad F., Sabir W., Tanveer M.H., Yasin O. Impact of environmental and pathogenic variability on breaking of host rust resistance in wheat cultivars under changing climatic conditions. Adv. Zool. Bot. 2018;6(1):3140. DOI:10.13189/azb.2018.060104.; Jones D.F. Dominance of linked factors as a means of accounting for heterosis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1917;3(4):310312. DOI:10.1073/pnas.3.4.310.; Kaushik P. Line × tester analysis for morphological and fruit biochemical traits in eggplant (Solanum melongena L.) using wild relatives as testers. Agronomy. 2019;9(4):185. DOI:10.3390/agronomy9040185.; Kempthorne O. An Introduction to Genetic Statistics. New York: John Wiley and Sons, 1957. Khan A., Ahmad M., Shah M.K.N., Ahmed M. Genetic manifestation of physiomorphic and yield related traits conferring thermotolerance in wheat. Pak. J. Bot. 2020;52(5):15451552. DOI:10.30848/PJB20205(27).; Khan S.N., Hassan G., Khan M.R., Facho Z.H., Singh D., Sandhu K.S., Sanaullah M., Imtiaz M., Ali S. Field assessment and molecular markersbased characterization of yellow rust resistance in wheat hybrid progenies. J. Anim. Plant Sci. 2022;32(1):127137. DOI:10.36899/JAPS.2022.1.0409.; Knott D.R. Heterosis in seven wheat hybrids. Can. J. Plant Sci. 1965; 45:499501.; Kumar R., Silva L. Light ray tracing through a leaf cross section. Appl. Opt. 1973;12(12):29502954. DOI:10.1364/AO.12.002950.; Large E.C. Growth stages in cereals illustration of the Feekes scale. Plant Pathol. 1954;3(4):128129. DOI:10.1111/j.13653059.1954.tb00716.x.; Lerner I.M. Genetic Homeostasis. New York: John Wiley and Sons, 1954. Liu Z., Pei Y., Pu Z. Relationship between hybrid performance and genetic diversity based on RAPD markers in wheat (Triticum aestivum L.). Plant Breed. 1999;118(2):119123. DOI:10.1046/j.14390523.1999.118002119.x.; Mahantashivayogayya K., Hanchinal R., Salimath P. Combining ability in dicoccum wheat. Karnataka J. Agric. Sci. 2004;17(3):451454.; Mahmoud A.F., Hassan M.I., Amein K.A. Resistance potential of bread wheat genotypes against stripe rust disease under Egyptian climate. Plant Pathol. J. 2015;31(4):402413. DOI:10.5423/PPJ.OA.12.2014.0127.; Malik M.F.A., Awan S.I., Ali S. Genetic behaviour and analysis of quantitative traits in five wheat genotypes. J. Agric. Soc. Sci. 2005; 1(4):313315.; Nazir S., Khan A.S., Ali Z. Combining ability analysis for yield contributing traits in bread wheat. J. Agric. Soc. Sci. 2005;1:129132.; Okello D.K., Manna R., Imanyowoha J., Pixley K., Edema R. Agronomic performance and breeding potential of selected inbred lines for improvement of protein quality of adapted Ugandan maize germplasm. African Crop Sci. J. 2006;14(1):3747.; Pal B., Alam N. The effect of certain external factors upon the manifestation of hybrid vigour in wheat. Proc. Indian Acad. Sci. 1938;7: 109124. DOI:10.1007/BF03051095.; Patel P.U., Patel B.C., Sidapara M.P., Sharma D.D. Combining ability and gene action studies for yield and its component traits in bread wheat (Triticum aestivum L.). Int. J. Curr. Microbiol. Appl. Sci. 2020;9:24632469.; Peterson R.F., Campbell A.B., Hannah A.E. A diagrammatic scale for estimating rust intensity on leaves and stems of cereals. Can. J. Res. 1948;26(5):496500. DOI:10.1139/cjr48c033.; Qamar M., Ahmad S.D., Rabbani M.A., Shinwari Z.K., Iqbal M. Determination of rust resistance genes in Pakistani bread wheats. Pak. J. Bot. 2014;46(2):613617.; Rashid M., Cheema A.A., Ashraf M. Line × tester analysis in Basmati rice. Pak. J. Bot. 2007;39(6):20352042.; Rashmi K., Prasad L.C., Prasad R., Thakur P., Chandra K. Inheritance study of yield traits and spot blotch disease resistance in wheat under epiphytotic environment. Plant Arch. 2020;20(2):65906594.; Raza W., Ghazanfar M.U., Rehman A.U., Fayyaz M. Screening of wheat germplasm against stripe rust disease under field conditions in Pakistan. Plant Prot. 2018;2(3):8792.; Reynolds M.P., Singh R.P., Ibrahim A., Ageeb O.A.A., LarqueSaavedra A., Quick J.S. Evaluating the physiological traits to complement empirical selection for wheat in warm environments. Euphytica. 1998;100:8594. DOI:10.1023/A:1018355906553.; Saeed A., Chowdhry M.A., Saeed N., Khaliq I., Johar M.Z. Line × tester analysis for some morphophysiological traits in bread wheat. Int. J. Agric. Biol. 2001;3(4):444447.; Saeed M.S., Chowdhry M.A., Ahsan M. Genetic analysis for some metric traits in Aestivum species. Asian J. Plant Sci. 2005;4(4):413416. DOI:10.3923/ajps.2005.413.416.; Shamsuddin A K. Genetic diversity in relation to heterosis and combining ability in spring wheat. Theor. Appl. Genet. 1985;70:306308.; Sharma A., Garg D. Combining ability over environments in bread wheat (Triticum aestivum L.). J. Maharasahtra Agric. Univ. 2005; 30(2):153156.; Shull G.H., East E.M. The composition of a field of maize. J. Hered. 1908;4(1):296301. DOI:10.1093/jhered/os4.1.296.; Singh R.K., Chaudhary B.D. Biometrical Methods in Quantitative Genetic Analysis. New Delhi: Kalyani Publ., 1977.; Singh S., Singh L., Singh D., Kumar R. Combining ability in common wheat (Triticum aestivum L.) grown in sodic soil. Progress. Agric. 2003;3:7880.; Sprague G.F., Tatum L.A. General vs. specific combining ability in single crosses of corn. Agron. J. 1942;34(10):923932.; Steel R.G.D., Torrie J.H. Principles and Procedures of Statistics. New York: McGraw Hill Book Company Inc., 1980.; Sultana S.R., Ali A., Ahmad A., Mubeen M., ZiaUlHaq M., Ahmad S., Ercisli S., Jaafar H.Z. Normalized Difference Vegetation Index as a tool for wheat yield estimation: a case study from Faisalabad, Pakistan. Sci. World J. 2014;2014:725326. DOI:10.1155/2014/725326.; The R Project for Statistical Computing. A language and environment for statistical computing R foundation for Statistical Computing Department of Agronomy, Faculty of Agriculture of the University of the Free State. Vienna, Austria, 2017. www.rproject.org.; Tilley M.S., Heiniger R.W., Crozier C.R. Tiller initiation and its effects on yield and yield components in winter wheat. Agron. J. 2019;111(3):13231332. DOI:10.2134/agronj2018.07.0469.; Uddin M.N., Ellison F.W., O’Brien L., Latter B.D.H. Heterosis in F1 hybrids derived from crosses of adapted Australian wheats. Aust. J. Agric. Res. 1992;43(5):907919. DOI:10.1071/AR9920907.; Ullah N., Ullah H., Afridi K., Alam M., Jadoon S.A., Khan W.U., Ahmad M., Uddin H. Genetic variability, heritability and correlation analysis among morphological and yield traits in wheat advanced lines. Biol. Divers. Conserv. 2018;11(1):166180.; Zhao Y., Zeng J., Fernando R., Reif J.C. Genomic prediction of hybrid wheat performance. Crop Sci. 2013;53(3):802810. DOI:10.2135/cropsci2012.08.0463.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3932
-
8Academic Journal
المؤلفون: E. I. Zhuk, N. A. Krupenkо, A. A. Radyna, A. N. Khalaev, N. G. Poplavskaya, V. A. Radivon, Е. И. Жук, Н. А. Крупенько, А. А. Радына, А. Н. Халаев, Н. Г. Поплавская, В. А. Радивон
المصدر: Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus. Agrarian Series; Том 61, № 3 (2023); 210-221 ; Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия аграрных наук; Том 61, № 3 (2023); 210-221 ; 1817-7239 ; 1817-7204 ; 10.29235/1817-7204-2023-61-3
مصطلحات موضوعية: площадь под кривой развития болезни (ПКРБ), variety, root rot, by-root rot, powdery mildew, pyrenophorosis, septoriosis, fusarium, brown rust, area under disease process curve (AUDPC), сорт, корневая гниль, прикорневая гниль, мучнистая роса, пиренофороз, септориоз, фузариоз, бурая ржавчина
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/714/607; Роль микологических и фитопатологических исследований в решении проблемы повышения эффективности приемов защиты зерновых культур от болезней / А. Г. Жуковский [и др.] // Экологическая безопасность защиты растений: материалы междунар. науч. конф., посвящ. 105-летию со дня рождения чл.-корр. А. Л. Амбросова и 80-летию со дня рождения акад. В. Ф. Самерсова, Прилуки, 24–26 июля 2017 г. / Нац. акад. наук Беларуси, Науч.практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений; ред.: Л. И. Трепашко [и др.]. – Минск, 2017. – С. 92–101.; Жуковский, А. Г. Изменение фитопатологической ситуации в посевах зерновых культур / А. Г. Жуковский, Н. А. Крупенько // Наше сел. хоз-во. – 2020. – № 5. – С. 60–64.; Жуковский, А. Г. Фитопатологическая ситуация в посевах зерновых культур – основа для разработки систем защиты от болезней / А. Г. Жуковский, С. Ф. Буга // Интегрированная защита растений: стратегия и тактика: материалы междунар. науч.-практ. конф., посвящ. 40-летию со дня организации РУП «Институт защиты растений» (Минск, 5–8 июля 2011 г.) / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений; редкол.: Л. И. Трепашко (гл. ред.) [и др.]. – Несвиж, 2011. – С. 592–594.; Роль пораженности сорта болезнями в обосновании тактики и экономики фунгицидных обработок зерновых культур в Республике Беларусь / С. Ф. Буга [и др.] // Земляробства i ахова раслiн. – 2012. – № 1. – С. 29–37.; Динамика развития болезней зерновых культур – основа эффективного использования химических средств защиты / С. Ф. Буга [и др.] // Земледелие и защита растений. – 2014. – № 3. – С. 37–44.; Пригге, Г. Грибные болезни зерновых культур / Г. Пригге, М. Герхард, И. Хабермайер; под ред. Ю. М. Стройкова. – Лимбургерхоф: Ландвиртшафтсферлаг Мюнстер-Хилтруп и БАСФ АГ, 2004. – 192 с.; Коршунова, А. Ф. Защита пшеницы от корневых гнилей / А. Ф. Коршунова, А. Е. Чумаков, Р. И. Щекочихина. – 2-е изд., перераб. и доп. – Л.: Колос, Ленингр. отд-ние, 1976. – 184 с.; Чумаков, А. Е. Вредоносность болезней сельскохозяйственных культур / А. Е. Чумаков, Т. И. Захарова. – М.: Агропромиздат, 1990. – 127 с.; Шипилова, Н. П. Диагностика фузариозного поражения колоса и заражения зерна на северо-западе России / Н. П. Шипилова, Л. И. Нефедова, В. Г. Иващенко // Сборник методических рекомендаций по защите растений / Всерос. НИИ защиты растений; гл. ред. К. В. Новожилов. – СПб., 1998. – С. 208–220; Теоретические и методологические принципы создания ржавчиноустойчивых сортов пшеницы / Л. К. Анпилогова [и др.] // Агрохимия. – 2002. – № 5. – С. 77–88.; Методы селекции и оценки устойчивости пшеницы и ячменя к болезням в странах – членах СЭВ / Л. Т. Бабаянц [и др.]. – Прага, 1988. – 321 с.; Wilcoxson, R. D. Slow rusting of wheat varieties in the field correlated with stem rust severity on detached leaves in the green house / R. D. Wilcoxson, A. H. Atif, B. Skowmand // Plant Dis. Report. – 1975. – Vol. 58, № 12. – P. 1085–1087.; Справочник по климату Беларуси / Респ. центр по гидрометеорологии, контролю радиоактив. загрязнения и мониторингу окружающей среды; подгот.: Е. В. Комаровская (отв. исп.) [и др.]. – Минск: [б. и.], 2017. – Ч. 1: Температура воздуха и почвы. – 85 с.; Справочник по климату Беларуси / Респ. центр по гидрометеорологии, контролю радиоактив. загрязнения и мониторингу окружающей среды; подгот.: Е. В. Комаровская (отв. исп.) [и др.]. – Минск: [б. и.], 2017. – Ч. 2: Осадки. – 64 с.; Корневая гниль зерновых культур и роль инфицированности семян в ее развитии / А. Г. Жуковский [и др.] // Защита растений: сб. науч. тр. / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений. – Минск, 2018. – Вып. 42. – С. 84–95.; Роль сорта в формировании видового разнообразия грибов рода Fusarium в агроценозах яровых зерновых культур Республики Беларусь / С. Ф. Буга [и др.] // Защита растений: сб. науч. тр. / Белорус. науч.-исслед. ин-т защиты растений. – Минск, 2000. – Вып. 24. – С. 48–54.; Петрова, Л. К. Видовой состав грибов-возбудителей корневой гнили яровой пшеницы в условиях Белоруссии / Л. К. Петрова // Фитосанитарное оздоровление экосистем: второй Всерос. съезд по защите растений, 5–10 дек. 2005 г.: материалы съезда: в 2 т. / Всерос. науч.-исслед. ин-т защиты растений; редкол.: В. А. Павлюшин (гл. ред.) [и др.]. – СПб., 2005. – Т. 1. – С. 200–202.; Справочник болезней зерновых культур / Н. А. Крупенько [и др.]; под ред. Н. А. Крупенько, А. Г. Жуковского, С. Ф. Буга. – Минск: Журн. «Белорусское сельское хозяйство», 2021. – 81 с.; Пилат, Т. Г. Церкоспореллезная корневая гниль зерновых культур и состояние изученности этой проблемы (литературный обзор) / Т. Г. Пилат, Н. А. Крупенько, С. Ф. Буга // Защита растений: сб. науч. тр. / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений. – Минск, 2021. – Вып. 45. – С. 153–160. https://doi. org/10.47612/0135-3705-2021-45-153-160; Zhuk, E. I. Najważniejsze choroby grzybowe pszenicy jarej w warunkach Bialorusi / E. I. Zhuk, S. V. Buga, A. G. Zhukovsky // 53. Sesja Naukowa / Inst. Ochrony Roślin Państwowego Inst. Badawczego. – Poznań, 2013. – S. 194–196.; Фитопатологическая ситуация в посевах зерновых культур / А. Г. Жуковский [и др.] // Современные ресурсосберегающие технологии производства растениеводческой продукции в Беларуси: сб. науч. материалов / Нац. акад. наук Беларуси, Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию редкол.: Ф. И. Привалов [и др.]. – 3-е изд., доп. и перераб. – Минск, 2017. – С. 186–191.; Фитопатологическая ситуация в посевах зерновых культур на территории Республики Беларусь / А. Г. Жуковский [и др.] // Земледелие и защита растений. – 2017. – № 2 (111). – С. 9–12.; Жук, Е. И. Пораженность районированных сортов яровой пшеницы основными болезнями в период вегетации в условиях Беларуси / Е. И. Жук // Актуальные проблемы изучения и сохранения фитои микобиоты: сб. ст. II междунар. науч.-практ. конф., 12–14 нояб. 2013 г., г. Минск / Белорус. гос. ун-т, Ин-т эксперим. ботаники НАН Беларуси, Центр. ботан. сад НАН Беларуси; редкол.: В. В. Лысак [и др.]. – Минск, 2013. – С. 248–251.; Распространенность возбудителей листовых пятнистостей пшеницы (Pyrenophora tritici-repentis и Septoria tritici) в условиях Северного Кавказа и Республики Беларусь / О. Ю. Кремнева [и др.] // Защита растений: сб. науч. тр. / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений. – Несвиж, 2011. – Вып. 35. – С. 109–112.; Защита пшеницы от септориоза / С. С. Санин [и др.]. – М., 2012. – 24 с. – (Прил. к журн. «Защита и карантин растений» № 4, 2012 г.).; Септориозы зерновых культур и их вредоносность / Н. А. Крупенько [и др.] // Вес. Нац. акад. навук Беларусі. Сер. аграр. навук. – 2017. – № 4. – С. 66–75.; Крупенько, Н. А. Влияние гидротермических условий на развитие септориоза листьев озимой пшеницы / Н. А. Крупенько // Защита растений: сб. науч. тр. / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений. – Минск, 2018. – Вып. 42. – С. 109–115.; Поражаемость районированных сортов зерновых культур возбудителями болезней листового аппарата в условиях Республики Беларусь и роль защиты в сохранении их урожайности / А. Г. Жуковский [и др.] // Современные иммунологические исследования, их роль в создании новых сортов и интенсификации растениеводства: материалы Всерос. науч.-произв. конф., Большие Вяземы, Моск. обл., 18 нояб. 2009 г. / Всерос. науч.-исслед. ин-т фитопатологии; под ред. С. С. Санина, А. А. Макарова. – Большие Вяземы, 2009. – С. 108–115.; Петрова, Л. К. Пораженность яровой пшеницы септориозом в условиях Беларуси / Л. К. Петрова // Защита растений: сб. науч. тр. / Ин-т защиты растений НАН Беларуси. – Минск, 2006. – Вып. 30, ч. 1: Стратегия и тактика защиты растений. – С. 283–285.; Жук, Е. И. Распространенность септориоза колоса яровой пшеницы в Беларуси / Е. И. Жук // Защита растений: сб. науч. тр. / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений. – Несвиж, 2007. – Вып. 31. – С. 127–135.; Жук, Е. И. Поражаемость сортов яровой пшеницы болезнями / Е. И. Жук // Современные технологии сельскохозяйственного производства: материалы XV Междунар. науч.-практ. конф. (Гродно, 18 мая 2012 г.) / Гродн. гос. аграр. ун-т. – Гродно, 2012. – Ч. 1: Агрономия. Защита растений. Зоотехния. Ветеринария. – С. 146–147.; Жук, Е. И. Особенности защиты сорта яровой пшеницы от болезней в условиях Республики Беларусь / Е. И. Жук // Зб. наук. пр. / Нац. акад. аграр. наук України, Ін-т біоенергет. культур і цукрових буряків. – Київ, 2012. – Вип. 14: Новiтнi технологii вирощування сiльскогосподарських культур. – С. 165–168.; Буга, С. Ф. Теоретические и практические основы химической защиты зерновых культур от болезней в Беларуси / С. Ф. Буга. – Несвиж: Несвиж. укрупн. тип. им. С. Будного, 2013. – 240 с.; https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/714
-
9Academic Journal
المؤلفون: Нажим, Эшонкулов
المصدر: PEDAGOG; Vol. 6 No. 12 (2023): PEDAGOG; 112-115
مصطلحات موضوعية: головня, ржавчина, мучнисторосяние и септория
وصف الملف: application/pdf
-
10Academic Journal
المؤلفون: Топтіков , В. А., Дьяченко , Л. Ф., Тоцький , В. М., Бабаянц, Л. Т.
المصدر: Odesa National University Herald. Biology; Vol. 11 No. 9 (2006); 128-139 ; Вестник Одесского национального университета. Биология; Том 11 № 9 (2006); 128-139 ; Вісник Одеського національного університету. Біологія; Том 11 № 9 (2006); 128-139 ; 2415-3125 ; 2077-1746
مصطلحات موضوعية: пшениця, резистентність, бура листова іржа, множинні молекулярні форми ферментів, взаємодія генів, ген-ензимна система, wheat, resistance, brown leaf rust, multiple molecular forms of ferments, gene interaction, gene-enzyme system, пшеница, резистентность, бурая листовая ржавчина, множественные молекулярные формы ферментов, взаимодействие генов, ген-энзимная система
وصف الملف: application/pdf
-
11Academic Journal
المؤلفون: M. S. Gvozdeva, G. V. Volkova, М. С. Гвоздева, Г. В. Волкова
المساهمون: The study of the pathogenicity of the wheat leaf rust pathogen population was carried out in accordance with the State Order of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation within the framework of research work on topic No. FGRN‐2022‐0004. The study of the virulence and sensitivity of the pathogen population was carried out with the financial support of KNF grant No. H‐21.1/48., Изучение патогенности популяции возбудителя бурой ржавчины пшеницы выполнено согласно Государственному заданию Министерства науки и высшего образования РФ в рамках НИР по теме № FGRN‐2022‐0004. Изучение вирулентности и чувствительности популяции патогена выполнено при финансовой поддержке гранта КНФ № Н‐21.1/48.
المصدر: South of Russia: ecology, development; Том 17, № 4 (2022); 79‐87 ; Юг России: экология, развитие; Том 17, № 4 (2022); 79‐87 ; 2413-0958 ; 1992-1098 ; 10.18470/1992-1098-2022-4
مصطلحات موضوعية: резистентность, leaf rust, pathogenicity, fungicide, pyraclostrobin, epoxiconazole, efficiency, sensitivity, resistance, бурая ржавчина, патогенность, фунгицид, пираклостробин, эпоксиконазол, эффективность, чувствительность
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2663/1309; Волкова Г.В., Кудинова О.А., Ваганова О.Ф. Использование сортосмешанных посевов в защите озимой пшеницы от бурой ржавчины // Земледелие. 2020. N 5. С. 38–40.; Гультяева Е.И., Беспалова Л.А., Аблова И.Б., Шайдаюк Е.Л., Худокормова Ж.Н., Яковлева Д.Р., Титова Ю.А. Злаковые травы – резерваторы инфекции видов ржавчины для озимой мягкой пшеницы на Северном Кавказе России // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2021. Т. 25. N 6. С. 638–646.; Говоров Д.Н., Живых А.В., Шабельникова Е.С., Никулин А.Н., Умников В.И., Долгов А.И., Волков И.А., Машенцев И.В., Ступаков А.И., Чернявский В.С. Обзор фитосанитарного состояния посевов сельскохозяйственных культур в Российской Федерации в 2020 году и прогноз развития вредных объектов в 2021 году / Под ред. Говорова Д.Н., Живых А.В. М.: ФГБУ РСЦ, 2021. 912 с.; Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации / Министерство сельского хозяйства Российской Федерации (Минсельхоз России) Издание официальное МОСКВА 2022. URL: https://www.agroxxi.ru/goshandbook (дата обращения: 17.05.2022).; Страновой обзор производства и использования особо опасных пестицидов в России. Москва, Россия, 2020. URL: https://ipen.org/sites/default/files/documents/final_russia_hhp_country_situation_report_ru_and_en_14_may_2020.pdf (дата обращения: 1.06.2022).; Мироненко Н. В. Пластичность генома фитопатогенных грибов // Микология и фитопатология. 2019. Т. 53. N 3. С. 133–139. DOI:10.1134/S0026364819030085; Damicone J.P. Fungicide resistance management. Oklahoma cooperative extension. URL: https://shareok.org/bitstream/handle/11244/319916/oksa_epp_7663_2014-02.pdf?sequence=1 (дата обращения: 17.05.2022); Сухорученко Г.И. Резистентность вредных организмов к пестицидам в России // Защита и карантин растений. 2020. N 1. С. 14–18.; Fungicide resistance management in cereals FRAG-UK. Kenilworth. 2019. 28 p.; Соколова Г.Д., Глинушкин А.П. Механизмы устойчивости к фунгицидам фитопатогенного гриба Fusarium graminearum // Микология и фитопатология. 2020. Т. 54. N 6. С. 391–403. DOI:10.31857/S0026364820060112; Гвоздева М.С., Волкова Г.В. Влияние фунгицида колосаль на структуру популяции возбудителя бурой ржавчины пшеницы по признакам патогенности и чувствительности // Микология и фитопатология. 2022. Т. 56. N 1. С. 52–63. DOI:10.31857/S0026364822010044; Жемчужина Н.С., Киселева М.И., Коломиец Т.М., Аблова И.Б., Глинушкин А.П., Елизарова С.А. Выявление разнообразия микромицетов рода Fusarium в агроэкосистемах равнинной части Северного Кавказа для пополнения государственной коллекции фитопатогенных микроорганизмов ФГБНУ ВНИИФ // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2021. Т. 25. N 8. С. 874–881.; Анпилогова Л.К., Волкова Г.В. Методы создания искусственных инфекционных фонов и оценки сортообразцов пшеницы на устойчивость к вредоносным болезням (фузариозу колоса, ржавчинам, мучнистой росе). Рекомендации. Краснодар. 2000. 28 с.; Методические указания по регистрационным испытаниям фунгицидов в сельском хозяйстве / под ред. В. И. Долженко Санкт-Петербург: ВИЗР, 2009. 377 с.; Mains Е.В., Jackson H.S. Physiological specialization in leaf rust of wheat, Puccinia triticina Erikss. // Phytopathology. 1926. V. 16. N 1. P. 89–120.; Лапач С.Н., Чубенко А.В., Бабич П.Н. Статистические методы в медико-биологических исследованиях с использованием Excel. Киев: Морион, 2000. 320 с.; Пыжикова Г.В. Влияние температуры на инфекцию и развитие желтой ржавчины пшеницы // Микология и фитопатология. 1972. Т. 6. N 3. С. 51–53.; Санин С.С. Методы определения количества спор, образуемых ржавчинными и другими фитопатогенными грибами // Микология и фитопатология. 1975. Т. 9. N 3. С. 443–445.; Михайлова Л.А., Гультяева Е.И., Мироненко Н.В. Методы исследования структуры популяций возбудителя бурой ржавчины пшеницы Puccinia recondita Rob. ex Desm. f.sp. tritici. Иммуногенетические методы создания устойчивых к вредным организмам сортов. СПб: ВИЗР, 2003. 26 с.; Nei M. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals // Genetics. 1978. V. 89. N 3. P. 583–590.; Zhao C., Zhang X., Hua H. et al. Sensitivity of Rhizoctonia spp. to flutolanil and characterization of the point mutation in succinate dehydrogenase conferring fungicide resistance // Eur J Plant Pathol. 2019. N 155. P. 13–23. DOI:10.1007/s10658-019-01739-6; Kang Zh., Li X., Wan A., Wang M., Chen X. Differential sensitivity among Puccinia striiformis f. sp. tritici isolates to propiconazole and pyraclostrobin fungicides // Canadian Journal of Plant Pathology. 2019. V. 41. N 3. P. 415–434. DOI:10.1080/07060661.2019.1577301; Sacon D., Netto A., Gallina A., Tonello E.S., Milanesi P.M. Association of fungicides on Puccinia triticina and wheat // Communications in Plant Sciences. 2019. N 9. P. 88–92. DOI:10.26814/cps2019015; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2663
-
12Academic Journal
المؤلفون: Yu. N. Ivanova, K. K. Rosenfread, A. I. Stasyuk, E. S. Skolotneva, O. G. Silkova, Ю. Н. Иванова, К. К. Розенфрид, А. И. Стасюк, Е. С. Сколотнева, О. Г. Силкова
المساهمون: This work was supported by the Russian Science Foundation, project 21-76-30003. The work at the Shared Access Center for Microscopy Analysis of Biologic Objects, Siberian Branch of the RAS, and the Laboratory of Artificial Plant Growth (Institute of Cytology and Genetics SB RAS) was supported by State Budgeted Project 0259-2021-0012
المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 25, № 7 (2021); 701-712 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 25, № 7 (2021); 701-712 ; 2500-3259 ; 2500-0462 ; 10.18699/VJ21.078
مصطلحات موضوعية: мягкая пшеница, chromosome substitution, GISH, molecular analysis, stem rust, brown rust, yellow rust, Thinopyrum intermedium, bread wheat, замещение хромосом, молекулярный анализ, стеблевая ржавчина, бурая ржавчина, желтая ржавчина
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3174/1554; Arbuzova V.S., Dobrovolskaya O.B., Martinek P., Chumanova E.V., Efremova T.T. Inheritance of signs of “many-flowered” common wheat and evaluation of productivity of the spike of F2 hybrids. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2016;20(3):355-363. DOI 10.18699/VJ16.125. (in Russian); Askhadullin D.F., Askhadullin D.F., Vasilova N.Z., Khusainova I.I., Tazutdinova M.R. A variety in the spring wheat protection system from leafy diseases. Vestnik Kazanskogo GAU = Vestnik of the Kazan State Agrarian University. 2019;3(54):10-14. DOI 10.12737/article_5db8423bb4f997.64890554. (in Russian); Ayala-Navarrete L., Thompson N., Ohm H., Anderson J. Molecular markers show a complex mosaic pattern of wheat-Thinopyrum intermedium translocations carrying resistance to YDV. Theor. Appl. Genet. 2010;121:961-970. DOI 10.1007/s00122-010-1365-y.; Bao Y., Wu X., Zhang C., Li X., He F., Qi X., Wang H. Chromosomal constitutions and reactions to powdery mildew and stripe rust of four novel wheat-Thinopyrum intermedium partial amphiploids. J. Genet. Genomics. 2014;41(12):663-666. DOI 10.1016/j.jgg.2014.11.003.; Bhusal N., Sarial A.K., Sharma P., Sareen S. Mapping QTLs for grain yield components in wheat under heat stress. PLoS One. 2017; 12(12):e0189594. DOI 10.1371/journal.pone.0189594.; Chang Z.-J., Zhang X.-J., Yang Z.-J., Zhan H.-X., Li X., Liu C., Zhang C.-Z. Characterization of a partial wheat-Thinopyrum intermedium amphiploid and its reaction to fungal diseases of wheat. Hereditas. 2010;147(6):304-312. DOI 10.1111/j.1601-5223.2010.02156.x.; Cseh A., Yang C., Hubbart-Edwards S., Scholefield D., Ashling S.S., Burridge A.J., Wilkinson P.A., King I.P., King J., Grewal S. Development and validation of an exome-based SNP marker set for identification of the St, Jr and Jvs genomes of Thinopyrum intermedium in a wheat background. Theor. Appl. Genet. 2019; 132:1555-1570. DOI 10.1007/s00122-019-03300-9.; Cui F., Ding A., Li J., Zhao C., Wang L., Wang X., Qi X., Li X., Li G., Gao J., Wang H. QTL detection of seven spike-related traits and their genetic correlations in wheat using two related RIL populations. Euphytica. 2012;186:177-192. DOI 10.1007/s10681-011-0550-7.; Danilova T.V., Zhang G., Liu W., Friebe B., Gill B.S. Homoeologous recombination-based transfer and molecular cytogenetic mapping of a wheat streak mosaic virus and Triticum mosaic virus resistance gene Wsm3 from Thinopyrum intermedium to wheat. Theor. Appl. Genet. 2017;130(3):549-556. DOI 10.1007/s00122-016-2834-8.; Davoyan R.O., Bebyakina I.V., Davoyan E.R., Zinchenco A.N., Zubanova Y.S., Mikov D.S. Introgression of common wheat lines with genetic material of Agropyron glaucum. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2015;19(1):83-90. DOI 10.18699/VJ15.010. (in Russian); Fedak G., Han F. Characterization of derivatives from wheat-Thinopyrum wide crosses. Cytogenet. Genome Res. 2005;109:360-367. DOI 10.1159/000082420.; Feng N., Song G., Guan J., Chen K., Jia M., Huang D., Wu J., Zhang L., Kong X., Geng S., Liu J., Li A., Mao L. Transcriptome profiling of wheat inflorescence development from spikelet initiation to floral patterning identified stage-specific regulatory genes. Plant Physiol. 2017;174(3):1779-1794. DOI 10.1104/pp.17.00310.; Filatova E.V., Syukov V.V., Anisimkina N.V. Influence of the T-5 translocation from wheat grass on the protein fractional structure of spring bread wheat. Agrarnyy Vestnik Yugo-Vostoka = Agrarian Herald of the Southeast. 2010;4:15-17. (in Russian); Friebe B., Jiang J., Raupp W.J., McIntosh R.A., Gill B.S. Characterization of wheat-alien translocations conferring resistance to diseases and pests: current status. Euphytica. 1996;91:59-87.; Fu S., Lv Z., Qi B., Guo X., Li J., Liu B., Han F. Molecular cytogenetic characterization of wheat-Thinopyrum elongatum addition, substitution and translocation lines with a novel source of resistance to wheat fusarium head blight. J. Genet. Genomics. 2012; 39:103-110. DOI 10.1016/j.jgg.2011.11.008.; Guo Z., Chen D., Alqudah A.M., Röder M.S., Ganal M.W., Schnurbusch T. Genome-wide association analyses of 54 traits identified multiple loci for the determination of floret fertility in wheat. New Phytol. 2017;214:257-270. DOI 10.1111/nph.14342.; Guo Z., Slafer G.A., Schnurbusch T. Genotypic variation in spike fertility traits and ovary size as determinants of floret and grain survival rate in wheat. J. Exp. Bot. 2016;67:4221-4230. DOI 10.1093/jxb/erw200.; Guo Z., Zhao Y., Röder M.S., Reif J.C., Ganal M.W., Chen D., Schnurbusch T. Manipulation and prediction of spike morphology traits for the improvement of grain yield in wheat. Sci. Rep. 2018; 8:14435. DOI 10.1038/s41598-018-31977-3.; Han F., Liu B., Fedak G., Liu Z. Genomic constitution and variation in five partial amphiploids of wheat-Thinopyrum intermedium as revealed by GISH, multicolor GISH and seed storage protein analysis. Theor. Appl. Genet. 2004;109:1070-1076. DOI 10.1007/s00122-004-1720-y.; Han H., Bai L., Su J., Zhang J., Song L., Gao A., Yang X., Li X., Liu W., Li L. Genetic rearrangements of six wheat-Agropyron cristatum 6P addition lines revealed by molecular markers. PLoS One. 2014;9(3):e91066. DOI 10.1371/journal.pone.0091066.; Hu J., Wang X., Zhang G., Jiang P., Chen W., Hao Y., Ma X., Xu S., Jia J., Kong L., Wang H. QTL mapping for yield-related traits in wheat based on four RIL populations. Theor. Appl. Genet. 2020; 133:917-933. DOI 10.1007/s00122-019-03515-w.; Hu L.J., Li G.R., Zeng Z.X., Chang Z.J., Liu C., Zhou J.P., Yang Z.J. Molecular cytogenetic identification of a new wheat-Thinopyrum substitution line with stripe rust resistance. Euphytica. 2011;177: 169-177. DOI 10.1007/s10681-010-0216-x.; Hu L., Li G., Zhan H., Liu C., Yang Z. New St-chromosome-specific molecular markers for identifying wheat-Thinopyrum intermedium derivative lines. J. Genet. 2014;93:69-74. DOI 10.1007/s12041-012-0158-2.; Ishikawa G., Nakamura T., Ashida T., Saito M., Nasuda S., Endo T.R., Wu J., Matsumoto T. Localization of anchor loci representing five hundred annotated rice genes to wheat chromosomes using PLUG markers. Theor. Appl. Genet. 2009;118:499-514. DOI 10.1007/s00122-008-0916-y.; Ivanova Yu.N., Solovey L.A., Loginova D.B., Miroshnikova E.E., Dubovets N.I., Silkova O.G. The creation and characterization of the bread wheat line with a centric translocation T2DL.2RL. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2019;23(7):846-855. DOI 10.18699/VJ19.558. (in Russian); Jiang J., Friebe B., Gill B.S. Recent advances in alien gene transfer in wheat. Euphytica. 1993;73:199-212. DOI 10.1007/BF00036700.; Koyshybaev M., Shamanin V.P., Morgunov A.I. Wheat Screening for Resistance to Major Diseases: Guidelines. Ankara: FAO-SEK Publ., 2014. (in Russian); Kroupin P., Kuznetsova V., Romanov D., Kocheshkova A., Karlov G., Dang T.X., Khuat T.M.L., Kirov I., Alexandrov O., Polkhovskiy A., Razumova O., Divashuk M. Pipeline for the rapid development of cytogenetic markers using genomic data of related species. Genes. 2019;10(2):113. DOI 10.3390/genes10020113.; Krupin P.Yu., Divashuk M.G., Belov V.I., Zhemchuzhina A.I., Kovalenko E.D., Upelniek V.P., Karlov G.I. Investigation of intermediary wheat-Agropyron hybrids on resistance to leaf rust. Sel’skokhozyaistvennaya Biologiya = Agricultural Biology. 2013;48(1): 68-73. DOI 10.15389/agrobiology.2013.1.68eng.; Krupin P.Yu., DivashukM.G., KarlovG.I. Gene resources of perennial wild cereals involved in breeding to improve wheat crop (review). Sel’skokhozyaistvennaya Biologiya = Agricultural Biology. 2019; 54(3):409-425. DOI 10.15389/agrobiology.2019.3.409eng.; Kuperman F.M. Physiology of the development, growth and organogenesis of wheat. In: Henkel P.A. (Ed.). Wheat Physiology. IV. Physiology of Agricultural Plants. Moscow: Moscow University Publ., 1969;7-193. (in Russian); Leonova I.N. Influence of alien genetic material on the manifestation of agronomically important traits of common wheat (T. aestivum L.). Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2018;22(3):321-328. DOI 10.18699/VJ18.367. (in Russian); Leonova I.N. Genome-wide association study of powdery mildew resistance in Russian spring wheat varieties (T. aestivum L.). Russ. J. Genet. 2019;55(11):1360-1374. DOI 10.1134/S1022795419110085.; Leonova I.N., Stasyuk A.I., Skolotneva E.S., Salina E.A. Enhancement of leaf rust resistance of Siberian winter wheat varieties by marker-assisted selection. Cereal Res. Commun. 2017;45(4):621- 632. DOI 10.1556/0806.45.2017.048.; Li D., Long D., Li T., Wu Y., Wang Y., Zeng J., Xu L., Fan X., Sha L., Zhang H., Zhou Y., Kang H. Cytogenetics and stripe rust resistance of wheat-Thinopyrum elongatum hybrid derivatives. Mol. Cytogenet. 2018;11:16. DOI 10.1186/s13039-018-0366-4.; Li G., Wang H., Lang T., Li J., La S., Yang E., Yang Z. New molecular markers and cytogenetic probes enable chromosome identification of wheat-Thinopyrum intermedium introgression lines for improving protein and gluten contents. Planta. 2016;244:865-876. DOI 10.1007/s00425-016-2554-y.; Li H., Wang X. Thinopyrum ponticum and Th. intermedium: the promising source of resistance to fungal and viral diseases of wheat. J. Genet. Genomics. 2009;36(9):557-565. DOI 10.1016/S1673-8527(08)60147-2.; Liu C., Yang Z.J., Li G.R., Feng J., Zhou J.P., Ren Z.L. A discussion on genetic relationship in genome between Thinopyrum and Dasypyrum. Chinese High Tech. Lett. 2007;17:295-300.; Ma H., Zhang J., Zhang J., Zhou S., Han H., Liu W., Yang X., Li X., Li L. Development of P genome-specific SNPs and their application in tracing Agropyron cristatum introgressions in common wheat. Crop J. 2019;7(2):151-162. DOI 10.1016/j.cj.2018.07.003.; Martinek P., Watanabe N., Peng Z.S. Gene resources of wheat (Triticum aestivum L.) with different arrangement of spikelets in spike. In: 7th International Wheat Conference, Mar del Plata, 2005.; Martynov S.P., Dobrotvorskaya T.V., Krupnov V.A. Genealogical analysis of the use of two wheatgrass (Agropyron) species in common wheat (Triticum aestivum L.) breeding for disease resistance. Russ. J. Genet. 2016;52(2):154-163. DOI 10.1134/S1022795416020071.; Philipp N., Weichert H., Bohra U., Weschke W., Schulthess A.W., Weber H. Grain number and grain yield distribution along the spike remain stable despite breeding for high yield in winter wheat. PLoS One. 2018;13(10):e0205452. DOI 10.1371/journal.pone.0205452.; Piskarev V.V., Boyko N.I., Kondratieva I.V. Sources of agronomically important traits for breeding of soft spring wheat (Triticum aestivum L.) in the forest steppe of Novosibirsk region. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2016;20(3):277-285. DOI 10.18699/VJ16.166. (in Russian); Plakhotnik V.V., Zeleneva Yu.V., Sudnikova V.P. Sources and high performance donors for spring wheat selection to increase resistance to stress factors of environment. Voprosy Sovremennoj Nauki i Praktiki. Universitet imeni V.I. Vernadskogo = Problems of Contemporary Science and Practice. Vernadsky University. 2014; 1(50):109-113. (in Russian); Roelfs A.P., Singh R.P., Saari E.E. Rust Diseases of Wheat: Concepts and Methods of Disease Management. Mexico: CIMMYT, 1992.; Sakuma S., Golan G., Guo Z., Ogawa T., Tagiri A., Sugimoto K., Bernhardt N., Brassac J., Mascher M., Hensel G., Ohnishi S., Jinno H., Yamashita Y., Ayalon I., Peleg Z., Schnurbush T., Komatsuda T. Unleashing floret fertility in wheat through the mutation of a homeobox gene. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2019;116(11): 5182-5187. DOI 10.1073/pnas.1815465116.; Salina E.A., Adonina I.G., Badaeva E.D., Kroupin P.Yu., StasyukA.I., Leonova I.N., Shishkina A.A., Divashuk M.G., Starikova E.V., Khuat T.M.L., Syukov V.V., Karlov G.I. A Thinopyrum intermedium chromosome in bread wheat cultivars as a source of genes conferring resistance to fungal diseases. Euphytica. 2015;204:91- 101. DOI 10.1007/s10681-014-1344-5.; Salina E.A., Leonova I.N., Shcherban A.B., Stasyuk A.I. Patent RU 2598275 C1. Method of creating lines of winter soft wheat with complex resistance to brown and stem rust and powdery mildew (Institute of Cytology and Genetics, SB RAS). Date of filing: 29.07.2015. Date of publication: 20.09.2016. Bull. No. 26. (in Russian); Sibikeev S.N., Badaeva E.D., Gultyaeva E.I., Druzhin A.E., Shishkina A.A., Dragovich A.Yu., Kroupin P.Yu., Karlov G.I., Thi Mai Khuat, Divashuk M.G. Comparative analysis of Agropyron intermedium (Host) Beauv 6Agi and 6Agi 2 chromosomes in bread wheat cultivars and lines with wheat–wheatgrass substitutions. Russ. J. Genet. 2017;53(3):314-324. DOI 10.1134/S1022795417030115.; Sinigovets M.E. Transferring wheatgrass rust resistance to wheat by adding and replacing chromosomes. Genetika = Genetics (Moscow). 1976;12(9):13-20. (in Russian); Sinigovets M.E. Cytogenetic fundamentals of using wheatgrass in wheat improvement. Dr. Biol. Sci. Diss. Bol’shie Vyazemy, 1988. OD 71 89-3/185. Available at: https://search.rsl.ru/ru/record/01008509447. (in Russian); Skolotneva E.S., Kelbin V.N., Morgunov A.I., Boiko N.I., Shamanin V.P., Salina Е.А. Races composition of the Novosibirsk population of Puccinia graminis f. sp. tritici. Mikologiya i Fitopatologiya = Mycology and Phytopathology. 2020;54(1):49-58. DOI 10.31857/S0026364820010092. (in Russian); Sreenivasulu N., Schnurbusch T. A genetic playground for enhancing grain number in cereals. Trends Plant Sci. 2012;17(2):91-101. DOI 10.1016/j.tplants.2011.11.003.; Stasyuk А.I., Leonova I.N., Salina Е.А. Variability of agronomically important traits in spring wheat hybrids obtained by marker-assisted selection from crosses of winter wheat with spring wheat donors of resistance genes. Sel’skokhozyaistvennaya Biologiya = Agricultural Biology. 2017;52(3):526-534. DOI 10.15389/agrobiology.2017.3.526eng.; State Standard 9353-2016. Wheat: Specifications. 2018. Available at: http://docs.cntd.ru/document/1200139414 (in Russian); State Standard 26574-2017. Wheat Bakery Flour: Specifications (amended). 2019. Available at: http://docs.cntd.ru/document/1200157423 (in Russian); Sukumaran S., Lopes M., Dreisigacker S., Reynolds M. Genetic analysis of multi environmental spring wheat trials identifies genomic regions for locus-specific tradeoffs for grain weight and grain number. Theor. Appl. Genet. 2018;131:985-998. DOI 10.1007/s00122-017-3037-7.; Syukov V.V., Shabolkina E.N., Shevchenko S.N., Vyushkov A.A. Spring soft wheat Tulaykovskaya 110. Molodoy Uchenyy = Young Scientist. 2016;27.3:57-60. (in Russian); Tsitsin N.V. Remote Hybridization of Plants. Moscow: Selkhozgiz Publ., 1954;3-64. (in Russian); Ugarte C.C., Trupkin S.A., Ghiglione H., Slafer G., Casal J.J. Low red/far-red ratios delay spike and stem growth in wheat. J. Exp. Bot. 2010;61(11):3151-3162. DOI 10.1093/jxb/erq140.; Upelniek V.P., Belov V.I., Ivanova L.P., Dolgova S.P., Demidov A.S. Heritage of academician N.V. Tsitsin: state-of-the-art and potential of the collection of intermediate wheat × couch-grass hybrids. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2012;16(3):667-674. (in Russian); Volkova L.V., Bebyakin V.M., Lyskova I.V. Plasticity and stability of spring wheat varieties and breeding forms according to grain productivity and quality. Russ. Agricult. Sci. 2010;36(1):1-4. DOI 10.3103/S1068367410010015.; Wang M.J., Zhang Y., Lin Z.S., Ye X.G., Yuan Y.P., Ma W., Xin Z.Y. Development of EST-PCR markers for Thinopyrum intermedium chromosome 2Ai#2 and their application in characterization of novel wheat-grass recombinants. Theor. Appl. Genet. 2010;121: 1369-1380. DOI 10.1007/s00122-010-1394-6.; Wang R.R.C. Agropyron and Psathyrostachys. In: Kole C. (Ed.). Wild Crop Relatives: Genomic Breeding Resources. Springer, Berlin, Heidelberg, 2011;77-108. DOI 10.1007/978-3-642-14228-4_2.; Wolde G.M., Mascher M., Schnurbusch T. Genetic modification of spikelet arrangement in wheat increases grain number without significantly affecting grain weight. Mol. Genet. Genomics. 2019; 294:457-468. DOI 10.1007/s00438-018-1523-5.; Wu J., Yang X., Wang H., Li H., Li L., Li X., Liu W. The introgression of chromosome 6P specifying for increased numbers of florets and kernels from Agropyron cristatum into wheat. Theor. Appl. Genet. 2006;114:13-20. DOI 10.1007/s00122-006-0405-0.; Zeleneva Yu.V. Substantiation of the genetic protection of wheat from diseases in the Central Chernozem Belt. Dr. Biol. Sci. Diss. St. Petesburg; Pushkin, 2019. Available at: https://rusneb.ru/catalog/000200_000018_RU_NLR_BIBL_A_012131792/ (in Russian); Zeng J., Cao W., Fedak G., Sun S., Mccallum B., Fetch T., Xue A., Zhou Y. Molecular cytological characterization of two novel durum – Thinopyrum intermedium partial amphiploids with resistance to leaf rust, stem rust and Fusarium head blight. Hereditas. 2013;150(1):10-16. DOI 10.1111/j.1601-5223.2012.02262.x.; Zeng Z.-X., Yang Z.-J., Hu L.-J., Liu C., Li G.R., Ren Z.-L. Development of St genome specific ISSR marker. Acta Bot. Boreal. Occident. Sin. 2008;28(8):1533-1540.; Zhang P., Li W., Fellers J., Friebe B., Gill B.S. BAC-FISH in wheat identifies chromosome landmarks consisting of different types of transposable elements. Chromosoma. 2004;112:288-299. DOI 10.1007/s00412-004-0273-9.; Zhang Z.Y., Xin Z.Y., Larkin P.J. Molecular characterization of a Thinopyrum intermedium group 2 chromosome (2Ai-2) conferring resistance to barley yellow dwarf virus. Genome. 2001;44(6): 1129-1135. DOI 10.1139/g01-083.; Zheng Q., Lv Z., Niu Z., Li B., Li H., Xu S.S., Han F., Li Z. Molecular cytogenetic characterization and stem rust resistance of five wheat-Thinopyrum ponticum partial amphiploids. J. Genet. Genomics. 2014;41(11):591-599. DOI 10.1016/j.jgg.2014.06.003.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3174
-
13Academic Journal
المؤلفون: А. С. Рсалиев, Е. И. Гультяева, П. Н. Мальчиков, Е. Л. Шайдаюк, Надежда Михайловна Коваленко, Д. Р. Яковлева, М. Ж. Байгутов
المصدر: Вестник защиты растений, Vol 103, Iss 2 (2020)
مصطلحات موضوعية: Triticum durum, бурая ржавчина, стеблевая ржавчина, желтая ржавчина, пиренофороз, Lr, Plant culture, SB1-1110
وصف الملف: electronic resource
-
14Academic Journal
المؤلفون: Bilovus, G.I., Биловус , Г.Я.
المصدر: Ştiinţa Agricolă (1) 75-80
مصطلحات موضوعية: Hordeum vulgare, Winter barley, Varietal specimens, disease resistance, powdery mildew, Dark brown spotting, Dwarf rust, Ячмень озимый, Сортообразцы, Устойчивость к болезням, Мучнистая роса, Темно-бурая пятнистость, Карликовая ржавчина
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/138614; urn:issn:18570003
-
15Academic Journal
المؤلفون: БИЛОВУС, Галина
مصطلحات موضوعية: Hordeum vulgare, ячмень озимый, устойчивость к болезням, мучнистая роса, темно-бурая пятнистость, карликовая ржавчина, winter barley, disease resistance, powdery mildew, dark brown spotting, dwarf rust
وصف الملف: application/pdf
Relation: Știința Agricolă;2021, N. 1; БИЛОВУС, Галина. Устойчивость ячменя озимого к основным болезням в условиях Западной Лесостепи Украины. In: Ştiinţa Agricolă. 2021, nr. 1, pp. 75-80. ISSN 1857-0003, eISSN 2587-3202.; http://repository.utm.md/handle/5014/23434
-
16Academic Journal
المؤلفون: Lisova, Н.
المصدر: Interdepartmental Thematic Scientific Collection of Plant Protection and Quarantine; No. 67 (2021): Interdepartmental Thematic Scientific Collection of Plant Protection and Quarantine; 166-180 ; Межведомственный тематический научный сборник "Защита и карантин растений"; № 67 (2021): Межведомственный тематический научный сборник "Защита и карантин растений"; 166-180 ; Міжвідомчий тематичний науковий збірник "Захист і карантин рослин"; № 67 (2021): Міжвідомчий тематичний науковий збірник "Захист і карантин рослин"; 166-180 ; 1606-9773 ; 10.36495/1606-9773.2021.67
مصطلحات موضوعية: resistance, spring wheat varieties, pathogens, powdery mildew, leaf rust, wheat septoria, natural infectious background, устойчивость, сорта яровой пшеницы, патогены, мучнистая роса, бурая ржавчина, септориоз листьев, природный инфекционный фон, cтійкість, сорти пшениці ярої, патогени, борошниста роса, бура іржа, септоріоз листя пшениці, природний інфекційний фон
وصف الملف: application/pdf
Relation: http://zkr.ipp.gov.ua/index.php/journal/article/view/153/155; http://zkr.ipp.gov.ua/index.php/journal/article/view/153
-
17Academic Journal
المؤلفون: Igor Belan A., Lyudmila Rosseeva P., Natalia Blokhina P., Yuri Grigoriev P., Yaroslava Mukhina V., Natalia Trubacheeva V., Lidia Pershina A., И. Белан А., Л. Россеева П., Н. Блохина П., Ю. Григорьев П., Я. Мухина В., Н. Трубачеева В., Л. Першина А.
المساهمون: The research was carried out under the support of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation within the state assignment of the Federal State Budgetary Institution "Omsk Agricultural Scientific Center" (theme No. 0797-2019-0008). Some sections of the work were carried out with the financial support of the Russian Foundation for Basic Research (project 20-016-00196)., Работа выполнена при поддержке Минобрнауки РФ в рамках Государственного задания ФГБНУ «Омский аграрный научный центр» (тема № 0797-2019-0008). Отдельные разделы работы выполнены при финансовой поддержке РФФИ (проект 20-016-00196).
المصدر: Agricultural Science Euro-North-East; Том 22, № 4 (2021); 449-465 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 22, № 4 (2021); 449-465 ; 2500-1396 ; 2072-9081
مصطلحات موضوعية: spring wheat, breeding, early maturity, drought, grain quality, resistance, pathogen, rust, variety, yield, яровая пшеница, селекция, скороспелость, засуха, качество зерна, устойчивость, патоген, ржавчина, сорт, урожайность
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/831/486; Зуев Е. В., Ляпунова О. А. Роль академика В. Ф. Дорофеева в формировании вировской коллекции пшеницы. 125 лет прикладной ботаники в России: Междунар. конф. Санкт-Петербург: ФИЦ «Всерос- сийский институт генетических ресурсов растений имени Н. И. Вавилова», 2019. С. 296. DOI: https://doi.org/10.30901/978-5-907145-39-9; Новохатин В. В., Драгавцев В. А. Научное обоснование эколого-генетической селекции мягкой яровой пшеницы. Достижения науки и техники АПК. 2020;34(12):39-46. DOI: https://doi.org/10.24411/0235-2451-2020-11206; Евдокимов М. Г., Белан И. А., Юсов В. С., Ковтуненко А. Н., Россеева Л. П. Адаптивный потенциал сортов пшеницы (озимой, яровой мягкой и яровой твердой) селекции Омского аграрного научного центра. Достижения науки и техники АПК. 2020;34(10):9-15. DOI: https://doi.org/10.24411/0235-2451-2020-11001; Жученко А. А. Экологическая генетика культурных растений как самостоятельная научная дисциплина. Теория и практика. Краснодар: Просвещение-Юг, 2010. 485 с.; Койшыбаев М., Канафин Б. К., Федоренко Е. Н., Гоц А. Ю., Литовченко Ж. И. Источники устойчивости яровой мягкой пшеницы к видам ржавчины и септориоза в Северном Казахстане. Международный научно-исследовательский журнал. 2017;(12-3):117-122. DOI: https://doi.org/10.23670/IRJ.2017.66.098; Агеева Е. В., Лихенко И. Е., Советов В. В., Пискарев В. В. Экологическая пластичность пшеницы в лесостепи Западной Сибири. Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). 2015;(1(34)):22-28. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=23396701; Пушкарёв Д. В., Чурсин А. С., Кузьмин О. Г., Краснова Ю. С., Каракоз И. И., Шаманин В. П. Экологическая пластичность и стабильность сортов яровой мягкой пшеницы в степной зоне Омской области. Вестник Омского государственного аграрного университета. 2017;(4(28)):61-67. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=30766354; Новохатин В. В., Драгавцев В. А., Леонова Т. А., Шеломенцева Т. В. Создание сорта мягкой яровой пшеницы Гренада с помощью инновационных технологий селекции на основе теории эколого-генетической организации количественных признаков. Сельскохозяйственная биология. 2019;54(5):905-919. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2019.5.905rus; Мальцева Л. Т., Филиппова Е. А., Дробот И. А. Устойчивость сортов яровой мягкой пшеницы к листовым болезням в условиях Зауралья. Аграрный вестник Урала. 2017;(7(161)):28-35. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=30039742; Шаманин В. П., Потоцкая И. В. Иммунологическая оценка сортов яровой мягкой пшеницы селекционного питомника КАСИБ. Вестник Омского государственного аграрного университета. 2016;(2(22)):5-10. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=26583991; Мешкова Л. В., Зверовская Т. С., Сабаева О. Б., Пяткова О. В. Источники устойчивости к грибным заболеваниям для селекции зерновых культур в Омской области. Научные инновации ‒ аграрному произ- водству: мат-лы Международ. научн.-практ. конф., посвящ. 100-летнему юбилею Омского ГАУ. Омск: Омский ГАУ им. П. А. Столыпина, 2018. С. 685-689.; Россеева Л. П., Белан И. А., Мешкова Л. В., Блохина Н. П., Ложникова Л. Ф., Трубачеева Н. В, Першина Л. А. Селекция на устойчивость к стеблевой ржавчине яровой мягкой пшеницы в Западной Сибири. Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2017 ;(7(153)):5-12. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=29368539; Гультяева Е. И., Сибикеев С. Н., Дружин А. Е., Шайдаюк Е. Л. Расширение генетического разнообразия сортов яровой мягкой пшеницы по устойчивости к бурой ржавчине ( Рuccinia triticina Еriks.) в Нижнем Поволжье. Сельскохозяйственная биология. 2020;55(1):27-44. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2020.1.27rus; Hodson D. A decade of stem rustsurveillance. How far have we come and where are we going. BGRI Technical Workshop. Sydney, 2015. URL: https://globalrust.org/2015-plenary-abstracts; Сколотнева Е. С., Кельбин В. Н., Моргунов А. И., Бойко Н. И., Шаманин В. П., Салина Е. А. Расовый состав Новосибирской популяции Puccinia graminis f. sp. tritici. Микология и фитопатология. 2020;54 (1):49-58. DOI: https://doi.org/10.31857/S0026364820010092; Россеева Л. П., Мешкова Л. В., Белан И. А., Поползухин П. В., Василевский В. Д., Гайдар А. А., Паршуткин Ю. Ю. Устойчивость сортов мягкой яровой пшеницы к листостебельным патогенам в Западной Сибири. Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2019;(5(175)):5-11. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=41040133; Юшкевич Л. В., Щитов А. Г., Пахотина И. В. Урожайность и качество зерна яровой пшеницы в зависимости от технологии возделывания в лесостепи Западной Сибири. Земледелие. 2019;(1):32-34. DOI: https://doi.org/10.24411/0044-3913-2019-10109; Белан И. А., Россеева Л. П., Блохина Н. П., Ложникова Л. Ф., Золкин Д. А., Трубачеева Н. В., Першина Л. А. Анализ сортовых ресурсов пшеницы мягкой яровой для условий Западной Сибири. Научные инновации ‒ аграрному производству: мат-лы Международ. научн.-практ. конф., посвящ. 100-летнему юбилею Омского ГАУ. Омск: Омский ГАУ им. П. А. Столыпина, 2018. С. 593-598.; Коробейников Н. И., Валекжанин В. С., Пеннер И. Н. Результаты селекции короткостебельных сортов мягкой яровой пшеницы интенсивного типа в Алтайском крае. Достижения науки и техники АПК. 2020;34(7):62-67. DOI: https://doi.org/10.24411/0235-2451-2020-10710; Агеева Е. В., Леонова И. Н., Лихенко И. Е. Полегание пшеницы: генетические и экологические факторы и способы преодоления. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2020;24(4):356-362. DOI: https://doi.org/10.18699/VJ20.628; Коробейников Н. И., Валекжанин В. С. Лидер 80 ‒ новый сорт яровой мягкой пшеницы интенсивного типа. Вестник Алтайского государственного аграрного университета . 2019;(11(181)):5-10. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=42467503; Потоцкая И. В., Моргунов А. И., Чурсин А. С., Кузьмин О. Г., Трущенко А. Ю., Шаманин В. П. Адаптивный потенциал сортов яровой мягкой пшеницы в рамках программы Казахстанско-Сибирской сети. Вестник Омского государственного аграрного университ ета. 2019;(3(35)):5-12. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=41284515; Белан И. А., Россеева Л. П., Мешкова Л. В., Блохина Н. П., Першина Л. А., Трубачеева Н. В. Создание устойчивых сортов для условий Западной Сибири и Урала. Вестник Алтайского государственного аг- рарного университета. 2017;(1(147)):5-14. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=28162591; Белан И. А., Россеева Л. П., Блохина Н. П., Немченко В. В., Абакумов С. Н., Кадиков Р. К., Трубачеева Н. В, Осадчая Т. С., Першина Л. А. Направления селекции яровой мягкой пшеницы для Западной Сибири. Сб. тез. Международного Конгресса «VII Съезд Вавиловского общества генетиков и селекционеров, посвященный 100-летию кафедры генетики СПбГУ, и ассоциированные симпозиумы», Санкт-Петербург, 18-22 июня 2019 г. Санкт-Петербург: ООО «Издательство ВВМ», 2019. С. 895.; Пахотина И. В., Игнатьева Е. Ю., Зелова Л. А., Белан И. А., Россеева Л. П., Блохина Н. П. Оценка сортов яровой мягкой пшеницы на устойчивость формирования сильного и ценного по качеству зерна в условиях юга Западной Сибири. Успехи современного естествознания. 2018;(9):29-36. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=35690779; Григорьев Ю. П., Белан И. А. Влияние элементов структуры урожая на урожайность сортов яровой мягкой пшеницы в условиях подтаёжной зоны Омской области. Аграрная Россия. 2019;(5):3-6. DOI: https://doi.org/10.30906/1999-5636-2019-5-3-6; Система адаптивного земледелия Омской области. Коллектив авторов. Омск: Изд-во ИП Макшеевой Е. А., 2020. 522 с. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=44576576.; Коробейников Н. И., Валекжанин В. С., Пешкова Н. В. Засухоустойчивый сорт яровой мягкой пшеницы Тобольская степная. Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2018;(5(163)):5-12. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=35314991; Россеев В. М. Способ оценки растений in vitro к абиотическим факторам внешней среды: пат. № 2146865 (Российская Федерация). № 92002021/13: заявл. 26.10.1992; опубл. 27.03.2000. Бюл. №9. 2 с. Режим доступа: http://www.freepatent.ru/patents/2146865; Россеев В. М., Белан И. А., Россеева Л. П. Использование метода in vitro в селекции пшеницы мягкой яровой. Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2016;(2(136)):5-9. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=25714727; Мешкова Л. В., Россеева Л. П., Коренюк Е. А., Белан И. А. Динамика распространения патотипа возбудителя бурой ржавчины пшеницы вирулентного к сортам с геном Lr9 в Омской области. Микология и фитопатология. 2012;46(6):397-400. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=18208670; Плотникова Л. Я., Мешкова Л. В., Гультяева Е. И., Митрофанова О. П., Лапочкина И. Ф. Тенденция преодоления устойчивости к бурой ржавчине интрогрессивных линий мягкой пшеницы с генетическим материалом Aegilops speltoides Tausch. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018;22(5):560-567. DOI: https://doi.org/10.18699/VJ18.395; Першина Л. А., Белова Л. И., Трубачеева Н. В., Осадчая Т. С., Шумный В. К., Белан И. А., Россеева Л. П., Немченко В. В., Абакумов С. Н. Аллоплазматические рекомбинантные линии (H. vulgare) ‒ T. aestivum с транслокацией 1RS.1BL: исходные генотипы для создания сортов мягкой пшеницы. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018;22(5):544-552. DOI: https://doi.org/10.18699/VJ18.393; Pershina L., Trubacheeva N., Badaeva E., Belan I., Rosseeva L. Study of androgenic plant families of alloplasmic introgression lines (H. vulgare) – T. aestivum and the use of sister DH lines in breeding. Plants. 2020;9(6):764. DOI: https://doi.org/10.3390/plants9060764; Кинчаров А. И., Таранова Т. Ю., Дёмина Е. А., Чекмасова К. Ю. Селекционная оценка признака масса 1000 зерен в засушливых условиях. Успехи современного естествознания. 2020;(5):7-12. DOI: https://doi.org/10.17513/use.37384; https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/831
-
18Academic Journal
المؤلفون: Ольга Александровна Баранова
المصدر: Вестник защиты растений, Vol 103, Iss 2 (2020)
مصطلحات موضوعية: пшеница, устойчивость, стеблевая ржавчина (Puccinia graminis f. sp. tritici), Sr гены, молекулярные маркеры, Plant culture, SB1-1110
وصف الملف: electronic resource
-
19Academic Journal
المؤلفون: G. V. Volkova, O. F, Vaganova, T. A. Dolbilova
المصدر: Зерновое хозяйство России, Vol 0, Iss 4, Pp 62-67 (2018)
مصطلحات موضوعية: мягкая озимая пшеница, гены устойчивости, бурая ржавчина, постулирование, Agriculture (General), S1-972
وصف الملف: electronic resource
-
20Academic Journal
المؤلفون: I. P. Talanov, L. Z. Karimova, P. I. Talanov
المصدر: Зерновое хозяйство России, Vol 0, Iss 2, Pp 33-37 (2018)
مصطلحات موضوعية: фитопатогены, корневые гнили, бурая ржавчина, септориоз, мучнистая роса, предпосевная обработка, урожайность, phyto pathogens, root rots, brown rust, septoriosis, powdery mildew, pre-sowing treatment, productivity, Agriculture (General), S1-972
وصف الملف: electronic resource