المؤلفون: L. F. Stovba, A. A. Petrov, N. K. Cherniкova, A. L. Khmelev, S. L. Kuznetsov, S. V. Borisevich, Л. Ф. Стовба, А. А. Петров, И. К. Черникова, А. Л. Хмелев, С. Л. Кузнецов, С. В. Борисевич

المصدر: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 23, № 2 (2024); 4-14 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 23, № 2 (2024); 4-14 ; 2619-0494 ; 2073-3046

مصطلحات موضوعية: клинические симптомы, monkeypox virus, orthopoxviruses, epidemiology, outbreak of infection, phylogenetic analysis, clinical symptoms No conflict of interest to declare, вирус оспы обезьян, ортопоксвирусы, эпидемиология, вспышка инфекции, филогенетический анализ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1966/1018; Сostello V, Sowash M, Gaur A, et al. Imported monkeypox from International Traveler, Maryland. USA. 2021. Emerg. Infect. Dis. 2022;28(5):1002–1005. doi:10.3201/eid2805.220292; Gubser C, Hue S, Kellam P, Smith GL, et al. Poxvirus genomes: A phylogenetic analysis. J. Gen. Virol. 2004;85:105–117. doi:10.1099/vir.0.19565-0; Haller SL, Peng C, McFadden G, et al. Poxviruses and the evolution of host range and virulence. Infect. Genet. Evol. 2014;10:15–40. doi:10.1016/j.meegid.2013.10.014; Von Magnus P, Andersen EK, Petersen KB, et al. A pox-like disease in cynomolgus monkeys. Acta Pathol. Microbiol. Scand. 2009;46(2):156–176. doi:10.1111/j.1699-0463.1959.tb00328.x; Khodakevich L, Jezek Z, Kinzanzka K. Isolation of monkeypox virus from wild squirrel infected in nature. Lancet. 1986;1(8472) 98–99. doi:10.1016/s0140-6736(86)90748-8; Radonic A, Metzger S, Dabrovski PW, et al. Fatal monkeypox in wild-living sooty mangabey, Cote d’Ivoire, 2012. Emerg. Infect. Dis. 2014;20(6):1009–1011. doi:10.3201/eid2006.13-1329; Theves C, Biagini P, Crubezy E. The rediscovery of smallpox. Clin. Microbiol. Infect. 2014;20(3):210–218. doi:10.1111/1469-0691.12536; Likos AM, Sammons SA, Olson VA, et al. A tale of two clades: monkeypox viruses. J. Gen. Virol. 2005; 86(Pt 10): 2661–2672. doi:10.1099/vir.0.81215-0; Mahy BWJ. An overview on the use of a viral pathogen as a bioterrorism agent: why smallpox? Antiviral Res. 2003;57(1-2):1–5. doi:10.1016/s0166-3542(02)00194-8; Ladnyj ID, Ziegler P, Kima E. A human infection caused by monkeypox virus in Basankusu Territory, Democratic Republic of the Congo. Bull. World Health Organ. 1972;46(5):593–597. PMCID: PMC2480792; Hraib M, Jouni S, Albitar M, et. al. The outbreak of monkeypox 2022: An overviev. Ann. Med. Surg. (Lond). 2022;79:104069. doi:10.1016/j.amsu.2022.104069; Reed KD, Melski JW, Graham MB, et al. The detection of monkeypox in human Western Hemisphere. N. Engl. J. Med. 2004;350(4):342–350. doi:10.1056/NEJMoa032299; Bunge EM, Hoet B, Chen L, et al. The changing epidemiology of human monkeypox – A potential threat? A systematic review. PLoS Negl. Trop. Dis. 2022;16(2): e0010141. doi:10.1371/journal.pntd.0010141; Доступно на:/ Available at: https://www.cdc.gov/poxvirus/monkeypox/response/2022/world-map.html. Accessed: 12 July 2022.; Доступно на:/ Available at: https://www.ourworlddindata.org/monkeypox Accessed: 21 October 2022.; Доступно на:/ Available at: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore. Accessed: 21 October 2022.; Mauldin MR, McCollum AM, Nakazava YJ, et al. Exportation of Monkeypox Virus From the African Continent. J. Infect. Dis. 2022;225(8):1367–1376. doi:10./10.1093/infdis/jiaa559; Velavan TP, Meyer CG. Monkeypox 2022 outbreak: An update. Trop. Med. Int. Health. 2022; 27(7):604–605. doi:10.1111/tmi; Kozlov M. Monkeypox goes global: why scientists are on alert. Nature. 2022;606(7912):15–16. doi:10.1038/d41586-022-01421-8; Mahase E. Seven monkeypox cases are confirmed in England. BMJ. 2022;377:o1239. doi:10.1136/bmjo1239; Monkeypox virus infections in the united states and other non-endemic countries 2022. Доступно на:/ Available at: https://www.emergency.Cdc.gov/han/2022han00466.asp. AccessedMay 25 2022.; Dye С, Kraemer MUG. Investigating the monkeypox outbreak. BMJ. 2022;377:ol314. doi:10.l136/bmi.o1314; Nalca A, Rimoin AW, Bavari S, et al. Reemergence of monkeypox: prevalence, diagnostics, and countermeasures. Clin. Infect. Dis. 2005;41(12):1765–1771. doi:10.1086/498155; Antinori A, Mazzotta V, Vita S, et al. Epidemiological, clinical аnd virological characteristics of four cases of monkeypox support transmission throught sexual contact, Italy, May 2022 separator commenting unaviable. Euro Surveill. 2022;27(22):2200421. doi:10.2807/1560-7917.ES.2022.27.22.2200421; Moore M, Rathish B, Zahra F. Mpox (Monkeypox). In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2023 Jan. 2022 Nov 30. PMID: 34662033. Bookshelf ID: NBK574519.; McCollum AM, Damon IK. Human monkeypox. Clin. Infect. Dis. 2014;58(2):260–267. doi:10./10.1093/cid/cit703; Rizk JG, Lippi G, Henry BM, et al. Prevention and Treatment of Monkeypox. Drugs. 2022;82(9):957–963. doi:10.1007/s40265-022-01742-y; Hammarlund E, Lewis MW, Carter SV, et al. Multiple diagnostic techniques identify previously vaccinated individuals with protective immunity against monkeypox. Nat. Med. 2005;11(9):1005–1011. doi:10.1038/nm1273; JYNNEOS [Package Insert]. Kvistgard, Denmark: Bavarian Nordic A/S:2019. Available at: https:/www.fda.gov/media/131078/download. Accessed: 25 May 2022.; Volz A, Sutter G. Modified Vaccinia virus Ankara: History, Value in Basic Research, and Current Perspectives for Vaccine Development. Adv. Virus. Res. 2017;97:187–243. doi:10.1016/bs.aivir.2016.07.001; Crum-Cianflone NF, Sullivan E. Vaccination for the HIV-Infected Adult: A Revive of the Current Recommendations, Part I. Infect. Dis. Ther. 2017;6(3):303–331. doi:10.1007/s40121-017-0166-x; US Centers For Disease Control and Prevention (CDC). Smallpox vaccines. Updated December 2, 2019. Available at: https://www.cdc.gov/smallpox/clinicians/vaccines.html. Accessed: 25 May 2022.; Smallpox/MonkeypoxVaccine (JYNNEOS™): What You Need to Know. Доступно на:/ Available at: https://www.cdc.gov/poxvirus/monkeypox. Accessed: 25 May 2022.; Wittek R. Vaccinia immune globulin: current policies, preparedness, and product safety and efficacy. Int. J. Infect. Dis. 2006;10(3):193–201. doi:10.1016/j.ijid.2005.12/001; Oliveira SNI, de Oliveira JS, Kroon EG, et al. Here, There, and Everywhere: The Wide Host Range and Geogrаphic Distribution of Zoonotic Orthopoxviruses. Viruses. 2021;13(1):43.doi:10.3390/v13010043; Sklenovska N, Van Ranst M. Emergence of Monkeypox as the Most Important Orthopoxvirus Infection in Humans. Front. Pablic. Heal. 2018;6:241. doi:10.3389/fpubh.2018.00241; World Health Organization (WHO). Human monkeypox in Kasai Oriental, Democratic Republic of the Congo (former Zaire): Preliminary report of October, 1997 investigation. Wkly. Epidemiol. Rec. 1997;72(49):369–372. PMID: 9426474; Reynolds MG, Emerson GL, Pukuta E, et al. Detection of human monkeypox in the Republic of the Congo following intensive community education. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2013;88(5):982–985. doi:10.4269/ajtmh.12-0758; Berthet N, Nakoune E, Whist E, et al. Maculopapular lesions in the Central African Republic. Lancet. 2011;378(9799):1354. doi:10.1016/S0140-6736(11)61142-2; McCollum AM, Nakazava Y, Nlongala GM, et al. Case report: Human monkeypox in the kivus, a conflict region of the Democratic Republic of the Congo. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2015;93(4):718–721. doi:10.4269/ajtmh.15-0095; Centers for Disease Control and Prevention (CDC). About Monkeypox. Доступно на:/ Available at: https://www.cdc.gov/poxvirus/monkeypox/about.html. Accessed: 24 September 2020.; Kalthan E, Dondo-Fongbia JP, Yambele S, et al. Twelve cases of monkeypox virus outbreak in Bangasou District (Central African Republic) in december 2015. Bull. Soc. Pathol. Exot. 2016;109(5):358–363. doi:10.1007/s13149-016-0516-z; World Health Organization (WHO). Monkeypox in Central African Republic. Доступно на:/ Available at: https://www.who.int/csr/don/13-october-2016-monkeypox-caf/en/ Accessed: 25 September 2020.; World Health Organization (WHO). Weekly Bulletin on outbreaks and Other Emergencies, Week 48. 2017. Доступно на:/ Available at: https://www.apps.who.int/iris/bit-stream/handle/10665/259557/OEW482504122017.pdf. Accessed: 25 September 2020.; Yinka-Ogunleye A, Aruna O, Dalhat M, et al. Outbreak of human monkeypox in Nigeria in 2017–18: a clinical and epidemiological report. Lancet Infect. Dis. 2019;19:872– 879. doi:10.1016/S1473-3099(19)30294-4; World Health Organization (WHO). Weekly Bulletin on outbreaks and Other Emergencies, Week 22. 2019. Доступно на:/ Available at: https://www.apps.who.int/iris/bit-stream/handle/10665/325086/OEW22-270502062019.pdf. Accessed: 25 September 2020.; World Health Organization (WHO). Weekly Bulletin on outbreaks and Other Emergencies, Week 11.2020. Доступно на:/ Available at: https://www.apps.who.int/iris/bit-stream/handle/10665/255579//OEW11-0915032020.pdf. Accessed: 25 September 2020.; World Health Organization (WHO). Weekly Bulletin on outbreaks and Other Emergencies, Week 21.2017. Доступно на:/ Available at: https://www.apps.who.int/iris/bit-stream/handle/10665/255579//OEW21-202652017.pdf. Accessed: 25 September 2020.; World Health Organization (WHO). Weekly Bulletin on outbreaks and Other Emergencies, Week 08.2018. Доступно на:/ Available at: https://www.apps.who.int/iris/bit-stream/handle/10665/260335//OEW8-1723022018.pdf. Accessed: 26 September 2020.; World Health Organization (WHO). Weekly Bulletin on outbreaks and Other Emergencies, Week 39. 2018. Доступно на:/ Available at: https://www.apps.who.int/iris/bitstream/handle/275136/260335//OEW39-2228092018.pdf. Accessed: 25 September 2020.; World Health Organization (WHO). Weekly Bulletin on outbreaks and Other Emergencies, Week 01. 2018. Available at: https://www.apps.who.int/iris/bitstream/handle/278952/260335//OEW01-29122018-04012019.pdf. Accessed: 26 September 2020.; World Health Organization (WHO). Weekly Bulletin on outbreaks and Other Emergencies, Week 37.2020. Available at: https://www.apps.who.int/iris/bitstream/handle/10665/334303//OEW37-0713092020.pdf. Accessed: 26 September 2020.; Доступно на:/ Available at: https://www.ourworldindata.org/monkeypox. Accessed: 26 September 2020.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1966

الاتاحة: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1966
https://doi.org/10.31631/2073-3046-2024-23-2-4-14

المؤلفون: O. V. Payushina, D. A. Tsomartova, Ye. V. Chereshneva, M. Yu. Ivanova, M. S. Pavlova, S. L. Kuznetsov, О. В. Паюшина, Д. А. Цомартова, Е. В. Черешнева, М. Ю. Иванова, М. С. Павлова, С. Л. Кузнецов

المصدر: Andrology and Genital Surgery; Том 25, № 1 (2024); 31-39 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 25, № 1 (2024); 31-39 ; 2412-8902 ; 2070-9781

مصطلحات موضوعية: эректильная дисфункция, regenerative medicine, male infertility, prostate diseases, erectile dysfunction, регенеративная медицина, мужское бесплодие, заболевания предстательной железы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/733/564; Jovic D., Yu Y., Wang D. et al. A brief overview of global trends in MSC-based cell therapy. Stem Cell Rev Rep 2022;18(5):1525–45. PMID: 35344199. DOI:10.1007/s12015-022-10369-1.; Thanaskody K., Jusop A.S., Tye G.J. et al. MSCs vs. iPSCs: Potential in therapeutic applications. Front Cell Dev Biol 2022;10:1005926. PMID: 36407112. DOI:10.3389/fcell.2022.1005926.; Maldonado V.V., Patel N.H., Smith E.E. et al. Clinical utility of mesenchymal stem/stromal cells in regenerative medicine and cellular therapy. J Biol Eng 2023;17(1):44. PMID: 37434264. DOI:10.1186/s13036-023-00361-9.; Han Y., Li X., Zhang Y. et al. Mesenchymal stem cells for regenerative medicine. Cells 2019;8(8):886. PMID: 31412678. DOI:10.3390/cells8080886.; Ghasemzadeh-Hasankolaei M., Eslaminejad M.B., Sedighi-Gilani M. Derivation of male germ cells from ram bone marrow mesenchymal stem cells by three different methods and evaluation of their fate after transplantation into the testis. In Vitro Cell Dev Biol Anim 2016;52(1):49–61. PMID: 26395124. DOI:10.1007/s11626-015-9945-4.; Salem M., Mirzapour T., Bayrami A., Sagha M. Germ cell differentiation of bone marrow mesenchymal stem cells. Andrologia 2019;51(4):e13229. PMID: 30746735. DOI:10.1111/and.13229.; Malekmohamadi N., Abdanipour A., Ghorbanlou M. et al. Differentiation of bone marrow derived mesenchymal stem cells into male germ-like cells in co-culture with testicular cells. Endocr Regul 2019;53(2):93–9. PMID: 31517623. DOI:10.2478/enr-2019-0011.; Ghaem Maghami R., Mirzapour T., Bayrami A. Differentiation of mesenchymal stem cells to germ-like cells under induction of Sertoli cell-conditioned medium and retinoic acid. Andrologia 2018;50(3). PMID: 28944567. DOI:10.1111/and.12887.; Luo Y., Xie L., Mohsin A. et al. Efficient generation of male germ-like cells derived during co-culturing of adipose-derived mesenchymal stem cells with Sertoli cells under retinoic acid and testosterone induction. Stem Cell Res Ther 2019;10(1):91. PMID: 30867048. DOI:10.1186/s13287-019-1181-5.; Cakici C., Buyrukcu B., Duruksu G. et al. Recovery of fertility in azoospermia rats after injection of adipose-tissue-derived mesenchymal stem cells: the sperm generation. Biomed Res Int 2013;2013:529589. PMID: 23509736. DOI:10.1155/2013/529589.; Ghasemzadeh-Hasankolaei M., Batavani R., Eslaminejad M.B., Sayahpour F. Transplantation of autologous bone marrow mesenchymal stem cells into the testes of infertile male rats and new germ cell formation. Int J Stem Cells 2016;9(2):250–63. PMID: 27430978. DOI:10.15283/ijsc16010.; Monsefi M., Fereydouni B., Rohani L., Talaei T. Mesenchymal stem cells repair germinal cells of seminiferous tubules of sterile rats. Iran J Reprod Med 2013;11(7):537–44. PMID: 24639788; Lu J., Liu Z., Shu M. et al. Human placental mesenchymal stem cells ameliorate chemotherapy-induced damage in the testis by reducing apoptosis/oxidative stress and promoting autophagy. Stem Cell Res Ther 2021;12(1):199. PMID: 33743823. DOI:10.1186/s13287-021-02275-z.; Zickri M.B., Moustafa M.H., Fasseh A.E., Kamar S.S. Antioxidant and antiapoptotic paracrine effects of mesenchymal stem cells on spermatogenic arrest in oligospermia rat model. Ann Anat 2021;237:151750. PMID: 33940119. DOI:10.1016/j.aanat.2021.151750.; Abdelaziz M.H., Salah El-Din E.Y., El-Dakdoky M.H., Ahmed T.A. The impact of mesenchymal stem cells on doxorubicininduced testicular toxicity and progeny outcome of male prepubertal rats. Birth Defects Res 2019;111(13):906–19. PMID: 31210400. DOI:10.1002/bdr2.1535.; AbdRabou M.A., Mehany A.B.M., Farrag I.M. et al. Therapeutic effect of murine bone marrow-derived mesenchymal stromal/stem cells and human placental extract on testicular toxicity resulting from doxorubicin in rats. Biomed Res Int 2021;2021:9979670. PMID: 34409109. DOI:10.1155/2021/9979670.; Sherif I.O., Sabry D., Abdel-Aziz A., Sarhan O.M. The role of mesenchymal stem cells in chemotherapy-induced gonadotoxicity. Stem Cell Res Ther 2018;9(1):196. PMID: 30021657. DOI:10.1186/s13287-018-0946-6.; Meligy F.Y., Abo Elgheed A.T., Alghareeb S.M. Therapeutic effect of adipose-derived mesenchymal stem cells on Cisplatin induced testicular damage in adult male albino rat. Ultrastruct Pathol 2019;43(1):28–55. PMID: 30741078. DOI:10.1080/01913123.2019.1572256.; Hassen M.T., Mohamed H.K., Montaser M.M. et al. Molecular, immunomodulatory, and histopathological role of mesenchymal stem cells and beetroot extract on cisplatin induced testicular damage in albino rats. Animals (Basel) 2021;11(4):1142. PMID: 33923635. DOI:10.3390/ani11041142.; G., Basalova N., Kirpatovsky V. et al. A magic kick for regeneration: role of mesenchymal stromal cell secretome in spermatogonial stem cell niche recovery. Stem Cell Res Ther 2019;10(1):342. PMID: 31753023. DOI:10.1186/s13287-019-1479-3.; Safitri E., Purnobasuki H. Effectiveness of mesenchymal stem cells cultured under hypoxia to increase the fertility rate in rats (Rattus norvegicus). Vet World 2021;14(11):3056–64. PMID: 35017856. DOI:10.14202/vetworld.2021.3056-3064.; Abdollahifar M.A., Azad N., Faraji Sani M. et al. Impaired spermatogenesis caused by busulfan is partially ameliorated by treatment with conditioned medium of adipose tissue derived mesenchymal stem cells. Biotech Histochem 2022;97(2):107–17. PMID: 33843374. DOI:10.1080/10520295.2021.1905182.; Önen S., Köse S., Yersal N., Korkusuz P. Mesenchymal stem cells promote spermatogonial stem/progenitor cell pool and spermatogenesis in neonatal mice in vitro. Sci Rep 2022;12(1):11494. PMID: 35798781. DOI:10.1038/s41598-022-15358-5.; Cai Y.T., Xiong C.L., Liu T.S. et al. Secretions released from mesenchymal stem cells improve spermatogenesis restoration of cytotoxic treatment with busulfan in azoospermia mice. Andrologia 2021;53(8):e14144. PMID: 34143903. DOI:10.1111/and.14144.; Gong D., Zhang C., Li T. et al. Are Sertoli cells a kind of mesenchymal stem cells? Am J Transl Res 2017;9(3):1067–74. PMID: 28386334.; Hou L., Dong Q., Wu Y.J. et al. Gonadotropins facilitate potential differentiation of human bone marrow mesenchymal stem cells into Leydig cells in vitro. Kaohsiung J Med Sci 2016;32(1):1–9. PMID: 26853168. DOI:10.1016/j.kjms.2015.10.008.; Ji W., Chen Y., Wang L. et al. Differentiation of human umbilical cord mesenchymal stem cells into Leydig-like cells with defined molecular compounds. Hum Cell 2020;33(2):318–29. PMID: 32034722. DOI:10.1007/s13577-020-00324-y.; Zhang Z.Y., Xing X.Y., Ju G.Q. et al. Mesenchymal stem cells from human umbilical cord ameliorate testicular dysfunction in a male rat hypogonadism model. Asian J Androl 2017;19(5):543–7. PMID: 27586027. DOI:10.4103/1008-682X.186186.; Safitri E., Hariadi M. Comparison of biotechnological culture of hypoxia-conditioned rat mesenchymal stem cells with conventional in vitro culture of normoxia-conditioned rat mesenchymal stem cells for testicular failure therapy with low libido in rats. Vet World 2019;12(6):916–24. PMID: 31440014. DOI:10.14202/vetworld.2019.916-924.; Peak T.C., Haney N.M., Wang W. et al. Stem cell therapy for the treatment of Leydig cell dysfunction in primary hypogonadism. World J Stem Cells 2016;8(10):306–15. PMID: 27822338. DOI:10.4252/wjsc.v8.i10.306.; Hsiao C.H., Ji A.T., Chang C.C. et al. Local injection of mesenchymal stem cells protects testicular torsion-induced germ cell injury. Stem Cell Res Ther 2015;6(1):113. PMID: 26025454. DOI:10.1186/s13287-015-0079-0.; Hsiao C.H., Ji A.T., Chang C.C. et al. Mesenchymal stem cells restore the sperm motility from testicular torsion-detorsion injury by regulation of glucose metabolism in sperm. Stem Cell Res Ther 2019;10(1):270. PMID: 31445515. DOI:10.1186/s13287-019-1351-5.; Zhong L., Yang M., Zou X. et al. Human umbilical cord multipotent mesenchymal stromal cells alleviate acute ischemiareperfusion injury of spermatogenic cells via reducing inflammatory response and oxidative stress. Stem Cell Res Ther 2020;11(1):294. PMID: 32680554. DOI:10.1186/s13287-020-01813-5.; Chen Y.T., Chuang F.C., Yang C.C. et al. Combined melatoninadipose derived mesenchymal stem cells therapy effectively protected the testis from testicular torsion-induced ischemiareperfusion injury. Stem Cell Res Ther 2021;12(1):370. PMID: 34187560. DOI:10.1186/s13287-021-02439-x.; Sharifian P., Yari S., Hasanein P., Manteghi Nezhad Y. Conditioned medium of bone marrow mesenchymal stem cells improves sperm parameters and reduces histological alteration in rat testicular ischaemia/reperfusion model. Andrologia 2022;54(11):e14624. PMID: 36270637. DOI:10.1111/and.14624.; Aghamir S.M., Salavati A., Yousefie R. et al. Does bone marrow-derived mesenchymal stem cell transfusion prevent antisperm antibody production after traumatic testis rupture? Urology 2014;84(1):82–6. PMID: 24797037. DOI:10.1016/j.urology.2014.03.009.; ClinicalTrials.gov. NCT02414295. Sperm production in Kleinfelter syndrome patients after mesenchymal stem cell injection. Available from: https://clinicaltrials.gov/study/NCT02414295.; ClinicalTrials.gov. NCT02025270. MSCs for treatment of azoospermic patients. Available from: https://clinicaltrials.gov/study/NCT02025270.; ClinicalTrials.gov. NCT02008799. Intra testicular artery injection of bone marrow stem cell in management of azoospermia. Available from: https://clinicaltrials.gov/study/NCT02008799.; ClinicalTrials.gov. NCT02041910. Testicular injection of autologous stem cells for treatment of patients with azoospermia. Available from: https://clinicaltrials.gov/study/NCT02041910.; ClinicalTrials.gov. NCT02641769. Intra-testicular transplantation of autologous stem cells for treatment of non-obstructive azoospermia male infertility. Available from: https://clinicaltrials.gov/study/NCT02641769.; ClinicalTrials.gov. NCT03762967. Autologous adipose-derived adult stromal vascular cell administration for male patients with infertility. Available from: https://clinicaltrials.gov/study/NCT03762967.; Han G.W., Liu C.C., Gao W.H. et al. [Bone marrow mesenchymal stem cells suppress E coli-induced bacterial prostatitis in rats]. Zhonghua Nan Ke Xue 2015;21(4):294–9. (In Chinese). PMID: 26027094.; Liu H., Zhu X., Cao X. et al. IL-1β-primed mesenchymal stromal cells exert enhanced therapeutic effects to alleviate Chronic Prostatitis/Chronic Pelvic Pain Syndrome through systemic immunity. Stem Cell Res Ther 2021;12(1):514. PMID: 34563249. DOI:10.1186/s13287-021-02579-0.; Goudarzi F., Kiani A., Moradi M. et al. Intraprostatic injection of exosomes isolated from adipose-derived mesenchymal stem cells for the treatment of chronic non-bacterial prostatitis. J Tissue Eng Regen Med 2021;15(12):1144–54. PMID: 34559469. DOI:10.1002/term.3251.; Wang L., Xie L., Tintani F. et al. Aberrant transforming growth factor-β activation recruits mesenchymal stem cells during prostatic hyperplasia. Stem Cells Transl Med 2017;6(2):394–404. PMID: 28191756. DOI:10.5966/sctm.2015-0411.; Brennen W.N., Isaacs J.T. Mesenchymal stem cells and the embryonic reawakening theory of BPH. Nat Rev Urol 2018;15(11):703–15. PMID: 30214054. DOI:10.1038/s41585-018-0087-9.; Rahimi Tesiye M., Abrishami Kia Z., Rajabi-Maham H. Mesenchymal stem cells and prostate cancer: A concise review of therapeutic potentials and biological aspects. Stem Cell Res 2022;63:102864. PMID: 35878578. DOI:10.1016/j.scr.2022.102864.; Takahara K., Ii M., Inamoto T. et al. Adipose-derived stromal cells inhibit prostate cancer cell proliferation inducing apoptosis. Biochem Biophys Res Commun 2014;446(4):1102–7. PMID: 24680678. DOI:10.1016/j.bbrc.2014.03.080.; Safari F., Shakery T., Sayadamin N. Evaluating the effect of secretome of human amniotic mesenchymal stromal cells on apoptosis induction and epithelial-mesenchymal transition inhibition in LNCaP prostate cancer cells based on 2D and 3D cell culture models. Cell Biochem Funct 2021;39(6):813–20. PMID: 34128234. DOI:10.1002/cbf.3654.; Schweizer M.T., Wang H., Bivalacqua T.J. et al. A phase I study to assess the safety and cancer-homing ability of allogeneic bone marrow-derived mesenchymal stem cells in men with localized prostate cancer. Stem Cells Transl Med 2019;8(5):441–9. PMID: 30735000. DOI:10.1002/sctm.18-0230.; Bivalacqua T.J., Deng W., Kendirci M. et al Mesenchymal stem cells alone or ex vivo gene modified with endothelial nitric oxide synthase reverse age-associated erectile dysfunction. Am J Physiol Heart Circ Physiol 2007;292(3):H1278–90. PMID: 17071732. DOI:10.1152/ajpheart.00685.2006.; Qiu X., Lin H., Wang Y. et al. Intracavernous transplantation of bone marrow-derived mesenchymal stem cells restores erectile function of streptozocin-induced diabetic rats. J Sex Med 2011;8(2):427–36. PMID: 21091881. DOI:10.1111/j.1743-6109.2010.02118.x.; Sun C., Lin H., Yu W. et al. Neurotrophic effect of bone marrow mesenchymal stem cells for erectile dysfunction in diabetic rats. Int J Androl 2012;35(4):601–7. PMID: 22428616. DOI:10.1111/j.1365-2605.2012.01250.x.; Zhu J.Q., Lu H.K., Cui Z.Q. et al. Therapeutic potential of human umbilical cord blood mesenchymal stem cells on erectile function in rats with cavernous nerve injury. Biotechnol Lett 2015;37(7):1515– 25. PMID: 25801670. DOI:10.1007/s10529-015-1816-2.; Ouyang X., Han X., Chen Z. et al. MSC-derived exosomes ameliorate erectile dysfunction by alleviation of corpus cavernosum smooth muscle apoptosis in a rat model of cavernous nerve injury. Stem Cell Res Ther 2018;9(1):246. PMID: 30257719. DOI:10.1186/s13287-018-1003-1.; Yang J., Zhang Y., Zang G. et al. Adipose-derived stem cells improve erectile function partially through the secretion of IGF-1, bFGF, and VEGF in aged rats. Andrology 2018;6(3):498–509. PMID: 29603682. DOI:10.1111/andr.12483.; Chen Z., Han X., Ouyang X. et al. Transplantation of induced pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells improved erectile dysfunction induced by cavernous nerve injury. Theranostics 2019;9(22):6354–68. PMID: 31588222. DOI:10.7150/thno.34008.; Liu Y., Zhao S., Luo L. et al. Mesenchymal stem cell-derived exosomes ameliorate erection by reducing oxidative stress damage of corpus cavernosum in a rat model of artery injury. J Cell Mol Med 2019;23(11):7462–73. PMID: 31512385. DOI:10.1111/jcmm.14615.; Qiu X., Villalta J., Ferretti L. et al. Effects of intravenous injection of adipose-derived stem cells in a rat model of radiation therapyinduced erectile dysfunction. J Sex Med 2012;9(7):1834–41. PMID: 22548750. DOI:10.1111/j.1743-6109.2012.02753.x.; Kim J.H., Yun J.H., Song E.S. et al. Improvement of damaged cavernosa followed by neuron-like differentiation at injured cavernous nerve after transplantation of stem cells seeded on the PLA nanofiber in rats with cavernous nerve injury. Mol Biol Rep 2021;48(4):3549–59. PMID: 33866496. DOI:10.1007/s11033-021-06332-x.; Bahk J.Y., Jung J.H., Han H. et al. Treatment of diabetic impotence with umbilical cord blood stem cell intracavernosal transplant: Preliminary report of 7 cases. Exp Clin Transplant 2010;8:150–60. PMID: 20565373.; Al Demour S., Jafar H., Adwan S. et al. Safety and potential therapeutic effect of two intracavernous autologous bone marrow derived mesenchymal stem cells injections in diabetic patients with erectile dysfunction: an open label phase I clinical trial. Urol Int 2018;101(3):358–65. PMID: 30173210. DOI:10.1159/000492120.; Al Demour S., Adwan S., Jafar H. et al. Safety and efficacy of 2 intracavernous injections of allogeneic Wharton’s jellyderived mesenchymal stem cells in diabetic patients with erectile dysfunction: Phase 1/2 clinical trial. Urol Int 2021;105(11–12):935– 43. PMID: 34384079. DOI:10.1159/000517364.; Mirzaei M., Bagherinasabsarab M., Pakmanesh H. et al. The effect of intracavernosal injection of stem cell in the treatment of erectile dysfunction in diabetic patients: A randomized single-blinded clinical trial. Urol J 2021;18(6):675–81. 6503. PMID: 34655071. DOI:10.22037/uj.v18i.; You D., Jang M.J., Song G. et al. Safety of autologous bone marrow-derived mesenchymal stem cells in erectile dysfunction: an open-label phase 1 clinical trial. Cytotherapy 2021;23(10):931–38. PMID: 34326007.DOI:10.1016/j.jcyt.2021.06.001.; Haahr M.K., Harken Jensen C., Toyserkani N.M. et al. A 12-month follow-up after a single intracavernous injection of autologous adipose-derived regenerative cells in patients with erectile dysfunction following radical prostatectomy: An open-label phase I clinical trial. Urology 2018; 121:203.e6–13. PMID: 29958973. DOI:10.1016/j.urology.2018.06.018.63.; Levy J.A., Marchand M., Iorio L. et al. Effects of stem cell treatment in human patients with Peyronie disease. J Am Osteopath Assoc 2015;115(10):e8–13. PMID: 26414724. DOI:10.7556/jaoa.2015.124.; Castiglione F., Hedlund P., Van der Aa F. et al. Intratunical injection of human adipose tissue-derived stem cells prevents fibrosis and is associated with improved erectile function in a rat model of Peyronie’s disease. Eur Urol 2013;63(3):551–60. PMID: 23040209. DOI:10.1016/j.eururo.2012.09.034.; ClinicalTrials.gov. NCT02414308. Management of Peyronie’s disease with adipose tissue stem cell. Available from: https://clinicaltrials.gov/study/NCT02414308.; ClinicalTrials.gov. NCT05147779. Safety of cultured allogeneic adult umbilical cord stem cells for Peyronie’s disease, ED, and interstitial cystitis. Available from: https://clinicaltrials.gov/study/NCT05147779.; ClinicalTrials.gov. NCT04771442. Stem cell treatment of Peyronie´s disease. Available from: https://clinicaltrials.gov/study/NCT04771442.; Xie X., Du X., Li K. et al. Construction of engineered corpus cavernosum with primary mesenchymal stem cells in vitro. Sci Rep 2017;7(1):18053. PMID: 29273785. DOI:10.1038/s41598-017-18129-9.; Laks M., Freitas-Filho L.G., Sayeg K. et al. Penile reconstruction using mesenchymal stem cells. Acta Cir Bras 2015;30(8):529–36. PMID: 26352332. DOI:10.1590/S0102-865020150080000003.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/733

الاتاحة: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/733
https://doi.org/10.62968/2070-9781-2024-25-1-31-39

المؤلفون: A. V. Eremkin, S. S. Ipatov, G. V. Kuklina, D. V. Pechenkin, A. A. Kytmanov, O. V. Tikhvinskaya, S. L. Kuznetsov, A. S. Gorshkov, N. G. Khapaev, А. В. Еремкин, С. С. Ипатов, Г. В. Куклина, Д. В. Печенкин, А. А. Кытманов, О. В. Тихвинская, С. Л. Кузнецов, А. С. Горшков, Н. Г. Хапаев

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 2 (2021); 94-99 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 2 (2021); 94-99 ; 2658-719X ; 0370-1069

مصطلحات موضوعية: иммунохроматографические наборы реагентов, ELISA tests, immune-chromatographic reagent panels, иммуноферментные тест-системы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1500/1215; Pinchuk I.V., Beswick E.J., Reyes V.E. Staphylococcal Enterotoxins. Toxins. 2010; 2(8):2177–97. DOI:10.3390/toxins 2082177.; Tamarapu S., McKillip J.L., Drake M. Development of a multiplex polymerase chain reaction assay for detection and differentiation of Staphylococcus aureus in dairy products. J. Food Prot. 2001; 64(5):664–8. DOI:10.4315/0362-028x-64.5.664.; Hu D.-L., Nakane A. Mechanisms of staphylococcal enterotoxin-induced emesis. Eur. J. Pharmacol. 2014; 722:95–107. DOI:10.1016/j.ejphar.2013.08.050.; Ercoli L., Gallina S., Nia Y., Auvray F., Primavilla S., Guidi F., Pierucci B., Graziotti C., Decastelli L., Scuota S. Investigation of a staphylococcal food poisoning outbreak from a Chantilly cream dessert, in Umbria (Italy). Foodborne Pathog. Dis. 2017; 14(7):407– 13. DOI:10.1089/fpd.2016.2267.; Mossong J., Decruyenaere F., Moris G., Ragimbeau C., Olinger C.M., Johler S., Perrin M., Hau P., Weicherding P. Investigation of a staphylococcal food poisoning outbreak combining case-control, traditional typing and whole genome sequencing methods, Luxembourg, June 2014. Euro Surveill. 2015; 20(45):pii=30059. DOI:10.2807/1560-7917.ES.2015.20.45.30059.; Gill D.M. Bacterial toxins: a table of lethal amounts. Microbiol. Rev. 1982; 46(1):86–94.; Ostyn A., Guillier F., Prufer A.-L., Papinaud I., Messio S., Krys S., Lombard B., Hennekinne J.-A. Intra-laboratory validation of the Ridascreen SET Total kit for detecting staphylococcal enterotoxins SEA to SEE in cheese. Lett. Appl. Microbiol. 2011; 52(5):468–74. DOI:10.1111/j.1472-765X.2011.03025.x.; Veras J.F., do Carmo L.S., Tong L.C., Shupp J.W., Cummings C., Dos Santos D.A., Cerqueira M.M.O.P., Cantini A., Nicoli J.R., Jett M. A study of the enterotoxigenicity of coagulase-negative and coagulase-positive staphylococcal isolates from food poisoning outbreaks in Minas Gerais, Brazil. Int. J. Infect. Dis. 2008; 12(4):410–5. DOI:10.1016/j.ijid.2007.09.018.; Fries B.C., Varshney A.K. Bacterial toxins-staphylococcal enterotoxin B. Microbiol. Spectr. 2013; 1(2). DOI:10.1128/microbiolspec.AID-0002-2012.; Любавина И.А., Бровко Ф.А., Валякина Т.И., Вертиев Ю.В., Гришин Е.В. Методы экспресс-анализа стафилококкового энтеротоксина А в продуктах питания. Биоорганическая химия. 2014; 40(2):186–95. DOI:10.7868/S0132342314020109.; Levine W.C., Bennett R.W., Choi Y., Henning K.J., Rager J.R., Hendricks K.A., Hopkins D.P., Gunn R.A., Griffin P.M. Staphylococcal food poisoning caused by imported canned mushrooms. J. Infect. Dis. 1996; 173(5):1263–7. DOI:10.1093/infdis/173.5.1263.; Bergdoll M.S. Staphylococcus aureus. In: Doyle M.P., editor. Foodborne bacterial pathogens. New York: Marcel Dekker, Inc.; 1989. Р. 463–523; Asao T., Kumeda Y., Kawai T., Shibata T., Oda H., Haruki K., Nakazawa H., Kozaki S. An extensive outbreak of staphylococcal food poisoning due to low-fat milk in Japan: estimation of enterotoxin A in the incriminated milk and powdered skim milk. Epidemiol. Infect. 2003; 130(1):33–40. DOI:10.1017/s0950268802007951.; Evenson M., Hinds M., Bernstein R., Bergdoll M. Estimation of human dose of staphylococcal enterotoxin A from a large outbreak of staphylococcal food poisoning involving chocolate milk. Int. J. Food Microbiol. 1988; 7:311–6.; Do Carmo L.S., Cummings C., Linardi V.R. Dias R.S. De Souza J.M., De Sena M.J., Dos Santos D.A., Shupp J.W., Pereira R.K., Jett M. A case study of a massive staphylococcal food poisoning incident. Foodborne Pathog. Dis. 2004; 1(4):241–6. DOI:10.1089/fpd.2004.1.241.; Флуер Ф.С. Методы определения стафилококковых энтеротоксинов в пищевых продуктах. Вопросы питания. 2010; 79(1):66–73.; Boerema J.A., Clements R., Brightwell G. Evaluation of molecular methods to determine enterotoxigenic status and molecular genotype of bovine, ovine, human and food isolates of Staphylococcus aureus. Int. J. Food Microbiol. 2006; 107(2):192– 201. DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2005.07.008.; Nakane P.K., Kawaoi A. Peroxidase-labeled antibody. A new method of conjugated J. Histochem. Cytochem. 1974; 22(12):1084–91. DOI:10.1177/22.12.1084.; Кэтти Д., редактор. Антитела. Методы: Кн. 1: пер. с англ. М.: Мир; 1991. 287 с.; Frens G. Controlled nucleation for the regulation of the particle size in monodisperse gold suspensions. Nature Physical Science. 1973; 241(105):20–2. DOI:10.1038/PHYSCI241020A0.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1500

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1500
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2021-2-94-99

المؤلفون: V. I. Nozdrin, G. A. Piavchenko, M. E. Ivanova, K. S. Guzev, S. L. Kuznetsov, В. И. Ноздрин, Г. А. Пьявченко, М. Е. Иванова, К. С. Гузев, С. Л. Кузнецов

المصدر: Drug development & registration; Том 8, № 3 (2019); 57-61 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 8, № 3 (2019); 57-61 ; 2658-5049 ; 2305-2066

مصطلحات موضوعية: высокоэффективная жидкостная хроматография, phenol, multicomponent substance, experimental pharmacokinetics, high performance liquid chromatography, фенол, многокомпонентная субстанция, экспериментальная фармакокинетика

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/715/693; Багирова В. Л., Нечаева Е. Б., Осипов А. С., Гузев К. С. Применение ВЭЖХ с диодно-матричным детектированием для анализа лекарственного препарата АСД Ф-3. «Фитофарм 2005»: материалы IX международного съезда. 2005; 517–519.; Багирова В. Л., Нечаева Е. Б., Осипов А. С., Гузев К. С., Ноздрин К. В. Применение ВЭЖХ с диодно-матричным детектированием для идентификации фенолов препарата АСД-3. Сборник «Актуальные проблемы создания новых препаратов природного происхождения». 2006; 26–28.; Дерябина З. И., Николаев А. В. Химико-фармакологическая характеристика препарата АСД. Труды Всесоюзного института экспериментальной ветеринарии. 1968; 35: 326–339.; Иванова М. Е., Ноздрин В. И., Гузев К. С., Пронина К.С., Пьявченко Г. А., Кузнецов С. Л. Разработка и валидация методики количественного определения фенола, входящего в состав пасты с антисептиком-стимулятором Дорогова 3 фракции, методом ВЭЖХ. Альманах «Ретиноиды». 2019; 17–22.; Машковский М. Д. Лекарственные средства. 12-е изд. М.: Медицина, 1993; 491.; Мирошниченко И. И. Основы фармакокинетики. М.: МДМПринт, 2017; 7–18.; Осипов А. С., Амаспюр Д. А., Нечаева Е. Б., Грецкая Т. Н. Применение ВЭЖХ с диодно-матричным детектированием для анализа низкокипящих фракций АСД. Тезисы докладов XII Российского национального конгресса «Человек и лекарство». 2005; 783.; Принципы надлежащей лабораторной практики: ГОСТ 33044–2014. Введён 01.08.15. М.: Стандартинформ. 2015; 12.; Миронов А. Н. (ред.). Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Часть первая. М.: Гриф и К. 2012; 944.; Фисенко В. П. (ред.). Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М.: Ремедиум. 2000; 398.; Guidance for Industry: Bioanalytical method validation. U.S. Department of Health and Human Services, Food and Drug Administration, Center for Drug Evolution and Research (CDER). Government Printing Office: Washington, DC. 2001.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/715

الاتاحة: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/715
https://doi.org/10.33380/2305-2066-2019-8-3-57-61

المؤلفون: Yu. I. Poltavets, S. V. Aleshin, V. V. Zavarzina, A. I. Murav’eva, A. A. Soboleva, I. A. Tubasheva, S. L. Kuznetsov, Ю. И. Полтавец, С. В. Алешин, В. В. Заварзина, А. И. Муравьева, А. А. Соболева, И. А. Тубашева, С. Л. Кузнецов

المصدر: Drug development & registration; Том 9, № 1 (2020); 66-74 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 9, № 1 (2020); 66-74 ; 2658-5049 ; 2305-2066

مصطلحات موضوعية: лиофилизат, related substances, gamma-irradiation, sterilization, polymeric drugs, lyophilizate, посторонние примеси, гамма-облучение, стерилизация, полимерные формы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/744/713; Poltavets Y. I., Zhirnik A. S., Zavarzina V. V., Semochkina Y. P., Shuvatova V. G., Krasheninnikova A. A., Aleshin S. V., Dronov D. O., Vorontsov E. A., Posypanova G. A., Balabanyan V. Y. In vitro anticancer activity of folate-modified docetaxel-loaded PLGA nanoparticles against drug-sensitive and multidrug-resistant cancer cells. Cancer Nanotechnology. 2019; 10: 2. DOI:10.1186/s12645-019-0048-x.; Bushell J. A., Claybourn M., Williams H. E., Murphy D. M. An EPR and ENDOR study of γ- and β-radiation sterilization in poly (lactide-coglycolide) polymers and microspheres. J. Control. Release. 2005; 110(1): 49–57. DOI:10.1016/j.jconrel.2005.09.009.; Friess W., Schlapp M. Sterilization of gentamicin containing collagen/PLGA microparticle composites. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2006; 63(2): 176–187. DOI:10.1016/j.ejpb.2005.11.007.; Sintzel M.B., Merkli Al., Tabatabay C., Gurny R. Influence of Irradiation Sterilization on Polymers Used as Drug Carriers: A Review. Drug Development and Industrial Pharmacy. 1997; 23(9): 857–878. DOI:10.3109/03639049709148693.; Maksimenko O., Pavlov E., Toushov E., Molin A., Stukalov Y., Prudskova T., Feldman V., Kreuter J., Gelperina S. Radiation sterilization of doxorubicin bound to poly(butyl cyanoacrylate) nanoparticles. Int. J. Pharm. 2008; 356(1-2): 325–332.; Poltavets Y. I., Zavarzina V. V., Kuznetsov S. L., Krasheninnikova A. A., Dronov D. O., Gukasova N. V., Shuvatova V. G., Balabanyan V. Y. Development of docetaxel-loaded folate-modified poly(lactic-coglycolic acid) particles. J. Rep. Pharm. Sci. 2019; 8: 253–261. DOI:10.4103/jrptps.JRPTPS_64_19.; Vasu D. R., Moses B. J., Vyas K., Sai Ram P., Ramachandra P., Sekhar N. M., Mohan Reddy D. N. Srinivasa Rao N. Isolation and characterization of impurities in docetaxel. J. Pharm. Biomed. Anal. 2006; 40(3): 614–622. DOI:10.1016/j.jpba.2005.10.037.; Kumar D., Tomar R.S., Deolia S.K., Mitra M., Mukherjee R., Burman A.C. Isolation and characterization of degradation in docetaxel drug substance and its formulation. J. Pharm. Biomed. Anal. 2007; 43(4): 1228–1235. DOI:10.1016/j.jpba.2006.10.015.; Reddy A. M., Banda N., Dagbu S. G., Rao D. V., Kocherlakota C. S., Krishnamurthy V. Evaluation of the Pharmaceutical Quality of Docetaxel Injection Using New Stability Indicating Chromatographic Methods for Assay and Impurities. Sci. Pharm. 2010; 78(2): 215–231. DOI:10.3797/scipharm.0912-14.; United States Pharmacopeia USP 38–NF 33 P. 3180.; Sanzakov M. A., Ignatov D. V., Prozorovskyi V. N., Druzhilovskaia O. S., Medvedeva N. V., Ipatova O.M. Development of targeted drug delivery system: synthesis of conjugates of address fragment (RA-COOH) with ligand (R-NH2). Biomeditsinskaia Khimiia. 2014; 60(6), 713–716 (in Russ). DOI:10.18097/pbmc20146006713.; European Pharmacopoeia 8.0 07/2012:2593 Docetaxel, anhydrous, P. 2090–2092.; European Pharmacopoeia 8.0 07/2012:2449 Docetaxel, trihydrate, P. 2092–2093.; Makadia H. K., Siegel S. J. Poly Lactic-co-Glycolic Acid (PLGA) as Biodegradable Controlled Drug Delivery Carrier. Polymers (Basel). 2011; 3(3): 1377–1397. DOI:10.3390/polym3031377.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/744

الاتاحة: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/744
https://doi.org/10.33380/2305-2066-2020-9-1-66-74

المؤلفون: A. V. Ovchinnikov, G. V. Borisevich, A. I. Terent’ev, Yu. I. Pashchenko, V. T. Krotkov, V. N. Marchenko, S. V. Borisevich, S. L. Kuznetsov, А. В. Овчинников, Г. В. Борисевич, А. И. Терентьев, Ю. И. Пащенко, В. Т. Кротков, В. Н. Марченко, С. В. Борисевич, С. Л. Кузнецов

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 1 (2019); 107-112 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 1 (2019); 107-112 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2019-1

مصطلحات موضوعية: суспензионное культивирование клеток, virus of the vaccine, bioreactor, suspension cultivation of cells, вирус вакцины, ферментер

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1132/1020; Овчинников А.В., Пащенко Ю.И., Блатов В.А., Ручко С.В., Чуркин И.А., Марков В.И., Бондарев В.П., Хамитов Р.А., Осин В.В., Тонеев В.В., Лебедев Р.П., Степанов А.А. Моделирование гидродинамических условий культивирования животных клеток. Биотехнология. 2010; 1:85–95.; Войнов В.А., Жукова О.П., Лукачева О.Н. Массоотдача в проточном газожидкостном биореакторе. Биотехнология. 2014; 1:62– 6.; Иванов А.К., Иванов Д.А., Руденко А.П. Массообмен в газожидкостных биореакторах с роторами геликоидного типа. Биотехнология. 2014; 2:69–73.; Генералов С.В., Абрамова Е.Г., Матвеева И.М., Жулидов И.М., Свинцов Р.А. Крупномасштабное культивирование фиксированного вируса бешенства штамма Москва 3253 на перевиваемой линии клеток Vero (B): методы и сравнительный анализ. Биотехнология. 2014; 5:38–43.; Васильев Н.Н., Амбросов В.А., Складнев А.А. Моделирование процессов микробиологического синтеза. М: Лесная промышленность; 1975. 341 с.; Пащенко Ю.И., Прохор В.Ф., Хамитов Р.А., Максимов В.А. Кинетические закономерности и особенности размножения лимфобластоидных клеток Raji в суспензии. Биотехнология. 2006; 5:88–90.; Сирица И.И., Лымарь В.Т., Лобанова Т.Н. Проточнофильтрационный способ культивирования клеток млекопитающих. Цитология. 1996; 38(2):247–8.; Зверев А.А., Зефиров Т.Л. Статистические методы в биологии: Учебно-методическое пособие. Казань: КФУ; 2013. 42 с.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1132

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1132
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2019-1-107-112

المؤلفون: G. G. Onishchenko, A. Yu. Popova, E. B. Ezhlova, Yu. V. Demina, N. D. Pakskina, M. N. Pistsov, V. V. Rubtsov, A. V. Surovyatkin, A. A. Petrov, A. V. Kazantsev, A. M. Berezhnoy, A. Yu. Zverev, A. V. Manoshkin, V. T. Krotkov, D. A. Kutaev, V. A. Maksimov, S. L. Kuznetsov, E. Yu. Vakhnov, M. A. Timofeev, A. A. Movsesyants, S. V. Borisevich, Г. Г. Онищенко, А. Ю. Попова, Е. Б. Ежлова, Ю. В. Демина, Н. Д. Пакскина, М. Н. Писцов, В. В. Рубцов, А. В. Суровяткин, А. А. Петров, А. В. Казанцев, А. М. Бережной, А. Ю. Зверев, А. В. Маношкин, В. Т. Кротков, Д. А. Кутаев, В. А. Максимов, С. Л. Кузнецов, Е. Ю. Вахнов, М. А. Тимофеев, А. А. Мовсесянц, С. В. Борисевич

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3 (2017); 27-32 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3 (2017); 27-32 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2017-3

مصطلحات موضوعية: лабораторная диагностика, street rabies virus, laboratory diagnostics, уличный вирус бешенства

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/407/405; Абрамова Е.Г., Генералов С.В., Матвеева Ж.В., Жулидов И.М., Никифоров А.К., Комиссаров А.В. Экспериментальное обоснование внедрения культуральных технологий в производство антирабического иммуноглобулина. Пробл. особо опасных инф. 2016; 2:95–101. DOI:10.21055/0370-1069-2016-2-95-101.; Ботвинкин А.Д., Отгонбаатар Д. Бешенство на сопредельных территориях России и Монголии (исторический обзор). Сибир. мед. журн. 2006; 7:8–10.; Богуцкий М.И., Басинский В.А., Цыркунов В.М., Шока А.И. Клинико-морфологическая характеристика летальных наблюдений бешенства. Журн. Гродненского гос. мед. ун-та. 2004; 1(5):83–5.; Кошеметов Ж.К., Матвеева В.М., Строчков В.М., Богданова М.И., Оразымбетова Н.К., Сугирбаева Г.Д., Нурабаев С.Ш., Сырым Н.С. Оптимизация условий постановки полимеразной цепной реакции для диагностики бешенства. Вестн. Алтайского гоc. аграрного ун-та. 2014; 11(121):121–6.; Макаров В.В. Бешенство: очерк мирового нозоареала и общие элементы контроля. Ветеринарн. патол. 2002; 1:12–20.; Макаров В.В., Гулюкин А.М., Гулюкин М.И. Бешенство: естественная история на рубеже столетий. М.: ЗооВетКнига, 2015. С. 5–13.; Мовсесянц А.А., Хадарцев О.С. Случаи гидрофобии в Российской Федерации. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2003; 5:112–6.; Недосеков В.В. Сравнительная оценка методов лабораторной диагностики бешенства. Ветеринарн. патол. 2002; 1:48–51.; Онищенко Г.Г., Васильев Н.Т., Максимов В.А., Марков В.И., Борисевич И.В., Федоров Ю.М. Центр специальной лабораторной диагностики и лечения особо опасных и экзотических инфекционных заболеваний в системе противоэпидемической защиты территории Российской Федерации. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2001; 6:114–5.; Онищенко Г.Г., Васильев Н.Т., Максимов В.А., Марков В.И., Меркулов В.А., Писцов М.Н., Бережной А.М., Сыромятникова С.И., Зубов В.В. Выделение и идентификация возбудителя тяжелого острого респираторного синдрома (ТОРС) от больного атипичной пневмонией. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2003; 5:109–12.; Онищенко Г.Г., Васильев Н.Т., Максимов В.А., Писцов М.Н., Степанов Н.Н., Борисевич С.В., Ручко С.В., Евстигнеев О.В., Хамитов Р.А., Зверев А.Ю., Меркулов В.А., Ионов С.Н., Марков В.И., Мовсесянц А.А. Идентификация «уличного» вируса бешенства из биопроб головного мозга погибшего ребенка. Биопрепараты: профилакт., диагн., лечение. 2009; 1–2(33– 34):37–40.; Полещук Е.М., Броневец А.Д., Сидоров Г.Н. Современ­ ные особенности эпидемиологии бешенства в России. Инф. бол. 2016; 14(1):29–36.; Рудаков Н.В., Ястребов В.К., Шпынов С.Н., Якименко В.В., Старостина О.Ю., Рудакова С.А., Полещук Е.М., Самойленко И.Е. Актуальные вопросы эпидемиологии природно-очаговых инфекций. Инф. и иммунитет. 2012; 1, 2:189.; Селимов М.А. Бешенство. М.: Медицина, 1978. 336 c.; Топорков В.П., Величко Л.Н. Эпидемиологическая и эпизоотологическая ситуация по бешенству в федеральных округах Российской Федерации. Пробл. особо опасных инф. 2007; 2(94):37–40.; Хисматуллина Н.А., Гулюкин А.М., Гулюкин М.И., Иванов А.В., Сабирова В.В., Южаков А.Г., Александрова Н.М., Самерханов И.И., Алипер Т.И. Два случая гидрофобии в Республике Татарстан: прижизненная и постмортальная лабораторная диагностика. Вопр. вирусол. 2015; 2:18–24.; Черкасский Б.Л., Хадарцев О.С., Мовсесянц А.А. Эпидемиологический надзор за бешенством в Российской Федерации. Бюл. Вакцин. Бешенство. 2005; 1(37):5.; Шпынов С.Н., Полещук Е.М., Рудаков Н.В., Самойленко И.Е., Решетникова Т.А., Кумпан Л.В., Коломеец А.Н., Сидоров Г.Н., Ткачёв С.Е., Грибенча С.В. Применение молекулярных методов типирования при изучении штаммов риккетсий группы клещевой пятнистой лихорадки и вируса бешенства. Пробл. особо опасных инф. 2012; 111:77–80.; Aiello R., Zecchin B., Tiozzo Caenazzo S., Cattoli G., Benedictis P. Disinfection protocols for necropsy equipment in rabies laboratories: Safety of personnel and diagnostic outcome. J. Virol. Methods. 2016; 234:75–9. DOI:10.1016/j.jviromet.2016.03.017.; Chowdhury F.R., Basher A., Amin M.R., Hassan N., Patwary M.I. Rabies in South Asia: fighting for elimination. Recent Pat. Antiinfect. Drug Discov. 2015; 10(1):30–4. DOI:10.2174/1574891X10666150410130024.; Kole A.K., Roy R., Kole D.C. Human rabies in India: a problem needing more attention. Bull. World Health Organ. 2014; 92:230. DOI:10.2471/BLT.14.136044.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/407

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/407
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2017-3-27-32

المؤلفون: Ya. A. Kibirev, I. V. Darmov, M. A. Loginova, I. V. Marakulin, D. A. Chukhlantsev, T. I. Dormidontova, S. L. Kuznetsov, A. V. Kuznetsovskii, Я. А. Кибирев, И. В. Дармов, М. А. Логинова, И. В. Маракулин, Д. А. Чухланцев, Т. И. Дормидонтова, С. Л. Кузнецов, А. В. Кузнецовский

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 2(108); 61-63 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 2(108); 61-63 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2011-2(108)

مصطلحات موضوعية: test system, VNTR

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/751/703; Покровский В.И., Онищенко Г.Г., редакторы. Актуальные проблемы холеры. М.: ГОУ ВУНМЦ МЗ РФ; 2000. 384 с.; Покровский В.И., редактор. Холера в СССР в период VII пандемии. М.: Медицина; 2000. 472 с.; GPMS. Genomes, Polymorphism and Minisatellites with a focus on Molecular Epidemiology using Tandem Repeats [Internet]. Available from: http://minisatellites.u-psud.fr.; Kaper, J.B., Morris J.G., Levine M.M. Cholera. Clin. Microbiol. Rev. 1995; 8:48-86.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/751

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/751
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2011-2(108)-61-63

المؤلفون: K. E. Gavrilov, E. V. Serebryakova, T. Yu. Dunyasheva, N. N. Zaytseva, Yu. D. Eremenko, V. S. Lobastov, A. A. Byvalov, S. L. Kuznetsov, I. V. Borisevich, К. Е. Гаврилов, Е. В. Серебрякова, Т. Ю. Дуняшева, Н. Н. Зайцева, Ю. Д. Еременко, В. С. Лобастов, А. А. Бывалов, С. Л. Кузнецов, И. В. Борисевич

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 2(104); 49-52 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 2(104); 49-52 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2010-2(104)

مصطلحات موضوعية: lypopolysaccharide, temperature of cultivation

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/525/506; Андреев А.В. Общие закономерности и специфические особенности биосинтеза и метаболизма у прокариот. В кн.: Клеточный уровень исследования. Доклады II Всесоюзной конференции. М.; 1982. С. 75-106.; Брезгунов В.Н., Швец Н.В., Бунин В.Д., Волошин А.Г., Светогоров Д.Е., Щепкина А.Н. Определение электрооптическим методом числа неповрежденных бактериальных клеток после экстремальных воздействий. Микробиология. 1984; 54(4):616-20.; Еременко Ю.Д., Смирнов С.Г., Чернядьев А.В. Изменение жирнокислотного состава бактерий Y. pestis штамма EV в процессе глубинного выращивания. Биопрепараты. 2002; 1:21-3.; Иванов А.Ю., Фомченков В.М., Ажермачев А.К.,Чугунов В.А., Мирошников А.И. Влияние поверхностно-активных веществ на электрические свойства бактериальных клеток. Микробиология. 1987; 58(6):969-75.; Лукоянова М.А., Тихонова Г.В. Организация дыхательной цепи и аккумуляция энергии у бактерий. Итоги науки и техники. Сер. Биол. химия. ВИНИТИ. 1982; 17:33-74.; Печенкин Д. В., Бывалов А.А., Маракулин И. В., Шабалин Б.А., Гаврилов К.Е. Влияние капсулы Yersinia pestis на фагоцитарную активность перитонеальных макрофагов морской свинки. Пробл. особо опасных инф. 2005; 2(90):47-8.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/525

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/525
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2010-2(104)-49-52

المؤلفون: B. A. Shabalin, V. Yu. Okhapkina, I. V. Darmov, S. L. Kuznetsov, Б. А. Шабалин, В. Ю. Охапкина, И. В. Дармов, С. Л. Кузнецов

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 1(103); 60-62 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 1(103); 60-62 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2010-1(103)

مصطلحات موضوعية: lethality, immunosuppression, virulence

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/511/493; Вершилова П.А., Голубева А.А. Бруцеллез в СССР. М.; 1970.; Вершилова П.А., редактор. Бруцеллез. М.; 1972; Вершилова П.А., Чернышева М.И., Князева Э.Н. Патогенез и иммунология бруцеллеза. М.: Медицина; 1974.; Гордиенко Л.Н., Булдыгин Д.В., Ощепков В.Г. и др. Способ оценки вирулентных свойств S-форм бруцелл. Патент на изобретение № 2209251. Бюл. «Изобретения, полезные модели». М., 2003; 17.; Кайтмазова Е.И., Островская Н.Н. К вопросу о характеристике бруцелл, выделенных на территории СССР. Сообщение I. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1967; 1: 12-6.; Кайтмазова Е.И., Островская Н. К вопросу о характеристике бруцелл, выделенных на территории СССР. Сообщение II. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1967; 2: 66-70.; Корзенко В.Н. Бруцеллез человека. Минск; 1980.; Ременцова М.М., Грушина Т.А. Влияние гидрокортизона и методов заражения на высеваемость бруцелл из организма белых мышей. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1978; 1:61-5; Таран И.Ф. О некоторых особенностях патогенеза и иммуногенеза бруцеллезной инфекции. В кн.: Тез. докл. научной конференции по вопросам микробиологии, иммунологии и вакцинопрофилактики бруцеллеза; Москва, 9-10 февраля 1966 г. М.; 1966. С. 46-9.; Таран И.Ф., Мухамедянов С.М., Галко И.К. Бруцеллез: Принципы эпидемиологического анализа, профилактики и борьбы. Ташкент: Медицина; 1983; Триленко П.А. Бруцеллез сельскохозяйственных животных. Ленинград; 1976.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/511

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/511
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2010-1(103)-60-62

المؤلفون: A. A. Grigor’ev, I. V. Borisevich, I. V. Darmov, V. P. Bondarev, S. L. Kuznetsov, A. V. Mironin, I. P. Pogorelsky, A. V. Letarov, E. E. Koulikov, A. A. Manykin, А. А. Григорьев, И. В. Борисевич, И. В. Дармов, В. П. Бондарев, С. Л. Кузнецов, А. В. Миронин, И. П. Погорельский, А. В. Летаров, Е. Е. Куликов, А. А. Маныкин

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 4(98); 33-36 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 4(98); 33-36 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2008-4(98)

مصطلحات موضوعية: диагностика, temperate tularemia bacteriophage, characteristics, diagnostics, умеренный туляремийный бактериофаг, свойства

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1016/922; Адамс М. Бактериофаги. М.; 1961.; Антонов А.В. Клинико-эпидемиологическая характеристика туляремии в Краснодарском крае Медицинская микробиология - XXI век. Матер. Всерос. науч.-практ. конф. Саратов; 2004. С. 23-4.; Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: Медгиз; 1963.; Гольдфарб Д.М. Бактериофагия. М.: Медгиз; 1961.; Домарадский И.В. Проблемы патогенности франциселл и пути их решения. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2005; 1:106-11.; Емельянова О.С. О туляремийном бактериофаге. Пробл. особо опасных инф. 1971; 3(19)202-6.; Здоровье населения и среда обитания. Информ. бюл. 2005; 12(153).; Колядицкая Л.С., Кучина К.В., Шмурыгина А.Г. О туляремийном бактериофаге Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1959; 3:13-6.; Лабинская А.С. Микробиология с техникой микробиологических исследований. М.; 1978.; Олсуфьев Н.Н. Таксономия, микробиология и лабораторная диагностика возбудителя туляремии. М.; 1975.; Приказ МЗ РФ № 125 от 14.04.1999 г.; Прозоровский С.В., Покровский В.И., Тартаковский И.С. Болезнь легионеров. М.: Медицина; 1984.; Тихоненко А.С. Ультраструктура вирусов бактерий. М.; 1968.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1016

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1016
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2008-4(98)-33-36