يعرض 1 - 20 نتائج من 62 نتيجة بحث عن '"Удут, В."', وقت الاستعلام: 0.49s تنقيح النتائج
  1. 1
    Academic Journal

    المصدر: Translational Medicine; Том 9, № 1 (2022); 29-38 ; Трансляционная медицина; Том 9, № 1 (2022); 29-38 ; 2410-5155 ; 2311-4495

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/658/458; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/658/1357; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/658/1358; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/658/1359; Шляхто Е.В., Баранова Е.И. Основные направления снижения сердечно-сосудистой смертности: что можно изменить уже сегодня ? Российский кардиологический журнал. 2020; 25(7): 10-18. DOI:10.15829/1560-4071-2020-3983; Рыжкова Д.В., Красильникова Л.А., Нифонтов Е.М., Тютин Л.А., Ицкович И.Э. Оценка функционального состояния коронарного русла методом позитронной эмиссионной томографии с 13N-аммонием на фоне холодовой пробы. Вестник рентгенологии и радиологии. 2010; (3): 15-20.; Станжевский А.А., Панфиленко А.Ф., Тютин Л.А., Илющенко Ю.Р. Роль позитронной эмиссионной томографии в оценке гемодинамики опухолей головного мозга. Вестник рентгенологии и радиологии. 2014; (6): 53-61.; Усов В.Ю., Гарганеева А.А., Федоров А.Ю., Карпов Р.С. Оценка кровотока миокарда в абсолютных единицах методом однофотонной эмиссионной компьютерной томографии с 99mTc-Технетрилом(МИБИ). Методика и клиническая апробация при ИБС. Медицинская радиология и радиационная безопасность. 1998; 43(4): 30-36.; Wu D, Zhang Z, Ma R, Guo F, Wang L, Fang W. Comparison of CZT SPECT and conventional SPECT for assessment of contractile function, mechanical synchrony and myocardial scar in patients with heart failure. J Nucl Cardiol. 2019; 26(2): 443-452. doi:10.1007/s12350-017-0952-6.; Khaing T, Raymond CCW, Chan WX, Hao C, Wong SS. Quantification of myocardial blood flow and myocardial flow reserve with SPECT imaging technique. J Nucl Cardiol. 2019; 26(1): 318-323. doi:10.1007/s12350-017-1152-0.; Лишманов Ю.Б., Чернов В.И., Кривоногов Н.Г., Малышева А.О., Веснина Ж.В., Реброва Т.Ю., Ефимова И.Ю. Фармакокинетические и сцинтиграфические исследования 99mTc-Техмикарда в эксперименте. Медицина труда и промышленная экология. 1995; (9): 6 - 9.; Babushkina T.A., Sergeev V.V., Medvedeva E.I., Malysheva A.O., Kodina G.E. 1H NMR and Mössbauer studies of the main components of radiopharmaceutical "99mTc -Tekhnetril" preparation. Russian Journal of Coordination Chemistry. 1996; 22 (9): 639-641.; Stukanov S L, Ussov W Yu, Kolomiets S A, Ryannel Yu E, Velichko S A, Zyryanov B N. SPECT with 99mTc-Technetryl in lung cancer. Medical Radiology and Radiation Safety. 1996; 41( 6): 11-15. (in Russian); Ussov WYu, Riannel Yu E, Slonimskaya E M, Velichko S A, Kalashnikov S D, Mihailovic J M, Scopinaro F. Quantification of breast cancer blood flow in absolute units using Gjedde-Rutland-Patlak analysis of 99mTc-MIBI uptake. Nuclear Medicine Review - CEE. 1999; 2(1): 4 – 11.; Усов В.Ю., Питерс А.М., Барышева Е.В., Бородин О.Ю., Майерс М.Д., Тюкалов Ю.И. Количественная оценка кровотока злокачественных опухолей костей и мягких тканей по данным динамической сцинтиграфии с 99mTc-МИБИ. Медицинская визуализация. 2003.; (4): 114-123.; Эвентов А.З., Чорголиани Т.Н., Оганов Р.Г., Медведев О.С., Глуховцев Е.В., Меерчук Ф.Е. Способ определения органного кровотока. А.С. СССР №1410949, от 06.01.1986.; Наркевич Б.Я. Методологические аспекты планарной сцинтиграфии сердечно-сосудистой системы и легких. Медицинская радиология. 1993; 38(4): 38 — 42.; Narkevich B Ya. Circulation models for functional radionuclide diagnosis with organotropic radiopharmaceuticals. Medical Radiology and Radiation safety. 1997; 42(3): 18-22. (in Russian); Рыжкова Д.В. Перфузионная сцинтиграфия миокарда. Кардиология: новости, мнения, обучение. 2016; 4 (11): 76-86.; Кривоногов Н.Г., Лишманов Ю.Б., Донской М.А., Минин С.М., Кузнецова А.В., Крылов А.Л. Способ неинвазивного количественного определения миокардиального кровотока для выявления коронарной недостаточности. Патент на изобретение RU 2428930 C1, 20.09.2011. Заявка № 2010114926/14 от 13.04.2010.; Ussov WYu, Solov'ev OV, Garganeeva AA, Teplyakov AT, Karpov RS. Quantitative scintigraphic evaluation of molsidomine effects on myocardial blood flow of coronary patients during exercise test. Changjiang Liuyu Ziyuan Yu Huanjing. 1998; 7(4): 28-35.; https://mediso.com/global/en/product/group/clinical-products; Petretta M, Storto G, Pellegrino T, Bonaduce D, Cuocolo A. Quantitative Assessment of Myocardial Blood Flow with SPECT. Prog Cardiovasc Dis. 2015; 57(6): 607-14. doi:10.1016/j.pcad.2014.12.007.; Moretti JL, Hauet N, Caglar M, Rebillard O, Burak Z. To use MIBI or not to use MIBI? That is the question when assessing tumour cells. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2005; 32(7): 836-842. doi:10.1007/s00259-005-1840-x.; Bailly M, Thibault F, Courtehoux M, Metrard G, Ribeiro MJ. Added Value of Myocardial Blood Flow Quantification and Calcium Scoring During CZT SPECT Myocardial Perfusion Imaging for Coronary Artery Disease Screening. Clin Nucl Med. 2019; 44(11): e617-e619. doi:10.1097/RLU.0000000000002709.; https://www.hermesmedicalsolutions.com/nm-processing; Slomka PJ, Berman DS, Germano G. Absolute myocardial blood flow quantification with SPECT/CT: is it possible? J Nucl Cardiol. 2014; 21(6): 1092-1095. doi:10.1007/s12350-014-0002-6.; Алексеева Я.В., Вышлов Е.В., Усов В.Ю., Марков В.А. Феномены микрососудистого повреждения при остром инфаркте миокарда. Сибирский медицинский журнал (г. Томск). 2018; 33(4): 19-26. DOI:10.29001/2073-8552-2018-33-4-19-26; Мочула А.В., Завадовский К.В., Андреев С.Л., Крылов А.Л., Лишманов Ю.Б. Сцинтиграфическая оценка резерва миокардиального кровотока у больных ишемической болезнью сердца с различной выраженностью атеросклеротического поражения коронарных артерий. Медицинская визуализация. 2017; 21(4): 72-81. DOI:10.24835/1607-0763-2017-4-72-81; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/658

  2. 2
    Academic Journal

    المصدر: Bulletin of Siberian Medicine; Том 20, № 3 (2021); 168-181 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 20, № 3 (2021); 168-181 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2021-20-3

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4495/3060; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4495/3087; Dudrick S.J. History of vascular access. JPEN. 2006; 30 (1): S47–S56. DOI:10.1177/01486071060300S1S47.; Kelly L.J. Pig bladders and feather quills: a history of vascular access devices. Br. J. Nurs. 2014; 23(19): S21–S25. DOI:10.12968/bjon.2014.23.sup19.s21.; Bazin H. L’origine des rats de laboratoire, contribution à sa connaissance. Bull. Acad. Vet. Fr. 2001; 154: 145–150. DOI:10.4267/2042/62578.; Franco N.H. Animal Experiments in Biomedical Research: A historical perspective animals. Animals (Basel). 2013; 3: 238–273. DOI:10.3390/ani3010238.; Nossaman B.D., Brittni M.D., Scruggs A., Vaughn B.S., Nossaman E., Subramanyam M.S., Murthy N., Kadowitz P.J. History of right heart catheterization: 100 years of experimentation and methodology development. Cardiol. Rev. 2010; 18 (2): 94–101. DOI:10.1097/CRD.0b013e3181ceff67.; Zerati A.E., Wolosker N., de Luccia N., Puech-Leão P. Totally implantable venous catheters: history, implantation technique and complications. J. Vasc. Bras. 2017; 16 (2): 128–139. DOI:10.1590/1677-5449.008216.; Park A.Y., Plotsky P.M., Pham T.D., Pacak K., Wynne B.M., Wall S.M., Lazo-Fernandez Y. Blood collection in unstressed, conscious, and freely moving mice through implantation of catheters in the jugular vein: a new simplified protocol. Physiol. Rep. 2018; 6 (21): e13904. DOI:10.14814/phy2.13904.; Aske K.C., Waugh C.A. Expanding the 3R principles: more rigour and transparency in research using animals. EMBO Rep. 2017; 18 (9): 1490–1492. DOI:10.15252/embr.201744428.; Grouzmann E., Cavadas C., Grand D.,·Moratel M., Aubert·J.-F., Brunner H.R., Mazzolai L. Blood sampling methodology is crucial for precise measurementof plasma catecholamines concentrations in mice. Pflugers Arch. 2003; 447: 254–258. DOI:10.1007/s00424-003-1140-x.; Vahl T.P., Ulrich-Lai Y.M., Ostrander M.M., Dolgas C.M., Elfers E.E., Seeley R.J., D’Alessio D.A., Herman J.P. Comparative analysis of ACTH and corticosterone sampling methods in rats. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2005; 289 (5): E823–E828. DOI:10.1152/ajpendo.00122.2005.; Karim N., Sanowar S. Jugular vein cannulation in rats – a mini review. Canadian Journal of Pure and Applied Sciences. 2009; 3 (3): 929–935.; Pacher P., Nagayama T., Mukhopadhyay P., Bátkai S., Kass D.A. Measurement of cardiac function using pressure – volume conductance catheter technique in mice and rats. Nat. Protoc. 2008; 3 (9): 1422–1434. DOI:10.1038/nprot.2008.138.; Feng J., Fitz Y., Li Y., Fernandez M., Puch I.C., Wang D., Pazniokas S., Bucher B., Cui X., Solomon S.B. Catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures,infusions and blood sampling in a conscious rat model. J. Vis. Exp. 2015; 95: 51881. DOI:10.3791/51881.; Segreti J.A., Polakowski J.S., Blomme E.A., King A.J. Simultaneous measurement of arterial and left ventricular pressure in conscious freely moving rats by telemetry. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 2016; 79: 23–33. DOI:10.1016/j.vascn.2016.01.003.; Zhang X.D., Pechter D., Yang L., Ping X., Yao Z., Zhang R., Shen X., Li N.X., Connick J., Nawrocki A.R., Chakravarthy M., Li C. Decreased complexity of glucose dynamics preceding the onset of diabetes in mice and rats. PLoS One. 2017; 12 (9): e0182810. DOI:10.1371/journal.pone.0182810.; Bogdan S., Luca V., Ober C., Melega I., Pestean C., Codea R., Oana L. Comparison among different methods for blood pressure monitoring in rats: literature review. Bull. Univ. Agric. Sci. Vet. Med. Cluj Napoca. 2019; 76 (1): 5–19. DOI:10.15835/buasvmcn-vm:2019.0007.; Higgins C. Lactate measurement: arterial versus venous blood sampling. Retrieved from Acutecaretesting. Org. 2017. URL: https://acutecaretesting.org/en/articles/lactate-measurement-arterial-versus-venous-blood-sampling; Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Ч. 1; под ред. А.Н. Миронова. М.: Гриф и К, 2012: 944.; Moureau N. Vessel health and preservation: the right approach for vascular access. Springer Open, 2019: 303. DOI:10.1007/978-3-030-03149-7_23.; Jacobs B.R. Central venous catheter occlusion and thrombosis. Crit. Care Clin. 2003; 19 (3): 489–514. DOI:10.1016/s0749-0704(03)00002-2.; Galloway S., Bodenham A. Long-term central venous access. Br. J. Anaesth. 2004; 92 (5): 722–734. DOI:10.1093/bja/aeh109.; Francolini I., Piozzi A. Antimicrobial polyurethanes for intravascular medical devices. In Book: Advances in polyurethane biomaterials; 1st ed., eds. Cooper S.L., Guan J. Cambridge, Massachusetts: Woodhead Publishing, 2016: 349–385. DOI:10.1016/b978-0-08-100614-6.00012-3.; Neoh K.G., Li M., Kang E.-T., Chiong E., Tambyah P.A. Surface modification strategies for combating catheter-related complications: recent advances and challenges. J. Mater. Chem. B. 2017; 5: 2045–2067. DOI:10.1039/c6tb03280j.; Teilmann A.C., Falkenberg M.K., Hau J., Abelson K.S.P. Comparison of silicone and polyurethane catheters for the catheterization of small vessels in mice. Lab. Anim. 2014; 43 (11): 397–403. DOI:10.1038/laban.570.; Xu L.-C., Siedlecki C.A. Antibacterial polyurethanes. In Book: Advances in polyurethane biomaterials; 1st ed., eds. Cooper S.L., Guan J. Cambridge, Massachusetts: Woodhead Publishing, 2016: 247–284. DOI:10.1016/b978-0-08-100614-6.00009-3.; GunaratnamG., Spengler C., Trautmann S., Jung P., Mischo J., Wieland B., Metz C., Sören B.L., Hannig M., Jacobs K., Bischof M. Human blood plasma factors affect the adhesion kinetics of Staphylococcus aureus to central venous catheters. Sci. Rep. 2020; 10 (1): 20992. DOI:10.1038/s41598-020-77168-x.; Flecknell P.A. Laboratory animal anaesthesia; 3rd ed. London: Academic Press, 2009: 304. DOI:10.1016/B978-0-12-369376-1.X0001-9.; Heiser A., Liu J.H.K. Rat jugular vein and carotid artery catheterization for acute survival studies. New York: Springer, 2007: 116. DOI:10.1007/0-387-49416-2.; Uhlig C., Krause H., Koch T., De Abreu M.G., Spieth P.M. Anesthesia and Monitoring in Small Laboratory Mammals Used in Anesthesiology, Respiratory and Critical Care Research: A Systematic Review on the Current Reporting in Top-10 Impact Factor Ranked Journals. PLoS One. 2015; 10 (8): e0134205. DOI:10.1371/journal.pone.0134205.; Manual of stroke models in rat; 1sted., ed. Wang-Fischer Y. Boca Raton: CRC Press; 2009: 352. DOI:10.1201/9781420009521.; Allavena R.E., West H., Gale J., Debre M. Pathological and clinical analysis of vascular catheterization models in rats, with exploration of interventions to improve clinical tolerance. Toxicol. Pathol. 2016; 44 (8): 1095–1104. DOI:10.1177/0192623316666197; Матвеева Е.Ю., Власенко А.В., Яковлев В.Н., Алексеев В.Г. Инфекционные осложнения катетеризации центральных вен. Общая реаниматология. 2011; VII (5): 67–74. DOI:10.15360/1813-9779-2011-5-67.; Mendoza G., Regiel-Futyra A., Tamayo A., Monzon M., Irusta S., De Gregorio M.A., Kyzioł A., Arruebo M. Chitosan-based coatings in the prevention of intravascular catheter-associated infections. J. Biomater. Appl. 2017; 32 (6): 725–737. DOI:10.1177/0885328217739199.; Viola G.M., Rosenblatt J., Raad I.I. Drug eluting antimicrobial vascular catheters: progress and promise. Adv. Drug Deliv. Rev. 2017; 112: 35–47. DOI:10.1016/j.addr.2016.07.011.; Yang J., Maarek J.-M. I., Holschneider D.P. In vivo quantitative assessment of catheter patency in rats. Lab. Anim. 2005; 39 (3): 259–268. DOI:10.1258/0023677054307033.; Fonseca U.N.K., Nielsen S.G., Hau J., Hansen A.K. Permanent catheterization of the carotid artery induces kidney infection and inflammation in the rat. Lab. Anim. 2010; 44: 46–53. DOI:10.1258/la.2009.008122.; Teilmann A.C., Rozell B., Kalliokoski O., Hau J., Abelson K.S.P. Carotid catheterization and automated blood sampling induce systemic IL-6 secretion and local tissue damage and inflammation in the heart, kidneys, liver and salivary glands in NMRI mice. PLoS One. 2016; 11 (11): e0166353. DOI:10.1371/journal.pone.0166353.; López-Briz E., Garcia V.R., Cabello J.B., Bort-Martí S., Sanchis R.C., Burls A. Heparin versus 0.9% sodium chloride locking for prevention of occlusion in central venous catheters in adults. Cochrane Database Syst. Rev. 2018; 7 (7): CD008462.DOI:10.1002/14651858.CD008462.pub3.; Goossens G.A. Flushing and locking of venous catheters: available evidence and evidence deficit. Nurs. Res. Pract. 2015; 2015: 985686. DOI:10.1155/2015/98568.; De Luca T., Szilágyi K.L., Hargreaves K.A., Collins K.S., Benson E.A. Improving the patency of jugular vein catheters in sprague – dawley rats by using an antiseptic nitrocellulose coating. J. Am. Assoc. Lab. Anim. Sci. 2018; 57 (5): 520–528. DOI:10.30802/aalas-jaalas-18-000017.; Mermel L.A., Alang N. Adverse effects associated with ethanol catheter locksolutions: a systematic review. J. Antimicrob. Chemother. 2014; 69: 2611–2619. DOI:10.1093/jac/dku182.; Rosenblatt J., Reitzel R.A., Vargas-Cruz N., Chaftari A.-M., Hachem R., Raad I.I. Comparative efficacies of antimicrobial catheter lock solutions for fungal biofilm eradication in an vitro model of catheter-related fungemia. J. Fungi (Basel). 2017; 3 (1): 7. DOI:10.3390/jof3010007.; Chandra J., Long L., Isham N., Mukherjee P.K., DiSciullo G., Appelt K., Ghannoum M.A. In vitro and in vivo activity of a novel catheter lock solution against bacterial and fungal biofilms. Antimicrob. Agents Chemother. 2018; 62 (8): e00722–18. DOI:10.1128/aac.00722-18.; Hernández M.J., Soriano A., Filella X., Calvo M., Coll E., Rebled J.M., Poch E., Graterol F., Compte M.T., Maduell F., Fontsere N. Impact of locking solutions on conditioning biofilm formation in tunnelled haemodialysis catheters and inflammatory response activation. J. Vasc. Access. 2020; 21: 1129729820942040. DOI:10.1177/1129729820942040.; Tong C., Peng X., Hu H., Wang Z., Zhou H. The effect of different flushing methods in a short peripheral catheter. Acta Cir. Bras. 2019; 34 (8): е201900804. DOI:10.1590/s0102-865020190080000004.; Mitchell M.D., Anderson B.J., Williams K., Umscheid C.A. Heparin flushing and other interventions to maintain patency of central venous catheters: a systematic review. J. Adv. Nurs. 2009; 65(10): 2007–2021. DOI:10.1111/j.1365-2648.2009.05103.x.; Ueda Y., Odunayo A., Mann F.A. Comparison of heparinized saline and 0.9% sodium chloride for maintaining peripheral intravenous catheter patency in dogs. J. Vet. Emerg. Crit. Care (San Antonio). 2013; 23 (5): 517–522. DOI:10.1111/vec.12093.; Dos Santos E.J.F., Nunes M.M.J.C., Cardoso D.F.B., Apóstolo J.L.A., Queirós P.J.P., Rodrigues M.A. Effectiveness of heparin versus 0.9% saline solution in maintaining the permeability of central venous catheters: a systematic review. Rev. Esc. Enferm. USP. 2015; 49 (6): 995–1003. DOI:10.1590/s0080-623420150000600017.; Vose J., Odunayo A., Price J.M., Daves M., Schildt J.C., Tolbert M.K. Comparison of heparinized saline and 0.9% sodium chloride for maintaining central venous catheter patency in healthy dogs. Peer J. 2019; 7: e7072. DOI:10.7717/peerj.7072.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4495

  3. 3
    Academic Journal

    المساهمون: The study was approved by theethics committee at GRIPRM, TNRMC of RAS (Protocol No. 514092017 of 14.09.2017)., Исследование выполнено в рамках темы № 0550-2014-0207 государ- ственного задания ФАНО России и при финансовой поддержке РФФИ в рамках научного проекта № 18-015-00013

    المصدر: Bulletin of Siberian Medicine; Том 18, № 2 (2019); 80-88 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 18, № 2 (2019); 80-88 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2019-18-2

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2307/1570; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2307/1600; Дыгай А.М., Çюзьков Г.Н., Жданов В.В., Удут Е.В., Хричкова Т.Ю., Мирошниченко Л.А., Симанина Е.В., Ставрова Л.А. Методические рекомендации по изучению специфической активности средств для регенеративной медицины. Руководство по проведению доклинических исследований новых лекарственных средств; под ред. А.Н. Миронова. М.: Гриф и К, 2013: 776–787.; Воронина Т.А., Середенин С.Б. Ноотропные и нейропротекторные средства. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2007; 70 (4): 44–58.; Гольдберг Е.Д., Дыгай А.М., Çюзьков Г.Н. Гипоксия и система крови. Томск: Изд-во Том. ун-та, 2006: 142.; Faden A.I., Wu J.F., Stoica B.A., Loane D.J. Progressive inflammation-mediated neuro-degeneration after traumatic brain or spinal cord injury. British Journal of Pharmacology. 2016; 173: 681–691. DOI:10.1111/bph.13179.; Binan L., Ajji A., De Crescenzo G., Jolicoeur M. Approaches for neural tissue re-generation. Stem Cell Reviews and Reports. 2014; 10 (1): 44–59. DOI:10.1007/s12015-013-9474-z.; Yuan T.F., Gu S., Shan C., Marchado S., Arias-Carriуn O. Oxidative Stress and Adult Neurogenesis. Stem Cell Reviews and Reports. 2015; 11 (5): 706–709. DOI:10.1007/s12015-015-9603-y.; Çюзьков Г.Н., Жданов В.В., Данилец М.Г., Мирошниченко Л.А., Удут Е.В., Дыгай А.М. Пат. 2599289 RU. Средства, стимулирующие регенерацию тканей. № 2013156908; Çаявл. 14.09.2016; Опубл. 10.10.2016. Бюл. № 28.; Zyuz’kov G.N., Udut E.V., Miroshnichenko L.A., Polyakova T.Y., Simanina E.V., Stavrova L.A., Chaikovskii A.V., Agafonov V.I., Borodulina E.V., Timofeev M.S., Zyuz’kova Y.N., Danilets M.G., Zhdanov V.V., Udut V.V. Particular role of JAK/STAT3 signaling in functional control of mesenchymal progenitor cells. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2018; 164 (3): 316–319. DOI:10.1007/s10517-018-3980-6.; Лукьянова Л.Д., Кирова Ю.И., Сукоян Г.В. Новое о сигнальных механизмах адаптации к гипоксии и их роли в системной регуляции. Патогенез. 2011; 9 (3): 4–14.; Zyuz’kov G.N., Suslov N.I., Povet’eva T.N., Nesterova Y.V., Afanas’eva O.G., Udut E.V., Miroshnichenko L.A., Simanina E.V., Polyakova T.Y., Stavrova L.A., Chaikovskii A.V., Kul’pin P.V., Udut V.V., Dygai A.M., Zhdanov V.V. Psychopharmacological effects of JNK inhibitor in posthypoxic encephalopathy and mechanisms of their development. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2017; 163 (1): 18–21. DOI:10.1007/s10517-017-3727-9.; Curzon P., Zhang M., Radek R.J., Fox G.B. The behavioral assessment of sensorimotor processes in the mouse: acoustic startle, sensory gating, locomotor activity, rotarod, and beam walking / in «Methods of behavior analysis in neuroscience». Second Edition, ed. J.J. Buccafusco. Boca Raton–London–New York: Taylor & Francis Group, LLC, 2009: 145–178. PMID: 21204341.; Guo W., Patzlaff N.E., Jobe E.M., Zhao X. Isolation of multipotent neural stem or progenitor cells from both the dentate gyrus and subventricular zone of a single adult mouse. Nature Protocols. 2012; 7 (11): 2005–2012. DOI:10.1038/nprot.2012.123.; Zhou L., Yang Z., Lu X., Li X., An X., Chai J., Yang Q., Yan S., Li Y. JNK inhibitor alleviates apoptosis of fetal neural stem cells induced by emulsified isoflurane. Oncotarget. 2017; 8 (55): 94009–94019. DOI:10.18632/oncotarget.21505.; Kucinski I., Dinan M., Kolahgar G., Piddini E. Chronic activation of JNK JAK/STAT and oxidative stress signalling causes the loser cell status. Nat. Commun. 2017; 8 (1):136. DOI:10.1038/s41467-017-00145-y.; Bergantiсos C., Corominas M., Serras F. Cell death-induced regeneration in wing imaginal discs requires JNK signaling. Development. 2010; 137 (7): 1169–1179. DOI:10.1242/dev.045559.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2307

  4. 4
    Academic Journal
  5. 5
    Academic Journal

    المصدر: Bulletin of Siberian Medicine; Том 17, № 1 (2018); 75-84 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 17, № 1 (2018); 75-84 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2018-17-1

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/1117/778; Рекомендации по лечению стабильной ишемической болезни сердца. EAS 2013. Российский кардиологический журнал. 2014; 7: 7–79.; Аронов Д.М. Статины – основное лекарственное средство для реального снижения смертности от ИБС. Русский медицинский журнал. 2012; 4: 1–7; Zhou G.S. Atorvastatin reduces plaque vulnerability in an atherosclerotic rabbit model by altering the 5-lipoxygenase pathway. Cardiology. 2010; 115: 221–228.; Титов В.Н. Атеросклероз как патология полиеновых жирных кислот. Биологические основы патогенеза, диагностики, профилактики и лечения атеросклероза. М.: Алтус, 2002: 730.; Струкова Е.Г. Количественное определение микробных сообществ полости рта с использованием хромато-масс-спектрометрии микробных маркеров: дис. … канд. хим. наук: 02.00.02. Томск, 2010: 184.; Gillingham L.G. High-oleic rapeseed (canola) and flaxseed oils modulate serum lipids and inflammatory biomarkers in hyper cholesterolaemic subjects. Br. J. Nutr. 2011; 105 (3): 417–427.; MacDonald J.I.S. Phospholipid fatty acid remodeling in mammalian cells. Biochim. Biophys. Аcta. 1991; 1084: 105–119.; Ghebremeskel K. Liver triacylglycererols and free fatty acids in streptozotocin induced diabetic rats have atypical n-6 and n-3 pattern. Comp. Biochem. Physiol. Part. 2002; 132: 349–354.; Сергеева М.Г. Каскад арахидоновой кислоты. М.: Народное образование, 2006: 256.; Harper C.R., Jacobson T.A. The fats of life. Arch. Intern. Med. 2001; 161: 2185–2192.; Delarue J., Magnan C. Free fatty acids and insulin resistance. Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 2007; 10 (2): 142–148.; Kris-Etherton P.M., Griel A.E., Psota T.L. et al. Dietary stearic acid and risk of cardiovascular disease: intake, sources, digestion, and absorption. Lipids. 2005; 40: 1193–1200.; Jiang Z., Michal J.J., Wu X.L. et al. The Heparan and Heparin Metabolism Pathway is Involved in Regulation of Fatty Acid Composition. Int. J. Biol. Sci. 2011; 7 (5): 659–663.; Hodson L., Frayn K.N. Hepatic fatty acid partitioning. Curr. Opin. Lipidol. 2011; 22: 216–224.; Бойцов С.А., Кухарчук В.В., Карпов Ю.А. и др. Суб- клинический атеросклероз как фактор риска сер- дечно-сосудистых осложнений. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2012; 11 (3): 82–86.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/1117

  6. 6
    Academic Journal

    المصدر: Siberian journal of oncology; № 6 (2015); 46-51 ; Сибирский онкологический журнал; № 6 (2015); 46-51 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; undefined

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/201/203; Гольдберг Е.Д., Дыгай А.М., Жданов В.В. Роль гемопоэзидуцирующего микроокружения в регуляции кроветворения при цитостатических миелосупрессиях. Томск: STT, 1999. 128 с.; Дыгай А.М., Артамонов А.В., Бекарев А.А., Верещагин Е.И., Жданов В.В., Зюзьков Г.Н., Удут Е.В., Хричкова Т.Ю., Симанина Е.В., Ставрова Л.А., Мирошниченко Л.А., Чайковский А.В., Мадонов П.Г. Гемостимулирующие эффекты иммобилизированной гиалуронидазы и механизмы их развития при цитостатической миелосупрессии // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2010. Т. 149, № 5. С. 528–531.; Манзюк Л.В., Артамонова Е.В. Таксотер в химиотерапии рака молочной железы // Русский медицинский журнал (Онкология). 2006. Т. 14, № 24. С. 1753–1757.; Мирошниченко Л.А., Жданов В.В., Зюзьков Г.Н., Симанина Е.В., Ставрова Л.А., Удут Е.В., Хричкова Т.Ю., Минакова М.Ю., Гольдберг В.Е., Дыгай А.М. Механизмы гемостимулирующих эффектов гранулоцитарного КСФ и пантогематогена в условиях цитостатической миелосупрессии // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2010. Т. 150, № 12. С. 645–649.; Anderlini P., Champlin R.E. Biologic and molecular effects of granulocyte colony-stimulating factor in normal individuals: recent findings and current challenges // Blood. 2008. Vol. 111 (4). P. 1767–1772.; Barrios L., Poletti O.H. Effects of filgrastim on granulopoietic cells of mice pretreated with methotrexate // Biocell. 2005. Vol. 29 (1). P. 7–14.; Dygai A.M., Zhdanov V.V., Miroshnichenko L.A., Zyuz’kov G.N., Udut E.V., Simanina E.V., Stavrova L.A., Khrichkova T.Y., Agafonov V.I. Comparison of specific activity of granulocytopoiesis stimulators after treatment with cytostatics with different mechanisms of action // Bull. Exp. Biol. Med. 2013. Vol. 155 (5). P. 631–635.; Herceg D., Vrbanec D. The role of taxanes in breast cancer chemotherapy: what’s new 15 years after? // Lijec. Vjesn. 2009. Vol. 131 (5–6). P. 133–141.; Ishikawa T., Shimizu S., Momiyama N. Ichikawa Y, Shimada H. Advanced in breast cancer chemotherapy // Nippon Rinsho. 2006. Vol. 64. P. 529–535.; Lyman G.H., Reiner M., Morrow P.K., Crawford J. The effect of filgrastim or pegfilgrastim on survival outcomes of patients with cancer receiving myelosuppressive chemotherapy // Ann. Oncol. 2015. Vol. 26 (7). P. 1452–1458. doi:10.1093/annonc/mdv174.; Nabholtz J.M., Riva A. Taxane/anthracycline combinations: setting a new standard in breast cancer? // Oncologist. 2001. Vol. 6. Suppl. 3. P. 5–12.; Pronzato P. New therapeutic options for chemotherapy-resistant metastatic breast cancer: the epothilones // Drugs. 2008. Vol. 68 (2). P. 139–146.; Uddin S., Russell P., Farrell M., Davy B., Taylor J., Agrawal S.G. Use of biosimilar filgrastim compared with lenograstim in autologous haematopoietic stem-cell transplant and in sibling allogeneic transplant // Ther. Adv. Hematol. 2015. Vol. 6 (2). P. 53–60. doi:10.1177/2040620714565962.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/201; undefined

  7. 7
  8. 8
  9. 9
    Academic Journal

    المصدر: Bulletin of Siberian Medicine; Том 10, № 3 (2011); 125-128 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 10, № 3 (2011); 125-128 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2011-10-3

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/1406/935; Методы визуализации околощитовидных желез и паратиреоидная хирургия: руководство для врачей / под ред. А.П. Калинина. М.: Видар-М, 2010. 311 с.; Романчишен А.Ф. Хирургия щитовидной и околощитовидной желез. СПб.: Вести, 2009. 647 с.; Хирургическая эндокринология / под ред. А.П. Калинина, М.А. Майстренко, П.С. Ветшева. СПб.: Питер, 2004. 960 с.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/1406

  10. 10
    Academic Journal

    المصدر: Bulletin of Siberian Medicine; Том 10, № 1 (2011); 106-111 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 10, № 1 (2011); 106-111 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2011-10-1

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/1325/864; Аристархов В.Г., Кириллов Ю.Б., Пантелеев И.В. Профилактика послеоперационного гипотиреоза при хирургическом лечении диффузного токсического зоба//Хирургия. 2001. № 9. С. 19-21.; Аристархов В.Г., Кириллов Ю.Б., Пантелеев И.В., Воронина Т.А. Хирургическое лечение диффузного токсического зоба в свете профилактики послеоперационного гипотиреоза//Современные аспекты хирургической эндокринологии: материалы 8-го (10-го) Рос. симп. по хирург. эндокринологии, Казань, 9-11 сент. 1999 г. М., 1999. С. 29-32.; Белобородов В.А. Дифференциальная диагностика и хирургическая тактика при узловых образованиях щитовидной железы: автореф. дис. д-ра мед. наук. Иркутск, 2000. 40 с.; Белобородов В.А., Пинский С.Б., Мясников В.Г. Цито-и гистологическая дооперационная диагностика новообразований щитовидной железы//Современные аспекты хирургической эндокринологии: материалы 8-го (10-го) Рос. симп. по хирург. эндокринологии, Казань, 9-11 сент. 1999 г. М., 1999. С. 54-57.; Братусь В.Д., Черенько М.П. Хирургическое лечение заболеваний щитовидной железы//Терапевт. арх. 1973. № 9. С. 49-56.; Брейдо И.С. Клиника и хирургическое лечение заболеваний щитовидной железы: автореф. дис. д-ра мед. наук. М., 1972. 32 с.; Брейдо И.С. Хирургическое лечение заболеваний щитовидной железы. СПб.: Гиппократ, 1998. 336 с.; Ветшев П.С., Шкроб О.С., Чилингариди К.Е., Ванушко В.Ю. Возможности предоперационной морфологической верификации при узловых эутиреоидных образованиях щитовидной железы//Хирургия. 1998. № 2. С. 11-16.; Герасимов Г.А., Петунина Н.А. Заболевания щитовидной железы//Здоровье. Прил. 1. Для тех, кто лечит. 1998. № 3. С. 16-18.; Дедов И.И., Мельниченко Г.А., Фадеев В.В. Эндокринология. М.: Медицина, 2000. 630 с.; Донюков А.И., Аристархов В.Г., Кириллов Ю.Б. и др. Спорные вопросы диагностики и лечения аутоиммунного тиреоидита//Современные аспекты хирургической эндокринологии: материалы XV Рос. симп. по хирург. эндокринологии. Рязань, 14-16 сент. 2005 г. Рязань, 2005. С. 129-133.; Зеновко Г.И., Семуков Я.С. Диагностика и хирургическое лечение заболеваний щитовидной железы//Хирургия. 1989. № 3. С. 76-79.; Кижватов С.И., Рововой А.А, Мисакьян В.М. и др. Онкологические аспекты хирургии щитовидной железы//Хирургия эндокринных желез: материалы V Рос. симп. Ульяновск, 11-13 сент. 1996 г. СПб., 1996. С. 46-48.; Павловський М.П., Сироiд О.М., Коломiйцев B.I. Особливостi хiрургiчного лiкування пацiºнтiв iз автономним тиреотоксикозом у похилому i старечому вiцi//Современные аспекты хирургического лечения эндокринной патологии: материалы первого Украинско-Российского симпозиума по эндокринной хирургии с международным участием. Киев, 13-14 окт. 2006 г. Киев: Украина, 2006. С. 51-53.; Пампутис Н.П., Пампутис С.Н. Динамика зобной эндемии в Ярославском регионе по материалам клиники за 1991-1994 годы//Проблемы эндокринологии. Ярославль, 1996. С. 65-69.; Рафибеков Д.С. К вопросу о хирургическом лечении аутоиммунного тиреоидита//Современные аспекты хирургической эндокринологии: материалы 7-го (9-го) Росс. симп. по хирург. эндокринологии. Липецк, 16-18 сент. 1998 г. М.: МОНИКИ, 1998. С. 204-208.; Романчишен А.Ф. Хирургия щитовидной и околощитовидных желез. СПб.: ИПК «Вести», 2009. 647 с.; Романчишен А.Ф. Основы предупреждения рецидивов заболеваний и специфических осложнений при операциях на щитовидной железе//Хирургия эндокринных желез: материалы V Рос. симп. по хирург. эндокринологии. СПб., 1996. С. 107-110.; Романчишен А.Ф., Романчишена Е.С. Хирургическая тактика лечения заболеваний щитовидной железы с онкологических позиций//Пробл. эндокринологии. 1992. № 6. С. 27-29.; Старков Ю.Г., Шишин К.В. Криохирургия очаговых поражений печени//Хирургия. 2000. № 7. С. 53-57.; Старкова Н.Т. Проблемы гормонотерапии//Клинич. эндокринология. 1983. С. 288.; Старкова Н.Т. Руководство по клинической эндокринологии. СПб., 1996. С. 124-144.; Холодова Е.А. Подострый тиреоидит//Пробл. эндокринологии. 1991. № 5. С. 35.; Черенько М.П. Хирургическое лечение и профилактика рецидивов зоба//Клинич. хирургия. 1974. № 6.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/1325

  11. 11
  12. 12
  13. 13
  14. 14
    Academic Journal
  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20