-
1Academic Journal
المؤلفون: K. V. Medvedev, D. A. Gusev, V. A. Zinserling, M. A. Protchenkov, N. Yu. Semenova, V. S. Evstropov, К. В. Медведев, Д. А. Гусев, В. А. Цинзерлинг, М. А. Протченков, Н. Ю. Семенова, В. С. Евстропов
المصدر: Journal Infectology; Том 16, № 2 (2024); 89-97 ; Журнал инфектологии; Том 16, № 2 (2024); 89-97 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2024-16-2
مصطلحات موضوعية: эндотелиопатия, SARS-CoV-2, gastrointestinal bleeding, spontaneous bleeding into soft tissues, risk factors, endotheliopathy, желудочно-кишечное кровотечение, спонтанные кровотечения в мягкие ткани, факторы риска
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1644/1137; Патология пищеварительной системы, ассоциированная с инфекцией SARS-CoV-2 / Е.В. Мороз [и др.] // Медицинский вестник ГВКГ им. Н.Н. Бурденко. – 2021. – № 1(3). – С. 26–36.; Согласованная экспертная позиция по диагностике и лечению фульминантного миокардита в условиях пандемии COVID-19 / О.Ш. Ойноткинова [и др.] // Вестник российской академии медицинских наук. – 2020. – № 75(5). – С. 414–425. – DOI:10.15690/vramn1433.; Патологическая анатомия COVID-19: опыт 2000 аутопсий / О.В. Зайратьянц [и др.] // Судебная медицина. 2020. – № 6(4). – С. 10–23. – DOI:10.19048/fm340.; Detection of SARS-CoV-2 RNA in fecal specimens of patients with confirmed COVID-19: a metaanalysis / M.C. Wong [et al.] // J. Infect. 2020. – Vol. 81. – P. 31 – 38.; Functional exhaustion of antiviral lymphocytes in COVID-19 patients / M. Zheng [et al.] // Cell MolImmunol. 2020. – Vol. 17. – N5. – Р. 533–535. DOI:10.1038/s41423-020-0402-2.; Патоморфологические и молекулярно-биологические аспекты повреждения кровеносных сосудов при COVID-19 / И.Э. Есауленко [и др.] // Журнал анатомии и гистопатологии. – 2020. – Т. 9, № 4. – С. 9–18. – DOI:10.18499/2225-7357-2020-9-4-9-18.; Wichmann, D. Autopsy Findings and Venous Thromboembolism in Patients with COVID-19 // Journal of Anatomy and Histopathology. 2020. – Vol. 9. – Is. 18. – P. 1030. DOI:10.7326/l20-1206.; Спонтанные гематомы при COVID-19: причины возникновения, клиника, диагностика и лечение / М.В. Нагибина [и др.] // Клиническая медицина. 2021. – № 99 (9- 10). – С. 540–547. – DOI:10.30629/0023-2149-2021-99-9-10-540-547.; Сергеенко, И.В. Дислипидемия, атеросклероз и ишемическая болезнь сердца / И.В. Сергеенко, А.А. Аншелес, В.В Кухарчук // ПатиСС. – 2020. – С. 302. – DOI: 978-5-90363-366-1.; Взаимосвязь уровней д-димера и фактора Виллебрандта с развитием желудочно-кишечных кровотечений у пациентов со стабильной ишемической болезнью сердца (по данным регистра длительной антитромботической терапии РЕГАТА-1) / О.О. Шахматова [и др.] // Кардиоваскулярная терапия и профилактика. – 2021. – Т. 20, № 7. – С. 67–76. – DOI:10.15829/1728-8800-2021-3022.; Роль эндотелиопатии в геморрагических осложнениях при COVID-19 / Д.А. Гусев [и др.] // Журнал инфектологии. – 2023. – Т. 15, № 2. – С. 46–49.; Молекулярно-клеточные механизмы эндотелиальной дисфункции различного генеза / А.И. Инжутова [и др.] // Сибирский медицинский журнал. – 2010. – Т. 96, № 5. – С. 85–88.; Частота эрозивно-язвенных дефектов и язвенных кровотечений гастродуоденальной зоны у больных с инфекцией COVID-19 / Н.Н. Буторин [и др.] // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. – 2022. – № 201(5). – С. 5–11. – DOI:10.31146/1682-8658-ecg-201-5-5-11.; Analysis of Digestive Endoscopic Results During COVID-19 / K. Huang [et al.] // J. Transl. Int Med. 2021. – Vol.9. – P. 38–42. DOI:10.2478/jtim-2021–0006.; Тромботические и геморрагические осложнения у пациентов с тяжелым и крайне тяжелым течением COVID-19 / М.В. Бычинин [и др.] // Анестезиология и реаниматология. – 2022. – № 2. – С. 24–32.; Incidence of thrombosis and hemorrhage in hospitalized cancer patients with COVID-19 / R. Patell [et al.] // J. Thromb. Haemost. 2020. – Vol. 18. – Is. 9. – P. 2349–2357. DOI: 10/1111/jth.15018.; Спонтанная забрюшинная гематома у пациентов с COVID-19: первый клинический опыт / В.В Стрижелецкий [и др.] // Эндоскопическая хирургия. – 2021. – № 27 (5). – С. 42–47.; Spontaneous giant rectus sheath hematoma in patients with COVID-19: two case reports and literature review / B. Nematihonar [et al.] // Int. J. Emerg. Med. 2021. – Vol. 14. – Is. 1. – P. 40. DOI:10.1186/s12245-021-00366-5.; Иммуногистохимическая оценка фактора Виллебранда и CD31 в интиме коронарных артерий в ранние сроки после стентирования / С.С. Тодоров [и др.] // Современные проблемы науки и образования. – 2024. – № 1. – С. 23.; Липницкий, Е.М. Причины рецидива язвенного гастродуоденального кровотечения / Е.М. Липницкий, А.В. Алекберзаде, М.Р. Гасанов // Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. – 2017. – № 3. – С. 4–10. – DOI:10.17116/hirurgia201734-10.; Эндоваскулярный гемостаз при спонтанном забрюшинном кровотечении / М.Н. Каминский [и др.] // Сибирский медицинский журнал. – 2019. – Т. 157, № 2. – С. 57– 60. – DOI:10.34673/ismu.2019.156.1.013.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1644
-
2Academic Journal
المؤلفون: N. G. Plekhova, D. V. Korolev, V. B. Shumatov, Н. Г. Плехова, Д. В. Королев, В. Б. Шуматов
المساهمون: Исследование выполнено при финансовом обеспечении внутривузовского гранта ФГБОУ ВО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России.
المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 9, № 1 (2024); 73-84 ; 2587-9596 ; 2541-9420
مصطلحات موضوعية: межклеточное взаимодействие, stem cells, soft tissues, regeneration, intercellular interaction, стволовые клетки, мягкие ткани, регенерация
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4600/2734; Rodrigues M, Kosaric N, Bonham CA, Gurtner GC. Wound healing: A cellular perspective. Physiol Rev, 2019; 99(1): 665-706. doi:10.1152/physrev.00067.2017; Palomino-Segura M, Hidalgo A. Immunity: Neutrophil quorum at the wound. Curr Biol. 2020; 30(14): R828-R830. doi:10.1016/j.cub.2020.05.045 141; Forbes SJ, Rosenthal N. Preparing the ground for tissue regeneration: From mechanism to therapy. Nat Med. 2014; 20: 857-869.; Wang Z, Qi F, Luo H, Xu G, Wang D. Inflammatory microenvironment of skin wounds. Front Immunol. 2022; 13: 789274. doi:10.3389/fimmu.2022.789274; Xiong Y, Mi BB, Lin Z, Hu YQ, Yu L, Zha KK, et al. The role of the immune microenvironment in bone, cartilage, and soft tis-sue regeneration: From mechanism to therapeutic opportunity. Mil Med Res. 2022; 9(1): 65. doi:10.1186/s40779-022-00426-8; Hirsiger S, Simmen HP, Werner CM, Wanner GA, Rittirsch D. Danger signals activating the immune response after trauma. Mediators Inflamm. 2012; 2012: 315941. doi:10.1155/2012/315941; Li J, Chen J, Kirsner R. Pathophysiology of acute wound healing. Clin Dermatol. 2007; 25(1): 9-18. doi:10.1016/j.clindermatol.2006.09.007; Wilgus TA, Roy S, McDaniel JC. Neutrophils and wound repair: Positive actions and negative reactions. Adv Wound Care (New Rochelle). 2013; 2(7): 379-388. doi:10.1089/wound.2012.0383; Zheng SY, Wan XX, Kambey PA, Shan JQ, Chen YW, Xiong K. Therapeutic role of growth factors in treating diabetic wound. World J Diabetes. 2023; 14(4): 364-395. doi:10.4239/wjd.v14.i4.364; Jun JI, Kim KH, Lau LF. The matricellular protein CCN1 mediates neutrophil efferocytosis in cutaneous wound healing. Nat Commun. 2015; 6: 7386. doi:10.1038/ncomms8386; McCracken JM, Allen LA. Regulation of human neutrophil apoptosis and lifespan in health and disease. J Cell Death. 2014; 7: 15-23. doi:10.4137/JCD.S11038; Mussbacher M, Salzmann M, Brostjan C, Hoesel B, Schoergenhofer C, Datler H, et al. Cell type-specific roles of NF-κB linking inflammation and thrombosis. Front Immunol. 2019; 10: 85. doi:10.3389/fimmu.2019.00085; Diller RB, Tabor AJ. The role of the extracellular matrix (ECM) in wound healing: A review. Biomimetics (Basel). 2022; 7(3): 87. doi:10.3390/biomimetics7030087; Enzmann G, Kargaran S, Engelhardt B. Ischemia-reperfusion injury in stroke: Impact of the brain barriers and brain immune privilege on neutrophil function. Ther Adv Neurol Disord. 2018; 11: 1756286418794184. doi:10.1177/1756286418794184; Wong SL, Demers M, Martinod K, Gallant M, Wang Y, Goldfine AB, et al. Diabetes primes neutrophils to undergo NETosis, which impairs wound healing. Nat Med. 2015; 21(7): 815-819. doi:10.1038/nm.3887; Kanno E, Kawakami K, Ritsu M, Ishii K, Tanno H, Toriyabe S, et al. Wound healing in skin promoted by inoculation with Pseudomonas aeruginosa PAO1: The critical role of tumor necrosis factor-α secreted from infiltrating neutrophils. Wound Repair Regen. 2011; 19(5): 608-621. doi:10.1111/j.1524-475X.2011.00721.x; Canesso MC, Vieira AT, Castro TB, Schirmer BG, Cisalpino D, Martins FS, et al. Skin wound healing is accelerated and scarless in the absence of commensal microbiota. J Immunol. 2014; 193(10): 5171-5180. doi:10.4049/jimmunol.1400625; Kono H, Onda A, Yanagida T. Molecular determinants of sterile inflammation. Curr Opin Immunol. 2014; 26: 147-156. doi:10.1016/j.coi.2013.12.004; Soliman AM, Barreda DR. Acute inflammation in tissue healing. Int J Mol Sci. 2022; 24(1): 641. doi:10.3390/ijms24010641; Kovtun A, Messerer DAC, Scharffetter-Kochanek K, HuberLang M, Ignatius A. Neutrophils in tissue trauma of the skin, bone, and lung: Two sides of the same coin J Immunol Res. 2018; 2018: 8173983. doi:10.1155/2018/8173983; Ehnert S, Relja B, Schmidt-Bleek K, Fischer V, Ignatius A, Linnemann C, et al. Effects of immune cells on mesenchymal stem cells during fracture healing. World J Stem Cells. 2021; 13(11): 1667-1695. doi:10.4252/wjsc.v13.i11.1667; Bayer F, Dremova O, Khuu MP, Pontarollo G, Kiouptsi K, Soshnikova N, et al. The interplay between nutrition, innate immunity, and the commensal microbiota in adaptive intestinal morphogenesis. Nutrients. 2021; 13(7): 2198. doi:10.3390/nu13072198; Frieri M, Kumar K, Boutin A. Wounds, burns, trauma, and injury. Wound Med. 2016; 13: 12-17.; André-Lévigne D, Modarressi A, Pepper MS, Pittet-Cuénod B. Reactive oxygen species and NOX enzymes are emerging as key players in cutaneous wound repair. Int J Mol Sci. 2017; 18(10): 2149. doi:10.3390/ijms18102149; Brazil JC, Quiros M, Nusrat A, Parkos CA. Innate immune cell-epithelial crosstalk during wound repair. J Clin Invest. 2019; 129(8): 2983-2993. doi:10.1172/JCI124618; Wu YS, Chen SN. Apoptotic cell: Linkage of inflammation and wound healing. Front Pharmacol. 2014; 5: 1. doi:10.3389/fphar.2014.00001; Anderton H, Alqudah S. Cell death in skin function, inflammation, and disease. Biochem J. 2022; 479(15): 1621-1651. doi:10.1042/BCJ20210606; Poplimont H, Georgantzoglou A, Boulch M, Walker HA, Coombs C, Papaleonidopoulou F, et al. Neutrophil swarming in damaged tissue is orchestrated by connexins and cooperative calcium alarm signals. Curr Biol. 2020; 30(14): 2761-2776.e7. doi:10.1016/j.cub.2020.05.030; Kiselyov K, Muallem S. ROS and intracellular ion channels. Cell Calcium. 2016; 60(2): 108-114. doi:10.1016/j.ceca.2016.03.004; Sofoluwe A, Bacchetta M, Badaoui M, Kwak BR, Chanson M. ATP amplifies NADPH-dependent and -independent neutrophil extracellular trap formation. Sci Rep. 2019; 9(1): 16556. doi:10.1038/s41598-019-53058-9; Minutti CM, Knipper JA, Allen JE, Zaiss DM. Tissue-specific contribution of macrophages to wound healing. Semin Cell Dev Bio. 2017; 61: 3-11. doi:10.1016/j.semcdb.2016.08.006; Kim SY, Nair MG. Macrophages in wound healing: Activation and plasticity. Immunol Cell Biol. 2019; 97(3): 258-267. doi:10.1111/imcb.12236; Italiani P, Boraschi D. From monocytes to M1/M2 macrophages: Phenotypical vs. functional differentiation. Front Immunol. 2014; 5: 514. doi:10.3389/fimmu.2014.00514; Orecchioni M, Ghosheh Y, Pramod AB, Ley K. Macrophage polarization: Different gene signatures in M1(LPS+) vs. classically and M2(LPS–) vs. alternatively activated macrophages. Front Immunol. 2019; 10: 1084. doi:10.3389/fimmu.2019.01084; Sica A, Mantovani A. Macrophage plasticity and polarization: in vivo veritas. J Clin Invest. 2012; 122(3): 787-795. doi:10.1172/JCI59643; Boniakowski AE, Kimball AS, Jacobs BN, Kunkel SL, Gallagher KA. Macrophage-mediated inflammation in normal and diabetic wound healing. J Immunol. 2017; 199(1): 17-24. doi:10.4049/jimmunol.1700223; Wynn TA, Vannella KM. Macrophages in tissue repair, regeneration, and fibrosis. Immunity. 2016; 44(3): 450-462. doi:10.1016/j.immuni.2016.02.015; Brown BN, Sicari BM, Badylak SF. Rethinking regenerative medicine: A macrophage-centered approach. Front Immunol. 2014. 5: 510. doi:10.3389/fimmu.2014.00510; Yan D, Liu S, Zhao X, Bian H, Yao X, Xing J, et al. Recombinant human granulocyte macrophage colony stimulating factor in deep second-degree burn wound healing. Med (Baltimore). 2017; 96(22): e6881. doi:10.1097/MD.0000000000006881; Smigiel KS, Parks WC. Macrophages, wound healing, and fibrosis: Recent insights. Curr Rheumatol Rep. 2018; 20(4): 17. doi:10.1007/s11926-018- 0725-5; McWhorter FY, Wang T, Nguyen P, Chung T, Liu WF. Modulation of macrophage phenotype by cell shape. Proc Natl Acad Sci U S A. 20134; 110(43): 17253-17258. doi:10.1073/pnas.1308887110; Postat J, Olekhnovitch R, Lemaître F, Bousso P. A metabolism-based quorum sensing mechanism contributes to termination of inflammatory responses. Immunity. 2018; 49(4): 654-665.e5. doi:10.1016/j.immuni.2018.07.014; Kienle K, Lämmermann T. Neutrophil swarming: An essential process of the neutrophil tissue response. Immunol Rev. 2016; 273(1): 76-93. doi:10.1111/imr.12458; Uderhardt S, Martins AJ, Tsang JS, Lämmermann T, Germain RN. Resident macrophages cloak tissue microlesions to prevent neutrophil-driven inflammatory damage. Cell. 2019; 177(3): 541-555.e17. doi:10.1016/j.cell.2019.02.028; Zhang J, Qu C, Li T, Cui W, Wang X, Du J. Phagocytosis mediated by scavenger receptor class BI promotes macrophage transition during skeletal muscle regeneration. J Biol Chem. 2019; 294(43): 15672-15685. doi:10.1074/jbc.RA119.008795; Kim H, Wang SY, Kwak G, Yang Y, Kwon IC, Kim SH. Exosome-guided phenotypic switch of M1 to M2 macrophages for cutaneous wound healing. Adv Sci (Weinh). 2019; 6(20): 1900513. doi:10.1002/advs.201900513; Wulff BC, Wilgus TA. Mast cell activity in the healing wound: More than meets the eye? Exp Dermatol. 2013; 22(8): 507- 510. doi:10.1111/exd.12169; Numata Y, Terui T, Okuyama R, Hirasawa N, Sugiura Y, Miyoshi I, et al. The accelerating effect of histamine on the cutaneous wound-healing process through the action of basic fibroblast growth factor. J Invest Dermatol. 2006; 126(6): 1403-1409. doi:10.1038/sj.jid.5700253; Komi DEA, Wöhrl S, Bielory L. Mast cell biology at molecular level: A comprehensive review. Clin Rev Allergy Immunoll. 2020; 58(3): 342-365. doi:10.1007/s12016-019-08769-2; Komi DEA, Khomtchouk K, Santa Maria PL. A review of the contribution of mast cells in wound healing: Involved molecular and cellular mechanisms. Clin Rev Allergy Immunol. 2020; 58(3): 298-312. doi:10.1007/s12016-019-08729-w; Liao B, Ouyang Q, Song H, Wang Z, Ou J, Huang J, et al. The transcriptional characteristics of mast cells derived from skin tissue in type 2 diabetes patients at the single-cell level. Acta Histochem. 2021; 123(7): 151789. doi:10.1016/j.acthis.2021.151789; Bacci S. Fine regulation during wound healing by mast cells, a physiological role not yet clarified. Int J Mol Sci. 2022; 23(3): 1820. doi:10.3390/ijms23031820; Bacci S, Bonelli A, Romagnoli P. Mast cells in injury response. In: Abreu T, Silva G (eds). Cell movement: New research trends. New York: Nova Science Publishers; 2009: 81-121.; Kim TG, Kim SH, Lee MG. The origin of skin dendritic cell network and its role in psoriasis. Int J Mol Sci. 2017; 19(1): 42. doi:10.3390/ijms19010042; Su Q, Igyártó BZ. Keratinocytes share gene expression fingerprint with epidermal langerhans cells via mRNA transfer. J Invest Dermatol. 2019; 139(11): 2313-2323.e8. doi:10.1016/j.jid.2019.05.006; Stojadinovic O, Yin N, Lehmann J, Pastar I, Kirsner RS, Tomic-Canic M. Increased number of langerhans cells in the epidermis of diabetic foot ulcers correlates with healing outcome. Immunol Res. 2013; 57(1-3): 222-228. doi:10.1007/s12026-013-8474-z; Kohn S, Kohn D, Schiller D. Effect of zinc supplementation on epidermal langerhans’ cells of elderly patients with decubital ulcers. J Dermatol. 2000; 27(4): 258-263. doi:10.1111/j.1346-8138.2000.tb02161.x; Gregorio J, Meller S, Conrad C, Di Nardo A, Homey B, Lauerma A, et al. Plasmacytoid dendritic cells sense skin injury and promote wound healing through type I interferons. J Exp Med. 2010; 207(13): 2921-2930. doi:10.1084/jem.20101102; Sobecki M, Krzywinska E, Nagarajan S, Audigé A, Huỳnh K, Zacharjasz J, et al. NK cells in hypoxic skin mediate a trade-off between wound healing and antibacterial defence. Nat Commun. 2021; 12(1): 4700. doi:10.1038/s41467-021-25065-w; Thomas H, Jäger M, Mauel K, Brandau S, Lask S, Flohé SB. Interaction with mesenchymal stem cells provokes natural killer cells for enhanced IL-12/IL-18-induced interferongamma secretion. Mediators Inflamm. 2014; 2014: 143463. doi:10.1155/2014/143463; Kuswanto W, Burzyn D, Panduro M, Wang KK, Jang YC, Wagers AJ, et al. Poor repair of skeletal muscle in aging mice reflects a defect in local, interleukin-33-dependent accumulation of regulatory T cells. Immunity. 2016; 44(2): 355-367. doi:10.1016/j.immuni.2016.01.009; Moreau JM, Dhariwala MO, Gouirand V, Boda DP, Boothby IC, Lowe MM, et al. Regulatory T cells promote innate inflammation after skin barrier breach via TGF-β activation. Sci Immunol. 2021; 6(62): eabg2329. doi:10.1126/sciimmunol.abg2329; Ribot JC, Lopes N, Silva-Santos B. γδ T cells in tissue physiology and surveillance. Nat Rev Immunol. 2021; 21(4): 221-232. doi:10.1038/s41577-020-00452-4; Liu Z, Xu Y, Zhang X, Liang G, Chen L, Xie J, et al. Defects in dermal Vγ4 γδT cells result in delayed wound healing in diabetic mice. Am J Transl Res. 2016; 8(6): 2667-2680.; Chen L, Mehta ND, Zhao Y, DiPietro LA. Absence of CD4 or CD8 lymphocytes changes infiltration of inflammatory cells and profiles of cytokine expression in skin wounds, but does not impair healing. Exp Dermatol. 2014; 23(3): 189-194. doi:10.1111/exd.12346; Davis PA, Corless DJ, Aspinall R, Wastell C. Effect of CD4+ and CD8+ cell depletion on wound healing. Br J Surg. 2001; 88(2): 298-304. doi:10.1046/j.1365-2168.2001.01665.x; Dekoninck S, Blanpain C. Stem cell dynamics, migration and plasticity during wound healing. Nat Cell Biol. 2019; 21(1): 18- 24. doi:10.1038/s41556-018-0237-6; Planat-Benard V, Varin A, Casteilla L. MSCs and inflammatory cells crosstalk in regenerative medicine: Concerted actions for optimized resolution driven by energy metabolism. Front Immunol. 2021; 12: 626755. doi:10.3389/fimmu.2021.626755; Dhoke NR, Geesala R, Das A. Low oxidative stress-mediated proliferation JNK-FOXO3a-catalase signaling in transplanted adult stem cells promotes wound tissue regeneration. Antioxid Redox Signal. 2018; 28(11): 1047-1065. doi:10.1089/ars.2016.6974; Jere SW, Houreld NN, Abrahamse H. Role of the PI3K/Akt (mTOR and GSK3β) signalling pathway and photobiomodulation in diabetic wound healing. Cytokine Growth Factor Rev. 2019; 50: 52-59. doi:10.1016/j.cytogfr.2019.03.001; Nusse R, Clevers H. Wnt/β-catenin signaling, disease, and emerging therapeutic modalities. Cell. 2017; 169(6): 985-999. doi:10.1016/j.cell.2017.05.016; Zhang B, Han F, Wang Y, Sun Y, Zhang M, Yu X, et al. Cells-micropatterning biomaterials for immune activation and bone regeneration. Adv Sci (Weinh). 2022; 9(18): e2200670. doi:10.1002/advs.202200670; Guan Y, Gao N, Niu H, Dang Y, Guan J. Oxygen-release microspheres capable of releasing oxygen in response to environmental oxygen level to improve stem cell survival and tissue regeneration in ischemic hindlimbs. J Control Release. 2021; 331: 376-389. doi:10.1016/j.jconrel.2021.01.034; Toh WS, Zhang B, Lai RC, Lim SK. Immune regulatory targets of mesenchymal stromal cell exosomes/small extracellular vesicles in tissue regeneration. Cytotherapy. 2018; 20(12): 1419- 1426. doi:10.1016/j.jcyt.2018.09.008; Wei F, Li Z, Crawford R, Xiao Y, Zhou Y. Immunoregulatory role of exosomes derived from differentiating mesenchymal stromal cells on inflammation and osteogenesis. J Tissue Eng Regen Med. 2019; 13(11): 1978-1991. doi:10.1002/term.2947; El Andaloussi S, Mäger I, Breakefield XO, Wood MJA. Extracellular vesicles: Biology and emerging therapeutic opportunities. Nat Rev Drug Discov. 2013; 12(5): 347-357. doi:10.1038/nrd3978; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4600
-
3Academic Journal
المصدر: Эндодонтия Today, Vol 20, Iss 2, Pp 171-178 (2022)
مصطلحات موضوعية: эстетика лица, мягкие ткани лица, антропометрия лица, Dentistry, RK1-715
وصف الملف: electronic resource
-
4Academic Journal
المؤلفون: Rizaev , Jasur, Bekmuratov , Lukmon
المصدر: Medical science of Uzbekistan; No. 4 (2023): July-August; 15-20 ; Медицинская наука Узбекистана; № 4 (2023): Июль-Август; 15-20 ; O`zbekiston tibbiyot ilmi; No. 4 (2023): Iyul-Avgust; 15-20 ; 2181-3612
مصطلحات موضوعية: implant, hard and soft tissues, alveolar socket, anodontia, crown loss, vestibular shield, имплантат, твердые и мягкие ткани, альвеолярная лунка, анодонтия, потеря коронки, вестибулярный щиток, qattiq va yumshoq to‘qimalar, alveolyar qalqon, anodontiya, toj yo‘qolishi, vestibulyar qalqon
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://fdoctors.uz/index.php/journal/article/view/46/34; https://fdoctors.uz/index.php/journal/article/view/46
-
5Academic Journal
مصطلحات موضوعية: Кровенаполнение, мягкие ткани шеи, спинной мозг, продолговатый мозг, гравитация, положение тела в пространстве
Relation: https://doi.org/10.5281/zenodo.6320750; https://doi.org/10.5281/zenodo.6320752; oai:zenodo.org:6320752
-
6Academic Journal
المؤلفون: Григоровський, В. В., Магомедов, С., Грицай, М. П., Цокало, В. М., Кузуб, Т. А., Поліщук, Л. В., Григоровська, А. В.
المصدر: Pathologia; Vol. 18 No. 2 (2021): Pathologia; 218 - 228 ; Патология; Том 18 № 2 (2021): Патология; 218 - 228 ; Патологія; Том 18 № 2 (2021): Патологія; 218 - 228 ; 2310-1237 ; 2306-8027
مصطلحات موضوعية: osteomyelitis, tibia, soft tissues, trophic disturbances, травматический остеомиелит, большеберцовая кость, мягкие ткани, трофические расстройства, травматичний остеомієліт, великогомілкова кістка, м’які тканини, трофічні розлади
وصف الملف: application/pdf
-
7Dissertation/ Thesis
المؤلفون: Бадараев, Арсалан Доржиевич
المساهمون: Твердохлебов, Сергей Иванович
مصطلحات موضوعية: Полимеры — Применение в медицине — Применение в биологии, Восстановление (регенерация) ткани, электронный ресурс, диссертации, труды учёных ТПУ, полость рта, мягкие ткани, слизистая оболочка, регенерация, полимерные материалы, регенерирующие свойства, биорезорбируемые имплантаты, синтетические полиэфиры, магнетронное распыление, нетканые материалы, мембраны, скаффолды, антибактериальные свойства, биосовместимость, модифицированные поверхности, 05.11.17
وصف الملف: application/pdf
Relation: Бадараев, А. Д. Разработка нетканых полимерных материалов для регенерации дефектов слизистых оболочек полости рта : диссертация на соискание учёной степени кандидата технических наук : спец. 1.3.8 : спец. 2.2.12 / А. Д. Бадараев; Национальный исследовательский Томский политехнический университет; науч. рук. С. И. Твердохлебов. — Томск, 2024.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/78129
-
8Dissertation/ Thesis
المؤلفون: Бадараев, Арсалан Доржиевич
المساهمون: Твердохлебов, Сергей Иванович
مصطلحات موضوعية: Полимеры — Применение в медицине — Применение в биологии, Восстановление (регенерация) ткани, электронный ресурс, авторефераты диссертаций, труды учёных ТПУ, полость рта, мягкие ткани, слизистая оболочка, регенерация, полимерные материалы, регенерирующие свойства, биорезорбируемые имплантаты, синтетические полиэфиры, магнетронное распыление, нетканые материалы, мембраны, скаффолды, антибактериальные свойства, биосовместимость, модифицированные поверхности, 05.11.17
وصف الملف: application/pdf
Relation: Бадараев, А. Д. Разработка нетканых полимерных материалов для регенерации дефектов слизистых оболочек полости рта : автореферат диссертации на соискание учёной степени кандидата технических наук : спец. 1.3.8 : спец. 2.2.12 / А. Д. Бадараев; Национальный исследовательский Томский политехнический университет; науч. рук. С. И. Твердохлебов. — Томск, 2024.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/78119
-
9Academic Journal
المؤلفون: Ткаченко, Павло Іванович, Резвіна, Катерина Юріївна, Швець, Анатолій Іванович, Попело, Юлія Вікторівна, Ткаченко, Павел Иванович, Резвина, Екатерина Юрьевна, Швец, Анатолий Иванович, Попело, Юлия Викторовна, Tkachenko, P. I., Rezvina, K. Yu., Shvets, A. I., Popelo, Yu. V.
مصطلحات موضوعية: adults, children, benign formations, tumor-like formations, cysts of the maxillofacial area, soft tissues, дорослі, діти, доброякісні утворення, пухлиноподібні утворення, кісти щелепнолицевої ділянки, м'які тканини, взрослые, дети, доброкачественные образования, опухолевидные образования, кисты челюстнолицевой области, мягкие ткани, 616.31-006.006.03
Relation: Frequency and structure of benign soft tissue formations in the maxillofacial area / P. I. Tkachenko, K. Yu. Rezvina, A. I. Shvets [et al.] // Світ медицини та біології. – 2020. – № 2 (72). – С. 133–137.; http://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/13032
-
10Academic Journal
المؤلفون: Ткаченко, Павло Іванович, Доленко, Ольга Борисівна, Лохматова, Наталія Михайлівна, Білоконь, Сергій Олександрович, Попело, Юлія Вікторівна, Ткаченко, Павел Иванович, Доленко, Ольга Борисовна, Лохматова, Наталия Михайловна, Белоконь, Сергей Александрович, Попело, Юлия Викторовна, Tkachenko, P. I., Dolenko, O. B., Lokhmatova, N. M., Bilokon, S. O., Popelo, Yu. V.
مصطلحات موضوعية: піднебіння, м'які тканини, діти, ураностафілопластика, репаративна регенерація, небо, мягкие ткани, дети, ураностафилопластика, репаративная регенерация, palate, soft tissues, children, uranostaphyloplasty, reparative regeneration, 616.315-018-089.844.168.1-053.2
Relation: State of the palate tissues reparative regeneration in children after radical uranostaphyloplasty / P. I. Tkachenko, O. B. Dolenko, N. M. Lokhmatova [et al.] // Світ медицини та біології. – 2020. – № 2 (72). – С. 129–133.; http://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/13012
-
11Academic Journal
المصدر: CLINICAL DENTISTRY; No. 3 (2020); 5-15 ; Клінічна Стоматологія; № 3 (2020); 5-15 ; 2415-3036 ; 2311-9624 ; 10.11603/2311-9624.2020.3
مصطلحات موضوعية: gingiva, soft tissues, augmentation, peri-implant area, десна, мягкие ткани, аугментация, периимплантатная область, ясна, м’які тканини, аугментація, периімплантатна ділянка
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/kl-stomat/article/view/11564/10982; https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/kl-stomat/article/view/11564
-
12Academic Journal
المؤلفون: Chulovskaya I.G., Egiazaryan K.A., Lyadova M.V., Kosmynin V.S., Strelka T.V.
المصدر: Traumatology and Orthopedics of Russia; Vol 26, No 4 (2020); 130-137 ; Травматология и ортопедия России; Vol 26, No 4 (2020); 130-137 ; 2542-0933 ; 2311-2905 ; 10.21823/2311-2905-2020-26-4
مصطلحات موضوعية: foreign body, granuloma, metallic mercury, soft tissues of the hand, radiography, ultrasound, инородное тело, гранулема, металлическая ртуть, мягкие ткани кисти, рентгенография, ультразвуковое исследование
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://journal.rniito.org/jour/article/view/1513/1021; https://journal.rniito.org/jour/article/view/1513
-
13Conference
المؤلفون: Евтифеев, С. Л., Євтіфєєв, С. Л., Evtifeev, S. L., Костецкий, Д. А., Костецький, Д. О., Kosteckii, D. A.
مصطلحات موضوعية: ультразвук, электросварка, мягкие ткани, костные ткани, електрозварювання, м’які тканини, кісткові тканини, ultrasound, electric welding, soft tissues, bone tissue
Relation: Костецкий, Д. А. Использование сварки в медицине / Д. А. Костецкий; науч. рук. С. Л. Евтифеев // Сучасні інформ. технології та телекомунікаційні мережі : тези доп. 53-ої наук. конф. молодих дослідників ОНПУ-магістрантів. - Одеса, 2018. - С. 43-46.; http://dspace.opu.ua/jspui/handle/123456789/7566
-
14Academic Journal
المؤلفون: A. Zaitsev N., I. Semenov I., А. Зайцев Н., И. Семёнов И.
المصدر: Medical Visualization; № 3 (2019); 126-132 ; Медицинская визуализация; № 3 (2019); 126-132 ; 2408-9516 ; 1607-0763
مصطلحات موضوعية: soft tissue, sarcoma, ultrasound, dopplerography, functional vascular test, мягкие ткани, саркомы, ультразвуковая диагностика, допплерография, функциональный сосудистый тест
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/799/568; Шипуло М.Г. Практическое руководство по ультразвуковой диагностике. М.: Высшая школа,1995. 1240 с.; Зайцев В.Н., Мищенко А.В., Семёнов И.И. Серошкальная эхография и допплерография в диагностических алгоритмах при опухолях мягких тканей. Вестник Санкт-Петербургского университета. Сер. 11. 2013; 2: 161–169.; Riishede I., Ewertsen C., Carlsen J., Petersen M.M., Jensen F., Nielsen M.B. Elastography for Prediction of Malignancy in Soft Tissue Tumours – Preliminary Results. Ultraschall in Med. 2015; 36 (04): 369–374.; Фролова И.Г., Котова О.В., Тюкалов Ю.М., Величко С.А., Боберь Е.Е., Старцева Ж.А., Коновалов А.И., Богоутдинова А.В. Возможности ультразвукового метода в диагностике сарком мягких тканей (обзор литературы). Сибирский онкологический журнал. 2015; 3: 82–89.; Труфанов Г.Е., Пчелин И.Г., Вецмадян Е.А. Ультразвуковая диагностика опухолей мягких тканей. СПбю: ЭЛБИ-СПб., 2017. 112 с.; Morii T., Kishino T., Shimamori N., Motohashi M., Ohnishi H., Honya K., Aoyagi T., Tajima T., Ichimura S. Differential diagnosis between benign and malignant soft tissue tumors utilizing ultrasound parameters. J. Med. Ultrason. 2018; 45 (1): 113–119.; Brown J.M., Giaccia A.J. The unique physiology of solid tumors: opportunities (and problems) for cancer therapy. Cancer Res. 1998; 58 (7): 1408–1416.; Schmidseder R., Noma H. Microangiographic studies of the squamous cell carcinoma of the oral cavity. 4th Int. Congr. Dento-Maxillo Facial Radiol. Malmo, 1977; Program. and abstr.; 60.; Метелица В.И. Справочник по клинической фармакологии сердечно-сосудистых лекарственных средств. М.: Медпрактика, 1996. 784 с.; Справочник по хирургии; Под ред. С. Шварца, Дж. Шайерса, Ф. Спенсера при участии В. Хуссер. СПб.; М.; Харьков; Минск, 1999. 880 с.; Руксин В.В. Неотложная кардиология. СПб.: Невский Диалект–М.: Бином, 1998. 188 с.; Практическое руководство по ультразвуковой диагностике. Общая ультразвуковая диагностика. 2-е изд., перераб. и доп.; Под ред. В.В. Митькова. М.: Видар, 2011. 720 с.; Зайцев А.Н., Решетникова Т.С. Повышение эффективности диагностики патологии мягких тканей совместным использованием термографического и эхографического методов исследования. Оптический журнал. 2001; 68 (5): 71–72.; Клиническое руководство по ультразвуковой диагностике; Под ред. В.В. Митькова, М.В. Медведева. М.: Видар, 1996. Т. 2. 408 с.; https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/799
-
15Dissertation/ Thesis
المؤلفون: Марьин, Павел Владимирович
المساهمون: Твердохлебов, Сергей Иванович
مصطلحات موضوعية: Медицинское оборудование, Восстановление (регенерация) ткани, диссертации, скаффолды, регенерация, мягкие ткани, биодеградируемые скаффолды, нетканые полимерные материалы, биосовместимость, регенеративная медицина, полимолочная кислота, тонкие пленки, оксинитрид титана, физико-химические свойства, клеточная адгезия, пролиферации, дифференцируемость, бактерицидные свойства, биорезорбируемые материалы, реактивное магнетронное распыление, атмосфера, азот, медико-биологические свойства, гидрофилизация, покрытия, оксиды, адгезия, медицинские исследования, подкожная имплантация, модифицированные ПМК-скаффолды
وصف الملف: application/pdf
Relation: Марьин, П. В. Разработка биодеградируемых полимерных скаффолдов с модифицированной поверхностью для восстановления мягких тканей : диссертация на соискание ученой степени кандидата технических наук : спец. 1.3.8 : спец. 2.2.12 / П. В. Марьин; Национальный исследовательский Томский политехнический университет; науч. рук. С. И. Твердохлебов. — Томск, 2023.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/76945
-
16Dissertation/ Thesis
المؤلفون: Марьин, Павел Владимирович
المساهمون: Твердохлебов, Сергей Иванович
مصطلحات موضوعية: Медицинское оборудование, Восстановление (регенерация) ткани, авторефераты диссертаций, скаффолды, регенерация, мягкие ткани, биодеградируемые скаффолды, нетканые полимерные материалы, биосовместимость, регенеративная медицина, полимолочная кислота, тонкие пленки, оксинитрид титана, физико-химические свойства, клеточная адгезия, пролиферации, дифференцируемость, бактерицидные свойства, биорезорбируемые материалы, реактивное магнетронное распыление, атмосфера, азот, медико-биологические свойства, гидрофилизация, покрытия, оксиды, адгезия, медицинские исследования, подкожная имплантация, модифицированные ПМК-скаффолды
وصف الملف: application/pdf
Relation: Марьин, П. В. Разработка биодеградируемых полимерных скаффолдов с модифицированной поверхностью для восстановления мягких тканей : автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата технических наук : спец. 1.3.8 : спец. 2.2.12 / П. В. Марьин; Национальный исследовательский Томский политехнический университет; науч. рук. С. И. Твердохлебов. — Томск, 2023.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/76940
-
17Academic Journal
المؤلفون: Макаренко, Т.В., Парфенкова, А.Г.
مصطلحات موضوعية: тяжелые металлы, гидробионты, моллюски, биосфера, донные отложения, аккумуляция, мягкие ткани
وصف الملف: application/pdf
-
18Report
المؤلفون: Лоскутова, Анастасия Игоревна
المساهمون: Болотина, Ирина Олеговна
مصطلحات موضوعية: глазные заболевания, мягкие ткани, ультразвуковые приборы, ультразвуковая терапия, диаграмма направленности, eye disease, soft tissues, ultrasonic devices, ultrasound therapy, radiation pattern, 12.03.04, 612.115.08-026.572
وصف الملف: application/pdf
Relation: Лоскутова А. И. Разработка ультразвукового прибора для лечения глазных заболеваний : бакалаврская работа / А. И. Лоскутова; Национальный исследовательский Томский политехнический университет (ТПУ), Инженерная школа неразрушающего контроля и безопасности (ИШНКБ), Отделение электронной инженерии (ОЭИ); науч. рук. И. О. Болотина. — Томск, 2018.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/48892
-
19
-
20