المؤلفون: A. E. Bautin, A. M. Radovskiy, A. O. Marichev, V. V. Osovskikh, N. Y. Semenova, Z. E. Artyukhina, S. E. Voronin, L. A. Murashov, N. A. Kotin, V. A. Zinserling, А. Е. Баутин, А. М. Радовский, А. О. Маричев, В. В. Осовских, Н. Ю. Семенова, З. Е. Артюхина, С. Е. Воронин, Л. А. Мурашова, Н. А. Котин, В. А. Цинзерлинг

المساهمون: The research was carried out with the support and collaboration of the Federal State Unitary Enterprise “Russian Federal Nuclear Center – All-Russian Research Institute of Experimental Physics”., Исследование выполнено при поддержке и в сотрудничестве со специалистами Федерального государственного унитарного предприятия «Российский федеральный ядерный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной физики».

المصدر: PULMONOLOGIYA; Том 34, № 3 (2024); 350-363 ; Пульмонология; Том 34, № 3 (2024); 350-363 ; 2541-9617 ; 0869-0189

مصطلحات موضوعية: кардиохирургия, cardiopulmonary bypass, acute kidney injury, liver injury, cardiac surgery, искусственное кровообращение, острое почечное повреждение, повреждение печени

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4558/3658; Chaney M.A. Corticosteroids and cardiopulmonary bypass: a review of clinical investigations. Chest. 2002; 121 (3): 921–931. DOI:10.1378/chest.121.3.921.; Paparella D., Yau T.M., Young E. Cardiopulmonary bypass induced inflammation: pathophysiology and treatment. An update. Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2002; 21 (2): 232–244. DOI:10.1016/s1010-7940(01)01099-5.; Di Tomasso N., Monaco F., Landoni G. Hepatic and renal effects of cardiopulmonary bypass. Best Pract. Res. Clin. Anaesthesiol. 2015; 29 (2): 151–161. DOI:10.1016/j.bpa.2015.04.001.; Ryan T.A., Rady M.Y., Bashour C.A. et al. Predictors of outcome in cardiac surgical patients with prolonged intensive care stay. Chest. 1997; 112 (4): 1035–1042. DOI:10.1378/chest.112.4.1035.; Hessel E.A. 2nd. Abdominal organ injury after cardiac surgery. Semin. Cardiothorac. Vasc. Anesth. 2004; 8 (3): 243–263. DOI:10.1177/108925320400800306.; Luckraz H., Gravenor M.B., George R. et al. Long and short-term outcomes in patients requiring continuous renal replacement therapy post cardiopulmonary bypass. Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2005; 27 (5): 906–909. DOI:10.1016/j.ejcts.2005.01.057.; Lewicki M., Ng I., Schneider A.G. HMG CoA reductase inhibitors (statins) for preventing acute kidney injury after surgical procedures requiring cardiac bypass. Cochrane Database Syst. Rev. 2015; 2015 (3): CD010480. DOI:10.1002/14651858.CD010480.pub2.; Pickering J.W., James M.T., Palmer S.C. Acute kidney injury and prognosis after cardiopulmonary bypass: a meta-analysis of cohort studies. Am. J. Kidney Dis. 2015; 65 (2): 283–293. DOI:10.1053/j.ajkd.2014.09.008.; Kertai M.D., Zhou S., Karhausen J.A. et al. Platelet counts, acute kidney injury, and mortality after coronary artery bypass grafting surgery. Anesthesiology. 2016; 124 (2): 339–352. DOI:10.1097/ALN.0000000000000959.; Rosner M.H., Okusa M.D. Acute kidney injury associated with cardiac surgery. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2006; 1 (1): 19–32. DOI:10.2215/CJN.00240605.; Vieira Junior F.U., Antunes N., Vieira R.W. et al. Hemolysis in extracorporeal circulation: relationship between time and procedures. Rev. Bras. Cir. Cardiovasc. 2012; 27 (4): 535–541. DOI:10.5935/1678-9741.20120095.; Wang X., Tanus-Santos J.E., Reiter C.D. et al. Biological activity of nitric oxide in the plasmatic compartment. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004; 101 (31): 11477–11482. DOI:10.1073/pnas.0402201101.; Lei C., Berra L., Rezoagli E. et al. Nitric oxide decreases acute kidney injury and stage 3 chronic kidney disease after cardiac surgery. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2018; 198 (10): 1279–1287. DOI:10.1164/rccm.201710-2150OC.; Kamenshchikov N.O., Anfinogenova Y.J., Kozlov B.N. et al. Nitric oxide delivery during cardiopulmonary bypass reduces acute kidney injury: a randomized trial. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2022; 163 (4): 1393–1403.e9. DOI:10.1016/j.jtcvs.2020.03.182.; Shen Z., Wang Z., Zhang J., Jing H. Hepatic injury in a rat cardiopulmonary bypass model. Interact. Cardiovasc. Thorac. Surg. 2008; 7 (1): 18–22. DOI:10.1510/icvts.2006.150979.; Cai D.S., Jin B.B., Pei L., Jin Z. Protective effects of penehyclidine hydrochloride on liver injury in a rat cardiopulmonary bypass model. Eur. J. Anaesthesiol. 2010; 27 (9): 824–828. DOI:10.1097/EJA.0b013e32833b650f.; Cooper W.A., Duarte I.G., Thourani V.H. et al. Hypothermic circulatory arrest causes multisystem vascular endothelial dysfunction and apoptosis. Ann. Thorac. Surg. 2000; 69 (3): 696–702. DOI:10.1016/s0003-4975(99)01524-6.; Viaro F., Baldo C.F., Capellini V.K. et al. Plasma nitrate/nitrite (NOx) is not a useful biomarker to predict inherent cardiopulmonary bypass inflammatory response. J. Card. Surg. 2008; 23 (4): 336–338. DOI:10.1111/j.1540-8191.2008.00649.x.; Sobieski M.A. 2nd, Graham J.D., Pappas P.S. et al. Reducing the effects of the systemic inflammatory response to cardiopulmonary bypass: can single dose steroids blunt systemic inflammatory response syndrome? ASAIO J. 2008; 54 (2): 203–206. DOI:10.1097/MAT.0b013e3181640331.; Zhang Y.Q., Ding N., Zeng Y.F. et al. New progress in roles of nitric oxide during hepatic ischemia reperfusion injury. World J. Gastroenterol. 2017; 23 (14): 2505–2510. DOI:10.3748/wjg.v23.i14.2505.; Dezfulian C., Raat N., Shiva S., Gladwin M.T. Role of the anion nitrite in ischemia-reperfusion cytoprotection and therapeutics. Cardiovasc. Res. 2007; 75 (2): 327–338. DOI:10.1016/j.cardiores.2007.05.001.; Hataishi R., Rodrigues A.C., Neilan T.G. et al. Inhaled nitric oxide decreases infarction size and improves left ventricular function in a murine model of myocardial ischemia-reperfusion injury. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2006; 291 (1): H379–384. DOI:10.1152/ajpheart.01172.2005.; Lefer A.M. Attenuation of myocardial ischemia-reperfusion injury with nitric oxide replacement therapy. Ann. Thorac. Surg. 1995; 60 (3): 847–851. DOI:10.1016/0003-4975(95)00423-I.; Abe Y., Hines I.N., Zibari G. et al. Mouse model of liver ischemia and reperfusion injury: method for studying reactive oxygen and nitrogen metabolites in vivo. Free Radic. Biol. Med. 2009; 46 (1): 1–7. DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2008.09.029.; Checchia P.A., Bronicki R.A., Muenzer J.T. et al. Nitric oxide delivery during cardiopulmonary bypass reduces postoperative morbidity in children – a randomized trial. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2013; 146 (3): 530–536. DOI:10.1016/j.jtcvs.2012.09.100.; Schlapbach L.J., Gibbons K.S., Horton S.B. et al. Effect of nitric oxide via cardiopulmonary bypass on ventilator-free days in young children undergoing congenital heart disease surgery: The NITRIC randomized clinical trial. JAMA. 2022; 328 (1): 38–47. DOI:10.1001/jama.2022.9376.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4558

الاتاحة: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4558
https://doi.org/10.18093/0869-0189-2024-34-3-350-363

المؤلفون: A. A. Mironov, N. Sh. Mamina, S. Ye. Voronin, A. A. Bayramov, А. А. Миронов, Н. Ш. Мамина, С. Е. Воронин, А. А. Байрамов

المساهمون: Работа выполнена в рамках соглашения о предоставлении субсидии из бюджета Санкт-Петербурга на возмещение расходов (недополученных доходов) в связи с производством (реализацией) товаров № 258-23 от 19.12.2023.

المصدر: Translational Medicine; Том 10, № 5 (2023); 363-375 ; Трансляционная медицина; Том 10, № 5 (2023); 363-375 ; 2410-5155 ; 2311-4495

مصطلحات موضوعية: острая токсичность, antiosteoporotic agent, intragastric administration, osteoporosis, preclinical studies, safety, безопасность, внутрижелудочное введение, доклинические исследования, остеопороз

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/878/529; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1944; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1945; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1946; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1947; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1948; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1949; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1950; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1951; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1952; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1953; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1954; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/878/1955; Kanis JA. World Health Organization Scientific Group. Assessment of Osteoporosis at the Primary Health-Care Level Technical Report Sheffield. UK: WHO Collaborating Centre, University of Sheffield; 2008.; National Osteoporosis Foundation 2004. Disease statistics.; National Osteoporosis Foundation. Advocacy News & Updates. American’s; Bolland MJ, Grey AB, Gamble GD, Reid IR. Effect of osteoporosis treatment on mortality: a meta-analysis // J Clin Endocrinol Metab. 2010. No. 95. P.1174–1181.; MacLean C, Newberry S, Maglione M, et al. Systematic review: comparative effectiveness of treatments to prevent fractures in men and women with low bone density or osteoporosis // Ann Intern Med. 2007. No 148. Р.197–213.; Cauley JA, Thompson DE, Ensrud KC, et al. Risk of mortality following clinical fractures // Osteoporosis Int. 2000. No. 11. Р. 556–561.; Гинекология. Национальное руководство / Под ред. В. И. Кулакова, Г. М. Савельевой, И. Б. Манухина. М.: ГЭОТАР-МЕД, 2009. 670 с.; Риггз Б.Л., Мелтон Д. Остеопороз. Этиология, диагностика, лечение. М.: ЗАО «Издательство Бином». 2000. С. 309–313.; International Osteoporosis Foundation. 2010. 10. EFFO and NOF. Who are candidates for prevention and treatment for osteoporosis? // Osteoporos Int. 1997. No. 7. Р. 1–32.; Management of Osteoporosis in Postmenopausal Women: 2010 Position Statement of The North American Menopause Society // Menopause. 2010. Vol. 17. No 1. Р. 25–54.; Пошивалов В.П. Фармакоэтология: сборник статей // Ин-т фармакологии им. А. В. Вальдмана ПСПбГМУ им. акад. И. П. Павлова / Cост. проф. Э. Э. Звартау. СПб: “Copy-Service”, 1997. 104 с.; Лесняк О.М. Аудит состояния проблемы остеопороза в Российской Федерации // Профилактическая медицина. 2011. № 2. С. 7–10.; Кеттайл В.М., Арки Р.А. Патофизиология эндокринной системы. Пер. с англ. М.: Бином. 2010. 335 с.; Поворознюк В.В., Григорьева Н.В. Менопауза и остеопороз. Киев: Здоровье. 2004. 356 с.; Митохондриальные процессы во временной организации жизнедеятельности: сборник / Под ред. М. Н. Кондрашовой, В. В.Дынника, Ю. Г. Каминского и др. Пущино, 1978. 182 с.; Митохондрий в патологии: сборник / Под ред. М. Н. Кондрашовой, Ю. Г. Каминского, Е. И. Маевского, Е. В. Гришина. Пущино, 2001. 258 с.; Маевский Е.И., Гришина Е.В., Хаустова Я.В. и др. Вновь о препаратах, содержащих сукцинат // Гастроэнтерология Санкт-Петербурга. 2017. № 1. С. 91–92.; Маевский Е.И., Рощенфельд А.С., Гришина Е.В., Кондрашова М.Н. Коррекция метаболического ацидоза путем поддержания функций митохондрий: монография. Пушино, ИТЭБ РАН, 2001. 155 с.; Маевский Е.И., Учитель М.Л., Байрамов А.А. и др. Коррекция гормональной активности субстратными композициями у мужчин и женщин // Гастроэнтерология Санкт-Петербурга. 2019. № 2–3. С. 55–56.; Справочник. Физиологические, биохимические и биометрические показатели нормы экспериментальных животных / Под ред. В. Г. Макарова, М. Н. Макаровой. СПб: ООО «Издательство «ЛЕМА». 2013. 116 с.; Замараева Т.В. Метод определения содержания коллагеновых белков по оксипролину // Современные методы в биохимии. М.: Медицина, 1977. C. 262–264.; Котельников Г.П., Булгаков С.В. Остеопороз. М. ГЕОТАР-Медиз. 2010. 504 с.; Кроненберг Г.М., Мелмед Ш., Полонски К.С., Ларсен П.Р. Эндокринология по Вильямсону. Репродуктивная эндокринология. Пер с англ. М.: Рид Элсивер. 2011. 410 с.; Ходжкин С. Клиника Мэйо об Остеопорозе. Пер. с англ. М.: Астрель. 2007. 237 с.; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/878

الاتاحة: https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/878
https://doi.org/10.18705/2311-4495-2023-10-5-363-375

المؤلفون: S. S. Smirnov, E. A. Shchepkina, L. A. Shilenko, E. K. Samsonenko, N. A. Anikin, M. V. Mametov, Z. I. Chepurnoy, S. E. Voronin, M. D. Gerko, D. Yu. Ivkin, A. A. Karpov, С. С. Смирнов, Е. А. Щепкина, Л. А. Шиленко, Е. К. Самсоненко, Н. А. Аникин, М. В. Маметов, З. И. Чепурной, С. Е. Воронин, М. Д. Герко, Д. Ю. Ивкин, А. А. Карпов

المساهمون: Исследование выполнено при финансовой поддержке государственного задания № 122041800020-2.

المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 7, № 5-2 (2022); 268-279 ; 2587-9596 ; 2541-9420

مصطلحات موضوعية: большеберцовая кость, pseudarthrosis, rabbits, fracture, tibia, ложный сустав, кролики, перелом

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3848/2450; Kurklu M, Yurttas Y, Kose O, Demiralp B, Yuksel HY, Komurcu M. Adjunctive hyperbaric oxygen therapy in the treatment of atrophic tibial nonunion with Ilizarov external fixator: A radiographic and scintigraphic study in rabbits. Acta Orthop Traumatol Turc. 2012; 46(2): 126-131. doi:10.3944/AOTT.2012.2586; Kullmann L, Wouters HW. Model-experiment in congenital pseudarthrosis of the leg. Arch Orthop Unfallchir. 1972; 73(1): 55-65. doi:10.1007/BF00419071; Гюльназарова С.В., Штин В.П. Лечение ложных суставов. Теория и практика метода дистракции. 1992.; Bhandari M, Tornetta P 3rd, Sprague S, Najibi S, Petrisor B, Griffith L, et al. Predictors of reoperation following operative management of fractures of the tibial shaft. J Orthop Trauma. 2003; 17(5): 353-361. doi:10.1097/00005131-200305000-00006; Schemitsch EH, Bhandari M, Guyatt G, DW, Swiontkowski M, Tornetta P, et al. Prognostic factors for predicting outcomes after intramedullary nailing of the tibia. J Bone Joint Surg Am. 2012; 94(19): 1786-1793. doi:10.2106/JBJS.J.01418; Mills LA, Aitken SA, Simpson A. The risk of non-union per fracture: current myths and revised figures from a population of over 4 million adults. Acta Orthop. 2017; 88(4): 434-439. doi:10.1080/17453674.2017.1321351; Schmidhammer R, Zandieh S, Mittermayr R, Pelinka LE, Leixnering M, Hopf R, et al. Assessment of bone union/nonunion in an experimental model using microcomputed technology. J Trauma. 2006; 61(1): 199-205. doi:10.1097/01.ta.0000195987.57939.7e; Calori GM, Mazza EL, Mazzola S, Colombo A, Giardina F, Romano F, et al. Non-unions. Clin Cases Miner Bone Metab. 2017; 14(2): 186-188. doi:10.11138/ccmbm/2017.14.1.186; Барабаш А.П., Барабаш Ю.А. Ложные суставы. В: Миронов А.П., Котельников Г.П. (ред.). Ортопедия: национальное руководство; 2-е изд. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2013: 712-743.; Горидова Л.Д., Романенко К.К. Несращение плечевой кости (факторы риска). Ортопедия, травматология и протезирование. 2000; (3): 72-76.; Bezstarosti H, Metsemakers WJ, van Lieshout EMM, Voskamp LW, Kortram K, McNally MA, et al. Management of criticalsized bone defects in the treatment of fracture-related infection: A systematic review and pooled analysis. Arch Orthop Trauma Surg. 2021; 141(7): 1215-1230. doi:10.1007/s00402-020-03525-0; Ekholm EC, Hietaniemi K, Maatta A, Vuorio E, Paavolainen P, Penttinen RP. Extended expression of cartilage components in experimental pseudoarthrosis. Connect Tissue Res. 1995; 31(3): 211-218. doi:10.3109/03008209509010812; Лукин А.В. Ошибки и осложнения при оперативном лечении несращений костей. Вестник хирургии им. И.И. Грекова. 1991; (5): 127-129.; Hermansson L, Bodin L, Wranne L. Upper limb deficiencies in Swedish children – A comparison between a population-based and a clinic-based register. Early Hum Dev. 2001; 63(2): 131-144. doi:10.1016/s0378-3782(01)00163-3; Wang JW, Weng LH. Treatment of distal femoral nonunion with internal fixation, cortical allograft struts, and autogenous bone-grafting. J Bone Joint Surg Am. 2003; 85(3): 436-440. doi:10.2106/00004623-200303000-00006; Liao JC, Chen WJ, Niu CC, Chen LH. Effects of low-intensity pulsed ultrasound on spinal pseudarthrosis created by nicotine administration: A model of lumbar posterolateral pseudarthrosis in rabbits. J Ultrasound Med. 2015; 34(6): 1043-1050. doi:10.7863/ultra.34.6.1043; Jager M, Wassenaar D, Busch A, Haversath M. Pseudarthroses. Orthopade. 2020; 49(6): 547-560. doi:10.1007/s00132-020-03920-w; van Basten Batenburg M, Houben IB, Blokhuis TJ. The Non- Union Scoring System: An interobserver reliability study. Eur J Trauma Emerg Surg. 2019; 45(1): 13-19. doi:10.1007/s00068-017-0796-4; Calori GM, Colombo M, Mazza EL, Mazzola S, Malagoli E, Marelli N, et al. Validation of the Non-Union Scoring System in 300 long bone non-unions. Injury. 2014; 45(Suppl 6): S93-S97. doi:10.1016/j.injury.2014.10.030; Sen MK, Miclau T. Autologous iliac crest bone graft: Should it still be the gold standard for treating nonunions? Injury. 2007; 38(Suppl 1): S75-S80. doi:10.1016/j.injury.2007.02.012; Campana V, Milano G, Pagano E, Barba M, Cicione C, Salonna G, et al. Bone substitutes in orthopaedic surgery: From basic science to clinical practice. J Mater Sci Mater Med. 2014; 25(10): 2445-2461. doi:10.1007/s10856-014-5240-2; Ahlmann E, Patzakis M, Roidis N, Shepherd L, Holtom P. Comparison of anterior and posterior iliac crest bone grafts in terms of harvest-site morbidity and functional outcomes. J Bone Joint Surg Am. 2002; 84(5): 716-720. doi:10.2106/00004623-200205000-00003; Rokn AR, Khodadoostan MA, Reza Rasouli Ghahroudi AA, Motahhary P, Kharrazi Fard MJ, Bruyn HD, et al. Bone formation with two types of grafting materials: A histologic and histomorphometric study. Open Dent J. 2011; 5: 96-104. doi:10.2174/1874210601105010096; Chen J, Ashames A, Buabeid MA, Fahelelbom KM, Ijaz M, Murtaza G. Nanocomposites drug delivery systems for the healing of bone fractures. Int J Pharm. 2020; 585: 119477. doi:10.1016/j.ijpharm.2020.119477; Ferreira ML, Silva PC, Pereira Lde P, Franco RS, Mello NB, Amaral AC, et al. Experimental model in rats for the development of pseudoarthrosis. Rev Col Bras Cir. 2009; 36(6): 514-518. doi:10.1590/s0100-69912009000600010; Sasai H, Fujita D, Seto E, Denda Y, Imai Y, Okamoto K, et al. Outcome of limb fracture repair in rabbits: 139 cases (2007–2015). J Am Vet Med Assoc. 2018; 252(4): 457-463. doi:10.2460/javma.252.4.457; Rich GA. Rabbit orthopedic surgery. Vet Clin North Am Exot Anim Pract. 2002; 5(1): 157-168,vii. doi:10.1016/s1094-9194(03)00051-3; White AA 3rd, Panjabi MM, Southwick WO. The four biomechanical stages of fracture repair. J Bone Joint Surg Am. 1977; 59(2): 188-192.; Lipinsky PV, Sirotin IV, Skoroglyadov AV, Ivkov AV, Oettinger AP, Krynetskiy EE, et al. Effects of prostaglandin E1 on callus formation in rabbits. BMC Musculoskelet Disord. 2015; 16: 247. doi:10.1186/s12891-015-0695-y; Gumerman LW, Fogel SR, Goodman MA, Hanley EN Jr, Kappakas GS, Rutkowski R, et al. Experimental fracture healing: evaluation using radionuclide bone imaging: concise communication. J Nucl Med. 1978; 19(12): 1320-1323.; Liu X, Lyon R, Meier HT, Thometz J, Haworth ST. Effect of lower-level laser therapy on rabbit tibial fracture. Photomed Laser Surg. 2007; 25(6): 487-494. doi:10.1089/pho.2006.2075; Тарасова А.С., Луцай В.И., Матвеева М.В. Гистологическая оценка эффективности применения внутрикостных трофических блокад при экспериментальной остеотомии большеберцовой кости у кроликов. Вопросы нормативноправового регулирования в ветеринарии. 2020: (1): 198-200.; Ахтямов И.Ф., Шакирова Ф.В., Клюшкина Ю.А., Бакланова Д.А., Гатина Э.Б., Алиев Э.О. Анализ регенеративного процесса в области перелома большеберцовой кости (экспериментальное исследование). Травматология и ортопедия России. 2016; 22(1): 100-107.; Цяо Г., Тишков Н.В., Гольдберг О.А., Лепехова С.А., Гуманенко В.В., Тихонов Е.В. Способ моделирования ложного сустава при переломе костей голени и устройство для его осуществления: Патент № 2523622 Рос. Федерация; МПК G09B 23/28 (2006.01); A61B 17/56 (2006.01). № 2013113249/14; заявл. 25.03.2013; опубл. 20.07.2014. Бюл. № 20.; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3848

الاتاحة: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3848
https://doi.org/10.29413/ABS.2022-7.5-2.27