المؤلفون: Д. В. Осипенко, А. А. Силанов, Ю. А. Трофимович, А. В. Марочков

المصدر: Žurnal Grodnenskogo Gosudarstvennogo Medicinskogo Universiteta, Vol 22, Iss 4, Pp 342-348 (2024)

مصطلحات موضوعية: операции на сердце, искусственное кровообращение, анестезия, кетамин, кортизол, пролактин, эндокринно-метаболический мониторинг, Medicine

وصف الملف: electronic resource

Relation: http://journal-grsmu.by/index.php/ojs/article/view/3179; https://doaj.org/toc/2221-8785; https://doaj.org/toc/2413-0109

URL الوصول: https://doaj.org/article/fef2bca32ba942e2aaf49438acb32285

المؤلفون: Анастасия Владимировна Денисенко, Юлия Михайловна Калинина

المصدر: Novye Issledovaniâ Tuvy, Iss 4, Pp 88-98 (2023)

مصطلحات موضوعية: голова, сердце, язык, фразеология, лингвокультурологический анализ, тувинский язык, русский язык, Communities. Classes. Races, HT51-1595

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://nit.tuva.asia/nit/article/view/1273; https://doaj.org/toc/2079-8482

URL الوصول: https://doaj.org/article/e653b22f014f4d61b4af3605c4b0dfb9

المؤلفون: L. N. Slatova, T. A. Fedorina, E. P. Shatunova, Л. Н. Слатова, Т. А. Федорина, Е. П. Шатунова

المصدر: The Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 39, № 1 (2024); 18-27 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 39, № 1 (2024); 18-27 ; 2713-265X ; 2713-2927

مصطلحات موضوعية: изолированное перфузируемое сердце, myocardium, «heart-on-chip», experimental model, animals, cellular models, isolated perfused heart, миокард, «сердце-на-чипе», экспериментальная модель, животные, клеточные модели

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2180/928; Федеральная служба государственной статистики. Число умерших по основным классам причин смерти. URL: https://rosstat.gov.ru/folder/12781 (15.04.2023).; Федеральная служба государственной статистики. Заболеваемость населения по основным классам болезней. URL: https://rosstat.gov.ru/folder/13721 (15.04.2023).; Buja L.M. Pathobiology of myocardial ischemia and reperfusion injury: models, modes, molecular mechanisms, modulation, and clinical applications. Cardiol. Rev. 2023;31(5):252–264. DOI:10.1097/CRD.0000000000000440.; Ford T.J., Corcoran D., Berry C. Stable coronary syndromes: pathophysiology, diagnostic advances and therapeutic need. Heart. 2018;104(4):284–292. DOI:10.1136/heartjnl-2017-311446.; Lindsey M.L., Bolli R., Canty J.M. Jr., Du X.J., Frangogiannis N.G., Frantz S. et al. Guidelines for experimental models of myocardial ischemia and infarction. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2018;314(4):H812–H838. DOI:10.1152/ajpheart.00335.2017.; Padro T., Manfrini O., Bugiardini R., Canty J., Cenko E., De Luca G. et al. ESC Working Group on Coronary Pathophysiology and Microcirculation position paper on “coronary microvascular dysfunction in cardiovascular disease”. Cardiovasc. Res. 2020;116(4):741–755. DOI:10.1093/cvr/cvaa003.; Van der Velden J., Asselbergs F.W., Bakkers J., Batkai S., Bertrand L., Bezzina C.R. et al. Animal models and animal-free innovations for cardiovascular research: current status and routes to be explored. Consensus document of the ESC Working Group on Myocardial Function and the ESC Working Group on Cellular Biology of the Heart. Cardiovasc. Res. 2022;118(15):3016–3051. DOI:10.1093/cvr/cvab370.; Pitoulis F.G., Watson S.A., Perbellini F., Terracciano C.M. Myocardial slices come to age: an intermediate complexity in vitro cardiac model for translational research. Cardiovasc. Res. 2020;116(7):1275–1287. DOI:10.1093/cvr/cvz341.; Shan X., Lv Z.Y., Yin M.J., Chen J., Wang J., Wu Q.N. The protective effect of cyanidin-3-glucoside on myocardial ischemia-reperfusion injury through ferroptosis. Oxid. Med. Cell. Longev. 2021;2021:8880141. DOI:10.1155/2021/8880141.; Chen T., Vunjak-Novakovic G. In vitro models of ischemia-reperfusion injury. Regen. Eng. Transl. Med. 2018;4(3):142–153. DOI:10.1007/s40883-018-0056-0.; Madonna R., Van Laake L.W., Botker H.E., Davidson S.M., De Caterina R., Engel F.B. et al. ESC Working Group on Cellular Biology of the Heart: position paper for Cardiovascular Research: tissue engineering strategies combined with cell therapies for cardiac repair in ischaemic heart disease and heart failure. Cardiovasc. Res. 2019;115(3):488–500. DOI:10.1093/cvr/cvz010.; Афоничева П.К., Буляница А.Л., Евстрапов А.А. «Орган-на-чипе» – материалы и методы изготовления (обзор). Научное приборостроение. 2019;29(4):3–18. DOI:10.18358/np-29-4-i318.; Yang Q., Xiao Z., Lv X., Zhang T., Liu H. Fabrication and Biomedical Applications of Heart-on-a-chip. Int. J. Bioprint. 2021;7(3):370. DOI:10.18063/ijb.v7i3.370.; Халимова А.А., Коваленко А.В., Парамонов Г.В. «Органы-на-чипе»: оценка перспектив использования в фармацевтической отрасли. Медико-фармацевтический журнал «Пульс». 2022;24(5):81–87. DOI:10.26787/nydha-2686-6838-2022-24-5-81-87.; Häkli M., Kreutzer J., Mäki A.J., Välimäki H., Lappi H., Huhtala H. et al. Human induced pluripotent stem cell-based platform for modeling cardiac ischemia. Sci. Rep. 2021;11(1):4153. DOI:10.1038/s41598-021-83740-w.; Das S.L., Sutherland B.P., Lejeune E., Eyckmans J, Chen C.S. Mechanical response of cardiac microtissues to acute localized injury. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2022;323(4):H738–H748. DOI:10.1152/ajpheart.00305.2022.; Budhathoki S., Graham C., Sethu P., Kannappan R. Engineered aging cardiac tissue chip model for studying cardiovascular disease. Cells Tissues Organs. 2022;211(3):348–359. DOI:10.1159/000516954.; Торопова Я.Г., Осяев Н.Ю., Мухамадияров Р.А. Перфузия изолированного сердца методами Лангендорфа и Нилли: особенности техники и применение в современных исследованиях. Трансляционная медицина. 2014;4:34–39. DOI:10.18705/2311-4495-2014-0-4-34-39.; Байкалов Г.И., Князев Р.А., Ершов К.И., Бахарева К.И., Солдатова М.С., Мадонов П.Г. Изучение влияния иммобилизированных субтилизинов на коронарный кровоток в эксперименте на изолированном сердце крысы. Journal of Siberian Medical Sciences. 2021;3:56–65. DOI:10.31549/2542-1174-2021-3-56-65.; Минасян С.М., Галагудза М.М., Сонин Д.Л., Боброва Е.А., Зверев Д.А., Королев Д.В. и др. Методика перфузии изолированного сердца крысы. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2009;8(4):54–59.; Купцова А.М., Бугров Р.К., Зиятдинова Н.И., Зефиров Т.Л. Изолированное по Лангендорфу сердце крыс после острого экспериментального инфаркта миокарда. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2022;173(6):703–706. DOI:10.47056/0365-9615-2022-173-6-703-706.; Сенокосова Е.А., Крутицкий С.С., Груздева О.В. Антонова Л.В., Скулачев М.В., Григорьев Е.В. Исследование антиоксидантного эффекта митохондриально-направленного антиоксиданта SkQ1 на модели изолированного сердца крысы. Общая реаниматология. 2022;18(4):36–44. DOI:10.15360/1813-9779-2022-4-36-44.; Schechter M.A., Southerland K.W., Feger B.J., Linder D.Jr., Ali A.A., Njoroge L. et al. An isolated working heart system for large animal models. J. Vis. Exp. 2014;(88):51671. DOI:10.3791/51671.; Ronzhina M., Stracina T., Lacinova L., Ondacova K., Pavlovicova M., Marsanova L. et al. Di-4-ANEPPS Modulates Electrical Activity and Progress of Myocardial Ischemia in Rabbit Isolated Heart. Front. Physiol. 2021;12:667065. DOI:10.3389/fphys.2021.667065.; Wang Z., Yao M., Jiang L., Wang L., Yang Y., Wang Q. et al. Dexmedetomidine attenuates myocardial ischemia/reperfusion-induced ferroptosis via AMPK/GSK-3β/Nrf2 axis. Biomed. Pharmacother. 2022:113572. DOI:10.1016/j.biopha.2022.113572.; Rahman A., Li Y., Chan T.K., Zhao H., Xiang Y., Chang X. et al. Large animal models of cardiac ischemia-reperfusion injury: Where are we now? Zool. Res. 2023;44(3):591–603. DOI:10.24272/j.issn.2095-8137.2022.487.; Banstola A., Reynolds J.N.J. The sheep as a large animal model for the investigation and treatment of human disorders. Biology (Basel). 2022;11(9):1251. DOI:10.3390/biology11091251.; Isorni M.A., Casanova A., Piquet J., Bellamy V., Pignon C., Puymirat E. et al. Comparative analysis of methods to induce myocardial infarction in a closed-chest rabbit model. Biomed. Res. Int. 2015;2015:893051. DOI:10.1155/2015/893051.; Özkaynak B., Şahin I., Özenc E., Subaşı C., Oran D.S., Totoz T. et al. Mesenchymal stem cells derived from epicardial adipose tissue reverse cardiac remodeling in a rabbit model of myocardial infarction. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2021;25(12):4372–4384. DOI:10.26355/eurrev_202106_26147.; Contessotto P., Spelat R., Ferro F., Vysockas V., Krivickienė A., Jin C. et al. Reproducing extracellular matrix adverse remodelling of non-ST myocardial infarction in a large animal model. Nat. Commun. 2023;14(1):995. DOI:10.1038/s41467-023-36350-1.; Morrissey P.J., Murphy K.R., Daley J.M., Schofield L., Turan N.N., Arunachalam K. et al. A novel method of standardized myocardial infarction in aged rabbits. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2017;312(5):H959–H967. DOI:10.1152/ajpheart.00582.2016.; Гущин Я.А. Сравнительная анатомия сердца человека и экспериментальных животных. Лабораторные животные для научных исследований. 2021;1:56–67. DOI:10.29296/2618723X-2021-01-06.; Lindsey M.L., Brunt K.R., Kirk J.A., Kleinbongard P., Calvert J.W., de Castro Brás L.E. et al. Guidelines for in vivo mouse models of myocardial infarction. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2021;321(6):H1056– H1073. DOI:10.1152/ajpheart.00459.2021.; Sun Q., Wang K.K., Pan M., Zhou J.P., Qiu X.T., Wang Z.Y. et al. A minimally invasive approach to induce myocardial infarction in mice without thoracotomy. J. Cell Mol. Med. 2018;22(11):5208–5219. DOI:10.1111/jcmm.13708.; Colbert C.M., Shao J., Hollowed J.J., Currier J.W., Ajijola O.A., Fishbein G.A. et al. 3D-printed coronary implants are effective for percutaneous creation of swine models with focal coronary stenosis. J. Cardiovasc. Transl. Res. 2020;13(6):1033–1043. DOI:10.1007/s12265-020-10018-3.; Kleinbongard P., Heusch G. A fresh look at coronary microembolization. Nat. Rev. Cardiol. 2022;19(4):265–280. DOI:10.1038/s41569-021-00632-2.; Bikou O., Tharakan S., Yamada K.P., Kariya T., Gordon A., Miyashita S. et al. A novel large animal model of thrombogenic coronary microembolization. Front. Cardiovasc. Med. 2019;6:157. DOI:10.3389/fcvm.2019.00157.; Wang W., Ye S., Zhang L., Jiang Q., Chen J., Chen X. et al. Granulocyte colony-stimulating factor attenuates myocardial remodeling and ventricular arrhythmia susceptibility via the JAK2-STAT3 pathway in a rabbit model of coronary microembolization. BMC Cardiovasc. Disord. 2020;20(1):85. DOI:10.1186/s12872-020-01385-5.; Абзалилов Т.А., Нурланова С.Н., Баширов И.И., Крылова И.Д., Корунас В.И., Мочалов К.С. и др. Экспериментальное обоснование основных методов реперфузии миокарда с позиции современных представлений о развитии и течении острого коронарного синдрома. Медицинский вестник Башкортостана. 2021;16(6):65–70.; Yin X., Yin X., Pan X., Zhang J., Fan X., Li J. et al. Post-myocardial infarction fibrosis: Pathophysiology, examination, and intervention. Front. Pharmacol. 2023;14:1070973. DOI:10.3389/fphar.2023.; Feng Y., Hemmeryckx B., Frederix L., Lox M., Wu J., Heggermont W. et al. Monitoring reperfused myocardial infarction with delayed left ventricular systolic dysfunction in rabbits by longitudinal imaging. Quant. Imaging Med. Surg. 2018;8(8):754–769. DOI:10.21037/qims.2018.09.05.; Spannbauer A., Mester-Tonczar J., Traxler D., Kastner N., Zlabinger K., Hašimbegović E. et al. Large animal models of cell-free cardiac regeneration. Biomolecules. 2020;10(10):1392. DOI:10.3390/biom10101392.; Robles J.C., Heaps C.L. Adaptations of the endothelin system after exercise training in a porcine model of ischemic heart disease. Microcirculation. 2015;22(1):68–78. DOI:10.1111/micc.12174.; Sorop O., van de Wouw J., Chandler S., Ohanyan V., Tune J.D., Chilian W.M. et al. Experimental animal models of coronary microvascular dysfunction. Cardiovasc. Res. 2020;116(4):756–770. DOI:10.1093/cvr/cvaa002.; Kloner R.A. Stunned and hibernating myocardium: Where are we nearly 4 decades later? J. Am. Heart Assoc. 2020;9(3):e015502. DOI:10.1161/JAHA.119.015502.; Галагудза М.М., Сонин Д.Л., Александров И.В. Гибернация миокарда: молекулярные механизмы, клиническая значимость и методы диагностики. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2019;18(3):9–15. DOI:10.24884/1682-6655-2019-18-3-9-15.; Wang X., Shen X., Weil B.R., Young R.F., Canty J.M., Qu J. Quantitative proteomic and phosphoproteomic profiling of ischemic myocardial stunning in swine. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2020;318(5):H1256– H1271. DOI:10.1152/ajpheart.00713.2019.; Weil B.R., Suzuki G., Canty J.M.Jr. Transmural variation in microvascular remodeling following percutaneous revascularization of a chronic coronary stenosis in swine. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2020;318(3):H696–H705. DOI:10.1152/ajpheart.00502.2019.; Duerr G.D., Dewald D., Schmitz E.J., Verfuerth L., Keppel K., Peigney C. et al. Metallothioneins 1 and 2 modulate inflammation and support remodeling in ischemic cardiomyopathy in mice. Mediators Inflamm. 2016;2016:7174127. DOI:10.1155/2016/7174127.; Ashokprabhu N.D., Quesada O., Alvarez Y.R., Henry T.D. INOCA/ ANOCA: Mechanisms and novel treatments. Am. Heart. J. Plus. 2023;30:100302. DOI:10.1016/j.ahjo.2023.100302.; Van de Wouw J., Sorop O., van Drie R.W.A., van Duin R.W.B., Nguyen I.T.N., Joles J.A. et al. Perturbations in myocardial perfusion and oxygen balance in swine with multiple risk factors: a novel model of ischemia and no obstructive coronary artery disease. Basic Res. Cardiol. 2020;115(2):21. DOI:10.1007/s00395-020-0778-2.; Трисветова Е.Л. Коронарная микрососудистая дисфункция: эпидемиология, клиника, Диагностика и лечение. Рациональная фармакотерапия в кардиологии. 2023;19(2):186–196. DOI:10.20996/1819-6446-2023-04-02.; Schmidt A., Balitzki J., Grmaca L., Vogel J., Boehme P., Boden K. et al. “Digital biomarkers” in preclinical heart failure models – a further step towards improved translational research. Heart Fail. Rev. 2023;28(1):249– 260. DOI:10.1007/s10741-022-10264-4.; Sadraddin H., Gaebel R., Skorska A., Lux C.A., Sasse S., Ahmad B. et al. CD271+ human mesenchymal stem cells show antiarrhythmic effects in a novel murine infarction model. Cells. 2019;8(12):1474. DOI:10.3390/cells8121474.; Lee Y.T., Lin H.Y., Chan Y.W.F., Li K.H.C., To O.T.L., Yan B.P. et al. Mouse models of atherosclerosis: a historical perspective and recent advances. Lipids Health Dis. 2017;16(1):12. DOI:10.1186/s12944-016-0402-5.; Samidurai A., Ockaili R., Cain C., Roh S.K., Filippone S.M., Kraskauskas D. et al. Preclinical model of type 1 diabetes and myocardial ischemia/reperfusion injury in conscious rabbits-demonstration of cardioprotection with rapamycin. STAR Protoc. 2021;2(3):100772. DOI:10.1016/j.xpro.2021.100772.; Bøtker H.E., Hausenloy D., Andreadou I., Antonucci S., Boengler K., Davidson S.M. et al. Practical guidelines for rigor and reproducibility in preclinical and clinical studies on cardioprotection. Basic Res. Cardiol. 2018;113(5):39. DOI:10.1007/s00395-018-0696-8.; Ferrero J.M., Gonzalez-Ascaso A., Matas J.F.R. The mechanisms of potassium loss in acute myocardial ischemia: New insights from computational simulations. Front. Physiol. 2023;14:1074160. DOI:10.3389/fphys.2023.1074160.; Musuamba F.T., Skottheim Rusten I., Lesage R., Russo G., Bursi R., Emili L. et al. Scientific and regulatory evaluation of mechanistic in silico drug and disease models in drug development: Building model credibility. CPT Pharmacometrics Syst. Pharmacol. 2021;10(8):804–825. DOI:10.1002/psp4.12669.; Воропаева О.Ф. Цгоев Ч.А., Шокин Ю.И. Численное моделирование воспалительной фазы инфаркта миокарда. Прикладная механика и техническая физика. 2021;62(3):105–117. DOI:10.15372/PMTF20210310.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2180

الاتاحة: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2180
https://doi.org/10.29001/2073-8552-2024-39-1-18-27

المؤلفون: Кириллова, В. В., Каминская, Л. А., Благодарева, М. С., Мещанинов, В. Н.

مصطلحات موضوعية: БИОХИМИЯ, МИОКАРД, СЕРДЦЕ, ЭНЕРГЕТИЧЕСКИЙ ОБМЕН, ОБМЕН ВЕЩЕСТВ, УЧЕБНО-МЕТОДИЧЕСКОЕ ПОСОБИЕ

وصف الملف: application/pdf

Relation: Биохимия сердца в норме : учебно-методическое пособие / В. В. Кириллова, Л. А. Каминская, М. С. Благодарева [и др.]; под общ. ред. В. Н. Мещанинова. - Екатеринбург : УГМУ, 2024. — 132 с. — ISBN 978-5-00168-060-4. – Загл. с титул. экрана. - Текст : электронный.; http://elib.usma.ru/handle/usma/21168

الاتاحة: http://elib.usma.ru/handle/usma/21168

المؤلفون: Местеховская, Л. А., Соколов, Александр Петрович

مصطلحات موضوعية: труды учёных ТПУ, электронный ресурс, сердце, протезы, характеристики

وصف الملف: application/pdf

Relation: Современные проблемы машиностроения : сборник статей XVI Международной научно-технической конференции, г. Томск, 27 ноября – 1 декабря 2023 г.; Местеховская, Л. А. Совершенствование протезов клапанов сердца / Л. А. Местеховская, А. П. Соколов; Национальный исследовательский Томский политехнический университет // Современные проблемы машиностроения : сборник статей XVI Международной научно-технической конференции, г. Томск, 27 ноября – 1 декабря 2023 г. — Томск : Изд-во ТПУ, 2024. — С. 441-443.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/77370

الاتاحة: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/77370

المؤلفون: М.И. Гурьянов, Е.А. Харитонова, П.К. Яблонский

المصدر: Патология кровообращения и кардиохирургия, Vol 28, Iss 1 (2024)

مصطلحات موضوعية: ишемия сердца, реперфузия сердца, сердце собаки, фибрилляция желудочков, частотно-амплитудная структура фибрилляции желудочков, Surgery, RD1-811

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://journalmeshalkin.ru/index.php/heartjournal/article/view/1276; https://doaj.org/toc/1681-3472; https://doaj.org/toc/2500-3119

URL الوصول: https://doaj.org/article/9a0e7109f57648dab307666b0afa94b5

المؤلفون: Ivan V. Makarov

المصدر: Russian Studies in Culture and Society, Vol 7, Iss 2, Pp 27-51 (2023)

مصطلحات موضوعية: византия, русская философия, кардиогносия, сердце, русская культура, исихазм, подвижничество, нравственность, православие, духовно-нравственные ценности, General Works, Social Sciences

وصف الملف: electronic resource

Relation: http://csjournal.ru/jour/index.php/rscs/article/view/175; https://doaj.org/toc/2576-9782

URL الوصول: https://doaj.org/article/9c2ca687e2944ce789b1bfdbec9bffb3

المؤلفون: Леонидовна, Ким Ирина

المصدر: SCIENTIFIC JOURNAL OF APPLIED AND MEDICAL SCIENCES; Vol. 3 No. 12 (2024): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 148-154 ; НАУЧНЫЙ ЖУРНАЛ ПРИКЛАДНЫХ И МЕДИЦИНСКИХ НАУК; Том 3 № 12 (2024): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 148-154 ; 2181-3469

مصطلحات موضوعية: сердце, микроэлементоз, фиброз ткани

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://sciencebox.uz/index.php/amaltibbiyot/article/view/12760/12366; https://sciencebox.uz/index.php/amaltibbiyot/article/view/12760

الاتاحة: https://sciencebox.uz/index.php/amaltibbiyot/article/view/12760

المؤلفون: Костюк Екатерина Сергеевна, ФГБОУ ВО «Тихоокеанский государственный университет», Ekaterina S. Kostiuk, Pacific National University, Покусаева Наталья Васильевна, Natalia V. Pokusaeva

المصدر: Pedagogy, Psychology, Society; 282-285 ; Педагогика, психология, общество: от теории к практике; 282-285

مصطلحات موضوعية: здоровье, зависимость, молодежь, research, youth, профилактические меры, вред, health, preventive measures, никотин, addiction, побочные эффекты, легкие, сердце, electronic cigarettes, nicotine, harm, side effects, lungs, heart, электронные сигареты

وصف الملف: text/html

Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907688-97-1; https://phsreda.com/e-articles/10561/Action10561-109369.pdf; Менделевич В.Д. Польза и вред электронных сигарет сквозь призму разных терапевтических методологий / В.Д. Менделевич [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://cyberleninka.ru/article/n/polza-i-vred-elektronnyh-sigaret-skvoz-prizmu-raznyh-terapevticheskih-metodologiy; Колин Мендельсон Stop Smoking Start Vaping: The Healthy Truth About Vaping [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://caphraorg.net/wp-content/pdf/stop_smoking_start_vaping_ebook.pdf (дата обращения: 16.11.2021).; Прядухина О.В. Как курение влияет на твой организм. Сигареты, кальяны, вейп. Есть ли плюсы в курительных гаджетах? [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.litres.ru/podcast/olga-viktorovna-prya/kak-kurenie-vliyaet-na-tvoy-organizm-sigarety-kalyany-69879867/; Радио «Комсомольская правда» Курение вейпов также опасно, как и сигарет [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.litres.ru/podcast/tvorcheskiy-kollektiv-programmy/kurenie-veypov-takzhe-opasno-kak-i-sigaret-68888133/ (дата обращения: 16.02.2023).; Малов Ю. За кулисами табачного бизнеса: от индейской трубки до электронной сигареты / Ю. Малов.; https://phsreda.com/files/Books/10561/Cover-10561.jpg?req=109369; https://phsreda.com/article/109369/discussion_platform

الاتاحة: https://phsreda.com/article/109369/discussion_platform
https://phsreda.com/files/Books/10561/Cover-10561.jpg?req=109369

المؤلفون: Саидова М. М, Тешаев Ш. Ж.

المصدر: SCIENTIFIC JOURNAL OF APPLIED AND MEDICAL SCIENCES; Vol. 3 No. 7 (2024): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 86-91 ; НАУЧНЫЙ ЖУРНАЛ ПРИКЛАДНЫХ И МЕДИЦИНСКИХ НАУК; Том 3 № 7 (2024): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 86-91 ; 2181-3469

مصطلحات موضوعية: Морфологические изменения, Сердце, Экспериментальные животные, Ревматоидный артрит, Индукция, Кардиоморфология

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://sciencebox.uz/index.php/amaltibbiyot/article/view/11463/10463; https://sciencebox.uz/index.php/amaltibbiyot/article/view/11463

الاتاحة: https://sciencebox.uz/index.php/amaltibbiyot/article/view/11463

المؤلفون: Ш. Х., Жалилов, М. М., Юсупов, У. X., Собиров.

المصدر: SCIENTIFIC JOURNAL OF APPLIED AND MEDICAL SCIENCES; Vol. 3 No. 5 (2024): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 230-240 ; НАУЧНЫЙ ЖУРНАЛ ПРИКЛАДНЫХ И МЕДИЦИНСКИХ НАУК; Том 3 № 5 (2024): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 230-240 ; 2181-3469

مصطلحات موضوعية: сердце, подагра, ожирение, почки

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://sciencebox.uz/index.php/amaltibbiyot/article/view/10656/9730; https://sciencebox.uz/index.php/amaltibbiyot/article/view/10656

الاتاحة: https://sciencebox.uz/index.php/amaltibbiyot/article/view/10656

المؤلفون: V. V. Pichugin, S. E. Domnin, A. E. Bautin, S. A. Fedorov, S. A. Jourko, M. V. Ryazanov, I. R. Seyfetdinov, Yu. D. Brichkin, В. В. Пичугин, С. Е Домнин, А. Е. Баутин, С. А. Федоров, С. А. Журко, М. В. Рязанов, И. Р. Сейфетдинов, Ю. Д. Бричкин

المصدر: PULMONOLOGIYA; Том 34, № 3 (2024); 364-374 ; Пульмонология; Том 34, № 3 (2024); 364-374 ; 2541-9617 ; 0869-0189

مصطلحات موضوعية: операции на сердце, cardiopulmonary bypass, heart surgery, искусственное кровообращение

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4559/3659; Баутин А.Е., Селемир В.Д., Нургалиева А.И. и др. Ингаляционная терапия оксидом азота, полученным методом синтеза из атмосферного воздуха, в послеоперационном периоде кардиохирургических вмешательств у детей: одноцентровое ретроспективное когортное исследование. Вестник интенсивной терапии им. А.И.Салтанова. 2021; (3): 98–107. DOI:10.21320/1818-474X-2021-3-98-107.; Домнин С.Е. Ингаляционная терапия оксидом азота в профилактике повреждений легких у больных с легочной гипертензией при операциях на клапанах сердца: Дисс. … канд. наук. СПб; 2020. Доступно на: https://www.dissercat.com/content/ingalyatsionnaya-terapiya-oksidom-azota-v-profilaktike-povrezhdenii-legkikh-u-bolnykh-s-lego; Пичугин В.В., Сейфетдинов И.Р., Рязанов М.В. и др. Клиническая оценка эффективности фармакологического прекондиционирования миокарда оксидом азота при операциях с искусственным кровообращением. Клиническая физиология кровообращения. 2020; 17 (3): 203–211. DOI:10.24022/1814-6910-2020-17-3-203-211.; Сейфетдинов И.Р. Кардиопротективное воздействие ингаляционного оксида азота при операциях на клапанах сердца в условиях искусственного кровообращения: Дисс. … канд. наук. СПб; 2021. Доступно на: https://www.dissercat.com/content/kardioprotektivnoe-vozdeistvie-ingalyatsionnogo-oksida-azota-pri-operatsiyakh-na-klapanakh; Пичугин В.В., Домнин С.Е., Сандалкин Е.В. и др. Влияние способа введения газообразного оксида азота на эффективность защиты миокарда при операциях с искусственным кровообращением. Клиническая физиология кровообращения. 2022; 2 (19): 137–146. DOI:10.24022/1814-6910-2022-19-2-137-146.; James C., Millar J.C., Horton S., Brizard C.P. Nitric oxide administration during paediatric cardiopulmonary bypass: a randomised controlled trial. Int. Care Med. 2016; 42 (11): 1744–1752. DOI:10.1007/s00134-016-4420-6.; Kamenshchikov N.O., Mandel I.A., Podoksenov Y.K. et al. Nitric oxide provides myocardial protection when added to the cardiopulmonary bypass circuit during cardiac surgery: randomized trial. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2019; 157 (6): 2328–2336.e1. DOI:10.1016/j.jtcvs.2018.08.117.; Пичугин В.В., Мельников Н.Ю., Сандалкин Е.В. Защита сердца и легких при анестезиолого-перфузионном обеспечении операций на клапанах сердца. Клиническая физиология кровообращения. 2014; (4): 50–59. Доступно на: https://cfc-journal.com/catalog/detail.php?SECTION_ID=941&ID=18670; Пичугин В.В., Бобер В.В., Домнин С.Е. и др. Эффективность методов защиты легких у пациентов с высокой легочной гипертензией при коррекции клапанных пороков сердца. Медицинский альманах. 2017; (3): 130–136. Доступно на: https://cyberleninka.ru/article/n/effektivnost-metodov-zaschity-legkih-u-patsientov-s-vysokoy-legochnoy-gipertenziey-pri-korrektsii-klapannyh-porokov-serdtsa?ysclid=lvh04a3pnf513175990; Шешурина Т.А. Современные лабораторные показатели в оценке повреждения эффективности защиты миокарда при оперативных вмешательствах на сердце: Дисс. … канд. наук. СПб; 2023. Доступно на: https://www.dissercat.com/content/sovremennye-laboratornye-pokazateli-v-otsenke-povrezhdeniya-i-effektivnosti-zashchity-miokar; Olejnik, S., Algina, J. Generalized Eta and Omega squared statistics: measures of effect size for some common research designs. Psychol. Methods. 2003; 8 (4): 434–447. DOI:10.1037/1082-989X.8.4.434.; Каменщиков Н.О., Подоксенов Ю.К., Подоксенов А.Ю. и др. Способ защиты легких от ишемического и реперфузионного повреждения во время кардиохирургических вмешательств с искусственным кровообращением: Патент РФ № 2628643 RU от 21.08.17. Доступно на: https://searchplatform.rospatent.gov.ru/doc/RU2628643C1_20170821; Каменщиков Н.О., Мандель И.А., Подоксенов Ю.К. и др. Защита миокарда от ишемически-реперфузионного повреждения посредством подачи оксида азота в контур экстракорпоральной циркуляции при проведении искусственного кровообращения. Патология кровообращения и кардиохирургия. 2017; 21 (4): 79–86. DOI:10.21688/1681-3472-2017-4-79-86.; Gianetti J., Del Sarto P., Bevilacqua S. et al. Supplemental nitric oxide and its effect on myocardial injury and function in patients undergoing cardiac surgery with extracorporeal circulation. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2004; 127 (1): 44–50. DOI:10.1016/j.jtcvs.2002.08.001.; Checchia P.A., Bronicki R.A., Muenzer J.T. et al. Nitric oxide delivery during cardiopulmonary bypass reduces postoperative morbidity in children – a randomized trial. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2013; 146 (3): 530–536. DOI:10.1016/j.jtcvs.2012.09.100.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4559

الاتاحة: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4559
https://doi.org/10.18093/0869-0189-2024-34-3-364-374

المؤلفون: V. V. Pichugin, A. V. Deryugina, S. E. Domnin, A. S. Shirshin, S. A. Fedorov, S. N. Buranov, S. A. Jourko, M. V. Ryazanov, Yu. D. Brichkin, D. A. Danilova, В. В. Пичугин, А. В. Дерюгина, С. Е. Домнин, А. С. Ширшин, С. А. Федоров, С. Н. Буранов, С. А. Журко, М. В. Рязанов, Ю. Д. Бричкин, Д. А. Данилова

المصدر: PULMONOLOGIYA; Том 34, № 1 (2024); 32-41 ; Пульмонология; Том 34, № 1 (2024); 32-41 ; 2541-9617 ; 0869-0189

مصطلحات موضوعية: операции на сердце, hydrogen, cardiopulmonary bypass, heart surgery, водород, искусственное кровообращение

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4486/3597; Шляхто Е.В., Петрищев Н.Н., Галагудза М.М. и др. Кардиопротекция: фундаментальные и клинические аспекты. СПб: НП-Принт; 2013.; Лалетин Д.А., Баутин А.Е., Рубинчик В.Е. и др. Параллели между гемодинамическим профилем и активностью биомаркеров при различных формах острой сердечной недостаточности в раннем периоде после коронарного шунтирования. Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2015; 12 (2): 27–33. Доступно на: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/16; Yau J.M., Alexander J.H., Hafley G. et al. Impact of perioperative myocardial infarction on angiographic and clinical outcomes following coronary artery bypass grafting (from PRoject of Ex-vivo Vein graft ENgineering via Transfection [PREVENT] IV). Am. J. Cardiol. 2008; 102 (5): 546–551. DOI:10.1016/j.amjcard.2008.04.069.; Borhetti V., Piccin C., Luciani G.B. et al. Postperfusionssyndrom. In: Tschaut R.J., ed. Extrakorporale zirkulation in theorie und praxis. Lengerich, Berlin, Dusseldorf, Leipzig, Riga, Scottdale (USA), Wien, Zagreb: Pabst; 1999: 467–488.; Локшин Л.С., Лурье Г.О., Дементьева И.И. Искусственное и вспомогательное кровообращение в сердечно-сосудистой хирургии: практическое пособие. М.; 1998.; Меньшугин И.Н. Искусственное кровообращение у детей в условиях ганглионарной блокады и пульсирующего потока: руководство для врачей. СПб: Специальная литература; 1998.; Hanssen S.J., Derikx J.P., Vermeulen Windsant I.С. et al. Visceral injury and systemic inflammation in patients undergoing extracorporeal circulation during aortic surgery. Ann. Surg. 2008; 248 (1): 117–125. DOI:10.1097/SLA.0b013e3181784cc5.; Каменщиков Н.О., Подоксенов Ю.К., Мандель И.А. и др. Способ проведения искусственного кровообращения при обеспечении кардиохирургических вмешательств: Патент RU 2611938. Опубл. 01.03.17. Доступно на: https://patents.s3.yandex.net/RU2611938C1_20170301.pdf; Gianetti J., Del Sarto P., Bevilacqua S. et al. Supplemental nitric oxide and its effect on myocardial injury and function in patients undergoing cardiac surgery with extracorporeal circulation. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2004; 127 (1): 44–50. DOI:10.1016/j.jtcvs.2002.08.001.; Checchia P.A., Bronicki R.A., Muenzer J.T. et al. Nitric oxide delivery during cardiopulmonary bypass reduces postoperative morbidity in children – a randomized trial. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2013; 146 (3): 530–536. DOI:10.1016/j.jtcvs.2012.09.100.; James Ch., Millar J.C., Horton S. et al. Nitric oxide administration during paediatric cardiopulmonary bypass: a randomised controlled trial. Intensive Care Med. 2016; 42 (11): 1744–1752. DOI:10.1007/s00134-016-4420-6.; Kamenshchikov N.O., Mandel I.A., Podoksenov Yu.K. et al. Nitric oxide provides myocardial protection when added to the cardiopulmonary bypass circuit during cardiac surgery: randomized trial. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2019; 157 (6): 2328–2336.e1. DOI:10.1016/j.jtcvs.2018.08.117.; Данилова Д.А., Бричкин Ю.Д., Медведев А.П. и др. Использование молекулярного водорода при операциях на сердце в условиях искусственного кровообращения. Современные технологии в медицине. 2021; 13 (1): 71–77. DOI:10.17691/stm2021.13.1.09.; Дорофейков В.В., Шешурина Т.А., Вавилова Т.В. Способ оценки повреждения миокарда и риска развития осложнений после операций на сердце в условиях искусственного кровообращения: Патент RU 2760242. Опубл. 01.03.21. Доступно на: https://yandex.ru/patents/doc/RU2760242C1_20211123; Nagasaka Y., Fernandez B.O., Steinbicker A.U. et al. Nitric oxide pharmacological preconditioning with inhaled nitric oxide (NO): Organ-specific differences in the lifetime of blood and tissue NO metabolites. Nitric Oxide. 2018; 80: 52–60. DOI:10.1016/j.niox.2018.08.006.; Пичугин В.В., Сейфетдинов И.Р., Рязанов М.В. и др. Клиническая оценка эффективности фармакологического прекондиционирования миокарда оксидом азота при операциях с искусственным кровообращением. Клиническая физиология кровообращения. 2020; 17 (3): 203–211. DOI:10.24022/1814-6910-2020-17-3-203-211.; Deryugina A.V., Danilova D.A., Brichkin Y.D. et al. Molecular hydrogen exposure improves functional state of red blood cells in the early postoperative period: a randomized clinical study. Med. Gas Res. 2023; 13 (2): 59–66. DOI:10.4103/2045-9912.356473.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4486

الاتاحة: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4486
https://doi.org/10.18093/0869-0189-2024-34-1-32-41

المؤلفون: S. A. Kryzhanovskii, I. B. Tsorin, E. O. Ionova, S. A. Simonenko, M. B. Vititnova, С. А. Крыжановский, И. Б. Цорин, Е. О. Ионова, С. А. Симоненко, М. Б. Вититнова

المصدر: Pharmacokinetics and Pharmacodynamics; № 2 (2024); 43-49 ; Фармакокинетика и Фармакодинамика; № 2 (2024); 43-49 ; 2686-8830 ; 2587-7836

مصطلحات موضوعية: мозг, alcoholic cardiomyopathy, echocardiography, blood microcirculation, heart, brain, алкогольная кардиомиопатия, эхокардиография, микроциркуляция крови, сердце

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/418/375; Бохан Н.А., Мандель А.И., Максименко Н.Н., Михалева Л.Д. Смертельные исходы при алкогольной зависимости. Наркология. 2007;12:37-40.; Алкогольная болезнь. Поражение внутренних органов : монография / [Моисеев В. С., и др.]; под ред. В. С. Моисеева. М.: ГЭОТАР- Медиа, 2014. 469 с. ISBN: 978-5-9704-2812-2.; Крыжановский С.А., Колик Л.Г., Цорин И.Б., и др. Алкогольная кардиомиопатия: трансляционная модель. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2017;163(5):582-586. doi:10.1007/s10517-017-3865-0.; Соколова О.В. Морфологические изменения ткани миокарда при внезапной сердечной смерти от алкогольной кадиомиопатии. Судебно-медицинская экспертиза. 2016;59(1):3-6. doi:10.17116/sudmed20165913-6.; Соколова О.В., Ягмуров О.Д., Насыров Р.А. Судебно медицинская оценка изменений сосудистого русла ткани миокарда в случаях внезапной сердечной смерти от алкогольной кардиомиопатии. Вестник судебной медицины. 2018;7(3):32-35.; Doggett T.M., Breslin J.W. Acute alcohol intoxication-induced microvascular leakage. Alcohol Clin Exp Res. 2014 Sep;38(9):2414-26. doi:10.1111/acer.12525.; Jalali Z., Khademalhosseini M., Soltani N., Esmaeili Nadimi A. Smoking, alcohol and opioids effect on coronary microcirculation: an update overview. BMC Cardiovasc Disord. 2021 Apr 15;21(1):185. doi:10.1186/s12872-021-01990-y.; Guven G., Hilty M.P., Ince C. Microcirculation: Physiology, Pathophysiology, and Clinical Application. Blood Purif. 2020;49(1-2):143-150. doi:10.1159/000503775.; Slovinski A.P., Hajjar L.A., Ince C. Microcirculation in Cardiovascular Diseases. J Cardiothorac Vasc Anesth. 2019 Dec;33(12):3458-3468. doi:10.1053/j.jvca.2019.08.008.; Miličić D., Jakuš N., Fabijanović D. Microcirculation and Heart Failure. Curr Pharm Des. 2018;24(25):2954-2959. doi:10.2174/1381612824666180625143232.; Функциональная диагностика состояния микроциркуляторно- тканевых систем : колебания, информация, нелинейность : руководство для врачей / А. И. Крупаткин, В. В. Сидоров. — Москва : Книжный дом «Либроком», 2014. — 489 с. ISBN: 978-5-397-04451-6; Сидоров В.В., Рыбаков Ю.Л., Гукасов В.М. Диагностический подход для оценки состояния микроциркуляторно-тканевой системы с использованием лазерных технологий и температурной функциональной пробы. Иноватика и экспертиза. 2018; Вып. 1(22):135-142.; Safar M.E., Rizzoni D., Blacher J., et al. Macro and microvasculature in hypertension: therapeutic aspects. J Hum Hypertens. 2008 Sep;22(9):590-5. doi:10.1038/jhh.2008.43.; Martinez-Lemus L.A., Galiñanes E.L. Matrix metalloproteinases and small artery remodeling. Drug Discov Today Dis Models. 2011 Spring;8(1):21-28. doi:10.1016/j.ddmod.2011.06.002.; Laurent S., Agabiti-Rosei C., Bruno R.M., Rizzoni D. Microcirculation and Macrocirculation in Hypertension: A Dangerous Cross-Link? Hypertension. 2022 Mar;79(3):479-490. doi:10.1161/HYPERTENSIONAHA.121.17962.; Chantler P.D., Frisbee J.C. Arterial function in cardio-metabolic diseases: from the microcirculation to the large conduits. Prog Cardiovasc Dis. 2015 Mar-Apr;57(5):489-96. doi:10.1016/j.pcad.2014.09.005.; Rizzoni D., Rizzoni M., Nardin M., Chiarini G., Agabiti-Rosei C., Aggiusti C., Paini A., Salvetti M. Muiesan M.L. Vascular Aging and Disease of the Small Vessels. High Blood Press Cardiovasc Prev. 2019 Jun;26(3):183- 189. doi:10.1007/s40292-019-00320-w.; Кровообращение / Б. Фолков, Э. Нил; Пер. с англ. Н. М. Верич. Москва: Медицина, 1976. 464 с.; https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/418

الاتاحة: https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/418
https://doi.org/10.37489/2587-7836-2024-2-43-49

المؤلفون: S. A. Kryzhanovskii, I. B. Tsorin, E. O. Ionova, M. B. Vititnova, S. A. Simonenko, L. G. Kolik, С. А. Крыжановский, И. Б. Цорин, Е. О. Ионова, М. Б. Вититнова, С. А. Симоненко, Л. Г. Колик

المصدر: Pharmacokinetics and Pharmacodynamics; № 2 (2024); 26-33 ; Фармакокинетика и Фармакодинамика; № 2 (2024); 26-33 ; 2686-8830 ; 2587-7836

مصطلحات موضوعية: ремоделирование ЛЖ, rats, heart, echocardiography, blood and lymph microcirculation, LV inotropic function, LV remodeling, крысы, сердце, эхокардиография, микроциркуляция крови и лимфы, инотропная функция ЛЖ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/416/373; Jain A., Yelamanchili V.S., Brown K.N., Goel A. Holiday Heart Syndrome. 2024 Jan 16. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2024 Jan.PMID: 30725870.; Cecchi F., Sgalambro A., Baldi M., et al. Microvascular dysfunction, myocardial ischemia, and progression to heart failure in patients with hypertrophic cardiomyopathy. J Cardiovasc Transl Res. 2009 Dec;2(4): 452-61. doi:10.1007/s12265-009-9142-5.; Selthofer-Relatic K., Mihalj M., Kibel A., et al. Coronary Microcirculatory Dysfunction in Human Cardiomyopathies: A Pathologic and Pathophysiologic Review. Cardiol Rev. 2017 Jul/Aug;25(4):165-178. doi:10.1097/CRD.0000000000000140.; Xue F., Zhao S., Tian H., et al. Two way workable microchanneled hydrogel suture to diagnose, treat and monitor the infarcted heart. Nat Commun. 2024 Jan 29;15(1):864. doi:10.1038/s41467-024-45144-y.; Spezzacatene A., Sinagra G., Merlo M., et al. Arrhythmogenic Phenotype in Dilated Cardiomyopathy: Natural History and Predictors of Life- Threatening Arrhythmias. J Am Heart Assoc. 2015;4(10):e002149. doi:10.1161/JAHA.115.002149.; Wess G. Screening for dilated cardiomyopathy in dogs. J Vet Cardiol. 2022;40:51-68. doi:10.1016/j.jvc.2021.09.004.; Haugaa K.H., Grenne B.L., Eek C.H., et al. Strain echocardiography improves risk prediction of ventricular arrhythmias after myocardial infarction. JACC Cardiovasc Imaging. 2013;6(8):841-50. doi:10.1016/j.jcmg.2013.03.005.; Spannbauer A., Traxler D., Zlabinger K., et al. Large Animal Models of Heart Failure With Reduced Ejection Fraction (HFrEF). Front Cardiovasc Med. 2019;6:117. doi:10.3389/fcvm.2019.00117.; Смирнова С.Л., Рощевская И.М., Столярук В.Н., и др. Деполяризация предсердий крыс при экспериментальном моделировании синдрома “праздничного сердца. Доклады Российской академии наук. Науки о жизни. 2020;495(6):616-619. doi:10.31857/S2686738920060232.; Lang R.M., Bierig M., Devereux R.B., et al. Recommendations for chamber quantification: a report from the American Society of Echocardiography's Guidelines and Standards Committee and the Chamber Quantification Writing Group, developed in conjunction with the European Association of Echocardiography, a branch of the European Society of Cardiology. J Am Soc Echocardiogr. 2005 Dec;18(12):1440-63. doi:10.1016/j.echo.2005.10.005.; Функциональная диагностика состояния микроциркуляторно- тканевых систем : колебания, информация, нелинейность: руководство для врачей / А. И. Крупаткин, В. В. Сидоров. — Москва: Книжный дом «Либроком», 2014. 489 с. ISBN: 978-5-397-04451-6.; Сидоров В.В., Рыбаков Ю.Л., Гукасов В.М. Диагностический подход для оценки состояния микроциркуляторно-тканевой системы с использованием лазерных технологий и температурной функциональной пробы. Иноватика и экспертиза. 2018; Вып. 1(22):135-142.; Márquez M.F., Gómez-Flores J., Aranda-Faustro A., et al. Avances recientes en la fisiopatología de la fibrilación auricular [Recent advances in the pathophysiology of atrial fibrillation]. Arch Cardiol Mex. 2009 Dec;79 Suppl 2:18-25. Spanish.; Grubitzsch H., Haverkamp W. Atrial Remodelling : Role in Atrial Fibrillation Ablation. J Atr Fibrillation. 2012 Dec 16;5(4):691. doi:10.4022/jafib.691.; Georgiadis N., Tsarouhas K., Rezaee R., et al. What is considered cardiotoxicity of anthracyclines in animal studies. Oncol Rep. 2020 Sep;44(3):798-818. doi:10.3892/or.2020.7688. Epub 2020 Jul 14. Erratum in: Oncol Rep. 2020 Oct;44(4):1772. doi:10.3892/or.2020.7717.; Малов Ю.С., Обрезан А.Г., Косарев М.М. Диагностика хронической сердечной недостаточности с использованием ультразвукового исследования сердца: все ли мы применяем в практической деятельности? Вестник СПбГУ. 2010; Сер. 11(2):23-31.; Slovinski A.P., Hajjar L.A., Ince C. Microcirculation in Cardiovascular Diseases. J Cardiothorac Vasc Anesth. 2019 Dec;33(12):3458-3468. doi:10.1053/j.jvca.2019.08.008.; Manolis T.A., Apostolopoulos E.J., Manolis A.A., et al. The proarrhythmic conundrum of alcohol intake. Trends Cardiovasc Med. 2022 May;32(4): 237-245. doi:10.1016/j.tcm.2021.03.003.; https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/416

الاتاحة: https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/416
https://doi.org/10.37489/2587-7836-2024-2-26-33

المؤلفون: T. V. Lasukova, M. V. Zykova, L. A. Azarkina, A. S. Gorbunov, I. V. Petrova, M. R. Karpova, Т. B. Ласукова, М. В. Зыкова, Л. А. Азаркина, А. С. Горбунов, И. В. Петрова, М. Р. Карпова

المساهمون: The work was carried out with the financial support of the Ministry of Health of the Russian Federation (state task 056-00071-22-02)., Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства здравоохранения Российской Федерации (государственное задание № 056-00071-22-02).

المصدر: The Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 38, № 4 (2023); 243-249 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 38, № 4 (2023); 243-249 ; 2713-265X ; 2713-2927

مصطلحات موضوعية: NO-синтаза, peat, isolated heart, cardiovascular effects NO-synthasa, торф, изолированное сердце, кардиоваскулярные эффекты

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2074/921; Бузлама А.В., Чернов Ю.Н. Анализ фармакологических свойств, механизмов действия и перспектив применения гуминовых веществ в медицине. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2010;73(9):43–48. DOI:10.30906/0869-2092-2010-73-9-43-48.; Дымбрылова О.Н., Якимова Т.В., Венгеровский А.И. Влияние экстрактов растений на инсулинорезистентность при экспериментальном сахарном диабете. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2022;37(3):128–135. DOI:10.29001/2073-8552-2022-37-3-128-135.; Ласукова Т.В., Зыкова М.В., Белоусов М.В., Горбунов А.С., Логвинова Л.А., Дыгай А.М. Роль NO-синтазы в реализации кардиопротективного эффекта соединений гуминовой природы на модели ишемии и реперфузии изолированного сердца крыс. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2018;166(11):537541. DOI:10.1007/s10517-019-04399-y.; Hseu Y.C., Wang S.Y., Chen H.Y. Humic acid induces the generation of nutric oxide in human umbilical vein endothelial cells: stimulation of nutric oxide synthase during cell injuri. Free radical biology & medicine. 2002;32(7):619629. DOI:10.1016/s0891-5849(02)00752-9.; Трофимова Е.С., Зыкова М.В., Лигачёва А.А., Шерстобоев Е.Ю., Жданов В.В., Белоусов М.В. и др. Влияние гуминовых кислот торфа различного генеза на продукцию оксида азота in vitro. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2016;161(5):629638. DOI:10.1007/s10517-016-3486-z.; Zykova M.V., Schepetkin I.A., Belousov M.V., Krivoshchekov S.V., Logvinova L.A., Bratishko K.A. et al. Physicochemical characterization and antioxidant activity of humic acids isolated from peat of various origins. Molecules. 2018;23(4):753. DOI:10.3390/molecules23040753.; Зыкова М.В., Трофимова Е.С., Кривощеков С.В., Лигачёва А.А., Данилец М.Г., Логвинова Л.А. и др. Спектральные параметры и биологическая активность высокомолекулярных соединений гуминовой природы. Бюллетень сибирской медицины. 2017;16(1):36–49. DOI:10.20538/16820363-2017-1-36–49.; Zaccone C., Miano T.M., Shotyk W. Qualitative comparison between raw peat and related humic acids in an ombrotrophic bog profile. Organic Geochemistry. 2007;38(1):151–160. DOI:10.1016/J.ORGGEOCHEM.2006.06.023.; Орлов Д. С. Гумусовые кислоты почв и общая теория гумификации. Москва: МГУ; 1990:325.; Chen J.С., Gu B., LeBoeuf E.J. Pan H., Dai S. Spectroscopic characterization of the structural and functional properties of natural organic matter fractions. Chemosphere. 2002;48(1):59–68. DOI:10.1016/s0045-6535(02)00041-3.; Kiprop A.K., J-Coumon M-C., Pourtier E., Kimutai S., Kirui S. Synthesis of humic and fulvic acids and their characterization using optical spectroscopy (ATR-FTIR and UV-Visible). Int. J. Appl. Sci. Technol. 2013;3(8):28–35.; Van Krevelen D.W. Graphical-statistical method for investigation of the structure of coal. Fuel. 1950;29:228–269.; Massion P.B., Feron O., Dessy C., Balligand J.-L. Role of nitric oxide in the cardiovascular and renal systems. Int. J. Mol. Sci. 2003;93:388–398. DOI:10.3390/ijms19092605.; Зарипова Р.И., Зиятдинова Н.И., Зефиров Т.Л. Влияние блокады NO-синтаз на сократимость миокарда гипокинезированных крыс при стимуляции β-адренорецепторов. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2016;161(2):169–172. DOI:10.1007/s10517016-3378-2.; Ziolo M.T., Kohr M.J., Wang H. Nitric oxide signaling and the regulation of myocardial function. J. Mol. Cel. Cardiol. 2008;45(5):625–632. DOI:10.1016/j.yjmcc.2008.07.015.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2074

الاتاحة: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2074
https://doi.org/10.29001/2073-8552-2023-38-4-243-249

المؤلفون: M. V. Chistyakova, A. V. Govorin, E. V. Goncharova, N. N. Kushnarenko, V. A. Mudrov, T. V. Kalinkina, Ya. V. Kudryavtseva, М. В. Чистякова, А. В. Говорин, Е. В. Гончарова, Н. Н. Кушнаренко, В. А. Мудров, Т. В. Калинкина, Я. В. Кудрявцева

المصدر: The Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 38, № 4 (2023); 151-158 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 38, № 4 (2023); 151-158 ; 2713-265X ; 2713-2927

مصطلحات موضوعية: левый желудочек, heart, morpho-functional changes, left ventricle, сердце, морфофункциональные изменения

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2063/925; Libby P., Lüscher T. COVID-19 is, in the end, an endothelial disease. Eur. Heart J. 2020;41(32):3038–3044. DOI:10.1093/eurheartj/ehaa623.; Идрисова Г.Б., Галикеева А.Ш., Шарафутдинов М.А., Зиннурова А.Р., Валиев А.Ш. Особенности проявлений хронических заболеваний после перенесенной коронавирусной инфекции COVID-19. Уральский медицинский журнал. 2022;21(3):15–20. DOI:10.52420/2071-5943-2022-21-3-15-20.; Xiong T.Y., Redwood S., Prendergast B., Chen M. Coronaviruses and the cardiovascular system: acute and long-term implications. Eur. Heart J. 2020;41(19):1798–1800. DOI:10.1093/eurheartj/ehaa231.; Basso C., Leone O., Rizzo S., De Gaspari M., van der Wal A.C., Aubry M.C. et al. Pathological features of COVID-19-associated myocardial injury: a multicentre cardiovascular pathology study. Eur. Heart J. 2020;41(39):3827–3835. DOI:10.1093/eurheartj/ehaa664.; Dolhnikoff M., Ferreira Ferranti J., de Almeida Monteiro R.A., Duarte-Neto A.N., Soares Gomes-Gouvêa M., Viu Degaspare N. et al. SARSCoV-2 in cardiac tissue of a child with COVID-19-related multisysteminfl ammatory syndrome. Lancet Child Adolesc. Health. 2020;4(10):790–794. DOI:10.1016/S2352-4642(20)30257-1.; Daniels C.J., Rajpal S., Greenshields J.T., Rosenthal G. L., Chung E.H., Terrin M. et al. Prevalence of clinical and subclinical myocarditis in competitive athletes with recent SARS-CoV-2 Infection: Results from the bigten COVID-19 cardiac registry. JAMA Cardiol. 2021;6(9):1078–1087. DOI:10.1001/jamacardio.2021.2065.; Puntmann V.O., Carerj M.L., Wieters I., Fahim M., Arendt C., Hoffmann J. et al. Outcomes of cardiovascular magnetic resonance imaging in patients recently recovered from coronavirus disease 2019 (COVID-19). JAMA Cardiol. 2020;5(11):1265–1273. DOI:10.1001/jamacardio.2020.3557.; Шелковникова Т.А., Максимова А.С., Рюмшина Н.И., Мочула О.В., Ваизов В.Х., Усов В.Ю. и др. Обобщенный портрет пациента одного кардиологического центра в период пандемии COVID-19 по данным магнитно-резонансной томографии сердца с парамагнитным контрастным усилением. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2022;37(4):105–113. DOI:10.29001/20738552-2022-37-4-105-113.; Ярославская Е.И., Криночкин Д.В., Широков Н.Е., Горбатенко Е.А., Гультяева Е.П., Гаранина В.Д. и др. Клинико-эхокардиографический профиль пациентов, перенесших пневмонию COVID-19, через год после выписки в зависимости от глобальной продольной деформации левого желудочка. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2022;37(4):52–62. DOI:10.29001/2073-8552-2022-37-4-52-62.; Lindner D., Fitzek A., Bräuninger H., Aleshcheva G., Edler C., Meissner K. et al. Association of cardiac infection with SARS-CoV-2 in confirmed COVID-19 autopsy cases. JAMA Cardiol. 2020;5(11):1281– 1285. DOI:10.1001/jamacardio.2020.3551.; Kogan E., Berezovskiy Y., Blagova O., Kukleva A., Semyonova L., Gretsov E. et al. Morphologically, immunohistochemically and PCR proven lymphocytic viral peri-, endo-, myocarditis in patients with fatal COVID-19. Diagn. Pathol. 2022;17(1):31. DOI:10.1186/s13000-02201207-6.; Gopinathannair R., Merchant F.M., Lakkireddy D.R., Etheridge S.P., Feigofsky S., Han J.K. et al. COVID-19 and cardiac arrhythmias: A global perspective on arrhythmia characteristics and management strategies. J. Interv. Card. Electrophysiol. 2020;59(2):329–336. DOI:10.1007/ s10840-020-00789-9.; Орлов Ф.А., Зайцев А.А., Кубенский Г.Е., Пантюхова Т.Н. Оценка длительности интервала QT у пациентов с COVID-19 на фоне лечения гидроксихлорохином и азитромицином. Consilium Medicum. 2020;22(12):15–19. DOI:10.26442/20751753.2020.12.200540.; Мудров В.А. Алгоритмы статистического анализа количественных признаков в биомедицинских исследованиях с помощью пакета программ SPSS. Забайкальский медицинский вестник. 2020;(1):140– 150. DOI:10.52485/19986173_2020_1_140.; Гамаюнов Д.Ю., Калягин А.Н., Синькова Г.М., Рыжкова О.В., Варавко Ю.О. Постковидный синдром и хроническая сердечная недостаточность: актуальные вопросы. Доктор.Ру. 2022;21(6):13–18. DOI:10.31550/1727-2378-202221-6-13-18.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2063

الاتاحة: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2063
https://doi.org/10.29001/2073-8552-2023-38-4-151-158

المؤلفون: Yu. Yu. Borshchev, D. L. Sonin, S. M. Minasyan, O. V. Borshcheva, I. Yu. Burovenko, M. M. Galagudza, Ю. Ю. Борщев, Д. Л. Сонин, С. М. Минасян, О. В. Борщева, И. Ю. Буровенко, М. М. Галагудза

المساهمون: The study was supported by the Russian Science Foundation grant No. 23-15-00139., Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда (проект № 23-15-00139).

المصدر: The Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 38, № 4 (2023); 86-96 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 38, № 4 (2023); 86-96 ; 2713-265X ; 2713-2927

مصطلحات موضوعية: кардиопротекция, probiotics, antibiotics, heart, ischemia, reperfusion, infarct size, cardioprotection, пробиотики, антибиотики, сердце, ишемия, реперфузия, размер инфаркта

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2057/893; Dai H., Much A.A., Maor E., Asher E., Younis A., Xu Y. et al. Global, regional, and national burden of ischaemic heart disease and its attributable risk factors, 1990–2017: results from the Global Burden of Disease Study 2017. Eur. Heart J. Qual. Care Clin. Outcomes. 2022;8(1):50–60. DOI:10.1093/ehjqcco/qcaa076.; Camacho X., Nedkoff L., Wright F.L., Nghiem N., Buajitti E., Goldacre R. et al. Relative contribution of trends in myocardial infarction event rates and case fatality to declines in mortality: an international comparative study of 1.95 million events in 80.4 million people in four countries. Lancet. Public Health. 2022;7(3):e229–e239. DOI:10.1016/S24682667(22)00006-8.; Perrino C., Ferdinandy P., Bøtker H.E., Brundel B.J.J.M., Collins P., Davidson S.M. et al. Improving translational research in sex-specific effects of comorbidities and risk factors in ischaemic heart disease and cardioprotection: position paper and recommendations of the ESC Working Group on Cellular Biology of the Heart. Cardiovasc. Res. 2021;117(2):367–385. DOI:10.1093/cvr/cvaa155.; Postler T.S., Ghosh S. Understanding the holobiont: how microbial metabolites affect human health and shape the immune system. Cell. Metab. 2017;26(1):110–130. DOI:10.1016/j.cmet.2017.05.008.; Rahman M.M., Islam F., Or-Rashid M.H., Mamun A.A., Rahaman M.S., Islam M.M. et al. The gut microbiota (microbiome) in cardiovascular disease and its therapeutic regulation. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2022;12:903570. DOI:10.3389/fcimb.2022.903570.; Danilo C.A., Constantopoulos E., McKee L.A., Chen H., Regan J.A., Lipovka Y. et al. Bifidobacterium animalis subsp. Lactis 420 mitigates the pathological impact of myocardial infarction in the mouse. Benef. Microbes. 2017;8(2):257–269. DOI:10.3920/BM2016.0119.; Yang T., Santisteban M.M., Rodriguez V., Li E., Ahmari N., Carvajal J.M., Zadeh M. et al. Gut dysbiosis is linked to hypertension. Hypertension. 2015;65(6):1331–1340. DOI:10.1161/HYPERTENSIONAHA.115.05315.; Sun S., Lulla A., Sioda M., Winglee K., Wu M.C., Jacobs D.R.Jr. et al. Gut microbiota composition and blood pressure. Hypertension. 2019;73(5):998–1006. DOI:10.1161/HYPERTENSIONAHA.118.12109.; Yang Z., Wang Q., Liu Y., Wang L., Ge Z., Li Z. et al. Gut microbiota and hypertension: association, mechanisms and treatment. Clin. Exp. Hypertens. 2023;45(1):2195135. DOI:10.1080/10641963.2023.2195135.; Pluznick J. A novel SCFA receptor, the microbiota, and blood pressure regulation. Gut Microbes. 2014;5(2):202–207. DOI:10.4161/ gmic.27492.; Shen X., Li L., Sun Z., Zang G., Zhang L., Shao C. et al. Gut microbiota and atherosclerosis-focusing on the plaque stability. Front. Cardiovasc. Med. 2013;8:668532. DOI:10.3389/fcvm.2021.668532.; Emoto T., Yamashita T., Sasaki N., Hirota Y., Hayashi T., So A. et al. Analysis of gut microbiota in coronary artery disease patients: a possible link between gut microbiota and coronary artery disease. J. Atheroscler. Thromb. 2016;23(8):908–921. DOI:10.5551/jat.32672.; Tuomisto S., Huhtala H., Martiskainen M., Goebeler S., Lehtimäki T., Karhunen P.J. Age-dependent association of gut bacteria with coronary atherosclerosis: Tampere Sudden Death Study. PLoS One. 2019;14(8):e0221345. DOI:10.1371/journal.pone.0221345.; Oktaviono Y.H., Dyah Lamara A., Saputra P.B.T., Arnindita J.N., Pasahari D., Saputra M.E. et al. The roles of trimethylamine-N-oxide in atherosclerosis and its potential therapeutic aspect: A literature review. Biomol. Biomed. 2023;online ahead of print. DOI:10.17305/bb.2023.8893.; Jia B., Zou Y., Han X., Bae J.W., Jeon C.O. Gut microbiome-mediated mechanisms for reducing cholesterol levels: implications for ameliorating cardiovascular disease. Trends Microbiol. 2023;31(1):76–91. DOI:10.1016/j.tim.2022.08.003.; Jia Q., Li H., Zhou H., Zhang X., Zhang A., Xie Y. et al. Role and effective therapeutic target of gut microbiota in heart failure. Cardiovasc. Ther. 2019;2019:5164298. DOI:10.1155/2019/5164298.; Mamic P., Chaikijurajai T., Tang W.H.W. Gut microbiome – a potential mediator of pathogenesis in heart failure and its comorbidities: State-ofthe-art review. J. Mol. Cell. Cardiol. 2021;152:105–117. DOI:10.1016/j.yjmcc.2020.12.001.; Tang W.H.W., Bäckhed F., Landmesser U., Hazen S.L. Intestinal microbiota in cardiovascular health and disease: JACC State-of-the-Art Review. J. Am. Coll. Cardiol. 2019;73(16):2089–2105. DOI:10.1016/j.jacc.2019.03.024.; Nesci A., Carnuccio C., Ruggieri V., D’Alessandro A., Di Giorgio A., Santoro L et al. Gut microbiota and cardiovascular disease: evidence on the metabolic and inflammatory background of a complex relationship. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(10):9087. DOI:10.3390/ijms24109087.; Cao H., Zhu Y., Hu G., Zhang Q., Zheng L. Gut microbiome and metabolites, the future direction of diagnosis and treatment of atherosclerosis? Pharmacol. Res. 2023;187:106586. DOI:10.1016/j.phrs.2022.106586.; Шляхто Е.В., Петрищев Н.Н., Галагудза М.М., Власов Т.Д., Нифонтов Е.М. Кардиопротекция: фундаментальные и клинические аспекты. CПб.: НП-Принт; 2013:399.; Lam V., Su J., Koprowski S., Hsu A., Tweddell J.S., Rafiee P. et al. Intestinal microbiota determine severity of myocardial infarction in rats. FASEB J. 2012;26(4):1727–1735. DOI:10.1096/fj.11-197921.; Gan X.T., Ettinger G., Huang C.X., Burton J.P., Haist J.V. et al. Probiotic administration attenuates myocardial hypertrophy and heart failure after myocardial infarction in the rat. Circ. Heart Fail. 2014;7(3):491–499. DOI:10.1161/CIRCHEARTFAILURE.113.000978.; Lam V., Su J., Hsu A., Gross G.J., Salzman N.H., Baker J.E. Intestinal microbial metabolites are linked to severity of myocardial infarction in rats. PLoS One. 2016;11(8):e0160840. DOI:10.1371/journal.pone.0160840.; Liu Z., Liu H.Y., Zhou H., Zhan Q., Lai W., Zeng Q. et al. Moderate-intensity exercise affects gut microbiome composition and influences cardiac function in myocardial infarction mice. Front. Microbiol. 2017;8:1687. DOI:10.3389/fmicb.2017.01687.; Sadeghzadeh J., Vakili A., Sameni H.R., Shadnoush M., Bandegi A.R., Zahedi Khorasani M. The effect of oral consumption of probiotics in prevention of heart injury in a rat myocardial infarction model: a histopathological, hemodynamic and biochemical evaluation. Iran Biomed. J. 2017;21(3):174–181. DOI:10.18869/acadpub.ibj.21.3.174.; Borshchev Y.Y., Minasian S.M., Burovenko I.Y., Borshchev V.Y., Protsak E.S., Semenova N.Y. et al. Effects of tetracycline on myocardial infarct size in obese rats with chemically-induced colitis. PLoS One. 2019;14(11):e0225185. DOI:10.1371/journal.pone.0225185.; Trinei M., Carpi A., Menabo’ R., Storto M., Fornari M., Marinelli A. et al. Dietary intake of cyanidin-3-glucoside induces a long-lasting cardioprotection from ischemia/reperfusion injury by altering the microbiota. J. Nutr. Biochem. 2022;101:108921. DOI:10.1016/j.jnutbio.2021.108921.; Borshchev Y.Y., Burovenko I.Y., Karaseva A.B., Minasian S.M., Protsak E.S., Borshchev V.Y. et al. Probiotic therapy with Lactobacillus acidophilus and Bifidobacterium animalis subsp. lactis results in infarct size limitation in rats with obesity and chemically induced colitis. Microorganisms. 2022;10(11):2293. DOI:10.3390/microorganisms10112293.; Borshchev Yu.Yu., Sonin D.L., Burovenko I.Yu., Borshchev V.Yu., Cheburkin Yu.V.,Borshcheva O.V. et al. The effect of probiotic strains on myocardial infarction size, biochemical and immunological parameters in rats with systemic inflammatory response syndrome and polymorbidity. J. Evol. Biochem. Physiol. 2022;58(6):2058–2069. DOI:10.1134/S0022093022060321.; Gagné M.A., Barbeau C., Frégeau G., Gilbert K., Mathieu O., Auger J. et al. Dysbiotic microbiota contributes to the extent of acute myocardial infarction in rats. Sci. Rep. 2022;12(1):16517. DOI:10.1038/s41598022-20826-z.; Zhao J., Zhang Q., Cheng W., Dai Q., Wei Z., Guo M. et al. Heart-gut microbiota communication determines the severity of cardiac injury after myocardial ischaemia / reperfusion. Cardiovasc. Res. 2023;119(6):1390– 1402. DOI:10.1093/cvr/cvad023.; Zhong X., Zhao Y., Huang L., Liu J., Wang K., Gao X. et al. Remodeling of the gut microbiome by Lactobacillus johnsonii alleviates the development of acute myocardial infarction. Front. Microbiol. 2023;14:1140498. DOI:10.3389/fmicb.2023.1140498.; Wu Z.X., Li S.F., Chen H., Song J.X., Gao Y.F., Zhang F. et al. The changes of gut microbiota after acute myocardial infarction in rats. PLoS One. 2017;12(7):e0180717. DOI:10.1371/journal.pone.0180717.; Цибульников С.Ю., Маслов Л.Н., Цепокина А.В., Хуторная М.В., Кутихин А.Г., Цибульникова М.Р. и др. Проблема конечного эффектора ишемического прекондиционирования сердца. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2016;102(4):421–435.; Altamirano F., Wang Z.V., Hill J.A. Cardioprotection in ischaemia-reperfusion injury: novel mechanisms and clinical translation. J. Physiol. 2015;593(17):3773–3788. DOI:10.1113/JP270953.; Шляхто Е.В., Нифонтов Е.М., Галагудза М.М. Ограничение ишемического и реперфузионного повреждения миокарда с помощью преи посткондиционирования: молекулярные механизмы и мишени для фармакотерапии. Креативная кардиология. 2007;1(2):75–101.; Lama Tamang R., Juritsch A.F., Ahmad R., Salomon J.D., Dhawan P., Ramer-Tait A.E. et al. The diet-microbiota axis: a key regulator of intestinal permeability in human health and disease. Tissue Barriers. 2023;11(2):2077069. DOI:10.1080/21688370.2022.2077069.; Hanna A., Frangogiannis N.G. Inflammatory cytokines and chemokines as therapeutic targets in heart failure. Cardiovasc. Drugs Ther. 2020;34(6):849–863. DOI:10.1007/s10557-020-07071-0.; Belosjorow S., Bolle I., Duschin A., Heusch G., Schulz R. TNF-alpha antibodies are as effective as ischemic preconditioning in reducing infarct size in rabbits. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2003;284(3):H927– H930. DOI:10.1152/ajpheart.00374.2002.; Lin J., Li Q., Jin T., Wang J., Gong Y., Lv Q. et al. Cardiomyocyte IL-1R2 protects heart from ischemia/reperfusion injury by attenuating IL-17RA-mediated cardiomyocyte apoptosis. Cell Death Dis. 2022;13(1):90. DOI:10.1038/s41419-022-04533-1.; Karmazyn M., Gan X.T., Rajapurohitam V. The potential contribution of circulating and locally produced leptin to cardiac hypertrophy and failure. Can. J. Physiol. Pharmacol. 2013;91:883–888. DOI:10.1139/cjpp-20130057.; Polyakova E.A., Mikhaylov E.N., Galagudza M.M., Shlyakhto E.V. Hyperleptinemia results in systemic inflammation and the exacerbation of ischemia-reperfusion myocardial injury. Heliyon. 2021;7(11):e08491. DOI:10.1016/j.heliyon.2021.e08491.; Chiang J.Y. Bile acid metabolism and signaling. Compr. Physiol. 2013;3(3):1191–1212. DOI:10.1002/cphy.c120023.; Fiorucci S., Distrutti E. Bile acid-activated receptors, intestinal microbiota, and the treatment of metabolic disorders. Trends Mol. Med. 2015;21(11):702–714. DOI:10.1016/j.molmed.2015.09.001.; Pu J., Yuan A., Shan P., Gao E., Wang X., Wang Y. et al. Cardiomyocyte-expressed farnesoid-X-receptor is a novel apoptosis mediator and contributes to myocardial ischaemia/reperfusion injury. Eur. Heart J. 2013;34(24):1834–1845. DOI:10.1093/eurheartj/ehs011.; Gao J., Liu X., Wang B., Xu H., Xia Q., Lu T. et al. Farnesoid X receptor deletion improves cardiac function, structure and remodeling following myocardial infarction in mice. Mol. Med. Rep. 2017;16(1):673–679. DOI:10.3892/mmr.2017.6643.; Gao Y., Zhao Y., Yuan A., Xu L., Huang X., Su Y. et al. Effects of farnesoid-X-receptor SUMOylation mutation on myocardial ischemia / reperfusion injury in mice. Exp. Cell. Res. 2018;371(2):301–310. DOI:10.1016/j.yexcr.2018.07.004.; Wang J., Zhang J., Lin X., Wang Y., Wu X., Yang F. et al. DCA-TGR5 signaling activation alleviates inflammatory response and improves cardiac function in myocardial infarction. J. Mol. Cell. Cardiol. 2021;151:3–14. DOI:10.1016/j.yjmcc.2020.10.014.; Thomas C., Gioiello A., Noriega L., Strehle A., Oury J., Rizzo G. et al. TGR5-mediated bile acid sensing controls glucose homeostasis. Cell. Metab. 2009;10(3):167–177. DOI:10.1016/j.cmet.2009.08.001.; Ravassa S., Zudaire A., Díez J. GLP-1 and cardioprotection: from bench to bedside. Cardiovasc. Res. 2012;94(2):316–323. DOI:10.1093/cvr/cvs123.; Lu Y., Zhang Y., Zhao X., Shang C., Xiang M., Li L., Cui X. Microbiota-derived short-chain fatty acids: Implications for cardiovascular and metabolic disease. Front. Cardiovasc. Med. 2022;9:900381. DOI:10.3389/fcvm.2022.900381.; Chang P.V., Hao L., Offermanns S., Medzhitov R. The microbial metabolite butyrate regulates intestinal macrophage function via histone deacetylase inhibition. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2014;111(6):2247– 2252. DOI:10.1073/pnas.1322269111.; Lymperopoulos A., Suster M.S., Borges J.I. Short-chain fatty acid receptors and cardiovascular function. Int. J. Mol. Sci. 2022;23(6):3303. DOI:10.3390/ijms23063303.; Deng F., Zhang L.Q., Wu H., Chen Y., Yu W.Q., Han R.H. et al. Propionate alleviates myocardial ischemia-reperfusion injury aggravated by Angiotensin II dependent on caveolin-1/ACE2 axis through GPR41. Int. J. Biol. Sci. 2022;18(2):858–872. DOI:10.7150/ijbs.67724.; Tang T.W.H., Chen H.C., Chen C.Y., Yen C.Y.T., Lin C.J., PrajnamitraR.P. et al. Loss of gut microbiota alters immune system composition and cripples postinfarction cardiac repair. Circulation. 2019;139(5):647–659. DOI:10.1161/CIRCULATIONAHA.118.035235.; Lin C.J., Cheng Y.C., Chen H.C., Chao Y.K., Nicholson M.W., Yen E.C.L. et al. Commensal gut microbiota-derived acetate and propionate enhance heart adaptation in response to cardiac pressure overload in mice. Theranostics. 2022;12(17):7319–7334. DOI:10.7150/thno.76002.; Sun Y., Zhou C., Chen Y., He X., Gao F., Xue D. Quantitative increase in short-chain fatty acids, especially butyrate protects kidney from ischemia/reperfusion injury. J. Investig. Med. 2022;70(1):29–35. DOI:10.1136/jim-2020-001715.; Chen R., Xu Y., Wu P., Zhou H., Lasanajak Y., Fang Y. et al. Transplantation of fecal microbiota rich in short chain fatty acids and butyric acid treat cerebral ischemic stroke by regulating gut microbiota. Pharmacol. Res. 2019;148:104403. DOI:10.1016/j.phrs.2019.104403.; Baba A.A., Srinivas M., Shariff A., Nazir T. Role of short chain fatty acids in mesenteric ischemia reperfusion injury in rats. Eur. J. Pediatr. Surg. 2010;20(2):98–101. DOI:10.1055/s-0029-1241836.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2057

الاتاحة: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2057
https://doi.org/10.29001/2073-8552-2023-38-4-86-96

المؤلفون: S. V. Popov, N. V. Naryzhnaya, M. A. Sirotina, L. N. Maslov, A. V. Mukhomedzyanov, B. K. Kurbatov, A. S. Gorbunov, M. Kilin, A. V. Krylatov, Yu. K. Podeksenov, V. N. Azev, G. Z. Sufianova, M. S. Khlestkina, С. B. Попов, Н. В. Нарыжная, М. А. Сиротина, Л. Н. Маслов, А. В. Мухомедзянов, Б. К. Курбатов, А. С. Горбунов, М. Килин, А. В. Крылатов, Ю. К. Подоксенов, В. Н. Азев, Г. З. Суфианова, М. С. Хлесткина

المساهمون: The work was supported by the Russian Science Foundation, Grant No. 22-15-00048. The section “Synthetic analogues of apelins” is supported by the state assignment 122020300042-4., Обзорная статья выполнена при поддержке Российского научного фонда, грант № 22-1500048. Раздел «Синтетические аналоги апелинов» поддержан государственным заданием 122020300042-4.

المصدر: The Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 38, № 4 (2023); 29-39 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 38, № 4 (2023); 29-39 ; 2713-265X ; 2713-2927

مصطلحات موضوعية: легкие, ischemia/reperfusion, brain, heart, kidney, lung, ишемия/реперфузия, головной мозг, сердце, почки

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2048/919; Hage A., Stevens L.M., Ouzounian M., Chung J., El-Hamamsy I., Chauvette V. et al. Impact of brain protection strategies on mortality and stroke in patients undergoing aortic arch repair with hypothermic circulatory arrest: evidence from the Canadian Thoracic Aortic Collaborative. Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2020;58(1):95–103. DOI:10.1093/ ejcts/ezaa023.; Ya’qoub L., Gad M., Saad A.M., Elgendy I.Y., Mahmoud A.N. National trends of utilization and readmission rates with intravascular ultrasound use for ST-elevation myocardial infarction. Catheter Cardiovasc. Interv. 2021;98(1):1–9. DOI:10.1002/ccd.29524.; Lio K.U., O’Corragain O., Bashir R., Brosnahan S., Cohen G., Lakhter V. et al. Clinical outcomes and factors associated with pulmonary infarction following acute pulmonary embolism: a retrospective observational study at a US academic centre. BMJ Open. 2022;12(12):e067579. DOI:10.1136/bmjopen-2022-067579.; Swinarska J.T., Stratta R.J., Rogers J., Chang A., Farney A.C., Orlando G. et al. Early graft loss after deceased-donor kidney transplantation: What are the consequences? J. Am. Coll. Surg. 2021;232(4):493–502. DOI:10.1016/j.jamcollsurg.2020.12.005.; O’Dowd B.F., Heiber M., Chan A., Heng H.H., Tsui L.C., Kennedy J.L. et al. A human gene that shows identity with the gene encoding the angiotensin receptor is located on chromosome 11. Gene. 1993;136(1– 2):355–360. DOI:10.1016/0378-1119(93)90495-o.; Tatemoto K., Hosoya M., Habata Y., Fujii R., Kakegawa T., Zou M.X. et al. Isolation and characterization of a novel endogenous peptide ligand for the human APJ receptor. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1998;251(2):471–476. DOI:10.1006/bbrc.1998.9489.; Hu G., Wang Z., Zhang R., Sun W., Chen X. The role of apelin/apelin receptor in energy metabolism and water homeostasis: A comprehensive narrative review. Front. Physiol. 2021;12:632886. DOI:10.3389/ fphys.2021.632886.; Chng S.C., Ho L., Tian J., Reversade B. ELABELA: a hormone essential for heart development signals via the apelin receptor. Dev. Cell. 2013;27(6):672–680. DOI:10.1016/j.devcel.2013.11.002.; Perjés Á., Skoumal R., Tenhunen O., Kónyi A., Simon M., Horváth I.G. et al. Apelin increases cardiac contractility via protein kinase Cεand extracellular signal-regulated kinase-dependent mechanisms. PLoS One. 2014;9(4):e93473. DOI:10.1371/journal.pone.0093473.; Kawamata Y., Habata Y., Fukusumi S., Hosoya M., Fujii R., Hinuma S. et al. Molecular properties of apelin: tissue distribution and receptor binding. Biochim. Biophys. Acta. 2001;1538(2–3):162–171. DOI:10.1016/ s0167-4889(00)00143-9.; Than A., He H.L., Chua S.H., Xu D., Sun L., Leow M.K. et al. Apelin enhances brown adipogenesis and browning of white adipocytes. J. Biol. Chem. 2015;290(23):14679–14691. DOI:10.1074/jbc.M115. 643817.; Sekerci R., Acar N., Tepekoy F., Ustunel I., Keles-Celik N. Apelin/APJ expression in the heart and kidneys of hypertensive rats. Acta. Histochem. 2018;120(3):196–204. DOI:10.1016/j.acthis.2018.01.007.; Chen M.M., Ashley E.A., Deng D.X., Tsalenko A., Deng A., Tabibiazar R. et al. Novel role for the potent endogenous inotrope apelin in human cardiac dysfunction. Circulation. 2003;108(12):1432–1439. DOI:10.1161/01.CIR.0000091235.94914.75.; Bircan B., Çakır M., Kırbağ S., Gül H.F. Effect of apelin hormone on renal ischemia/reperfusion induced oxidative damage in rats. Ren. Fail. 2016;38(7):1122–1128. DOI:10.1080/0886022X.2016.1184957.; Gholampour F., Bagheri A., Barati A., Masoudi R., Owji S.M. Remote ischemic perconditioning modulates apelin expression after renal ischemia-reperfusion injury. J. Surg. Res. 2020;247:429–437. DOI:10.1016/j.jss.2019.09.063.; Zhang X., Zhu Y., Zhou Y., Fei B. Activation of Nrf2 signaling by apelin attenuates renal ischemia reperfusion injury in diabetic rats. Diabetes Metab. Syndr. Obes. 2020;13:2169–2177. DOI:10.2147/DMSO. S246743.; Xu F., Wu M., Lu X., Zhang H., Shi L., Xi Y. et al. Effect of Fc-Elabela-21 on renal ischemia/reperfusion injury in mice: Mediation of anti-apoptotic effect via Akt phosphorylation. Peptides. 2022;147:170682. DOI:10.1016/j.peptides.2021.170682.; Fan X.F., Xue F., Zhang Y.Q., Xing X.P., Liu H., Mao S.Z. et al. The Apelin-APJ axis is an endogenous counterinjury mechanism in experimental acute lung injury. Chest. 2015;147(4):969–978. DOI:10.1378/chest.14-1426.; Xia F., Chen H., Jin Z., Fu Z. Apelin-13 protects the lungs from ischemia-reperfusion injury by attenuating inflammatory and oxidative stress. Hum. Exp. Toxicol. 2021;40(4):685–694. DOI:10.1177/0960327120961436.; Wu F., Qiu J., Fan Y., Zhang Q., Cheng B., Wu Y. et al. Apelin-13 attenuates ER stress-mediated neuronal apoptosis by activating Gα /Gαtions during twitches in isolated rat cardiac myocytes. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2008;294(6):H2540–H2546. DOI:10.1152/ajpheart.00046.2008.; Xin Q., Cheng B., Pan Y., Liu H., Yang C., Chen J. et al. Neuroprotective effects of apelin-13 on experimental ischemic stroke through suppression of inflammation. Peptides. 2015;63:55–62. DOI:10.1016/j. peptides.2014.09.016.; Duan J., Cui J., Yang Z., Guo C., Cao J., Xi M. et al. Neuroprotective effect of Apelin 13 on ischemic stroke by activating AMPK/GSK-3β/Nrf2 signaling. J. Neuroinflammation. 2019;16(1):24. DOI:10.1186/s12974019-1406-7.; Liu D.R., Hu W., Chen G.Z. Apelin-12 exerts neuroprotective effect against ischemia-reperfusion injury by inhibiting JNK and P38MAPK signaling pathway in mouse. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2018;22(12):3888–3895. DOI:10.26355/eurrev_201806_15273.; Chu H., Yang X., Huang C., Gao Z., Tang Y., Dong Q. Apelin-13 protects against ischemic blood-brain barrier damage through the effects of Aquaporin-4. Cerebrovasc. Dis. 2017;44(1–2):10–25. DOI:10.1159/000460261.; Zhang R., Wu F., Cheng B., Wang C., Bai B., Chen J. Apelin-13 prevents the effects of oxygen-glucose deprivation/reperfusion on bEnd.3 cells by inhibiting AKT-mTOR signaling. Exp. Biol. Med. (Maywood). 2023;248(2):146–156. DOI:10.1177/15353702221139186; Mughal A., Sun C., O’Rourke S.T. Activation of large conductance, calcium-activated potassium channels by nitric oxide mediates apelin-induced relaxation of isolated rat coronary arteries. J. Pharmacol. Exp. Ther. 2018;366(2):265–273. DOI:10.1124/jpet.118.248682.; Dönmez Y., Acele A. Increased Elabela levels in the acute ST segment elevation myocardial infarction patients. Medicine (Baltimore). 2019;98(43):e17645. DOI:10.1097/MD.0000000000017645.; Sans-Roselló J., Casals G., Rossello X., González de la Presa B., Vila M., Duran-Cambra A. et al. Prognostic value of plasma apelin concentrations at admission in patients with ST-segment elevation acute myocardial infarction. Clin. Biochem. 2017;50(6):279–284. DOI:10.1016/j.clinbiochem.2016.11.018.; Wang C., Du J.F., Wu F., Wang H.C. Apelin decreases the SR Ca2+ content but enhances the amplitude of [Ca2+] transient and contrac contractions during twitches in isolated rat cardiac myocytes. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2008;294(6):H2540–H2546. DOI:10.1152/ajpheart.00046.2008.; Wang C., Liu N., Luan R., Li Y., Wang D., Zou W. et al. Apelin protects sarcoplasmic reticulum function and cardiac performance in ischaemia-reperfusion by attenuating oxidation of sarcoplasmic reticulum Ca2+-ATPase and ryanodine receptor. Cardiovasc. Res. 2013;100(1):114–124. DOI:10.1093/cvr/cvt160.; Rostamzadeh F., Najafipour H., Yeganeh-Hajahmadi M., Esmaeili-Mahani S., Joukar S., Iranpour M. Heterodimerization of apelin and opioid receptors and cardiac inotropic and lusitropic effects of apelin in 2K1C hypertension: Role of pERK1/2 and PKC. Life Sci. 2017;191:24–33. DOI:10.1016/j.lfs.2017.09.044.; Simpkin J.C., Yellon D.M., Davidson S.M., Lim S.Y., Wynne A.M., Smith C.C. Apelin-13 and apelin-36 exhibit direct cardioprotective activity against ischemia-reperfusion injury. Basic Res. Cardiol. 2007;102(6):518–528. DOI:10.1007/s00395-007-0671-2.; Писаренко О.И., Шульженко В.С., Пелогейкина Ю.А., Студнева И.М., Кхатри Д.Н., Беспалова Ж.Д. и др. Влияние экзогенного апелина-12 на функциональное и метаболическое восстановление изолированного сердца крысы после ишемии. Кардиология. 2010;50(10):44–49.; Писаренко О.И., Серебрякова Л.И., Пелогейкина Ю.А., Студнева И.М., Кхатри Д.Н., Цкитишвили О.В. и др. Уменьшение реперфузионного повреждения сердца in vivo с помощью пептида апелина-12 у крыс. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2011;152(7):79–82.; Писаренко О.И., Серебрякова Л.И., Пелогейкина Ю.А., Студнева И.М., Кхатри Д.Н., Цкитишвили О.В. и др. Участие NO-зависимых механизмов действия апелина в защите миокарда от ишемического/реперфузионного повреждения. Кардиология. 2012;52(2):52–58. Pisarenko O.I., Serebriakova L.I., Pelogeĭkina Iu.A., Studneva I.M., Kkhatri D.N., Tskitishvili O.V. et al. Involvement of NO-dependent mechanisms of apelin action in myocardial protection against ischemia/reperfusion damage. Kardiologiia. 2012;52(2):52–58. (In Russ.).; Abbasloo E., Najafipour H., Vakili A. Chronic treatment with apelin, losartan and their combination reduces myocardial infarct size and improves cardiac mechanical function. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2020;47(3):393–402. DOI:10.1111/1440-1681.13195.; Pisarenko O.I., Shulzhenko V.S., Pelogeykina Y.A., Studneva I.V. Enhancement of crystalloid cardioplegic protection by structural analogs of apelin-12. J. Surg. Res. 2015;194(1):18–24. DOI:10.1016/j. jss.2014.11.007.; Писаренко О.И., Беспалова О.И., Ланкин В.З., Тимошин А.А., Серебрякова Л.И., Шульженко В.С. и др. Антиоксидантные свойства апелина-12 и его структурного аналога при экспериментальной ишемии и реперфузии. Кардиология. 2013;53(5):61–67.; Pisarenko O., Shulzhenko V., Studneva I., Pelogeykina Y., Timoshin A., Anesia R. et al. Structural apelin analogues: mitochondrial ROS inhibition and cardiometabolic protection in myocardial ischaemia reperfusion injury. Br. J. Pharmacol. 2015;172(12):2933–2945. DOI:10.1111/ bph.13038.; Tao J., Zhu W., Li Y., Xin P., Li J., Liu M. et al. Apelin-13 protects the heart against ischemia-reperfusion injury through inhibition of ER-dependent apoptotic pathways in a time-dependent fashion. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2011;301(4):H1471–H1486. DOI:10.1152/ ajpheart.00097.2011.; Yu P., Ma S., Dai X., Cao F. Elabela alleviates myocardial ischemia reperfusion-induced apoptosis, fibrosis and mitochondrial dysfunction through PI3K/AKT signaling. Am. J. Transl. Res. 2020;12(8):4467–4477.; Chen Y., Qiao X., Zhang L., Li X., Liu Q. Apelin-13 regulates angiotensin ii-induced Cx43 downregulation and autophagy via the AMPK/mTOR signaling pathway in HL-1 cells. Physiol. Res. 2020;69(5):813–822. DOI:10.33549/physiolres.934488.; Hou X., Zeng H., Tuo Q.H., Liao D.F., Chen J.X. Apelin gene therapy increases autophagy via activation of sirtuin 3 in diabetic heart. Diabetes Res. (Fairfax). 2015;1(4):84–91. DOI:10.17140/DROJ-1-115.; Wang W., McKinnie S.M., Patel V.B., Haddad G., Wang Z., Zhabyeyev P. et al. Loss of apelin exacerbates myocardial infarction adverse remodeling and ischemia-reperfusion injury: therapeutic potential of synthetic apelin analogues. J. Am. Heart Assoc. 2013;2(4):e000249. DOI:10.1161/JAHA.113.000249.; Masri B., Morin N., Pedebernade L., Knibiehler B., Audigier Y. The apelin receptor is coupled to Gi1 or Gi2 protein and is differentially desensitized by apelin fragments. J. Biol. Chem. 2006;281(27):18317–18326. DOI:10.1074/jbc.M600606200.; Bai B., Cai X., Jiang Y., Karteris E., Chen J. Heterodimerization of apelin receptor and neurotensin receptor 1 induces phosphorylation of ERK(1/2) and cell proliferation via Gαq-mediated mechanism. J. Cell. Mol. Med. 2014;18(10):2071–2081. DOI:10.1111/jcmm.12404.; Chapman N.A., Dupré D.J., Rainey J.K. The apelin receptor: physiology, pathology, cell signalling, and ligand modulation of a peptide-activated class A GPCR. Biochem. Cell. Biol. 2014;92(6):431–440. DOI:10.1139/bcb-2014-0072.; Moon M.J., Oh D.Y., Moon J.S., Kim D.K., Hwang J.I., Lee J.Y. et al. Cloning and activation of the bullfrog apelin receptor: Gi/o coupling and high affinity for [Pro1]apelin-13. Mol. Cell. Endocrinol. 2007;277(1–2):51– 60. DOI:10.1016/j.mce.2007.07.008.; Folino A., Accomasso L., Giachino C., Montarolo P.G., Losano G., Pagliaro P. et al. Apelin-induced cardioprotection against ischaemia/ reperfusion injury: roles of epidermal growth factor and Src. Acta Physiol. (Oxf.). 2018;222(2):e12924. DOI:10.1111/apha.12924.; Yang S., Li H., Tang L., Ge G., Ma J., Qiao Z. et al. Apelin-13 protects the heart against ischemia-reperfusion injury through the RISK-GSK-3βmPTP pathway. Arch. Med. Sci. 2015;11(5):1065–1073. DOI:10.5114/ aoms.2015.54863.; Pisarenko O.I., Shulzhenko V.S., Studneva I.M., Serebryakova L.I., Pelogeykina Y.A., Veselova O.M. Signaling pathways of a structural analogue of apelin-12 involved in myocardial protection against ischemia/reperfusion injury. Peptides. 2015;73:67–76. DOI:10.1016/j.peptides.2015.09.001.; Писаренко О.И., Пелогейкина Ю.А., Шульженко В.С., Студнева И.М., Беспалова З.Д., Азмуко А.А. и др. Влияние ингибирования новообразования на метаболическое восстановление ишемизи рованного сердца крысы апелином-12. Биомедицинская химия.2012;58(6):702–711; Rastaldo R., Cappello S., Folino A., Berta G.N., Sprio A.E., Losano G. et al. Apelin-13 limits infarct size and improves cardiac postischemic mechanical recovery only if given after ischemia. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2011;300(6):H2308–H2315. DOI:10.1152/ ajpheart.01177.2010.; Pisarenko O.I., Lankin V.Z., Konovalova G.G., Serebryakova L.I., Shulzhenko V.S., Timoshin A.A. et al. Apelin-12 and its structural analog enhance antioxidant defense in experimental myocardial ischemia and reperfusion. Mol. Cell. Biochem. 2014;391(1–2):241–250. DOI:10.1007/ s11010-014-2008-4.; Reed A.B., Lanman B.A., Holder J.R., Yang B.H., Ma J., Humphreys S.C. et al. Half-life extension of peptidic APJ agonists by N-terminal lipid conjugation. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2020;30(21):127499. DOI:10.1016/j.bmcl.2020.127499.; Trân K., Murza A., Sainsily X., Coquerel D., Côté J., Belleville K. et al. A systematic exploration of macrocyclization in apelin-13: impact on binding, signaling, stability, and cardiovascular effects. J. Med. Chem. 2018;61(6):2266–2277. DOI:10.1021/acs.jmedchem.7b01353.; Li L., Zeng H., Chen J.X. Apelin-13 increases myocardial progenitor cells and improves repair postmyocardial infarction. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2012;303(5):H605–H618. DOI:10.1152/ajpheart.00366.2012.; Azizi Y., Faghihi M., Imani A., Roghani M., Zekri A., Mobasheri M.B. et al. Post-infarct treatment with [Pyr1]apelin-13 improves myocardial function by increasing neovascularization and overexpression of angiogenic growth factors in rats. Eur. J. Pharmacol. 2015;761:101–108. DOI:10.1016/j.ejphar.2015.04.034.; O’Harte F.P.M., Parthsarathy V., Hogg C., Flatt P.R. Long-term treatment with acylated analogues of apelin-13 amide ameliorates diabetes and improves lipid profile of high-fat fed mice. PLoS One. 2018;13(8):e0202350. DOI:10.1371/journal.pone.0202350.; Tran K., Sainsily X., Côté J., Coquerel D., Couvineau P., Saibi S. et al. Size-Reduced Macrocyclic Analogues of [Pyr1]-apelin-13 Showing Neg Negative Gα12 Bias Still Produce Prolonged Cardiac Effects. J. Med. Chem. 2022;65(1):531–551.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2048

الاتاحة: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2048
https://doi.org/10.29001/2073-8552-2023-38-4-29-39

المؤلفون: S. V. Turieva, T. B. Kasokhov, I. G. Gussoeva, A. M. Bigaeva, L. S. Tuaeva, С. В. Туриева, Т. Б. Касохов, И. Г. Гуссоева, А. М. Бигаева, Л. С. Туаева

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 68, № 6 (2023); 121-125 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 68, № 6 (2023); 121-125 ; 2500-2228 ; 1027-4065

مصطلحات موضوعية: магнитно-резонансная томография, congenital heart diseases, Cor Triatriatum, echocardiography, magnetic resonance imaging, врожденные пороки сердца, трехпредсердное сердце, эхокардиография

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1915/1444; Детская кардиология. Под ред. Дж. Хоффмана. Москва: Практика, 2006; 543.; Белозеров Ю.М. Детская кардиология. Москва: МЕД-пресс информ, 2004; 600.; Бокерия Л.А, Шаталова К.В. Детская кардиохирургия. Москва 2016; 864; Bai W., Kaushal S., Malviya S., Griffith K., Ohye R.G. Anesthetic management for resection of cor triatriatum during the second trimester of pregnancy. Int J Obstet Anesth 2010; 19(1): 103–106. DOI:10.1016/j.ijoa.2009.04.011; Davlouros P.A., Koutsogiannis N., Karatza A., Alexopoulos D. An unusual case of cor triatriatum sinister presenting as pulmonary oedema during labor. Int J Cardiol 2009; 150(3): e92–3. DOI:10.1016/j.ijcard.2009.11.030; Feigenbaum H. Cardiac ultrasound. London Churchill Livingstone, Longman Group UK Limited, 1993; 3–7; Шиллер Н., Осипов М.А. Клиническая эхокардиография. Москва: Медицина, 1993; 344.; Фейгенбаум Х. Эхокардиография. Пер. с англ. Под ред. В.В. Митькова. М.: Видар, 1999; 512.; Su C.S., Tsai I.C., Lin W.W., Lee T., Ting C.T., Liang K.W. Usefulness of multidetector-row computed tomography in evaluating adult cor triatriatum. Tex Heart Inst J 2008; 35(3): 349–351; Braunwald E. Heart disease. A Textbook of Cardiovascular Medicine. Philadelphia: WB Saunders, 1988; 383–425; Pediatric and Congenital Cardiology, Cardiac Surgery and Intensive Care. Editors da Cruz E.M., Dunbar I., Jaggers J. London: Springer-Verlag, 2014; 3511; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1915

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1915
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2023-68-6-121-125