-
1Academic Journal
المؤلفون: O. V. Kalyuzhin, O. V. Proskurina, S. A. Sukhanova, N. V. Novikova, N. A. Kolganova, О. B. Калюжин, О. В. Проскурина, С. А. Суханова, Н. В. Новикова, Н. А. Колганова
المصدر: Bulletin of Siberian Medicine; Том 22, № 1 (2023); 23-32 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 22, № 1 (2023); 23-32 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2023-22-1
مصطلحات موضوعية: дегрануляция, Staphylococcus aureus, thermophilic strain, asthma model, allergic inflammation, mast cells, basophils, degranulation, термофильный штамм, модель астмы, аллергическое воспаление, тучные клетки, базофилы
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5128/3345; Chedid L., Audibert F. Chemically defined bacterial products with immunopotentiating activity. J Infect Dis. 1977;136(Suppl.):S246–S251. DOI:10.1093/infdis/136.supplement.s246.; Le Garrec Y. Immunomodifiers of bacterial origin. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 1986;9(2–3):137–141. DOI:10.1016/0147-9571(86)90005-6.; Пронин А.В., Санин А.В., Гинцбург А.Л. Бактериальные иммуномодуляторы и их место в иммуномодулирующей терапии. В кн.: Иммунотерапия. Руководство для врачей; под ред. Р.М. Хаитова, Р.И. Атауллаханова, А.Е. Шульженко. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2000:191–212.; Терехова Е.П., Терехов Д.В., Себекина О.В. Применение препарата Рузам® в лечении и профилактике аллергических заболеваний. Практическая аллергология. 2021;1:54– 64. DOI:10.46393/2712-9667_2021_1_54-64.; Чучалин А.Г., Ковалева В., Колганова Н.А. Рузам – новый подход в лечении и профилактике аллергических заболеваний (экспериментальные и клинические данные). Русский медицинский журнал. 2003;11(22):1248–1252.; Ненашева Н.М., Терехова Е.П., Терехов Д.В. Эффективность ингаляционной иммунотерапии Рузамом у больных атопической бронхиальной астмой: влияние на частоту респираторных инфекций и обострений. Пульмонология. 2014;1:52–58. DOI:10.18093/0869-0189-2014-0-1-52-58.; Hutson P.A., Church M.K., Clay T.P., Miller P., Holgate S.T. Early and late-phase bronchoconstriction after allergen challenge of nonanesthetized guinea pigs. I. The association of disordered airway physiology to leukocyte infiltration. Am. Rev. Respir. Dis. 1988;137(3):548–557. DOI:10.1164/ajrccm/137.3.548.; Ковалева В.Л. Методические указания по изучению фармакологических веществ, предназначенных для терапии бронхиальной астмы и других обструктивных заболеваний дыхательных путей. В кн.: Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ: 2-е изд.; под ред. Р.У. Хабриева. М.: Медицина, 2005:483–500.; Nagai H., Tsuji F., Goto S., Koda A. Pharmacological modulation of antigen-induced airway hyperresponsiveness by thromboxane A2 inhibitors in guinea pigs. Biol. Pharm. Bull. 1993;16(11):1099–1103. DOI:10.1248/bpb.16.1099.; Линднер Д.П., Поберий И.А., Родкин М.Я., Ефимов В.С. Морфометрический анализ популяции тучных клеток. Архив патологии. 1980;6:60–64.; Иммунологические методы; пер. с нем. А.П. Тарасова; под ред. Г. Фримеля. М.: Медицина, 1987:472.; Носейкина Е.М., Хвостова А.Е., Ларина Т.И., Митрохин Н.М. Базофилы крови морской свинки как тестовая система для оценки противоаллергической активности химических соединений in vitro. Кубанский научный медицинский вестник. 2011;6(129):96–100.; Rothschild A.M. Mechanisms of histamine release by compound 48-80. Br. J. Pharmacol. 1970;38(1):253–262. DOI:10.1111/j.1476-5381.1970.tb10354.x.; Andersson P. Antigen-induced bronchial anaphylaxis in actively sensitized guinea-pigs. Allergy. 1980;35(1):65–71. DOI:10.1111/j.1398-9995.1980.tb01718.x.; Seder R.A., Paul W.E., Dvorak A.M., Sharkis S.J., KageySobotka A., Niv Y. et al. Mouse splenic and bone marrow cell populations that express high-affinity Fc epsilon receptors and produce interleukin 4 are highly enriched in basophils. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 1991;88(7):2835–2839. DOI:10.1073/pnas.88.7.2835.; Ikeda R.K., Miller M., Nayar J., Walker L., Cho J.Y., McElwain K. et al. Accumulation of peribronchial mast cells in a mouse model of ovalbumin allergen induced chronic airway inflammation: modulation by immunostimulatory DNA sequences. J. Immunol. 2003;171(9):4860–4867. DOI:10.4049/jimmunol.171.9.4860.; Schramm C.M., Puddington L., Wu C., Guernsey L., Gharaee-Kermani M., Phan S.H. et al. Chronic inhaled ovalbumin exposure induces antigen-dependent but not antigen-specific inhalational tolerance in a murine model of allergic airway disease. Am. J. Pathol. 2004;164(1):295–304. DOI:10.1016/S0002-9440(10)63119-7.; Brightling C.E., Bradding P., Symon F.A., Holgate S.T., Wardlaw A.J., Pavord I.D. Mast-cell infiltration of airway smooth muscle in asthma. N. Engl. J. Med. 2002;346(22):1699–1705. DOI:10.1056/NEJMoa012705.; Krystel-Whittemore M., Dileepan K.N., Wood J.G. Mast cell: A multi-functional master cell. Front. Immunol. 2016;6:620. DOI:10.3389/fimmu.2015.00620.; Дзодзикова М.Э. Особенности дегрануляции и апоптоз тучных клеток. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Медицина. 2005;1(29):102–107.; Raveendran V.V., Smith D.D., Tan X., Sweeney M.E., Reed G.A., Flynn C.A. et al. Chronic ingestion of H1-antihistamines increase progression of atherosclerosis in apolipoprotein E-/mice. PLoS One. 2014;9(7):e102165. DOI:10.1371/journal.pone.0102165.; Bery A.I., Shepherd H.M., Li W., Krupnick A.S., Gelman A.E., Kreisel D. Role of tertiary lymphoid organs in the regulation of immune responses in the periphery. Cell Mol. Life Sci. 2022;79(7):359. DOI:10.1007/s00018-022-04388-x.; Halle S., Dujardin H.C., Bakocevic N., Fleige H., Danzer H., Willenzon S. et al. Induced bronchus-associated lymphoid tissue serves as a general priming site for T cells and is maintained by dendritic cells. J. Exp. Med. 2009;206(12):2593– 2601. DOI:10.1084/jem.20091472.; Bradding P., Walls A.F., Holgate S.T. The role of the mast cell in the pathophysiology of asthma. J. Allergy Clin. Immunol. 2006;117(6):1277–1284. DOI:10.1016/j.jaci.2006.02.039.; Williams C.M., Galli S.J. The diverse potential effector and immunoregulatory roles of mast cells in allergic disease. J. Allergy Clin. Immunol. 2000;105(5):847–859. DOI:10.1067/mai.2000.106485.; Cairns J.A., Walls A.F. Mast cell tryptase stimulates the synthesis of type I collagen in human lung fibroblasts. J. Clin. Invest. 1997;99(6):1313–1321. DOI:10.1172/JCI119290.; Gruber B.L., Kew R.R., Jelaska A., Marchese M.J., Garlick J., Ren S., Schwartz L.B. et al. Human mast cells activate fibroblasts: tryptase is a fibrogenic factor stimulating collagen messenger ribonucleic acid synthesis and fibroblast chemotaxis. J. Immunol. 1997;158(5):2310–2317.; Garbuzenko E., Nagler A., Pickholtz D., Gillery P., Reich R., Maquart F.X. et al. Human mast cells stimulate fibroblast proliferation, collagen synthesis and lattice contraction: a direct role for mast cells in skin fibrosis. Clin. Exp. Allergy. 2002;32(2):237–246. DOI:10.1046/j.1365-2222.2002.01293.x.; Nabe T., Matsuya K., Akamizu K., Fujita M., Nakagawa T., Shioe M. et al. Roles of basophils and mast cells infiltrating the lung by multiple antigen challenges in asthmatic responses of mice. Br. J. Pharmacol. 2013;169(2):462–476. DOI:10.1111/bph.12154.; Miyake K., Ito J., Karasuyama H. Role of basophils in a broad spectrum of disorders. Front. Immunol. 2022;13:902494. DOI:10.3389/fimmu.2022.902494.; Chandler C.E., Ernst R.K. Bacterial lipids: powerful modifiers of the innate immune response. F1000Res. 2017;6:F1000 Faculty Rev-1334. DOI:10.12688/f1000research.11388.1.; Krishnaswamy J.K., Jirmo A.C., Baru A.M., Ebensen T., Guzmán C.A., Sparwasser T. et al. Toll-like receptor-2 agonist-allergen coupling efficiently redirects Th2 cell responses and inhibits allergic airway eosinophilia. Am. J. Respir. Cell. Mol. Biol. 2012;47(6):852–863. DOI:10.1165/rcmb.2011-0414OC.; Velasco G., Campo M., Manrique O.J., Bellou A., He H., Arestides R.S. et al. Toll-like receptor 4 or 2 agonists decrease allergic inflammation. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2005;32(3):218–224. DOI:10.1165/rcmb.2003-0435OC.; Ma S.Q., Wei H.L., Zhang X. TLR2 regulates allergic airway inflammation through NF-κB and MAPK signaling pathways in asthmatic mice. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2018;22(10):3138–3146.DOI:10.26355/eurrev_201805_15073.; Kasakura K., Takahashi K., Aizawa T., Hosono A., Kaminogawa S. A TLR2 ligand suppresses allergic inflammatory reactions by acting directly on mast cells. Int. Arch. Allergy Immunol. 2009;150(4):359–369. DOI:10.1159/000226237.; Yu Y., Yip K.H., Tam I.Y., Sam S.W., Ng C.W., Zhang W. et al. Differential effects of the Toll-like receptor 2 agonists, PGN and Pam3CSK4 on anti-IgE induced human mast cell activation. PLoS One. 2014;9(11):e112989. DOI:10.1371/journal.pone.0112989.; Zhang Y.Y., Yu Y.Y., Zhang Y.R., Zhang W., Yu B. The modulatory effect of TLR2 on LL-37-induced human mast cells activation. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2016;470(2):368– 374. DOI:10.1016/j.bbrc.2016.01.037.; https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5128