المؤلفون: P. V. Tolstov, S. I. Zhukova, A. N. Kalyagin, Ju. V. Aleksandrova, T. M. Maksikova, O. V. Ryzhkova, A. V. Sinkov, П. В. Толстов, С. И. Жукова, А. Н. Калягин, Ю. В. Александрова, Т. М. Максикова, О. В. Рыжкова, А. В. Синьков

المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 9, № 2 (2024); 172-182 ; 2587-9596 ; 2541-9420

مصطلحات موضوعية: сосуды слоя Галлера, ANCA associated vasculitis, steroid cataract, vascular changes in the sclera, Haller’s layer vessels, АНЦА-ассоциированный васкулит, стероидная катаракта, сосудистые изменения склеры

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4739/2771; Ntatsaki E, Watts RA, Scott DG. Epidemiology of ANCAassociated vasculitis. Rheum Dis Clin North Am. 2010; 36(3): 447-461. doi:10.1016/j.rdc.2010.04.002; Comarmond C, Cacoub P. Granulomatosis with polyangiitis (Wegener): Clinical aspects and treatment. Autoimmun Rev. 2014; 13(11): 1121-1125. doi:10.1016/j.autrev.2014.08.017; Злобина Т.И., Осипок Н.В., Якубович А.И., Калягин А.Н., Янышева А.В., Скворцова Э.Н. Саркома Капоши, ассоциированная с гранулематозом Вегенера. Научно-практическая ревматология. 2004; 42(1): 92-93. doi:10.14412/19954484-2004-1394; Якубович А.И., Злобина Т.И., Калягин А.Н., Осипок Н.В., Янышева А.В., Скворцова Э.Н., и др. Случай развития иммуносупрессивной саркомы Капоши у больного гранулематозом Вегенера. Клиническая дерматология и венерология. 2005; 3(1): 11-14.; Stone JH, Merkel PA, Spiera R, Seo P, Langford CA, Hoffman GS, et al. Rituximab versus cyclophosphamide for ANCA-associated vasculitis. N Engl J Med. 2010; 363(3): 221-232. doi:10.1056/NEJMoa0909905; You C, Ma L, Lasave AF, Foster CS. Rituximab induction and maintenance treatment in patients with scleritis and granulomatosis with polyangiitis (Wegener’s). Ocul Immunol Inflamm. 2018; 26(8): 1166-1173. doi:10.1080/09273948.2017.1327602; Ahmed A, Foster CS. Cyclophosphamide or rituximab treatment of scleritis and uveitis for patients with granulomatosis with polyangiitis. Ophthalmic Res. 2019; 61(1): 44-50. doi:10.1159/000486791; Recillas-Gispert C, Serna-Ojeda JC, Flores-Suárez LF. Rituximab in the treatment of refractory scleritis in patients with granulomatosis with polyangiitis (Wegener’s). Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2015; 253(12): 2279-2284. doi:10.1007/s00417-015-3198-5; Padoan R, Campaniello D, Gatto M, Schiavon F, Doria A. Current clinical and therapeutic approach to tumour-like mass lesions in granulomatosis with polyangiitis. Autoimmun Rev. 2022; 21(3): 103018. doi:10.1016/j.autrev.2021.103018; Joshi L, Tanna A, McAdoo SP, Medjeral-Thomas N, Taylor SR, Sandhu G, et al. Long-term outcomes of rituximab therapy in ocular granulomatosis with polyangiitis: Impact on localized and nonlocalized disease. Ophthalmology. 2015; 122(6): 1262-1268. doi:10.1016/j.ophtha.2015.01.016; Dammacco R, Biswas J, Mohanan-Earatt A, Lisch W, Zito FA, Rubini G, et al. The eye is a common site of granulomatosis with polyangiitis. A collaborative study. BMC Ophthalmol. 2023; 23(1): 26. doi:10.1186/s12886-022-02743-x; Gottenberg JE, Mahr A, Pagnoux C, Cohen P, Mouthon L, Guillevin L, et al. Long-term outcome of 37 patients with Wegener's granulomatosis with renal involvement. La Presse Médicale. 2007; 36(5): 771-778.; Dadonienė J, Pileckytė M, Baranauskaitė A, Kirdaitė G. Clinical characteristics and long-term outcomes of 35 patients with Wegener’s granulomatosis followed up at two rheumatology centers in Lithuania. Medicina. 2010; 46(4): 256.; Yang MK, Kim HW, Kang EH, Kim N, Choung H, Khwarg SI. Ophthalmic manifestations and visual outcomes of granulomatosis with polyangiitis: A retrospective multicentre study in Korea. Eye (Lond). 2023; 37(7): 1302-1307. doi:10.1038/s41433-022-02114-2; Kubaisi B, Abu Samra K, Foster CS. Granulomatosis with polyangiitis (Wegener’s disease): An updated review of ocular disease manifestations. Intractable Rare Dis Res. 2016; 5(2): 61-69. doi:10.5582/irdr.2016.01014; Perumal B, Black EH, Levin F, Servat JJ. Non-infectious orbital vasculitides. Eye (Lond). 2012; 26(5): 630-639. doi:10.1038/eye.2012.28; Новиков П.И., Моисеев С.В., Кузнецова Е.И., Семенкова Е.Н., Мухин Н.А. Изменения течения заболевания и прогноза гранулематоза с полиангиитом (Вегенера): результаты 40-летнего наблюдения. Клиническая фармакология и терапия. 2014; 1: 32-37.; Tan LT, Davagnanam I, Isa H, Taylor SR, Rose GE, Verity DH, et al. Clinical and imaging features predictive of orbital granulomatosis with polyangiitis and the risk of systemic involvement. Ophthalmology. 2014; 121(6): 1304-1309. doi:10.1016/j.ophtha.2013.12.003; Harper SL, Letko E, Samson CM, Zafirakis P, Sangwan V, Nguyen Q, et al. Wegener’s granulomatosis: The relationship between ocular and systemic disease. J Rheumatol. 2001; 28(5): 1025-1032.; Бекетова Т.В. Гранулематоз с полиангиитом, патогенетически связанный с антинейтрофильными цитоплазматическими антителами: особенности клинического течения. Научнопрактическая ревматология. 2012; 50(6): 19-28. doi:10.14412/1995-4484-2012-1288; Карнакова М.В., Калягин А.Н., Антипова О.В., Витвицкая К.Б., Раднаева Е.Э. Современная фармакотерапия при гранулематозе с полиангиитом. Эффективная фармакотерапия. 2023; 19(29): 22-27. doi:10.33978/2307-3586-2023-19-29-22-26; Yaseen K, Mandell BF. ANCA associated vasculitis (AAV): A review for internists. Postgrad Med. 2023; 135(Suppl 1): 3-13. doi:10.1080/00325481.2022.2102368; Ungprasert P, Crowson CS, Cartin-Ceba R, Garrity JA, Smith WM, Specks U, et al. Clinical characteristics of inflammatory ocular disease in anti-neutrophil cytoplasmic antibody associated vasculitis: A retrospective cohort study. Rheumatology (Oxford). 2017; 56(10): 1763-1770. doi:10.1093/rheumatology/kex261; Greco A, Marinelli C, Fusconi M, Macri GF, Gallo A, De Virgilio A, et al. Clinic manifestations in granulomatosis with polyangiitis. Int J Immunopathol Pharmacol. 2016; 29(2): 151-159. doi:10.1177/0394632015617063; Andrada-Elena M, Ioana TT, Mihaela FM, Irina-Elena C, Andrei TI, Florian B. Wegener’s granulomatosis with orbital involvement: Case report and literature review. Rom J Ophthalmol. 2021; 65(1): 93-97. doi:10.22336/rjo.2021.19; Maqbool U, Maqbool A, Maqbool A, Qadeer A, Mehmood MF, Loon M. An atypical presentation of granulomatosis with polyangiitis: A case report. Radiol Case Rep. 2023; 18(6): 22452248. doi:10.1016/j.radcr.2023.03.023; Kamali S, Erer B, Artim-Esen B, Gul A, Ocal L, Konice M, et al. Predictors of damage and survival in patients with Wegener’s granulomatosis: Analysis of 50 patients. J Rheumatol. 2010; 37(2): 374-378. doi:10.3899/jrheum.090387; Копаев В.Г. (ред.). Глазные болезни: учебник для студентов медицинских вузов. М.: Медицина; 2002. [Kopaev VG (ed.). Eye diseases: Textbook for students of medical universities. Moscow: Meditsina; 2002. (In Russ.)].; Dansingani KK, Balaratnasingam C, Naysan J, Freund KB. En face imaging of pachychoroid spectrum disorders with sweptsource optical coherence tomography. Retina. 2016; 36(3): 499-516. doi:10.1097/IAE.0000000000000742; Gal-Or O, Dansingani KK, Sebrow D, Dolz-Marco R, Freund KB. Inner choroidal flow signal attenuation in pachychoroid disease: Optical coherence tomography angiography. Retina. 2018; 38(10): 1984-1992. doi:10.1097/IAE.0000000000002051; Marc RE, Jones BW, Watt CB, Strettoi E. Neural remodeling in retinal degeneration. Prog Retin Eye Res. 2003; 22(5): 607-655. doi:10.1016/s1350-9462(03)00039-9; Léveillard T, Sahel JA. Metabolic and redox signaling in the retina. Cell Mol Life Sci. 2017; 74(20): 3649-3665. doi:10.1007/s00018-016-2318-7; Castanos MV, Zhou DB, Linderman RE, Allison R, Milman T, Carroll J, et al. Imaging of macrophage-like cells in living human retina using clinical OCT. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2020; 61(6): 48. doi:10.1167/iovs.61.6.48; Stolarz AJ, Mu S, Zhang H, Fouda AY, Rusch NJ, Ding Z. Opinion: Endothelial cells – macrophage-like gatekeepers? Front Immunol. 2022; 13: 902945. doi:10.3389/fimmu.2022.902945; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4739

الاتاحة: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4739
https://doi.org/10.29413/ABS.2024-9.2.17

المؤلفون: S. I. Zhukova, T. N. Iureva, С. И. Жукова, Т. Н. Юрьева

المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 7, № 2 (2022); 147-166 ; 2587-9596 ; 2541-9420

مصطلحات موضوعية: ганглиозный комплекс сетчатки, congenital glaucoma, juvenile glaucoma, optic nerve, peripapillary retinal nerve fiber layer, retinal ganglion cell complex, врождённая глаукома, ювенильная глаукома, зрительный нерв, перипапиллярный слой нервных волокон сетчатки

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3434/2330; Moher D, Liberati A, Tetzlaff J, Altman DG, PRISMA Group. Preferred reporting items for systematic reviews and metaanalyses: The PRISMA statement. PLoS Med. 2009; 6(7): e1000097. doi:10.1371/journal.pmed.1000097; Maccora KA, Sheth S, Ruddle JB. Optical coherence tomography in paediatric clinical practice. Clin Exp Optom. 2019; 102: 300-308. doi:10.1111/cxo.12909; Monroy GL, Won J, Spillman DR, Dsouza R, Boppart SA. Clinical translation of handheld optical coherence tomography: Practical considerations and recent advancements. J Biomed Opt. 2017; 22(12): 1-30. doi:10.1117/1.JBO.22.12.121715; Siebelmann S, Bachmann B, Lappas A, Dietlein T, Hermann M, Roters S, et al. Intraoperative optical coherence tomography in corneal and glaucoma surgical procedures. Ophthalmologe. 2016; 113(8): 646-650. doi:10.1007/s00347-016-0320-y; Enders Ph, Schaub F, Adler W, Nikoluk R, Hermann MM, Heindl LM, et al. The use of Bruch’s membrane opening-based optical coherence tomography of the optic nerve head for glaucoma detection in microdiscs. Br J Ophthalmol. 2017; 101(4): 530-535. doi:10.1136/bjophthalmol-2016-308957; Wikstrand MH, Hård A-L, Niklasson A, Hellström A. Birth weight deviation and early postnatal growth are related to optic nerve morphology at school age in children born preterm. Pediatr Res. 2010; 67: 325-329. doi:10.1203/PDR.0b013e3181ca9f43; Feng X, Nan Y, Pan J, Zou R, Shen L, Chen F. Comparative study on optic disc features of premature infants and full‐term newborns. BMC Ophthalmol. 2021; 21(1): 120. doi:10.1186/s12886-021-01833-6; Mansour AM. Racial variation of optic disc size. Ophthalmic Res. 1991; 23(2): 67-72. doi:10.1159/000267091; Mansour AM. Racial variation of optic disc parameters in children. Ophthalmic Surg. 1992; 23(7): 469-471.; Rimmer S, Keating C, Chou T, Farb MD, Christenson PD, Foos RY, et al. Growth of the human optic disk and nerve during gestation, childhood, and early adulthood. Am J Ophthalmol. 1993; 116(6): 748-753. doi:10.1016/s0002-9394(14)73476-2; Huynh SC, Wang XY, Rochtchina E, Crowston JG, Mitchell P. Distribution of optic disc parameters measured by OCT: Findings from a population-based study of 6-year-old Australian children. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2006; 47(8): 3276-3285. doi:10.1167/iovs.06-0072; Belghith A, Bowd Ch, Medeiros FA, Hammel N, Yang Zh, Weinreb RN, et al. Does the location of Bruch’s Membrane opening change over time? Longitudinal analysis using San-Diego automated layer segmentation algorithm (SALSA). Invest Ophthalmol Vis Sci. 2016; 57(2): 675-682. doi:10.1167/iovs.15-17671; Катаргина Л.А., Мазанова Е.В., Тарасенков А.О., Сайдашева Э.И., Бржеский В.В., Володин П.Л., и др. Федеральные клинические рекомендации «Диагностика, медикаментозное и хирургическое лечение детей с врожденной глаукомой». Российская педиатрическая офтальмология. 2016; 11(1): 33-51. doi:10.18821/1993-1859-2016-11-1-33-51; Elía N, Pueyo V, Altemir I, Oros D, Pablo LE. Normal reference ranges of optical coherence tomography parameters in childhood. Br J Ophthalmol. 2012; 96(5): 665-670. doi:10.1136/bjophthalmol-2011-300916; Altemir I, Oros D, Elía N, Polo V, Larrosa JM, Pueyo V. Retinal asymmetry in children measured with optical coherence tomography. Am J Ophthalmol. 2013; 156: 1238-1243. doi:10.1016/j.ajo.2013.07.021; Park K, Kim J, Lee J. Reproducibility of Bruch’s membrane opening-minimum rim width measurements with spectral domain optical coherence tomography. J Glaucoma. 2017; 26(11): 1041-1050. doi:10.1097/IJG.0000000000000787; Kromer R, Spitzer MS. Bruch’s membrane opening minimum rim width measurement with SD-OCT: A method to correct for the opening size of Bruch’s membrane. Hindawi J Ophthalmol. 2017; 2017: 8963267. doi:10.1155/2017/8963267; Rhodes LA, Huisingh CE, Quinn AE, McGwin Jr G, LaRussa F, Box D, et al. Comparison of Bruch’s membrane opening-minimum rim width among those with normal ocular health by race. Am J Ophthalmol. 2017; 174(2): 113-118. doi:10.1016/j.ajo.2016.10.022; Enders Ph, Adler W, Schaub F, Hermann MM, Diestelhorst M, Dietlein Th, et al. Optimization strategies for Bruch’s membrane opening minimum rim area calculation: Sequential versus simultaneous minimization. Sci Rep. 2018; 32(2): 314-323. doi:10.1038/eye.2017.306; Stowell Ch, Burgoyne C, Tamm ER, Ethier CR. Biomechanical aspects of axonal damage in glaucoma: A brief review. Exp Eye Res. 2017; 157: 13-19. doi:10.1016/j.exer.2017.02.005; Жукова С.И. ОКТ и ОКТА: случаи клинической практики. Атлас с интерактивным контентом. М.: Апрель; 2019.; Hess DB, Asrani SG, Bhide MG, Enyedi LB, Stinnett SS, Freedman SF. Macular and retinal nerve fiber layer analysis of normal and glaucomatous eyes in children using optical coherence tomography. Am J Ophthalmol. 2005; 139(3): 509-517. doi:10.1016/j.ajo.2004.10.047; Pagon RA. Ocular coloboma. Surv Ophthalmol. 1981; 25(4): 223-236. doi:10.1016/0039-6257(81)90092-8; Lee KM, Woo SJ, Hwang JM. Evaluation of congenital excavated optic disc anomalies with spectral-domain and swept-sourceoptical coherence tomography. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2014; 252(11): 1853-1860. doi:10.1007/s00417-014-2680-9; Gottlieb JL, Prieto DM, Vander JF, Brown GC, Tasman WS. Peripapillary staphyloma. Am J Ophthalmol. 1997; 124(2): 249-251. doi:10.1016/s0002-9394(14)70796-2; May CA. Non-vascular smooth muscle cells in the human choroid: Distribution, development and further characterization. J Anat. 2005; 207(4): 381-390. doi:10.1111/j.1469-7580.2005.00460.x; Yoshida T, Katagiri S, Yokoi T, Nishina S, Azuma N. Optical coherence tomography and video recording of a case of bilateral contractile peripapillary staphyloma. Am J Ophthalmol Case Rep. 2019; 13: 66-69. doi:10.1016/j.ajoc.2018.12.002; Hood DC, De Cuir N, Blumberg DM, Liebmann JM, Jarukasetphon R, Ritch R, et al. A single wide-field OCT protocol can provide compelling information for the diagnosis of early glaucoma. Transl Vis Sci Technol. 2016; 5(6): 4. doi:10.1167/tvst.5.6.4; Kim YW, Choi JJ, Girard MJA, Mari JM, Choi DG, Park KH. Longitudinal observation of border tissue configuration during axial elongation in childhood. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2021; 62(4): 10. doi:10.1167/iovs.62.4.10; Barrio-Barrio J, Noval S, Galdós M, Ruiz-Canela M, Bonet E, Capote M, et al. Multicenter Spanish study of spectral-domain optical coherence tomography in normal children. Acta Ophthalmol. 2013; 91(1): e56-63. doi:10.1111/j.1755-3768.2012.02562.x; Rao A, Sahoo B, Kumar M, Varshney G, Kumar R. Retinal nerve fiber layer thickness in children; Altemir I, Oros D, Elía N, Polo V, Larrosa JM, Pueyo V. Retinal asymmetry in children measured with optical coherence tomography. Am J Ophthalmol. 2013; 156(6): 1238-1243.e1. doi:10.1016/j.ajo.2013.07.021; Öner V, Özgür G, Türkyilmaz K, Şekeryapan B, Durmus M. Effect of axial length on retinal nerve fiber layer thickness in children. Eur J Ophthalmol. 2014; 24(2): 265-272. doi:10.5301/ejo.5000345; Al-Haddad C, Antonios R, Tamim H, Noureddin B. Interocular symmetry in retinal and optic nerve parameters in children as measured by spectral domain optical coherence tomography. Br J Ophthalmol. 2014; 98(4): 502-506. doi:10.1136/bjophthalmol-2013-304345; Queirós T, Freitas C, Guimarães S. Valores de referência da tomografia de coerência optica na idade pediátrica [Normative database of optical coherence tomography parameters in childhood]. Acta Med Port. 2015; 28(2): 148-157.; Gürağaç FB, Totan Y, Güler E, Tenlik A, Ertuğrul İG. Normative spectral domain optical coherence tomography data in healthy Turkish children. Semin Ophthalmol. 2017; 32(2): 216-222. doi:10.3109/08820538.2015.1053625; Goh JP, Koh V, Chan YH, Ngo C. Macular ganglion cell and retinal nerve fiber layer thickness in children with refractive errors – An optical coherence tomography study. J Glaucoma. 2017; 26(7): 619-625. doi:10.1097/IJG.0000000000000683; Pawar N, Maheshwari D, Ravindran M, Ramakrishnan R. Interocular symmetry of retinal nerve fiber layer and optic nerve head parameters measured by Cirrus high-definition optical coherence tomography in a normal pediatric population. Indian J Ophthalmol. 2017; 65(10): 955-962. doi:10.4103/ijo.IJO_71_17; Bueno-Gimeno I, Espana-Gregori E, Gene-Sampedro A, Ondategui-Parra JC, Zapata-Rodriguez CJ. Variations of OCT measurements corrected for the magnification effect according to axial length and refractive error in children. J Innov Opt Health Sci. 2018; 1: 185001.; Larsson E, Molnar A, Holmström G. Repeatability, reproducibility and interocular difference in the assessments of optic nerve OCT in children – A Swedish population-based study. BMC Ophthalmol. 2018; 18(1): 270. doi:10.1186/s12886-018-0940-x; Gama R, Santos JC, Costa RS, Costa DC, Eiro N. Optical coherence tomography analysis of the inner retinal layers in children. Can J Ophthalmol. 2018; 53: 614-620. doi:10.1016/j.jcjo.2018.02.025; Turk A, Ceylan OM, Arici C, Keskin S, Erdurman C, Durukan AH, et al. Evaluation of the nerve fiber layer and macula in the eyes of healthy children using spectral-domain optical coherence tomography. Am J Ophthalmol. 2012; 153: 552-559.; Yanni SE, Wang J, Cheng CS, Locke KI, Wen Y, Birch DG, et al. Normative reference ranges for the retinal nerve fiber layer, macula, and retinal layer thicknesses in children. Am J Ophthalmol. 2013; 155(2): 354-360. doi:10.1016/j.ajo.2012.08.010; Dave P, Jethani J, Shah J. Applicability of the ISNT and IST rules on retinal nerve fiber layer measurement on spectral-domain optical coherence tomography in normal Indian children. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2015; 253: 1795-1799. doi:10.1007/s00417-015-2980-8; Lee JWY, Yau GSK, Woo TTY, Lai JSM. The association between macular thickness and peripapillary retinal nerve fiber layer thickness in Chinese children. Medicine. 2015; 94: e567. doi:10.1097/MD.0000000000000567; Perez-Garcia D, Ibanez-Alperte J, Remon L, Cristobal JA, Sanchez-Cano A, Pinilla I. Study of spectral-domain optical coherence tomography in children: normal values and influence of age, sex, and refractive status. Eur J Ophthalmol. 2016; 26: 135-141.; Eslami Y, Vahedian Z, Moghimi S, Bazvand F, Salari H, Sha-habinejad M, et al. Peripapillary retinal nerve fiber layer thickness in normal Iranian children measured with optical coherence tomography. J Ophthalmic Vis Res. 2018; 13: 453-457. doi:10.4103/jovr.jovr_186_17; Rotruck JC, House RJ, Freedman SF, Kelly MP, Enyedi LB, Prakalapakorn SG, et al. Optical coherence tomography normative peripapillary retinal nerve fiber layer and macular data in children ages 0–5 years. Am J Ophthalmol. 2019; 208: 323-330. doi:10.1016/j.ajo.2019.06.025; Tsai DC, Huang N, Hwu JJ, Jueng RN, Chou P. Estimating retinal nerve fiber layer thickness in normal schoolchildren with spectral-domain optical coherence tomography. Jpn J Ophthalmol. 2012; 56: 362-370. doi:10.1007/s10384-012-0142-7; Chen L, Huang J, Zou H, Xue W, Ma Y, He X, et al. Retinal nerve fiber layer thickness in normal Chinese students aged 6 to 17 years. Investig Ophthalmol Vis Sci. 2013; 54: 7990-7997. doi:10.1167/iovs.12-11252; Zhu BD, Li SM, Li H, Liu LR, Wang Y, Yang Z, et al. Retinal nerve fiber layer thickness in a population of 12-year-old children in central China measured by iVue-100 spectral-domain optical coherence tomography: The Anyang Childhood Eye Study. Investig Ophthalmol Vis Sci. 2013; 54: 8104-8111. doi:10.1167/iovs.13-11958; Bhoiwala DL, Simon JW, Raghu P, Krishnamoorthy M, Todani A, Gandham SB, et al. Optic nerve morphology in normal children. J AAPOS. 2015; 19: 531-534. doi:10.1016/j.jaapos.2015.09.008; Kang MT, Li SM, Li H, Li L, Li SY, Zhu BD, et al. Peripapillary retinal nerve fiber layer thickness and its association with refractive error in Chinese children: The Anyang Childhood Eye Study. Clin Exp Ophthalmol. 2016; 44: 701-709. doi:10.1111/ceo.12764; Grundy SJ, Tshering L, Wanjala SW, Diamond MB, Audi MS, Prasad S, et al. Retinal parameters as compared with head circumference, height, weight, and body mass index in children in Kenya and Bhutan. Am J Trop Med Hyg. 2018; 99: 482-488. doi:10.4269/ajtmh.17-0943; Yabas Kiziloglu O, Toygar O, Toygar B, Hacimustafaoglu AM. Retinal nerve fiber layer and macula thickness with spectral domain optical coherence tomography in children: Normal values, repeatability and the influence of demographic and ocular parameters. Turkiye Klinikleri J Ophthalmol. 2018; 27: 28-34. doi:10.5336/ophthal.2016-53972; Ayala M, Ntoula E. Retinal fiber layer thickness measurement in normal paediatric population in Sweden using optical coherence tomography. J Ophthalmol. 2016; 2016: 4160568. doi:10.1155/2016/4160568; Ali AN, Farag RK, El Wahab TAA, Ghanem AA, Hababeh M. Macular and retinal nerve fiber layer analysis by optical coherence tomography in normal children. ARC J Ophthalmol. 2018; 3: 17-28.; Banc A, Ungureanu MI. Normative data for optical coherence tomography in children: A systematic review. Eye (Lond). 2021; 35(3): 714-738. doi:10.1038/s41433-020-01177-3; Kai-Shun Leung Ch, Cheung Carol Y-L, Weinreb RN, Qiu Q, Liu Sh, Li H, et al. Retinal nerve fiber layer imaging with spectraldomain optical coherence tomography: A variability and diagnostic performance study. Ophthalmology. 2009; 116: 1257-1263. doi:10.1016/j.ophtha.2011.10.010; Brodsky MC. Optic nerve hypoplasia: “Neural guidance” and the role of mentorship. J Neuroophthalmol. 2020; 40(1): S21- S28. doi:10.1097/WNO.0000000000001003; Samarawickrama C, Wang XY, Huynh SC, Burlutsky G, Stapleton F, Mitchell P. Effects of refraction and axial length on childhood optic disk parameters measured by optical coherence tomography. Am J Ophthalmol. 2007; 144(3): 459-461. doi:10.1016/j.ajo.2007.05.010; Curcio CA, Allen KA. Topography of ganglion cells in human retina. J Comp Neurol. 1990; 300(1): 5-25. doi:10.1002/cne.903000103; Cuenca N, Ortuño-Lizarán I, Pinilla I. Cellular characterization of OCT and outer retinal bands using specific immunohistochemistry markers and clinical implications. Ophthalmology. 2018; 125(3): 407-422. doi:10.1016/j.ophtha.2017.09.016; Wolf-Schnurrbusch UE, Ceklic L, Brinkmann CK, Iliev ME, Frey M, Rothenbuehler SP, et al. Macular thickness measurements in healthy eyes using six different optical coherence tomography instruments. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2009; 50(7): 3432-3437. doi:10.1167/iovs.08-2970; Early Treatment Diabetic Retinopathy Study Research Group. Fluorescein angiographic risk factors for progression of diabetic retinopathy. ETDRS report number 13. Ophthalmology. 1991; 98(Suppl 5): 834-840.; Provis JM, Dubis AM, Maddess T, Carroll J. Adaptation of the central retina for high acuity vision: Cones, the fovea and the avascular zone. Prog Retin Eye Res. 2013; 35: 63-81. doi:10.1016/j.preteyeres.2013.01.005; Lee H, Purohit R, Patel A, Papageorgiou E, Sheth V, Maconachie G, et al. In vivo foveal development using optical coherence tomography. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2015; 56(8): 4537-4545. doi:10.1167/iovs.15-16542; Rotruck JC, House RJ, Freedman SF, Kelly MP, Enyedi LB, Prakalapakorn SG, et al. Optical coherence tomography normative peripapillary retinal nerve fiber layer and macular data in children 0–5 years of age. Am J Ophthalmol. 2019; 208: 323-330. doi:10.1016/j.ajo.2019.06.025; Alabduljalil T, Westall CA, Reginald A, Farsiu S, Chiu SJ, Arshavsky A, et al. Demonstration of anatomical development of the human macula within the first 5 years of life using handheld OCT. Int Ophthalmol. 2019; 39(7): 1533-1542. doi:10.1007/s10792-018-0966-3; Yoo YJ, Hwang JM, Yang HK. Inner macular layer thickness by spectral domain optical coherence tomography in children and adults: A hospital-based study. Br J Ophthalmol. 2019; 103(11): 1576-1583. doi:10.1136/bjophthalmol-2018-312349; Galdos M, Barrio-Barrio J, Noval S, Ruiz-Canela M, Bonet E, Capote M, et al. Multicenter macular ganglion cell analysis: Normative paediatric reference range. Acta Ophthalmol. 2014; 92(4): e326-7.47. doi:10.1111/aos.12316; Totan Y, Gürağaç FB, Güler E. Evaluation of the retinal ganglion cell layer thickness in healthy Turkish children. J Glaucoma. 2015; 24(5): e103-e108. doi:10.1097/IJG.0000000000000168; Maldonado RS, O’Connell RV, Sarin N, Freedman SF, Wallace DK, Cotton CM, et al. Dynamics of human foveal development after premature birth. Ophthalmology. 2011; 118(12): 2315-2325. doi:10.1016/j.ophtha.2011.05.028; Hood DC, Raza AS, Gustavo V de Moraes C, Liebmann JM, Ritch R. Glaucomatous damage of the macula. Prog Retin Eye Res. 2013; 32: 1-21. doi:10.1016/j.preteyeres.2012.08.003; Fujihara FMF, de Arruda Mello PA, Lindenmeyer RL, Pakter HM, Lavinsky J, et al. Individual macular layer evaluation with spectral domain optical coherence tomography in normal and glaucomatous eyes. Clin Ophthalmol. 2020; 14: 1591-1599. doi:10.2147/OPTH.S256755; Go MS, Barman NR, Kelly MP, House RJ, Rotruck JC, El-Dairi MA, et al. Overhead mounted optical coherence tomography in childhood glaucoma evaluation. J Glaucoma. 2020; 29(9): 742-749. doi:10.1097/IJG.0000000000001567; Щуко А.Г., Юрьева Т.Н., Чекмарева Л.Т., Малышев В.В. Глаукома и патология радужки. М.; 2009.; Wolff B, Azar G, Vasseur V, Sahel JA, Vignal C, Mauget-Faÿsse M. Microcystic changes in the retinal internal nuclear layer associated with optic atrophy: A prospective study. J Ophthalmol. 2014; 2014: 395189. doi:10.1155/2014/395189; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3434

الاتاحة: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3434
https://doi.org/10.29413/ABS.2022-7.2.16

المؤلفون: S. I. Zhukova, I. D. Kanner, T. M. Mamontova, E. M. Shelomentceva, M. L. Maximov, С. И. Жукова, И. Д. Каннер, Т. М. Мамонтова, Е. М. Шеломенцева, М. Л. Максимов

المصدر: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 21 (2020); 152-159 ; Медицинский Совет; № 21 (2020); 152-159 ; 2658-5790 ; 2079-701X

مصطلحات موضوعية: FOXP3, autoimmune thyroiditis, Тreg, pTreg, tTreg, Th17/Treg, аутоиммунный тиреоидит

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/5979/5458; Sinha A.A., Lopez M.T., McDevitt H.O. Autoimmune diseases: the failure of self tolerance. Science. 1990;248(4961):1380–1388. doi:10.1126/science.1972595.; Hartley S.B., Cooke M.P., Fulcher D.A., Harris A.W., Cory S., Basten A. et al. Elimination of self-reactive B lymphocytes proceeds in two stages: arrested development and cell death. Cell. 1993;72(3):325–335. doi:10.1016/0092-8674(93)90111-3.; Zerrahn J., Held W., Raulet D. The MHC reactivity of the T cell repertoire prior to positive and negative selection. Cell. 1997;88(5):627–636. doi:10.1016/S0092-8674(00)81905-4.; Sakaguchi S., Sakaguchi N., Asano M., Itoh M., Toda M. Immunologic selftolerance maintained by activated T cells expressing IL-2 receptor α-chains (CD25). Breakdown of a single mechanism of self-tolerance causes various autoimmune diseases. J Immunology. 1995;155(3):1151–1164. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/7636184.; Groux H., Bigler M., de Vries J., Roncarolo M. Interleukin-10 induces a longterm antigen-specific anergic state in human CD4+ T cells. J Exp Med. 1996;184(1):19–29. doi:10.1084/jem.184.1.19.; Delemer B., Aubert J.P., Nys P., Landron F., Bouee S. An observational study of the initial management of hypothyroidism in France: the ORCHIDEE study. Eur J Endocrinol. 2012;167(6):817–823. doi:10.1530/EJE-11-1041.; Vitales-Noyola M., Serrano-Somavilla A., Martínez-Hernández R., Sampedro-Nuñez M., Ramos-Levi A., González-Amaro R., Marazuela M. Patients With Autoimmune Thyroiditis Show Diminished Levels and Defective Suppressive Function of Tr1 Regulatory Lymphocytes. J Clin Endocrinol Metab. 2018;103(9):3359–3367. doi:10.1210/jc.2018-00498.; Ergür A.T., Evliyaoğlu O., Şıklar Z., Bilir P., Öcal G., Berberoğlu M. Evaluation of thyroid functions with respect to iodine status and TRH test in chronic autoimmune thyroiditis. J Clin Res Pediatr Endocrinol. 2011;3(1):18–21. doi:10.4274/jcrpe.v3i1.04.; Şıklar Z., Karataş D., Doğu F., Hacıhamdioğlu B., İkincioğulları A., Berberoğlu M. Regulatory T Cells and Vitamin D Status in Children with Chronic Autoimmune Thyroiditis. J Clin Res Pediatr Endocrinol. 2016;8(3):276– 281. doi:10.4274/jcrpe.2766.; ElRehewy M., Kong Y.M., Giraldo A.A., Rose N.R. Syngeneic thyroglobulin is immunogenic in good responder mice. Eur J Immunol. 1981;11(2):146–151. doi:10.1002/eji.1830110216.; Kekubo K., Kishihara M., Sanders J., Jutton J., Schneider A.B. Differences between circulating and tissue thyroglobulin in rats. Endocrinology. 1981;109(2):427–432. doi:10.1210/endo-109-2-427.; Glick A.B., Wodzinski A., Fu P., Levine A.D., Wald D.N. Impairment of regulatory T-cell function in autoimmune thyroid disease. Thyroid. 2013;23(7):871–878. doi:10.1089/thy.2012.0514.; Rodríguez-Valiente A., Álvarez-Montero Ó., Gorriz-Gil C., García-Berrocal J.R. l-Thyroxine does not prevent immunemediated sensorineural hearing loss in autoimmune thyroid diseases. Acta Otorrinolaringol Esp. 2019;70(4):229–234. (In Spanish) doi:10.1016/j.otorri.2018.06.001.; Gangi E., Vasu C., Cheatem D., Prabhakar B.S. IL-10-producing CD4+CD25+regulatory T cells play a critical role in granulocyte-macrophage colony-stimulating factor-induced suppression of experimental autoimmune thyroiditis. J Immunol. 2005;174(11):7006–7013. doi:10.4049/jimmunol.174.11.7006.; Bossowski A., Borysewicz-Sańczyk H., Wawrusiewicz-Kurylonek N., Zasim A., Szalecki M., Wikiera B. et al. Analysis of chosen polymorphisms in FoxP3 gene in children and adolescents with autoimmune thyroid diseases. Autoimmunity. 2014;47(6):395–400. doi:10.3109/08916934.2014.910767.; Abbas A.K., Benoist C., Bluestone J.A., Campbell D.J., Ghosh S., Hori S. et al. Regulatory T cells: Recommendations to simplify the nomenclature. Nat Immunol. 2013;14(4):307–308. doi:10.1038/ni.2554.; Zheng S.G., Wang J.H., Gray J.D., Soucier H., Horwitz D.A. Natural and induced CD4+CD25+ cells educate CD4+CD25- cells to develop suppressive activity: the role of IL-2, TGF-beta, and IL-10. J Immunol. 2004;172(9):5213–5221. doi:10.4049/jimmunol.172.9.5213.; Xing Y., Hogquist K.A. T-cell tolerance: central and peripheral. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2012;4(6):a00695. doi:10.1101/cshperspect.a006957.; Thornton A.M., Donovan E.E., Piccirillo C.A., Shevach E.M. Cutting Edge: IL-2 Is Critically Required for the In Vitro Activation of CD4+CD25+ T Cell Suppressor Function. J Immunol. 2004;172(11):6519–6523. doi:10.4049/jimmunol.172.11.6519.; Groux H., O’Garra A., Bigler M., Rouleau M., Antonenko S., de Vries J.E., Roncarlo M.G. A CD4+ T-cell subset inhibits antigen-specific T-cell responses and prevents colitis. Nature. 1997;389(6652):737–742. doi:10.1038/39614.; Cottrez F., Groux H. Specialization in tolerance: innate CD(4+)CD(25+) versus acquired TR1 and TH3 regulatory T cells. Transplantation. 2004;77(1S):12–15. doi:10.1097/01.TP.0000106471.23410.32.; Levings M.K., Gregori S., Tresoldi E., Cazzaniga S., Bonini C., Roncarolo M.G. Differentiation of Tr1 cells by immature dendritic cells requires IL-10 but not CD25+CD4+ Tr cells. Blood. 2005;105(3):1162–1169. doi:10.1182/blood-2004-03-1211.; Kemper C., Chan A.C., Green J.M., Brett K.A., Murphy K.M., Atkinson J.P. Activation of human CD4+ cells with CD3 and CD46 induces a T-regulatory cell 1 phenotype. Nature. 2003;421(6921):388–392. doi:10.1038/nature01315.; Liu Y., Yuan X., Li X., Cui D., Xie J. Constitutive Changes in Circulating Follicular Helper T Cells and Their Subsets in Patients with Graves’ Disease. J Immunol Res. 2018;2018:8972572. doi:10.1155/2018/8972572.; Zha B., Huang X., Lin J., Liu J., Hou Y., Wu G. Distribution of lymphocyte subpopulations in thyroid glands of human autoimmune thyroid disease. J Clin Lab Anal. 2014;28(3):249–254. doi:10.1002/jcla.21674.; Nakamura K., Kitani A., Strober W. Cell contact-dependent immunosuppression by CD4(+)CD25(+) regulatory T cells is mediated by cell surfacebound transforming growth factor-β. J Exp Med. 2001;194(5):629–644. doi:10.1084/jem.194.5.629.; Fontenot J.D., Rasmussen J.P., Gavin M.A., Rudensky A.Y. A function for interleukin 2 in Foxp3-expressing regulatory T cells. Nat Immunol. 2005;6(11):1142–1151. doi:10.1038/ni1263.; Jafarzadeh A., Jamali M., Mahdavi R., Ebrahimi H.A., Hajghani H.A., Khosravimashizi A. et al. Circulating levels of interleukin-35 in patients with multiple sclerosis: evaluation of the influences of FOXP3 gene polymorphism and treatment program. J Mol Neurosci. 2015;55(4):891–897. doi:10.1007/s12031-014-0443-z.; Uhlig H.H., Coombes J., Mottet C., Izcue A., Thompson C., Fanger A. et al. Characterization of Foxp3+CD4+CD25+ and IL-10-secreting CD4+CD25+ T cells during cure of colitis. J Immunol. 2006;177(9):5852–5860. doi:10.4049/jimmunol.177.9.5852.; Chen W., Jin W., Hardegen N., Lei K.J., Li L., Marinos N. et al. Conversion of peripheral CD4+CD25− naive T cells to CD4+CD25+ regulatory T cells by TGF-β induction of transcription factor Foxp3. J Exp Med. 2003;198(12):1875–1886. doi:10.1084/jem.20030152.; Fantini M.С., Becker C., Monteleone G., Pallone F., Galle P.К., Neurath M.А. Cutting edge: TGF-β induces a regulatory phenotype in CD4+CD25− T cells through Foxp3 induction and down-regulation of Smad7. J Immunol. 2004;172(9):5149–5153. doi:10.4049/jimmunol.172.9.5149.; Fu S., Zhang N., Yopp A.С., Chen D., Mao M., Chen D. et al. TGF-β induces Foxp3 + T-regulatory cells from CD4 + CD25 − precursors. Am J Transplant. 2004;4(10):1614–1627. doi:10.1111/j.1600-6143.2004.00566.x.; Zhang J., Ren M., Zeng H., Guo Y., Zhuang Z., Feng Z. et al. Elevated follicular helper T cells and expression of IL-21 in thyroid tissues are involved in the pathogenesis of Graves’ disease. Immunol Res. 2015;62(2):163–174. doi:10.1007/s12026-015-8647-z.; Xie M.M., Liu H., Corn C., Koh B.H., Kaplan M.H., Turner M.J., Dent A.L. Roles of T follicular helper cells and T follicular regulatory cells in Autoantibody Production in IL-2-deficient mice. Immunohorizons. 2019;3(7):306–316. doi:10.4049/immunohorizons.1900034.; Sage P.N., Paterson A.M., Lovitch S.B., Sharpe A.H. The coinhibitory receptor CTLA-4 controls B cell responses by modulating T follicular helper, T follicular regulatory, and T regulatory cells. Immunity. 2014;41(6):1026–1039. doi:10.1016/j.immuni.2014.12.005.; Wu H., Chen Y., Liu H., Xu L.L., Teuscher P., Wang S. et al. Follicular regulatory T cells repress cytokine production by follicular helper T cells and optimize IgG responses in mice. Eur J Immunol. 2016;46(5):1152–1161. doi:10.1002/eji.201546094.; Vahl J.C., Drees C., Heger K., Heink S., Fischer J.C., Nedjic J. et al. Continuous T cell receptor signals maintain a functional regulatory T cell pool. Immunity. 2014;41(5):722–736. doi:10.1016/j.immuni.2014.10.012.; Horie I., Abiru N., Sakamoto H., Iwakura Y., Nagayama Y. Induction of autoimmune thyroiditis by depletion of CD4+CD25+ regulatory T cells in thyroiditis-resistant IL-17, but not interferon-gamma receptor, knockout nonobese diabetic-H2h4 mice. Endocrinology. 2011;152(11):4448–4454. doi:10.1210/en.2011-1356.; Safdari V., Alijani E., Nemati M., Jafarzadeh A. Imbalances in T Cell-Related Transcription Factors Among Patients with Hashimoto’s Thyroiditis. Sultan Qaboos Univ Med J. 2017;17(2):e174–e180. doi:10.18295/squmj.2016.17.02.007.; Li Y., Wang Y., Liu Y., Wang Y., Zuo X., Li Y., Lu X. The possible role of the novel cytokines il-35 and il-37 in inflammatory bowel disease. Mediators Inflamm. 2014;2014:136329. doi:10.1155/2014/136329.; Tokic S., Stefanic M., Glavas-Obrovac L., Jaman S., Novosadova E., Petrkova J. et al. The Expression of T Cell FOXP3 and T-Bet Is Upregulated in Severe but Not Euthyroid Hashimoto’s Thyroiditis. Mediators Inflamm. 2016;2016:3687420. doi:10.1155/2016/3687420.; Pan D., Shin Y.H., Gopalakrishnan G., Hennessey J., De Groot L.J. Regulatory T cells in Graves’ disease. Clin Endocrinol (Oxf). 2009;71(4):587–593. doi:10.1111/j.1365-2265.2009.03544.x.; Rodríguez-Muñoz A., Vitales-Noyola M., Ramos-Levi A., Serrano-Somavilla A., González-Amaro R., Marazuela M. Levels of regulatory T cells CD69(+) NKG2D(+)IL-10(+) are increased in patients with autoimmune thyroid disorders. Endocrine. 2016;51(3):478–489. doi:10.1007/s12020-015-0662-2.; Zhao J., Chen Y., Xu Z., Yang W., Zhu Z., Song Y., Liu J. Increased circulating follicular regulatory T cells in Hashimoto’s thyroiditis. Autoimmunity. 2018;51(7):345–351. doi:10.1080/08916934.2018.1516759.; Kong Y.M., Okayasu I., Giraldo A.A., Beisel K.W., Sundick R.S., Rose N.R. et al. Tolerance to thyroglobulin by activating suppressor mechanisms. Ann N Y Acad Sci. 1982;392:191–209. doi:10.1111/j.1749-6632.1982.tb36108.x.; Kong Y.M., Brown N.K., Morris G.P., Flynn J.C. The Essential Role of Circulating Thyroglobulin in Maintaining Dominance of Natural Regulatory T Cell Function to Prevent Autoimmune Thyroiditi. Horm Metab Res. 2015;47(10):711–720. doi:10.1055/s-0035-1548872.; Urry Z., Chambers E.S., Xystrakis E., Dimeloe S., Richards D.F., Gabryšová L. et al. The role of 1α,25-dihydroxyvitamin D3 and cytokines in the promotion of distinct Foxp3+ and IL-10+ CD4+ T cells. Eur J Immunol. 2012;42(10):2697–2708. doi:10.1002/eji.201242370.; Perga S., Martire S., Montarolo F., Giordani I., Spadaro M., Bono G. et al. The Footprints of Poly-Autoimmunity: Evidence for Common Biological Factors Involved in Multiple Sclerosis and Hashimoto’s Thyroiditis. Front Immunol. 2018;9:311. doi:10.3389/fimmu.2018.00311.; Cooper J.D., Simmonds M.J., Walker N.M., Burren O., Brand O.J., Guo H. et al. Seven newly identified loci for autoimmune thyroid disease. Hum Mol Genet. 2012;21(23):5202–5208. doi:10.1093/hmg/dds357.; Kayes T.D., Braley-Mullen H. Culture promotes transfer of thyroid epithelial cell hyperplasia and proliferation by reducing regulatory T cell numbers. Cell Immunol. 2013;285(1–2):84–91. doi:10.1016/j.cellimm.2013.09.003.; Esposito M., Ruffini F., Bergami A., Garzetti L., Borsellino G., Battistini L. et al. IL-17- and IFN-gamma-secreting Foxp3+ T cells infiltrate the target tissue in experimental autoimmunity. J Immunol. 2010;185(12):7467–7473. doi:10.4049/jimmunol.1001519.; Hall A.O., Beiting D.P., Tato C., John B., Oldenhove G., Lombana C.G. et al. The cytokines interleukin 27 and interferon-gamma promote distinct Treg cell populations required to limit infection-induced pathology. Immunity. 2012;37(3):511–523. doi:10.1016/j.immuni.2012.06.014.; Langrish C.L., Chen Y., Blumenschein W.M., Mattson J., Basham B., Sedgwick J.D. et al. IL-23 drives a pathogenic T cell population that induces autoimmune inflammation. J Exp Med. 2005;201(2):233–240. doi:10.1084/jem.20041257.; Etesam Z., Nemati M., Ebrahimizadeh M.A., Ebrahimi H.A., Hajghani H., Khalili T. et al. Altered Expression of Specific Transcription Factors of Th17 (RORgammat, RORalpha) and Treg Lymphocytes (FOXP3) by Peripheral Blood Mononuclear Cells from Patients with Multiple Sclerosis. J Mol Neurosci. 2016;60(1):94–101. doi:10.1007/s12031-016-0789-5.; Figueroa-Vega N., Alfonso-Perez M., Benedicto I., Sanchez-Madrid F., Gonzalez-Amaro R., Marazuela M. Increased circulating pro-inflammatory cytokines and Th17 lymphocytes in Hashimoto’s thyroiditis. J Clin Endocrinol Metab. 2010;95(2):953–962. doi:10.1210/jc.2009-1719.; Qin Q., Liu P., Liu L., Wang R., Yan N., Yang J. et al. The increased but nonpredominant expression of Th17- and Th1-specific cytokines in Hashimoto’s thyroiditis but not in Graves’ disease. Braz J Med Biol Res. 2012;45(12):1202–1208. doi:10.1590/s0100-879x2012007500168.; Zeng C., Shi X., Zhang B., Liu H., Zhang L., Ding W., Zhao Y. The imbalance of Th17/Th1/Tregs in patients with type 2 diabetes: relationship with metabolic factors and complications. J Mol Med (Berl). 2012;90(2):175–186. doi:10.1007/s00109-011-0816-5.; Kleczynska W., Jakiela B., Plutecka H., Milewski M., Sanak M., Musial J. Imbalance between Th17 and regulatory T-cells in systemic lupus erythematosus. Folia Histochem Cytobiol. 2011;49(4):646–653. doi:10.5603/fhc.2011.0088.; Li C., Yuan J., Zhu Y.F., Yang X.J., Wang Q., Xu J. et al. Imbalance of Th17/ Treg in Different Subtypes of Autoimmune Thyroid Diseases. Cell Physiol Biochem. 2016;40(1–2):245–252. doi:10.1159/000452541.; Marazuela M., Garcia-Lopez M.A., Figueroa-Vega N., de la Fuente H., Alvarado-Sanchez B., Monsivais-Urenda A. et al. Regulatory T cells in human autoimmune thyroid disease. J Clin Endocrinol Metab. 2006;91(9):3639–3646. doi:10.1210/jc.2005-2337.; Koenen H.J.P.M., Smeets R.L., Vink P.M., van Rijssen E., Boots A.M.H., Joosten I. Human CD25highFoxp3pos regulatory T cells differentiate into IL-17-producing cells. Blood. 2008;112(6):2340–2352. doi:10.1182/blood-2008-01-133967.; Deknuydt F., Bioley G., Valmori D., Ayyoub M. IL-1beta and IL-2 convert human Treg into T(H)17 cells. Clini Immunol. 2009;131(2):298–307. doi:10.1016/j.clim.2008.12.008.; Wang T., Sun X., Zhao J., Zhang J., Zhu H., Li C. et al. Regulatory T cells in rheumatoid arthritis showed increased plasticity toward Th17 but retained suppressive function in peripheral blood. Ann Rheum Dis. 2015;74(6):1293–1301. doi:10.1136/annrheumdis-2013-204228.; Beriou G., Costantino C.M., Ashley C.W., Yang L., Kuchroo V.K., BaecherAllan C., Hafler D.A. IL-17-producing human peripheral regulatory T cells retain suppressive function. Blood. 2009;113(18):4240–4249. doi:10.1182/ blood-2008-10-183251.; Nurieva R., Yang X.O., Martinez G., Zhang Y., Panopoulos A.D., Ma L. et al. Essential autocrine regulation by IL-21 in the generation of inflammatory T cells. Nature. 2007;448(7152):480–483. doi:10.1038/nature05969.; Zhou L., Lopes J.E., Chong M.M.W., Ivanov I.I., Min R., Victora G.D. et al. TGFbeta-induced Foxp3 inhibits T(H)17 cell differentiation by antagonizing RORgammat function. Nature. 2008;453(7192):236–240. doi:10.1038/ nature06878.; van Loosdregt J., Vercoulen Y., Guichelaar T., Gent Y.Y.J., Beekman J.M., van Beekum O. et al. Regulation of Treg functionality by acetylation-mediated Foxp3 protein stabilization. Blood. 2010;115(5):965–974. doi:10.1182/blood-2009-02-207118.; Beier U.H., Wang L., Bhatti T.R., Liu Y., Han R., Ge G. et al. Sirtuin-1 targeting promotes Foxp3+ T-regulatory cell function and prolongs allograft survival. Moll Cell Biol. 2011;31(5):1022–1029. doi:10.1128/MCB.01206-10.; Akimova T., Xiao H., Liu Y., Bhatti T.R., Jiao J., Eruslanov E. et al. Targeting sirtuin-1 alleviates experimental autoimmune colitis by induction of Foxp3+ T-regulatory cells. Mucosal Immunol. 2014;7(5):1209–1220. doi:10.1038/mi.2014.10.; Yang X., Lun Y., Jiang H., Liu X., Duan Z., Xin S., Zhang J. SIRT1-Regulated Abnormal Acetylation of FOXP3 Induces Regulatory T-Cell Function Defect in Hashimoto’s Thyroiditis. Thyroid. 2018;28(2):246–256. doi:10.1089/thy.2017.0286.; Miyabe C., Miyabe Y., Strle K., Kim N.D., Stone J.H., Luster A.D., Unizony S. An expanded population of pathogenic regulatory T cells in giant cell arteritis is abrogated by IL-6 blockade therapy. Ann Rheum Dis. 2017;76(5):898–905. doi:10.1136/annrheumdis-2016-210070.; Gualdoni G.A., Mayer K.A., Goschl L., Boucheron N., Ellmeier W., Zlabinger G.J. The AMP analog AICAR modulates the Treg/Th17 axis through enhancement of fatty acid oxidation. FASEB J. 2016;30(11):3800–3809. doi:10.1096/fj.201600522R.; Park M.J., Lee S.Y., Moon S.J., Son H.J., Lee S.H., Kim E.K. et al. Metformin attenuates graft-versus-host disease via restricting mammalian target of rapamycin/signal transducer and activator of transcription 3 and promoting adenosine monophosphate-activated protein kinase-autophagy for the balance between T helper 17 and Tregs. Transl Res. 2016;173:115–130. doi:10.1016/j.trsl.2016.03.006.; Xiao S., Yosef N., Yang J., Wang Y., Zhou L., Zhu C. et al. Small-molecule RORγt antagonists inhibit T helper 17 cell transcriptional network by divergent mechanisms. Immunity. 2014;40(4):477–489. doi:10.1016/j.immuni.2014.04.004.; Takaishi M., Ishizaki M., Suzuki K., Isobe T., Shimozato T., Sano S. Oral administration of a novel RORγt antagonist attenuates psoriasis-like skin lesion of two independent mouse models through neutralization of IL-17. J Dermatol Sci. 2017;85(1):12–19. doi:10.1016/j.jdermsci.2016.10.001.; Sfikakis P.P., Souliotis V.L., Fragiadaki K.G., Moutsopoulos H.M., Boletis J.N., Theofilopoulos A.N. Increased expression of the FoxP3 functional marker of regulatory T cells following B cell depletion with rituximab in patients with lupus nephritis. Clin Immunol. 2007;123(1):66–73. doi:10.1016/j.clim.2006.12.006.; Cribbs A.P., Kennedy A., Penn H., Amjadi P., Green P., Read J.E. et al. Methotrexate Restores Regulatory T Cell Function Through Demethylation of the FoxP3 Upstream Enhancer in Patients With Rheumatoid Arthritis. Arthritis Rheumatol. 2015;67(5):1182–1192. doi:10.1002/art.39031.; Liu Z.M., Wang K.P., Ma J., Guo Zheng S. The role of all-trans retinoic acid in the biology of Foxp3+ regulatory T cells. Cell Mol Immunol. 2015;12(5):553–557. doi:10.1038/cmi.2014.133.; Garrido-Mesa N., Algieri F., Rodriguez Nogales A., Galvez J. Functional plasticity of Th17 cells: implications in gastrointestinal tract function. Int Rev Immunol. 2013;32(5–6):493–510. doi:10.3109/08830185.2013.834899.; Ju J.H., Heo Y.J., Cho M.L., Jhun J.Y., Park J.S., Lee S.Y. et al. Modulation of STAT3 in rheumatoid synovial T cells suppresses Th17 differentiation and increases the proportion of Treg cells. Arthritis Rheum. 2012;64(11):3543–3552. doi:10.1002/art.34601.; Cao Y., Jin X., Sun Y., Wen W. Therapeutic effect of mesenchymal stem cell on Hashimoto’s thyroiditis in a rat model by modulating Th17/Treg cell balance. Autoimmunity. 2020;53(1):35–45. doi:10.1080/08916934.2019.1697689.; https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/5979

الاتاحة: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/5979
https://doi.org/10.21518/2079-701X-2020-21-152-159

المؤلفون: D. I. Bronskiy, S. I. Zhukova, V. A. Zaika, A. G. Shchuko, Д. И. Бронский, С. И. Жукова, В. А. Зайка, А. Г. Щуко

المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 6, № 6-1 (2021); 159-167 ; 2587-9596 ; 2541-9420

مصطلحات موضوعية: фовеолярная аваскулярная зона, inverted flap, flap fixation, retinal blood flow, foveal avascular zone, инвертированный лоскут, фиксация лоскута, ретинальный кровоток

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3123/2262; Белый Ю.А., Терещенко А.В., Шкворченко Д.О., Ерохина Е.В., Шилов Н.М. Хирургическое лечение больших идиопатических макулярных разрывов. Практическая медицина. 2015; 2(87): 119-123.; Белый Ю.А., Терещенко А.В., Шкворченко Д.О., Ерохина Е.В., Шилов Н.М. Новый подход к хирургии больших идиопатических макулярных разрывов. Современные технологии лечения витреоретинальной патологии – 2015: Сборник научных статей. М.; 2015: 24-27.; Жигулин А.В., Худяков А.Ю., Мащенко Н.В. Анализ результатов хирургического лечения макулярных разрывов большого диаметра. Современные технологии в офтальмологии. 2014; (2): 62-63.; Алпатов С.А., Щуко А.Г., Малышев В.В. Классификация идиопатических макулярных разрывов сетчатки. Сибирский медицинский журнал. 2004; 6(47): 56-59.; Алпатов С.А., Щуко А.Г., Малышев В.В. Патогенез в лечении идиопатических макулярных разрывов. Новосибирск: Наука; 2005.; Файзрахманов Р.Р., Павловский О.А., Ларина Е.А. Способ закрытия макулярных разрывов с частичным сохранением внутренней пограничной мембраны. Вестник офтальмологии. 2020; 136(1): 73-79.; Шпак А.А., Шкворченко Д.О., Шарафетдинов И.Х., Юханова О.А. Прогнозирование анатомического эффекта хирургического лечения идиопатического макулярного разрыва. Современные технологии в офтальмологии. 2015; (1): 136-138.; Kwork AK, Lai TY, Wong VW. Idiopathic macular hole surgery in Chinese patients: A randomised study to compare indocyanine green-assisted internal limiting membrane peeling with no internal limiting membrane peeling. Hon Kong Med. J. 2005; 11(4): 259-266.; Балашевич Л.И., Байбородов Я.В., Жоголев К.С. Хирургическое лечение патологии витремакулярного интерфейса. Обзор литературы в вопросах и ответах. Офтальмохирургия. 2015; (2): 80-85.; Самойлов А.Н., Мухаметзянова Г.М. Опыт хирургического лечения идиопатических макулярных разрывов большого диаметра. Современные технологии в офтальмологии. 2017; (1): 259-261.; Лыскин П.В., Захаров В.Д., Лозинская О.Л. Патогенез и лечение идиопатических макулярных разрывов. Эволюция вопроса. Офтальмохирургия. 2010; (3): 52-55.; Demirel S, Değirmenci MFK, Bilici S, Yanik Ö, Batıoğlu F, Özmert E, et al. The recovery of microvascular status evaluated by optical coherence tomography angiography in patients after successful macular hole surgery. Ophthalmic Res. 2018; 59(1): 53-57. doi:10.1159/000484092; Бронский Д.И. Способ хирургического лечения сквозного идиопатического макулярного разрыва: Патент № 2731812C1 Рос. Федерация; СПК A61F 9/007 (2020.02). № 2019109023; заявл. 28.03.2019; опубл. 08.09.2020. Бюл. № 25.; Бронский Д.И., Зайка В.А., Якимов А.П. Оценка клинической эффективности хирургического лечения идиопатических макулярных разрывов большого и среднего диаметра с использованием модифицированной технологии инвертированного лоскута ВПМ (предварительные результаты). Современные технологии в офтальмологии. 2021; 3(38): 20-25. doi:10.25276/2312-4911-2021-3-20-25; Файзрахманов Р.Р., Зайнуллин Р.М., Гильманшин Т.Р., Ярмухаметова А.Л. Картирование фовеолярной зоны сетчатки при идеопатическом макулярном разрыве. Вестник Оренбургского государственного университета. 2014; (13): 322-324.; Schumann RG, Yang Y, Haritoglou C, Schaumberger MM, Eibl KH, Kampik A, et al. Histopathology of internal limiting membrane peeling in traction induced maculopathies. J Clin Exp Ophthalmol. 2012; (3): 220-224.; Yun C, Ahn J, Kim M, Kim JT, Hwang SY, Kim SW, et al. Characteristics of retinal vessels in surgically closed macular hole: an optical coherence tomography angiography study. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2017; 255(10): 1923-1934. doi:10.1007/s00417-017-3742-6; Поздеева О.Г., Олейничук О.П., Ермак Е.М. Особенности хориоидального кровотока в патогенезе развития идиопатического макулярного разрыва. Вестник Оренбургского государственного университета. 2014; (14): 307-309.; Cho JH, Yi HCh, Bae SH, Kim H. Foveal microvasculature features of surgically closed macular hole using optical coherence tomography angiography. BMC Ophthalmol. 2017; 17(1): 217. doi:10.1186/s12886-017-0607-z; Baba T, Kakisu M, Nizawa T, Oshitari T, Yamamoto S. Superficial foveal avascular zone determined by optical coherence tomography angiography before and after macular hole surgery. Retina. 2017; (37): 444-450.; Kita Y, Inoue M, Kita R, Sano M, Orihara T, Itoh Y, et al. Changes in the size of the foveal avascular zone after vitrectomy with internal limiting membrane peeling for a macular hole. Jpn J Ophthalmol. 2017; 61(6): 465-471. doi:10.1007/s10384-017-0529-6; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3123

الاتاحة: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3123
https://doi.org/10.29413/ABS.2021-6.6-1.19

المؤلفون: T. N. Iureva, A. A. Zaika, V. V. Shprakh, S. I. Zhukova, Т. Н. Юрьева, А. А. Зайка, В. В. Шпрах, С. И. Жукова

المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 5, № 4 (2020); 67-72 ; 2587-9596 ; 2541-9420

مصطلحات موضوعية: зрительные вызванные потенциалы, ischemic optic neuropathy, electroretinography, visual field, visual evoked potentials, ишемическая невропатия зрительного нерва, электроретинография, поля зрения

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/2394/2052; Скворцова В.И., Шетова И.М., Какорина Е.П., Камкин Е.Г., Бойко Е.Л., Дашьян В.Г., и др. Организация помощи пациентам с инсультом в России. Итоги 10 лет реализации Комплекса мероприятий по совершенствованию медицинской помощи пациентам с острыми нарушениями мозгового кровообращения. Анналы клинической и экспериментальной неврологии. 2018; 12(3): 5-12. doi:10.25692/ACEN.2018.3.1; Charidimon A, Pantoni L, Love S. The concept of sporadic cerebral small vessel disease: A road map on key definitions and current concepts. Int J Stroke. 2016; 11(1): 6-18. doi:10.1177/1747493015607485; Захаров В.В., Громова Д.О. Диагностика и лечение хронической недостаточности мозгового кровообращения. Эффективная фармакотерапия. 2015; (13): 48-54.; Левин О.С. Дисциркуляторная энцефалопатия: анахронизм или клиническая реальность? Современная терапия в психиатрии и неврологии. 2012; (3): 40-46.; Левин О.С., Чимагомедова А.Ш., Полякова Т.А., Араблинский А.В. 60 лет концепции дисциркуляторной энцефалопатии – можно ли в старые вехи налить молодое вино? Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2018; 118 (6-2): 13-26. doi:10.17116/jnevro201811806213; Триумфов А.В. Топическая диагностика заболеваний нервной системы. М.: Медпресс; 1998.; Pantoni L. Cerebral small vessel disease: from pathogenesis and clinical characteristics to therapeutic challenges. Lancelot Neurol. 2010; 9(7): 689-701. doi:10.1016/S1474-4422(10)70104-6; Wardlaw JM, Smith C, Dichgans M. Mechanisms of sporadic cerebral small vessel disease: insights from neuroimaging. Lancelot Neurol. 2013; 12(5): 483-497. doi:10.1016/S1474-4422(13)70060-7.; Макхамова Д.К. Этиопатогенез развития глазного ишемического синдрома. Вестник офтальмологии. 2017; 133(2): 120-124. doi:10.17116/oftalma20171332120-124; Тулзаев В.В., Егоров В.В., Кравченко И.З., Смолякова Г.П. Клинические особенности глазного ишемического синдрома при атеросклеротических поражениях внутренней сонной артерии. Практическая медицина. 2018; (5): 173-178.; Плюхова А.А., Балацкая Н.В., Будзинская М.В. Изменения органа зрения при системном атеросклерозе. Вестник офтальмологии. 2013; 129(1): 71-74.; Загородняя Т.С., Саржевская Л.Э., Безденежная О.А., Безугла Е.А. Глазной ишемический синдром. Современные принципы диагностики и лечения. Запорожье; 2012.; Шамшинова М.А. Электроретинография в офтальмологии. М.: Медика; 2009.; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/2394

الاتاحة: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/2394
https://doi.org/10.29413/ABS.2020-5.4.9

المؤلفون: S. I. Zhukova, Yu. N. Yureva, I. V. Pomkina, A. S. Grishchuk, С. И. Жукова, Т. Н. Юрьева, И. В. Помкина, А. С. Грищук

المصدر: National Journal glaucoma; Том 18, № 1 (2019); 3-9 ; Национальный журнал Глаукома; Том 18, № 1 (2019); 3-9 ; 2311-6862 ; 2078-4104

مصطلحات موضوعية: сосуды артериального круга Цинна - Галлера, myopia, optical coherence tomography, OCT-angiography, peripapillary atrophy, vessels of the Zinn - Haller arterial circle, миопия, оптическая когерентная томография, ОКТ-ангиография, перипапиллярная атрофия

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.glaucomajournal.ru/jour/article/view/227/235; Chen S.J. High myopia as a risk factor in primary open angle glaucoma. Int JOphthalmol. 2012; 5(6):750-753. http://doi.org/10.3980/j.issn.2222-3959.2012.06.18; Jonas J.B., Gusek G.C., Naumann G.O.H. Optic disk morphometry in high myopia. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 1988; 226:587-590. http://doi.org/10.1111/j.1755-3768.2009.01660.x; Dichtl A., Jonas J.B., Naumann G.O. Histomorphometry of the optic disc in highly myopic eyes with absolute secondary angle closure glaucoma. Br J Ophthalmol. 1998; 82:286-289. http://dx.doi.org/10.1136/bjo.82.3.286; Corallo G., Capris P., Zingirian M. Perimetric findings in subjects with elevated myopia and glaucoma. Acta Ophthalmol Scand Suppl. 1997; 224:30-31.; Doughty M.J., Zaman M.L. Human corneal thickness and its impact on intraocular pressure measures: a review: a meta-analysis approach. Surv Ophthalmol. 2000; 44:367-408. https://doi.org/10.1016/S0039-6257(00)00110-7; Medeiros F.A., Weinreb R.N. Evaluation of the influence of corneal biomechanical properties on intraocular pressure measurements using the ocular response analyzer. Glaucoma. 2006; 15:364-370. http:// doi.org/10.1097/01.ijg.0000212268.42606.97; Аветисов С.Э., Бубнова И.А., Антонов А.А. Клинико-экспериментальные аспекты изучения биомеханических свойств фиброзной оболочки глаза. Вестник офтальмологии. 2013; 5:82-90.; Волков В.В. Глаукома при псевдонормальном давлении. Москва: Медицина; 2001: 352.; Gazarek J., Jan J., Kolar R., Odstrcilik J. Bimodal comparison of retinal nerve fibre layer atrophy evaluation. Proc. Biosignal: Analysis of Biomedical Signals and Images. 2010; 20:409-413.; Dichtl A., Jonas J.B., Naumann G.O.H. Glaucoma in high myopia and parapapillary delta zone. PLOS ONE. 2017; 5. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0175120; Lee J.E., Sung K.R., Park J.M. et al. Optic disc and peripapillary retinal nerve fiber layer characteristics associated with glaucomatous optic disc in young myopia. Graefe’s Arch Clin Exper Ophthalmol 2017; 255(3):591-598. https://doi.org/10.1007/s00417-016-3542-4; Щуко А.Г., Малышев В.В. Оптическая когерентная томография в диагностике глазных болезней. Москва: ГЕОТАР-Медиа; 2010: 128.; Жукова С.И., Юрьева Т.Н., Микова О.И., Самсонов Д.Ю., Григорьева А.В., Пятова Ю.С. ОКТ-ангиография в оценке хориоретинального кровотока при колебании внутриглазного давления у больных первичной открытоугольной глаукомой. Клиническая Офтальмология. 2016; 2:98-103. https://doi.org/10.21689/2311-7729-2016-16-2-98-103; Mansouri K., Rao H.L., Hoskens K. et al. Diurnal variations of peripapillary and Macular vessel density in glaucomatous eyes using optical coherence tomography angiography. J Glaucoma. 2018; 27(4):336-341. https://doi.org/10.1097/IJG.0000000000000914; Lumbroso B., Huang D., Jia Y. et al. Clinical guide to angio-OCT: non invasive, dyeless OCT angiography. New Delhi: Jaypee Brothers Medical Publ.; 2015: 86.; Ishida Tomoka, Jonas Jost B. Ishii, Minami et al. Peripapillary arterial ring of Zinn-Haller in highly myopic eyes as detected by optical coherence tomography angiography. Retina. 2017; 37(2):299-304. https://doi.org/10.1097/IAE.0000000000001165; Щуко А.Г., Юрьева Т.Н. Алгоритмы диагностики и лечения больных первичной глаукомой. Иркутск: Иркутский институт усовершенствования врачей; 2010: 45.; Kim T.-W. et al. Optic disc change with incipient myopia of childhood. Ophthalmology. 2012; 119(1):21-26. https://doi.org/10.1016Zj.oph-tha.2011.07.051; Григорьева А.В., Щуко А.Г., Жукова С.И., Самсонов Д.Ю., Юрьева Т.Н., Зайцева Н.В. Дифференциально-диагностические критерии хориоидальной неоваскуляризации при осложненной миопии и экссудативной возрастной макулярной дегенерации. Современные технологии в офтальмологии. 2016; 4:69-72.; Мозаффари М., Фламмер Й. Кровообращение глаза и глаукомная оптическая нейропатия. СПб.: Эко-Вектор; 2013: 141.; https://www.glaucomajournal.ru/jour/article/view/227

الاتاحة: https://www.glaucomajournal.ru/jour/article/view/227
https://doi.org/10.25700/NJG.2019.01.01

المؤلفون: Yu. N. Savina, S. I. Zhukova, A. V. Korolenko, D. A. Averyanov, Ю. Н. Савина, С. И. Жукова, А. В. Короленко, Д. А. Аверьянов

المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 4, № 4 (2019); 91-95 ; 2587-9596 ; 2541-9420

مصطلحات موضوعية: подростки, hypertensive angioretinochoriopathy, oscillatory potentials, children, adolescents, гипертоническая ангиоретинохориопатия, осцилляторные потенциалы, дети

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/2127/1913; Mackay J, Mensah GA, Mendis S. The atlas of heart disease and stroke. Geneva: World Health Organization; 2004.; Леонтьева И.В. Поражение органов-мишеней у детей и подростков с артериальной гипертензией. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2010; 55(2): 30-41.; Ковалевский Е.И. Болезни глаз при общих заболеваниях. М.: Медицина, 2003.; Савина Ю.Н., Долгих В.В., Аверьянов Д.А., Короленко А.В. Изменения орбитального кровотока у детей с артериальной гипертензией. Материалы X съезда офтальмологов России. М.: Офтальмология; 2015: 264.; Александров А.А. Российские рекомендации Диагностика, лечение и профилактика артериальной гипертензии у детей и подростков (второй пересмотр). Кардиоваскулярная терапия ипрофилактика. 2009; (4S1): 3-32. doi:10.15829/1728-8800-2009-4S1-3-32.; Кисляк О.А. Артериальная гипертензия в подростковом возрасте. М.: Миклош; 2007.; Короленко А.В., Савина Ю.Н., Щуко А.Г. Изменения регионарного кровообращения у детей при амблиопии. М.: Офтальмология; 2013.; Борисова С.А., Шамшинова А.М., Никитин Ю.Н. Ультразвуковая допплерография в офтальмологии. М.: Медицина; 1998.; Шамшинова А.М. Электроретинография в офтальмологии. М.: Медика, 2009.; Колесникова Л.И., Долгих В.В., Леонтьева И.В. и др. Эссенциальная артериальная гипертензия у детей и подростков: клинико-функциональные варианты. Иркутск: ВСНЦ СО РАМН, 2008.; Нероев В.В., Зуева М.В., Цапенко И.В. Рябина М.В., Киселева О.А., Каламкаров Г.Р. Ишемические аспекты патогенеза заболеваний сетчатки. Российский офтальмологический журнал. 2010; 3(1): 42-49.; Савина Ю.Н., Жукова С.И., Щуко А.Г. Офтальмологические проявления эссенциальной артериальной гипертензии у детей и подростков (Предварительное сообщение). Вестник Оренбургского государственного университета. 2013; (4): 117-220.; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/2127

الاتاحة: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/2127
https://doi.org/10.29413/ABS.2019-4.4.13

المؤلفون: A. G. Shchuko, S. I. Zhukova, T. N. Iureva, A. N. Zlobina, А. Г. Щуко, С. И. Жукова, Т. Н. Юрьева, А. Н. Злобина

المصدر: Ophthalmology in Russia; Том 15, № 3 (2018); 294-302 ; Офтальмология; Том 15, № 3 (2018); 294-302 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2018-3

مصطلحات موضوعية: ретинальный пигментный эпителий, OCT angiography, retinal pigment epithelium, ОКТ-ангиография

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/690/521; Злобина А.Н., Юрьева Т.Н. Центральная серозная хориоретинопатия. Лазерная хирургия сосудистой патологии глазного дна / под ред. проф. А.Г. Щуко. М.: Офтальмология, 2014. [Zlobina A.N., Iureva T.N. Central serous chorioretinopathy. Laser surgery of the vascular pathology of the fundus / ed. prof. A.G. Shchuko. Oftal’mologiya, 2014 (In Russ.)]; Gass J.D. Central serous chorioretinopathy and white subretinal exudation during pregnancy. Arch Ophthalmol. 1991;109:677–681.; Williamoson T.H., Harris A. Ocular blood flow measurement. Br J Ophthalmol. 1994;78:939–945.; Wei W.B., Xu L., Jonas J.B., Shao L., Du K.F., Wang S., Chen C.X., Xu J., Wang Y.X., Zhou J.Q., You Q.S. Subfoveal choroidal thickness: the Beijing eye study. Ophthalmology. 2013;120(1):175–180. DOI:10.1016/j.ophtha.2012.07.048; Iida, T., Kishi S., Hagimura N., et al. Persistent and bilateral choroidal vascular abnormalities in central serous chorioretinopathy. Retina. 1999;19:508–512.; Щуко А.Г., Злобина А.Н., Юрьева Т.Н. Оптимизация критериев диагно стики центральной серозной хориоретинопатии. Клиническая Офтальмология. 2015;1:24. [Shchuko A.G., Zlobina A.N., Iureva T.N. Optimization of diagnostic criteria for central serous chorioretinopathy. Clinical Ophthalmology = Klinicheskaya Oftal’mologiya. 2015;1:24 (In Russ.)]; Drexler H. Endothelial dysfunction: clinical implications. Prog Cardiovasc Dis. 1997;39(4):287–324.; Gass J.D. Bullous retinal detachments and multiple retinal pigment epithelial detachments in patients receiving hemodialysis. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 1992;230:454–458.; Marmor M.F. New hypothesis on the pathogenesis and treatment of serous retinal detachment. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 1988;226:548–555.; Sekiryu T., Iida T., Maruko I. Infrared Fundus Autofluorescence and Cen tral Serous Chorioretinopathy. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 2010;51(10):4956–4962. DOI:10.1167/iovs.09-5009; Guyer D.R., Yannuzzi L.A., Slakter J.S., et al. Digital indocyanine green videoangi ography of central serous chorioretinopathy. Arch Ophthalmol. 1994;112:1057–1062.; Imamura Y., Fujiwara T., Margolis R. Enhanced depth imaging optical coher ence tomography of the choroid in central serous chorioretinopathy. Retina. 2009;29:1469–1473. DOI:10.1097/IAE.0b013e3181be0a83; Khng, C.G., Yap E.Y., Au-Eong K.G. Central serous retinopathy complicating sys temic lupus erythematosus: a case series. Clin Exp Ophthalmol. 2000;28:309–313. DOI:10.1046/j.1442-9071.2000.00328.x; Maruko I., Iida T., Sugano Y. Subfoveal choroidal thickness after treatment of central serous chorioretinopathy. Ophthalmology. 2010;117:1792–1799. DOI:10.1016/j.ophtha.2010.01.023; Щуко А.Г., Пашковский А.А., Шестаков А.О., Якимов А.П., Юрьева Т.Н., Жу кова С.И., Алпатов С.А., Малышев В.В. Оптическая когерентная томография в диагностике офтальмологических заболеваний. Медицинская визуализация. 2003;3: 59–62. [Shchuko A.G., Pashkovsky A.A., Shestakov A.O., Yakimov A.P., Iureva T.N., Zhukova S.I., Alpatov S.A., Malyshev V.V. Optical coherence tomography in the diagnosis of ophthalmic diseases. Medical visualization = Meditsinskaya vizualizatsiya. 2003;3:59–62 (In Russ.)]; Branchini L.A., Adhi M., Regatieri C.V., et al. Analysis of Choroidal Morphology and Vasculature in Healthy Eyes Using Spectral-Domain Optical Coherence Tomogra phy. Ophthalmology. 2013;120(9):1901–1908. DOI:10.1016/j.ophtha.2013.01.066; Weiter J.J., Ernest J.T. Anatomy of the choroidal vasculature. Am J Ophthalmol. 1974;78:583.; Lumbroso B., Huang D., Chen C. Clinical OCT Angiography Atlas. New DelhiLondon-Philadelphia-Panama: The Health Sciences Publisher, 2015.; Lumbroso B., Huang D., Jia Y. Clinical Guide to Angio-OCT-Non Invasive Dyeless OCT Angiography. New Delhi: Jaypee Brothers Medical Publisher, 2015.; Lumbroso B., Huang D., Romano A. Clinical En Face OCT Atlas. New Delhi-Lon don-Philadelphia-Panama: Jaypee — highlights Medical Publisher, INC., 2013.; Spaide R.F., Koizumi H., Pozonni M.C. Enhanced depth imaging spectral-do main optical coherence tomography. Am J Ophthalmol. 2008;146:496–500. DOI:10.1016/j.ajo.2008.05.032; Hayrech S.S. Segmental nature of the choroidal vasculature. Br J Ophthalmol. 1975;59(11):631–648.; Savastano V.C., Rispoli M., Savastano F., Lumbroso B. En-Face Optical Coherence Tomography for Visualization of the Choroid. Ophthalmic Surgery. Lasers and Imaging Retina. 2015;46(5):561–565. DOI:10.3928/23258160-20150521-07; Grunwald J., Metelitsina T., Du Pont J., et al. Reduced foveolar choroidal blood flow in yes with increasing AMD severity. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2005;46:1033–38. DOI:10.1167/iovs.04-1050; Guyer D.R., Schachat A.P., Green W.R. The choroid: structural considerations / In: Ryan S. J., ed.-in-chief. Retina. Philadelphia: Elsevier Mosby, 2006.; Hayrech S.S. Choriocapillaris. Graefes Arch Ophthalmol. 1974;192:165–179.; Johnson P.C. Red cell separation in the capillary network. Am J Physiol. 1971;221(1):99–104.; Внутренние болезни. Сердечно-сосудистая система: учеб. пособие / ред. Г.Е. Ройтберг, А.В. Струтынский. М.: МЕДпресс-информ; 2017. [Internal diseases. Cardiovascular system: Textbook. allowance / ed. G.Ye. Roitberg, A.V. Strutynsky Moscow: MEDpress-inform, 2017 (In Russ.)]; Фолков Б., Нил Э. Кровообращение / пер. с англ. Н.М. Верич. М.: Медицина; 1976. [Folkov B., Neil E. Blood circulation / transl. from English by Н.М. Verich. Meditsina; 1976 (In Russ.)]; Коган И.И., Конюков В.Н., Шацких А.В. Микрохирургическая анатомия кровеносных сосудов заднего отдела глазного яблока. Офтальмохирургия. 2003;3:42–46. [Kogan I.I., Konyukov V.N., Shatskikh A.V. Microsurgical anatomy of the blood vessels of the posterior eyeball. Ophthalmosurgery = Oftal’mokhirurgiya. 2003;3:42–46 (In Russ.)]; Астахов Ю.С., Тульцева С.Н., Титаренко А.И. Роль дисфункции эндотелия в патогенезе сосудистых заболеваний органа зрения. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2017;15(4):5–13. [Astakhov Yu.S., Tultseva S.N., Titarenko A.I. The role of endothelial dysfunction in the pathogenesis of vascular diseases of the organ of vision. Regional Heamodynamics and microcirculation = Regionarnoye krovoobrashcheniye i mikrotsirkulyatsiya. 2016;15(4):5–16 (In Russ.)]; Iida, T., Spaide S.G., Negrao R.F. Central serous chorioretinopathy after epidural corticosteroid injection. Am J Ophthalmol. 2001;132:423–425. DOI: http://dx.doi. org/10.1016/S0002-9394(01)00970-9; Wang M., Munch I.C., Hasler P.W., et al. Central serous chorioretinopathy. Acta Ophthalmol. 2008;86:126–145 (4). DOI:10.1111/j.1600-0420.2007.00889.x; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/690

الاتاحة: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/690
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2018-3-294-302

المؤلفون: A. G. Shchuko, D. Yu. Samsonov, S. I. Zhukova, T. N. Iureva, I. M. Mikhalevich, A. V. Grigorieva, Yu. S. Samsonova, А. Г. Щуко, Д. Ю. Самсонов, С. И. Жукова, Т. Н. Юрьева, И. М. Михалевич, А. В. Григорьева, Ю. С. Самсонова

المصدر: Ophthalmology in Russia; Том 15, № 2S (2018); 73-81 ; Офтальмология; Том 15, № 2S (2018); 73-81 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2018-2S

مصطلحات موضوعية: классификация, pulsar-perimetry, drusens of optic nerve disk, OCT, OCTA, classification, пульсар-периметрия, друзы диска зрительного нерва, ОКТ, ОКТА

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/631/481; Tso M.O. Pathology and pathogenesis of drusen of the optic nerve head. Ophthalmology. 1981;88:1066–80.; Braun W. Ueber familiäres Vorkommen von Drusen der Papille. Klin. Monatsbl. Augenheilkd. 1935;94:734–8.; Lauber H. Klinische und anatomische untersuchungen ueber drusen im sehnervenkopf. Albrecht von Graefes Arch. Ophthalmol. 1921;105:567–89.; Leimgruber M. Erbforschungen ueber die Drusen der Sehnervenpapille. Archiv Ophthalmol. 1936;136:364–76.; Lorentzen S.E. Drusen of the optic disc. Acta Ophthalmol. 1966;90(Suppl.):1–180.; Singleton E.M., Kinsbourne M., Anderson W.B. Jr. Familial pseudopapilledema. Southern Med. J. 1973;66:796–802.; Lorentzen S.E. Drusen of the optic disk, an irregularly dominant hereditary affection. Acta Ophthalmol. 1961;39:626–43.; Antcliff R.J., Spalton D.J. Are optic disc drusen inherited? Ophthalmology. 1999;106(7):1278–81.; Golnik K. Congenital anomalies and acquired abnormalities of the optic nerve, (Version 14.3). UptoDate (On-Line Serial). Ophthalmology. 2006;88(10):1066–80.; Щуко А.Г., Самсонов Д.Ю., Жукова С.И., и др. Алгоритм диагностики друз диска зрительного нерва у детей. Практическая медицина. 2015;2(87):111– 115. [Shchuko A.G., Samsonov D.Yu., Zhukova S.I., Iureva T.N., Averianov D.A. Algoritm Diagnostiki druz diska zritelnogo nerva u detei [Algorithm for diagnosing drusen disc of the optic nerve in children]. Practical medicine=Prakticheskaya meditsina. 2015;2(87):111–115. (In Russ.)]; Савина Ю.Н., Юрьева Т.Н., Щуко А.Г., Короленко А.В. Роль метаболических нарушений в формировании друз диска зрительного нерва у детей с эссенциальной артериальной гипертензией. Современные технологии в офтальмологии. 2016;3:199–202. [Savina Ju.N., Iureva T.N., Shchuko A.G., Korolenko A.V. The role of metabolic disorders in the formation of the drusen of the optic nerve in children with essential arterial hypertension. Modern technologies in ophthalmology= Sovremennye tekhnologii v oftal’mologii. 2016;3:199–202. (In Russ.)]; Волкова Н.В., Щуко А.Г., Носкова Л.К. Роль гиперлипопероксидации и изменение гормональной регуляции в механизмах рубцовых изменений путей оттока внутриглазной жидкости после фистуляризирующих антиглаукоматозных операций. Сообщение 2. Национальный журнал глаукома. 2011;2:3–7. [Volkova N.V., Shchuko A.G., Noskova L.K. [Volkova N.V., Shchuko A.G., Noskova L.K. The role of hyperlipoperoxidation and the alteration of hormonal regulation in the mechanisms of scar changes in the pathways of intraocular fluid outflow after fistulazing antiglaucomatous operations. Report 2. National Journal glaucoma=Natsional’nyi zhurnal glaukoma. 2011;2:3–7. (In Russ.)]; Wakakura M., Ishikawa S. Neuro-ophthalmic aspects of vascular disease. Curr. Opin. Ophthalmol. 1994;5(6):18–22.; Rubinstein K., Ali M. Retinal complications of optic disc drusen. Br. J. Ophthalmol. 1982;66(2):83–95.; Sanders T.E., Gay A.J., Newman M. Drüsen of the optic disk-hemorrhagic complications. Trans. Am. Ophthalmol. Soc. 1970;68:186–218.; Zanella F.E., Kirchhof B. Calcification of optic disk drusen on CT. Medder U. Rofo. 1984;141(6):647–8.; Purvin V., King R., Kawasaki A. et al. Anterior ischemic optic neuropathy in eyes with optic disc drusen. Arch. Ophthalmol. 2004;122(1):48–53.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/631

الاتاحة: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/631
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2018-2S-73-81

المؤلفون: A. G. Shchuko, D. U. Samsonov, S. I. Zhukova, T. N. Iureva, А. Г. Щуко, Д. Ю. Самсонов, С. И. Жукова, Т. Н. Юрьева

المصدر: Ophthalmology in Russia; Том 12, № 4 (2015); 40-45 ; Офтальмология; Том 12, № 4 (2015); 40-45 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2015-4

مصطلحات موضوعية: компьютерная периметрия, children, diagnostics, дети, диагностика, ультразвуковое сканирование, оптическая когерентная томография

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/275/293; Vit.V. V. [The structure of the human visual system] Stroenie zritelnoi sistemy cheloveka. Moscow: Astroprint; 2003. 664 p. (in Russ.).; Shulpina N.B. [The biomicroscopy of the eye] Biomikroskopiya glaza. Moscow: Medicine; 1966p (in Russ).; Beck R.W., Corbett J.J. ThompsonH. S. et al. Decreased visual acuity from optic disc drusen. Arch. Ophthalmol. 1985; 103 (8):1155‑9.; Golnik K.C., Payesse E,A, Torchia M.M. Congenital Anomalies and Acquired Abnormalities of the Optic Nerve. Philadelphia: Wolters Kluwer; 2014.; Spencer T.S., Katz B.J., Weber S.W. et al. Progression from anomalous optic discs to visible optic disc drusen. Neuroophthalmol. 2004; 24 (4):297.; Wilkins J.M., Pomeranz H.D. Visual manifestations of visible and buried optic disc drusen. J. Neuroophthalmol. 2004; 24 (2):125‑9.; Grippo T., Shihadeh W., Schargus M. et al. Optic nerve head drusen and visual field loss in normotensive and hypertensive eyes. J. Glaucoma. 2008; 17 (2):100‑104.; Grippo T.M., Rogers S.W., Tsai J.C. Optic Disc Drusen. Glaucoma Today. 2012; (2):19‑24.; Jane W. Chan Optic Nerve Disorders: Diagnosis and Management. Neurology Kentucky: University of Kentucky Collegу of Medicine Loxington, KYUSA, 2007. 210 p.; Mustonen E. Pseudopapilloedema with and without verified optic disc drusen. A clinical analysis II: visual fields. ActaOphthalmol. 1983; 61 (6):1057‑1066.; Optic Nerve Head Drusen. Handbook of Ocular Disease Management. Richmond: Jobson Publishing L.L. C., 2001.; Sam Razavi. Images de la choroide obtenues par un OCT Swept Source imettant dans l’infrarouge Imagerie. Les Cahiers. 2013;167:26‑30.; You Q, Xu L, Wang Y, Jonas J. Prevalence of optic disc drusen in an adult Chinese population: The Beijing Eye Study. Acta Ophthalmol. 2009; 87 (2):227‑228.; Kamath G.G., Prasad S., Phillips R.P. Bilateral anterior 20 ischaemic optic neuropathy due to optic disc drusen. Eur.J. Ophthalmol. 2000; 10 (4):341‑3.; Liew S.C., Mitchell P. Anterior ischaemic optic neuropathy in a patient with optic disc drusen. Aust.N. Z. J. Ophthalmol. 1999; 27 (2):57‑60.; Miyake Y. Electro diagnosis of retinal Diseases. Tokyo: Springer-Verlag, 2006. 231 p.; Purvin V., King R., Kawasaki A. et al. Anterior ischemic optic neuropathy in eyes with optic disc drusen». Arch. Ophthalmol. 2004; 122 (1):48‑53.; Spalding J.M. Visual-field loss with optic nerve drusen and ocular hypertension: a case report. Optometry. 2002; 73 (1):24‑32.; Brodrick J.D. Drusen of the disc and retinal haemorrhages. Br.J. Ophthalmol. 1973; 57 (5):299‑306.; Rubinstein K., Ali M. Retinal complications of optic disc druse. Br. JOphthalmol. 1982;66 (2):83‑95.; Sanders T.E., Gay A.J., Newman M. Drusen of the optic disk-hemorrhagic complications. Trans. Am. Ophthalmol. Soc. 1970; 68:186‑218.; Lodato G Hemorrhagic complications in drusen of the optic papilla. J Fr Ophtalmol. 1986;9 (8-9):567-72Shields J. A.; Demirci H., Mashayekhi A. et al. Melanocytoma of the optic disc: a review. Surv. Ophthalmol. 2006; 51 (2):93‑104.; Spencer W.H. XXXIV Edward Jackson Memorial Lecture: drusen of the optic disc and aberrant axoplasmic transport. Ophthalmology. 1978; 85 (1):21‑38.; Bec P., Adam P., Mathis A. et al. Optic nerve head drusen. High-resolution computed tomographic approach. Arch. Ophthalmol. 1984; 102 (5):680‑2.; Lam B.L., Morais C.G. Jr, Pasol J. Curr Drusen of the optic disc. Neurol. Neurosci. Rep. 2008; 8 (5):404‑8.; Tso M.O. Pathology and pathogenesis of drusen of the optic nerve head. Ophthalmology. 1981; 88 (10):1066‑80.; Wakakura M., Ishikawa S. Neuro-ophthalmic aspects of vascular disease. Curr. Opin. Ophthalmol. 1994; 5 (6):18‑22.; Zanella FE, Kirchhof B, Calcification of optic disk drusen on CT. Medder U. Rofo. 1984; 141 (6):647‑8.; Shchuko A.G., Zhukova S.I., Yur’eva T. N. [Ultrasound diagnostics in ophthalmology] [Ultrazvukovaia diagnostika v oftalmologii] — Moscow: Ophthalmology, 2013. 124 p. (in Russ.); Younan N.M., Francis I.C. Progressive Visual Failure in an Eye with Optic Disc Drusen and an Orbital Mass.J. Neuro-Ophthalmology. 2003; 23 (1):31‑33.; Vodovozov A.M. [Fundus examination in a transformed light] Issledovanie dna glaza v transformirovannom svete. Moscow: Medicine. 1986256 (in Russ.); Shchuko A.G., Malyshev V. V, Aver’yanov D. A., Alpatov S.A., Bukina V.V., Zhukova S.I., Pashkovskiy A.A., Starunov E. V, Yur’eva T. N., Yakimov A.P. [Optical coherence tomography in ophthalmology] Opticheskaya kogerentnaia tomografiia v oftalmologii. Irkutsk: Publishing House IF IRTC «Eye Microsurgery», 2005. — 111 p. (in Russ); Tomas M., Grippo, Spencer W. et al. Optic Disc Drusen. Glaucoma Today. 2012;2:19‑23.; Lumbrozo B., Huang D., Romano A. et al. Clinical Enface OCT Atlas. NY: Jaypee Brothers Medical Publishers, 2013: 483 p.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/275

الاتاحة: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/275
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2015-4-40-45

المؤلفون: O. B. Dem’Yanova, S. I. Zhukova, A. A. Zankovich, N. P. Khrapova, K. A. Rotov, N. N. Sintyurina, E. A. Snatenkov, О. Б. Демьянова, С. И. Жукова, А. А. Занкович, Н. П. Храпова, К. А. Ротов, Н. Н. Синтюрина, Е. А. Снатенков

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3 (2014); 83-85 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3 (2014); 83-85 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2014-3

مصطلحات موضوعية: immunofan, иммунитет, цитокины, бестим, имунофан, liposomal melioidosis antigens, immunity, cytokines, bestim

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/170/168; Авророва И.В., Жукова С.И., Корсакова И.И., Храпова Н.П., Напалкова Г.Н. Поверхностные биополимеры Burkholderia pseudomallei и их протективная активность при экспериментальном мелиоидозе. Инф. патол. 2010; 17(3):85-7.; Гланц С. Медико-биологическая статистика. М.: Практика; 1998. 459 с.; Жукова С.И., Авророва И.В., Прошина О.Б., Ротов К.А., Храпова Н.П., Снатенков Е.А., Ломова Л.В. Способ иммунопрофилактики экспериментального мелиоидоза инкапсулированными антигенами Burkholderia pseudomallei. Патент РФ 2373955, опубл. 27.11.2009 г. Бюл. № 33.; Караулов А.В. Клинико-иммунологическая эффективность применения имунофана при оппортунистических инфекциях. Лечащий врач. 2000; 4:52-5.; Караулов А.В., Сокуренко С.И. Имунофан: непосредственные и отдаленные результаты лечения больных хроническим бронхитом. Медикал Маркет. 2000; 34:21-4.; Кукаркин Н.Ю., Долгушин И.И., Бордуновский В.Н. Бестим в лечении больных хроническим пиелонефритом. В кн.: Иммунитет и болезни: от теории к практике. М.; 2005. С. 90-1.; Лапач С.Н., Чубенко А.В., Бабич П.Н. Статистические методы в медико-биологических исследованиях с использованием Excel. Киев: Морион; 2001. 408 c.; Любимов Г.Ю., Зенков Н.Г., Вольский Н.Н. Хеми-люминесценция перитонеальных макрофагов при действии макрофаг-активирующего фактора. Иммунология. 1992; 1:40-3.; Попова А.Е. Методические рекомендации по определению отекогенного эффекта на белых мышах. Волгоград: Нижневолжское книжное изд-во; 1980. 18 с.; Сенцова Т.Б. Современные иммуномодуляторы. Оториноларингология. 2004; 3(5):16-8.; Симбирцев А.С., Сахарова И.Я., Васильева Г.Ю., Баласанянц Г.С., Бокованов В.Е. Опыт применения бестима в комплексном лечении инфильтративных и деструктивных форм туберкулеза легких. Российский семейный врач. 2003; 3:17-9.; Barnes J.L., Warner J., Melrose W. Adaptive immunity in melioidosis: a possible role for T cells in determining outcome of infection with Burkholderia pseudomallei. Clin. Immunol. 2004; 113(1):22-8.; Ketheesan N., Barnes J.L., Ulett G.C. Demonstration of a cell-mediated immune response in melioidosis. J. Infect. Dis. 2002; 186(2):286-9.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/170

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/170
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2014-3-83-85

المؤلفون: S. I. Zhukova, V. V. Alekseev, A. V. Lipnitsky, A. A. Zankovich, I. V. Avrorova, V. A. Antonov, V. P. Smelyansky, G. A. Tkachenko, E. V. Putintseva, O. V. Zinchenko, С. И. Жукова, В. В. Алексеев, А. В. Липницкий, А. А. Занкович, И. В. Авророва, В. А. Антонов, В. П. Смелянский, Г. А. Ткаченко, Е. В. Путинцева, О. В. Зинченко

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3(109); 43-45 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3(109); 43-45 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2011-3(109)

مصطلحات موضوعية: cytokines

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/678/635; Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.; 1962. 180 с.; Железникова Г.Ф. Цитокины как предикторы течения и исхода инфекций. Цитокины и воспаление. 2009; 8(1):10-7.; Кузнецов В.П., Маркелова Е.В., Беляев Д.Л., Силич В.В., Бабаянц А.А., Лазанович В.А. и др. Динамика цитокинов при инфекциях: можно ли дать прогноз? Цитокины и воспаление. 2002; 1(2):118-20.; Симбирцев А.С. Цитокины - новая система регуляции защитных реакций организма. Цитокины и воспаление. 2002; 1(1):9-15.; Shrestha B., Samuel M.A., Diamond M.S. Gamma interferon plays a crucial early antiviral role in protection against West Nile virus infection. J. Virol. 2006; 80:5338-48.; Wang T., Town T., Alexopoulou L. IFN-gamma - producing gamma delta T cells help control murine West Nile virus infection. J. Immunol. 2003; 171:2524-31.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/678

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/678
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2011-3(109)-43-45