نتائج البحث - "гепатоциты"

المساهمون: This study did not receive financial support from third parties., Данное исследование не имело финансовой поддержки от сторонних организаций.

المصدر: Pharmacy & Pharmacology; Том 10, № 6 (2022); 589-600 ; Фармация и фармакология; Том 10, № 6 (2022); 589-600 ; 2413-2241 ; 2307-9266 ; 10.19163/2307-9266-2022-10-6

مصطلحات موضوعية: гепатоциты, lipid peroxidation, antioxidant system, total nitric oxide metabolites, endothelial dysfunction, L-arginine, L-NAME, kidney function, cholesterol, hepatocytes, перекисное окисление липидов, антиокислительная система, суммарные метаболиты оксида азота, дисфункция эндотелия, L-аргинин, функция почек, холестерин

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/1223/937; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/1223/938; Boskabady M., Marefati N., Farkhondeh T., Farzaneh Sh., Farshbaf A., Boskabady M.H. The effect of environmental lead exposure on human health and the contribution of inflammatory mechanisms, a review // Environment. International – 2018. – Vol. 120. – P. 404–420. DOI:10.1016/j.envint.2018.08.013; Levin S.M., Goldberg M. Clinical evaluation and management of lead-exposed construction workers // Am. J. Ind. Med. – 2000. – Vol. 37. – Р. 23–43. DOI:10.1002/(sici)1097-0274(200001)37:13.0.co;2-u; de Souza I.D., de Andrade A.S., Dalmolin R.J.S. Lead-interacting proteins and their implication in lead poisoning // Crit. Rev. Toxicol. – 2018. – Vol. 48, No. 5. – Р. 375–386. DOI:10.1080/10408444.2018.1429387; Ericson B., Gabelaia L., Keith J., Kashibadze T., Beraia N., Sturua L., Kazzi Z. Elevated Levels of Lead (Pb) Identified in Georgian Spices // Ann. Glob. Health. – 2020. – Vol. 86, No. 1. – Art. ID: 124. DOI:10.5334/aogh.3044; Mani M.S., Kabekkodu S.P., Joshi M.B., Dsouza H.S. Ecogenetics of lead toxicity and its influence on risk assessment // Hum. Exp. Toxicol. – 2019. – Vol. 38, No. 9. – Р. 1031–1059. DOI:10.1177/0960327119851253; Obeng-Gyasi E. Sources of lead exposure in various countries // Rev. Environ. Health. – 2019. – Vol. 34, No. 1. – Р. 25–34. DOI:10.1515/reveh-2018-0037; Wronska-Nofer T., Pisarska A., Trzcinka-Ochocka M., Halatek T., Stetkiewicz J., Braziewicz J., Nofer J.R., Wasowicz W. Scintigraphic assessment of renal function in steel plant workers occupationally exposed to lead // J. Occup. Health. – 2015. – Vol. 57, No. 2. – Р. 91–99. DOI:10.1539/joh.14-0115-OA; Alwaleedi S.A. Haemato-biochemical changes induced by lead intoxication in male and female albino mice // Int. J. Recent Sci. Res. – 2015. – Vol. 6, Issue 5. – Р. 3999–4004.; López-Vanegas N.C., Hernández G., Maldonado-Vega M., Calderón-Salinas J.V. Leukocyte apoptosis, TNF-α concentration and oxidative damage in lead-exposed workers // Toxicol. Appl. Pharmacol. – 2020. – Vol. 391. – Art. ID: 114901. DOI:10.1016/j.taap.2020.114901; Omobowale T.O., Oyagbemi A.A., Akinrinde A.S., Saba A.B., Daramola O.T., Ogunpolu B.S., Olopade J.O. Failure of recovery from lead induced hepatotoxicity and disruption of erythrocyte antioxidant defence system in Wistar rats // Environ. Toxicol. Pharmacol. – 2014. – Vol. 37, No. 3. – Р. 1202–1211. DOI:10.1016/j.etap.2014.03.002; Nakhaee S., Amirabadizadeh A., Brent J., Mehrpour O. Impact of chronic lead exposure on liver and kidney function and haematologic parameters // Basic Clin. Pharmacol. Toxicol. – 2019. – Vol. 124, No. 5. – Р. 621–628. DOI:10.1111/bcpt.13179; Wang H., Huang P., Zhang R., Feng X., Tang Q., Liu S., Wen F., Zeng L., Liu Y., Wang T., Ma L. Effect of lead exposure from electronic waste on haemoglobin synthesis in children // Int. Arch. Occup. Environ. Health. – 2021. – Vol. 94, No. 5. – Р. 911–918. DOI:10.1007/s00420-020-01619-1; Соседова Л.М., Вокина В.А., Капустина Е.А. Фетальное программирование в формировании когнитивных нарушений при моделировании свинцовой интоксикации белых крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. – 2018. – Т. 166. № 11. – С. 559–564.; Obeng-Gyasi E., Armijos R.X., Weigel M.M., Filippelli G.M., Sayegh M.A. Cardiovascular-related outcomes in U.S. adults exposed to lead // Int. J. Environ. Res. Public Health. – 2018. – Vol. 15, No. 4. – Art. ID: 759. DOI:10.3390/ijerph15040759; Tejero J., Shiva S., Gladwin M.T. Sources of Vascular Nitric Oxide and Reactive Oxygen Species and Their Regulation // Physiol Rev. – 2019. – Vol. 99, No. 1. – Р. 311-379. DOI:10.1152/physrev.00036.2017; Yücebilgiç G., Bilgin R., Tamer L., Tükel S. Effects of lead on Na(+)-K(+) ATPase and Ca(+2) ATPase activities and lipid peroxidation in blood of workers // Int. J. Toxicol. – 2003. – Vol. 22, No. 2. – Р. 95–97. DOI:10.1080/10915810305096; Satarug S., C. Gobe G., A. Vesey D., Phelps K.R. Cadmium and Lead Exposure, Nephrotoxicity, and Mortality // Toxics. – 2020. – Vol. 8, No. 4. – Art. ID: 86. DOI:10.3390/toxics8040086; Asakawa T., Matsushita S. Coloring conditions of thiobarbituric acid test, for detecting lipid hydroperoxides // Lipids. – 2006. – Vol. 15. – Р. 137–140. DOI:10.1007/BF02540959; Королюк М.А., Иванова Л.И., Майорова И.Г. Метод определения активности каталазы // Лабораторное дело. – 1988. – № 1. – С. 16 19.; Сирота Т.В. Новый подход в исследовании аутоокисления адреналина и использование его для измерения активности супероксиддисмутазы // Вопросы медицинской химии. – 1999. – № 3. – С. 263 272.; Афашагова М.М., Маржохова М.Ю., Ахохова А.В. Cодержание церулоплазмина в крови больных рожистым воспалением // Фундаментальные исследования. – 2005. – № 5. – С. 103-104.; Метельская В.А., Гуманова Н.Г. Скрининг-метод определения уровня метаболитов оксида азота в сыворотке крови человека // Клиническая лабораторная диагностика. – 2005. – № 6. – С. 15-18.; Наточин Ю.В., Кутина А.В. Новый подход к интегративной функциональной характеристике почек при разных типах диуреза // Нефрология. – 2009. – Т. 13, № 3. – С. 19–23. DOI:10.24884/1561-6274-2009-13-3-19-23; Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. – 1951. – Vol. 193. No. 1. – P. 265–275.; Zhang G., Han S., Wang L., Yao Y., Chen K., Chen S. A Ternary Synergistic eNOS Gene Delivery System Based on Calcium Ion and L-Arginine for Accelerating Angiogenesis by Maximizing NO Production // Int J Nanomedicine. – 2022. – Vol. 2, No.17. – Р. 1987–2000. DOI:10.2147/IJN.S363168; Fan M., Gao X., Li L., Ren Z., Lui L.M.W, McIntyre R.S., Teopiz K.M., Deng P., Cao B. The Association Between Concentrations of Arginine, Ornithine, Citrulline and Major Depressive Disorder: A Meta-Analysis // Front Psychiatry. – 2021. – Vol. 12. – Art. ID: 686973. DOI:10.3389/fpsyt.2021.686973; Koo B.H., Lee J., Jin Y., Lim H.K., Ryoo S. Arginase inhibition by rhaponticin increases L-arginine concentration that contributes to Ca2+-dependent eNOS activation // BMB Rep. – 2021. – Vol. 54, No. 10. – Р. 516–521. DOI:10.5483/BMBRep.2021.54.10.053; Дзугкоев С.Г., Дзугкоева Ф.С., Можаева И.В., Маргиева О.И. Анализ изменений окислительно-восстановительных реакций при интоксикации хлоридом никеля и ингибитором NO-синтазы // Медицинский вестник Северного Кавказа. – 2021. – № 4. – С. 422–424. DOI:10.14300/mnnc.2021.16102; Тарасова О.С., Гайнуллина Д.К. Rho-киназа как ключевой участник регуляции тонуса сосудов в норме и при сосудистых расстройствах // Артериальная гипертензия. – 2017. – Т. 23, № 5. – С. 383–394. DOI:10.18705/1607-419X-2017-23-5-383-394; Jamwal S., Sharma S. Vascular endothelium dysfunction: a conservative target in metabolic disorders // Inflamm. Res. – 2018. – Vol. 67, No. 5. – Р. 391–405. DOI:10.1007/s00011-018-1129-8; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/1223

الاتاحة: https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/1223
https://doi.org/10.19163/2307-9266-2022-10-6-589-600

View record in BASE

12

Academic Journal

Роль стволового потенциала в механизмах регенерации печени (обзор литературы)

المؤلفون: Антонова Елена Ивановна, Научно-исследовательский центр фундаментальных и прикладных проблем биоэкологии и биотехнологии ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный педагогический университет им. И.Н. Ульянова», Elena I. Antonova, Nauchno-issledovatel'skii tsentr fundamental'nykh i prikladnykh problem bioekologii i biotekhnologii FGBOU VO "Ul'ianovskii gosudarstvennyi pedagogicheskii universitet im. I.N. Ul'ianova", Муравикова Екатерина Андреевна, Ekaterina A. Muravikova, Омарова Дина Ирмековна, ФГБОУ ВО «Омский государственный педагогический университет», Dina I. Omarova, FSBEI HE “Omsk State Pedagogical University”

المصدر: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; ; Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии

مصطلحات موضوعية: гепатоциты, печень, регенерация, овальные клетки, малые гепатоциты, стволовый потенциал печени, гемопоэтические стволовые клетки, мезенхимные стволовые клетки, ангиогенные стволовые клетки

وصف الملف: text/html

Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907561-33-5; https://phsreda.com/e-articles/10364/Action10364-102536.pdf; Киясов А.П. Овальные клетки предполагаемые стволовые клетки печени или гепатобласты? / А.П. Киясов, А.А. Гумерова, М.А. Титова // Гены и клетки. – 2006. – №2 (4). – С. 55–58.; Курабекова Р.М. Мобилизация гемопоэтических стволовых клеток при трансплантации и резекции печени / Р.М. Курабекова, О.М. Цирульникова, О.П. Шевченко // Вестник трансплантологии и искусственных органов. – 2010. – №12 (4). – С. 86–92.; Лызиков А.Н. Механизмы регенерации печени в норме и при патологии / А.Н. Лызиков, А.Г. Скуратов, Б.Б. Осипов // Проблемы здоровья и экологии. – 2015. – №1. – С. 4–9.; Лызиков А.Н. Роль стволовых клеток в регенерации печени и перспективы их использования в лечении печеночной недостаточности (обзор литературы) / А.Н. Лызиков, А.Г. Скуратов, Е.В. Воропаев, А.А. Призенцов // Проблемы здоровья и экологии. – 2012. – №2 (32). – С. 7–13.; Онищенко Н.А. Синусоидальные клетки печени и клетки костного мозга как компоненты единой функциональной системы регуляции восстановительного морфогенеза в здоровой и поврежденной печени / Н.А. Онищенко, А.В. Люндуп, Р.В. Деев [и др.] // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. – 2011. – №2 (6). – С. 78–92.; Терских В.В. Стволовые клетки: эволюция концепции / В.В. Терских, А.В. Васильев, Е.А. Воротеляк // Вестник дерматологии и венерологии. – 2005. – №2. – С. 4–8.; Addante A., González-Corralejo C., Roncero C., Lazcanoiturburu N., García-Sáez J., Herrera B., Sánchez A. BMP9 Promotes an Epithelial Phenotype and a Hepatocyte-like Gene Expression Profile in Adult Hepatic Progenitor Cells. // Cells. – 2022. – №11 (3). – P. 365.; Afshari, A., Shamdani, S., Uzan, G.; Naserian, S., Azarpira, N. Different approaches for transformation of mesenchymal stem cells into hepatocyte-like cells // Stem cell research & therapy. – 2020. – №11.; Alemany, A., Florescu, M., Baron, C. S., Peterson-Maduro, J. & van Oudenaarden, A. Whole-organism clone tracing using single-cell sequencing // Nature. – 2018. – №556. – С. 108–112.; Al-Shafie, Tamer A., et al. A cost-saving technique of human somatic liver stem cells isolation for ex vivo propagation and characterization // International Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences (IJPBCS). – 2015. – №4. – С. 41–53.; Andres SF, Santoro MA, Mah AT, Keku JA, Bortvedt AE, Blue RE, Lund PK. Deletion of intestinal epithelial insulin receptor attenuates high-fat diet-induced elevations in cholesterol and stem, enteroendocrine, and Paneth cell mRNAs // American journal of physiology. Gastrointestinal and liver physiology. – 2015. – №308(2). – С. 100–111.; Asrani SK, Devarbhavi H, Eaton J, Kamath PS. Burden of liver diseases in the world // Journal of hepatology. – 2019. – №70 (1). – С. 151–171.; Bataller R., Gao B. Liver fbrosis in alcoholic liver disease // Seminars in liver disease. – 2015. – №35 (2). – С. 146–156.; Bian D, Wu Y, Song G, Azizi R, Zamani A. The application of mesenchymal stromal cells (MSCs) and their derivative exosome in skin wound healing: a comprehensive review // Stem Cell Research & Therapy. – 2022. – № Jan 13(1).; Blau BJ, Miki T. The role of cellular interactions in the induction of hepatocyte polarity and functional maturation in stem cell-derived hepatic cells // Differentiation. – 2019. – №106. – С. 42–48.; Bone marrow as a potential source of hepatic oval cells / B.E. Petersen [et al.] // Science. – 1999. – № 284. – С. 1168–1170.; Cerny J, Quesenberry PJ. Chromatin remodeling and stem cell theory of relativity. Journal of cellular physiology. – 2004. – №201 (1). – С. 1–16.; Chaudhari P, Tian L, Deshmukh A, Jang YY. Expression kinetics of hepatic progenitor markers in cellular models of human liver development recapitulating hepatocyte and biliary cell fate commitment // Experimental biology and medicine (Maywood). – 2016. – №241 (15). – С. 1653–62.; DeLeve LD, Maretti-Mira AC. Liver sinusoidal endothelial cell: an update // Seminars in liver disease. – 2017. – №37 (4). – С. 377–387.; Dominici M., Le Blanc K.; Mueller I., Slaper-Cortenbach I., Marini F., Krause D., Deans R., Keating A., Prockop D., Horwitz E. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells // The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. – 2006. – №8. – С. 315–317.; Eckfeldt CE, Mendenhall EM, Flynn CM, Wang TF, Pickart MA, Grindle SM, Ekker SC, Verfaillie CM. Functional analysis of human hematopoietic stem cell gene expression using zebrafish // PLoS biology. – 2005. – №3 (8). – С. 1449–1458.; Eggenhofer E, Luk F, Dahlke MH, Hoogduijn MJ. The life and fate of mesenchymal stem cells // Frontiers in immunology. – 2014. – №5.; Fukuda T, Takayama K, Hirata M, Liu YJ, Yanagihara K, Suga M, Mizuguchi H, Furue MK. Isolation and expansion of human pluripotent stem cell-derived hepatic progenitor cells by growth factor defined serum-free culture conditions // Experimental cell research. – 2017. – №352 (2). – С. 333–345.; Galun E, Axelrod JH. The role of cytokines in liver failure and regeneration: potential new molecular therapies // Biochimica et biophysica acta. – 2002. – №1592 (3). – С. 345–58.; Huang Ru, Zhang Xin, Gracia-Sancho Jordi, Wei-Fen Xie Liver regeneration: Cellular origin and molecular mechanisms // Liver international: official journal of the International Association for the Study of the Liver. – 2022.; Ikehara S. A new concept of stem cell disorders and their new therapy // Journal of Hematotherapy and Stem Cell Research. – 2003. – №12 (6). – С. 643–53.; Iwanaka T., Yamaza T., Sonoda S., Yoshimaru K., Matsuura T., Yamaza H.; Ohga, S., Oda, Y., Taguchi T. A model study for the manufacture and validation of clinical-grade deciduous dental pulp stem cells for chronic liver fibrosis treatment // Stem cell research & therapy. – 2020. – №11.; Jaramillo M, Yeh H, Yarmush ML, Uygun BE. Decellularized human liver extracellular matrix (hDLM)-mediated hepatic differentiation of human induced pluripotent stem cells (hIPSCs) // Journal of tissue engineering and regenerative medicine. – 2018. – №12 (4). – С. 1962–1973.; Kalhor R., Kalhor K., Mejia L., Leeper K., Graveline A., Mali P. & Church G. M. Developmental barcoding of whole mouse via homing crispr // Science. – 2018. – №361.; Kang SJ, Park YI, Hwang SR, Yi H, Tham N, Ku HO, Song JY, Kang HG. Hepatic population derived from human pluripotent stem cells is effectively increased by selective removal of undifferentiated stem cells using YM155 // Stem cell research & therapy. – 2017. – №8 (1).; Keller P. J., Schmidt A. D., Wittbrodt J. & Stelzer E.H. Reconstruction of zebrafish early embryonic development by scanned light sheet microscopy // Science. – 2008. – №322. – С. 1065–1069.; Koçak H. Liver regeneration: potential roles of mesenchymal stem cells and toll like receptors // Molecular Biology and Genetics Supervisors. – 2008. – 89 с.; Koike H, Taniguchi H. Characteristics of hepatic stem/progenitor cells in the fetal and adult liver // Journal of hepatobiliary pancreatic sciences. – 2012. – №19 (6). – С. 587–93.; Kordes C, Sawitza I, Götze S, Schumacher E, Häussinger D. Beyond fibrosis: stellate cells as liver stem cells // Zeitschrift für Gastroenterologie. – 2015. – №53 (12). – С. 1425–31.; Lapidot T, Petit I. Current understanding of stem cell mobilization: the roles of chemokines, proteolytic enzymes, adhesion molecules, cytokines, and stromal cells // Experimental hematology. – 2002. – №30 (9). – С. 973–81.; Lee J., Choi J., Kang S., Kim J., Lee R., So S., Yoon Y.I., Kirchner V.A., Song G.W., Hwang S. [et al.] Hepatogenic Potential and Liver Regeneration Effect of Human Liver-derived Mesenchymal-Like Stem Cells // Cells. – 2020. – №9.; Li X. Levels of hepatic Th17 cells and regulatory T cells upregulated by hepatic stellate cells in advanced HBV-related liver fibrosis / X. Li, Y. Su, X. Hua, C. Xie, J. Liu, Y. Huang, L. Zhou, M. Zhang, X. Li, Z. Gao // Journal of translational medicine. – 2017. – №15 (1). – С. 75.; Li T., Xia M., Gao Y., Chen Y., Xu Y. Human umbilical cord mesenchymal stem cells: An overview of their potential in cell-based therapy // Expert opinion on biological therapy. – 2015. – №15. – С. 1293–1306.; Liu WH, Ren LN, Chen T, You N, Liu LY, Wang T, Yan HT, Luo H, Tang LJ. Unbalanced distribution of materials: the art of giving rise to hepatocytes from liver stem/progenitor cells // Journal of cellular and molecular medicine. – 2014. – №18 (1). – С. 1–14.; López-luque J., Fabregat I. Revisiting the liver: from development to regeneration – what we ought to know! // The International Journal of Developmental Biology. – 2018. – №62. – С. 441–451.; Lu, R., Czechowicz, A., Seita, J., Jiang, D. & Weissman, I. L. Clonal-level lineage commitment pathways of hematopoietic stem cells in vivo // Proceedings of the National Academy of Sciences. – 2019. – №116 (4). – С. 1447–1456.; Ma H., Yang Y., Sun Y., Ma M. Studies of granulocyte colony-stimulating factor (GCSF) in renal stem cells regeneration // Stem Cell. – 2011. – №2 (1). – С. 36–65.; McDole K., Guignard L., Amat F., Berger A., Malandain G., Royer L.A., Turaga S.C., Branson K. & Keller P. J. In toto imaging and reconstruction of post-implantation mouse development at the single-cell level // Cell. – 2018. – №175 (3). – С. 859–876; McKenna A., Findlay G.M., Gagnon J.A., Horwitz M.S., Schier A.F. & Shendure J. Whole-organism lineage tracing by combinatorial and cumulative genome editing // Science. – 2016. – №353.; Michalopoulos GK, Khan Z. Liver stem cells: experimental fndings and implications for human liver disease // Gastroenterology. – 2015. – №149 (4). – С. 876–882.; Mitaka T., Kojima T., Mizuguchi T., Mochizuki Y. Growth and maturation of small hepatocytes isolated from adult rat liver // Biochemical and biophysical research communications. – 1995. – №214 (2). – С. 310–317.; Müller P., Lemcke H., David R. Stem Cell Therapy in Heart Diseases – Cell Types, Mechanisms and Improvement Strategies // Cellular physiology and biochemistry. – 2018. – №48 (6). – С. 2607–2655.; Nguyen L.V., Makarem M., Carles A., Moksa M., Kannan N., Pandoh P., Eirew P., Osako T., Kardel M., Cheung A.M. [et al.] Clonal analysis via barcoding reveals diverse growth and differentiation of transplanted mouse and human mammary stem cells // Cell Stem Cell. – 2014. – №14 (2). – С. 253–263.; Overi D., Carpino G., Cardinale V. [et al.] Contribution of resident stem cells to liver and biliary tree regeneration in human diseases // International Journal of Molecular Sciences. – 2018. – №19.; Paku S., Dezso K., Kopper L., Nagy P. Immunohistochemical analysis of cytokeratin 7 expression in resting and proliferating biliary structures of rat liver // Hepatology. – 2005. – №42 (4). – P. 863–870.; Palumbo R, Bianchi ME. High mobility group box 1 protein, a cue for stem cell recruitment // Biochemical pharmacology. – 2004. – №68 (6). – С. 1165–1170.; Pan G, Liu J. Small molecules and extrinsic factors promoting differentiation of stem cells into insulin-producing cells // Ann Endocrinol (Paris). – 2019. – №80 (2). – С. 128–133.; Pittenger M.F., Discher D.E., Peault B.M., Phinney D.G., Hare J.M., Caplan A.I. Mesenchymal stem cell perspective: Cell biology to clinical progress // The New England journal of medicine. – 2019. – №4. – С. 22.; Rak J., Foster K., Potrzebowska K., Talkhoncheh MS, Miharada N., Komorowska K., Torngren T., Kvist A., Borg Å., Svensson L., Bonnet D., Larsson J. Cytohesin 1 regulates homing and engraftment of human hematopoietic stem and progenitor cells // Blood. – 2017. – №129 (8). – С. 950–958.; Roch A., Giger S., Girotra M., Campos V., Vannini N., Naveiras O., Gobaa S. & Lutolf M.P. Single-cell analyses identify bioengineered niches for enhanced maintenance of hematopoietic stem cells // Nature Communications. – 2017. – №8 (1). – С. 221.; Romano M., De Francesco F., Pirozzi G., Gringeri E., Boetto R., Di Domenico M., Zavan B., Ferraro GA, Cillo U. Expression of cancer stem cell biomarkers as a tool for a correct therapeutic approach to hepatocellular carcinoma // Oncoscience. – 2015. – №2 (5). – С. 443–456.; Santos AJM, Lo YH, Mah AT, Kuo CJ. The Intestinal Stem Cell Niche: Homeostasis and Adaptations // Trends in cell biology. – 2018. – №28 (12). – С. 1062–1078.; Schmelzer E. Hepatic progenitors of the fetal liver: Interactions with hematopoietic stem cells // Differentiation. – 2019. – №106. – С. 9–14.; Sidler Pfändler MA, Höchli M, Inderbitzin D, Meier PJ, Stieger B. Small hepatocytes in culture develop polarized transporter expression and differentiation // Journal of cell science. – 2004. – №117. – С. 4077–4087.; Skurikhin E.G., Zhukova M.A., Pan E.S., Ermakova N.N., Pershina O.V., Pakhomova A.V., Putrova O.D., Sandrikina L.A., Krupin V.A., Kogai L.V., Rebrova T.Yu., Afanas’ev S.A., and Dygai A.M. Age-Related Features of the Response of the Liver and Stem Cells during Modeling of Liver Cirrhosis // Cell Technologies in Biology and Medicine. – 2021. – №1. – С. 127–133.; Spee B., Carpino G., Schotanus B. A., Katoonizadeh A., Borght S. V., Gaudio E., Roskams T. Characterisation of the liver progenitor cell niche in liver diseases: potential involvement of Wnt and Notch signalling. // Gut. – 2010. – №59 (2). – P. 247–257.; Stumpf PS, Arai F, MacArthur BD. Heterogeneity and 'memory' in stem cell populations // Physical biology. – 2020. – №17 (6).; Szücs A, Paku S, Sebestyén E, Nagy P, Dezső K. Postnatal, ontogenic liver growth accomplished by biliary/oval cell proliferation and differentiation // PLoS One. – 2020. – №15 (5).; Tarnowski M., Koryciak-Komarska H., Czekaj P., Sebesta R., Czekaj T.M., Urbanek K., Likus W., Malinowska-Kolodziej I., Plewka D., Nowaczyk-Dura G., Wiaderkiewicz R., Sieron A.L. The comparison of multipotential for differentiation of progenitor mesenchymal-like stem cells obtained from livers of young and old rats. // Folia Histochemica et Cytobiologica. – 2007. – №45 (3). – P. 245–54.; Toi M, Hayashi Y, Murakami I. Hepatic stellate cells derived from the nestin-positive cells in septum transversum during rat liver development // Medical molecular morphology. – 2018. – №51 (4). – С.199–207.; Tsao MS, Smith JD, Nelson KG, Grisham JW. A diploid epithelial cell line from normal adult rat liver with phenotypic properties of 'oval' cells. Exp Cell Res. 1984 Sep; 154 (1) : 38–52. – doi:10.1016/0014–4827(84)90666–9. PMID: 6468534.; Tsolaki E, Yannaki E. Stem cell-based regenerative opportunities for the liver: State of the art nd beyond // World journal Gastroenterol. – 2015. – №21 (43). – С. 12334–50.; Van Haele M, Roskams T. Hepatic Progenitor Cells: An Update // Gastroenterology clinics of North America. – 2017. – №46(2). – С. 409–420.; Vestentoft P.S. Development and molecular composition of the hepatic progenitor cell niche. // Danish medical journal. – 2013. – №60 (5).; Walkup, M.H., Gerber, D.A. Hepatic stem cells: in search of // Stem Cells. – 2006. – №24. – С. 1833–1840.; Wang B, Zhao L, Fish M, Logan CY, Nusse R. Self-renewing diploid Axin2(+) cells fuel homeostatic renewal of the liver // Nature. – 2015. – №524. – С. 180–185.; Wang J., Sun M., Liu W., Li Y., Li M. Stem Cell-Based Therapies for Liver Diseases: An Overview and Update // Tissue engineering and regenerative medicine. – 2019. – №16. – С. 107–118.; Wei M. Nanomaterials modulate stem cell differentiation: biological interaction and underlying mechanisms / M. Wei, S. Li, W. Le // Nanobiotechnology. – 2017. – Vol. 15 (1). – P. 75.; Wilson J.W. and Leduc, E.H. (1958). Role of cholangioles in restoration of the liver of the mouse after dietary injury. J. Pathol. Bacteriol. 76, 441–449.; Yanger K., Zong Y., Maggs L.R., Shapira S.N., Maddipati R., Aiello N.M., Thung S.N., Wells R.G., Greenbaum L.E., and Stanger B.Z. Robust cellular reprogramming occurs spontaneously during liver regeneration // Genes & Development, 2013. – №27 (7). – С. 719–724.; Yates C.A., Ford M.J. & Mort R.L. (2017), A multi-stage representation of cell proliferation as a markov process // Bulletin of mathematical biology. – 2017. – №79 (12). – С. 2905–2928; Zachar L, Bačenková D, Rosocha J. Activation, homing, and role of the mesenchymal stem cells in the inflammatory environment // Journal of inflammation research. – 2016. – №9. – С. 231–240.; Zakrzewski W, Dobrzyński M, Szymonowicz M, Rybak Z. Stem cells: past, present, and future // Stem cell research & therapy. – 2019. – №10(1).; Zhang B., Wu X., Li J., Ning A., Zhang B., Liu J., Song L., Yan C., Sun X., Zheng K., Wu Z. Hepatic progenitor cells promote the repair of schistosomiasis liver injury by inhibiting IL-33 secretion in mice. // Stem cell research and therapy. – 2021. – №12 (1). – P. 546.; Zhang L, Theise N, Chua M, Reid LM. The stem cell niche of human livers: symmetry between development and regeneration // Hepatology. – 2008. – №48 (5). – С. 1598–607.; Zhang RR, Zheng YW, Li B., Nie YZ, Ueno Y., Tsuchida T., Taniguchi H. Hepatic stem cells with self-renewal and liver repopulation potential are harbored in CDCP1-positive subpopulations of human fetal liver cells // Stem cell research & therapy. – 2018. – №9 (1).; Zhou W., Liu Q., Xu B. Improvement of bone defect healing in rats via mesenchymal stem cell supernatant // Experimental and therapeutic medicine. – 2018. – №15 (2). – С.1500–1504.; Zhou WC, Zhang QB, Qiao L. Pathogenesis of liver cirrhosis // World journal of gastroenterology. – 2014. – №20 (23). – С. 7312–7324.; Zimmermann A. Liver Cancer: Stem and Progenitor Cells // Tumors and Tumor-Like Lesions of the Hepatobiliary Tract. – 2017. – С. 3–26.; https://phsreda.com/files/Books/62961e2443a68.jpg?req=102536; https://phsreda.com/article/102536/discussion_platform

الاتاحة: https://phsreda.com/article/102536/discussion_platform
https://phsreda.com/files/Books/62961e2443a68.jpg?req=102536

View record in BASE

13

Academic Journal

Цитоархитектоника печени и молекулярные механизмы регенераторного потенциала (обзор литературы) ; Liver Cytoarchitectonics and Molecular Mechanisms of Regenerative Potential (Literature Review)

المؤلفون: Антонова Елена Ивановна, Научно-исследовательский центр фундаментальных и прикладных проблем биоэкологии и биотехнологии ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный педагогический университет им. И.Н. Ульянова», Elena I. Antonova, Nauchno-issledovatel'skii tsentr fundamental'nykh i prikladnykh problem bioekologii i biotekhnologii FGBOU VO "Ul'ianovskii gosudarstvennyi pedagogicheskii universitet im. I.N. Ul'ianova", Муравикова Екатерина Андреевна, Ekaterina A. Muravikova, Омарова Дина Ирмековна, ФГБОУ ВО «Омский государственный педагогический университет», Dina I. Omarova, FSBEI HE “Omsk State Pedagogical University”

المصدر: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; ; Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии

مصطلحات موضوعية: гепатоциты, печеночный ацинус, клетки Купфера, цитокоммуникации, цитотипы печени, звездчатые клетки Ито, Pit-клетки, овальные клетки, прогениторные клетки, малые гепатоциты

وصف الملف: text/html

Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907561-33-5; https://phsreda.com/e-articles/10364/Action10364-102497.pdf; Алакаева И.Б. Особенности гемопоэза во внутриутробном периоде и влияние на него врожденных инфекций / И.Б. Алакаева, Н.В. Непокульчицкая, Г.А. Самсыгина, Т.А. Высоцкая // Педиатрия. Журнал им. Г. Н. Сперанского, 2009. – №4 (87). – С. 122–125.; Антонова Е.И. Пути программируемой клеточной гибели гепатоцитов и соотношения цитотипов печени рыб и амфибий / Е.И. Антонова, Д.И. Омарова, О.З. Мкртчан, В.Е. Высокогорский, Л.В. Фоменко // Вестник Омского государственного аграрного университета. – 2016. – №4 (24). – С. 75–81.; Антонова Е.И. Реактивность и пластичность тканевых компонентов печени в сравнительном ряду позвоночных в норме и после гипертермии [Текст]: дис. … проф. биол. наук: 03.00.25: защищена 18.12.2009: утв. 18.12.2009 / Е.И. Антонова. – Астрахань, 2009. – 219 с. – С. 202–213. 003481476; Бондарь И.А. Гипогликемический синдром при эпителиоидной гемангиоэндотелиоме печени, успешное лечение – трансплантация печени от живого родственного донора / И.А. Бондарь, Л.И. Чесноченко, О.Ю. Шабельникова, И.А. Поршенников // Проблемы эндокринологии. – 2019. – №1 (65). – С. 50–56.; Газатова Н.Д. Особенности клеточного иммунитета и регенерации при алкогольном фиброзе печени / Н.Д. Газатова, К.А. Юрова, Д.В. Гаврилов, М.А. Вульф, В.В. Новицкий, Н.М. Тодосенко, Л.С. Литвинова // Бюллетень сибирской медицины. – 2019. – №18 (1). – С. 175–189.; Газизов И.М. Изменения микроструктуры печени после частичной гепатэктомии у крыс / И.М. Газизов, М.С. Калигин, Д.И. Андреева, Т.С. Йылмаз, А.А. Гумерова, А.П. Киясов // Гены и клетки. – 2013. – №3 (8). – С. 101–105.; Гумерова А.А. Могут ли перисинусоидальные клетки быть региональными стволовыми (прогениторными) клетками печени? / А.А. Гумерова, А.П. Киясов // Гены и клетки. – 2010. – №1 (5). – С. 33–40.; Гумерова А.А. Участие клеток Ито в гистогенезе и регенерации печени / А.А. Гумерова, А.П. Киясов, М.С. Калигин, И.М. Газизов, С.Р. Абдулхаком, Д.И. Андреева, М.А. Титова, Т.С. Сметанникова // Клеточная транспланталогия и тканевая инженерия. – 2007. – №4 (8). – С. 39–46.; Ельчанинов А.В. Регуляция пролиферации гепатоцитов после субтотальной резекции печени крыс / А.В. Ельчанинов, А.В. Макаров, И.Г. Воробьева, Е.Ю. Кананыхина, А.В. Лохонина, B.В. Глинкина, Г.Б. Большакова, Д.В. Гольдштейн, Т.Х. Фатхудинов // Гены и клетки. – 2018. – №4 (13). – С. 37–42.; Киясов А.П. Овальные клетки предполагаемые стволовые клетки печени или гепатобласты? / А.П. Киясов, А.А. Гумерова, М.А. Титова // Гены и клетки. – 2006. – №2 (4). – С. 55–58.; Кочетков А.И. Патогенетические механизмы лекарственных повреждений печени / А.И. Кочетков, Е.С. Акимова, О.Д. Остроумова // Сибирское медицинское обозрение. – 2020. – №6. – С. 36–50.; Красовский В.С. Биомаркеры иммунного гомеостаза в печени / В.С. Красовский, А.К. Ажикова, Л.Г. Септюрова, Б.В. Фельдман, М.А. Самотруева // Астраханский медицинский журнал. – 2020. – №1 (15). – С. 73–84.; Лызиков А.Н. Механизмы регенерации печени в норме и при патологии / А.Н. Лызиков, А.Г. Скуратов, Б.Б. Осипов // Проблемы здоровья и экологии. – 2015. – №1 (43). – С. 4–9.; Могилевец Э.В. Методы стимуляции регенерации при циррозе печени / Э.В. Могилевец, П.В. Гарелик, Н.И. Батвиников // Новости хирургии. – 2013. – №3 (21). – С. 103–109.; Онищенко Н.А. Синусоидальные клетки печени и клетки костного мозга как компоненты единой функциональной системы регуляции восстановительного морфогенеза в здоровой и поврежденной печени / Н.А. Онищенко, А.В. Люндуп, Р.В. Деев, М.Ю. Шагидулин, М.Е. Крашенинников // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. – 2011. – №2 (6). – С. 78–92.; Рахмонов З.М. Морфофункциональные особенности клеток печени / З.М. Рахмонов, Х.Н. Рахмонова, У.У. Содиков, Ж.С. Фаттоев // Scientific progress. – 2021. – №2. – С. 74–77.; Семенова Н.Ю. Биология ниши гемопоэтических стволовых клеток / Н.Ю. Семенова, С.С. Бессмельцев, В.И. Ругаль // Клиническая онкогематология. – 2014. – №7 (4). – С. 501–510.; Цуканов В.В. Бремя цирроза печени в современном мире / В.В. Цуканов, А.В. Васютин, Ю.Л. Тонких // Доктор.Ру. – 2021. – №4 (20). – С. 21–25.; Цыркунов В.М. Клиническая цитология печени: звездчатые клетки Ито / В.М. Цыркунов, В.П. Андреев, Р.И. Кравчук, И.А. Кондратович // Журнал Гродненского государственного медицинского университета. – 2016. – №4 (14). – С. 90–99.; Цыркунов В.М. Клиническая цитология печени: клетки Купфера / В.М. Цыркунов, В.П. Андреев, Р.И. Кравчук, Н.И. Прокопчик // Журнал Гродненского государственного медицинского университета. – 2017. – №4 (15). – С. 419–431.; Цыркунов В.М. Клиническая морфология печени: фиброз / В.М. Цыркунов, Н.И. Прокопчик, В.П. Андреев, Р.И. Кравчук, С.А. Черняк // Гепатология и гастроэнтерология. – 2018. – №1. – С. 39–51.; Черноусов А.Ф. Регенерация цирротической печени в эксперименте / А.Ф. Черноусов, Т.В. Хоробрых, Р.В. Карпова, Т.П. Некрасова // Медицинский вестник юга России. – 2014. – №2. – С. 38–43.; Чернух А.М. Феномен перераспределения крови в системе микроциркуляции печени / А.М. Чернух // Вест. АН. СССР. – 1976. – №6. – С. 74–84.; Шодиева Г.Р. Роль цитокинов у больных циррозом печени вирусной этиологии / Г.Р. Шодиева // Вестник науки и образования. – 2020. – №10–4 (88). – С. 104–106.; Штейн Г.И. О существовании субпопуляции гепатоцитов, синтезирующих гликоген с разными скоростями / Г.И. Штейн // Цитология. I съезд общества клеточной биологии. – 2003. – №9 (45). – С. 950.; Щеглев А.И. Структурно-метаболическая характеристика синусоидальных клеток печени / А.И. Щеглев, О.Д. Мишнев // Успехи современной биологии. – 1991. – №3 (1). – С. 73–82.; Элбакидзе Г.М. Механизмы протекторного действия активированных эндотоксином клеток Купфера на гепатоциты / Г.М. Элбакидзе // Актуальные вопросы физиологии. – 2012. – №5. – С. 48–54.; Элбакидзе Г.М. Внутриорганные и внутритканевые механизмы регуляторных воздействий клеток Купфера на гепатоциты / Г.М. Элбакидзе, А.Г. Меденцев // Актуальные вопросы физиологии. – 2013. – №2. – С. 50–55.; Addante A., González-Corralejo C., Roncero C., Lazcanoiturburu N., García-Sáez J., Herrera B., Sánchez A. BMP9 Promotes an Epithelial Phenotype and a Hepatocyte-like Gene Expression Profile in Adult Hepatic Progenitor Cells // Cells. – 2022. – №11(3). – P. 365.; Alhadlaq A., Mao J.J. Mesenchymal stem cells: isolation and therapeutics. // Stem cells and development. – 2004. – №13 (4). – P. 436–448.; Asahina K., Sato H., Yamasaki C., Kataoka M., Shiokawa M., Katayama S., Tateno C., Yoshizato K. Pleiotrophin/Heparin-Binding Growth-Associated Molecule as a Mitogen of Rat Hepatocytes and Its Role in Regeneration and Development of Liver // American Journal of Pathology. – 2002. – №6 (160). – P. 2191–2205.; Bonnardel J., T’Jonck W., Gaublomme D., Browaeys R., Scott C.L., Martens L., Vanneste B., De Prijck S., Nedospasov S.A., Kremer A., Van Hamme E., Borghgraef P., Toussaint W., De Bleser P., Mannaerts I., Beschin A., Van Grunsven L.A., Lambrecht B.N., Taghon T., Lippens S., Elewaut D., Saeys Y. Stellate cells, hepatocytes, and endothelial cells imprint the Kupffer cell identity on monocytes colonizing the liver macrophage niche. // Immunity. – 2019. – №51. – P. 1–17.; De Minicis S., Seki E., Uchinami H., Kluwe J., Zhang Y., Brenner D.A., Schwabe R.F. Gene Expression Profiles During Hepatic Stellate Cell Activation in ulture and In Vivo // Gastroenterology. – 2007. – №132 (5). – P. 1937–1946.; Evarts R.P., Nagy P., Marsden E., Thorgeirsson S.S. A precursor-product relationship exists between oval cells and hepatocytes in rat liver // Carcinogenesis, 1987. – №8 (11). – P. 1737–1740.; Gregory S. H., Wing E. J. Neutrophil-Kupffer-cell inter- action in host defenses to systemic infections // Immunology Today, 1998. – №11 (19). – P. 507–510.; Hazrati A., Malekpour K., Soudi S., Hashemi S.M. Mesenchymal Stromal/Stem Cells and Their Extracellular Vesicles Application in Acute and Chronic Inflammatory Liver Diseases: Emphasizing on the Anti-Fibrotic and Immunomodulatory Mechanisms // Frontiers in immunology, 2022. – №13. – P. 865888.; Higashi T., Friedmana S. L., Hoshida Y., Hepatic stellate cells as key target in liver fibrosis. // Advanced drug delivery reviews, 2017. – №121. – P. 27–42.; Ju C., Reilly T. P., Bourdi M., Radonovich M. F., Brady J. N., George J. W., Pohl L. R. Protective Role of Kupffer Cells in Acetaminophen-Induced Hepatic Injury in Mice // Chemical Research in Toxicology, 2002. – №15(12). – P. 1504–1513.; Kakinuma Y., Kimura T., Watanabe Y. Possible involvement of liver resident macrophages (Kupffer Cells) in the pathogenesis of both intrahepatic and extrahepatic inflammation // Canadian Journal of Gastroenterology and Hepatology, 2017. – №2017. – P. 2896809.; Karaca G., Swiderska-Syn M., Xie G., Syn W.K., Krüger L., Machado M.V., Garman K., Choi S.S., Michelotti G.A., Burkly L.C., Ochoa B., Diehl A.M. TWEAK/Fn14 signaling is required for liver regeneration after partial hepatectomy in mice // PLoS One, 2014. – №9 (19). – P. 83987.; Kiassov A.P., Van Eyken P., Van Pelt J.F., Depla E., Fevery J. Desmet V.J., Yap S.H. Desmin expressing nonhematopoietic liver cells during rat liver development: an immunohistochemical and morphometric study // Differentiation; research in biological diversity, 1995. – №59. – P. 253–258.; Kiernan F. The anatomy and physiology of the liver // Philosophical Transactions of The Royal Society in London (Biological Sciences), 1833. – №123. – С. 711–770.; Kordes C., Haussinger D. Hepatic stem cell niches // The journal of clinical investigation, 2013. – №123 (5). – P. 1874–1880.; Koui Y., Kido T., Ito T., Oyama H., Chen S.-W., Katou Y., Shirahige K., Miyajima A. An In Vitro Human Liver Model by iPSC-Derived Parenchymal and Non-parenchymal Cells // Stem cell reports, 2017. – №9 (2). – P. 490–498.; Krause W.J., Cutts J.H. Concise Textbook of Histology // 2nd ed. Baltimore, MD: Williams & Wilkins. – 1986. – 331 p.; Kung J.W., Forbes S. J. Stem cells and liver repair // Current Opinion in Biotechnology, 2009. – №20 (5). – P. 568–74.; Kupffer C. Ueber die sogenannten Sternzellen der Säugethierleber // Archiv für mikroskopische Anatomie, 1899. – №54. – P. 254–288.; Li P., He K., Li J., Liu Z., Gong J. The role of Kupffer cells in hepatic diseases // Molecular Immunology, 2019. – №85. – P. 222–229.; Liaskou E., Wilson D.V., Oo Y H. Innate Immune Cells in Liver Inflammation // Mediators of inflammation, 2012. – №949157. – P. 21.; Liu X., Xu J., Rosenthal S., Zhang L., Cubbin R.M., Meshgin N., Shang L., Koyama Y., Ma H.Y., Sharma S., Heinz S., Glass C.K., Benner C., Brenner D.A., Kisseleva T. Identification of lineage-specific transcription factors that prevent activation of hepatic stellate cells and promote fibrosis resolution // Gastroenterology, 2020. – №158. – C. 1728–1744.; Luo X., Zhang W., He Z., Yang H., Gao J., Wu P. Ma Z.F. Dietary Vitamin C intake is associated with improved liver function and glucose metabolism in Chinese adults // Frontiers in Nutrition, 2022. – №8. – P. 779912.; Mail F.P. A study of the structural unit of the liver // American Journal of Anatomy, 1906. – №5. – С. 277–308.; Mitaka T., Kojima T., Mizuguchi T., Mochizuki Y. Growth and maturation of small hepatocytes isolated from adult rat liver // Biochemical and Biophysicals Research Communication. 1995. – №214. – P. 310–317.; Najar M., Fayyad-Kazan H., Faour W.H., Taghdouini A.E., Raicevic G., Najimi M., Toungouz M., van Grunsven L.A., Sokal E., Lagneaux L. Human hepatic stellate cells and inflammation: A regulated cytokine network balance // Cytokine, 2017. – №90. – P. 130–134.; Najimi M., Khuu D.N., Lysy P.A., Jazouli N., Abarca J., Sempoux C., Sokal E.M. Adult-derived human liver mesenchymal-like cells as a potential progenitor reservoir of hepatocytes? // Cell Transplantation, 2007. – №16 (7). – P. 717–28.; Nguyen N.T., Umbaugh D.S., SanchezGuerrero G., Ramachandran A., Jaeschke H. Kupffer cells regulate liver recovery through induction of chemokine receptor CXCR2 on hepatocytes after acetaminophen overdose in mice // Archives of Toxicology, 2022. – №96. – P. 305–320.; Nonaka H., Tanaka M., Suzuki K., Miyajima A. Development of murine hepatic sinusoidal endothelial cells characterized by the expression of hyaluronan receptors // Developmental Dynamics, 2007. – №236 (8). – P. 2258–2267.; Omori N., Omori M., Evarts R.P., Teramoto T., Miller M.J., Hoang T.N., Thorgeirsson S.S. Partial Cloning of Rat CD34 cDNA and Expression During Stem Cell-Dependent Liver Regeneration in the Adult Rat // Hepatology, 1997. – №3 (26). – P. 720–727.; Paku S., Dezso K., Kopper L., Nagy P. Immunohistochemical analysis of cytokeratin 7 expression in resting and proliferating biliary structures of rat liver // Hepatology. 2005. – №42 (4). – P. 863–870.; Racanelli V., Rehermann B. The Liver as an Immunological Organ // Hepatology, 2006. – №43. – P. S54-S62.; Raicevic G., Najar M., Najimi M., Taghdouini A.E., van Grunsven L.A., Sokal E., Toungouz M. Influence of inflammation on the immunological profile of adult-derived human liver mesenchymal stromal cells and stellate cells // Cytotherapy, 2015. – №17. – P. 174–185.; Rappaport A. M. The stuctural and functional unit in the human liver (liver acinus) // The Anatomical Record, 1958. – №130. – P. 673–689.; Rappaport A.M., Borowy A.J., Lougheed W.M. et al. Subdivision of hexagonal liver lobutes into a structural and functional unit // The Anatomical Record, 1954. – №119. – С. 11–33.; Rockey D. C. Stellate Cells and Portal Hypertension // Stellate Cells in Health and Disease, 2015. – P. 125–144.; Roskams, T. Relationships among stellate cell activation, progenitor cells, and hepatic regeneration // Clinics in Liver Disease, 2008. – №12 (4). – P. 853–860.; Schwartz A.M., The In Vitro Differentiation of Human CD141+CLEC9A+ Dendritic Cells from Mobilized Peripheral Blood CD34+ Hematopoietic Stem Cells // Current protocols, 2022. – №2(4). – P. e410.; Spee B., Carpino G., Schotanus B. A., Katoonizadeh A., Borght S. V., Gaudio E., Roskams T. Characterisation of the liver progenitor cell niche in liver diseases: potential involvement of Wnt and Notch signalling // Gut, 2010. – №59 (2). – P. 247–257.; Tacke F., Zimmermann H.W. Macrophage heterogeneity in liver injury and fibrosis // Journal of Hepatology, 2014. – №60(5). – P. 1090–1096.; Tao X.R., Li W.L., Su J., Jin C.X., Wang X.M., Li J.X., Hu J.K., Xiang Z.H., Lau J.T., Hu Y.P. Clonal mesenchymal stem cells derived from human bone marrow can differentiate into hepatocyte-like cells in injured livers of SCID mice // Journal of Cellular Biochemistry, 2009. – №108 (3). – P. 693–704.; Tarnowski M., Koryciak-Komarska H., Czekaj P., Sebesta R., Czekaj T.M., Urbanek K., Likus W., Malinowska-Kolodziej I., Plewka D., Nowaczyk-Dura G., Wiaderkiewicz R., Sieron A.L. The comparison of multipotential for differentiation of progenitor mesenchymal-like stem cells obtained from livers of young and old rats // Folia Histochemica et Cytobiologica. 2007. – №45 (3). – P. 245–54.; Tavian M., Péault B. Embryonic development of the human hematopoietic system // The International journal of developmental biology, 2005. – №49 (2–3). – P. 243–250.; Trefts E., Gannon M., Wasserman D.H. The liver // Current Biology, 2017. – №27 (21). – P. R1147-R1151.; Tsutsui H., Nishiguchi S. Importance of Kupffer Cells in the Development of Acute Liver Injuries in Mice // International Journal of Molecular Sciences, 2014. – №15. – P. 7711–7730.; Yanger K., Zong Y., Maggs L., Shapira S., Maddipati R., Aiello-Couzo N., Thung S., Wells R., Greenbaum L., Stanger B. Robust cellular reprogramming occurs spontaneously during liver regeneration // Genes and Development, 2013. – №27 (7). – P. 719–724.; Vestentoft P.S. Development and molecular composition of the hepatic progenitor cell niche // Danish medical journal, 2013. – №60 (5). – P. B4640.; Wang W., Sun X., Hu T., Wang L., Dong S., Gu J., Chu Y., Wang X., Li Y., Ru Y., Cheng T., Yuan W. PDK1 regulates definitive HSCs via the FOXO pathway during murine fetal liver hematopoiesis // Stem cell research, 2018. – №30. – P. 192–200.; Wilson J.W., Leduc E.H. Role of cholangioles in restoration of the liver of the mouse after dietary injury // Journal of Pathology and Bacteriology, 1958. – №76. – P. 441–449.; Wisse E., van’t Noordende J.M., van der Meulen J., Daems T.W., The pit cell: description of a new type of cell occurring in rat liver sinusoids and peripheral blood // Cell and Tissue Research, 1976. – №4, – P. 423–435.; Wognum A.W., Eaves A.C., Thomas T.E. Identification and isolation of hematopoietic stem cells // Archives of medical research, 2003. – №34 (6). – P. 461–75.; Zhang B., Wu X., Li J., Ning A., Zhang B., Liu J., Song L., Yan C., Sun X., Zheng K., Wu Z. Hepatic progenitor cells promote the repair of schistosomiasis liver injury by inhibiting IL-33 secretion in mice // Stem cell research and therapy, 2021. – №12 (1). – P. 546.; Zhang L, Theise N, Chua M, Reid L.M. The stem cell niche of human livers: symmetry between development and regeneration // Hepatology, 2008. – №48 (5). – P. 1598–1607.; Zhang M., Serna-Salas S., Damba T., Borghesan M., Demaria M., Moshage H., Hepatic stellate cell senescence in liver fibrosis: Characteristics, mechanisms and perspectives // Mechanisms of Ageing and Development, 2021. – №199. – P. 111572.; https://phsreda.com/files/Books/628b9d26a7181.jpg?req=102497; https://phsreda.com/article/102497/discussion_platform

الاتاحة: https://phsreda.com/article/102497/discussion_platform
https://phsreda.com/files/Books/628b9d26a7181.jpg?req=102497

View record in BASE

14

Academic Journal

Структурні особливості гепатоцитів білих щурів ; Structural characteristics of hepatocytes in white rats

المؤلفون: Мустафіна, Галія Міркатівна, Мустафина, Галия Миркатовна, Mustafina, G. M.

مصطلحات موضوعية: печінка, ядра, білі щури, глікоген, гепатоцити, белые крысы, печень, гликоген, hepatocytes, гепатоциты, white rats, glycogen, liver, nucleus, 616.36 - 002:599.323.4

Relation: Мустафіна Г. М. Структурні особливості гепатоцитів білих щурів / Г. М. Мустафіна // Актуальні проблеми сучасної медицини: Вісник Української медичної стоматологічної академії. – 2021. – Т. 21, вип. 2 (74). – С. 146–150.; http://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/16230

الاتاحة: http://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/16230
https://doi.org/10.31718/2077-1096.21.2.146

View record in BASE

15

Academic Journal

Toxicological Analysis of Hepatocytes Using FLIM Technique: In Vitro versus Ex Vivo Models

المؤلفون: Rodimova, Svetlana, Elagin, Vadim, Karabut, Mariya, Koryakina, Irina, Timin, Aleksandr Sergeevich, Zagaynov, Vladimir, Zyuzin, Mikhail, Zagaynova, Elena Vladimirovna, Kuznetsova, Darjya

المصدر: Cells

مصطلحات موضوعية: чипы, гепатоциты, паталогии, печень, метаболизм, токсикологический анализ, FLIM, microfluidic chip, hepatocyte, liver pathology, metabolism

وصف الملف: application/pdf

Relation: info:eu-repo/grantAgreement/RSF//19-15-00263; Cells. 2021. Vol. 10, iss. 11; Toxicological Analysis of Hepatocytes Using FLIM Technique: In Vitro versus Ex Vivo Models / S. Rodimova, V. Elagin, M. Karabut [et al.] // Cells. — 2021. — Vol. 10, iss. 11. — [2894, 19 p.].; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/72792

الاتاحة: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/72792
https://doi.org/10.3390/cells10112894

View record in BASE

16

Academic Journal

PATHOHISTOLOGICAL PECULIARITIES OF THE FORMATION OF IRON OVERLOAD SYNDROME IN PATIENTS WITH STEATOHEPATITIS DEPENDING ON ITS ETIOLOGY ; ПАТОГИСТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ФОРМИРОВАНИЯ СИНДРОМА ПЕРЕГРУЗКИ ЖЕЛЕЗОМ У БОЛЬНЫХ СТЕАТОГЕПАТИТОМ В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ЭТИОЛОГИИ ; ПАТОГІСТОЛОГІЧНІ ОСОБЛИВОСТІ ФОРМУВАННЯ СИНДРОМУ ПЕРЕВАНТАЖЕННЯ ЗАЛІЗОМ У ХВОРИХ НА СТЕАТОГЕПАТИТ ЗАЛЕЖНО ВІД ЙОГО ЕТІОЛОГІЇ

المؤلفون: Антофійчук, Т.М., Давиденко, I.C., Хухліна, O.С., Антофійчук, М.П., Гайдичук, В.С.

المصدر: Клінічна та експериментальна патологія; Том 19 № 4 (2020) ; Клиническая и экспериментальная патология; Том 19 № 4 (2020) ; Clinical & experimental pathology; Vol. 19 No. 4 (2020) ; 1727-4338

مصطلحات موضوعية: non-alcoholic, alcoholic steatohepatitis, overload, hepatocytes, iron, неалкогольный, алкогольный стеатогепатит, перегрузка, гепатоциты, железо, неалкогольний, алкогольний стеатогепатит, перевантаження, гепатоцити, залізо

وصف الملف: application/pdf

Relation: http://cep.bsmu.edu.ua/article/view/226571/226122; http://cep.bsmu.edu.ua/article/view/226571

الاتاحة: http://cep.bsmu.edu.ua/article/view/226571
https://doi.org/10.24061/1727-4338.XIX.4.74.2020.1

View record in BASE

17

Academic Journal

Histopathological features of liver tissue in non-alcoholic and alcoholic steatohepatitis depending on the presence of concomitant anemia ; Гистопатологические особенности печени при неалкогольном и алкогольном стеатогепатитах в зависимости от наличия сопутствующей анемии ; Гістопатологічні особливості печінки при неалкогольному та алкогольному стеатогепатитах залежно від наявності супутньої анемії

المؤلفون: Антофійчук, Т., Давиденко, І., Хухліна, О., Антофійчук, М.

المصدر: Bukovinian Medical Herald; Vol. 25 No. 1(97) (2021); 3-10 ; Буковинский медицинский вестник; Том 25 № 1(97) (2021); 3-10 ; Буковинський медичний вісник; Том 25 № 1(97) (2021); 3-10 ; 2413-0737 ; 1684-7903

مصطلحات موضوعية: неалкогольний стеатогепатит, алкогольний стеатогепатит, анемія, гепатоцити, некроз, non-alcoholic steatohepatitis, alcoholic steatohepatitis, anemia, hepatocytes, necrosis, неалкогольный стеатогепатит, алкогольный стеатогепатит, анемия, гепатоциты

وصف الملف: application/pdf

Relation: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/234309/232973; http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/234309

الاتاحة: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/234309
https://doi.org/10.24061/2413-0737.XXV.1.97.2021.1

View record in BASE

18

Academic Journal

The ultrastructure of the rats’ hepatocytes soon after methanol intraperіtoneal injection ; Ультраструктура гепатоцитов крыс в ранние сроки после внутрибрюшинного введения метанола ; Ультраструктура гепатоцитів щурів у ранні терміни після внутрішньочеревного уведення метанолу

المؤلفون: Molchaniuk, N. I.

المصدر: Bukovinian Medical Herald; Vol. 17 No. 4 (68) (2013); 100-103 ; Буковинский медицинский вестник; Том 17 № 4 (68) (2013); 100-103 ; Буковинський медичний вісник; Том 17 № 4 (68) (2013); 100-103 ; 2413-0737 ; 1684-7903

مصطلحات موضوعية: гепатоциты, метанол, ультраструктура, гепатоцити, hepatocytes, methanol, ultrastructure

وصف الملف: application/pdf

Relation: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/164607/163605; http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/164607

الاتاحة: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/164607
https://doi.org/10.24061/164607

View record in BASE