نتائج البحث - "генофонд"

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 28, № 5 (2024); 536-553 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 28, № 5 (2024); 536-553 ; 2500-3259 ; 10.18699/vjgb-24-52

مصطلحات موضوعية: длительная устойчивость, tertiary gene pool, Thinopyrum, Agropyron, introgression, resistance for disease and abiotic stresses, nonhost resistance, durable resistance, третичный генофонд, интрогрессия, устойчивость к болезням и абиотическим стрессам, устойчивость нехозяев

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4235/1860; Ali N., Mujeeb-Kazi A. Food production: global challenges to mitigate climate change. In: Physiological, Molecular, and Genetic Perspectives of Wheat Improvement. 2021;1-13. DOI 10.1007/978-3-030-59577-7_1; Ali S., Rodriguez-Algaba J., Thach T., Sørensen C.K., Hansen J.G., Lassen P., Nazari K., Hodson D.P., Justesen A.F., Hovmøller M.S. Yellow rust epidemics worldwide were caused by pathogen races from divergent genetic lineages. Front. Plant Sci. 2017;8:1057. DOI 10.3389/fpls.2017.01057; Alisaac E., Mahlein A.-K. Fusarium head blight on wheat: biology, modern detection and diagnosis and integrated disease management. Toxins. 2023;15(3):192. DOI 10.3390/toxins15030192; Antonovics J., Alexander H.M. The concept of ﬁtness in plant-fungal pathogen systems. In: Leonard K.J., Fry W.E. (Eds.) Plant Disease Epidemiology. New York: McGraw-Hill, 1989;2:185-214; Aravindh R., Sivasamy M., Ganesamurthy K., Jayaprakash P., Gopalakrishnan C., Geetha M., Nisha R., Shajitha P., Peter J., Sindhu P.A., Vikas V.K. Marker assisted stacking/pyramiding of stem rust, leaf rust and powdery mildew disease resistance genes (Sr2/ Lr27/Yr30, Sr24/Lr24 and Sr36/Pm6) for durable resistance in wheat (Triticum aestivum L.). Electron. J. Plant Breed. 2020;11(3):907-991. DOI 10.37992/2020.1103.148; Arora S., Steuernagel B., Gaurav K., Chandramohan S., Long Y., Matny O., Johnson R., Enk J., Periyannan S., Singh N., … Bentley A.R., Ayliﬀe M., Olson E., Xu S.S., Steﬀenson B.J., Lagudah E., Wulﬀ B.B.H. Resistance gene cloning from a wild crop relative by sequence capture and association genetics. Nat. Biotechnol. 2019; 37(2):139-143. DOI 10.1038/s41587-018-0007-9; Babkenova S.A., Babkenov A.T., Pakholkova E.V., Kanaﬁn B.K. Pathogenic complexity of Septoria spot disease of wheat in northern Kazakhstan. Plant Sci. Today. 2020;7(4):601-606. DOI 10.14719/pst.2020.7.4.798; Bajgain P., Zhang X., Jungers J.M., DeHaan L.R., Heim B., Sheaf-fer C.C., Wyse D.L., Anderson J.A. ‘MN-Clearwater’, the ﬁrst food-grade intermediate wheatgrass (Kernza perennial grain) cultivar. J. Plant Regist. 2020;14(3):288-297. DOI 10.1002/plr2.20042; Baker L., Grewal S., Yang C., Hubbart-Edwards S., Scholeﬁeld D., Ashling S., Burridge A., Przewieslik-Allen A., Wilkinson P., King I., King J. Exploiting the genome of Thinopyrum elongatum to expand the gene pool of hexaploid wheat. Theor. Appl. Genet. 2020;133(7): 2213-2226. DOI 10.1007/s00122-020-03591-3; Baranova O., Solyanikova V., Kyrova E., Konkova E., Gaponov S., Sergeev V., Shevchenko S., Mal’chikov P., Dolzhenko D., Bespalova L., Ablova I., Tarhov A., Vasilova N., Askhadullin D., Askhadullin D., Sibikeev S.N. Evaluation of resistance to stem rust and identiﬁcation of Sr genes in Russian spring and winter wheat cultivars in the Volga region. Agriculture. 2023;13(3):635. DOI 10.3390/agriculture13030635; Bhardwaj S.C., Prashar M., Kumar M., Jain S.K., Datta D. Lr19 resistance in wheat becomes susceptible to Puccinia triticina in India. Plant Dis. 2005;89(12):1360. DOI 10.1094/PD-89-1360A; Bhavani S., Hodson D.P., Huerta-Espino J., Randhawa M.S., Singh R.P. Progress in breeding for resistance to Ug99 and other races of the stem rust fungus in CIMMYT wheat germplasm. Front. Agric. Sci. Eng. 2019;6(3):210-224. DOI 10.15302/J-FASE-2019268; Brar G.S., Fetch T., McCallum B.D., Hucl P.J., Kutcher H.R. Virulence dynamics and breeding for resistance to stripe, stem, and leaf rust in Canada since 2000. Plant Dis. 2019;103(12):2981-2995. DOI 10.1094/PDIS-04-19-0866-FE; Carmona M.A., Ferrazini M., Barreto D.E. Tan spot of wheat caused by Drechslera tritici-repentis: detection, transmission, and control in wheat seed. Cereal Res. Commun. 2006;34(2-3):1043-1049. DOI 10.1556/CRC.34.2006.2-3.236; Ceoloni C., Kuzmanović L., Forte P., Gennaro A., Bitti A. Targeted exploitation of gene pools of alien Triticeae species for sustainable and multi-faceted improvement of the durum wheat crop. Crop Pasture Sci. 2014;65(1):96-111. DOI 10.1071/CP13335; Ceoloni C., Forte P., Kuzmanović L., Tundo S., Moscetti I., De Vita P., Virili M.E., D’Ovidio R. Cytogenetic mapping of a major locus for resistance to Fusarium headblight and crown rot of wheat on Thinopyrum elongatum 7EL and its pyramiding with valuable genes from a Th. ponticum homoeologous arm onto bread wheat 7DL. Theor. Appl. Genet. 2017;130(10):2005-2024. DOI 10.1007/s00122-017-2939-8; Chen C., Han Y., Xiao H., Zou B., Wu D., Sha L., Yang C., Liu S., Cheng Y., Wang Y., Kang H., Fan X., Zhou Y., Zhang T., Zhang H. Chromosome-speciﬁc painting in Thinopyrum species using bulked oligonucleotides. Theor. Appl. Genet. 2023;136(8):177. DOI 10.1007/s00122-023-04423-w; Chen Q., Conner R.L., Laroche A. Identiﬁcation of the parental chromosomes of the wheat–alien amphiploid agrotana by genomic in situ hybridization. Genome. 1995;38(6):1163-1169. DOI 10.1139/g95-154; Chen Q., Conner R.L., Laroche A., Thomas J.B. Genome analysis of Thinopyrum intermedium and Thinopyrum ponticum using genomic in situ hybridization. Genome. 1998;41(4):580-586. DOI 10.1139/g98-055; Chen S., Huang Z., Dai Y., Qin Y., Zhang L., Gao Y., Chen J. The development of 7E chromosome-speciﬁc molecular markers for Thinopyrum elongatum based on SLAF-seq technology. PLoS One. 2013;8(6):e65122. DOI 10.1371/journal.pone.0065122; Chen X.M. Epidemiology and control of stripe rust [Puccinia striiformis f. sp. tritici] on wheat. Can. J. Plant Pathol. 2005;27:314-337. DOI 10.1080/07060660509507230; Colmer T.D., Flowers T.J., Munns R. Use of wild relatives to improve salt tolerance in wheat. J. Exp. Bot. 2006;57(5):1059-1078. DOI 10.1093/jxb/erj124; Curtis T., Halford N.G. The challenge of increasing wheat yield and the importance of not compromising food safety. Ann. Appl. Biol. 2014;164(3):354-372. DOI 10.1111/aab.12108; Davoyan R.O., Bebyakina I.V., Davoyan E.R., Zinchenco A.N., Zubanova Y.S., Mikov D.S. Introgression of common wheat lines with genetic material of Agropyron glaucum. Russ. J. Genet. Appl. Res. 2016;6(1):54-61. DOI 10.1134/S2079059716010056; FAO Report. The impact of disasters and crises on agriculture and food security. Rome: FAO, 2021. DOI 10.4060/cb3673en; Fedak G., Chen Q., Conner R.L., Laroche A., Petroski R., Arm-strong K.W. Characterization of wheat-Thinopyrum partial amphiploids by meiotic analysis and genomic in situ hybridization. Genome. 2000;43(4):712-719. DOI 10.1139/g00-027; Fisenko A.V., Kuzmina N.P. Remote hybridization of wheat in winter hardiness selection. Agrarnaya Rossiya = Agricultural Russia. 2020;5:3-8. DOI 10.30906/1999-5636-2020-5-3-8 (in Russian); Fones H., Gurr S. The impact of Septoria tritici Blotch disease on wheat: an EU perspective. Fungal Genet. Biol. 2015;79:3-7. DOI 10.1016/j.fgb.2015.04.004; Frailie T.B., Innes R.W. Engineering healthy crops: molecular strategies for enhancing the plant immune system. Curr. Opin. Biotechnol. 2021;70:151-157. DOI 10.1016/j.copbio.2021.04.006; Friebe B., Jiang J., Knott D.R., Gill B.S. Compensation indices of radiation-induced wheat-Agropyron elongatum translocations conferring resistance to leaf rust and stem rust. Crop Sci. 1994;34(2): 400-404. DOI 10.2135/cropsci1994.0011183X003400020018x; Friebe B., Jiang J., Raupp W.J., McIntosh R.A., Gill B.S. Characterization of wheat-alien translocations resistance to diseases and pest: current status. Euphytica. 1996;91:59-87. DOI 10.1007/BF00035277; Friebe B., Raupp W.J., Gill B.S. Wheat alien translocation lines. Ann. Wheat Newslett. 2000;46:198-202; Friebe B., Zhang P., Linc G., Gill B.S. Robertsonian translocations in wheat arise by centric misdivision of univalents at anaphase I and rejoining of broken centromeres during interkinesis of meiosis II. Cytogenet. Genome Res. 2005;109(1-3):293-297. DOI 10.1159/000082412; Gao P., Zhou Y., Gebrewahid T.W., Zhang P., Yan X., Li X., Yao Z., Li Z., Liu D. Identiﬁcation of known leaf rust resistance genes in common wheat cultivars from Sichuan province in China. Crop Protect. 2019;115:122-129. DOI 10.1016/j.cropro.2018.09.012; Gill B.S., Friebe B., Wilson D.L., Cox T.S. Registration of KS93WGRC27 wheat streak mosaic virus-resistant T4DL·4Ai#2S wheat germplasm. Crop Sci. 1995;35(4):1236-1237. DOI 10.2135/cropsci1995.0011183X003500040100x; Goncharov N.P. Scientiﬁc support to plant breeding and seed production in Siberia in the XXI century. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2021;25(4): 448-459. DOI 10.18699/VJ21.050; Gorham J., Forster B.P., Budrewicz E., Wyn J.R.G., Miller T.E., Law C.N. Salt tolerance in the Triticeae: solute accumulation and distribution in an amphidiploid derived from Triticum aestivum cv. Chinese Spring and Thinopyrum bessarabicum. J. Exp. Bot. 1986;37(10):1435-1449. DOI 10.1093/jxb/37.10.1435; Gultyaeva E., Shaydayuk E., Gannibal P. Leaf rust resistance genes in wheat cultivars registered in Russia and their inﬂuence on adaptation processes in pathogen populations. Agriculture. 2021;11(4): 319. DOI 10.3390/agriculture11040319; Gultyaeva E., Shaydayuk E., Kosman E. Virulence diversity of Puccinia striiformis f. sp. tritici in common wheat in Russian regions in 2019–2021. Agriculture. 2022;12(11):1957. DOI 10.3390/agriculture12111957; Gultyaeva E., Gannibal P., Shaydayuk E. Long-term studies of wheat leaf rust in the north-western region of Russia. Agriculture. 2023; 13(2):255. DOI 10.3390/agriculture13020255; Guo J., Yu X., Yin H., Liu G., Li A., Wang H., Kong L. Phylogenetic relationships of Thinopyrum and Triticum species revealed by SCoT and CDDP markers. Plant Syst. Evol. 2016;302:1301-1309. DOI 10.1007/s00606-016-1332-4; Guo X., Huang Y., Wang J., Fu S., Wang C., Wang M., Zhou C., Hu X., Wang T., Yang W., Han F. Development and cytological characterization of wheat–Thinopyrum intermedium translocation lines with novel stripe rust resistance gene. Front. Plant Sci. 2023;14:1135321. DOI 10.3389/fpls.2023.1135321; Han H., Ma X., Wang Z., Qi K., Yang W., Liu W., Zhang J., Zhou S., Lu Y., Yang X., Li X., Li L. Chromosome 5P of Agropyron cristatum induces chromosomal translocation by disturbing homologous chromosome pairing in a common wheat background. Crop J. 2023;11(1):228-237. DOI 10.1016/j.cj.2022.06.002; Hang A., Bockelman H.E., Burton C.S. Cytological and seed morphological investigation of 250 accessions from the W.J. Sando collection. Agronomy Society of America, Crop Science Society of America, Soil Science Society of America meeting, November 6−10, 2005. Salt Lake City, Utah, 2005; Hao M., Zhang L., Ning S., Huang L., Yuan Z., Wu B., Yan Z., Dai S., Jiang B., Zheng Y., Liu D. The resurgence of introgression breeding, as exempliﬁed in wheat improvement. Front. Plant Sci. 2020;11: 252. DOI 10.3389/fpls.2020.00252; Hassani H.S., King I.P., Reader S.M., Caligari P.D.S., Miller T.E. Can tritipyrum, a new salt tolerant potential amphiploid, be a successful cereal like triticale? J. Agric. Sci. Technol. 2000;2(3):177-195; He F., Wang Y.H., Bao Y.G., Ma Y.X., Wang X., Li X.F., Wang X. Chromosomal constitutions of ﬁve wheat-Elytrigia elongata partial amphiploids as revealed by GISH, multicolor GISH and FISH. Comp. Cyogen. 2017;11(3):525-540. DOI 10.3897/CompCytogen.v11i3.11883; He R.L., Chang Z.J., Yang Z.J., Yuan Z.Y., Zhan H.X., Zhang X.J., Liu J.X. Inheritance and mapping of powdery mildew resistance gene Pm43 introgressed from Thinopyrum intermedium into wheat. Theor. Appl. Genet. 2009;118(6):1173-1180. DOI 10.1007/s00122-009-0971-z; Hohmann U., Badaeva K., Busch W., Friebe B., Gill B.S. Molecular cytogenetic analysis of Agropyron chromatin specifying resistance to barley yellow dwarf virus in wheat. Genome. 1996;39(2):336-347. DOI 10.1139/g96-044; Hou L., Jia J., Zhang X., Li X., Yang Z., Ma J., Guo H., Zhan H., Qiao L., Chang Z. Molecular mapping of the stripe rust resistance gene Yr69 on wheat chromosome 2AS. Plant Dis. 2016;100(8):1717-1724. DOI 10.1094/PDIS-05-15-0555-RE; Huang Q., Li X., Chen W., Xiang Z., Zhong S., Chang Z., Zhang M., Zhang H.Y., Tan F.Q., Ren Z.L., Luo P.G. Genetic mapping of a putative Thinopyrum intermedium-derived stripe rust resistance gene on wheat chromosome 1B. Theor. Appl. Genet. 2014;127(4):843-853. DOI 10.1007/s00122-014-2261-7; Huerta-Espino J., Singh R.P. First report on virulence in wheat with leaf rust resistance gene Lr19 in Mexico. Plant Dis. 1994;78:640. DOI 10.1094/PD-78-0640C; Jiang B., Liu T., Li H., Han H., Li L., Zhang J., Yang X., Zhou S., Li X., Liu W. Physical mapping of a novel locus conferring leaf rust resistance on the long arm of Agropyron cristatum chromosome 2P. Front. Plant Sci. 2018;9:817. DOI 10.3389/fpls.2018.00817; Jin Y., Szabo L.J., Pretorius Z.A., Singh R.P., Ward R., Fetch T., Jr. Detection of virulence to resistance gene Sr24 with in race TTKS of Puccinia graminis f. sp. tritici. Plant Dis. 2008;92(6):923-926. DOI 10.1094/PDIS-92-6-0923; Johnson R. Genetic background of durable resistance. In: Lamberti F., Waller J.M., Vander Graaﬀ N.A. (Eds.) Durable Resistance in Crops. New York: Plenum Press, 1983;152-163; Knott D.R. Translocations involving Triticum chromosomes and Agropyron chromosomes carrying rust resistance. Can. J. Genet. Cytol. 1968;10(3):695-696. DOI 10.1139/g68-087; Kocheshkova A.A., Kroupin P.Y., Bazhenov M.S., Karlov G.I., Pochtovyy A.A., Upelniek V.P., Belov V.I., Divashuk M.G. Pre-harvest sprouting resistance and haplotype variation of ThVp-1 gene in the collection of wheat-wheatgrass hybrids. PLoS One. 2017;12(11): e0188049. DOI 10.1371/journal.pone.0188049; Kolmer J. Leaf rust of wheat: pathogen biology, variation and host resistance. Forests. 2013;4(1):70-84. DOI 10.3390/f4010070; Kolmer J.A., Jin Y., Long D.L. Wheat leaf and stem rust in the United States. Aust. J. Agric. Res. 2007;58(6):631-638. DOI 10.1071/AR07057; Kosová K., Vítámvás P., Urban M.O., Kholová J., Prášil I.T. Breeding for enhanced drought resistance in barley and wheat – drought-associated traits, genetic resources and their potential utilization in breeding programmes. Czech J. Gen. Pl. Breed. 2014;50(4):247-261. DOI 10.17221/118/2014-CJGPB; Kroupin P.Y., Kuznetsova V.M., Nikitina E.A., Martirosyan Y.T., Karlov G.I., Divashuk M.G. Development of new cytogenetic markers for Thinopyrum ponticum (Podp.) Z.-W. Liu & R.-C. Wang. Comp. Cytogenet. 2019;13(3):231-243. DOI 10.3897/CompCytogen.v13i3.36112; Kumar A., Choudhary A., Kaur H., Mehta S. A walk towards wild grasses to unlock the clandestine of gene pools for wheat improvement: a review. Plant Stress. 2022;3:100048. DOI 10.1016/j.stress.2021.100048; Kuzmanović L., Ruggeri R., Virili M.E., Rossini F., Ceoloni C. Eﬀects of Thinopyrum ponticum chromosome segments transferred into durum wheat on yield components and related morpho-physiological traits in Mediterranean rain-fed conditions. Field Crops Res. 2016; 186:86-98. DOI 10.1016/j.fcr.2015.11.007; Kuzmanović L., Rossini F., Ruggeri R., Pagnotta M.A., Ceoloni C. Engineered durum wheat germplasm with multiple alien introgressions: agronomic and quality performance agronomy. Agronomy. 2020;10(4):486. DOI 10.3390/agronomy10040486; Lammer D., Cai X.W., Li H., Arterburn M., Chatelain J., Greco A., Lyon S., Gollnick M., Murrar T.D., Jones S.S. Utilization of Thynopyrum spp. in breeding winter wheat for disease resistance, stress tolerance, and perennial habit. In: Increasing Wheat Production in Central Asia through Science and International Cooperation. Proc. 1st Central Asian Wheat Conf. Almaty, Kazakhstan, 10–13 June, 2003. Almaty, 2005;147-151; Lang T., La S., Li B., Yu Z., Chen Q., Li J., Yang E., Li G., Yang Z. Precise identiﬁcation of wheat-Thinopyrum intermedium translocation chromosomes carrying resistance to wheat stripe rust in line Z4 and its derived progenies. Genome. 2018;61(3):177-185. DOI 10.1139/gen-2017-0229; Leonova I.N. Inﬂuence of alien genetic material on the manifestation of agronomically important traits of common wheat (T. aestivum L.). Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2018;22(3):321-328. DOI 10.18699/VJ18.367 (in Russian); Li H., Wang X. Thinopyrum ponticum and Th. intermedium: the promising source of resistance to fungal and viral diseases of wheat. J. Genet. Genomics. 2009;36(9):557-565. DOI 10.1016/S1673-8527(08)60147-2; Li H., Boshoﬀ W.H.P., Pretorius Z.A., Zheng Q., Li B., Li Z. Establishment of wheat-Thinopyrum ponticum translocation lines with resistance to Puccinia graminis f. sp. tritici Ug99. J. Genet. Genom. 2019;46(8):405-407. DOI 10.1016/j.jgg.2019.07.005; Li M.Z., Wang Y.Z., Liu X.J., Li X.F., Wang H.G., Bao Y.G. Molecular cytogenetic identiﬁcation of a novel wheat–Th. ponticum 1Js (1B) substitution line resistant to powdery mildew and leaf rust. Front. Plant Sci. 2021;12:727734. DOI 10.3389/fpls.2021.727734; Li M.Z., Yuan Y.Y., Ni F., Li X.F., Wang H.G., Bao Y.G. Characterization of two wheat-Thinopyrum ponticum introgression lines with pyramiding resistance to powdery mildew. Front. Plant Sci. 2022; 13:943669. DOI 10.3389/fpls.2022.943669; Li W., Zhang Q., Wang S., Langham M.A., Singh D., Bowden R.L., Xu S.S. Development and characterization of wheat–sea wheatgrass (Thinopyrum junceiforme) amphiploids for biotic stress resistance and abiotic stress tolerance. Theor. Appl. Gen. 2019;132(1):163-175. DOI 10.1007/s00122-018-3205-4; Li X., Jiang X., Chen X., Song J., Ren C., Xiao Y., Gao X., Ru Z. Molecular cytogenetic identiﬁcation of a novel wheat-Agropyron elongatum chromosome translocation line with powdery mildew resistance. PLoS One. 2017;12(9):e0184462. DOI 10.1371/journal.pone.0184462; Li Z.S., Li B., Tong Y.P. The contribution of distant hybridization with decaploid Agropyron elongatum to wheat improvement in China. J. Genet. Genomics. 2008;35(8):451-456. DOI 10.1016/S1673-8527; (08)60062-4 Liu J., Chang Z., Zhang X., Yang Z., Li X., Jia J., Zhan H., Guo H., Wang J. Putative Thinopyrum intermedium-derived stripe rust resistance gene Yr50 maps on wheat chromosome arm 4BL. Theor. Appl. Genet. 2013;126(1):265-274. DOI 10.1007/s00122-012-1979-3; Liu L.Q., Luo Q.L., Li H.W., Li B., Li Z.S., Zheng Q. Physical mapping of the blue-grained gene from Thinopyrum ponticum chromosome 4Ag and development of blue-grain-related molecular markers and a FISH probe based on SLAF-seq technology. Theor. Appl. Genet. 2018;131(11):2359-2370. DOI 10.1007/s00122-018-3158-7; Liu W., Jin Y., Rouse M., Friebe B., Gill B., Pumphrey M.O. Development and characterization of wheat-Ae. searsii Robertsonian translocations and a recombinant chromosome conferring resistance to stem rust. Theor. Appl. Genet. 2011a;122(8):1537-1545. DOI 10.1007/s00122-011-1553-4; Liu W., Rouse M., Friebe B., Jin Y., Gill B., Pumphrey M.O. Discovery and molecular mapping of a new gene conferring resistance to stem rust, Sr53, derived from Aegilops geniculata and characterization of spontaneous translocation stocks with reduced alien chromatin. Chromosome Res. 2011b;19(5):669-682. DOI 10.1007/s10577-011-9226-3; Liu W., Danilova T.V., Rouse M.N., Bowden R.L., Friebe B., Gill B.S., Pumphrey M.O. Development and characterization of a compensating wheat-Thinopyrum intermedium Robertsonian translocation with Sr44 resistance to stem rust (Ug99). Theor. Appl. Genet. 2013;126(5):1167-1177. DOI 10.1007/s00122-013-2044-6; Liu X., Ao K., Yao J., Zhang Y., Li X. Engineering plant disease resistance against biotrophic pathogens. Curr. Opin. Plant Biol. 2021;60: 101987. DOI 10.1016/j.pbi.2020.101987; Luo P., Hu X., Chang Z., Zhang M., Zhang H., Ren Z. A new stripe rust resistance gene transferred from Thinopyrum intermedium to hexaploid wheat (Triticum aestivum). Phytoprotection. 2009a;90(2): 57-63. DOI 10.7202/044023ar; Luo P.G., Luo H.Y., Chang Z.J., Zhang H.Y., Zhang M., Ren Z.L. Characterization and chromosomal location of Pm40 in common wheat: a new gene for resistance to powdery mildew derived from Elytrigia intermedium. Theor. Appl. Genet. 2009b;118(6):1059-1064. DOI 10.1007/s00122-009-0962-0; Ma F.F., Xu Y.F., Ma Z.Q., Li L.H., An D.G. Genome-wide association and validation of key loci for yield-related traits in wheat founder parent Xiaoyan 6. Mol. Breed. 2018;38:91. DOI 10.1007/s11032-018-0837-7158; Martynov S.P., Dobrotvorskaya T.V., Krupnov V.A. Genealogical analysis of the use of two wheatgrass (Agropyron) species in common wheat (Triticum aestivum L.) breeding for disease resistance. Russ. J. Genet. 2016;52(2):154-163. DOI 10.1134/S1022795416020071; McDonald B.A., Stukenbrock E.H. Rapid emergence of pathogens in agro-ecosystems: global threats to agricultural sustainability and food security. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B Biol. Sci. 2016; 371(1709):20160026. DOI 10.1098/rstb.2016.0026; McIntosh R.A., Wellings C.R., Park R.F. (Eds.) Wheat Rusts. An Atlas of Resistance Genes. Springer Dordrecht, 1995. DOI 10.1071/9780643101463; McIntosh R.A., Dubcovsky J., Rogers W.J., Xia X.C., Raupp W.J. Catalogue of gene symbols for wheat: 2018 Supplement. Ann. Wheat Newslett. 2018;64:73-93; Melotto M., Zhang L., Oblessuc P.R., He S.Y. Stomatal defense a decade later. Plant Physiol. 2017;174(2):561-571. DOI 10.1104/pp.16.01853; Meshkova L.V., Rosseeva L.P., Korenyuk E.A., Belan I.A. Dynamics of distribution of the wheat leaf rust pathotypes virulent to the cultivars with Lr9 gene in Omsk region. Mikologiya i Fitopatologiya = Mycology and Phytopathology. 2012;46(6):397-400 (in Russian); Mo Q., Wang C.Y., Chen C.H., Wang Y.J., Zhang H., Liu X.L., Ji W.Q. Molecular cytogenetic identiﬁcation of a wheat Thinopyrum ponticum substitution line with stripe rust resistance. Cereal Res. Com-mun. 2017;45(4):564-573. DOI 10.1556/0806.45.2017.037; Niks R.E. How speciﬁc is non-hypersensitive host and nonhost resistance of barley to rust and mildew fungi? J. Integr. Agric. 2014; 13(2):244-254. DOI 10.1016/S2095-3119(13)60648-6; Niu Z., Klindworth D.L., Yu G., Friessen T.L., Chao S., Jin Y., Cai X., Ohm J.-B., Rasmussen J.B., Xu S.S. Development and characterization of wheat lines carrying stem rust resistance gene Sr43 derived from Thinopyrum ponticum. Theor. Appl. Genet. 2014;127(4):969-980. DOI 10.1007/s00122-014-2272-4; O’Driscoll A., Kildea S., Doohan F., Spink J., Mullins E. The wheat–Septoria conﬂict: a new front opening up? Trends Plant Sci. 2014; 19(9):602-610. DOI 10.1016/j.tplants.2014.04.011; Ohm H.W., Anderson J.M., Sharma H.C., Ayala L., Thompson N., Uphaus J.J. Registration of yellow dwarf viruses resistant wheat germplasm line P961341. Crop Sci. 2005;45(2):805-806. DOI 10.2135/cropsci2005.0805; Oliver R.E., Xu S.S., Stack R.W., Friesen T.L., Jin Y., Cai X. Molecular cytogenetic characterization of four partial wheat–Thinopyrum ponticum amphiploids and their reactions to Fusarium head blight, tan spot, and Stagonospora nodorum blotch. Theor. Appl. Genet. 2006;112(8):1473-1479. DOI 10.1007/s00122-006-0250-1; Park R.F., Bariana H.S., Wellings C.R., Wallwork H. Detection and occurrence of a new pathotype of Puccinia triticina with virulence for Lr24 in Australia. Aust. J. Agric. Res. 2002;53(9):1069-1076. DOI 10.1071/AR02018; Pathotype Tracker – Where is Ug99? 2023. Available at: https://rusttracker.cimmyt.org/?page_id=22; Patpour M., Hovmøller M.S., Rodriguez-Algaba J., Randazzo B., Villegas D., Shamanin V.P., Berlin A., Flath K., Czembor P., Hanzalova A., Sliková S., Skolotneva E.S., Jin Y., Szabo L., Meyer K.J.G., Valade R., Thach T., Hansen J.G., Justesen A.F. Wheat stem rust back in Europe: diversity, prevalence and impact on host resistance. Front. Plant Sci. 2022;13:882440. DOI 10.3389/fpls.2022.882440; Peng Y., Wersch R., Zhang Y. Convergent and divergent signaling in pamp-triggered immunity and eﬀector-triggered immunity. Mol. Plant Microbe Interact. 2018;31(4):403-409. DOI 10.1094/MPMI-06-17-0145-CR; Peto F.H. Hybridization of Triticum and Agropyron. II. Cytology of the male parents and F1 generation. Can. J. Res. 1936;14(5):203-214. DOI 10.1139/cjr36c-017; Phuke R.M., He X., Juliana P., Bishnoi S.K., Singh G.P., Kabir M.R., Roy K.K., Joshi A.K., Singh R.P., Singh P.K. Association mapping of seedling resistance to tan spot (Pyrenophora tritici¬repentis Race 1) in CIMMYT and South Asian wheat germplasm. Front. Plant Sci. 2020;11:1309. DOI 10.3389/fpls.2020.01309; Plotnikova L.Ya. Inﬂuence of the surface features and physiological reactions of non-host species on the development of cellular structures of rust fungi. Tsitologiya = Cytology. 2008;50(5):439-446 (in Russian); Plotnikova L.Ya. The involvement of reactive oxygen species in defense of wheat lines with the genes introgressed from Agropyron species contributing the resistance against brown rust. Russ. J. Plant Physiol. 2009;56(2):181-189. DOI 10.1134/S102144370902006X; Plotnikova L.Ya., Aidosova A.T., Rispekova A.N., Myasnikov A.Yu. Introgressive lines of common wheat with genes of wheat grass Agropyron elongatum resistant to leaf diseases in the South West Siberia. Vestnik OmGAU = OmskSAU Bull. 2014;4(16):3-7 (in Russian); Plotnikova L.Ya., Meshkova L.V., Gultyaeva E.I., Mitrofanova O.P., Lapochkina I.F. A tendency towards leaf rust resistance decrease in common wheat introgression lines with genetic material from Aegilops speltoides Tausch. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2018;22(5):560-567. DOI 10.18699/VJ18.395 (in Russian); Plotnikova L.Ya., Sagendykova A.T., Ignatyeva E.Y. Defence of bread wheat with the tall wheatgrass genes while accelerating the physiological specialization of the causative agent of stem rust. Vestnik OmGAU = OmskSAU Bull. 2021;4:35-44. DOI 10.48136/2222-0364_2021_4_35 (in Russian); Plotnikova L.Ya., Pozherukova V., Knaub V., Kashuba Y. What was the reason for the durable eﬀect of Sr31 against wheat stem rust? Agriculture. 2022;12(12):2116. DOI 10.3390/agriculture12122116; Plotnikova L.Ya., Knaub V., Pozherukova V. Nonhost resistance of Thinopyrum ponticum to Puccinia graminis f. sp. tritici and the eﬀects of the Sr24, Sr25, and Sr26 genes introgressed to wheat. Int. J. Plant Biol. 2023a;14(2):435-457. DOI 10.3390/ijpb14020034; Plotnikova L.Ya., Sagendykova A., Pozherukova V. The use of genetic material of tall wheatgrass to protect common wheat from Septoria blotch in Western Siberia. Agriculture. 2023b;13(1):203. DOI 10.3390/agriculture13010203; Plotnikova L.Ya., Sagendykova A.T., Kuzmina S.P. Drought resistance of introgressive spring common wheat lines with genetic material of tall wheatgrass. Proceedings on Applied Botany, Genetics and Breeding. 2023c;184(2):38-50. DOI 10.30901/2227-8834-2023-2-38-50; Pototskaya I.V., Shamanin V.P., Aydarov A.N., Morgounov A.I. The use of wheatgrass (Thinopyrum intermedium) in breeding. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2022;26(5):413-421. DOI 10.18699/VJGB-22-51 (in Russian); Pugliese J.Y., Culman S.W., Sprunger C.D. Harvesting forage of the perennial grain crop Kernza (Thinopyrum intermedium) increases root biomass and soil nitrogen cycling. Plant Soil. 2019;437(2):241-254. DOI 10.1007/s11104-019-03974-6; Qi Z.J., Du P., Qian B.L., Zhuang L., Chen H., Chen T., Shen J., Guo J., Feng Y., Pei Z. Characterization of a wheat–Thinopyrum bessarabicum (T2JS-2BS·2BL) translocation line. Theor. Appl. Genet. 2010; 121(3):589-597. DOI 10.1007/s00122-010-1332-7; Salina E.A., Adonina I.G., Badaeva E.D., Kroupin P.Yu., Stasyuk A.I., Leonova I.N., Shishkina A.A., Divashuk M.G., Starikova E.V., Khuat T.M.L., Syukov V.V., Karlov G.I. A Thinopyrum intermedium chromosome in bread wheat cultivars as a source of gene conferring resistance to fungal diseases. Euphytica. 2015;204:91-101. DOI 10.1007/s10681-014-1344-5; Savari S., Willocquet L., Pethybridge S.J., Esker P., McRoberts N., Nelson A. The global burden of pathogens and pests on major food crops. Nat. Ecol. Evol. 2019;3(3):430-439. DOI 10.1038/s41559-018-0793-y; Sears E.R. The transfer of leaf rust resistance from Aegilops umbellulata to wheat. Broohaven Sympos. Biol. 1956;9:1-21; Sears E.R. Genetic control of chromosome pairing in wheat. Annu. Rev. Genet. 1976;10:31-51. DOI 10.1146/annurev.ge.10.120176.000335; Sears E.R. Analysis of wheat-Agropyron recombinant chromosomes. In: Proceedings of the 8th Eucarpia Congress, Madrid, Spain, 23– 25 May 1977. 1978;63-72; Sepsi A., Molnar I., Szalay D., Molnar-Lang M. Characterization of a leaf rust resistant wheat-Thinopyrum ponticum partial amphiploid BE-1, using sequential multicolor GISH and FISH. Theor. Appl. Genet. 2008;116(6):825-834. DOI 10.1007/s00122-008-0716-4; Shamanin V.P., Salina E., Wanyera R., Zelenskiy Y., Olivera P., Morgunov A. Genetic diversity of spring wheat from Kazakhstan and Russia for resistance to stem rust Ug99. Euphytica. 2016;212:287-296. DOI 10.1007/s10681-016-1769-0; Shi Q., Guo X., Su H., Zhang Y., Hu Z., Zhang J., Han F. Autoploid origin and rapid diploidization of the tetraploid Thinopyrum elongatum revealed by genome diﬀerentiation and chromosome pairing in meiosis. Plant J. 2023;113(3):536-545. DOI 10.1111/tpj.16066; Sibikeev S.N., Markelova T.S., Baukenova E.A., Druzhin A.E. Likely threat of the spread of race Ug99 of Puccinia graminis f. sp. tritici on wheat in Southeastern Russia. Russ. Agric. Sci. 2016; 42(2):145-148. DOI 10.3103/S1068367416020154; Sibikeev S.N., Badaeva E.D., Gultyaeva E.I., Druzhin A.E., Shishkina A.A., Dragovich A.Y., Kroupin P.Y., Karlov G.I., Khuat T.M., Divashuk M.G. Comparative analysis of Agropyron intermedium (Host) Beauv 6Agi and 6Agi2 chromosomes in bread wheat cultivars and lines with wheat–wheatgrass substitutions. Russ. J. Genet. 2017;53(3):314-324. DOI 10.1134/S1022795417030115; Sibikeev S.N., Baranova O.A., Druzhin A.E. A prebreeding study of introgression spring bread wheat lines carrying combinations of stem rust resistance genes, Sr22+Sr25 and Sr35+Sr25. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2021;25(7):713-722. DOI 10.18699/VJ21.081; Singh D. Development and Characterization of Wheat-Thinopyrum Junceiforme chromosome addition lines. Thesis. South Dakota State Univ., 2019 https://openprairie.sdstate.edu/etd/3368; Singh R.P., Hodson D.P., Jin Y., Ldaaguh E.S., Ayliﬀe M.A., Bhavani S., Rouse M.N., Pretorius Z.A., Szabo L.J., Huerta-Espino J., Basnet B.R., Lan C., Hovmøller M.S. Emergence and spread of new races of wheat stem rust fungus: continued threat to food security and prospects of genetic control. Phytopathology. 2015;105(7):872-884. DOI 10.1094/PHYTO-01-15-0030-FI; Singh R.P., Singh P.K., Rutkoski J., Hodson D.P., He X., Jørgensen L.N., Hovmøller M.S., Huerta-Espino J. Disease impact on wheat yield potential and prospects of genetic control. Annu. Rev. Phytopathol. 2016;54:303-322. DOI 10.1146/annurev-phyto-080615-095835; Skolotneva E.S., Kelbin V.N., Morgunov A.I., Boiko N.I., Shamanin V.P., Salina E.A. Races composition of the Novosibirsk population of Puccinia graminis f. sp. tritici. Biol. Bull. Rev. 2023;13(1): S114-S122. DOI 10.1134/S2079086423070125; Smith D.C. Intergeneric hybridization of Triticum and other grasses, principally Agropyron. J. Hered. 1943;34(7):219-224. DOI 10.1093/oxfordjournals.jhered.a105291; Smith E.L., Schlehuber A.M., Young H.C., Edwards L.H. Registration of Agent wheat. (Reg. No. 471). Crop Sci. 1968;8(4):511-512. DOI 10.2135/cropsci1968.0011183X000800040039x; Sun S.C. The approach and methods of breeding new varieties and new species from Agrotriticum hybrids. Acta Agron. Sin. 1981;7(1): 51-58; Tadesse Y., Chala A., Kassa B. Yield loss due to Septoria tritici blotch (Septoria tritici) of bread wheat (Triticum aestivum L.) in the central highlands of Ethiopia. J. Biol. Agric. Healthc. 2020;10(10):1-7. DOI 10.7176/JBAH/10-10-01; Toropova E.Yu., Kazakova O.A., Piskarev V.V. Septoria blotch epidemic process on spring wheat varieties. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2020; 24(2):139-148. DOI 10.18699/VJ20.609; Tsitsin N.V. Problems of distant hybridization. In: Problems of Distant Hybridization. Moscow: Kolos Publ., 1979;5-20 (in Russian); Tsvelev N.N. Grasses of the Soviet Union (Russian translations series, 8). Abingdon, UK: Routledge, 1984 Upelniek V.P., Belov V.I., Ivanova L.P., Dolgova S.P., Demidov A.S. Heritage of academician N.V. Tsitsin: state-of-the-art and potential of the collection of intermediate wheat × couch grass hybrids. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2012;16(3):667-674 (in Russian); Wang H.W., Sun S.L., Ge W.Y., Zhao L.F., Hou B.Q., Wang K., Lyu Z.F., Chen L.Y., Xu S.S., Guo J., … Li A.F., Xu S.S., Bai G.H., Nevo E., Gao C.X., Ohm H., Kong L.R. Horizontal gene transfer of Fhb7 from fungus underlies Fusarium head blight resistance in wheat. Science. 2020;368(6493):eaba5435. DOI 10.1126/science.aba5435; Wang L., Shi Q., Su H., Wang Y., Sha L., Fan X., Kang H., Zhang H., Zhou Y. St2-80: a new FISH marker for St genome and genome analysis in Triticeae. Genome. 2017;60(7):553-563. DOI 10.1139/gen-2016-0228; Wang R.R.-C. Agropyron and Psathyrostachys. In: Kole C. (Ed.) Wild Crop Relatives: Genomic and Breeding Resources. Berlin, Heidelberg: Springer, 2011;77-108. DOI 10.1007/978-3-642-14228-4_2; Wang S., Wang C., Feng X., Zhao J., Deng P., Wang Y., Zhang H., Liu X., Li T., Chen C., Wang B., Ji W. Molecular cytogenetics and development of St-chromosome-speciﬁc molecular markers of novel stripe rust resistant wheat-Thinopyrum intermedium and wheat-Thinopyrum ponticum substitution lines. BMC Plant Biol. 2022; 22(1):111. DOI 10.1186/s12870-022-03496-x; Wang Y.Z., Cao Q., Zhang J.J., Wang S.W., Chen C.H., Wang C.Y., Zhang H., Wang Y., Ji W. Cytogenetic analysis and molecular marker development for a new wheat–Thinopyrum ponticum 1Js (1D) disomic substitution line with resistance to stripe rust and powdery mildew. Front. Plant Sci. 2020;11:1282. DOI 10.3389/fpls.2020.01282; Wells D.G., Kota R.S., Sandhu H.S., Gardner W.A.S., Finney K.F. Registration of one disomic substitution line and ﬁve translocation lines of winter wheat germ plasm resistant to wheat streak mosaic virus. Crop Sci. 1982;22(6):1277-1278. DOI 10.2135/cropsci1982.0011183X002200060083x; Wu X., Zang C., Zhang Y., Xu Y., Wang S., Li T., Gao L. Characterization of wheat monogenic lines with known Sr genes and wheat cultivars for resistance to three new races of Puccinia graminis f. sp. tritici in China. J. Integr. Agric. 2023;22(6):1740-1749. DOI 10.1016/j.jia.2022.08.125; Wulﬀ B.B.H., Moscou M.J. Strategies for transferring resistance into wheat: from wide crosses to GM cassettes. Front Plant Sci. 2014;5: 692. DOI 10.3389/fpls.2014.00692; Xu S., Jiang B., Han H., Ji X., Zhang J., Zhou S., Yang X., Li X., Li L., Liu W. Genetic eﬀects of Agropyron cristatum 2P chromosome translocation fragments in a wheat background. J. Integr Agr. 2023; 22(1):52-62. DOI 10.1016/j.jia.2022.08.094; Xu X., Yuan D., Li D., Gao Y., Wang Z., Liu Y., Wang S., Xuan Y., Zhao H., Li T., Wu Y. Identiﬁcation of stem rust resistance genes in wheat cultivars in China using molecular markers. PeerJ. 2018;6: e4882. DOI 10.7717/peerj.4882; Yang G., Boshoﬀ W., Li H., Pretorius Z., Luo Q., Li B., Li Z., Zheng Q. Chromosomal composition analysis and molecular marker development for the novel Ug99‐resistant wheat–Thinopyrum ponticum translocation line WTT34. Theor. Appl. Genet. 2021;134(5):1587-1599. DOI 10.1007/s00122‐021‐03796‐0; Yang G., Deng P., Ji W., Fu S., Li H., Li B., Li Z., Zheng Q. Physical mapping of a new powdery mildew resistance locus from Thinopyrum ponticum chromosome 4AgS. Front. Plant Sci. 2023;14: 1131205. DOI 10.3389/fpls.2023.1131205; Yang Z., Mu Y., Wang Y., He F., Shi L., Fang Z., Zhang J., Zhang Q., Geng G., Zhang S. Characterization of a novel TtLEA2 gene from Tritipyrum and its transformation in wheat to enhance salt tolerance. Front. Plant Sci. 2022;13:830848. DOI 10.3389/fpls.2022.830848; Yin X., Shang X., Pang B., Song J., Cao S., Li J., Zhang X. Molecular mapping of two novel stripe rust resistant genes YrTp1 and YrTp2 in A-3 derived from Triticum aestivum × Thinopyrum ponticum. Agric. Sci. China. 2006;5(7):483-490. DOI 10.1016/S1671-2927(06)60081-3; Zeng W., He S.Y. A prominent role of the ﬂagellin receptor FLAGELLIN-SENSING2 in mediating stomatal response to Pseudomonas syringae pv tomato DC3000 in Arabidopsis. Plant Physiol. 2010;153(3):1188-1198. DOI 10.1104/pp.110.157016; Zhan H.X., Li G.R., Zhang X.J., Li X., Guo H.J., Gong W.P., Jia J., Qiao L., Ren Y., Yang Z., Chang Z. Chromosomal location and comparative genomics analysis of powdery mildew resistance gene Pm51 in a putative wheat–Thinopyrum ponticum introgression line. PloS One. 2014;9:e113455. DOI 10.1371/journal.pone.0113455; Zhan H., Zhang X., Li G., Pan Z., Hu J., Li X., Qiao L., Jia J., Guo H., Chang Z., Yang Z. Molecular characterization of a new wheat–Thinopyrum intermedium translocation line with resistance to powdery mildew and stripe rust. Int. J. Mol. Sci. 2015;16(1):2162-2173. DOI 10.3390/ijms16012162; Zhan J., McDonald B.A. Experimental measures of pathogen competition and relative ﬁtness. Annu. Rev. Phytopathol. 2013;51:131-153. DOI 10.1146/annurev-phyto-082712-102302; Zhang J., Hewitt T.C., Boshoﬀ W.H.P., Dundas I., Upadhyaya N., Li J., Patpour M., Chandramohan S., Pretorius Z.A., Hovmøller M., Schnippenkoetter W., Park R.F., Mago R., Periyannan S., Bhatt D., Hoxha S., Chakraborty S., Luo M., Dodds P., Steuernagel B., Wulﬀ B.B.H., Ayliﬀe M., McIntosh R.A., Zhang P., Lagudah E.S. A recombined Sr26 and Sr61 disease resistance gene stack in wheat encodes unrelated NLR genes. Nat. Commun. 2021;12:3378. DOI 10.1038/s41467-021-23738-0; Zhang R.Q., Xiong C.X., Mu H.Q., Yao R.N., Meng X.R., Kong L.N., Xing L., Wu J., Feng Y., Cao A. Pm67, a new powdery mildew resistance gene transferred from Dasypyrum villosum chromosome 1V to common wheat (Triticum aestivum L.). Crop J. 2020;9(4):882-888. DOI 10.1016/j.cj.2020.09.012; Zhang W., Lukaszewski A.J., Kolmer J., Soria M.A., Goyal S., Dubcovsky J. Molecular characterization of durum and common wheat recombinant lines carrying leaf rust resistance (Lr19) and yellow pigment (Y) genes from Lophopyrum ponticum. Theor. Appl. Genet. 2005;111(3):573-582. DOI 10.1007/s00122-005-2048-y; Zhang X., Dong Y., Wang R.R.C. Characterization of genomes and chromosomes in partial amphiploids of the hybrid Triticum aestivum × Thinopyrum ponticum by in situ hybridization, isozyme analysis, and RAPD. Genome. 1996;39(6):1062-1071. DOI 10.1139/g96-133; Zhang X., Shen X., Hao Y., Cai J., Ohm H.W., Kong L. A genetic map of Lophopyrum ponticum chromosome 7E, harboring resistance genes to Fusarium head blight and leaf rust. Theor. Appl. Genet. 2011;122(2):263-270. DOI 10.1007/s00122-010-1441-3; Zhang Z., Song L., Han H., Zhou S., Zhang J., Yang X., Li X., Liu W., Li L. Physical localization of a locus from Agropyron cristatum conferring resistance to stripe rust in common wheat. Int. J. Mol. Sci. 2017;18(11):2403. DOI 10.3390/ijms18112403; Zheng Q., Klindworth D.L., Friesen T.L., Liu A., Li Z., Zhong S., Jin Y., Xu S.S. Characterization of Thinopyrum species for wheat stem rust resistance and ploidy level. Crop Sci. 2014а;54(6):2663-2672. DOI 10.2135/CROPSCI2014.02.0093; Zheng Q., Lv Z., Niu Z., Li B., Li H., Xu S.S., Han F., Li Z. Molecular cytogenetic characterization and stem rust resistance of ﬁve wheat–Thinopyrum ponticum partial amphiploids. J. Genet. Genomics. 2014b;41(11):591-599. DOI 10.1016/j.jgg.2014.06.003; Zheng X., Tang C., Han R., Zhao J., Qiao L., Zhang S., Qiao L., Ge C., Zheng J., Liu C. Identiﬁcation, characterization, and evaluation of novel stripe rust resistant wheat–Thinopyrum intermedium chromosome translocation lines. Plant Dis. Publ. 2020;104(3):875-881. DOI 10.1094/PDIS-01-19-0001-RE; Zhu Z., Hao Y., Mergoum M., Bai G., Humphreys G., Cloutier S., Xia X., He Z. Breeding wheat for resistance to Fusarium head blight in the global north: China, USA, and Canada. Crop J. 2019;7(6): 730-738. DOI 10.1016/j.cj.2019.06.003; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4235

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4235
https://doi.org/10.18699/vjgb-24-60

View record in BASE

7

Academic Journal

Association of The structure of the gene pool of the Tuvan tribal group Mongush according to data on Y-chromosome polymorphism ; Структура генофонда тувинской родовой группы монгуш по данным о полиморфизме Y-хромосомы

المؤلفون: L. D. Damba, V. Y. Pylev, G. Y. Ponomarev, E. V. Balanovska, Л. Д. Дамба, В. Ю. Пылёв, Г. Ю. Пономарёв, Е. В. Балановская

المساهمون: The work was carried out with the financial support of the Russian Science Foundation, grant No. 22-18-20113 (collection of biological material, article writing) and a government assignment for the Research Centre for Medical Genetics (cartographic analysis, article writing), Работа выполнена при финансовой поддержке гранта РНФ № 22-18-20113 «Комплексные этногенетические, лингво-антропологические исследования родовых групп Тувы: универсальность, локальность, трансграничье» (сбор биологического материала, написание статьи) и Государственного задания для Медико-генетического научного центра имени академика Н. П. Бочкова (картографический анализ, написание статьи)

المصدر: Medical Genetics; Том 23, № 1 (2024); 40-51 ; Медицинская генетика; Том 23, № 1 (2024); 40-51 ; 2073-7998

مصطلحات موضوعية: картографический атлас, Gene Pools, genogeography, tribal groups structure, Y-chromosome, cartographic atlas, генофонд, геногеография, родовая структура, Y-хромосома

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2409/1765; Маннай-оол М.Х. Тувинцы. Происхождение и формирование этноса. Новосибирск: Наука. 2004;99-166.; Аксянова Г.А. Основные результаты расогенетических исследований в Туве в XX столетии (обзор литературных источников). Археология, этнография и антропология Евразии. 2009;4(40):137-144.; Исхаков В.Г., Пальмбах А.А. Грамматика тувинского языка. Фонетика и морфология. Москва: Издательство восточной литературы. 1961.; Балановская Е.В., Юсупов Ю.М., Схаляхо Р.А. и др. Генетические портреты семи кланов северо-западных башкир: вклад финно-угорского компонента в генофонд башкир. Вестник Московского университета. Серия XXIII. Антропология. 2017;3: 94-103.; Дамба Л.Д., Балановская Е.В., Жабагин М.К. и др. Оценка вклада монгольской экспансии в генофонд тувинцев. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018;22(5):611-619.; Жабагин М.К., Дибирова Х.Д., Фролова С.А. и др. Связь изменчивости Y-хромосомы и родовой структуры: генофонд степной аристократии и духовенства казахов. Вестник Московского университета. Серия XXIII. Антропология. 2014;1: 96-101.; Жабагин М.К., Сабитов Ж.М., Агджоян А.Т. и др. Генезис крупнейшей родоплеменной группы казахов – Аргынов – в контексте популяционной генетики. Вестник Московского университета. Серия XXIII. Антропология. 2016;(4):59-68.; Юсупов Ю.М., Схаляхо Р.А., Агджоян А.Т. и др. Анализ генофонда юго-восточных башкир в контексте их родовой структуры (по данным о полиморфизме Y-хромосомы). Вестник Московского университета. Серия XXIII. Антропология. 2019;4:54-66.; Дамба Л.Д., Айыжы Е.В., Монгуш Б.Б. и др. Комплексный подход в изучении родовой структуры тувинцев Республики Тыва на примере родов монгуш и ооржак. Вестник Тувинского госуниверситета. 2018;2:37-44.; Голубенко М.В., Пузырев В.П., Салюков В.Б. и др. Анализ распространенности «монголоидных» гаплогрупп митохондриальной ДНК среди коренного населения Тувы. Генетика. 2001;37(6):831-839.; Деренко М.В., Дамбуева И.К., Малярчук В.А. и др. Структура и разнообразие митохондриального генофонла коренного населения Тувы и Бурятии по данным о рестрикционном полиморфизме. Генетика. 1999;35(12):1706-1712.; Степанов В.А., Пузырев В.П. Анализ аллельных частот семи микросателлитных локусов Y-хромосомы в трех популяциях тувинцев. Генетика. 2000;36(2):241-248.; Степанов В.А., Пузырев В.П. Микросателлитные гаплотипы Y-хромосомы демонстрируют отсутствие подразделенности и наличие нескольких компонентов в мужском генофонде тувинцев. Генетика. 2000;36(3):377-384.; Харьков В.Н., Хамина К.В., Медведева О.Ф. и др. Структура генофонда тувинцев по маркерам Y-хромосомы. Генетика. 2013;49(12):1418-1420.; Дулов В.И. Социально-экономическая история Тувы (XIX – начало XX вв.). Москва: Издательство Академии Наук СССР. 1956.; Ламажаа Ч.К. Основные проблемы исследования родства и родственных групп современных тувинцев: паспортизация, терминология и поддержание родства. Новые исследования Тувы. 2021;4:6-21.; Итоги Всероссийской переписи населения 2020. https://rosstat.gov.ru/vpn/2020; Сувандии Н.Д., Куулар Е.М. Этнические тувинцы сумона Цагаан-Нуур Монголии: исследовательские проблемы. Новые исследования Тувы. 2017;1:58-72.; Айыжы Е.В., Конгу А.А. Тувинцы Синьцзянь-Уйгурского автономного района Китая (по материалам этнографической экспедиции в Синьцзян-Уйгурский, автономный район Китая). Вестник Кемеровского государственного университета. 2013;3(55):23-27.; Монгуш М.В. У тувинцев Синьцзяна: двадцать лет спустя. Новые исследования Тувы. 2012;4:130-147.; Сердобов Н.А. История формирования тувинской нации. Тувинское книжное издательство. 1971.; Татаринцев Б.И. Проблемы изучения тувинской этнонимии (на примере некоторых предполагаемых этнонимов монгольского происхождения). Исследования по тувинской филологии. 1986;64-86.; Балановская Е.В., Жабагин М.К., Агджоян А.Т. и др. Популяционные биобанки: принципы организации и перспективы применения в геногеографии и персонализированной медицине. Генетика. 2016;52(12):1371-1387.; Nei M. Molecular population genetics and evolution. North-Holland Publishing Company. 1975.; Кошель С.М. Геоинформационные технологии в геногеографии. Современная географическая картография. Москва: Дата+. 2012;158-166.; Дамба Л.Д, Запорожченко В.В, Балановская Е.В. Филогенетический анализ Y-хромосомной гаплогруппы С2а1а2а2а2-SK1066 в генофонде тувинских родовых групп в контексте центральноазиатских популяций. Вестник Тувинского государственного университета. Естественные и сельскохозяйственные науки. 2021;4(85):6-17.; https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2409

الاتاحة: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2409
https://doi.org/10.25557/2073-7998.2024.01.40-51

View record in BASE

8

Academic Journal

ОРЕХОПЛОДОВЫЕ ЛЕСА-ЭТО ЗЕЛЁНОЕ БОГАТСТВО УЗБЕКИСТАНА

المؤلفون: Хуршидабону Равшановна, Ибрагимова

المصدر: BIOLOGIYA VA KIMYO FANLARI ILMIY JURNALI; Vol. 2 No. 2 (2024): BIOLOGIYA VA KIMYO FANLARI ILMIY JURNALI; 1-3

مصطلحات موضوعية: Природные ресурсы, фауна, флора, генофонд, растительный мир, охрана природы, ландшафты

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://bestpublication.org/index.php/bkij/article/view/10173/10170; https://bestpublication.org/index.php/bkij/article/view/10173

الاتاحة: https://bestpublication.org/index.php/bkij/article/view/10173

View record in BASE

9

Academic Journal

СУЧАСНИЙ СТАН ТА ПЕРСПЕКТИВИ РОЗВЕДЕННЯ АСКАНІЙСЬКОЇ ПОПУЛЯЦІЇ СІРОЇ УКРАЇНСЬКОЇ ПОРОДИ ВЕЛИКОЇ РОГАТОЇ ХУДОБИ

المؤلفون: В. М.Іовенко, В. І. Вороненко, Н. М. Фурса

المصدر: Тваринництво Степу України, Pp 37-49 (2022)

مصطلحات موضوعية: біологічне різноманіття, сіра українська порода, генофонд, збереження, Animal culture, SF1-1100, Biotechnology, TP248.13-248.65

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://ahsu-journal.org.ua/index.php/journal/article/view/24/21; https://doaj.org/toc/2786-6769; https://doaj.org/toc/2786-6750

URL الوصول: https://doaj.org/article/29effa017ad648c4a3363c877d4e2e67

View record in DOAJ

10

Academic Journal

ШАФТОЛИ ВА УНИНГ ПАЙВАНДТАГЛАРИ

المؤلفون: Хатамова Ҳамидахон Комилжоновна, Иминов Ибрагимжон Абдурагимович

مصطلحات موضوعية: мевали экинлар, шафтоли, генетик ресурслар, генофонд, маҳаллий нав, илмий тадқиқот, ташқи муҳитнинг стресс омиллари, бирламчи манба, пайвандтак, пайвандуст

Relation: https://zenodo.org/communities/sai_2181-3337; https://doi.org/10.5281/zenodo.8002955; https://doi.org/10.5281/zenodo.8002956; oai:zenodo.org:8002956

الاتاحة: https://doi.org/10.5281/zenodo.8002956

View record in BASE

11

Academic Journal

Polymorphism of the rs1815739 locus of the «speed gene» ACTN3 in Siberian populations ; Полиморфизм локуса rs1815739 «гена скорости» ACTN3 в популяциях Сибири

المؤلفون: B. A. Malyarchuk, M. V. Derenko, G. A. Denisova, A. N. Litvinov, Б. А. Малярчук, М. В. Деренко, Г. А. Денисова, А. Н. Литвинов

المصدر: Medical Genetics; Том 21, № 12 (2022); 48-51 ; Медицинская генетика; Том 21, № 12 (2022); 48-51 ; 2073-7998

مصطلحات موضوعية: Сибирь, gene pool, adaptation of populations, Siberia, генофонд, адаптация популяций

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2216/1681; MacArthur D.G., Seto J.T., Raftery J.M, et al. Loss of function of the ACTN3 gene alters muscle metabolism in a mouse model and has been selectively favored during recent human evolution. Nat. Genet. 2007;39(10):1261-1265.; Amorim C.E., Acuña-Alonzo V, Salzano F.M., et al. Differing evolutionary histories of the ACTN3 R577X polymorphism among the major human geographic groups. PLoS ONE. 2015;10(2):e0115449.; Head S.I., Chan S., Houweling P.J., et al. Altered Ca2+ kinetics associated with α-actinin-3 deficiency may explain positive selection for ACTN3 null allele in human evolution. PLoS Genet. 2015;11(2):e1004862.; Wyckelsma V.L., Venckunas T., Houweling P.J., et al. Loss of α-actinin-3 during human evolution provides superior cold resilience and muscle heat generation. Am. J. Hum. Genet. 2021;108(3):446-457.; Bramble D.M., Lieberman D.E. Endurance running and the evolution of Homo. Nature. 2004;432(7015):345-352.; Mörseburg A., Pagani L., Malyarchuk B., et al. Response to Wyckelsma et al.: Loss of α-actinin-3 during human evolution provides superior cold resilience and muscle heat generation. Am. J. Hum. Genet. 2022;109(5):967-972.; Малярчук Б.А., Деренко М.В., Денисова Г.А. R577X-полиморфизм альфа-актинина-3 в популяциях человека на Северо-Востоке Азии. Экологическая генетика. 2017;15(1):50-56.; Ahmetov I.I., Druzhevskaya A.M., Astratenkova I.V., et al. The ACTN3 R577X polymorphism in Russian endurance athletes. Br. J. Sports Med. 2010;44(9):649-652.; Pasqua L.A., Bueno S., Matsuda M., et al. The genetics of human running: ACTN3 polymorphism as an evolutionary tool improving the energy economy during locomotion. Ann. Hum. Biol. 2016;43(3):255-260.; Del Coso J., Hiam D., Houweling P., et al. More than a ‘speed gene’: ACTN3 R577X genotype, trainability, muscle damage, and the risk for injuries. Eur. J. Appl. Physiol. 2019;119(1):49-60.; Kumagai H., Tobina T., Ichinoseki-Sekine N., et al. Role of selected polymorphisms in determining muscle fiber composition in Japanese men and women. J. Appl. Physiol. 2018;124(5):1377-1384.; https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2216

الاتاحة: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2216
https://doi.org/10.25557/2073-7998.2022.12.48-51

View record in BASE

12

Academic Journal

Comparative evaluation of early potato varieties and the mid-season variety Zlatka and ways to improve their seed production efficiency in the forest-steppe of Priobye ; Сравнительная оценка ранних сортов картофеля и среднеспелого сорта Златка и пути повышения эффективности их семеноводства в лесостепи Приобья

المؤلفون: A. I. Murzin, P. N. Potapov, R. R. Galeev, N. A. Potapov, S. S. Potapova, А. И. Мурзин, П. Н. Потапов, Р. Р. Галеев, Н. А. Потапов, С. С. Потапова

المساهمون: Научная работа выполнялась в рамках научно-технологической проблемы ФНТП «Селекция и семеноводство картофеля».

المصدر: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 3 (2023); 74-81 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 3 (2023); 74-81 ; 2072-6724

مصطلحات موضوعية: качество продукции, gene pool, potatoes, growth and development, seed production, yield level, product quality, генофонд, картофель, рост и развитие, семеноводство, уровень урожайности

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2082/915; Производство семенного картофеля на оздоровленной основе. – Новосибирск: Ритм, 2017. – 72 с.; Микроклональное размножение в картофелеводстве: рекомендации. – Пенза: Изд-во НИИСХ, 2009. – 39 с.; Галеев Р.Р., Шульга М.С., Ковалев Е.А. Эффективность оздоровления сортов картофеля в лесостепи Приобья // Модернизация аграрного образования: научн. тр. VI Междунар. научно-практ. конф. 16–17 дек. 2020 г. – Томск, 2020. – С. 281–285.; Пути повышения эффективности семеноводства на безвирусной основе. Брянск, 2016. – 108 с.; Галеев Р.Р. Семеноводство картофеля на безвирусной основе. – Новосибирск: Ритм, 2018. – 93 с.; Галеев Р.Р. Адаптивные технологии производства картофеля в Западной Сибири. – Новосибирск: Агро-Сибирь, 2012. – 72 с.; Особенности воспроизводства оздоровленной супер-суперэлиты: метод. рекомендации. – Красково: ВНИИКХ, 2016. – 81 с.; Галеев Р.Р. Адаптивная энергосберегающая технология ускоренного семеноводства безвирусного картофеля. – Новосибирск: Агро-Сибирь, 2017. – 79 с.; Овэс Е.В. Биотехнологические основы совершенствования процесса получения и размножения исходного материала в оригинальном семеноводстве картофеля: дис. … д-ра с.-х. наук. – М., 2021. – 356 с.; Анисимов Б.В. Фитопатогенные вирусы и их контроль в семеноводстве картофеля: практическое руководство. – М.: ФГНУ «Росинформагротех», 2004. – 80 с.; Семеноводство картофеля: современные технологии, нормативное регулирование, проверка качества / Б.В. Анисимов, А.А. Симаков, С.В. Жевора [и др.]; под общ. ред. Б.В. Анисимова. – Чебоксары, 2017. – 36 с.; ГОСТ – 33996-2016 Картофель семенной. Технические условия и методы определения качества. – М., 2016.; Галеев Р.Р. Интенсификация производства семенного картофеля в Западной Сибири. – Новосибирск: Агро-Сибирь, 2018. – 112 с.; Особенности выращивания оздоровленного семенного картофеля сорта Златка на серой лесной почве лесостепи Новосибирского Приобья / П.Н. Потапов, А.И. Мурзин, Р.Р. Галеев, Н.А. Потапов, С.С. Потапова // Сб. VII Всерос. (нац.) науч. конф. – Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2022. – С. 72–75.; Innovative approach to advancing technology of fast-paced seed production of potato varieties rejuvenated by method of apical meristem in forest-steppe zone of Vestern Siberia / P.N. Potapov, A.I. Murzin, R.R. Galeev, Potapov, S.S. Potapova // Approvadvanced. – Vol. 56, N 3. – P. 126– 132.; Non-virus seed production. – Ontario, 2016. – 360 p.; Apical meristem technology. – London: Science, 2015. – 268 p.; Выращивание оздоровленного картофеля. – Кемерово: Изд-во КемНИИСХ, 2016. – 52 с.; Карганов М.И. Безвирусный картофель. – Рязань: Ритм, 2017. – 138 с.; Методика государственного сортоиспытания сельскохозяйственных культур. – М.: Сельхозиздат, 1985. – 286 с.; Коняев Н.Ф. Научные основы высокой продуктивности овощных культур. – Новосибирск, 1978. – 112 с.; Методические указания по проведению исследований в картофелеводстве. – М: ВНИИСХ, 2006. – 39 с.; Сорокин О.Д. Прикладная статистика. – Новосибирск: Сиб. отд.-ние РАСХН, 2008. – 112 с.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2082

الاتاحة: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2082
https://doi.org/10.31677/2072-6724-2023-68-3-74-81

View record in BASE

13

Academic Journal

Influence of the gene pool of the breed on the content and variability of copper in the liver of pigs ; Влияние генофонда породы на содержание и изменчивость меди в печени свиней

المؤلفون: A. V. Nazarenko, O. A. Zaiko, T. V. Konovalova, O. S. Korotkevich, O. I. Sebezhko, V. L. Petukhov, S. G. Kulikova, V. V. Garth, А. В. Назаренко, О. А. Зайко, Т. В. Коновалова, О. С. Короткевич, О. И. Себежко, В. Л. Петухов, С. Г. Куликова, В. В. Гарт

المصدر: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 3 (2023); 262-271 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 3 (2023); 262-271 ; 2072-6724

مصطلحات موضوعية: генофонд, liver, pig breeds, Kemerovo, early meat, Landrace, interbreed differences, gene pool, печень, породы свиней, кемеровская, скороспелая мясная, ландрас, межпородные различия

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2100/933; Башлакова О.И. Проблемы экологической безопасности России // Вестник МГИМО университета. – 2015. – № 3(42). – С. 112–121.; Генофонд и фенофонд сибирской северной породы и черно-пестрой породной группы свиней / В.Л. Петухов, В.Н. Тихонов, А.И. Желтиков [и др.]. – Новосибирск: Прометей, 2012. – 579 с.; Selective constraints in cold-region wild boars may defuse the effects of small effective population size on molecular evolution of mitogenomes / J. Chen, P. Ni, T.N. Thi Tran, E.V. Kamaldinov [et al.] // Ecology and Evolution. – 2018. – Vol. 8, N 16. – P. 8102–8114.; Патент № 2270562 C2 Российская Федерация, МПК A01K 67/02. Способ сохранения редких и исчезающих пород животных: заявл.05.05.2004: опубл. 27.02.2006 / В.Л. Петухов, Л.К. Эрнст, А.И. Желтиков [и др.]; заявитель ФГБОУ ВО «Новосибирский ГАУ». – 8 с.; Патент № 2761031 C1 Российская Федерация, МПК G01N 33/48. Способ определения уровня цинка в почках свиней: № 2021101423: заявл. 22.01.2021: опубл. 02.12.2021 / О.А. Зайко, А.В. Назаренко, О.И. Себежко [и др.]; заявитель ФГБОУ ВО «Новосибирский ГАУ». – 6 с.; Патент № 2762614 C1 Российская Федерация, МПК G01N 33/48. Способ определения уровня железа в печени свиней: № 2021107856: заявл. 23.03.2021: опубл. 21.12.2021 / О.А. Зайко, Т.В. Коновалова, О.И. Себежко [и др.]; заявитель ФГБОУ ВО «Новосибирский ГАУ». – 6 с.; Патент № 2285920 C1 Российская Федерация, МПК G01N 33/48. Способ определения содержания свинца в органах свиней: № 2005102873/15: заявл. 04.02.2005: опубл. 20.10.2006 / В.Л. Петухов, С.А. Патрашков, О.С. Короткевич [и др.]; заявитель ФГБОУ ВО «Новосибирский ГАУ». – 8 с.; Патент № 2342659 C1 Российская Федерация, МПК G01N 33/50. Способ определения содержания кадмия в органах и мышечной ткани свиней: № 2007111437/15: заявл. 28.03.2007: опубл. 27.12.2008 / В.Л. Петухов, О.А. Желтикова, А.И. Желтиков [и др.]; заявитель ФГБОУ ВО «Новосибирский ГАУ». – 7 с.; Патент № 2791231 C1 Российская Федерация, МПК G01N 33/50. Способ определения содержания марганца в печени свиней: № 2022109749: заявл. 11.04.2022: опубл. 06.03.2023 / О.А. Зайко, А.В. Назаренко, Т.В. Коновалова [и др.]; заявитель ФГБОУ ВО «Новосибирский ГАУ». – 8 с.; Biochemical, hematological and mineral parameters in pigs of two breeds reared in large industrial complexes of Western Siberia / O.I. Sebezhko, O.S. Korotkevich, T.V. Konovalova [et al.] // Proceedings of the 3rd International Symposium for Agriculture and Food. – ISAF, 2017. – P. 100.; Проблемы селекции сельскохозяйственных животных / Б.Л. Панов, В.Л. Петухов, Л.К. Эрнст [и др.]. – Новосибирск: Наука. Сиб. предпр. РАН, 1997. – 283 с.; Iron content in soil, water, fodder, grain, organs and muscular tissues in cattle of Western Siberia (Russia) / K.N. Narozhnykh, T.V. Konovalova, Y.I. Fedyaev [et al.] // Indian Journal of Ecology. – 2017. – Vol. 44, N 2. – P. 217–220.; Andersson K.E. Oxidative stress and its possible relation to lower urinary tract functional pathology // BJU International. – 2018. – № 121(4). – P. 527– 533.; Chase C.C. Enteric immunity: Happy gut, healthy animal // Veterinary Clinics: Food Animal Practice. – 2018. – N 34 (1). – P. 1–18.; Copper and zinc nutritional issues for agricultural animal production / G.M. Hill, M.C. Shannon // Biol. Trace. Elem. Res. – 2019. – № 188 (1). – P. 148–159.; Effects of Astragalus membranaceus fiber on growth performance, nutrient digestibility, microbial composition, VFA production, gut pH, and immunity of weaned pigs / D. Che, S. Adams, C. Wei [et al.] // Microbiology Open. – 2018. – N 8 (5). – P. e00712.; Effects of super nutritional hepatic copper accumulation on hepatocyte health and oxidative stress in dairy cows / J.M. Strickland, D. Lyman, L.M. Sordillo [et al.] // Vet. Med. Int. – 2019. – P. 3642954.; Copper sulphate forms in piglet diets: Microbiota, intestinal morphology and enteric nervous system glial cells / A. Di Giancamillo, R. Rossi, P.A. Martino [et al.] // Animal Science Journal. – 2018. – N 89 (3). – P. 616–624.; Co-selection of antibiotic resistance via copper shock loading on bacteria from a drinking water bio-filter / M. Zhang, L. Chen, C. Ye, X. Yu // Environ. Pollut. – 2018. – N 233. – P. 132–141.; Acute exposure to organic and inorganic sources of copper: Differential response in intestinal cell lines / J. Keenan, F. O'Sullivan, M. Henry [et al.] // Food Science and Nutrition. – 2018. – N 6. – P. 2499–2514.; Chronic copper exposure elicit neurotoxic responses in rat brain: Assessment of 8-hydroxy-2-deoxyguanosine activity, oxidative stress and neurobehavioral parameters / J. Kumar, K.B. Sathua, S.J.S. Flora // Cellular and Molecular Biology (noisy-le-grand). – 2019. – N 65. – pp. 27–35.; Ecological and biogeochemical evaluation of elements content in soils and fodder grasses of the agricultural lands of Siberia / A.I. Syso, M.A. Lebedeva, A.S. Cherevko [et al.] // Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. – 2017. – N 9 (4). – P. 368–374; ГОСТ 26929-94 Сырье и продукты пищевые. Подготовка проб. Минерализация для определения содержания токсичных элементов [Текст]. – Введ. 1996-01-01. – М.: Изд-во стандартов, 2002. – 9 с.; Estimation the mean and variance from the median, range and the size of a sample / S.P. Hozo, B. Djulbegovic, I. Hozo // BMC Medical Research Methodology. – 2005. – Vol. 5 (1). – P. 13.; The function of ATPase copper transporter ATP7B in intestine / H. Pierson, A. Muchenditsi, B.E. Kim [et al.] // Gastroenterology. – 2018. – N 154 (1). – P. 168–180.; Excessive copper in feed not merely undermines animal health but affects food safety / Z. Ma, Y. Li, Z. Hanb [et al.] // J. Vet. Sci. – 2021. – N 22 (3). – P. 31.; Role of the gut microbiota in nutrition and health / A.M. Valdes, J. Walter, E. Segal, T.D. Spector // British Medical Journal. – 2018. – N 361. – P. k2179.; Advances in the mechanism of high copper diets in restraining pigs growth / Y. Gao, W. Yang, D. Che [et al.] // J Anim. Physiol. Anim. Nutr. – 2020. – N 104. – P. 667–678.; Puls R. Mineral Levels in Animal Health: Diagnostic Data // Sherpa International. – 1994. – Vol. 2. – P. 356.; A review on heavy metals contamination in soil: effects, sources, and remediation techniques / C. Li, K. Zhou, W. Qin // Soil and Sediment Contamination: an International Journal. – 2019. – Vol. 28. – P. 380–394.; Digestibility and metabolism of copper in diets for pigs and influence of dietary copper on growth performance, intestinal health, and overall immune status: a review / C.D. Espinosa, H.H. Stein // J. Animal Sci. Biotechnol. – 2021. – N 12. – P. 13.; Зайко О.А. Изменчивость и корреляции химических элементов в органах и тканях свиней скороспелой мясной породы СМ-1: дис. . канд. биол. наук. – Новосибирск, 2014. – 182 с.; Особенности аккумуляции меди в щетине свиней различных пород / О.А. Зайко, А.В. Назаренко, И.А. Королева [и др.] // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. – 2021. – Т. 51, № 1. – С. 90–98.; Different sources of copper effect on intestinal epithelial cell: toxicity, oxidative stress, and metabolism / R. Li, Y. Wen, G. Lin [et al.] // Metabolites. – 2019. – N 10 (1). – P. 11.; Назаренко А.В. Сравнительная характеристика уровня Fe и Cu в мышечной ткани свиней разных пород // Кормопроизводство, продуктивность, долголетие и благополучие животных: материалы междунар. науч.-практ. конф., Новосибирск, 25 окт. 2018 г. – Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2018. – С. 44–47.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2100

الاتاحة: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2100
https://doi.org/10.31677/2072-6724-2023-68-3-262-271

View record in BASE

14

Academic Journal

Efficiency of use of the modern gene pool in the production of cereals and legumes ; Эффективность использования современного генофонда при производстве зерновых и зернобобовых культур

المؤلفون: R. R. Galeev, D. D. Petrov, M. A. Albert, A. E. Smirnov, E. A. Kovalev, E. V. Ryadskiy, Р. Р. Галеев, Д. Д. Петров, М. А. Альберт, А. Е. Смирнов, Е. А. Ковалёв, Е. В. Рядский

المصدر: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 1 (2023); 29-38 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 1 (2023); 29-38 ; 2072-6724

مصطلحات موضوعية: эффективность производства, hybrid, gene pool, soybean, corn, yield level, product quality, production efficiency, гибрид, генофонд, соя, кукуруза, уровень урожайности, качество продукции

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/1915/856; Возделывание сои в Западной Сибири: рекомендации / сост.: Н.И. Кашеваров, В.Е. Горин, А.А. Лях; РАСХН. Сиб. отд-ние. СибНИИ кормов. – Новосибирск, 1999. – 73 с.; Соя в Западной Сибири / Н.И. Кашеваров, В.А. Солошенко, Н.И. Васякин, А.А. Лях. – Новосибирск: Юпитер, 2004. – 256 с.; Пенчуков В.Н., Каптушев А.У. Культура больших возможностей. – Ставрополь, 1984. – 228 с.; Галеев Р.Р., Листвянский В.М. Интенсивные технологии возделывания сои в Западной Сибири. – Новосибирск: Агро-Сибирь, 2002. – 92 с.; Галеев Р.Р., Литвинова И.С. Совершенствование элементов технологии возделывания сои на зерно в лесостепи Новосибирского Приобья // Вестник НГАУ. – 2016. – № 2(39). – С. 22–29.; Галеев Р.Р. Соя в интенсивном земледелии Западной Сибири. – Новосибирск: Агрос, 2008. – 39 с.; Галеев Р.Р. Пути повышения продуктивности зерна сои в Западной Сибири: рекомендации. – Новосибирск: Агро-Сибирь, 2011. – 72 с.; Полищук А.А., Кашеваров Н.Н., Петров А.Ф. Зернобобовые культуры в решении протеиновой проблемы Западной Сибири // Деятельность академика И.И. Синягина в становлении и развитии сибирской аграрной науки: материалы Междунар. науч. конф., посвящ. 95-летию со дня рождения акад. И.И. Синягина / сост. Л.Ф. Ашмарина. – Новосибирск, 2007. – С. 419–422.; Вороловский П.Н. Соя на Дальнем Востоке. – Хабаровск: Ритм, 2008. – 126 с.; Возделывание сои в Сибири: метод. рекомендации. – Омск, 2014. – 52 с.; Серен К.Д., Галеев Р.Р. Биологические ресурсы возделывания зернобобовых культур в условиях сухостепной зоны Республики Тыва // Плодородие. – 2013. – № 2. – С. 36–39.; Влияние средств химизации на формирование фотосинтетических параметров и урожайность зерна сортов сои / Р.Р. Галеев, Д.Д. Петров, Е.В. Рядский, А.Е. Смирнов // Материалы V Всерос. науч. конф. 18.12.2020 г. – Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2020. – С. 15–19.; Planting Date, Matury, and Temperature Effects on Soybean Seed Yield and Composition / S. Mourtzinis, A.P. Gaspar, S.L. Naeve, S.P. Conley // Agronomy Journal. – 2017. – Vol. 109. – P. 2040–2049. – https://doi.org/10.2134/agronj2017.05.0247.; Yield features of two soybean varieties under different water supplies and field conditions / A. Anda, G. Soos, L. Menyhart, T. Kucserka, B. Simon // Field Crops Research. – 2020. – Vol. 245. – P. 107–673. – https://doi.org/10.1016/j.fcr.2019.107673.; Toward a «Green Revolution» for Soybean / Shulin Liu, Min Zhang, Feng Feng, Zhixu Tian // Molecular Plant. – 2020. – Vol. 13, Is. 5. – P. 688–697. – https://doi.org/10.1016/j.molp.2020.03.002.; Yu, Ju-Kyung, Young-Suk Chung Plant Variety Protection: Current Practices and Insights. – 2021. – Genes 12, N 8. – P. 1127. – https://doi.org/10.3390/genes12081127.; Dry Matter and Nitrogen Uptake, Partitioning, and Removal across a Wide Range of Soybean Seed Yield Levels / A.P. Gaspar, C.A. Laboski, S.L. Naeve, S.P. Conley // Crop Science. – 2017. – Vol. 57. – P. 2170–2182. –https://doi.org/10.2135/cropsci2016.05.0322.; Impact of genomic research on soybean improvement in East Asia / M.W. Li, Z. Wang, B. Jiang [et al.] // Theor Appl Genet. – 2020. – Vol. 133. – P. 1655–1678. – https:// doi.org/10.1007/s001222-019-03462-6.; Перспективы возделывания сои на Дальнем Востоке: метод. рекомендации. – Хабаровск, 2016. – 76 с.; Возделывание сои по интенсивной технологии. – Благовещенск: Изд-во ВНИИС, 2017. – 43 с.; Соя в орошаемом земледелии. – Краснодар: Ритм, 2014. – 102 с.; Галеев Р.Р. Пути повышения зерновой продуктивности сои в Западной Сибири. – Новосибирск: Агро-Сибирь, 2017. – 93 с.; Соя в мировом земледелии. – М.: Колос, 2015. – 182 с.; Методика государственного сортоиспытания сельскохозяйственных культур. – М., 1985. – 224 с.; Ничипорович А.А. Продуктивность сельскохозяйственных культур и фотосинтез. – М.: Сельхозиздат, 1963. – 276 с.; Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. – M.: Колос, 1985. – 351 с.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/1915

الاتاحة: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/1915
https://doi.org/10.31677/2072-6724-2023-66-1-29-38

View record in BASE

15

Conference

ЎРИКНИНГ ЙЎҚОЛИБ КЕТИШ ҲАВФИ ОСТИДА БЎЛГАН МАҲАЛЛИЙ НАВЛАРИНИ ТИКЛАШ ВА ОНАЛИК КЎЧАТЗОРЛАРИНИ ЯРАТИШ

المؤلفون: Байметов Карим Исаевич, Абдуллаев Файзулла Хабибуллааевич, Ҳасанов Ҳамидулла Мухторович

مصطلحات موضوعية: мевали экинлар, ўрик, генетик ресурслар, генофонд, маҳаллий нав, илмий экспедиция, ўрганиш, ташқи муҳитнинг стресс омиллари, бирламчи манба, оналик боғ

Relation: https://zenodo.org/communities/conference3; https://doi.org/10.5281/zenodo.7368640; https://doi.org/10.5281/zenodo.7368641; oai:zenodo.org:7368641

الاتاحة: https://doi.org/10.5281/zenodo.7368641

View record in BASE

16

Conference

МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ БУШУЕВСКОЙ ПОРОДОЙ КРС

المؤلفون: Гиясов Хусанжон Абдуллаевич, Турсунбаев Шохрух Бобур угли

مصطلحات موضوعية: Бушуевская порода, генофонд, молекулярно-генетические исследования, ДНК-маркеры, генетический паспорт

Relation: https://zenodo.org/communities/conference3; https://doi.org/10.5281/zenodo.7360207; https://doi.org/10.5281/zenodo.7360208; oai:zenodo.org:7360208

الاتاحة: https://doi.org/10.5281/zenodo.7360208

View record in BASE

17

Academic Journal

Символический предел фронтира: «генофонд народа» и миграции в прошлом и настоящем

المؤلفون: Alexander V. Ovchinnikov

المصدر: Журнал Фронтирных Исследований, Vol 5, Iss 2, Pp 60-76 (2020)

مصطلحات موضوعية: мигранты, этногенетика, фронтир, генофонд, «межнациональные браки», «генетическая безопасность», этнонационализм, модернизация, днк, гены, History (General) and history of Europe, Social Sciences

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://jfs.today/index.php/jfs/article/view/203; https://doaj.org/toc/2500-0225

URL الوصول: https://doaj.org/article/1a2d4fa28f654f55aa5e8bcb7fc9b805

View record in DOAJ

18

Conference

Трансформация генофонда популяции голштинизированного черно-пестрого скота Свердловской области в период 2008-2019 годов

المؤلفون: Модоров М.В., Грин А.А., Ткаченко И.В., Севостьянов М.Ю.

مصطلحات موضوعية: генофонд, бык, аллель, год рождения

Relation: https://doi.org/10.5281/zenodo.4433242; https://doi.org/10.5281/zenodo.4433243; oai:zenodo.org:4433243

الاتاحة: https://doi.org/10.5281/zenodo.4433243

View record in BASE

19

Academic Journal

Изучение биологических показателей зарубежных пород, сохраняемых в генофонде тутового шелкопряда

المؤلفون: Мусаева, С. Р., Гусейнова, Р. Р., Мамедова, А. Т.

مصطلحات موضوعية: тутовый шелкопряд, породы, коллекции тутового шелкопряда, генофонд, биологические индикаторы, silkworm, breeds, silkworm collections, gene pool, biological indicators

وصف الملف: application/pdf

Relation: Агропромышленный комплекс в условиях инновационного развития: наука, технологии, кадровое обеспечение : Материалы I Международной научно-практической конференции, Минск, 6-7 июня 2024 г.; https://rep.bsatu.by/handle/doc/21738; 638.22

الاتاحة: https://rep.bsatu.by/handle/doc/21738

View record in BASE

20

Academic Journal

Агробіологічна цінність колекції генетичних ресурсів черешні в умовах півдня степу України

المؤلفون: Толстолік, Людмила Миколаївна, Толстолик, Людмила Николаевна, Tolstolik, Liudmyla

مصطلحات موضوعية: черешня, плодові культури, садівництво, генофонд черешні

وصف الملف: application/pdf

Relation: Селекційно-генетична наука і освіта (Парієві читання): матеріали Х Міжнародної наукової конференції (Умань, 19 березня 2021 р.);С. 240-242; http://elar.tsatu.edu.ua/handle/123456789/15093

الاتاحة: http://elar.tsatu.edu.ua/handle/123456789/15093

View record in BASE

تنقيح النتائج