المؤلفون: Aleksey L. Fedorkov

المصدر: Лесной журнал, Iss 1, Pp 23-32 (2024)

مصطلحات موضوعية: генетическая изменчивость, генетическое разнообразие, клоновое лесоводство, лесная селекция, соматический эмбриогенез, фоновое опыление, число клонов, Forestry, SD1-669.5

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://journals.narfu.ru/index.php/fj/article/view/1771; https://doaj.org/toc/0536-1036

URL الوصول: https://doaj.org/article/3fb56e8a73664dc2b88e25fad0fa032b

المؤلفون: I. P. Sheiko, E. A. Yanovich, N. V. Pristupa, I. V. Koshman, R. I. Sheiko, А. A. Putik, И. П. Шейко, Е. А. Янович, Н. В. Приступа, И. В. Кошман, Р. И. Шейко, А. А. Путик

المصدر: Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus. Agrarian Series; Том 62, № 3 (2024); 246-256 ; Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия аграрных наук; Том 62, № 3 (2024); 246-256 ; 1817-7239 ; 1817-7204 ; 10.29235/1817-7204-2024-62-3

مصطلحات موضوعية: ДНК-микросателлиты, Landrace, locus, allele, genetic variability, microsatellite DNA, ландрас, локус, аллель, генетическая изменчивость

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/766/638; Генетика животных / А. Г. Максимов [и др.]. – Персиановский: Дон. ГАУ, 2021. – 142 с.; Файзуллин, Р. А. Использование методов популяционной генетики в селекции свиней крупной белой породы / Р. А. Файзуллин, М. Р. Сайфутдинов // Вестн. Марийс. гос. ун-та. Сер.: С.-х. науки. Экон. науки. – 2016. – Т. 2, № 3 (7). – С. 60–64.; Куликов, Л. В. История зоотехнии / Л. В. Куликов. – 2-е изд., испр. и доп. – СПб.: Лань, 2021. – 384 с.; Племяшов, К. В. Молекулярно-генетический полиморфизм в популяциях животных и его применение в интенсивной селекции молочного скота: обзор / К. В. Племяшов, М. Г. Смарагдов, М. Н. Романов // Молекулярногенетические технологии анализа экспрессии генов продуктивности и устойчивости к заболеваниям животных: материалы 3-й Междунар. науч.-практ. конф. в рамках Года науки и технологий Рос. Федерации по тематике «Генетика и качество жизни», 30 сент. 2021 г. / Моск. гос. акад. ветеринар. медицины и биотехнологии – МВА им. К. И. Скрябина; редкол.: С. В. Позябин [и др.]. – СПб., 2021. – С. 368–378.; Мухтарова, О. М. Проблемы генетики в связи с требованиями современного животноводства / О. М. Мухтарова, А. Н. Кровикова // Инновац. наука. – 2021. – № 4. – С. 85–87.; Разведение животных / В. Г. Кахикало [и др.]. – СПб.: Лань, 2020. – 336 с.; Бородай, И. С. К истории становления и развития генетики как теоретической основы зоотехнической науки / И. С. Бородай // Вестн. Том. гос. ун-та. – 2012. – № 359. – С. 75–78.; Казанцева, Н. П. Генофонд сельскохозяйственных животных Удмурт. гос. аграр. ун-т; сост.: Н. П. Казанцева, М. И. Васильева. – Ижевск: УдГАУ, 2020. – 84 с.; Гайнуллина, К. П. Некоторые аспекты применения микросателлитных маркеров в сельскохозяйственной практике / К. П. Гайнуллина // Изв. Оренбург. гос. аграр. ун-та. – 2018. – № 5 (73). – С. 232–234.; Genetic diversity in German draught horse breed compared with a group of primitive, riding and wild horses by means of microsatellite DNA markers / K. S. Aberle [et al.] // Anim. Genet. – 2004. – Vol. 35, № 4. – P. 270–277. https://doi.org/10.1111/j.1365-2052.2004.01166.x; Анализ генетической структуры стада свиней пород ландрас, дюрок и йоркшир канадской селекции на основе анализа ДНК-микросателлитов / Н. В. Проскурина [и др.] // Современные достижения и проблемы биотехнологии сельскохозяйственных животных: 6-я Междунар. науч. конф., 19–20 дек. 2006 г. / Всерос. гос. науч.-исслед. ин-т животноводства РАСХН. – Дубровицы, 2006. – С. 155–158.; Микросателлитные профили как критерии определения чистопородности и оценки степени гетерогенности подборов родительских пар в свиноводстве / Н. А. Зиновьева [и др.] // С.-х. биология. – 2011. – Т. 46, № 6. – С. 47–53.; Луговой, С. И. Характеристика генофонда локальных пород свиней Украины по локусам микросателлитов ДНК / С. И. Луговой // Вестн. НГАУ. – 2013. – № 2 (27). – С. 67–72.; Харзинова, В. Р. Локальные породы свиней: сравнительная характеристика аллелофонда на основе анализа микросателлитов / В. Р. Харзинова, О. В. Костюнина, Н. А. Зиновьева // Свиноводство. – 2017. – № 1. – С. 5–7.; Особенности SSR-полиморфизма лошадей / Н. А. Глинская [и др.] // Весн. Палес. дзярж. ун-та. Сер. прыродазн. навук. – 2017. – № 1. – С. 8–13.; Чебуранова, Е. С. Межпородная дифференциация овец, разводимых в Республике Беларусь по STR-локусам / Е. С. Чебуранова // Животноводство и ветеринар. медицина. – 2021. – № 3 (42). – С. 26–30.; Jost, L. Entropy and diversity / L. Jost // Oikos. – 2006. – Vol. 113, № 2. – P. 363–375. https://doi.org/10.1111/j.2006.0030-1299.14714.x; The genetics of the horse / ed.: A. T. Bowling, A. Ruvinsky. – Wallington: CABI Publ., 2000. – 527 p. https://doi.org/10.1079/9780851994291.0000; Дендрограммы линий свиней материнских пород на основе микросателлитного анализа / О. Я. Василюк [и др.] // Зоотехническая наука Беларуси: сб. науч. тр. / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по животноводству. – Жодино, 2023. – Т. 58, ч. 1: Генетика, разведение, селекция, биотехнология размножения и воспроизводство. Технология кормов и кормления, продуктивность. – С. 29–39.; Генеалогическая структура белорусской черно-пестрой породы свиней на основе микросателлитного анализа линий, разводимых в генофондных предприятиях / И. Ф. Гридюшко [и др.] // Докл. Нац. акад. наук Беларуси. – 2021. – Т. 65, № 3. – С. 369–379. https://doi.org/10.29235/1561-8323-2021-65-3-369-379; Бальников, А. А. Направление селекционно-племенной работы по формированию нового конкурентоспособного заводского типа свиней породы йоркшир с применением генетических приемов и методов / А. А. Бальников, Ю. С. Казутова, И. П. Шейко // Докл. Нац. акад. наук Беларуси. – 2023. – Т. 67, № 2. – С. 168–176. https://doi.org/10.29235/1561-8323-2023-67-2-168-176; Вейр, Б. Анализ генетических данных: дискретные генетические признаки / Б. Вейр; пер. с англ. Д. В. Зайкина [и др.]; под ред. Л. А. Животовского, А. И. Пудовкина. – М.: Мир, 1995. – 400 с.; Jost, L. Gst and its relatives do not measure differentiation / L. Jost // Mol. Ecol. – 2008. – Vol. 17, № 18. – P. 4015–4026. https://doi.org/10.1111/j.1365-294x.2008.03887.x; https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/766

الاتاحة: https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/766
https://doi.org/10.29235/1817-7204-2024-62-3-246-256

المؤلفون: Юнусова, Д. Р., Полежаева, М. А.

مصطلحات موضوعية: генетическая изменчивость, хпДНК, Сахалин, Ledum, Rhododendron

Relation: https://doi.org/10.5281/zenodo.10039467; https://doi.org/10.5281/zenodo.10039468; oai:zenodo.org:10039468

الاتاحة: https://doi.org/10.5281/zenodo.10039468

المؤلفون: Z. K. Gadzhiev, E. S. Surzhikova, D. D. Evlagina, A. I. Surov, S. N. Shumaenko, З. К. Гаджиев, Е. С. Суржикова, Д. Д. Евлагина, А. И. Суров, С. Н. Шумаенко

المصدر: South of Russia: ecology, development; Том 18, № 3 (2023); 190‐195 ; Юг России: экология, развитие; Том 18, № 3 (2023); 190‐195 ; 2413-0958 ; 1992-1098 ; 10.18470/1992-1098-2023-3

مصطلحات موضوعية: условия разведения, genetic variability, gene, population, breeding conditions, генетическая изменчивость, ген, популяция

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2922/1374; Селионова М.И., Чижова Л.Н., Михайленко А.К., Суржикова Е.С., Шарко Г.Н. Оценка адаптационной перестройки овец в разных условиях на основе биомаркеров // Вестник АПК Ставрополья. 2019. N 2(34). С. 19–25.; Амерханов Х.А., Трухачёв В.И., Селионова М.И. Из истории российского овцеводства. Ставрополь: ИП Мокринский Н.С. 2017. 408 с.; Ерохин А.И., Карасев Е.А., Ерохин С.А. Состояние, динамика и тенденции в развитии овцеводства в мире и в России // Овцы, козы, шерстяное дело. 2019. N 3. С. 3–6.; Айбазов А.М., Мамонтова Т.В. Интенсификация воспроизводства овец в Ставропольском крае (часть 2. Плодовитость овец и пути ее повышения) // Сельскохозяйственный журнал. 2020. N 4(13). С. 19–28. DOI:10.25930/2687-1254/003.4.13.2020.; Марков А.К. Основные направления повышения экономической эффективности интенсификации животноводства в современных условиях // International scientific review. 2020. N LXX. С. 31–34.; Abdoli R., Zamani P., Deljou A., Rezvan H. Association of BMPR-1B and GDF9 genes polymorphisms and secondary protein structure changes with reproduction traits in Mehraban ewes // Gene. 2013. V. 524. N 2. P. 296–303. DOI:10.1016/j.gene.2013.03.133.; Barzegari A., Atashpaz S., Ghabili K., Nemati Z., Rustaei M., Azarbaijani R. Polymorphisms in GDF9 and BMP15 associated with fertility and ovulation rate in Moghani and Ghezel sheep in Iran // Reproduction in Domestic Animals. 2010. V. 45. P. 666–669. DOI:10.1111/j.1439-0531.2008.01327.x.; Iandris E., Kominakis A., Andreadou M., Kapeoldassi K., Chadio S., Tsiligianni T., Gazouli M., Ikonomopoulos I. Associations between single nucleotide polymorphisms of GDF9 and BMP15 genes and litter size in two dairy sheep breeds of Greece // Small Ruminant Research. 2012. V. 107. N 1. P. 16–21. DOI:10.1016/j.smallrumres.2012.04.004; Горлов И.Ф., Сложенкина М.И., Колосов Ю.А., Широкова Н.В. Генетическая структура стада по генам GDF9, GH у овец Волгоградской и эдильбаевской // Аграрно-пищевые инновации. 2021. N 2(14). С. 51–59. DOI:10.31208/2618-7353- 2021-14-51-59.; Knight P.G., Glister C. TGF- β superfamily members and ovarian follicle development // Reproduction. 2006. V. 132. N 2. P. 191–206.; Hanrahan J.P., Gregan S.M., Mulsant P., Mullen M., Davis G.H., Powell R., Galloway S.M. Mutations in the genes for oocyte-derived growth factors GDF9 and BMP15 are associated with both increased ovulation rate and sterility in Cambridge and Belclare sheep (Ovis Aries) // Biology of Reproduction. 2004. V. 70. N 4. P. 900–909. DOI:10.1095/biolreprod.103.023093.; Оздемиров А.А., Чижова Л.Н., Хожоков А.А. [и др.]. Полиморфизм генов CAST, GH, GDF9 овец дагестанской горной породы // Юг России: экология, развитие. 2021. Т. 16. N 2(59). С. 39–44. DOI:10.18470/1992-1098-2021-2-39-44.; Оздемиров А.А., Суров А.И., Суржикова Е.С [и др.]. Полиморфизм генов GH/HaeIII и GDF9/AsplEI, генетическая изменчивость, ассоциация их генотипов с иммунным статусом у овец разных пород, разводимых в различных природно географических зонах // Юг России: экология, развитие. 2022. Т. 17. N 3(64). С. 78–84. DOI 10.18470/1992-1098-2022-3-78-84.; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2922

الاتاحة: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2922
https://doi.org/10.18470/1992-1098-2023-3-190-195

المؤلفون: Duca, M.V., Clapco, S.F., Клапко, С.Ф., Mutu Calmîş, A., Mutu, A., Bivol, I.V., Бивол, И.В.

المصدر: Buletinul Academiei de Ştiinţe a Moldovei. Ştiinţele vieţii 346 (2) 39-47

مصطلحات موضوعية: Orobanche cumana, variabilitate genetică, marcheri SSR, marcheri, broomrape, Genetic Variation, SSR markers, ISSR markers, AMOVA, заразиха, генетическая изменчивость, ISSR-маркеры

وصف الملف: application/pdf

Relation: info:eu-repo/grantAgreement/EC/FP7/17193/EU/Studii genetico-moleculare și biotehnologice ale florii-soarelui în contextul asigurării managementului durabil al ecosistemelor agricole/20.80009.5107.01; https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/167198; urn:issn:1857064X

الاتاحة: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/167198
https://doi.org/10.52388/1857-064X.2022.2.04

المؤلفون: A. A. Ozdemirov, A. I. Surov, E. S. Surzhikova, A. A. Khozhokov, Z. K. Gadzhiev, D. D. Evlagina, E. M. Alieva, R. A. Akaeva, А. А. Оздемиров, А. И. Суров, Е. С. Суржикова, А. A. Хожоков, З К. Гаджиев, Д. Д. Евлагина, Е. М. Алиева, Р. А. Акаева

المصدر: South of Russia: ecology, development; Том 17, № 3 (2022); 78-84 ; Юг России: экология, развитие; Том 17, № 3 (2022); 78-84 ; 2413-0958 ; 1992-1098 ; 10.18470/1992-1098-2022-3

مصطلحات موضوعية: условия разведения, population, sheep, genetic variability, immune status, breeding conditions, популяция, овцы, генетическая изменчивость, иммунный статус

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2580/1291; Селионова М.И., Чижова Л.Н., Михайленко А.К., Суржикова Е.С., Шарко Г.Н. Оценка адаптационной перестройки овец в разных условиях на основе биомаркеров // Вестник АПК Ставрополья. 2019. N 2(34). С. 19‐25.; Абдулмуслимов А.М., Хожоков А.А., Бейшова И.С., Юлдашбаев Ю.А., Арилов А.Н., Хататаев С.А. Анализ полиморфизма генов CAST, GH и GDF9 у овец Дагестанской горной породы // Зоотехния. 2020. N 11. С. 5‐8.; Оздемиров А.А., Акаева Р.А., Алиева П.О., Алиева Е.М., Гамзатова С.К., Гусейнова З.М., Даветеева М.А. Районированная порода овец Дагестана // Вестник Российской сельскохозяйственной науки. 2021. N 4. С. 67‐69.; Оздемиров А.А., Анаев М.С. Биохимический статус молодняка овец в разные периоды их физиологического состояния при стационарно‐пастбищном ведении отрасли // Ветеринарный врач. 2012. N 1. С. 51‐54.; Силкина С.Ф., Барнаш Е.Н. Морфо‐биохимические показатели крови овец карачаевской породы в разных условиях содержания // Овцы, козы, шерстяное дело. 2012. N 2. С. 83.; Абонеев В.В., Шумаенко С.Н., Скорых Л.Н. Возрастные особенности морфологического состава крови молодняка овец разных генотипов в онтогенезе // Овцы, козы, шерстяное дело. 2015. N 2. С. 41‐42.; Лушников В.П., Сазонова И.А., Шпуль С.В. Некоторые гематологические и биохимические показатели крови баранчиков эдильбаевской породы в зависимости от природно‐климатической зоны Поволжья // Вестник СГАУ. 2013. N 11. С. 34‐38.; Горлов И.Ф., Сложенкина М.И., Колосов Ю.А., Широкова Н.В. Генетическая структура стада по генам GDF9, GH у овец Волгоградской и эдильбаевской пород // Аграрно‐пищевые инновации. 2021. N 2(14). С. 51‐59.; Kolosov Yu.A., Getmantseva L.V., Shirockova N.V. et al. Polymorphism of the GDF9 Gene in Russian Sheep Breeds // Cytol. & Histol. 2015. V. 6. Iss. 1. Article number: 305. DOI:10.4172/2157‐7099.1000305; Лушников В.П., Фетисова Т.О., Селионова М.И., Чижова Л.Н., Суржикова Е.С. Полиморфизм генов соматотропина (GH), кальпастатина (CAST), дифференциального фактора роста (GDF 9) у овец татарстанской породы // Овцы, козы, шерстяное дело. 2020. N 1. С. 2‐3.; Широкова Н.В., Колосов А.Ю., Гетманцева Л.В. Полиморфизм гена дифференциального фактора роста (GDF9) у овец сальской породы // Главный зоотехник. 2014. N 11. С. 22‐28.; Селионова М.И., Чижова Л.Н., Суржикова Е.С., Подкорытов Н.А., Подкорытов А.Т. Полиморфизм генов CAST, GH, GDF9 овец горно‐алтайской породы // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2020. Т. 50. N 1. С. 92‐100.; Чижова Л.Н., Суржикова Е.С., Забелина М.В., Луцива Е.Д., Ефимова Н.И. Полиморфизм генов GH, СAST у овец в связи с показателями резистентности // Саратовский государственный аграрный университет имени Н.И. Вавилова. 2020. N 12. С. 75‐77.; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2580

الاتاحة: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2580
https://doi.org/10.18470/1992-1098-2022-3-78-84

المؤلفون: A. Ozdemirov A., L. Chizhova N., A. Khozhokov A., E. Surzhikova S., A. Mikhaylenko K., А. Оздемиров А., Л. Чижова Н., А. Хожоков А., Е. Суржикова С., А. Михайленко К.

المصدر: South of Russia: ecology, development; Том 16, № 4 (2021); 146‐151 ; Юг России: экология, развитие; Том 16, № 4 (2021); 146‐151 ; 2413-0958 ; 1992-1098 ; 10.18470/1992-1098-2021-4

مصطلحات موضوعية: Adaptation, breeding conditions, population, haematological profile, genetic variation, dairy cattle, Адаптация, условия содержания, популяция, гематологический профиль, генетическая изменчивость, молочный скот

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2351/1245; Алимов Н.И., Павлов А.Ю., Попович В.И. и др. Клетки крови как индикатор токсического действия отравляющих веществ. М., 2003. 205 с.; Барнаш Е.Н. Гематологический профиль карачаевских овец в онтогенезе в условиях высокогорья // Сборник научных трудов Ставропольского научно‐исследовательского института животноводства и кормопроизводства 2010. Т. 3. N 1. С. 1‐2.; Силкина С.Ф., Барнаш Е.Н. Морфо‐биохимические показатели крови овец карачаевской породы в разных условиях содержания // Овцы, козы, шерстяное дело. 2012. N 2. 83 с.; Jensen F.B. The dual roles of red blood cells in tissue oxygen delivery: Oxygen carriers and regulators of local blood flow // The Journal of experimental biology. 2009. Iss. 212. N21. P. 3387‐3393. DOI:10.1242/jeb.023697; Козинец Г.И., Высоцкий В.В., Захаров В.В. и др. Кровь и экология. М., 2007. 430 с.; Янчуков И.Н., Ермилов А.Н., Харитонов С.Н., Глущенко М. Роль геномной оценки в разведении молочного скота // Молочное и мясное скотоводство. 2013. N8. С. 6‐8.; Селионова М.И., Чижова Л.Н., Михайленко А.К., Суржикова Е.С., Шарко Г.Н. Оценка адаптационной перестройки овец в разных условиях на основе биомаркеров // Вестник АПК Ставрополья. 2019. N 2 (34). С. 19‐25.; Оздемиров А.А., Анаев М.С., Рамазанова Д.М. Влияние нарушений метаболического гомеостаза у лубоко стельных коров на состояние естественной резистентности новорожденных телят и проявление у них болезней органов пищеварения // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2016. N 11‐3. С. 496‐503.; Селионова М.И., Чижова Л.Н., Бобрышова Г.Т., Суржикова Е.С., Михайленко А.К. Перспективные генетические маркеры крупного рогатого скота // Вестник АПК Ставрополья. 2018. N 3 (31). С. 44‐51. DOI:10.31279/2222‐9345‐2018‐7‐31‐44‐51; Чижова Л.Н., Суржикова Е.С., Михайленко Т.Н. Оценка генетического потенциала молодняка молочного скота по маркерным генам CSN3, GH, PIT‐1, PRL // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2020. N 6. С. 40‐47.; Селионова М.И., Чижова Л.Н., Суржикова Е.С., Шарко Г.Н., Михайленко Т.Н., Чудновец А.И. Породные особенности аллельного профиля генов, контролирующих молочную продуктивность крупного рогатого скота // АгроЗооТехника. 2019. Т. 2. N 1. С. 3. DOI:10.15838/alt.2019.2.1.3 URL: http://azt‐journal.ru/article/28091?_lang=en (дата обращения: 29.03.2021); Ильина А.В., Муштукова Ю.В., Хуртина О.А. Генетическая оценка состояния популяционного генофонда крупного рогатого скота ярославской породы в ОАО «Михайловское» Ярославского района // Вестник АПК Верхневолжья. 2014. N 4 (28). С. 39‐43.; Safronova O., Babich E., Ovchinnikova L., Ovchinnikov A. Polymorphism of Kappa‐Casein, Somatotropin, Beta‐Lactoglobulin, Prolactin, and Thyreoglobulin Genes of Black and White Cattle of North Kazakhstan // J. Pharm. Sci. & Res. 2017. N 9 (5). Р. 568‐573.; Методические рекомендации по проведению ДНК‐тестирования племенных животных субъектов племенного животноводства по генам, определяющим продуктивные качества / сост. В.К. Пестис, О.А. Епишко и др. Гродно, ГГАУ. 2016. 30 с.; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2351

الاتاحة: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2351
https://doi.org/10.18470/1992-1098-2021-4-146-151

المؤلفون: A. A. Ozdemirov, L. N. Chizhova, A. A. Khozhokov, E. S. Surzhikova, G. D. Dogeev, S. Sh. Abdulmagomedov, А. А. Оздемиров, Л. Н. Чижова, А. А. Хожоков, Е. С. Суржикова, Г. Д. Догеев, С. Ш. Абдулмагомедов

المصدر: South of Russia: ecology, development; Том 16, № 2 (2021); 39-44 ; Юг России: экология, развитие; Том 16, № 2 (2021); 39-44 ; 2413-0958 ; 1992-1098 ; 10.18470/1992-1098-2021-2

مصطلحات موضوعية: овцы, adaptation, polymorphism, CAST, GH, GDF9 genes, genetic variability, sheep, адаптация, полиморфизм, гены CAST, GDF9, генетическая изменчивость

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2226/1206; Столповский Ю.А., Захаров-Гезехус И.А. Проблема сохранения генофондов доместицированных животных // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2017. Т. 21. N 4. С. 477-486. DOI:10.18699/VJ17.266; Римиханов Н.И., Хожоков А.А., Алилов М.М., Абакаров А.А., Магомедов Ш.М. Состояние и перспективы развития овцеводства в Республике Дагестан // Овцы, козы, шерстное дело. 2018. N 1. С. 5-6.; Мусалаев Х.Х., Абдуллабеков Р.А. Разработка селекционных приемов совершенствования мериносового типа овец для разведения в предгорной провинции Дагестана // Горное сельское хозяйство. 2018. N 3. С. 145-148.; Оздемиров А.А. Из истории создания Дагестанской горной породы овец (обзор) // Главный зоотехник. 2019. N 12. С.10-15.; Хожоков А.А., Абакаров А.А., Магомедов Ш.М. Межпородное скрещивание и мясная продуктивность овец в горно-отгонном овцеводстве // Материалы международной конференции «Основные направления развития науки и образования в АПК», Махачкала, 2018. С. 278-281.; Магомедов Ш.М. Резервы улучшения качества продукции овцеводства // Горное сельское хозяйство. 2018. N 3. С. 151-154.; Магомедов Ш.М., Садыков М.М. Молодая баранина -резерв увеличения продукции овцеводства // Проблемы развития АПК региона. 2018. N 2. С. 132-134. DOI:10.15217/issn2079-0996.2018.2.132; Azari M.A., Dehnavi E., Yousefi S., Shahmohamadi L. Polymorphism of Calpastatin, Calpain and myostatin genes in native Dalagh sheep in Iran // Slovak Journal of Animal Science. 2012. Vol. 45. N 1. P. 111-116.; Suleman M., Khan S.U., Riaz M.N., Yousaf M., Shah A., Ishaq R., Abdul ghafoor Calpastatin (CAST) gene polymorphism in Kajli, Lohi and Thalli sheep breds // Afrikan J. Biotechnol. 2012. V. 11. N 47. P. 10655-10660. DOI:10.5897/AJB11.2478; Колосов Ю.А., Кобыляцкий П.С., Широкова Н.В., Гетманцева Л.В., Бакоев Н.Ф. Биотехнологические методы изучения полиморфизма гена гормона роста // Дальневосточный аграрный вестник. 2017. N 2 (42). С. 82-86.; Hajihosseinlo A., Semsarnejad A., Abollow E., Hashrafi F., Negahdary M. Effect of GH gene polymorphisms on biometric traits in Makooeisheep // Annals of Biological Research. 2013. V. 4. Iss. 6. P. 351-355.; Оздемиров А.А., Селионова М.И., Чижова Л.Н., Хожоков А.А., Суржикова Е.С., Рамазанова Д.М. Полиморфизм генов PIT-1, PRL, GH молочного скота кавказской бурой породы, разводимого в различных природно-экологических зонах Республики Дагестан // Юг России: экология, развитие. 2020. Т. 15. N 2. C. 165-171. DOI:10.18470/1992-1098-2020-2-165-171; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2226

الاتاحة: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2226
https://doi.org/10.18470/1992-1098-2021-2-39-44

المؤلفون: Anastasia M. Khrustaleva, Ekaterina V. Ponomareva, Maria V. Ponomareva, Natalia V. Klovach

المصدر: Известия ТИНРО, Vol 190, Iss 3, Pp 18-32 (2017)

مصطلحات موضوعية: нерка oncorhynchus nerka, онп, snp, дифференциация популяций, популяционная структура, адаптивная генетическая изменчивость, sockeye salmon, oncorhynchus nerka, single nucleotide polymorphism, population differentiation, population structure, adaptive genetic variability, Aquaculture. Fisheries. Angling, SH1-691

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://izvestiya.tinro-center.ru/jour/article/view/313; https://doaj.org/toc/1606-9919; https://doaj.org/toc/2658-5510

URL الوصول: https://doaj.org/article/c2caeeccb93d42c0b2ff3e71e3d11486

المؤلفون: Duca, M.V., Port, A.I., Mutu Calmîş, A., Mutu, A., Clapco, S.F., Клапко, С.Ф.

المصدر: Buletinul Academiei de Ştiinţe a Moldovei. Ştiinţele vieţii 340 (1) 81-94

مصطلحات موضوعية: Orobanche cumana Wallr, genotipare SSR, variabilitate genetică, analiza componentelor principale (ACP), SSR genotyping, genetic variability, principal component analysis (PCA), генотипирование SSR, генетическая изменчивость, метод главных компонентoв

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/114607; urn:issn:1857064X

الاتاحة: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/114607

المؤلفون: T. A. Poliakova, E. V. Banaev, M. A. Tomoshevich, Т. А. Полякова, Е. В. Банаев, М. А. Томошевич

المساهمون: This research was supported by the Project VI.52.1.2 “Analysis of the intraspecific structure of resource plants in Asian Russia, selection and conservation of the gene pool” (АААА-А17-117012610054-6) and is carried out within the framework of the topic “Genomic research and genetic polymorphism of cells, organisms and populations” (0112-2020-0001)

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 24, № 5 (2020); 481-488 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 24, № 5 (2020); 481-488 ; 2500-3259 ; 2500-0462 ; 10.18699/VJ20.637

مصطلحات موضوعية: транзиция, N. schoberi, N. sibirica, N. komarovii, genetic variability, taxonomy, molecular identification, ITS, transition, генетическая изменчивость, таксономия, молекулярная идентификация

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2712/1405; Banaev E.V., Tomoshevich M.A., Ak-Lama T.A. Nitrariaceae. In: Marhold K., Breitwieser I. IAPT Chromosome Data 27. Taxon. 2018;67(5):1042. DOI 10.12705/675.24.; Banaev E.V., Tomoshevich M.A., Yamtyrov M.B. Variability of metric and qualitative traits of Nitraria species in relation to ecological and climatic conditions of Siberian habitats. Contemp. Probl. Ecol. 2017;10(6):664-673. DOI 10.1134/S1995425517060038.; Banaev E.V., Voronkova M.S., Vysochina G.I., Tomoshevich M.A. Population structure and differentiation of the Siberian representatives of the genus Nitraria L. (Nitrariaceae) based on the composition and content of phenolic compounds in leaves. Contemp. Probl. Ecol. 2015;8(6):735-742. DOI 10.1134/S1995425515060025.; Bolson M., Smidt E.C., Brotto M.L., Silva-Pereira V. ITS and trnHpsbA as efficient DNA barcodes to identify threatened commercial woody angiosperms from southern Brazilian Atlantic Rainforests. PLoS One. 2015;10(12):e0143049. DOI 10.1371/journal.pone.0143049.; CBOL Plant Working Group. A DNA barcode for land plants. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2009;106:12794-12797.; Darriba D., Taboada G.L., Doallo R., Posada D. jModelTest 2: more models, new heuristics and parallel computing. Nat. Methods. 2012;9(8):772. DOI 10.1038/nmeth.2109.; Doyle J.J., Doyle J.L. Isolation of plant DNA from fresh tissue. Focus. 1990;12:12-15.; Efimova A.P., Poliakova T.A., Belokon M.M., Belokon Y.S., Politov D.V. Morphological and molecular genetic verification of interspecific hybrid Salix×zhataica (Salicaceae) from Central Yakutia. Russ. J. Genet. 2019;55(5):551-556. DOI 10.1134/S1022795419050053.; Felsenstein J. Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap. Evolution. 1985;39:783-791.; Feng Sh., Jiang M., Shi Yu., Jiao K., Shen Ch., Lu J., Ying Q., Wang H. Application of the ribosomal DNA ITS2 region of Physalis (Solanaceae): DNA barcoding and phylogenetic study. Front. Plant Sci. 2016;7:1047. DOI 10.3389/fpls.2016.01047.; Gao T., Yao H., Song J., Zhu Y., Liu C., Chen S. Evaluating the feasibility of using candidate DNA barcodes in discriminating species of the large Asteraceae family. BMC Evol. Biol. 2010; 10:324. DOI 10.1186/1471-2148-10-324.; Hall T.A. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symposium Ser. 1999;41:95-98.; Hollingsworth P.M. Refining the DNA barcode for land plants. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011;108(49):19451-19452. DOI 10.1073/pnas.1116812108.; Guindon S., Gascuel O. A simple, fast and accurate method to estimate large phylogenies by maximum-likelihood. Syst. Biol. 2003;52:696-704.; Koropachinskii I.Y. Tree Flora of Siberia. Novosibirsk, 2016. (in Russian); Kovtonyuk N.K., Tomoshevich M.A., Banaev E.V. Typification of the name Nitraria komarovii (Nitrariaceae). Bot. Pac. 2019; 8(2):115-118. DOI 10.17581/bp.2019.08210.; Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C., Tamura K. MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across computing platforms. Mol. Biol. Evol. 2018;35(6):1547-1549. DOI 10.1093/molbev/msy096.; Li D.Z., Gao L.M., Li H.T., Wang H., Ge X.J., Liu J.Q., Chen Z.D., Zhou S.L., Chen S.L., Yang J.B., Fu C.X., Zeng C.X., Yan H.F., Zhu Y.J., Sun Y.S., Chen S.Y., Zhao L., Wang K., Yang T., Duan G.W. Comparative analysis of a large dataset indicates that internal transcribed spacer (ITS) should be incorporated into the core barcode for seed plants. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011; 108(49):19641-19646. DOI 10.1073/pnas.1104551108.; Muratova E.N., Goryachkina O.V., Banaev E.V. Karyological studies on Siberian species of Nitraria L. (Nitrariaceae). Turczaninowia. 2013;16(4):50-54. DOI 10.14258/turczaninowia.16.4.9. (in Russian); Peshkova G.A. Family Nitrariaceae. In: Flora of Siberia. Novosibirsk, 1996;10:34-35. (in Russian); Polyakova T.A., Shatokhina A.V., Shirmanov M.V., Bondarenko G.N. Assessment of taxonomy relationships among the Siberian representatives of Spiraea L. (section Chamaedryon Ser., Rosaceae Juss.) based on the ITS sequence polymorphism. In: Problems of Botany of South Siberia and Mongolia: Proceedings of the 14th Scientific and Practical Conference, May 25–29, 2015, Barnaul. Barnaul, 2015;353-358. (in Russian); Potter D., Still S.M., Grebenc T., Ballian D., Božič G., Franjiæ J., Kraigher H. Phylogenetic relationships in tribe Spiraeeae (Rosaceae) inferred from nucleotide sequence data. Plant Syst. Evol. 2007;266:105-118. DOI 10.1007/s00606-007-0544-z.; Rauscher J.T., Doyle J.J., Brown A.H.D. Internal transcribed spacer repeat-specific primers and the analysis of hybridization in the Glycine tomentella (Leguminosae) polyploid complex. Mol. Ecol. 2003;11(12):2691-2702. DOI 10.1046/j.1365-294X.2002.01640.x.; Ren B.Q., Xiang X.G., Chen Z.D. Species identification of Alnus (Betulaceae) using nrDNA and cpDNA genetic markers. Mol. Ecol. Resour. 2010;10(4):594-605. DOI 10.1111/j.1755-0998.2009.02815.x.; Rodionov A.V., Gnutikov A.A., Kotsinyan A.R., Kotseruba V.V., Nosov N.N., Punina E.O., Raiko M.P., Tyupa N.B., Kim E.S. Sequence ITS1–5.8S rDNA–ITS2 in 35S rRNA genes as a marker in grass (Poaceae) molecelar phylogeny. Uspekhi Sovremennoy Biologii = Advances in Current Biology. 2016;136(5):419-437. (in Russian); Ronquist F., Huelsenbeck J.P. MrBayes 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models. Bioinformatics. 2003;19(12): 1572-1574. DOI 10.1093/bioinformatics/btg180.; Ronquist F., Teslenko M., van der Mark P., Ayres D.L., Darling A., Hohna S., Larget B., Liu L., Suchard M.A., Huelsenbeck J.P. MrBayes 3.2: efficient Bayesian phylogenetic inference and model choice across a large model space. Syst. Biol. 2012;61(3): 539-542. DOI 10.1093/sysbio/sys029.; Schneyer V.S. DNA barcoding is a new approach in comparative genomics of plants. Russ. J. Genet. 2009;45(11):1267-1278. DOI 10.1134/S1022795409110027.; Schneyer V.S., Rodionov A.V. Plant DNA barcodes. Uspekhi Sovremennoy Biologii = Advances in Current Biology. 2018;138(6): 531-538. DOI 10.7868/S0042132418060017. (in Russian); Song J., Shi L., Li D., Sun Y., Niu Yu., Chen Z., Luo H., Pang X., Sun Z., Liu Ch., Lv A., Deng Y., Larson-Rabin Z., Wilkinson M., Chen Sh. Extensive pyrosequencing reveals frequent intra-genomic variations of internal transcribed spacer regions of nuclear ribosomal DNA. PLoS One. 2012;7(8):e43971. DOI 10.1371/journal.pone.0043971.; Srikulnath K., Sawasdichai S., Jantapanon T.K., Pongtongkam P., Peyachoknagul S. Phylogenetic relationship of Dendrobium species in Thailand inferred from chloroplast matK gene and nuclear rDNA ITS region. Hort. J. 2015. DOI 10.2503/hortj.MI-028.; Tamura K. Estimation of the number of nucleotide substitutions when there are strong transition-transversion and G+C-content biases. Mol. Biol. Evol. 1992;9:678-687.; Temirbayeva K., Zhang M.-L. Molecular phylogenetic and biogeographical analysis of Nitraria based on nuclear and chloroplast DNA sequences. Plant Syst. Evol. 2015;301:1897-1906. DOI 10.1007/s00606-015-1202-5.; Tomoshevich M.A., Banaev E.V., Ak-Lama T.A. Nitraria komarovii Iljin & Lava ex Bobrov (Nitrariaceae), a new record for the flora of Kazakhstan. Check List. 2019;15(5):891-897. DOI 10.15560/15.5.891.; Wang X.-Y., Zheng S.-H., Liu Y., Han J.-P. ITS2, a better DNA barcode than ITS in identification of species in Artemisia L. Chin. Herb. Med. 2016;8(4):352-358. DOI 10.1016/S1674-6384(16)60062-X.; Xu B., Zeng X.-M., Gao X.-F., Jin D.-P., Zhang L.-B. ITS non-concerted evolution and rampant hybridization in the legume genus Lespedeza (Fabaceae). Sci. Rep. 2017;7:e40057. DOI 10.1038/srep40057.; Zhang Zh.-L., Song M.-F., Guan Y.-H., Li H.-T., Niu Y.-F., Zhang L.-X., Ma X.-J. DNA barcoding in medicinal plants: testing the potential of a proposed barcoding marker for identification of Uncaria species from China. Biochem. Syst. Ecol. 2015;60:8-14. DOI 10.1016/j.bse.2015.02.017.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2712

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2712
https://doi.org/10.18699/VJ20.640

المؤلفون: A. P. Kryukov, А. П. Крюков

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 23, № 2 (2019); 232-238 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 23, № 2 (2019); 232-238 ; 2500-3259

مصطلحات موضوعية: дивергенция, hybrid zone, crow, magpie, speciation, genetic variation, DNA, isolation, divergence, гибридные зоны, вороны, сороки, видообразование, генетическая изменчивость, изоляция

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1941/1205; Anijalg P., Ho S.Y.W., Davison J., Keis M., Tammeleht E., Bobowik K., Tumanov I.L., Saveljev A.P., Lyapunova E.A., Vorobiev A.A., Mar¬kov N.A., Kryukov A.P., Kojola I., Swenson J.E., Hagen S.B., Eiken H.G., Paule L., Saarma U. Large-scale migrations of brown bears in Eurasia and to North America during the Late Pleistocene. J. Biogeogr. 2018;45:394-405. DOI 10.1111/jbi.13126.; Avise J.C. Phylogeography: The History and Formation of Species. Harward Univ. Press, 2000.; Blinov V.N., Blinova T.K., Kryukov A.P. Interactions of Hooded and Carrion Crows (Corvus cornix L., C. corone L.) in their zone of sympatry and hybridization: the zone structure and possible isolating factors. In: Rossolimo O.L. (Ed.). Hybridization and Species Prob¬lem in Vertebrates. Moscow: Moscow State University Publ., 1993; 97-117. (in Russian); Blinov V.N., Kryukov A.P. Evolutionary stability of hybrid zones: as- sortative mating instead of elimination of hybrids in Carrion and Hooded Crows. Doklady Akademii Nauk = Proceedings of the Rus-sian Academy of Sciences. 1992;325(5):1085-1087. (in Russian) Fok K.W., Wade C.M., Parkin D.T. Inferring the phylogeny of disjunct populations of the azure-winged magpie Cyanopica cyanus from mi-tochondrial control region sequences. Proc. R. Soc. Lond. B. 2002; 269:1671-1679. DOI 10.1098/rspb.2002.2057.; Haas F., Pointer M., Saino N., Brodin A. An analysis of population ge¬netic differentiation and genotype-phenotype association across the hybrid zone of carrion and hooded crows using microsatellites and MC1R. Mol. Ecol. 2009;18:294-305. DOI 10.1111/j. 1365-294X. 2008.04017.x.; Haring E., Daubl B., Pinsker W., Kryukov A., Gamauf A. Genetic di-vergences and intraspecific variation in corvids of the genus Cor-vus (Aves: Passeriformes: Corvidae) - a first survey based on mu-seum specimens. J. Zool. Syst. Evol. Res. 2012;50(3):230-246. DOI 10.1111/j.1439-0469.2012.00664.x.; Haring E., Gamauf A., Kryukov A. Phylogeographic patterns in wide-spread corvid birds. Mol. Phylogenet. Evol. 2007;45(3):840-862. DOI 10.1016/j.ympev.2007.06.016.; Harrison R.G. Hybrid zones: windows on evolutionary process. Oxford Surv. Evol. Biol. 1990;7:69-128.; Hewitt G.M. Hybrid zones: natural laboratories for evolutionary stud-ies. Trends Ecol. Evol. 1988;3:158-167.; Klicka J., Zink R.M. The importance of recent ice ages in speciation: a failed paradigm. Science. 1997;277:1666-1669.; Kryukov A.P., Blinov V.N. Interaction of Hooded and Carrion crows (Corvus cornix L., C. corone L.) in the zone of sympatry and hybrid¬ization: is there selection against hybrids? Zhurnal Obshchey Biolo- gii = Journal of General Biology. 1989;50(1):128-135. (in Russian); Kryukov A.P., Blinov V.N. Hybrid zone of Hooded and Carrion crows in Siberia. J. Ornithologie. 1994;135:47.; Kryukov A., Iwasa M.A., Kakizawa R., Suzuki H., Pinsker W., Ha¬ring E. Synchronic east-west divergence in azure-winged magpies (Cyanopica cyanus) and magpies (Pica pica). J. Zool. Syst. Evol. Res. 2004;42:342-351.; Kryukov A., Spiridonova L., Mori S., Lobkov E., Redkin Ya., Go- roshko O., Arkhipov V., Haring E. Deep phylogeographic breaks in magpie Pica pica across the Holarctic: concordance with bioacous¬tics and phenotypes. Zool. Sci. 2017;34:185-200. DOI 10.2108/ zs160119.; Kryukov A., Spiridonova L., Nakamura S., Haring E., Suzuki H. Com¬parative phylogeography of the two crow species, Jungle crow Cor- vus macrorhynchos and Carrion crow Corvus corone. Zool. Sci. 2012;29(8):484-492. DOI 10.2108/zsj.29.484.; Kryukov A.P., Suzuki H. Phylogeography of carrion, hooded and jungle crows (Aves, Corvidae) inferred from partial sequencing of the mi¬tochondrial cytochrome b gene. Genetika = Genetics. 2000;36:922- 929. (in Russian); Kryukov A.P., Uphyrkina O.V., Chelomina G.N. Analysis of the Crow genomes (Corvidae, Passeriformes) from the zone of overlapping areas and hybridization. Genetika = Genetics. 1992;28(6):136-140. (in Russian); Mayr E. Systematics and The Origin of Species. New York: Columbia Univ. Press, 1942.; Mayr E. Animal Species and Evolution. Cambridge, Mass: The Belknap Press; Harward Univ. Press, 1963.; Nazarenko A.A. On faunistic cycles (extinction - expansion - extinc-tion.) with special reference to the East Palearctic dendrophilous avifauna. Zhurnal Obshchey Biologii = Journal of General Biology. 1982;43(6):823-835. (in Russian); Poelstra J.W., Vijay N., Bossu C.M., Lantz H., Ryll B., Muller I., Bag- lione V, Unneberg P., Wikelski M., Grabherr M.G., Wolf J.B.W. The genomic landscape underlying phenotypic integrity in the face of gene flow in crows. Science. 2014;344:1410-1414. DOI 10.1126/ science.1253226.; Roslik G.V., Kryukov A.P. A karyological study of some Corvine birds (Corvidae, Aves). Genetika = Genetics. 2001;37(7):796-806. (in Rus¬sian); Saino N., Villa S. Pair composition and reproductive success across a hybrid zone of Carrion Crows and Hooded Crows. Auk. 1992;109: 543-555.; Spiridonova L.N., Kryukov A.P. Genetic variability of carrion and hooded crows and their hybrids according to RAPD-PCR data. Tsi- tologiya i Genetika = Cytology and Genetics. 2004;38(2):31-39. (in Russian); Uphyrkina O.V., Vasiliev V.A., Kryukov A.P., Ryskov A.P. Genomic fingerprints in crows: a study of the genetic structure of populations of the hybrid zone. Genetika = Genetics. 1995;31(7):753-757. (in Russian); Vijay N., Bossu C.M., Poelstra J.W., Weissensteiner M.H., Suh A., Kryukov A.P., Wolf J.B.W. Evolution of heterogeneous genome dif¬ferentiation across multiple contact zones in a crow species com¬plex. Nat. Commun. 2016;7:13195. DOI 10.1038/ncomms13195.; Wolf J.B.W., Bayer T., Haubold B., Schilhabel M., Rosenstiel P., Tautz D. Nucleotide divergence vs. gene expression differentiation: comparative transcriptome sequencing in natural isolates from the carrion crow and its hybrid zone with the hooded crow. Mol. Ecol. 2010;19:162-175. DOI 10.1111/j.1365-294X.2009.04471.x.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1941

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1941
https://doi.org/10.18699/VJ19.487

المؤلفون: Адамова, В. В., Снегин, Э. А., Украинский, П. А.

مصطلحات موضوعية: биология, беспозвоночные, молюски, моллюски-вселенцы, Xeropicta derbentina, Gastropoda, Pulmonata, Hygromiidae, популяции, Белгородская область, сравнительный анализ, морфометрические признаки, генетическая изменчивость

Relation: Адамова, В.В. Морфометрическая и генетическая изменчивость популяций моллюска-вселенца Xeropicta derbentina (Gastropoda, Pulmonata, Hygromiidae) / В.В. Адамова, Э.А. Снегин, П.А. Украинский // Ruthenica. - 2019. - Vol.29, N3.-Р. 149-160.; http://dspace.bsu.edu.ru/handle/123456789/27112

الاتاحة: http://dspace.bsu.edu.ru/handle/123456789/27112

مصطلحات موضوعية: сосна, полусибсы, селекция, наследуемость, генетическая изменчивость, плюсовые деревья

URL الوصول: https://explore.openaire.eu/search/publication?articleId=doi_________::3c7a0c2bd231f4b77145c568eff2b7b9

المؤلفون: С. А. Сергеев, О. В. Струнин, Е. Е. Литасова

المصدر: Патология кровообращения и кардиохирургия, Vol 17, Iss 4, Pp 59-62 (2015)

مصطلحات موضوعية: СЕПСИС, ПОЛИМОРФИЗМ, ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ПРЕДРАСПОЛОЖЕННОСТЬ, ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ, ГЕН, Surgery, RD1-811

وصف الملف: electronic resource

Relation: http://journalmeshalkin.ru/index.php/heartjournal/article/view/99; https://doaj.org/toc/1681-3472; https://doaj.org/toc/2500-3119

URL الوصول: https://doaj.org/article/73a9312474524c868bd25260e408f48a

المؤلفون: Port, A.I., Mutu Calmîş, A., Mutu, A., Ciocîrlan, N.G., Ciocarlan, N., Чокырлан, Н.Г., Duca, M.V.

المصدر: Buletinul Academiei de Ştiinţe a Moldovei. Ştiinţele vieţii 336 (3) 95-108

مصطلحات موضوعية: Origanum vulgare ssp. vulgare, genotipare SSR, variabilitate genetică, analiza componentelor principale, SSR genotyping, genetic variability, principal component analysis, генотипирование SSR, генетическая изменчивость, метод главных компонент

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/74397; urn:issn:1857064X

الاتاحة: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/74397

المؤلفون: T. A. Poliakova, A. V. Shatokhina, G. N. Bondarenko, D. V. Politov, Т. А. Полякова, А. В. Шатохина, Г. Н. Бондаренко, Д. В. Политов

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 22, № 6 (2018); 654-659 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 22, № 6 (2018); 654-659 ; 2500-3259 ; 2500-0462

مصطلحات موضوعية: популяционная структура, Spiraea f lexuosa, Spiraea chamaedryfolia, nuclear microsatellite loci, SSR, multiplex panels, genetic variability, population structure, ядерные микросателлитные локусы, мультиплексные панели, генетическая изменчивость

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1649/1114; Ashizawa K., Kimura M.K., Takahashi A., Lian Ch., Kuramoto N. Development of microsatellite markers in a riparian shrub, Spiraea thunbergii (Rosaceae). Am. J. Bot. 2012;99(7):e283­e285. DOI 10.3732/ajb.1100587.; Brzyski J.R. Isolation and characterization of microsatellite markers in the rare clonal plant, Spiraea virginiana (Rosaceae). Am. J. Bot. 2010;97:e20­e22. DOI 10.3732/ajb.1000008.; Doyle J.J., Doyle J.L. Isolation of plant DNA from fresh tissue. Focus. 1990;12:12­15. Earl D.A., von Holdt B.M. STRUCTURE HARVESTER: a website and program for visualizing STRUCTURE output and implementing the Evanno method. Conserv. Genet. Resour. 2012;4:359­361. DOI 10.1007/s12686­011­9548­7.; Evanno G., Regnaut S., Goudet J. Detecting the number of clusters of individuals using the software STRUCTURE: a simulation study. Mol. Ecol. 2005;14:2611­2620. DOI 10.1111/j.1365­294X.2005.02553.x.; Huh M.K. Genetic diversity and population structure of Spiraea prunifolia for. simpliciflora by inter­simple sequence repeats. J. Life Sci. 2009;19,9:1183­1189.; Jakobsson M., Rosenberg N.A. CLUMPP: a cluster matching and permutation program for dealing with label switching and multimodality in analysis of population structure. Bioinformatics. 2007;23(14): 1801­1806. DOI 10.1093/bioinformatics/btm233.; Khan G., Zhang F., Gao Q., Jiao X., Fu P., Xing R., Zhang J., Chen S. Isolation of 16 microsatellite markers for Spiraea alpina and S. mongolica (Rosaceae) of the Qinghai­Tibet Plateau. Appl. Plant Sci. 2014;2(1):e1­e4. DOI 10.3732/apps.1300059.; Peakall R., Smouse P.E. GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research­an update. Bioinformatics. 2012;28:2537­2539. http://bioinformatics.oxfordjournals.org/content/28/19/2537.; Pojarkova A.I. Spiraeoideae Agardh. Flora of SSSR. Ed. V.L. Komarov. Moscow; Saint­Petersburg: Academy of Sciences of USSR Publ. 1939;9:279­318.; Polyakova T.A. Vnutrividovaya izmenchivost’ dal’nevostochnyh i sibirskih vidov roda Spiraea L. Novosibirsk, 2004. (in Russian); Pritchard J.K., Stephens M., Donnelly P. Inference of population structure using multilocus genotype data. Genetics. 2000;155:945­959.; Rosenberg N.A. DISTRUCT: a program for the graphical display of population structure. Publishers of Center for Computational Medicine and Biology. Department of Human Genetics. University of Michigan, 2007. http://rosenberglab.bioinformatics.med.umich.edu/distruct.html.; Van Oosterhout C., Hutchinson W.F., Wills D.P.M., Shipley P. Microchecker: software for identifying and correcting genotyping errors in microsatellite data. Mol. Ecol. Notes. 2004;4:535­538. DOI 10.1111/j.1471­8286.2004.00684.x.; Yeh F.C., Yang R.C., Boyle T. POPGENE Version 1.31. Microsoft Window­based freeware for population genetic analysis. 1999; available at http://www.ualberta.ca/~fyeh/index.htm.; Zhang F.­Q., Gao Q.­B., Zhang D.­J., Duan Y.­Z., Li Y.­H., Fu P.­ C., Xing R., Gulzar K., Chen S.­L. Phylogeography of Spiraea alpina in the Qinghai­Tibetan Plateau inferred from chloroplast DNA sequence variations. J. Syst. Evol. 2012;50(4):276­283. DOI 10.1111/j.1759­6831.2012.00194.x.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1649

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1649
https://doi.org/10.18699/VJ18.407

المؤلفون: E. A. Mudrik, Е. I. Ilyashenko, О. А. Goroshko, T. A. Kashentseva, М. V. Korepov, I. A. Sikorskiy, G. S. Dzhamirzoev, V. Yu. Ilyashenko, D. V. Politov, Е. А. Мудрик, Е. И. Ильяшенко, О. А. Горошко, Т. А. Кашенцева, М. В. Корепов, И. А. Сикорский, Г. С. Джамирзоев, В. Ю. Ильяшенко, Д. В. Политов

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 22, № 5 (2018); 586-592 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 22, № 5 (2018); 586-592 ; 2500-3259

مصطلحات موضوعية: гнездовые группировки, microsatellite loci, Control Region, genetic variation, genetic differentiation, breeding groups, микросателлитные локусы, контрольный регион, генетическая изменчивость, генетическая дифференциация

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1588/1098; Avise J.C. Phylogeography: The history and formation of species. Cambridge: Harvard Univ. Press, 2000.; Bandelt H.-J., Forster P., Röhl A. Median-joining networks for inferring intraspecific phylogenies. Mol. Biol. Evol. 1999;16:37-48. DOI 10.1093/oxfordjournals.molbev.a026036.; Belik V.P., Guguyeva E.V., Vetrov V.V., Milobog Y.V. The Demoiselle crane in the northwestern Caspian lowland: distribution, number, and breeding success. Cranes of Eurasia (Biology, Distribution, Migrations, Management). 2011;4:157-174.; Earl D.A., vonHoldt B.M. STRUCTURE HARVESTER: a website and program for visualizing STRUCTURE output and implementing the Evanno method. Conserv. Genet. Res. 2011;4(2):359-361. DOI 10.1007/s12686-011-9548-7.; Fu Y.X. Statistical tests of neutrality of mutations against population growth, hitchhiking and background selection. Genetics. 1997;147: 915-925.; Haase M., Ilyashenko V. A glimpse on mitochondrial differentiation among four currently recognized subspecies of the common crane Grus grus. Ardeola. 2012;59(1):131-136.; Hasegawa O., Ishibashi Y., Abe S. Isolation and characterization of microsatellite loci in the red-crowned crane Grus japonensis. Mol. Ecol. 2000;9:1677-1678.; Hasegawa O., Takada S., Yoshida M.C., Abe S. Variation of mitochondrial control region sequences in three crane species, the red-crowned crane Grus japonensis, the common crane G. grus and the hooded crane G. monacha. Zool. Sci. 1999;16:685-692.; Hudson R.R., Slatkin M., Maddison W.P. Estimation of levels of gene flow from DNA sequence data. Genetics. 1992;132(2):583-589.; Ilyashenko E.I. Changes in Demoiselle crane status over the last 20 years. Proc. of the VIIIth Europ. Crane Conf. Gallocanta, Spain, 10–14 Nov. 2014. Association Amigos de Gallocanta, 2016a;80-88.; Ilyashenko E.I. Estimated numbers of cranes (Gruiformes, Gruidae) in Northern Eurasia at the beginning of the twenty-first century. Biol. Bull. 2016b;43(9):1048-1051. DOI 10.1134/S1062359016090119.; Jakobsson M., Rosenberg N.A. CLUMPP: a cluster matching and permutation program for dealing with label switching and multimodality in analysis of population structure. Bioinformatics. 2007;2(14): 1801-1806. DOI 10.1093/bioinformatics/btm233.; Jones K.L., Barzen J., Ashley M.V. Geographic partitioning of microsatellite variation in the sarus crane. Anim. Conserv. 2005;8:1-8. DOI 10.1017/S1367943004001842.; Jones K.L., Henkel J.R., Howard J.J., Lance S.L., Hagen C., Glenn T.C. Isolation and characterization of 14 polymorphic microsatellite DNA loci for the endangered Whooping crane (Grus americana) and their applicability to other crane species. Conserv. Gen. Res. 2010;2(1): 251-254. DOI 10.1007/s12686-010-9196-3.; Jones K.L., Rodwell L., McCann K.I., Verdoorn J.H., Ashley M.V. Genetic conservation of South African wattled cranes. Biol. Conserv. 2006;127:98-106. DOI 10.1016/j.biocon.2005.07.016.; Katoh K., Misawa K., Kuma K., Miyata T. MAFFT: a novel method for rapid multiple sequence alignment based on fast Fourier transform. Nucleic Acids Res. 2002;30(14):3059-3066. DOI 10.1093/nar/gkf436.; Kearse M., Moir R., Wilson A., Stones-Havas S., Cheung M., Sturrock S., Buxton S., Cooper A., Markowitz S., Duran C., Thierer T., Ashton B., Mentjies P., Drummond A. Geneious Basic: an integrated and extendable desktop software platform for the organization and analysis of sequence data. Bioinformatics. 2012;28(12):1647-1649. DOI 10.1093/bioinformatics/bts199.; Librado P., Rozas J. DnaSP v5: a software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics. 2009;25(11):14511452. DOI 10.1093/bioinformatics/btp187.; Meares K., Dawson D., Horsburgh G.J., Perri M.R., Burke T., Taylor T.D. Characterisation of 14 blue crane Grus paradisea (Gruidae, AVES) microsatellite loci for use in detecting illegal trade. Conserv. Genet. 2008;9:1363-1367. DOI 10.1007/s10592-007-9490-0.; Meine C.D., Archibald G.W. (Eds.) The Cranes: Status Survey and Conservation Action Plan. IUCN, Gland, Switzerland, and Cam¬bridge, U.K., 1996.; Mudrik E.A., Kashentseva T.A., Redchuk P.S., Politov D.V. Microsatellite variability data confirm low genetic differentiation of Western and Eastern subspecies of Common crane Grus grus L. (Gruidae, Aves). Mol. Biol. 2015;49(2):260-266. DOI 10.1134/S0026893315020090.; Peakall R., Smouse P.E. GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research – an update. Bioinformatics. 2012;28(19):2537-2539. DOI 10.1093/bioinformatics/bts460.; Ponomarev A., Tatarinova T., Bubyakina V., Smagulova F., Kashentseva T., Morozov I. Variation of mitochondrial DNA D-loop sequences in the endangered Siberian crane Grus leucogeranus Pallas. Conserv. Genet. 2004;5:847-851.; Porras-Hurtado L., Ruiz Y., Santos C., Phillips C., Carracedo Á., Lareu M.V. An overview of STRUCTURE: applications, parameter settings, and supporting software. Front. Genet. 2013;4:98. DOI 10.3389/fgene.2013.00098.; Pritchard J.K., Matthew S., Peter D. Inference of population structure using multilocus genotype data: linked loci and correlated allele frequencies. Genetics. 2000;164(4):1567-1587. DOI 10.3410/f.1015548.197423.; Red Data Book of the Russian Federation. Animals. Moscow: Astrel, 2001.; Rhymer J.M., Fain M.G., Austin J.E., Johnson D.H., Krajewski C. Mitochondrial phylogeography, subspecific taxonomy, and conservation genetics of sandhill cranes (Grus canadensis; Aves: Gruidae). Conserv. Gen. 2001;2:203-218.; Rosenberg N.A. Distruct: a program for the graphical display of population structure. Mol. Ecol. Notes. 2003;4(1):137-138. DOI 10.1046/j.1471-8286.2003.00566.x.; Sugimoto T., Hasegawa O., Azuma N., Masatomi H., Sato F., Matsumoto F., Masatomi Y., Izumi H., Abe S. Genetic structure of the endangered red-crowned cranes in Hokkaido, Japan and conservation implications. Conserv. Genet. 2015;16:1395-1401. DOI 10.1007/s10592-015-0748-7.; Tajima F. Statistical method for testing the neutral mutation hypothesis by DNA polymorphism. Genetics. 1989;123:585-595.; Zhang L., Zhou L., Dai Y. Genetic structure of wintering Hooded Cranes (Grus monacha) based on mitochondrial DNA D-loop sequences. Chinese Birds. 2012;3(2):71-81. DOI 10.5122/cbirds.2012.0012.; Zou H.F., Dong H.Y., Kong W.Y., Ma J., Liu J. Characterization of 18 polymorphic microsatellite loci in the red-crowned crane (Grus japonensis), an endangered bird. Anim. Sci. J. 2010;81(4):519-522. DOI 10.1111/j.1740-0929.2010.00779.x.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1588

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1588
https://doi.org/10.18699/VJ18.398

المؤلفون: ЛУГОВОЙ, Сергей, КРАМАРЕНКО, Сергей, ЛИХАЧ, Вадим

مصطلحات موضوعية: генетическая изменчивость, микросателлиты, породы свиней, свиньи, genetic variation, pig breeds, swine

وصف الملف: application/pdf

Relation: Știința Agricolă;2017, N. 1; ЛУГОВОЙ, Сергей, КРАМАРЕНКО, Сергей, ЛИХАЧ, Вадим. Внутрипородная изменчивость свиней крупной белой породы на основе полиморфизма микросателлитов ДНК. In: Ştiinţa Agricolă. 2017, nr. 1, pp. 94-98. ISSN 1857-0003, eISSN 2587-3202.; http://repository.utm.md/handle/5014/23470

الاتاحة: http://repository.utm.md/handle/5014/23470

المؤلفون: Krynytskyj, H. T., Hayda, Yu. I., Yatsyk, R. M., Parpan, V. I., Los, S. A.

المصدر: Науковий вісник НЛТУ України; Том 27 № 8 (2017): Науковий вісник НЛТУ України; 37-44 ; Научный вестник НЛТУ Украины; Том 27 № 8 (2017): Научный Вестник НЛТУ Украины; 37-44 ; Scientific Bulletin of UNFU; Vol 27 No 8 (2017): Scientific Bulletin of UNFU; 37-44 ; 2519-2477 ; 1994-7836 ; 10.15421/402708

مصطلحات موضوعية: biological diversity, genetic variability, gene conservation objects, in situ, ex situ, биологическое разнообразие, генетическая изменчивость, объекты сохранения генофонда, біологічне різноманіття, генетична мінливість, об'єкти збереження генофонду

Relation: https://nv.nltu.edu.ua/index.php/journal/article/view/1211/1492; https://nv.nltu.edu.ua/index.php/journal/article/view/1211

الاتاحة: https://nv.nltu.edu.ua/index.php/journal/article/view/1211
https://doi.org/10.15421/40270805