المؤلفون: L. Novikova N., B. Novikov N., Л. Новикова Н., Б. Новиков Н.

المساهمون: The work was carried out at the VIR Collections of Plant Genetic Resources within the framework of the state assignment in accordance with the VIR thematic plan for project No. 0662-2019-0003 "Genetic resources of vegetable and melon crops of the VIR world collection: effective ways to expand diversity, reveal patterns hereditary variability, use of adaptive potential”., Работа выполнена на коллекции генетических ресурсов растений ВИР (VIR Collections of Plant Genetic Resources) в рамках государственного задания согласно тематическому плану ВИР по проекту № 0662-2019-0003 «Генетические ресурсы овощных и бахчевых культур мировой коллекции ВИР: эффективные пути расширения разнообразия, раскрытия закономерностей наследственной изменчивости, использования адаптивного потенциала».

المصدر: Vegetable crops of Russia; № 3 (2021); 49-54 ; Овощи России; № 3 (2021); 49-54 ; 2618-7132 ; 2072-9146

مصطلحات موضوعية: Allium ascalonicum L., specimen, trait, source, form, early maturity, yield, keeping quality, productivity, quality, сортообразец, признак, источник, форма, скороспелость, урожайность, лежкость, продуктивность, качество

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/1761/1268; Гринберг Е.Г., Сузан В.Г., Штайнерт Т.В. Лук шалот : науч.-практ. рекомендации. Новосибирск; Екатеринбург. 2016. 45 с.; Юрьева Н.А., Кокорева В.А. Многообразие луков и их использование. Москва: Изд-во МСХА, 1992. 158 с.; Пивоваров В.Ф., Ершов И.И., Агафонов А.Ф. Луковые культуры. Москва: ГНУ ВНИИССОК, 2001. 500 с.; Пивоваров В.Ф. Овощи России. Москва, 2006. 384 с.; Fattorusso E., Iorizzi M., Lanzotti V., Taglialatela-Scafati O. Chemical composition of shallot (Allium ascalonicum Hort.). J. Agr. Food Chem. 2002;50(20):5686-5690.; Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию в РФ. Москва: Гос. комис. РФ по испытанию и охране селекционных достижений, 2008.; Методика Государственного сортоиспытания сельскохозяйственных культур. Вып. 4. Картофель, овощные и бахчевые культуры. 1975. 256 с.; Ершов И.И., Агафонов А.Ф. Методические указания по селекции луковых культур. Москва: ВНИИССОК, 1997. 122 с.; Методика проведения испытаний на отличимость, однородность и стабильность. Лук репчатый (Allium cepa L.) и лук шалот (Allium ascalonicum L.). Госкомиссия РФ по испытанию и охране селекционных достижений. Москва, 2000. [Электронный ресурс]. URL: https://online.zakon.kz/Document/?doc_id=39016354#pos=6;-108 (дата обращения: 23.04.2021).; Пережогина В.В., Кривченко В.И., Соловьева А.Е., Шумилина В.В., Погромский Ю.В. Изучение и поддержка в живом виде мировой коллекции лука и чеснока: (методические указания). Санкт-Петербург, 2005. 107 с.; Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. Москва: Агропромиздат, 1985. 351 с.; Stavelikova H. Morfologica charakteristika klonu salotky (Allium cepa Var. Ascalonicum backer). Acta Univ. Agr. Silvicult. Mendelianae Brunensis. 2002;50(1):201-211.; Tendaj M. Shallot production and research in Poland. Vegetable crops research bull. Research inst. of vegetable crops. Skierniewice, 2005;(62):55-60.; Середин Т.М., Шумилина В.В., Агафонов А.Ф., Жаркова С.В., Сузан В.Г., Мотов В.М., Дубова М.В., Кривенков Л.В., Баранова Е.В., Шевченко Т.Е. Выращивание лука шалота в условиях Нечерноземья и на юге Западной Сибири. Омск, 2019. 43 с.; Середин Т.М., Марчева М.М., Шумилина В.В., Дыйканова М.Е., Солдатенко А.В., Басова Е.С. Сравнительная характеристика основных хозяйственно ценных признаков лука шалота (Allium ascalonicum L.) в Нечерноземной зоне РФ. Известия ФНЦО. 2020;(2):116-119. https://doi.org/10.18619/2658-4832-2020-2-116-119; Шиляева Е.А. Лук шалот на Северо-Востоке России. Овощи России. 2018;(3):40-42. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2018-3-40-42; Мотов В.М., Денисова А.В., Мотова М.В., Чеглакова О.А. Новые формы лука шалота в условия Северо-Востока. Картофель и овощи. 2019;(5):36-38.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/1761

الاتاحة: https://www.vegetables.su/jour/article/view/1761
https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-3-49-54

المؤلفون: E. Yanchenko V., A. Bebris R., Е. Янченко В., А. Бебрис Р.

المصدر: Vegetable crops of Russia; № 4 (2021); 83-93 ; Овощи России; № 4 (2021); 83-93 ; 2618-7132 ; 2072-9146

مصطلحات موضوعية: onion, hybrids, keeping quality, preservation, periods of realization, fertilizers, growth regulators, лук репчатый, гибриды, лежкость, сохраняемость, сроки реализации, удобрения, регуляторы роста

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/1799/1294; Разин А.Ф., Шатилов М.В., Мещерякова Р.А., Сурихина Т.Н., Разин О.А., Телегина Г.А. Овощи борщевой группы в России. Картофель и овощи. 2019;(10):10–13.; Материалы круглого стола Минсельхоза РФ на тему «Законодательные аспекты развития и меры государственной поддержки садоводства и овощеводства», 24 октября 2018 г. [Электронный ресурс] URL: https:// agrotip.ru/wp-content/uploads/2018/11/Presentatsia_ Petra_Chekmareva.pdf. Дата обращения: 09.02.2021.; Российский рынок репчатого лука - тенденции и прогнозы [Электронный ресурс] https://ab-centre.ru/news/rossiyskiy-rynok-repchatogo-luka---tendenciii-prognozy. Дата обращения: 25.06.2021.; Борисов В.А., Бебрис А.Р., Янченко Е.В. Влияние удобрений и регуляторов роста на болезнеустойчивость лука репчатого при хранении. Селекция, семеноводство и сортовая агротехника овощных, бахчевых и цветочных культур: Сборник научных трудов по материалам Международной научно-практической конференции, посвященной VII Квасниковским чтениям, Московская обл., Раменский район, д.Верея, 01 декабря 2016 года. Московская обл., Раменский район, д.Верея: ГУП РО "Рязанская областная типография", 2016. С.45-48.; Селиванова М.В. Влияние минеральных удобрений на продуктивность и качество продукции лука репчатого в процессе хранения. Научные труды СКФНЦСВВ. 2019;(26):77-84.; Тохтиева Л.Х., Тохтиева Э.А. Влияние послеуборочной поверхностной обработки на сохранность репчатого лука. Агропромышленные технологии Центральной России. 2020;4(18):18-22. DOI 10.24888/2541-7835-2020-18-18-22.; Хубаева Е.Р., Тохтиева Л.Х. Сохраняемость лука репчатого при разных способах хранения. Студенческая наука – агропромышленному комплексу: науч. тр. студентов Горского государственного аграрного университета. Владикавказ. 2018. С.404-405.; Алексеева К.Л., Борисов В.А., Бебрис А.Р. Циркон повышает устойчивость к пероноспорозу и урожайность лука. Защита и карантин растений. 2018;(9):20-22.; Амиров Б.М., Амирова Ж.С., Манабаева У.А., Жасыбаева К.Р. Селекция репчатого лука на сохраняемость. Научно-технический прогресс в сельскохозяйственном производстве. Аграрная наука - сельскохозяйственному производству Сибири, Казахстана, Монголии, Беларуси и Болгарии: материалы Международной научно-технической конференции. В 2 томах, Минск, 19–21 октября 2016 года. Минск: Республиканское унитарное предприятие «Научно-практический центр Национальной академии наук Беларуси по механизации сельского хозяйства», 2016. С.209-212.; Водянова О.С. Фитопатологический анализ динамики состава грибных патогенов при хранении сортов и селекционных образцов репчатого лука. Приоритетные направления в селекции и семеноводстве с.-х. растений в ХХI веке: Междунар. науч.- практ. конф., Москва, 15-18 дек. 2003 г. М., 2003. С.256-259.; Amirov B.M., Amirova Z.S., Manabaeva U.A., Zhasybaeva K.R. Evaluation of onion accessions in storage. Аграрная наука - сельскохозяйственному производству Сибири, Казахстана, Монголии, Беларуси и Болгарии: сб. науч. докл. XVIII Междунар. науч.-практ. конф., г. Новосибирск, 16-17 сентября 2015 г. Новосибирск, 2015. Ч. I. С.3-5.; Schroeder B.K., Waters T.D., du Toit L. J. Evaluation of Onion Cultivars for Resistance to Enterobacter cloacae in Storage. Plant Disease. 2010;94(2):236-243.; Amirov B.M., Amirova Z.S., Manabaeva U.A., Zhasybaeva K.R. Assessment of different genotypes of table beet for productivity and storability. Vegetable crops of Russia. 2017;(4):23-27. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2017-4-23-27; Авазов, С. Э. Основные болезни (гнили) при хранении лука и интенсивность их развития. Наука и общество в современных условиях. 2016;1(4):52-56.; Sitarama Raju K., Bener Ra R. Soft rot of onion in storage. Madras Agr. J. 1980;67(3):194-195.; Maude R.B. The correlation between seedborne infection by Botrytis allii and neck rot development in store. Seed Sci. and Technol. 1983;11(3):839-834.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/1799

الاتاحة: https://www.vegetables.su/jour/article/view/1799
https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-4-83-93

المؤلفون: I. Shamshin N., D. Telezhinskiy D., A. Shlyavas V., И. Шамшин Н., Д. Тележинский Д., А. Шлявас В.

المساهمون: The research was performed within the framework of Direction 150 of the Program of the Basic Research Institute of State Academies of Sciences for 2013-2020 on the topic «Development and improvement of breeding methods, creation of source material and adaptive varieties of cereals, legumes, fodder, fruit and berry, ornamental crops and potatoes» (No. 0773-2019-0022), Project No. 0662-2019-0004 «Collections of Vegetatively Propagated Crops (Potato, Fruit, Berry and Ornamental Crops, Grapes) and Their Wild Relatives at VIR: Studying and Sustainable Utilization»., Работа выполнена в рамках направления 150 Программы ФНИ государственных академий наук на 2013-2020 гг. по теме «Разработка и совершенствование методов селекционной работы, создание исходного материала и адаптивных сортов зерновых, зернобобовых, кормовых, плодово-ягодных, декоративных культур и картофеля» (№0773-2019-0022) и проекта № 0662-2019-0004 «Коллекции вегетативно размножаемых культур (картофель, плодовые, ягодные, декоративные, виноград) и их диких родичей ВИР – изучение и рациональное использование».

المصدر: Agricultural Science Euro-North-East; Том 21, № 6 (2020); 706-712 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 21, № 6 (2020); 706-712 ; 2500-1396 ; 2072-9081

مصطلحات موضوعية: Md-ACO and Md-ACS ethylene synthesis genes, storability of fruits, horticulture of the Middle Urals, гены синтеза этилена Md-ACO и Md-ACS, лежкость плодов, садоводство Среднего Урала

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/643/434; Котов Л. А. Селекционная работа по яблоне на Среднем Урале. Современное садоводство. 2019;(2):13-21. DOI: https://doi.org/10.24411/2312-6701-2019-10203; Савельев Н. И., Шамшин И. Н., Кудрявцев А. М. Генетический полиморфизм исходных форм яблони по аллелям генов длительной лежкости и качества плодов. Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. 2014;(3):17-20. Режим работы: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=21509205; Costa F., Cappellin L., Farneti B., Tadiello A., Romano A., Soukoulis C., Sansavini S., Velasco R., Biasioli F. Advances in QTL mapping for ethylene production in apple (Malus×domestica Borkh.). Postharvest Biology and Technology. 2014;87:126-132. DOI: https://doi.org/10.1016/j.postharvbio.2013.08.013; Nybom H., Ahmadi-Afzadi M., Sehic J., Hertog M. DNA marker-assisted evaluation of fruit firmness at harvest and post-harvest fruit softening in a diverse apple germplasm. Tree Genetics & Genomes. 2013;9:279-290. DOI: https://doi.org/10.1007/s11295-012-0554-z; Slađana M, Milan L. Determination of ETR1 genotypes in promising apple selections developed at Fruit Research Institute – Čačak. Genetika. 2013;45(1):189-196. DOI: https://doi.org/10.2298/GENSR1301189M; Suprun I. I., Tokmakov S. V. Allelic diversity of ethylene biosynthesis-related Md-ACS1 and Md-ACO1 genes in the Russian apple germplasm. Russian Journal of Genetics: Applied Research. 2013;3:451-454. DOI: https://doi.org/10.1134/S2079059713060105; Шамшин И. Н., Шлявас А. В., Трифонова А. А., Борис К. В., Кудрявцев А. М. Полиморфизм генов биосинтеза этилена и экспансина уместных и стародавних сортов яблони (Malus domestica Borkh.) из коллекции генетических ресурсов растений ВИР. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018;22(6):660-666. DOI: https://doi.org/10.18699/VJ18.408; Урбанович О. Ю., Козловская З. А., Заблоцкая Е. А., Картель Н. А. Аллельный состав генов Md-ACO1, Md-ACS1 и Md-Exp7 сортов яблони (Malus domestica Borkh.) с различным сроком хранения плодов. Весці Нацыянальнай акадэміі навук Беларусі. Серыя біялагічных навук. 2013;(3):47-55. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=25378568; Dougherty L., Zhu Y., Xu K. Assessing the allelotypic effect of two aminocyclopropane carboxylic acid synthase-encoding genes MdACS1 and MdACS3a on fruit ethylene production and softening in Malus. Hortic Res. 2016;3:16024. DOI: https://doi.org/10.1038/hortres.2016.24; Chen H., Shao H., Fan S., Ma J., Zhang D., Han M. Identification and phylogenetic analysis of the POLYGALAC-TURONASE gene family in apple. Horticultural Plant Journal. 2016;2(5):241-252. DOI: https://doi.org/10.1016/j.hpj.2017.01.004; Chang H. Y., Tong C. Identification of Candidate Genes Involved in Fruit Ripening and Crispness Retention Through Transcriptome Analyses of a ‘Honeycrisp’ Population. Plants. 2020;9(10):1335. DOI: https://doi.org/10.3390/plants9101335; Sunako T., Sakuraba W., Senda M., Akada S., Ishikawa R., Niizeki M., Harada T. An allele of the ripening-specific 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase gene (ACS1) in apple fruit with a long storage life. Plant Physiology. 2000;119(4):1297-1304. DOI: https://doi.org/10.1104/pp.119.4.1297; Bleecker A. B., Kende H. Ethylene: a gaseous signal molecule in plants. Annual review of cell and developmental biology. 2000;16(1):1-18. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.cellbio.16.1.1; Harada T., Sunako T., Wakasa Y., Soejima J., Satoh T., Niizeki M. An allele of the 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase gene (Md-ACS1) accounts for the low level of ethylene production in climacteric fruits of some apple cultivars. Theoretical and Applied Genetics. 2000;101(5-6):742-746. DOI: https://doi.org/10.1007/s001220051539; Costa F., Stella S., Van de Weg W. E., Guerra W., Cecchinel M., Dallavia J., Sansavini S. Role of the genes Md-ACO1 and Md-ACS1 in ethylene production and shelf life of apple (Malus domestica Borkh.). Euphytica. 2005;141(1-2):181-190. DOI: https://doi.org/10.1007/s10681-005-6805-4; Defilippi B. G., Kader A. A., Dandekar A. M. Apple aroma: alcohol acyltransferase, a rate limiting step for ester biosynthesis, is regulated by ethylene. Plant Science. 2005;168(5):1199-1210. URL: https://www.ucanr.edu/datastoreFiles/234-449.pdf; Costa F., Peace C. P., Stella S., Serra S., Musacchi S., Bazzani M., Van de Weg W.E. QTL dynamics for fruit firmness and softening around an ethylene-dependent polygalacturonase gene in apple (Malus×domestica Borkh.). Journal of Experimental Botany. 2010;61(11):3029-3039. DOI: https://doi.org/10.1093/jxb/erq130; Nybom H., Sehic J., Garkava-Gustavsson L. Modern apple breeding is associated with a significant change in the allelic ratio of the ethylene production gene Md-ACS1. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology. 2008;83(5):673-677. DOI: https://doi.org/10.1080/14620316.2008.11512442; Zhu Y., Barritt B. H. Md-ACS1 and Md-ACO1 genotyping of apple (Malus×domestica Borkh.) breeding parents and suitability for marker-assisted selection. Tree genetics & genomes. 2008;4(3):555-562. DOI: https://doi.org/10.1007/s11295-007-0131-z; Kwon Y. S., Kwon S. I., Kim S. A., Kweon H. J., Yoo J., Ryu S., Kim J. H. Estimation of storability for Korean apples (Malus domestica) using Md-ACS1 and Md-ACO1 DNA marker. Korean J. Food Preserv. 2017;24(7):891-897. DOI: https://doi.org/10.11002/kjfp.2017.24.7.891; Oraguzie N. C., Iwanami H., Soejima J., Harada T., Hall A. Inheritance of the Md-ACS1 gene and its relationship to fruit softening in apple (Malus×domestica Borkh.). Theoretical and Applied Genetics. 2004;108(8):1526-1533. DOI: https://doi.org/10.1007/s00122-003-1574-8; Oraguzie N. C., Volz R. K., Whitworth C. J., Bassett H. C., Hall A. J., Gardiner S. E. Influence of Md-ACS1 allelotype and harvest season within an apple germplasm collection on fruit softening during cold air storage. Postharvest biology and technology. 2007;44(3):212-219. DOI: https://doi.org/10.1016/j.postharvbio.2006.12.013; https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/643

الاتاحة: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/643
https://doi.org/10.30766/2072-9081.2020.21.6.706-712

المؤلفون: A. B. Shcherban, А. Б. Щербань

المساهمون: This work was supported by the project of the Ministry of Education and Science of the Russian Federation No. 0324-2019-0039.

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 23, № 5 (2019); 534-541 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 23, № 5 (2019); 534-541 ; 2500-3259

مصطلحات موضوعية: лежкость, selection, DNA marker, pathogen, resistance, ripening time, shelf life, селекция, ДНК-маркер, патоген, устойчивость, срок созревания

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2202/1249; Acciarri N., Rotino G.L., Tamietti G., Valentino D., Voltattorni S., Sabatini E. Molecular markers for Ve1 and Ve2 Verticillium resistance genes from Italian tomato germplasm. Plant Breed. 2007;126:617-621. DOI 10.1111/j.1439-0523.2007.01398.x.; Aflitos S., Schijlen E,, de Jong H., de Ridder D., Smit S., Finkers R., Wang J., Zhang G., Li N., Mao L., Bakker F., Dirks R., Breit T., Gravendeel B., Huits H., Struss D., Swanson-Wagner R., van Leeuwen H., van Ham R.C., Fito L., Guignier L., Sevilla M., Ellul P., Ganko E., Kapur A., Reclus E., de Geus B., van de Geest H., Te Lintel Hekkert B., van Haarst J., Smits L., Koops A., Sanchez-Perez G., van Heusden A.W., Visser R., Quan Z., Min J., Liao L., Wang X., Wang G., Yue Z., Yang X., Xu N., Schranz E., Smets E., Vos R., Rauwerda J., Ursem R., Schuit C., Kerns M., van den Berg J., Vriezen W., Janssen A., Datema E., Jahrman T., Moquet F., Bonnet J., Peters S. Exploring genetic variation in the tomato (Solanum section Lycopersicon) clade by whole-genome sequencing. Plant J. 2014;80:136148. DOI 10.1111/tpj.12616.; Arens P., Mansilla C., Deinum D., Cavellini L., Moretti A., Rolland S., van der Schoot H., Calvache D., Ponz F., Collonnier C., Mathis R., Smilde D., Caranta C., Vosman B. Development and evaluation of robust molecular markers linked to disease resistance in tomato for distinctness, uniformity and stability testing. Theor. Appl. Genet. 2010;120:655-664. DOI 10.1007/s00122009-1183-2.; Barillas A.C., Mejia L., Sanchez-Perez A., Maxwell D.P. CAPS and SCAR markers for detection of I-3 gene introgression for resistance to Fusarium oxysporium f. sp. lycopersici race 3. Rpt. Tomato Genet. Coop. 2008;58:11-17.; Black L.L., Wang T.C., Hanson P.M., Chen J.T. Late blight resistance in four wild tomato accessions: effectiveness in diverse locations and inheritance of resistance. Phytopathology. 1996;86:S24.; Bohn G.W., Scott D.H. A second gene for uniform unripe fruit color in the tomato. J. Hered. 1945;36(6):169-172.; Casals J., Pascual L., Cañizares J., Cebolla-Cornejo J., Casañas F., Nuez F. Genetic basis of long shelf life and variability into Penjar tomato. Genet. Resour. Crop Evol. 2012;59:219-229. DOI 10.1007/s10722-011-9677-6.; Chunwongse J., Chunwongse C., Black L., Hanson P. Molecular mapping of the Ph-3 gene for late blight resistance in tomato. J. Horticult. Sci. Biotechnol. 2002;77:281-286. DOI 10.1080/14620316.2002.11511493.; Coaker G.L., Francis D.M. Mapping, genetic effects, and epistatic interaction of two bacterial canker resistance QTLs from Lycopersicon hirsutum. Theor. Appl. Genet. 2004;108:1047-1055. DOI 10.1007/s00122-003-1531-6.; Cong B., Barrero L.S., Tanksley S.D. Regulatory change in YABBYlike transcription factor led to evolution of extreme fruit size during tomato domestication. Nat. Genet. 2008;40:800-804. DOI 10.1038/ng.144.; Dax E., Livneh O., Aliskevicius E., Edelbaum O., Kedar N., Gavish N., Milo J., Geffen F., Blumenthal A., Rabinowich H.D., Sela I. A SCAR marker linked to the ToMV resistance gene, Tm2(2), in tomato. Euphytica. 1998;101:73-77.; Foolad M.R., Panthee D.R. Marker-assisted selection in tomato breeding. Crit. Rev. Plant Sci. 2012;31(2):93-123. DOI 10.1080/07352689.2011.616057.; Ford N.A., Erdman J.W. Are lycopene metabolites metabolically active? Acta Biochim. Pol. 2012;59:1-4.; Fradin E.F., Zhang Z., Juarez Ayala J.C., Castroverde C.D., Nazar R.N., Robb J., Liu C.M., Thomma B.P. Genetic dissection of verticillium wilt resistance mediated by tomato Ve1. Plant Physiol. 2009;150: 320-332. DOI 10.1104/pp.109.136762.; Garg N., Cheema D.S., Pathak D. Heterosis breeding in tomato involving rin, nor and alc alleles: A review of literature. Adv. Hort. Sci. 2008;22(1):54-62.; Garland S., Sharman M., Persley D., McGrath D. The development of an improved PCR-based marker system for Sw-5, an important TSWV resistance gene of tomato. Aust. J. Agric. Res. 2005;56: 285-289.; Gorguet B., Schipper D., van Lammeren A., Visser R.G.F., van Heusden A.W. ps-2, the gene responsible for functional sterility in tomato, due to non-dehiscent anthers, is the result of a mutation in a novel polygalacturonase gene. Theor. Appl. Genet. 2009;118:1199-1209. DOI 10.1007/s00122-009-0974-9.; Grushetskaya Z.E., Lemesh V.A., Poliksenova V.D., Khotyleva L.V. Mapping of the Cf-6 tomato leaf mould resistance locus using SSR markers. Russ. J. Genet. 2007;43:1266-1270. DOI 10.1134/S1022795407110099.; Howe H.F., Smallwood J. Ecology of seed dispersal. Annu. Rev. Ecol. Syst. 1982;13:201-228.; Huang Z., van der Knaap E. Tomato fruit weight 11.3 maps close to fasciated on the bottom of chromosome 11. Theor. Appl. Genet. 2011; 123(3):465-474. DOI 10.1007/s00122-011-1599-3.; Ignatova S.I. The role of tomato hereditary potential for resistance in the system of integrated protection in protected ground. Gavrish. 2001;6:18-20. (in Russian); Kabelka E., Franchino B., Francis D.M. Two loci from Lycopersicon hirsutum LA407 confer resistance to strains of Clavibacter michiganensis subsp michiganensis. Phytopathology. 2002;92:504-510. DOI 10.1094/PHYTO.2002.92.5.504.; Kawchuk L.M., Lynch D.R., Hachey J., Bains P.S., Kulcsar F. Identification of a codominant amplified polymorphic DNA marker linked to the verticillium wilt resistance gene in tomato. Theor. Appl. Genet. 1994;89:661-664.; Kuzѐmensky A.V. Studies of Mutant Forms of Tomato with Regard to Breeding. Kharkov, 2004. (in Russian); Langella R., Ercolano M.R., Monti L.M., Frusciante L., Barone A. Molecular marker assisted transfer of resistance to TSWV in tomato elite lines. J. Horticult. Sci. Biotechnol. 2004;79:806-810. DOI 10.1080/14620316.2004.11511846.; Li X., Wang Y., Chen S., Tian H., Fu D., Zhu B., Luo Y., Zhu H. Lycopene is enriched in tomato fruit by CRISPR/Cas9-mediated multiplex genome editing. Front. Plant Sci. 2018;9:1-12. DOI 10.3389/fpls.2018.00559.; Lim G., Wang G.P., Hemming M., McGrath D.J., Jones D.A. High resolution genetic and physical mapping of the I-3 region of tomato chromosome 7 reveals almost continuous microsynteny with grape chromosome 12 but interspersed microsynteny with duplications on Arabidopsis chromosomes 1, 2 and 3. Theor. Appl. Genet. 2008; 118:57-75. DOI 10.1007/s00122-008-0876-2.; Liu L., Shao S.Z., Zhang Z.M. Regulation of carotenoid metabolism in tomato. Mol. Plant. 2015;8:28-39. DOI 10.1016/j.molp.2014.11.006.; Merk H.L., Foolad M.R. Parent-offspring correlation estimate of heritability for late blight resistance conferred by an accession of the tomato wild species Solanum pimpinellifolium. Plant Breed. 2012; 131:203-210.; Meshi T., Motoyoshi F., Adachi A., Watanabe Y., Takamatsu N., Okada Y. Two concomitant base substitutions in the putative replicase genes of tobacco mosaic virus confer the ability to overcome the effects of a tomato resistance gene, Tin-1. EMBO J. 1988;7:1575-1581.; Meshi T., Motoyoshi F., Maeda T., Yoshiwoka S., Watanabe H., Okada Y. Mutations in the tobacco mosaic virus 30-kDa protein gene overcome Tm-2 resistance in tomato. Plant Cell. 1989;1:515-522.; Moore S., Vrebalov J., Payton P., Giovannoni J. Use of genomics tools to isolate key ripening genes and analyse fruit maturation in tomato. J. Exp. Bot. 2002;53:2023-2030. DOI 10.1093/jxb/erf057.; Moreau P., Thoquet P., Olivier J., Laterrot H., Grimsley N. Genetic mapping of Ph-2, a single locus controlling partial resistance to Phytophthora infestans in tomato. Mol. Plant-Microbe Interact. 1998; 11:259-269. DOI 10.1094/MPMI.1998.11.4.259.; Muños S., Ranc N., Botton E., Bérard A., Rolland S., Duffé P., Carretero Y., Le Paslier M.-C., Delalande C., Bouzayen M., Brunel D., Causse M. Increase in tomato locule number is controlled by two single nucleotide polymorphisms located near WUSCHEL. Plant Physiol. 2011;156:2244-2254. DOI 10.1104/pp.111.173997.; Ohmori T., Murata M., Motoyoshi F. Molecular characterization of RAPD and SCAR markers linked to the Tm-1 locus in tomato. Theor. Appl. Genet. 1996;92:151-156. DOI 10.1007/BF00223369.; Ohyama A., Asamizu E., Negoro S., Miyatake K., Yamaguchi H., Tabata S., Fukuoka H. Characterization of tomato SSR markers developed using BAC-end and cDNA sequences from genome databases. Mol. Breed. 2009;23(4):685-691. DOI 10.1007/s11032-009-9265-z.; Ori N., Eshed Y., Paran I., Presting G., Aviv D., Tanksley S., Zamir D., Fluhr R. The I2C family from the wilt disease resistance locus I2 belongs to the nucleotide binding, leucine-rich repeat superfamily of plant resistance genes. Plant Cell. 1997;9:521532. DOI 10.1105/tpc.9.4.521.; Panthee D.R., Piotrowski A., Ibrahem R. Mapping quantitative trait loci (QTL) for resistance to late blight in tomato. Int. J. Mol. Sci. 2017;18:1589. DOI 10.3390/ijms18071589.; Pnueli L., Carmel-Goren L., Hareven D., Gutfinger T., Alvarez J., Ganal M., Zamir D., Lifschitz E. The SELF-PRUNING gene of tomato regulates vegetative to reproductive switching of sympodial meristems and is the ortholog of CEN and TFL1. Development. 1998; 125:1979-1989.; Powell A.L.T., Nguyen C.V., Hill T., Cheng K.L., Figueroa-Balderas R., Aktas H., Ashrafi H., Pons C., Fernández-Muñoz R., Vicente A., Lopez-Baltazar J., Barry C.S., Liu Y., Chetelat R., Granell A., Van Deynze A., Giovannoni J., Bennett A.B. Uniform ripening encodes a Golden 2-like transcription factor regulating tomato fruit chloroplast development. Science. 2012;336:17111715. DOI 10.1126/science.1222218.; Pukhalskij V.A., Odintsova T.I., Izvekova L.I., Andreeva E.N., Korostyleva T.I., Istomina E.A., Slavokhotova A.A., Shiyan A.N., Kozlovskaya G.V., Obolenkova L.A., Badaeva E.D., Bilinskaya E.N. The problems of natural and induced immunity in plants. To the development of ideas N.I. Vavilova. Informatsionnyy Vestnik VOGiS = The Herald of Vavilov Society for Geneticists and Breeders. 2007;11(3/4):631-649. (in Russian); Rao A.V., Rao L.G. Carotenoids and human health. Pharmacol. Res. 2007;55:207-216. DOI 10.1016/j.phrs.2007.01.012.; Rick C.M. Hybridization between Lycopersicon esculentum and Solanum pennellii: phylogenetic and cytogenetic significance. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1960;46:78-82.; Robbins M.D., Masud M.A.T., Panthee D.R., Gardner R.G., Francis D., Stevens M.R. Marker-assisted selection for coupling phase resistance to tomato spotted wilt virus and Phytophthora infestans (late blight) in tomato. HortScience. 2010;45:14241428.; Saliba-Colombani V., Causse M., Gervais L., Philouze J. Efficiency of RFLP, RAPD, and AFLP markers for the construction of an intraspecific map of the tomato genome. Genome. 2000;43:2940. DOI 10.1139/g99-096.; Scott J.W. Breeding for resistance to viral pathogens. Eds. M.K. Razdan, A.K. Mattoo. Genetic Improvement of Solanaceous Crops. Vol. 2. Tomato. Enfield: Science Publishers, 2007;457485.; Scott J.W., Agrama H.A., Jones J.P. RFLP-based analysis of recombination among resistance genes to Fusarium wilt races 1, 2, and 3 in tomato. J. Am. Soc. Hort. Sci. 2004;129:394-400.; Shirasawa K., Isobe S., Hirakawa H., Nakamura Y., Sato S., Tabata S. SNP discovery and linkage map construction in cultivated tomato. DNA Res. 2010;17(6):381-391. DOI 10.1093/dnares/dsq024.; Smiech M., Rusinowski Z., Malepszy S., Niemirowicz-Szczytt K. New RAPD markers of tomato spotted wilt virus (TSWV) resistance in Lycopersicon esculentum Mill. Acta Physiol. Plantarum. 2000;22: 299-303.; Sobir O.T., Murata M., Motoyoshi F. Molecular characterization of the SCAR markers tightly linked to the Tm-2 locus of the genus Lycopersicon. Theor. Appl. Genet. 2000;101:64-69.; Soyk S., Müller N.A., Park S.J., Schmalenbach I., Jiang K., Hayama R., Zhang L., Van Eck J., Jiménez-Gómez J.M., Lippman Z.B. Variation in the flowering gene SELF PRUNING 5G promotes day-neutrality and early yield in tomato. Nat. Genet. 2017;49:162-168. DOI 10.1038/ng.3733.; Staniaszek M., Szajko K., Kozik E.U., Nowakowska M., Marczewski W. The novel ps and ps-2 specific markers for selection of functional male sterile tomato lines in breeding programs and hybrids seed production. J. Agr. Sci. 2012;4(10):61-67. DOI 10.5539/jas.v4n10p61.; Stevens M.R., Scott S.J., Gergerich R.C. Inheritance of gene for resistance to tomato spotted wilt virus (TSWV) from Lycopersicon peruvianum Mill. Euphytica. 1992;59:9-17. DOI 10.1007/BF00025356.; Tanksley S.D., Ganal M.W., Prince J.P., de Vicente M.C., Bonierbale M.W., Broun P., Fulton T.M., Giovannoni J.J., Grandillo S., Martin G.B., Messeguer R., Miller J.C., Miller L., Paterson A.H., Pineda O., Riider M.S., Wing R.A., Wu W., Young N.D. Highdensity molecular linkage maps of the tomato and potato genomes. Genetics. 1992;132:1141-1160.; Tanyolac B., Akkale C. Screening of resistance genes to fusarium root rot and fusarium wilt diseases in F3 family lines of tomato (Lycopersicon esculentum) using RAPD and CAPS markers. Afr. J. Biotech. 2010;9:2727-2730.; Tieman D., Zhu G., Resende M.F.R., Lin T., Nguyen C., Bies D., Rambla J.L., Beltran K.S.O., Taylor M., Zhang B., Ikeda H., Liu Z., Fisher J., Zemach I., Monforte A., Zamir D., Granell A., Kirst M., Huang S., Klee H. A chemical genetic roadmap to improved tomato flavor. Science. 2017;355(6323):391-394. DOI 10.1126/science.aal1556.; Truong H.T.H., Choi H.-S., Cho M.C., Lee H.E., Kim J.H. Use of Cf-9 gene-based markers inmarker-assisted selection to screen tomato cultivars with resistance to Cladosporium fulvum. Hort. Environ. Biotechnol. 2011;52:204-210. DOI 10.1007/s13580011-0164-y.; Vakalounakis D.J., Laterrot H., Moretti A., Ligoxigakis E.K., Smardas K. Linkage between Frl (Fusarium oxysporum f. sp. radicis-lycopersici resistance) and Tm-2 (tobacco mosaic virus resistance-2) loci in tomato (Lycopersicon esculentum). Ann. Appl. Biol. 1997; 130:319-323. DOI 10.1111/j.1744-7348.1997.tb06835.x.; Van Schalkwyk A., Wenzl P., Smit S., Lopez-Cobollo R., Kilian A., Bishop G., Hefer C., Berger D.K. Bin mapping of tomato diversity array (DArT) markers to genomic regions of Solanum lycopersicum × Solanum pennellii introgression lines. Theor. Appl. Genet. 2012;124:947-956. DOI 10.1007/s00122-011-1759-5.; Vrebalov J., Ruezinsky D., Padmanabhan V., White R., Medrano D., Drake R., Schuch W., Giovannoni J. MADS-box gene necessary for fruit ripening at the tomato ripening-inhibitor (Rin) locus. Science. 2002;296:343-346. DOI 10.1126/science.1068181.; Wang A.X., Meng F.J., Xu X.Y. Development of molecular markers linked to Cladosporium fulvum resistant gene Cf-6 in tomato by RAPD and SSR methods. HortScience. 2007;42:11-15.; Wang H., Hutton S.F., Robbins M.D., Sim S.-C., Scott J.W., Yang W., Jones J.B., Francis D.M. Molecular mapping of hypersensitive resistance to race T3 of tomato bacterial spot from Hawaii 7981 maps to chromosome 11. Phytopathology. 2011;101:1217-1223. DOI 10.1094/PHYTO-12-10-0345.; Wang J.F., Jones J.B., Scott J.W., Stall R.E. Several genes in Lycopersicon esculentum control hypersensitivity to Xanthomonas campestris pv. vesicatoria. Phytopathology. 1994;84:702-706. DOI 10.1094/Phyto-84-702.; Yang W., Francis D.M. Marker-assisted selection for combining resistance to bacterial spot and bacterial speck in tomato. J. Am. Soc. Hort. Sci. 2005;130:716-721. DOI 10.21273/JASHS.130.5.716.; Yu Q.-H., Wang B., Li N., Tang Y., Yang S., Yang T., Xu J., Guo C., Yan P., Wang Q., Asmutola P. CRISPR/Cas9-induced targeted mutagenesis and gene replacement to generate long shelf life tomato lines. Sci. Rep. 2017;7:11874. DOI 10.1038/s41598-017-12262-1.; Yu Z.H., Wang J.F., Stall R.E., Vallejos C.E. Genomic localization of tomato genes that control a hypersensitive reaction to Xanthomonas campestris pv. vesicatoria (Doidge) Dye. Genetics. 1995;141:675-682.; Zhang C., Liu L., Wang X., Vossen J., Li G., Li T., Zheng Z., Gao J., Guo Y., Visser R.G.F., Li J., Bai Y., Du Y. The Ph-3 gene from Solanum pimpinellifolium encodes CC-NBS-LRR protein conferring resistance to Phytophthora infestans. Theor. Appl. Genet. 2014;127:1353-1364. DOI 10.1007/s00122-014-2303-1.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2202

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2202
https://doi.org/10.18699/VJ19.522

مصطلحات موضوعية: hybrids, адаптивность, лежкость, селекция, keeping capacity, adaptability, selection, yield, гибриды, plasticity, урожайность, potatoes, товарность, картофель, пластичность, marketability

URL الوصول: https://explore.openaire.eu/search/publication?articleId=doi_________::90dd9a697d2cbd6b9f0a885228c890b9

المؤلفون: I. N. Shamshin, A. V. Shlyavas, A. A. Trifonova, K. V. Boris, A. M. Kudryavtsev, И. Н. Шамшин, А. В. Шлявас, А. А. Трифонова, К. В. Борис, А. М. Кудрявцев

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 22, № 6 (2018); 660-666 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 22, № 6 (2018); 660-666 ; 2500-3259

مصطلحات موضوعية: маркер-ассоциированная селекция, local cultivars, ethylene production, expansin, fruit softening, marker assisted breeding, местные и стародавние сорта, синтез этилена, экспансин, лежкость плодов

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1650/1115; Bratilova N.P., Moksina N.V., Gerasimova O.A., Chepelev N.L. Stages of picking and storage for different cultivars of apple fruit in the Botanical garden named after V.M. Krutovsky. The Bulletin of KrasGAU. 2015;11:146-150.; Costa F., Peace C.P., Stella S., Serra S., Musacchi S., Bazzani M., Sansavini S., Van de Weg W.E. QTL dynamics for fruit firmness and softening around an ethylene-dependent polygalacturonase gene in apple (Malus × domestica Borkh.). J. Expt. Bot. 2010;61(11):30293039. DOI 10.1093/jxb/erq130.; Costa F., Stella S., Van de Weg W.E., Guerra W., Cecchinel M., Dallavia J., Koller B., Sansavini S. Role of the genes Md-ACOl and MdACSl in ethylene production and shelf life of apple (Malus domestica Borkh.). Euphytica. 2005;141:181-190. DOI 10.1007/s10681-0056805-4.; Costa F., Van de Weg W.E., Stella S., Dondini L., Pratesi D., Musacchi S., Sansavini S. Map position and functional allelic diversity of Md-Exp7, a new putative expansin gene associated with fruit softening in apple (Malus × domestica Borkh.) and pear (Pyrus communis). Tree Genet. Genomes. 2008;4:575-586. DOI 10.1007/s11295-0080133-5.; Harada T., Sunako T., Wakasa Y., Soejima J., Satoh T., Niizeki M. An allele of 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase gene (MdACS1) accounts for the low ethylene production in climacteric fruits of some apple cultivars. Theor. Appl. Genet. 2000;101:742-746. DOI 10.1007/s001220051539.; Nybom H., Ahmadi-Afzadi M., Garkava-Gustavsson L., Sehic J., Tahir I. Selection for improved fruit texture and storability in apple. Acta Hort. 2012;934(2):849-854. DOI 10.17660/ActaHortic.2012.934.112.; Nybom H., Ahmadi-Afzadi M., Sehic J., Hertog M. DNA marker-assisted evaluation of fruit firmness at harvest and post-harvest fruit softening in a diverse apple germplasm. Tree Genet. Genomes. 2013;9:279-290. DOI 10.1007/s11295-012-0554-z.; Nybom H., Sehic J., Garkava-Gustavsson L. Modern apple breeding is associated with a significant change in allelic ratio of the ethylene production gene Md-ACS1. J. Hortic. Sci. Biotechnol. 2008;83:673677. DOI 10.1080/14620316.2008.11512442.; Oraguzie N.C., Iwanami H., Soejima J., Harada T., Hall A. Inheritance of Md-ACS1 gene and its relationship to fruit softening in apple (Malus × domestica Borkh.). Theor. Appl. Genet. 2004;108:1526-1533. DOI 10.1007/s00122-003-1574-8.; Oraguzie N.C., Volz R.K., Whitworth C.J., Bassett H.C.M., Hall A.J., Gardiner S. Influence of Md-ACS1 allelotype and harvest season within an apple germplasm collection on fruit softening during cold air storage. Postharvest Biol. Technol. 2007;44:212-219. DOI 10.1016/j.postharvbio.2006.12.013.; Savel’ev N.I., Shamshin I.N., Kudryavtzev A.M. Apples for the alleles of genes of shelf life and quality of fruits. Reports of the Russian Academy of Agricultural Sciences. 2014a;3:17-20.; Savel’ev N.I., Shamshin I.N., Savel’eva N.N., Lyzhin A.S. Polymorphism for the MD-EXP-7 gene for expansin biosynthesis in wild species of the genus Malus Mill. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2014b;18(4/1): 713-717.; Shamshin I.N., Savelieva N.N. Identifying the gene sources for ethylene biosynthesis (MD-ACS1 and MD-ACO1) in genoplasm of wild apple tree species of the genus Malus (L.) Mill. Herald of the Russian Academy of Agricultural Sciences. 2014;4:35-37.; Sunako T., Sakuraba W., Senda M., Akada S., Ishikawa R., Niizeki M., Harada T. An allele of the ripening-specific 1-amino-cyclopropane1-carboxylic acid synthase (ACS1) in apple fruit with a long storage life. Plant Physiol. 1999;119(4):1297-1304. DOI 10.1104/pp.119.4. 1297.; Suprun I.I., Tokmakov S.V. Allelic diversity of ethylene biosynthesis related MD-ACS1 and MD-ACO1 genes in Russian apple germplasm. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2013;17(23):298-302.; Zhu Y., Barritt B.H. Md-ACS1 and Md-ACO1 genotyping of apple (Malus × domestica Borkh.) breeding parents and suitability for marker-assisted selection. Tree Genet. Genomes. 2008;4:555-562. DOI 10.1007/s11295-007-0131-z.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1650

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1650
https://doi.org/10.18699/VJ18.408

المؤلفون: N. Chukhlantsev V., D. Fomin S., Н. Чухланцев В., Д. Фомин С.

المصدر: Vegetable crops of Russia; № 6 (2018); 101-103 ; Овощи России; № 6 (2018); 101-103 ; 2618-7132 ; 2072-9146

مصطلحات موضوعية: potato, yield, quality, keeping quality, starch content, картофель, урожайность, качество, лежкость, содержание крахмала

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/661/546; Попов Ю.В. Мониторинг фитосанитарного состояния картофеля. В сборнике: Агротехнологии XXI века Материалы международной научно-практической конференции, посвященной 105-летию Воронежского государственного аграрного университета. 2017. – С.140-146.; Аношкин Л.С. Селекция картофеля в Кузбассе // Картофель и овощи. – №7. – 2006. – С.9-11.; Симаков Е.А., Анисимов Б.В., Чугунов В.С., Шатилова О.Н. // Картофель и овощи. – №3. – 2013. – С.23-26.; Гуляев Г.В. Остановить разрушение селекции и семеноводства // Селекция и семеноводство. №3. – 1997. – С.19-24.; Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию. Т.1. Сорта растений (официальное издание). – М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2016. – 504 с.; Гунар Л.Э., Черенков А.А., Хлопюк М.С. // Сорта картофеля в условиях дефицита влаги // Картофель и овощи. – №4. – 2014. – С.26-27.; Чухланцев Н.В., Елисеев С.Л., Скрябин А.А. Урожайность и качество перспективных сортов картофеля в условиях Пермского края // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. – №2 (148). – 2017. – С.16-21.; Часовских Н.П. Урожайность и качество картофеля в условиях орошения // Известия ОГАУ. 2012. – №35-1. – С.69-71.; Доспехов Б.А. Методика государственного сортоиспытания сельскохозяйственных культур, 1964.; Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований) / Б.А. Доспехов. – Изд. 6-е. – Москва: Альянс, 2011. – 350 с.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/661

الاتاحة: https://www.vegetables.su/jour/article/view/661
https://doi.org/10.18619/2072-9146-2018-6-101-103

المصدر: Овощи России, Vol 0, Iss 4-1, Pp 34-39 (2009)

مصطلحات موضوعية: томат, лежкость, селекционно-генетические, агротехнические, технологические и экологические факторы, Agriculture

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/1505; https://doaj.org/toc/2072-9146; https://doaj.org/toc/2618-7132

URL الوصول: https://doaj.org/article/53a9cba03bac4eecbb7fdd97af9b1e28

مصطلحات موضوعية: shallots, лежкость, вегетационный период, growing season, селекция, selection, yield, variety, луковица, лук шалот, урожайность, keeping quality, сорт, onion

URL الوصول: https://explore.openaire.eu/search/publication?articleId=doi_________::00f9fbfe79a6717ced249f684d7f769b

المؤلفون: N. I. Savel’ev, I. N. Shamshin, N. N. Savel’eva, A. S. Lyzhin, Н. И. Савельев, И. Н. Шамшин, Н. Н. Савельева, А. С. Лыжин

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 18, № 4/1 (2014); 713-717 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 18, № 4/1 (2014); 713-717 ; 2500-3259

مصطلحات موضوعية: лежкость плодов, PCR test, allelic diversity, MD-Exp7 gene, fruit storability, ПЦР-анализ, аллелльное разнообразие, ген MD-Exp7

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/298/300; Барсукова О.Н. Виды, разновидности и формы рода Malus Mill. Иммунологическая характеристика // Каталог мировой коллекции ВИР. СПб., 2007. Вып. 781. 26 с.; Лангенфельд В.Т. Яблоня: Морфологическая эволюция, филогения, география, систематика. Рига: Зинатие, 1991. 234 с.; Пономаренко В.В., Пономаренко К.В. Генофонд видов рода Malus Мill. Яблоня / В.В. Пономаренко, К.В. Пономаренко. СПб.: Общество памяти иryмении Taисии, 2013. 222 с.; Урбанович О.Ю., Кузмицкая П.В., Козловская З.А. и др. Аллельный состав генов MD-ACS1, MD-ACO1 и MD-EXP7 сортов яблони (Malus × domestica Borkh.) с различным сроком хранения плодов // Вестн. Национальной академии наук Беларуси (Сер. «биол. науки»). 2013. № 3. С. 47–55.; Шамшин И.Н., Савельев Н.И., Кудрявцев А.М. Аллельное разнообразие гена MD-EXP 7 у сортов яблони и груши // Вестн. Мичуринск. гос. аграр. ун-та. 2012. № 4. Ч. 1. С. 23–26.; Шарова Е.И. Экспансины – белки, размягчающие клеточные стенки в процессе роста и морфогенеза растений / Е.И. Шарова // Физиол. растений. 2007. Т. 54. С. 805–819.; Benbouza Н., Jacquemin J.-M., Baudoin J.-P. et al. Optimization of a reliable, fast, cheap and sensitive silver staining method to detect SSR markers in polyacrylamide gels // Biotechnol. Agron. Soc. Environ. 2006. V. 10. No. 2. P. 77–81.; Costa F., Van de Weg W.Е., Stella S. Map position and functional allelic diversity of Md-Exp7, a new putative expansin gene associated with fruit softening in apple (Malus × domestica Borkh.) and pear (Pyrus communis) // Tree Genet. Genomes. 2008. V. 4. P. 575–586.; McQueen-Mason S., Cosgrove D.J. Disruption of hydrogen bonding between Wall polymers by proteins that induce plant wall extension / S. McQueen-Mason, D.J. Cosgrove // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1994. V. 91. P. 6574–6578.; Nybom H., Ahmadi-Afzadi M., Sehic J., Maarten H. DNA marker-assisted evaluation of fruit fi rmness at harvest and post-harvest fruit softening in a diverse apple germplasm / H. Nybom, M. Ahmadi-Afzadi, J.Sehic, H. Maarten // Tree Genet. Genomes. 2012. V. 9. No. 1. P. 279–290.; Puchooa D.A. А simple, rapid and effi cient method for the extraction of genomic DNA from lychee (Litchi chinensis-Sonn.) / D.A. Puchooa // Afr. J. Biotechnol. 2004. V. 3. No. 4. P. 253–255.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/298

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/298

المؤلفون: I. I. Suprun, S. V. Tokmakov, И. И. Супрун, С. В. Токмаков

المساهمون: Росский фонд фундаментальных исследований, проект № 12-04-31947 мол_а

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 17, № 2 (2013); 298-302 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 17, № 2 (2013); 298-302 ; 2500-3259

مصطلحات موضوعية: лежкость плодов, DNA marker analysis, marker-assisted selection, allelic diversity, ethylene biosynthesis genes, Md-ACS1, Md-ACO1, fruit storability, ДНК-маркерный анализ, маркер-вспомогательная селекция, аллельное разнообразие, гены синтеза этилена Md-ACS1 и Md-ACO1

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/151/153; Adams D.O., Yang S.F. Ethylene biosynthesis: identification of 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid as an intermediate in the conversion of methionine to ethylene // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1979. V. 76. P. 170–174.; Costa F., Sara S., Van de Weg W.E. et al. Role of the genes Md-ACO1 and Md-ACS1 in ethylene production and shelf life of apple (Malus domestica Borkh) // Euphytica. 2005. V. 141. P. 181–190.; Dong J.G., Kim W.T, Yip W.K. et al. Cloning of a cDNA encoding 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase and expression of its mRNA in ripening apple fruit // Planta. 1991. V. 185. P. 38–45.; Dong J.G., Olson D., Silverstone A., Yang S.F. Sequence of a cDNA coding for a 1-aminocyclopropane-1-carboxylate oxidase homolog from apple fruit // Plant Physiol. 1992. V. 98. P. 1530–1531.; Fan X., Blankenship S.M., Mattheis J.P. 1-methylcyclopropene inhibits apple ripening // J. Am. Soc. Hortic. Sci. 1999. V. 124. P. 690–695.; Harada T., Sunako T., Wakasa Y. et al. An allele of 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase gene (Md-ACS1) accounts for the low ethylene production in climacteric fruits of some apple cultivars // Theor. Appl. Genet. 2000. V. 101. P. 742–746.; Kende H. Ethylene biosynthesis // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1993. V. 44. P. 283–307.; Mercantila F. Guide to Food Transport: Fruit and Vegetables. Copenhagen: Mercantila Publishers, 1989. 247 p.; Murray M.G., Thompson W.F. Rapid isolation of high molecular weight plant DNA // Nucl. Acids Res. 1980. V. 10. P. 4321–4325.; Nybom H., Ahmadi-Afzadi M., Sehic J., Hertog M. DNA marker-assisted evaluation of fruit fi rmness at harvest and post-harvest fruit softening in a diverse apple germplasm // Tree Genetics and Genomes. 2013. V. 9. P. 279–290.; Oraguzie N.C., Iwanami H., Soejima J. et al. A. Inheritance of Md-ACS1 gene and its relationship to fruit softening in apple (Malus × domestica Borkh.) // Theor. Appl. Genet. 2004. V. 108. P. 1526–1533.; Sunako T., Sakuraba W., Senda M. et al. An allele of the ripening-specifi c 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase gene (ACS1) in apple fruit with a long storage life // Plant Physiol. 1999. V. 119. P. 1297–1304.; Tucker G.A. Introduction // Biochemistry of Fruit Ripening / Eds G.B. Seymour, J.E. Taylor, G.A. Tucker. London: Chapman and Hall, 1993. P. 3–51.; Wiersma P.A., Zhang H., Lu C. et al. Survey of the expression of genes for ethylene synthesis and perception during maturation and ripening of «Sunrise» and «Golden Delicious » apple fruit // Postharvest Biol. Technol. 2007. V. 44. No. 3. P. 204–211.; Zhu Y., Barrit B.H. Md-ACS1 and Md-ACO1 genotyping of apple (Malus × domestica Borkh.) breeding parents and suitability for marker-assisted selection // Tree Genetics and Genomes. 2008. V. 4. P. 555–562.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/151

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/151

المؤلفون: Буликов, Анатолий, Чухина, Ольга

مصطلحات موضوعية: КАРТОФЕЛЬ, УРОЖАЙНОСТЬ, КАЧЕСТВО, ЛЕЖКОСТЬ, СОДЕРЖАНИЕ КРАХМАЛА

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/sravnitelnaya-otsenka-sortov-kartofelya-v-usloviyah-vologodskoy-oblasti
http://cyberleninka.ru/article_covers/14441610.png

المؤلفون: Макаркина, М., Туткин, Г.

مصطلحات موضوعية: ЯБЛОНЯ, вставочный подвой, иммунные к парше сорта, лёжкость, КАЧЕСТВО ПЛОДОВ

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/vyhod-tovarnyh-plodov-posle-hraneniya-u-immunnyh-k-parshe-sortov-yabloni-vyraschennyh-v-intensivnyh-sadah
http://cyberleninka.ru/article_covers/3607216.png

المؤلفون: Пучкин, Иван

مصطلحات موضوعية: ГРУША УССУРИЙСКАЯ, ОБЫКНОВЕННАЯ, КИТАЙСКИЕ ВИДЫ, СОРТА, СЕЛЕКЦИЯ, ЗИМОСТОЙКОСТЬ, ЛЕЖКОСТЬ ПЛОДОВ, ПЕРСПЕКТИВНЫЕ ФОРМЫ

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/ispolzovanie-genofonda-kitayskoy-grushi-na-altae
http://cyberleninka.ru/article_covers/14668999.png

المؤلفون: Магомедов, Г., Магомедова, Е.

مصطلحات موضوعية: ВИНОГРАД, СОРТ, ЛЕЖКОСТЬ, ТЕМПЕРАТУРНЫЙ РЕЖИМ, ХРАНЕНИЕ

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/perspektivnye-dlya-hraneniya-i-transportirovki-sorta-vinograda-srednego-perioda-sozrevaniya
http://cyberleninka.ru/article_covers/14059164.png

المؤلفون: Никитин, А., Макаркина, М.

مصطلحات موضوعية: ЛЕЖКОСТЬ, ПРОДОЛЖИТЕЛЬНОСТЬ ХРАНЕНИЯ, БИОХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ ПЛОДОВ, МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ЗАБОЛЕВАНИЯ ПЛОДОВ, ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ ЗАБОЛЕВАНИЯ ПЛОДОВ

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/lezhkost-nekotoryh-novyh-imunnyh-k-parshe-sortov-yabloni-selektsii-vniispk
http://cyberleninka.ru/article_covers/15289681.png

المؤلفون: Магомедов, Г., Власова, О.

مصطلحات موضوعية: ВИНОГРАД, АМПЕЛОЭКОЛОГИЯ, РАВНИННЫЙ ДАГЕСТАН, ЛЁЖКОСТЬ, УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/lezhkost-vinograda-v-zavisimosti-ot-sortovoy-prinadlezhnosti-i-usloviy-proizrastaniya
http://cyberleninka.ru/article_covers/15016126.png

المؤلفون: Акишин, Д., Бухарова, А., Свешникова, Е., Бухаров, А.

مصطلحات موضوعية: ХРАНЕНИЕ, ЛЕЖКОСТЬ ПЛОДОВ, НЕКОРНЕВЫЕ ОБРАБОТКИ, ГЕНЫ ЗАМЕДЛЕННОГО СОЗРЕВАНИЯ ТОМАТА RIN, 1-МЕТИЛЦИКЛОПРОПЕН (МЦП), 1-METHYLCYCLOPROPEN (MCP)

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/perspektivy-selektsii-tomatov-i-pertsa-na-lezhkost-i-kachestvo-plodov-v-protsesse-hraneniya
http://cyberleninka.ru/article_covers/15260887.png

المؤلفون: Седов, E.

مصطلحات موضوعية: СЕЛЕКЦИЯ, СОРТОИЗУЧЕНИЕ, ИММУНИТЕТ, ЛЕЖКОСТЬ ПЛОДОВ, СРОКИ СОЗРЕВАНИЯ, ЯБЛОНЯ, БИОХИМИЧЕСКАЯ И ТЕХНОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ПЛОДОВ

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/luchshie-sorta-yabloni-dlya-intensivnyh-adaptivnyh-sadov
http://cyberleninka.ru/article_covers/15015998.png

مصطلحات موضوعية: storability of tubers, система обработки почвы, лежкость клубней, fertilizers, картофелеуборочный комбайн, potato harvester, yield, Soil tillage, минеральные удобрения, fuel consumption, расход ГСМ, Agronomy, Yield (wine), урожайность, Environmental science, potatoes, картофель, tillage system

URL الوصول: https://explore.openaire.eu/search/publication?articleId=doi_________::2af316b9986739905c22b770f7cc7057