يعرض 1 - 20 نتائج من 54 نتيجة بحث عن '"диско"', وقت الاستعلام: 0.53s تنقيح النتائج
  1. 1
    Academic Journal

    المصدر: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 23, № 3 (2024); 27-37 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 23, № 3 (2024); 27-37 ; 2619-0494 ; 2073-3046

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/2011/1033; Pechere J.C. Macrolide resistance mechanisms in Gram-positive cocci // International Journal of Antimicrobial Agents. 2001. Vol. 18. Suppl. 1. P. 25–28.; Bartkus J.M., Juni B.A., Ehresmann K., et al. Identification of a mutation associated with erythromycin resistance in Bordetella pertussis: implications for surveillance of antimicrobial resistance // Journal of Clinical Microbiology. 2003. Vol. 41, № 3. P. 1167–1172.; Menninger J.R. Functional consequences of binding macrolides to ribosomes // The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 1985. Vol. 16. Suppl. A. P. 23–34.; Бакулина Н. А., Ефимова О. Г., Высотский В. В. и др. Ультраструктура свежевыделенных штаммов B. Pertussis. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1984. Т. 61, № 11. С. 24–26.; Wang Z., Han R., Liu Y., et al. Direct detection of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in clinical specimens by PCR. Journal of Clinical Microbiology. 2015. Vol. 53, № 11. P. 3418–3422.; Waters V., Halperin S.A. Bordetella pertussis. In: Bennett J.E., Dolin R., Blaser M.J., editors. Mandell, Douglas, and Bennett’s principles and practice of infectious diseases. 8th edition. Philadelphia: Elsevier Science; 2014. P. 2619–2628.; Lewis K., Saubolle M.A., Tenover F.C., et al. Pertussis caused by an erythromycin-resistant strain of Bordetella pertussis. The Pediatric Infectious Disease Journal. 1995. Vol. 14, № 5. P. 388–391.; Korgenski K., Daly J.A. Surveillance and detection of erythromycin resistance in Bordetella pertussis isolates recovered from a pediatric population in the Intermountain West Region of the United States. Journal of Clinical Microbiology. 1997. Vol. 35, № 11. P. 2989–2991.; Mirzaei B., Bameri Z., Babaei R., et al Isolation of high level macrolide resistant Bordetella pertussis without transition mutation at domain V in Iran. Jundishapur Journal of Microbiology. 2015. Vol. 8, № 7. P. e18190.; Guillot S., Descours G., Gillet Y., et al. Macrolide resistant Bordetella pertussis infection in newborn girl, France. Emerging Infectious Diseases. 2012. Vol. 18, № 6. P. 966–968.; Kamachi K., Duong H.T., Dang A.D., et al. Macrolide-resistant Bordetella pertussis, Vietnam, 2016–2017. Emerging Infectious Diseases. 2020. Vol. 26, № 10. P. 2511–2513.; Wilson K.E., Cassiday P.K., Popovic T., et al. Bordetella pertussis isolates with a heterogeneous phenotype for erythromycin resistance. Journal of Clinical Microbiology. 2002. Vol. 40, № 8. P. 2942–2944.; Xu Z., Wang Z., Luan Y., et al. Genomic epidemiology of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in China. Emerging Microbes & Infections. 2019. Vol. 8, № 1. P. 461–470.; Li L., Deng J., Ma X., et al. High prevalence of macrolide-resistant Bordetella pertussis and ptxP1 genotype, mainland China, 2014–2016. Emerging Infectious Diseases. 2019. Vol. 25, № 12. P. 2205–2214.; Wang Z., Cui Z., Li Y., et al. High prevalence of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in Xi’an, China. Clinical Microbiology and Infection. 2014. Vol. 20, № 11. P. O825–O830.; Yang Y., Yao K., Ma X., et al. Variation in Bordetella pertussis susceptibility to erythromycin and virulence-related genotype changes in China (1970–2014). PLoS One. 2015. Vol. 10, № 9. P. e0138941.; Feng Y., Chiu C.H., Heininger U., et al. Emerging macrolide resistance in Bordetella pertussis in mainland China: findings and warning from the global pertussis initiative. The Lancet regional health. Western Pacific. 2021. Vol. 8. P. 100098.; Dinu S., Guillot S., Dragomirescu C.C., et al. Whooping cough in South-East Romania: a 1-year study. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 2014. Vol. 78, № 3. P. 302–306.; Fry N.K., Duncan J., Vaghji L., et al. Antimicrobial susceptibility testing of historical and recent clinical isolates of Bordetella pertussis in the United Kingdom using the Etest method. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2010. Vol. 29, № 9. P. 1183–1185.; Galanakis E., Englund J.A., Abe P., et al. Antimicrobial susceptibility of Bordetella pertussis isolates in the state of Washington. International Journal of Antimicrobial Agents. 2007. Vol. 29, № 5. P. 609–611.; Horiba K., Nishimura N., Gotoh K., et al. Clinical manifestations of children with microbiologically confirmed pertussis infection and antimicrobial susceptibility of isolated strains in a regional hospital in Japan, 2008–2012. Japanese Journal of Infectious Diseases. 2014. Vol. 67, № 5. P. 345–348.; Jakubu V., Zavadilova J., Fabianova K., et al. Trends in the minimum inhibitory concentrations of erythromycin, clarithromycin, azithromycin, ciprofloxacin, and trimethoprim / sulfamethoxazole for strains of Bordetella pertussis isolated in the Czech Republic in 1967–2015. Central European Journal of Public Health. 2017. Vol. 25, № 4. P. 282–286.; Marchand-Austin A., Memari N., Patel S.N., et al. Surveillance of antimicrobial resistance in contemporary clinical isolates of Bordetella pertussis in Ontario, Canada. International Journal of Antimicrobial Agents. 2014. Vol. 44, № 1. P. 82–84.; Sintchenko V., Brown M., Gilbert G.L. Is Bordetella pertussis susceptibility to erythromycin changing? MIC trends among Australian isolates 1971–2006. The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2007. Vol. 60, № 5. P. 1178–1179.; Souder E., Vodzak J., Evangelista A.T., et al. Antimicrobial susceptibility and molecular detection of pertactin-producing and pertactin-deficient Bordetella pertussis. The Pediatric Infectious Disease Journal. 2017. Vol. 36, № 1. P. 119–121.; Yao S.M., Liaw G.J., Chen Y.Y., et al. Antimicrobial susceptibility testing of Bordetella pertussis in Taiwan prompted by a case of pertussis in a paediatric patient. Journal of Medical Microbiology. 2008. Vol. 57. Pt. 12. P. 1577–1580.; Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing, 31st edition. USA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2021.; European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Routine and extended internal quality control for MIC determination and disk diffusion as recommended by EUCAST, Version 11.0. Basel: EUCAST; 2021.; Hill B.C., Baker C.N., Tenover F.C. A simplified method for testing Bordetella pertussis for resistance to erythromycin and other antimicrobial agents. Journal of Clinical Microbiology. 2000. Vol. 38, № 3. P. 1151–1155.; Gordon K.A., Fusco J., Biedenbach D.J., et al. Antimicrobial susceptibility testing of clinical isolates of Bordetella pertussis from northern California: report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2001. Vol. 45, № 12. P. 3599–3600.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/2011

  2. 2
    Academic Journal

    المصدر: Agricultural Machinery and Technologies; Том 17, № 2 (2023); 82-88 ; Сельскохозяйственные машины и технологии; Том 17, № 2 (2023); 82-88 ; 2073-7599

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vimsmit.com/jour/article/view/521/474; Измайлов А.Ю., Лобачевский Я.П., Кынев Н.Г. ВИМ – основатель производства селекционной техники в России // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2008. N4. С. 9-11.; Анискин В.И., Некипелов Ю.Ф. Механизация опытных работ в селекции, сортоиспытании и первичном семеноводстве зерновых и зернобобовых культур. М.: ВИМ. 2004. 199 с.; Лобачевский Я.П., Дорохов А.С. Цифровые технологии и роботизированные технические средства для сельского хозяйства // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2021. Т. 15. N4. С. 6-10. DOI 10.22314/2073-7599-2021-15-4-6-10.; Несмиян А.Ю., Ценч Ю.С. Тенденции и перспективы развития отечественной техники для посева зерновых культур // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2018. Т. 12. N3. С. 45-52. DOI 10.22314/2073-7599-2018-12-3-4552.; Beloev H., Borisov B., Аdаmchuk V., et al. Theory of Movement of the Combined Seeding Unit. Agriculture and Agricultural Science Procedia. 2015. Vol. 7. 21-26. DOI 10.1016/j.aaspro.2015.12.024.; Yaropud V., Datsiuk D. By improving breeding seeder sowing device small seeded crops. Vibrations in engineering and technology. 2021. Iss. 1 (100). 152-162. DOI 10.37128/2306-8744-2021-1-15.; Ахалая Б.Х., Ценч Ю.С., Квас С.А. Технология комбинированного способа посева и высевающие аппараты для его осуществления // Вестник ВИЭСХ. 2018. N4(33). С. 61-65.; Ахалая Б.Х., Ценч Ю.С., Миронова А.В. Разработка и исследование дозирующей системы высевающего устройства пневматической сеялки // Техника и оборудование для села. 2021. N6(288). С. 8-11. DOI 10.33267/2072-9642-2021-6-8-11.; Lavrov A., Smirnov I., Litvinov M. Justification of the construction of a self-propelled selection seeder with an intelligent seeding system. MATEC Web of Conferences. 2018. Vol. 224. 05011. DOI 10.1051/matecconf/201822405011.; Текушев А.Х., Чаплыгин М.Е., Чулков А.С. и др. Автоматизированные технические средства в посевной технике для селекции и семеноводства сельхозкультур // Электротехнологии и электрооборудование в АПК. 2022. Т. 69. N3(48). С. 49-55. DOI 10.22314/2658-4859-2022-69-3-49-55.; Грабовец А.И., Фоменко М.А. Озимая пшеница. Ростов н/Д: Юг. 2007. 560 с.; Шайхов М.К., Жалнин Э.В., Шайхов М.М. и др. К разработке селекционной сеялки для посева зерновых культур колосьями // Вестник ВИЭСХ. 2018. N3(32). С. 114120.; Podzorov A., Shaikhov M., Khamuev V., et al. Machines and Equipment for Sowing Grain Crops on Plots of the I and II Stages of Selection Work. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2022. Vol. 988. Iss. 3. 032021. DOI 10.1088/1755-1315/988/3/032021.; Чаплыгин М.Е., Шайхов М.М., Чулков А.С. и др. Определение показателей ленто­кассетного высевающего устройства для селекционного посева зерновых культур колосьями // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2022. Т. 16. N2. С. 56-61. DOI 10.22314/2073-7599-2022-16-2-56-61.; Блохин В.И.,Шайхов М.К., Шайхов М.М. и др. Опыт использования колосковой сеялки в селекции и семеноводстве зерновых культур // Интеллектуальные машинные технологии и техника для реализации Государственной программы развития сельского хозяйства: cборник научных докладов Международной научно-технической конференции. Ч. 1. М.: ФГБНУ ФНАЦ ВИМ, 2015. С. 307310.; Крючина Н.В., Мишанин А.Л., Машков С.В. и др. Теоретическое обоснование конструктивных и технологических параметров питающего окна дисково-ленточного высевающего аппарата // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. 2021. N3. С. 46-54.; Шайхов М.М., Шайхов М.К. Рабочие органы зернотуковой сеялки с регулируемой шириной полосы высева // Электротехнологии и электрооборудование в АПК. 2019. N1(34). С. 68-72.; https://www.vimsmit.com/jour/article/view/521

  3. 3
    Academic Journal

    Relation: Бублій Т. Д. Антисептичні властивості цитратного буферу / Т. Д. Бублій, О. В. Ганчо, О. П. Костиренко // Актуальні проблеми сучасної медицини : Вісник Української медичної стоматологічної академії. – 2021. – Т. 21, вип. 1 (73). – С. 85–88.; http://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/16675

  4. 4
  5. 5
    Academic Journal

    Relation: Бублій Т. Д. Порівняльна характеристика антимікробних властивостей цитратного буферу й амоксиклаву : матеріали Всеукр. міждисциплінарної наук.-практ. конф. з міжнар. участю «УМСА – століття інноваційних напрямків та наукових досягнень (до 100-річчя заснування УМСА)», (м. Полтава, 8 жовтня 2021 р.) / Т. Д. Бублій, О. В. Ганчо, О. П. Костиренко, Т. М. Мошель, Л. І. Дубова // Український стоматологічний альманах. – 2021. – № 3 (дод.). – С. 16.; http://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/17272

  6. 6
    Academic Journal

    المساهمون: The study was supported by the Russian Foundation for Basic Research, project 18-29-08015, and State Budgeted Project 0245-2021-0008 for the Institute of Chemical Biology and Fundamental Medicine, Novosibirsk. The strains tested were taken from the Collection of Extremophilic Microorganisms and Type Cultures, ICBFM.

    المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 25, № 2 (2021); 234-245 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 25, № 2 (2021); 234-245 ; 2500-3259 ; 2500-0462 ; 10.18699/VJ21.016

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2887/1501; Иванов Д.В., Егоров А.М. Распространение и механизмы резистентности микроорганизмов, продуцирующих бета­лактамазы. Молекулярные механизмы устойчивости к бета­лактамным антибиотикам штаммов клебсиелл, выделенных при внутрибольничных инфекциях. Биомед. химия. 2008;54(1):104­113. DOI 10.1134/S1990750808030141.; Козлова Н.С., Баранцевич Н.Е., Баранцевич Е.П. Чувствительность к антибиотикам штаммов Klebsiella pneumoniae, выделенных в многопрофильном стационаре. Инфекция и иммунитет. 2018; 8(1):79­84. DOI 10.15789/2220­7619­2018­1­79­84.; Козлова Ю.Н., Фоменко Н.В., Морозова В.В., Саранина И.В., Тикунов А.Ю., Ганичев Д.А., Самохин А.Г., Павлов В.В., Рожнова О.М., Бондарь И.А., Зенкова Е.В., Нимаев В.В., Климонтов В.В., Тикунова Н.В. Идентификация стафилококков, включая метицилинрезистентные штаммы, биохимическими и генетическими методами. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2017;21(8):952­958. DOI 10.18699/VJ17.318.; Машковский М.Д. Лекарственные средства. М.: Новая Волна, 2005.; Сухорукова М.В., Эйдельштейн М.В., Иванчик Н.В., Склеенова Е.Ю., Шайдуллина Э.Р., Азизов И.С., Шек Е.А., Кузьменков А.Ю., Дехнич А.В., Козлов Р.С., Семенова Н.В., … Звонарева О.В., Корнилова П.А., Крянга В.Г., Портнягина У.С., Шамаева С.Х., Попов Д.А., Вострикова Т.Ю. Антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов Enterobacterales в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования «МАРАФОН 2015–2016». Клин. микробиология и антимикробная химиотерапия. 2019;21(2): 147­159. DOI 10.36488/cmac.2019.2.147­159.; Тапальский Д.В., Осипов В.А., Жаворонок С.В. Карбапенемазы грамотрицательных бактерий: распространение и методы детекции. Мед. журн. 2012;2(40):10­15.; Чеботарь И.В., Бочарова Ю.А., Подопригора И.В., Шагин Д.А. Почему Klebsiella pneumoniae становится лидирующим оппортунистическим патогеном. Клин. микробиология и антимикробная химиотерапия. 2020;22(1):4­19. DOI 10.36488/cmac.2020.1.4­19.; Эйдельштейн М.В. Выявление β­лактамаз расширенного спектра у грамотрицательных бактерий с помощью фенотипических методов. Клин. микробиология и антимикробная химиотерапия. 2001;3(2):183­189.; Brisse S., Passet V., Haugaard A.B., Babosan A., Kassis­Chikhani N., Struve C., Decré D. wzi gene sequencing, a rapid method for determination of capsulartype for Klebsiella strains. J. Clin. Microbiol. 2013;51:4073­4078. DOI 10.1128/JCM.01924­13.; Broberg C.A., Palacios M., Miller V.L. Klebsiella: a long way to go towards understanding this enigmatic jet­setter. F1000Prime Rep. 2014;6:64. DOI 10.12703/P6­64.; Bush K., Jacoby G.A. Updated functional classification of beta­lactamases. Antimicrob. Agents Chemother. 2010;54(3):969­976. DOI 10.1128/AAC.01009­09.; Galal L., Abdel Aziz N.A., Hassan W.M. Defining the relationship between phenotypic and genotypic resistance profiles of multidrugresistant enterobacterial clinical isolates. Adv. Exp. Med. Biol. 2019; 1214:9­21. DOI 10.1007/5584_2018_208.; Gharrah M.M., El­Mahdy A.M., Barwa R.F. Association between virulence factors and extended spectrum beta­lactamase producing Kleb siella pneumoniae compared to nonproducing isolates. Interdiscip. Perspect. Infect. Dis. 2017:7279830. DOI 10.1155/2017/7279830.; Hoa P.L., Chowa K.H., Yuena K.Y., Ngb W.S., Chaua P.Y. Comparison of a novel, inhibitor­potentiated disc­diffusion test with other methods for the detection of extended­spectrum beta­lactamases in Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae. J. Antimicrob. Chemother. 1998;42:49­54.; Hooper D.C., Jacoby G.A. Mechanisms of drug resistance: quinolone resistance. Ann. N.Y. Acad. Sci. 2015;1354(1):12­31. DOI 10.1111/nyas.12830.; Lee H.C., Chuang Y.C., Yu W.L., Lee N.Y., Chang C.M., Ko N.Y., Wang L.R., Ko W.C. Clinical implications of hypermucoviscosity phenotype in Klebsiella pneumoniae isolates: association with invasive syndrome in patients with community­acquired bacteraemia. J. Intern. Med. 2006;259(6):606­614. DOI 10.1111/j.1365­2796.2006.01641.x.; Lee K., Chong Y., Shin H.B., Kim Y.A., Yong D., Yum J.H. Modified Hodge and EDTA­disk synergy tests to screen metallo­lactamaseproducing strains of Pseudomonas and Acinetobacter species. Clin. Microbiol. Infect. 2001;7:88­91.; Liakopoulos A., Mevius D., Ceccarelli D. A review of SHV extendedspectrum β­lactamases: neglected yet ubiquitous. Front. Microbiol. 2016;5(7):1374. DOI 10.3389/fmicb.2016.01374.; Morozova V.V., Babkin I.V., Kozlova Y.N., Baykov I.K., Bokovaya O.V., Tikunov A.Yu., Ushakova T.А., Bardasheva A.V., Ryabchikova E.I., Zelentsova E., Tikunova N.V. Isolation and characterization of a novel Klebsiella pneumoniae N4­like bacteriophage KP8. Viruses. 2019;11(12):1115. DOI 10.3390/v11121115.; Mukherjee S., Naha S., Bhadury P., Saha B., Dutta M., Dutta S., Basu S. Emergence of OXA­232­producing hypervirulent Klebsiella pneumoniae ST23 causing neonatal sepsis. J. Antimicrob. Chemother. 2020;75(7):2004­2006. DOI 10.1093/jac/dkaa080.; Podschun R., Ullmann U. Klebsiella spp. as nosocomial pathogens: epidemiology, taxonomy, typing methods, and pathogenicity factors. Clin. Microbiol. Rev. 1998;11(4):589­603.; Ramirez M.S., Tolmasky M.E. Aminoglycoside modifying enzymes. Drug. Resist. Updat. 2010;13(6):151­171.; Robicsek A., Jacoby G.A., Hooper D.C. The worldwide emergence of plasmid­mediated quinolone resistance. Lancet Infect. Dis. 2006;6: 629­640.; Walsh T.R., Toleman M.A., Poirel L., Nordmann P. Metallo­beta­lactamases: the quiet before the storm? Clin. Microbiol. Rev. 2005;18(2): 306­325.; Yang H.Y., Nam Y.S., Lee H.J. Prevalence of plasmid­mediated quinolone resistance genes among ciprofloxacin­nonsusceptible Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae isolated from blood cultures in Korea. Can. J. Infect. Dis. Med. Microbiol. 2014;25(3): 163­169.; Yong D., Lee K., Yum J.H., Shin H.B., Rossolini G.M., Chong Y. Imipenem­EDTA disk method for differentiation of metallo­betalactamase­producing clinical isolates of Pseudomonas spp. and Acinetobacter spp. J. Clin. Microbiol. 2002;40(10):3798­3801.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2887

  7. 7
  8. 8
  9. 9
    Academic Journal
  10. 10
    Academic Journal
  11. 11
  12. 12
    Academic Journal

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Данько, Я. М. Різниці у діаметрах зон пригнічення між штамами Staphylococcus aureus, що виділені від дітей і від дорослих [Текст] / Я. М. Данько, А. М Пустовойтова // Природничі науки : збірник наукових праць / Міністерство освіти і науки України, Сумський державний педагогічний університет імені А. С. Макаренка; редкол.: А. П. Вакал, Ю. І. Литвиненко, О. В. Говорун [та ін.]. – Суми : СумДПУ імені А. С. Макаренка, 2015. – Вип. 12. – С. 39–42.; http://repository.sspu.sumy.ua/handle/123456789/3271

  13. 13
    Academic Journal
  14. 14
  15. 15
    Academic Journal

    Relation: Галатюк О. Є. Чутливість хвороботворних бактерій бджіл до зразка розчину міді і цитрату срібла / О. Є. Галатюк, Т. О. Романишина, А. Р. Лахман // Наук. вісн. Львів. нац. ун-ту вет. медицини та біотехнологій ім. С. З. Ґжицького. Сер. Вет. науки. – 2020. – Т. 22, № 97. – С. 106−111.; 2518–7554; 2518–1327; http://ir.znau.edu.ua/handle/123456789/11657

  16. 16
    Academic Journal

    Relation: Стійкість патогенних ентеробактерій бджіл до експериментального йодовмісного дезінфектанту «Йодіс Дез № 2» / О. Є. Галатюк, Т. О. Романишина, А. Р. Лахман [та ін.] // Наукові горизонти. – 2020. – № 01 (86). – С. 71–78.; http://ir.znau.edu.ua/handle/123456789/10205

  17. 17
    Academic Journal

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Данько, Я. М. Резистентність до антибіотиків штамів Staphylococcus aureus, виділених від хворих на тонзиліт [Текст] / Я. М. Данько, А. М. Пустовойтова // Природничі науки : збірник наукових праць / Міністерство освіти і науки України, Сумський державний педагогічний університет імені А. С. Макаренка; редкол.: А. П. Вакал, Ю. І. Литвиненко, О. В. Говорун [та ін.]. – Суми : СумДПУ імені А. С. Макаренка, 2014. – Вип. 11. – С. 63–66.; http://repository.sspu.sumy.ua/handle/123456789/3334

  18. 18
  19. 19
  20. 20