يعرض 1 - 20 نتائج من 927 نتيجة بحث عن '"СЫВОРОТКА КРОВИ"', وقت الاستعلام: 0.49s تنقيح النتائج
  1. 1
    Academic Journal

    المساهمون: 1

    المصدر: Almanac of Clinical Medicine; Vol 52, No 6 (2024); 324-330 ; Альманах клинической медицины; Vol 52, No 6 (2024); 324-330 ; 2587-9294 ; 2072-0505

    وصف الملف: application/pdf

  2. 2
    Academic Journal

    المساهمون: this work was not funded., финансирование данной работы не проводилось.

    المصدر: Research and Practical Medicine Journal; Том 11, № 3 (2024); 38-53 ; Research'n Practical Medicine Journal; Том 11, № 3 (2024); 38-53 ; 2410-1893 ; 10.17709/2410-1893-2024-11-3

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/1005/633; Mendoza A, Hollenberg AN. New insights into thyroid hormone action. Pharmacol Ther. 2017 May;173:135–145. doi:10.1016/j.pharmthera.2017.02.012; Fliers E, Bianco AC, Langouche L, Boelen A. Thyroid function in critically ill patients. Lancet Diabetes Endocrinol. 2015 Oct;3(10):816–825. doi:10.1016/s2213-8587(15)00225-9; Babić Leko M, Gunjača I, Pleić N, Zemunik T. Environmental Factors Affecting Thyroid-Stimulating Hormone and Thyroid Hormone Levels. Int J Mol Sci. 2021 Jun 17;22(12):6521. doi:10.3390/ijms22126521; Petranović Ovčariček P, Verburg FA, Hoffmann M, Iakovou I, Mihailovic J, Vrachimis A, et al. Higher thyroid hormone levels and cancer. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2021 Mar;48(3):808–821. doi:10.1007/s00259-020-05018-z Erratum in: Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2021 Mar;48(3):951–953. doi:10.1007/s00259-020-05052-x; Moretto FC, De Sibio MT, Luvizon AC, Olimpio RM, de Oliveira M, Alves CA, et al. Triiodothyronine (T3) induces HIF1A and TGFA expression in MCF7 cells by activating PI3K. Life Sci. 2016 Jun 1;154:52–57. doi:10.1016/j.lfs.2016.04.024; Małujło-Balcerska E, Pietras T. Deiodinase Types 1 and 3 and Proinflammatory Cytokine Values May Discriminate Depressive Disorder Patients from Healthy Controls. J Clin Med. 2023 Sep 24;12(19):6163. doi:10.3390/jcm12196163; Франциянц Е. М., Бандовкина В. А., Ващенко Л. Н., Тодоров С. С., Черярина Н. Д., Салатова А. М., и др. Особенности синдрома эутиреоидного расстройства у больных раком молочной железы. Исследования и практика в медицине. 2023;10(3):21–31. doi:10.17709/2410-1893-2023-10-3-2; Кит О. И., Франциянц Е. М., Бандовкина В. А., Черярина Н. Д. Половые различия функционирования щитовидной железы в динамике роста перевивной меланомы В16/F10 у мышей. Российский онкологический журнал. 2016;21(5):253–258. doi:10.18821/1028-9984-2016-21-5-253-258; Франциянц Е. М., Бандовкина В. А, Каплиева И. В., Трепитаки Л. К., Черярина Н. Д., Димитриади С. Н., Пржедецкий Ю. В. Влияние роста перевивной меланомы В16/F10 на функционирование гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой и тиреоидной осей организма у самцов и самок мышей. Известия высших учебных заведений. Северо-Кавказский регион. Естественные науки. 2017;(3–2):118–124.; Parra-Montes de Oca MA, Sotelo-Rivera I, Gutiérrez-Mata A, Charli JL, Joseph-Bravo P. Sex Dimorphic Responses of the Hypothalamus-Pituitary-Thyroid Axis to Energy Demands and Stress. Front Endocrinol (Lausanne). 2021 Oct 20;12:746924. doi:10.3389/fendo.2021.746924; Франциянц Е. М., Бандовкина В. А., Черярина Н. Д., Салатова А. М., Аракелова А. Ю. Влияние роста перевивной карциномы Герена у крыс на активность гипоталамо-гипофизарно-тиреоидной и гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой регуляторных осей организма. Современные проблемы науки и образования. 2022;(2):134. doi:10.17513/spno.31680; Rakov H, Engels K, Hönes GS, Brix K, Köhrle J, Moeller LC, et al. Sex-specific phenotypes of hyperthyroidism and hypothyroidism in aged mice. Biol Sex Differ. 2017 Dec 22;8(1):38. doi:10.1186/s13293-017-0159-1; Zhang X, Tian L, Teng D, Teng W. The Relationship between Thyrotropin Serum Concentrations and Thyroid Carcinoma. Cancers (Basel). 2023 Oct 17;15(20):5017. doi:10.3390/cancers15205017; Mathew P, Kaur J, Rawla P, Fortes K. Hyperthyroidism (Nursing). 2023 Mar 19. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): Stat-Pearls Publishing; 2024 Jan.; Котиева И. М., Кит О. И., Франциянц Е. М., Бандовкина В. А., Каплиева И. В., Погорелова Ю. А., и др. Содержание гормонов в ткани щитовидной железы в динамике роста перевивной меланомы В16/F10, воспроизведенной на фоне хронической нейрогенной боли у самок мышей. Известия высших учебных заведений. Северо-Кавказский регион. Естественные науки. 2017;198(4–2):76–83.; Slominski RM, Raman C, Elmets C, Jetten AM, Slominski AT, Tuckey RC. The significance of CYP11A1 expression in skin physiology and pathology. Mol Cell Endocrinol. 2021 Jun 15;530:111238. doi:10.1016/j.mce.2021.111238; Xing D, Liu D, Li R, Zhou Q, Xu J. Factors influencing the reference interval of thyroid-stimulating hormone in healthy adults: A systematic review and meta-analysis. Clin Endocrinol (Oxf). 2021 Sep;95(3):378–389. doi:10.1111/cen.14454; Yamada S, Horiguchi K, Akuzawa M, Sakamaki K, Yamada E, Ozawa A, et al. The Impact of Age- and Sex-Specific Reference Ranges for Serum Thyrotropin and Free Thyroxine on the Diagnosis of Subclinical Thyroid Dysfunction: A Multicenter Study from Japan. Thyroid. 2023 Apr;33(4):428–439. doi:10.1089/thy.2022.0567 Epub 2023 Mar 22. Erratum in: Thyroid. 2023 Sep;33(9):1134. doi:10.1089/thy.2022.0567.correx; Feldt-Rasmussen U, Effraimidis G, Klose M. The hypothalamus-pituitary-thyroid (HPT)-axis and its role in physiology and pathophysiology of other hypothalamus-pituitary functions. Mol Cell Endocrinol. 2021 Apr 5;525:111173. doi:10.1016/j.mce.2021.111173; Vaudry H, Schoofs L, Civelli O, Kojima M. Editorial: Neuropeptide GPCRs in neuroendocrinology, Volume II. Front Endocrinol (Lausanne). 2023 Jun 21;14:1219530. doi:10.3389/fendo.2023.1219530; Gao Y, Zhou JF, Mao JY, Jiang L, Li XP. Identification of the Thyrotropin-Releasing Hormone (TRH) as a Novel Biomarker in the Prognosis for Acute Myeloid Leukemia. Biomolecules. 2022 Sep 23;12(10):1359. doi:10.3390/biom12101359; Černá P, Antonakakis M, Peralta J, Kofron K, Hawley J, Morris A, Lappin MR. Total thyroxine and thyroid-stimulating hormone responses of healthy cats to different doses of thyrotropin-releasing hormone. J Vet Diagn Invest. 2024 Jan;36(1):56–61. doi:10.1177/10406387231212816; Кит О. И., Франциянц Е. М., Каплиева И. В., Трепитаки Л. К., Котиева И. М. Способ модификации хронической болью злокачественного роста меланомы В16 у мышей. Патент на изобретение RU 2650587 C1, 16. 04. 2018. Заявка № 2017114818 от 26. 04. 2017.; Teixeira PFDS, Dos Santos PB, Pazos-Moura CC. The role of thyroid hormone in metabolism and metabolic syndrome. Ther Adv Endocrinol Metab. 2020 May 13;11:2042018820917869. doi:10.1177/2042018820917869; Krashin E, Piekiełko-Witkowska A, Ellis M, Ashur-Fabian O. Thyroid Hormones and Cancer : A Comprehensive Review of Preclinical and Clinical Studies. Front Endocrinol (Lausanne). 2019 Feb 13;10:59. doi:10.3389/fendo.2019.00059; Wu Z, Xi Z, Xiao Y, Zhao X, Li J, Feng N, et al. TSH-TSHR axis promotes tumor immune evasion. J Immunother Cancer. 2022 Jan;10(1):e004049. doi:10.1136/jitc-2021-004049; Charli JL, Rodríguez-Rodríguez A, Hernández-Ortega K, Cote-Vélez A, Uribe RM, Jaimes-Hoy L, Joseph-Bravo P. The Thyrotropin-Releasing Hormone-Degrading Ectoenzyme, a Therapeutic Target? Front Pharmacol. 2020 May 8;11:640. doi:10.3389/fphar.2020.00640; Citterio CE, Targovnik HM, Arvan P. The role of thyroglobulin in thyroid hormonogenesis. Nat Rev Endocrinol. 2019 Jun;15(6):323–338. doi:10.1038/s41574-019-0184-8; Leung JH, Wang SY, Leung HWC, Yu TS, Chan ALF. Hypothyroidism and hyperthyroidism related to gynecologic cancers: a nation-wide population-based cohort study. Sci Rep. 2024 Jan 22;14(1):1892. doi:10.1038/s41598-023-50439-z; Франциянц Е. М., Бандовкина В. А., Каплиева И. В., Сурикова Е. И., Нескубина И. В., Погорелова Ю. А., и др. Изменение патофизиологии роста опухоли и функциональной активности гипоталамо-гипофизарно-тиреоидной оси у крыс обоего пола с карциномой Герена на фоне гипотиреоза. Южно-Российский онкологический журнал. 2022;3(4):26–39. doi:10.37748/2686-9039-2022-3-4-3; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/1005

  3. 3
    Academic Journal

    المساهمون: 1

    المصدر: Almanac of Clinical Medicine; Vol 52, No 3 (2024); 107-119 ; Альманах клинической медицины; Vol 52, No 3 (2024); 107-119 ; 2587-9294 ; 2072-0505

    وصف الملف: application/pdf

  4. 4
    Academic Journal

    المصدر: Cancer Urology; Том 19, № 4 (2023); 24-31 ; Онкоурология; Том 19, № 4 (2023); 24-31 ; 1996-1812 ; 1726-9776

    مصطلحات موضوعية: сыворотка крови, KISS1, blood serum

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/1724/1492; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/downloadSuppFile/1724/1408; Kushlinskii N.E., Gershtein E.S., Alferov A.A. et al. Prognostic role of matrix metalloproteinases 2, 7, 8, 9 and their type 1 tissue inhibitor in blood serum of patients with kidney cancer. Bull Exp Biol Med 2020;168(5):673–6. DOI:10.1007/s10517-020-04778-w; Steeg P.S., Ouatas T., Halverson D. et al. Metastasis suppressor genes: basic biology and potential clinical use. Clin Breast Cancer 2003;4(1):51–62. DOI:10.3816/cbc.2003.n.012; Ly T., Harihar S., Welch D.R. KISS1 in metastatic cancer research and treatment: potential and paradoxes. Cancer Metastasis Rev 2020;39(3):739–54. DOI:10.1007/s10555-020-09868-9; Harihar S., Welch D.R. KISS1 metastasis suppressor in tumor dormancy: a potential therapeutic target for metastatic cancers? Cancer Metastasis Rev 2023;42(1):183–96. DOI:10.1007/s10555-023-10090-6; Hu K.L., Chang H.M., Zhao H.C. et al. Potential roles for the kisspeptin/kisspeptin receptor system in implantation and placentation. Hum Reprod Update 2019;25(3):326–43. DOI:10.1093/humupd/dmy046; Wang C.H., Qiao C., Wang R.C., Zhou W.P. KiSS-1-mediated suppression of the invasive ability of human pancreatic carcinoma cells is not dependent on the level of KiSS-1 receptor GPR54. Mol Med Rep 2016;13(1):123–9. DOI:10.3892/mmr.2015.4535; Wang W., Yang Z.L., Liu J.Q. et al. Overexpression of MTA1 and loss of KAI-1 and KiSS-1 expressions are associated with invasion, metastasis, and poor-prognosis of gallbladder adenocarcinoma. Tumori 2014;100(6):667–74. DOI:10.1700/1778.19276; Teng Y., Mei Y., Hawthorn L., Cowell J.K. WASF3 regulates miR-200 inactivation by ZEB1 through suppression of KISS1 leading to increased invasiveness in breast cancer cells. Oncogene 2014;33(2):203–11. DOI:10.1038/onc.2012.565; Zhu N., Zhao M., Song Y. et al. The KiSS-1/GPR54 system: Essential roles in physiological homeostasis and cancer biology. Genes Dis 2022;9(1):28–40. DOI:10.1016/j.gendis.2020.07.008; Ohtaki T., Shintani Y., Honda S. et al. Metastasis suppressor gene KiSS-1 encodes peptide ligand of a G-protein-coupled receptor. Nature 2001;411(6837):613–7. DOI:10.1038/35079135; Kuohung W., Kaiser U.B. GPR54 and KiSS-1: role in the regulation of puberty and reproduction. Rev Endocr Metab Disord 2006;7(4):257–63. DOI:10.1007/s11154-006-9020-2; Francis V.A., Abera A.B., Matjila M. et al. Kisspeptin regulation of genes involved in cell invasion and angiogenesis in first trimester human trophoblast cells. PLoS One 2014;9(6):e99680. DOI:10.1371/journal.pone.0099680; Ciaramella V., Della Corte C.M., Ciardiello F., Morgillo F. Kisspeptin and cancer: molecular interaction, biological functions, and future perspectives. Front Endocrinol (Lausanne) 2018;9:115. DOI:10.3389/fendo.2018.00115; Loosen S.H., Luedde M., Lurje G. et al. Serum levels of kisspeptin are elevated in patients with pancreatic cancer. Dis Markers 2019;2019:5603474. DOI:10.1155/2019/5603474; Canbay E., Ergen A., Bugra D. et al. Kisspeptin-54 levels are increased in patients with colorectal cancer. World J Surg 2012;36(9):2218–24. DOI:10.1007/s00268-012-1636-7; Ergen A., Canbay E., Bugra D. et al. Plasma Kisspeptin-54 levels in gastric cancer patients. Int J Surg 2012;10(9):551–4. DOI:10.1016/j.ijsu.2012.08.014; Gatti L., Rolli L., Corno C. et al. Increased serum levels of KiSS1- derived peptides in non-small cell lung cancer patient liquid biopsies and biological relevance. Transl Lung Cancer Res 2022;11(7):1315–26. DOI:10.21037/tlcr-22-52; Harihar S., Ray S., Narayanan S. et al. Role of the tumor microenvironment in regulating the anti-metastatic effect of KISS1. Clin Exp Metastasis 2020;37(2):209–23. DOI: 0.1007/s10585-020-10030-6; Zheng S., Chang Y., Hodges K.B. et al. Expression of KISS1 and MMP-9 in non-small cell lung cancer and their relations to metastasis and survival. Anticancer Res 2010;30(3):713–8.; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/1724

  5. 5
    Academic Journal

    المصدر: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 4 (2023); 294-303 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 4 (2023); 294-303 ; 2072-6724

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2175/965; Балабаев Б.К., Дерхо М.А. Возрастные особенности тиреоидного статуса и белкового обмена в организме животных казахской белоголовой породы // АПК России. – 2016. – № 23/3. – С. 640–645.; Effect of iodine source and dose on growth and iodine content in tissue and plasma thyroid hormones in fattening pigs / Q. Li, C. Mair, K. Schedle [et al.] // European journal of nutrition. – 2012. – Vol. 51. – P. 685–691.; Dillman E. Hypothermia in iron deficiency due to altered triiodothyronine metabolism // American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. – 1980. – Vol. 239, N 5. – P. R377–R381.; Мекин Р.С., Дерхо М.А. Особенности взаимосвязей между гормонами тиреотропинтиреоидной системы в организме молодняка свиней разного пола и породы // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. НЭ Баумана. – 2021. – Т. 245, №. 1. – С. 101–108.; Nowak G. Free thyroid hormone levels during the postnatal period in the pig // Neonatology. – 1983. – Vol. 43. – № 3-4. – P. 164-171.; Claus R., Weiler U. Endocrine regulation of growth and metabolism in the pig : a review // Livestock Production Science. – 1994. – Vol. 37, №. 3 – P. 245–260.; Hematologic and biochemical reference intervals for 1 month old specific pathogen free Landrace pigs / C. Li, F. Wang, R. Li, M. Ishfaq [et al.] // Veterinary Clinical Pathology. – 2021. – Vol. 50, N 1. – P. 76–80.; Морфофункциональное состояние тиреоидного статуса свиней при коррекции йодной недостаточности / З.С. Габитова, А.Н. Мамцев, В.Н. Байматов // Российский ветеринарный журнал. – 2009. – № 4. – С. 43–45.; Recovery of peripheral nerve function after axotomy: effect of triiodothyronine / R.A. Berenberg, D.S. Forman, D.K. Wood // Experimental neurology. – 1977. – Vol. 57, N 2. – P. 349–363.; The influences of thermal stress on serum biochemical parameters of Iranian fat-tailed sheep and their correlation with triiodothyronine (T3), thyroxine (T4) and cortisol concentrations / S. Nazifi, M. Saeb, E. Rowghani, K. Kaveh // Comparative Clinical Pathology. – 2003. – Vol. 12, N 3. – P. 135–139.; Abrams G.M., Larsen P.R. Triiodothyronine and thyroxine in the serum and thyroid glands of iodine-deficient rats // The Journal of Clinical Investigation. – 1973. – Vol. 52, N 10. – P. 2522–2531.; Тиреоидный статус свиней и его коррекция / В.А. Самсонович, А.И. Ятусевич, Н.С. Мотузко, Е.Л. Братушкина // Ученые записки УО ВГАВМ. –2011. – Т. 47, № 2. – С. 84–86.; Postnatal changes in circulating concentrations of growth hormone, somatomedin C and thyroid hormones in pigs / C.G. Scanes, D. Lazarus, S. Bowen [et.al.] // Domestic Animal Endocrinology. – 1987. – Vol. 4, N 4. – P. 253–257.; Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs / T.B. Klem, E. Bleken, H. Morberg // Veterinary clinical pathology. – 2010. – Vol. 39, N 2. – P. 221–226.; Mezey E., Potter J.J. Effects of thyroidectomy and triiodothyronine administration on rat liver alcohol dehydrogenase // Gastroenterology. – 1981. – Vol. 80, N 3. – P. 566–574.; Maternal nutrient deprivation induces sex‐specific changes in thyroid hormone receptor and deiodinase expression in the fetal guinea pig brain / S.Y. Chan, M.H. Andrews, R. Lingas, C.J. McCabe et. al. // The Journal of Physiology. – 2005. – Vol. 566, N 2. – P. 467–480.; Sequential observation of changes in thyroxine, triiodothyronine and reverse triiodothyronine during the postnatal adaptation of the pig / A.B. Ślebodziński, G. Nowak, H. Zamysłowska // Neonatology. – 1981. – Vol. 39, N 3–4. – P. 191–199.; Гормональный и метаболический статус бычков голштинской породы в эколого-климатических условиях Кемеровской области / Л.В. Осадчук, О.И. Себежко, Н.Г. Шишин, О.С. Короткевич [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2017. – № 2 (43). – С. 52–61.; Проблемы селекции сельскохозяйственных животных / Б.Л. Панов, В.Л. Петухов, Л.К. Эрнст [и др.]. – Новосибирск: Сиб. предпр. «Наука» РАН, 1997. – 283 с.; Проблемы сельскохозяйственной экологии / А.Г. Незавитин, В.Л. Петухов, А.Н. Власенко [и др.]. – Новосибирск: Наука, 2000. – 255 с.; Тарасенко Е.И., Климанова Е.А.Межпородные различия по уровню эстрадиола в сыворотке крови овец // Проблемы биологии, зоотехнии и биотехнологии : сб. тр. науч.-практ. конф. науч. о-ва студентов и аспирантов биол.-технолог. фак. – Новосибирск, 2022. – С. 164–166.; Тарасенко Е.И. Ассоциация трийодтиронина с показателями белкового обмена у овец романовской породы // Повышение производства продукции животноводства на современном этапе : сб. науч. тр. по материалам Междунар. науч.-практ. конф., посвящ. 95-летию кафедры частного животноводства. – Витебск, 2022. – С. 78–81.; Зайко О.А., Тарасенко Е.И. Содержание марганца в некоторых органах и тканях свиней породы ландрас // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2022. – № 3 (64). – С. 102–110.; Общий и свободный тироксин и трийодтиронин в сыворотке крови млекопитающих / Р.Р. Андерсон, Д.А. Никсон, М.А. Акаша // Сравнительная биохимия и физиология. – 1988. – Т. 89, № 3. – С. 401–404.; Pabst R. The pig as a model for immunology research // Cell Tissue Res. – 2020. – Vol. 380, N 2. – P. 287–304. – DOI:10.1007/s00441-020-03206-9.; Prunier A., Quesnel H. Nutritional influences on the hormonal control of reproduction in female pigs // Livestock Production Science. – 2000. – Vol. 63, N 1. – P. 1–16.; Growth, body composition and hormonal status of growing pigs exhibiting a normal or small weight at birth and exposed to a neonatal diet enriched in proteins / A. Morise, B. Seve, K. Macé [et al.] // British journal of nutrition. – 2011. – Vul. 105, N 10. – P. 1471–1479.; Влияние генотипа свиноматок на значение цветного показателя у потомства / О.А. Зайко, О.И. Себежко, И.К. Бирюля // Модернизация аграрного образования : сб. науч. тр. по материалам VII Междунар. науч.-практ. конф. – Томск; Новосибирск, 2021. – С. 986–988.; Влияние генотипа быков-производителей голштинской породы на содержание натрия в сыворотке крови сыновей / М.В. Стрижкова, О.И. Себежко, Т.В. Коновалова [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2021. – № 1 (58). – С. 125–133.; Влияние генотипа баранов-производителей романовской породы на аккумуляцию цинка в шерсти потомства / Л. Мингжун, Р.Т. Саурбаева, Л. Венронг [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2019. – № 3 (52). – С. 91–97.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2175

  6. 6
    Academic Journal
  7. 7
  8. 8
    Academic Journal

    المصدر: Advances in Molecular Oncology; Том 10, № 2 (2023); 100-107 ; Успехи молекулярной онкологии; Том 10, № 2 (2023); 100-107 ; 2413-3787 ; 2313-805X ; 10.17650/2313-805X-2023-10-2

    مصطلحات موضوعية: сыворотка крови, sEMMPRIN/CD147, blood serum

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/545/304; Crosnier C., Bustamante L.Y., Bartholdson S.J. et al. Basigin is a receptor essential for erythrocyte invasion by Plasmodium falciparum. Nature 2011;480(7378):534–7. DOI:10.1038/nature10606; Zeng W., Su J., Wu L. et al. CD147 promotes melanoma progression through hypoxia-induced MMP2 activation. Curr Mol Med 2014;14(1):163–73. DOI:10.2174/15665240113136660077; Kong L.M., Liao C.G., Zhang Y. et al. A regulatory loop involving miR-22, Sp1, and c-Myc modulates CD147 expression in breast cancer invasion and metastasis. Cancer Res 2014;74(14):3764–78. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-13-3555; Kong L.M., Yao L., Lu N. et al. Interaction of KLF6 and Sp1 regulates basigin-2 expression mediated proliferation, invasion and metastasis in hepatocellular carcinoma. Oncotarget 2016;7(19):27975–87. DOI:10.18632/oncotarget.8564; Grass G.D., Toole B.P. How, with whom and when: an overview of CD147-mediated regulatory networks influencing matrix metalloproteinase activity. Biosci Rep 2015;36(1):e00283. DOI:10.1042/BSR20150256; Pinheiro C., Garcia E.A., Morais-Santos F. et al. Reprogramming energy metabolism and inducing angiogenesis: co-expression of monocarboxylate transporters with VEGF family members in cervical adenocarcinomas. BMC Cancer 2015;15:835. DOI:10.1186/s12885-015-1842-4; Li S., Nguyen T.T., Bonanno J.A. CD147 required for corneal endothelial lactate transport. Invest Ophthalmol Vis Sci 2014;55(7):4673–81. DOI:10.1167/iovs.14-14386; Xin X., Zeng X., Gu H. et al. CD147/EMMPRIn overexpression and prognosis in cancer: a systematic review and meta-analysis. Sci Rep 2016;6:32804. DOI:10.1038/srep32804; Berditchevski F., Chang S., Bodorova J., Hemler M.E. Generation of monoclonal antibodies to integrin-associated proteins. Evidence that alpha3beta1 complexes with EMMPRIN/basigin/ OX47/M6. J Biol Chem 1997;272(46):29174–80. DOI:10.1074/jbc.272.46.29174; Egawa N., Koshikawa N., Tomari T. et al. J Biol Chem 2006;281(49):37576–85. DOI:10.1074/jbc.M606993200; Sidhu S.S., Mengistab A.T., Tauscher A.N. et al. The microvesicle as a vehicle for EMMPRIn in tumor-stromal interactions. Oncogene 2004;23(4):956–63. DOI:10.1038/sj.onc.1207070; Kim H.-S., Kim H.J., Lee M.R., Han I. EMMPRIn expression is associated with metastatic progression in osteosarcoma. BMC Cancer 2021;21(1):1059. DOI:10.1186/s12885-021-08774-9; Lu Q., Lv G., Kim A. et al. Expression and clinical significance of extracellular matrix metalloproteinase inducer, EMMPRIN/ CD147, in human osteosarcoma. Oncol Lett 2013;5(1):201–7. DOI:10.3892/ol.2012.981; Wu J., Hao Z.W., Zhao Y.X. et al. Full-length soluble CD147 promotes MMP-2 expression and is a potential serological marker in detection of hepatocellular carcinoma. J Transl Med 2014;12:190. DOI:10.1186/1479-5876-12-190; Taylor P.M., Woodfield R.J., Hodgkin M.N. et al. Breast cancer cell-derived EMMPRIn stimulates fibroblast MMP2 release through a phospholipase A(2) and 5-lipoxygenase catalyzed pathway. Oncogene 2002;21(37):5765–72. DOI:10.1038/sj.onc.1205702; Hanata K., Yamaguchi N., Yoshikawa K. et al. Soluble EMMPRIn (extra-cellular matrix metalloproteinase inducer) stimulates the migration of HEp-2 human laryngeal carcinoma cells, accompanied by increased MMP-2 production in fibroblasts. Arch Histol Cytol 2007;70(5):267–77. DOI:10.1679/aohc.70.267; Koga K., Nabeshima K., Aoki M. et al. Emmprin in epithelioid sarcoma: expression in tumor cell membrane and stimulation of MMP-2 production in tumor-associated fibroblasts. Int J Cancer 2007;120(4):761–8. DOI:10.1002/ijc.22412; Kong L.M., Liao C.G., Chen L. et al. Promoter hypomethylation up-regulates CD147 expression through increasing Sp1 binding and associates with poor prognosis in human hepatocellular carcinoma. J Cell Mol Med 2011;15(6):1415–28. DOI:10.1111/j.1582-4934.2010.01124.x; Hakuma N., Betsuyaku T., Kinoshita I. et al. High incidence of extracellular matrix metalloproteinase inducer expression in non-small cell lung cancers. Association with clinicopathological parameters. Oncology 2007;72(3–4):197–204. DOI:10.1159/000112826; Yoshioka Y., Kosaka N., Konishi Y. et al. Ultra-sensitive liquid biopsy of circulating extracellular vesicles using ExoScreen. Nat Commun 2014;5:3591. DOI:10.1038/ncomms4591; Qiao X., Gu Y., Yu J. et al. The combination of CD147 and MMP-9 Serum levels is identified as novel chemotherapy response markers of advanced non-small-cell lung cancer. Dis Markers 2020;2020:8085053. DOI:10.1155/2020/8085053; https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/545

  9. 9
    Academic Journal

    المساهمون: The studies were carried out at UNIIM – Affiliated Branch of the D. I. Mendeleyev Institute for Metrology as part of the development work «Development of a reference complex for measuring the mass flow of cryogenic liquids, a set of state primary reference measurement procedures, reference installations and reference materials for metrological support of measurements in medical laboratory diagnostics, complex for metrological support of digital electrical substations». All measurements were carried out using the equipment of UNIIM – Affiliated Branch of the D. I. Mendeleyev Institute for Metrology., Исследования выполнены в УНИИМ – филиале ФГУП «ВНИИМ им. Д. И. Менделеева» в рамках составной части опытно-конструкторской работы «Разработка эталонного комплекса измерения массового расхода криогенных жидкостей, комплекса государственных первичных референтных методик измерений, эталонных установок и стандартных образцов для метрологического обеспечения измерений в медицинской лабораторной диагностике, комплекса для метрологического обеспечения цифровых электрических подстанций». Все измерения проводились с использованием оборудования УНИИМ – ф илиала ФГУП «ВНИИМ им. Д. И. Менделеева».

    المصدر: Measurement Standards. Reference Materials; Том 19, № 3 (2023); 103-127 ; Эталоны. Стандартные образцы; Том 19, № 3 (2023); 103-127 ; 2687-0886

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.rmjournal.ru/jour/article/view/407/294; Turnlund J. R. Human whole-body copper metabolism // The American Journal of Clinical Nutrition. 1998. Vol. 67. № 5. Р. 960S-964S. https://doi.org/10.1093/ajcn/67.5.960S; Mitochondrial copper in human genetic disorders / N. M. Garza [et al.] // Trends in Endocrinology and Metabolism. 2023. Vol. 34, № 1. P. 21–33. https://doi.org/10.1016/j.tem.2022.11.001; Biological applications of copper-containing materials / P. Wang [et al.] // Bioactive Materials. 2021. Vol. 6, № 4. P. 916–927. https://doi.org/10.1016/j.bioactmat.2020.09.017; Association between zinc and body composition: An integrative review / T. A. Cunha [et al.] // Journal of Trace Elements in Medicine and Biology. 2022. Vol. 71. P. 126940. https://doi.org/10.1016/j.jtemb.2022.126940; Kanwar A., Sharma A. A review on role of zinc as a potent immunity boosting agent // Materials Today: Proceedings. 2022. Vol. 68. № 4. P. 880–885. https://doi.org/10.1016/j.matpr.2022.06.423; Nriagu J. Zinc Deficiency in Human Health // Encyclopedia of Environmental Health. 2th ed. 2019. P. 489–499. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-409548-9.11433–2; Роль микроэлементов в спортивном питании и безопасность металлохелатов / Н. Н. Каркищенко [и др.] // Биомедицина. 2013. № 3. С. 12–41.; Камилова Н. М., Садыхов Н. М., Алиев Ч. С. Диагностическое и прогностическое значение изучения влияния цинка, меди и селена на состояние здоровья человека // Биомедицина. 2016. № 4. С. 71–77.; Development and validation of an ICP-MS method and its application to determine multiple trace elements in small volumes of whole blood and plasma / E. M. Tanvir [et al.] // Journal of Analytical Toxicology. 2020. Vol. 44, № 9. P. 1036–1046. https://doi.org/10.1093/jat/bkaa033; Evaluation of metallic trace elements contents in some major raw foodstuffs in Burkina Faso and health risk assessment / B. S. R. Bazié1 [et al.] // Scientific Reports. 2022. Vol. 12, № 1. P. 4460. https://doi.org/10.1038/s41598–022–08470-z; Lau A. T. Y., Tan H. W., Xu Y. M. Epigenetic effects of dietary trace elements // Current Protocols in Pharmacology. 2017. № 3. P. 232– 241. https://doi.org/10.1007/s40495–017–0098-x; Tabrez Sh., Khan, Malik A. Microbial biofertilizers and micronutrient availability. The role of zinc in agriculture and human health. Switzerland: Springer, Cham, 2022. 461 p.; Molenda M., Kolmas J. The role of zinc in bone tissue health and regeneration-a review // Biological Trace Element Research. 2023. Published: 01 April 2023. https://doi.org/10.1007/s12011-023-03631-1; Zinc and its importance for human health: An integrative review / N. Roohani [et al.] // Journal of Research in Medical Sciences. 2013. Vol. 18, № 2. P. 144–157.; Mandarano A. H., McGargill M. A. Copper homeostasis is critical for T cell activation // The Journal of Immunology. 2022. Vol. 208. https://doi.org/10.4049/jimmunol.208.Supp.166.08; The molecular mechanisms of copper metabolism and its roles in human diseases / J. Chen [et al.] // Pflugers Arch – European Journal of Physiology. 2020. Vol. 472. P. 1415–1429. https://doi.org/10.1007/s00424-020-02412-2; Matouke M. M., Remawa A. A., Ndaghu N. N. Copper, zinc, lead, cadmium contents and health hazard inference of consuming Pseudotolithus senegalensis (Valenciennes, 1833) from Usuma dam, Abuja, Nigeria // Scientific African. 2022. Vol. 17. P. e01354. https://doi.org/10.1016/j.sciaf.2022.e01354; Review of copper and copper alloys as immune and antibacterial element / Y.-g. Wang [et al.] // Transactions of Nonferrous Metals Society of China. 2022. Vol. 32. № 10. P. 3163–3181. https://doi.org/10.1016/S1003–6326(22)66011-4; Трошина Е. А., Сенюшкина Е. С. Роль цинка в процессах синтеза и метаболизма гормонов щитовидной железы // Клиническая и экспериментальная тиреоидология. 2020. Т. 16, № 3. С. 25–30. https://doi.org/10.14341/ket12697; Налетов А. В., Мацынин А. Н., Мацынина М. А. Обеспеченность цинком – важный показатель здоровья человека // Health, Food & Biotechnology. 2022. Т. 4, № 3. С. 12–18. https://doi.org/10.36107/hfb.2022.i3.s147; Парахонский А. П. Роль меди в организме и значение ее дисбаланса // Естественно-гуманитарные исследования. 2015. № 10, Вып. 4. С. 73–94.; Ke. Q., Costa M., Kazantzis G. Chapter 10 – C arcinogenicity of metal compounds // Nordberg handbook on the toxicology of metals / Gunnar F. N. [et al.] eds. Academic Press, 2007. P. 177–196. https://doi.org/10.1016/B978–012369413–3/50065–3; Спектральные методы оценки содержания макро- и микроэлементов в биологических средах человека в норме / И. Н. Андрусишина [и др.] // Журнал Микроэлементы в медицине. 2011. Т. 12, № 3–4. С. 35–42.; Скиба Т. В., Цыганкова А. Р., Борисова Н. С. Прямое определение тяжелых металлов (Cu, Рb, Cd, Zn) в цельной крови и эякуляте быков методом инверсионной вольтамперометрии с использованием толстопленочных модифицированных графитовых электродов // Аналитика Сибири и Дальнего Востока: материалы Х Всероссийской научной конференции с международным участием, Барнаул, 12–17 сентября 2016 года. Барнаул: Алтайский государственный университет, 2016. С. 86.; Rapid quantitative determination of metals in blood and liver by FAAS / A. Irnius [et al.] // Chemija. 2005. Vol. 16, № 3–4. P. 29–33.; Determination of trace metal levels in the general population of Korea / H.-J. Kim [et al.] // International Journal of Environmental Research and Public Health. 2017. Vol. 14, № 7. P. 702. https://doi.org/10.3390/ijerph14070702; Murphy K. E., Long S. E., Vocke R. D. On the certification of cadmium at trace and ultratrace levels in standard reference materials using ID ICP-MS // Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2007. Vol. 387, № 7. Р. 2453–2461. https://doi.org/10.1007/s00216-006-0880-9; Development of isotope dilution cold vapor inductively coupled plasma mass spectrometry and its application to the certification of mercury in NIST standard reference materials / S. J. Christopher [et al.] // Analytical Chemistry. 2001. Vol. 73, № 10. Р. 2190– 2199. https://doi.org/10.1021/ac0013002; Murphy K. E., Paulsen P. J. The determination of lead in blood using isotope dilution inductively coupled plasma mass spectrometry // Fresenius Journal of Analytical Chemistry. 1995. Vol. 352. Р.203–208. https://doi.org/10.1007/BF00322327; Comparison of clinical methods with isotope dilution inductively coupled plasma mass spectrometry for the new standard reference material 955c lead in caprine blood / K. E. Murphy [et al.] // Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 2009. Vol. 24. Р. 1170–1178. https://doi.org/10.1039/B903060C; Ellison S. L. R ., Williams A. (Eds). Eurachem/CITAC Guide: Quantifying Uncertainty in Analytical Measurement. 3th ed. 2012. URL: www.eurachem.org (дата обращения: 22.04.2022).; Atomic masses // CIAAW of IUPAC. URL: http://www.ciaaw.org/atomic-masses.htm (дата обращения: 22.04.2022).; Создание эталонной установки на основе метода кулонометрии с контролируемым потенциалом в рамках совершенствования государственного первичного эталона ГЭТ 176 и ее измерительные возможности / В. М. Зыскин [и др.] // Эталоны. Стандартные образцы. 2016. № 2. С. 44–54. https://doi.org/10.20915/2077-1177-2016-0-2-44-54; Meija J., Mester Z. Paradigms in isotope dilution mass spectrometry for elemental speciation analysis // Аnalytica chimica acta. 2008. Vol. 607, № 2. Р.115–125. https://doi.org/10.1016/j.aca.2007.11.050; Isotope dilution analysis for elemental speciation: a tutorial review / P. Rodrı´guez-Gonzalez [et al.] // Spectrochimica Acta Part B: Atomic Spectroscopy. 2005. Vol. 60, № 2. Р. 151–207. https://doi.org/10.1016/j.sab.2005.01.005; https://www.rmjournal.ru/jour/article/view/407

  10. 10
    Academic Journal
  11. 11
    Academic Journal

    المصدر: Medical Herald of the South of Russia; Том 14, № 4 (2023); 5-10 ; Медицинский вестник Юга России; Том 14, № 4 (2023); 5-10 ; 2618-7876 ; 2219-8075 ; 10.21886/2219-8075-2023-14-4

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1806/985; Адамян Л.В., Фархат К.Н., Макиян З.Н., Савилова А.М. Молекулярно-биологическая характеристика эутопического и эктопического эндометрия (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2015;21(4):8−16.; Ермолова Н.В., Левкович М.А., Петров Ю.А., Авруцкая В.В., Крукиер И.И., Савченко А.В. Значение метаболомных нарушений при бесплодии и невынашивании беременности у пациенток с наружным генитальным эндометриозом. Журнал акушерства и женских болезней. 2022;71(4):21–31. https://doi.org/10.17816/JOWD106001; Shafrir AL, Farland LV, Shah DK, Harris HR, Kvaskoff M, et al. Risk for and consequences of endometriosis: A critical epidemiologic review. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2018;51:1-15. https://doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2018.06.001; Izumi G, Koga K, Takamura M, Makabe T, Satake E, et al. Involvement of immune cells in the pathogenesis of endometriosis. J Obstet Gynaecol Res. 2018;44(2):191-198. https://doi.org/10.1111/jog.13559; Ярмолинская М.И., Сельков С.А. Особенности планирования и ведения беременности у женщин с генитальным эндометриозом. Журнал акушерства и женских болезней. 2011;3:176−185.; Левкович М.А., Ермолова Н.В., Аванесова Т.Г., Маркарян И.В. Современные взгляды на патогенез генитального эндометриоза: роль гормональных, иммунологических, генетических факторов. Таврический медико-биологический вестник. 2017;20(2-2):185-189.; Аванесова Т.Г., Левкович М.А., Ермолова Н.В., Палиева Н.В., Петров Ю.А. Роль интерлейкина-8 и полиморфизма его гена в формировании наружного генитального эндометриоза у пациенток репродуктивного возраста. Акушерство и гинекология. 2021;3:124-129.; Chen LH, Chan SH, Li CJ, Wu HM, Huang HY. Altered Expression of Interleukin-18 System mRNA at the Level of Endometrial Myometrial Interface in Women with Adenomyosis. Curr Issues Mol Biol. 2022;44(11):5550-5561. https://doi.org/10.3390/cimb44110376; Zhang T, De Carolis C, Man GCW, Wang CC. The link between immunity, autoimmunity and endometriosis: a literature update. Autoimmun Rev. 2018;17(10):945-955. https://doi.org/10.1016/j.autrev.2018.03.017; Zhou WJ, Yang HL, Shao J, Mei J, Chang KK, et al. Anti-inflammatory cytokines in endometriosis. Cell Mol Life Sci. 2019;76(11):2111-2132. https://doi.org/10.1007/s00018-019-03056-x.; Malutan AM, Drugan T, Costin N, Ciortea R, Bucuri C, et al. Pro-inflammatory cytokines for evaluation of inflammatory status in endometriosis. Cent Eur J Immunol. 2015;40(1):96-102. https://doi.org/10.5114/ceji.2015.50840.; Babaabasi B, Ahani A, Sadeghi F, Bashizade-Fakhar H, Khorram Khorshid HR. The Association between TNF-alpha Gene Polymorphisms and Endometriosis in An Iranian Population. Int J Fertil Steril. 2019;13(1):6-11. https://doi.org/10.22074/ijfs.2019.5542; https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1806

  12. 12
    Academic Journal

    المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 2 (2024); 329-336 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 2 (2024); 329-336 ; 2313-741X ; 1563-0625

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2851/1905; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2851/12086; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2851/12087; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2851/12088; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2851/12089; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2851/12090; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2851/12091; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2851/12092; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2851/12093; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2851/12883; Клинические рекомендации. Хронический миелолейкоз, 2020. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://cr.minzdrav.gov.ru/recomend/142.; Соснина А.В., Великая Н.В., Вараксин Н.А., Гришаев М.П., Аутеншлюс А.И. Роль цитокинов в патогенезе злокачественных новообразований. Новосибирск, 2014. 128 с.; Ågerstam H., Hansen N., von Palffy S., Sandén C., Reckzeh K., Karlsson C., Lilljebjörn H., Landberg N., Askmyr M., Högberg C., Rissler M., Porkka K., Wadenvik H., Mustjoki S., Richter J., Järås M., Fioretos T. IL1RAP antibodies block IL-1-induced expansion of candidate CML stem cells and mediate cell killing in xenograft models. Blood, 2016, Vol. 128, no. 23, рр. 2683-2693.; Fisher D.A.C., Fowles J.S., Zhou A., Oh S.T. Inflammatory pathophysiology as a contributor to myeloproliferative neoplasms. Front. Immunol., 2021, Vol. 12, 683401. doi:10.3389/fimmu.2021.683401.; Greten F.R., Grivennikov S.I. Inflammation and cancer: triggers, mechanisms and consequences. Immunity, 2019, Vol. 51, no. 1, рр. 27-41.; Herrmann O., Kuepper M.K., Bütow M., Costa I.G., Appelmann I., Beier F., Luedde T., Braunschweig T., Koschmieder S., Brümmendorf T.H., Schemionek M. Infliximab therapy together with tyrosine kinase inhibition targets leukemic stem cells in chronic myeloid leukemia. BMC Cancer, 2019, Vol. 19, no. 1, 658. doi:10.1186/s12885-019-5871-2.; Hochhaus A., Baccarani M., Silver R.T., Schiffer C., Apperley J.F., Cervantes F., Clark R.E., Cortes J.E., Deininger M.W., Guilhot F., Hjorth-Hansen H., Hughes T.P., Jannsen J.J.W.M., Kantarjian H.M., Kim D.W., Larson R.A., Lipton J.H., Mahon F.X., Mayer J., Nicolini F., Niederwieser D., Pane F., Radich J.P., Rea D., Richter J., Rosti G., Rousselot P., Saglio G., Saußele S., Soverini S., Steegmann J.L., Turkina A., Zaritskey A., Hehlmann R. European LeukemiaNet 2020 recommendations for treating chronic myeloid leukemia. Leukemia, 2020, Vol. 34, pp. 966-984.; Kvasnicka H.M., Thiele J., Staib P., Schmitt-Graeff A., Griesshammer M., Klose J., Engels K., Krieneret S. Reversal of bone marrow angiogenesis in chronic myeloid leukemia following imatinib mesylate (STI571) therapy. Blood, 2004, Vol. 103, pp. 3549-3551.; Lan T., Chen L., Wei X. Inflammatory cytokines in cancer: comprehensive understanding and clinical progress in gene therapy. Cells, 2021, Vol. 10, no. 1, 100. doi:10.3390/cells10010100.; Luciano M., Krenn P.W., Horejs-Hoeck J. The cytokine network in acute myeloid leukemia. Front. Immunol., 2022, Vol. 13, 1000996. doi:10.3390/cells10010100.; Masselli E., Pozzi G., Gobbi G., Merighi S., Gessi S., Vitale M., Carubbi C. Cytokine profiling in myeloproliferative neoplasms: overview on phenotype correlation, outcome prediction, and role of genetic variants. Cells, 2020, Vol. 9, no. 9, 2136. doi:10.3390/cells9092136.; Mikkola T., Almahmoudi R., Salo T., Al-Samadi A. Variable roles of interleukin-17F in different cancers. BMC Cancer, 2022, Vol. 22, no. 1, 54. doi:10.1186/s12885-021-08969-0.; Nievergall E., Reynolds J., Kok C.H., Watkins D.B., Biondo M., Busfield S.J., Vairo G., Fuller K., Erber W.N., Sadras T., Grose R., Yeung D.T., Lopez A.F., Hiwase D.K., Hughes T.P., White D.L. TGF-α and IL-6 plasma levels selectively identify CML patients who fail to achieve an early molecular response or progress in the first year of therapy. Leukemia, 2016, Vol. 30, no. 6, рр. 1263-1272.; Reynaud D., Pietras E., Barry-Holson K., Mir A., Binnewies M., Jeanne M., Sala-Torra O., Radich J.P., Passegué E. IL-6 controls leukemic multipotent progenitor cell fate and contributes to chronic myelogenous leukemia development. Cancer Cell, 2011, Vol. 20, no. 5, рр. 661-673.; Riether C., Schürch C.M., Ochsenbein A.F. Regulation of hematopoietic and leukemic stem cells by the immune system. Cell Death Differ., 2015, Vol. 22, no. 2, рр. 187-198.; Saraiva M., Vieira P., O’Garra A. Biology and therapeutic potential of interleukin-10. J. Exp. Med., 2020, Vol. 217, no. 1, e20190418. doi:10.1084/jem.20190418.; Shah M., Bhatia R. Preservation of quiescent chronic myelogenous leukemia stem cells by the bone marrow microenvironment. Adv. Exp. Med. Biol., 2018, Vol. 1100, pp. 97-110.; Sharma K., Singh U., Rai M., Shukla J., Gupta V., Narayan G., Kumar S. Interleukin 6 and disease transformation in chronic myeloid leukemia: A Northeast Indian population study. J. Cancer Res. Ther., 2020, Vol. 16, no. 1, рр. 30-33.; Shen N., Liu S., Cui J., Li Q., You Y., Zhong Z., Cheng F., Guo A.Y., Zou P., Yuan G., Zhu X. Tumor necrosis factor α knockout impaired tumorigenesis in chronic myeloid leukemia cells partly by metabolism modification and miRNA regulation. Onco Targets Ther., 2019, Vol. 29, no. 12, р. 2355-2364.; Zhang B., Ho Y.W., Huang Q., Maeda T., Lin A., Lee S.U., Hair A., Holyoake T.L., Huettner C., Bhatia R. Altered microenvironmental regulation of leukemic and normal stem cells in chronic myelogenous leukemia. Cancer Cell, 2012, Vol. 21, no. 4, pp. 577-592.; Zhao J., Chen X., Herjan T., Li X. The role of interleukin-17 in tumor development and progression. J. Exp. Med., 2020, Vol. 217, no. 1, е20190297. doi:10.1084/jem.20190297.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2851

  13. 13
    Academic Journal

    المصدر: Journal Infectology; Том 15, № 2 (2023); 105-113 ; Журнал инфектологии; Том 15, № 2 (2023); 105-113 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2023-15-2

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1509/1064; Горелик, Е.Ю. Острые нейроинфекции и симптоматическая эпилепсия у детей: причинно-следственные связи (обзор литературы) / Е.Ю. Горелик [и др.] // Журнал инфектологии. – 2017. – Т. 9, № 3. – С. 5–13.; Скрипченко, Н.В. Нейроинфекции у детей в современных условиях. Практическая медицина. / Н.В. Скрипченко [и др.] // 2017. – № 10 (111). – С. 7–15.; Алексеева, Л.А. Цитокины и нейроспецифические белки при вирусных энцефалитах и судорожном синдроме у детей. I. Вирусные энцефалиты. / Л.А. Алексеева [и др.] // Инфекция и иммунитет. – 2020; Т.10, № 4. – С. 625–638.; Haque A, Polcyn R, Matzelle D, Banik NL. New. Insights into the Role of Neuron-Specific Enolase in Neuro-Inflammation, Neurodegeneration, and Neuroprotection. Brain Sci. 2018 Feb; 8(2): 33.; Gonzalez L L, Garrie K, Turner MD. Role of S-100 proteins in health and disease. Biochim Biophys Acta Mol Cell Res. 2020 Jun; 1867(6):118677.; Sreejit G, Flynn MC, Patil M, Krishnamurthy P, et al. Adv Clin Chem. 2020; 98: 173-231.; Allg wer C, Kretz A-L, Karstedt S, et al. Friend or Foe: S-100 Proteins in Cancer. Cancers (Basel). 2020 Jul 24; 12(8):2037.; Yao S, Yang X, An J, et al. Role of the S-100 protein family in liver disease (Review). Int J Mol Med. 2021 Sep; 48(3):166.; Roh JS, Sohn DH. Damage-Associated Molecular Patterns in Inflammatory Diseases. Immune Netw. 2018 Aug 13; 18 (4):e27.; Xia C, Braunstein Z, Toomey AC, et al. S-100 Proteins as an Important Regulator of Macrophage Inflammation. Front Immunol. 2018; 8:1908.; Траилин, А.В. Белок S-100В: нейробиология, значение при неврологической и психиатрической патологии / А.В. Траилин, О.А. Левада // Международный неврологический журнал. – 2009. – №1.– С.166–175.; Kozlyuk N, Monteith A. J, Garcia V, et al. S-100 Proteins in the Innate Immune Response to Pathogens. Methods Mol Biol. 2019; 1929: 275-290.; Sarkulova Zh , Tokshilykova A, Sarkulov M, et al. The level of S-100 in blood serum as a prognostic factor of outcome in secondary brain lesions. Georgian Med News. 2021 Dec; (321):162-168.; Канюченко, Е.А. Сопоставительный анализ содержания нейроспецифических белков и цитокинов в сыворотке крови пациентов в остром и раннем периодах травматической болезни спинного мозга / Е.А. Канюченко [и др.] // Фундаментальные исследования. – 2014. – Т.7, № 5. – С. 974–979.; Tokshilykova AB, Sarkulova N Zh, Kabdrakhmanova G B, et al. Neuron-Specific Markers and their Correlation with Neurological Scales in Patients with Acute Neuropathologies. J Mol Neurosci.2020; 70(8):1267-1273.; Liu B, Xie Z, Liu G, et al. Elevated neuron-specific enolase and S-100 calcium-binding protein B concentrations in cerebrospinal fluid of patients with anti-N-methyl-d-aspartate receptor encephalitis. Clin Chim Acta. 2018 May; 480:79-83.; Алексеева, Л.А. Маркеры повреждения нейронов и глии в цереброспинальной жидкости при менингитах у детей / Л.А. Алексеева [и др.] // Клиническая лабораторная диагностика. 2017. – Т. 62, № 4. – С. 204–210.; Feng Q, Wu L, Ai YH, et al. The diagnostic value of neuron-specific enolase, central nervous system specific protein and interleukin-6 in sepsis-associated encephalopathy. Zhonghua Nei Ke Za Zhi. 2017 Oct 1; 56(10):747-751.; Au AK, Bell MJ, Fink EL, et al. Brain-Specific Serum Biomarkers Predict Neurological Morbidity in Diagnostically Diverse Pediatric Intensive Care Unit Patients Observational Study/ Neurocrit Care. 2018 Feb; 28(1):26-34.; Алексеева, Л.А. Цитокины и нейроспецифические белки при вирусных энцефалитах и судорожном синдроме у детей. II. Судорожный синдром / Л.А. Алексеева [и др.] // Инфекция и иммунитет. 2021. – Т.11, № 3. – С.433–446.; Shaik AJ, Reddy K, Mohammed N, et al. Neuron specific enolase as a marker of seizure related neuronal injury. Neurochem Int. 2019 Dec; 131:104509.; Hanin A, Demeret S, Denis JA, et al. Serum neuron-specific enolase: a new tool for seizure risk monitoring after status epilepticus. Eur J Neurol. 2022 Mar; 29(3):883-889.; Hanin A, Denis JA, Frazzini V, et al. Neuron Specific Enolase, S-100-beta protein and progranulin as diagnostic biomarkers of status epilepticus. Neurol. 2022 Jul; 269(7):3752-3760.; Simani L, Sadeghi M, Ryan F, et al. Elevated Blood-Based Brain Biomarker Levels in Patients with Epileptic Seizures: A Systematic Review and Meta-analysis. ACS Chem Neurosci. 2020 Dec 16; 11(24):4048-4059.; Studahl M, Rosengren L, G nther G, Hagberg L. Difference in pathogenesis between herpes simplex virus type 1 encephalitis and tick-borne encephalitis demonstrated by means of cerebrospinal fluid markers of glial and neuronal destruction. J Neurol. 2000; 247(8): 636-642.; Горелик, Е.Ю. Новые аспекты диагностики и лечения герпетического энцефалита у детей раннего возраста / Е.Ю. Горелик, М.Н. Сорокина, Т.Н. Трофимова, М.В. Иванова // Детские инфекции. – 2003. – №3. – С.30–35.; Сорокина, М.Н. Вирусные энцефалиты и менингиты у детей: руководство для врачей / М.Н. Сорокина, Н.В Скрипченко. – М.: Медицина, 2004 – 416с.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1509

  14. 14
    Academic Journal

    المصدر: Bulletin of Siberian Medicine; Том 22, № 2 (2023); 68-77 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 22, № 2 (2023); 68-77 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2023-22-2

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5222/3395; https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5222/3418; Dumic J., Dabelic S., Flögel M. Galectin-3: an open-ended story. Biochim. Biophys. Acta. 2006;1760(4):616–635. DOI:10.1016/j.bbagen.2005.12.020.; Liu F.T., Hsu D.K. The role of galectin-3 in promotion of the inflammatory response. Drug News Perspect. 2007;20(7):455– 460. DOI:10.1358/dnp.2007.20.7.1149628.; Clementy N., Garcia B., André C., Bisson A., Benhenda N., Pierre B. et al. Galectin-3 level predicts response to ablation and outcomes in patients with persistent atrial fibrillation and systolic heart failure. PLoS One. 2018;13(8):e0201517. DOI:10.1371/journal.pone.0201517.; Asleh R., Enriquez-Sarano M., Jaffe A.S., Manemann S.M., Weston S.A., Jiang R. et al Galectin-3 Levels and Outcomes After Myocardial Infarction: A Population-Based Study. J. Am. Coll. Cardiol. 2019;73(18):2286–2295. DOI:10.1016/j.jacc.2019.02.046.; Chen S.C., Kuo P.L. The role of galectin-3 in the kidneys. Int. J. Mol. Sci. 2016;17(4):565. DOI:10.3390/ijms17040565.; Li Y., Li T., Zhou Z., Xiao Y. Emerging roles of galectin-3 in diabetes and diabetes complications: A snapshot. Rev. Endocr. Metab. Disord. 2022;23(3):569–577. DOI:10.1007/s11154-021-09704-7.; Wang W.H., Lin C.Y., Chang M.R., Urbina A.N., Assavalapsakul W., Thitithanyanont A. et al. The role of galectins in virus infection - A systemic literature review. J. Microbiol. Immunol. Infect. 2020;53(6):925–935. DOI:10.1016/j.jmii.2019. 09.005.; De Oliveira F.L., Gatto M., Bassi N., Luisetto R., Ghirardello A., Punzi L. et al. Galectin-3 in autoimmunity and autoimmune diseases. Exp. Biol. Med. (Maywood). 2015;240(8):1019– 1028. DOI:10.1177/1535370215593826.; Ashraf G.M., Baeesa S.S. Investigation of gal-3 expression pattern in serum and cerebrospinal fluid of patients suffering from neurodegenerative disorders. Front. Neurosci. 2018;12:430. DOI:10.3389/fnins.2018.00430.; Song L., Tang J.W., Owusu L., Sun M.Z., Wu J., Zhang J. Galectin-3 in cancer. Clin. Chim. Acta. 2014;431:185–191. DOI:10.1016/j.cca.2014.01.019.; Xie L., Ni W.K., Chen X.D., Xiao M.B., Chen B.Y., He S. et al. The expressions and clinical significances of tissue and serum galectin-3 in pancreatic carcinoma. J. Cancer Res. Clin. Oncol. 2012;138(6):1035–1043. DOI:10.1007/s00432-012-1178-2.; Matsuda Y., Yamagiwa Y., Fukushima K., Ueno Y., Shimosegawa T. Expression of galectin-3 involved in prognosis of patients with hepatocellular carcinoma. Hepatol. Res. 2008;38(11):1098–1111. DOI:10.1111/j.1872-034X.2008.00387.x.; Kim S.J., Lee S.J., Sung H.J., Choi I.K., Choi C.W., Kim B.S. et al. Increased serum 90K and Galectin-3 expression are associated with advanced stage and a worse prognosis in diffuse large B-cell lymphomas. Acta Haematol. 2008;120(4):211– 216. DOI:10.1159/000193223.; Acikalin M.F., Etiz D., Gurbuz M.K., Ozudogru E., Canaz F., Colak E. Prognostic significance of galectin-3 and cyclin D1 expression in undifferentiated nasopharyngeal carcinoma. Med. Oncol. 2012;29(2):742–749. DOI:10.1007/s12032-011- 9971-3.; Endo K., Kohnoe S., Tsujita E., Watanabe A., Nakashima H., Baba H. et al. Galectin-3 expression is a potent prognostic marker in colorectal cancer. Anticancer Res. 2005;25(4):3117– 3121.; Zhang X.M., Yao G.Y., Zhang B.Y., Wang L.L., Zhao M. [Study on the expression and significance of Galectin-3 and CDC25B mRNA in human gastric carcinoma]. Zhonghua Yi Xue Yi Chuan Xue Za Zhi. 2009;26(3):288–292. (In Chinese). DOI:10.3760/cma.j.issn.1003-9406.2009.03.011.; Yang Z.M., Wu X.T., He T., Da M.X., Luo T., Qian K. [Expression of galectin-3 mRNA in gastric cancer with peritoneal metastasis]. Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2006;37(1):105–108. (In Chinese).; O’Driscoll L., Linehan R., Liang Y.H., Joyce H., Oglesby I., Clynes M. Galectin-3 expression alters adhesion, motility and invasion in a lung cell line (DLKP), in vitro. Anticancer Res. 2002;22(6A):3117–3125.; Castronovo V., Van Den Brûle F.A., Jackers P., Clausse N., Liu F.T., Gillet C. et al. Decreased expression of galectin-3 is associated with progression of human breast cancer. J. Pathol. 1996;179(1):43–48. DOI:10.1002/(SICI)1096-9896(199605)179:13.0.CO;2-N.; Knapp J.S., Lokeshwar S.D., Vogel U., Hennenlotter J., Schwentner C., Kramer M.W. et al. Galectin-3 expression in prostate cancer and benign prostate tissues: correlation with biochemical recurrence. World J. Urol. 2013;31(2):351–358. DOI:10.1007/s00345-012-0925-y.; Wang Y., Nangia-Makker P., Tait L., Balan V., Hogan V., Pienta K.J. et al. Regulation of prostate cancer progression by galectin-3. Am. J. Pathol. 2009;174(4):1515–1523. DOI:10.2353/ajpath.2009.080816.; Zhou X., Jing J., Peng J., Mao W., Zheng Y., Wang D. et al. Expression and clinical significance of galectin-3 in osteosarcoma. Gene. 2014;546(2):403–407. DOI:10.1016/j.gene.2014.04.066.; Park G.B., Kim D.J., Kim Y.S., Lee H.K., Kim C.W., Hur D.Y. Silencing of galectin-3 represses osteosarcoma cell migration and invasion through inhibition of FAK/Src/Lyn activation and β-catenin expression and increases susceptibility to chemotherapeutic agents. Int. J. Oncol. 2015;46(1):185– 194. DOI:10.3892/ijo.2014.2721.; Dong R., Zhang M., Hu Q., Zheng S., Soh A., Zheng Y. et al. Galectin-3 as a novel biomarker for disease diagnosis and a target for therapy. Int. J. Mol. Med. 2018;41(2):599–614. DOI:10.3892/ijmm.2017.3311.; Crompton B.D., Stewart C., Taylor-Weiner A., Alexe G., Kurek K.C., Calicchio M.L. et al. The genomic landscape of pediatric Ewing sarcoma. Cancer Discov. 2014;4(11):1326– 1341. DOI:10.1158/2159-8290.CD-13-1037.; Huang Z., Ai Z., Li N., Xi H., Gao X., Wang F. et al. Over expression of galectin-3 associates with short-term poor prognosis in stage II colon cancer. Cancer Biomark. 2016;17(4):445– 455. DOI:10.3233/CBM-160661.; Okada K., Shimura T., Suehiro T., Mochiki E., Kuwano H. Reduced galectin-3 expression is an indicator of unfavorable prognosis in gastric cancer. Anticancer Res. 2006;26(2B):1369–1376.; https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5222

  15. 15
    Academic Journal

    المساهمون: 0

    المصدر: Almanac of Clinical Medicine; Vol 51, No 1 (2023); 23-31 ; Альманах клинической медицины; Vol 51, No 1 (2023); 23-31 ; 2587-9294 ; 2072-0505

    وصف الملف: application/pdf

  16. 16
    Academic Journal
  17. 17
    Academic Journal

    المصدر: Odesa National University Herald. Biology; Vol. 9 No. 5 (2004); 111-115 ; Вестник Одесского национального университета. Биология; Том 9 № 5 (2004); 111-115 ; Вісник Одеського національного університету. Біологія; Том 9 № 5 (2004); 111-115 ; 2415-3125 ; 2077-1746

    وصف الملف: application/pdf

  18. 18
    Academic Journal
  19. 19
    Academic Journal

    المساهمون: The study was carried out within the framework of the project “Epidemiological monitoring of the state of public health and the study of molecular genetic and molecular biological mechanisms for the development of common diseases in Siberia to improve approaches to their diagnosis, prevention and treatment”, No. 122031700094-5., Работа выполнена в рамках темы государственного задания «Эпидемиологический мониторинг состояния здоровья населения и изучение молекулярно-генетических и молекулярно-биологических механизмов развития распространенных терапевтических заболеваний в Сибири для совершенствования подходов к их диагностике, профилактике и лечению», Рег. № 122031700094-5.

    المصدر: Siberian journal of oncology; Том 21, № 2 (2022); 65-80 ; Сибирский онкологический журнал; Том 21, № 2 (2022); 65-80 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2022-21-2

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2091/971; Ferlay J., Soerjomataram I., Dikshit R., Eser S., Mathers C., Rebelo M., Parkin D.M., Forman D., Bray F. Cancer incidence and mortality worldwide: sources, methods and major patterns in GLOBOCAN 2012. Int J Cancer. 2015; 136(5): 359–86. doi:10.1002/ijc.29210.; Garborg K., Holme O., Løberg M., Kalager M., Adami H.O., Bretthauer M. Current status of screening for colorectal cancer. Ann Oncol. 2013; 24(8): 1963–72. doi:10.1093/annonc/mdt157.; Brenner H., Arndt V., Stürmer T. Cost-effectiveness of colonoscopy in screening for colorectal cancer. Arch Intern Med. 2002; 162(19): 2249. doi:10.1001/archinte.162.19.2249.; Pignone M., Rich M., Teutsch S.M., Berg A.O., Lohr A.N. Screening for colorectal cancer in adults at average risk: a summary of the evidence for the U.S. Preventive Services Task Force. Ann Intern Med. 2002; 137(2): 132–41. doi:10.7326/0003-4819-137-2-200207160-00015.; Bian X., Qian Y., Tan B., Li K., Hong X., Wong C.C., Fu L., Zhang D., Li D., Wu J.-L. In-depth mapping carboxylic acid metabolome reveals the potential biomarkers in colorectal cancer through characteristic fragment ions and metabolic flux. Anal Chim Acta. 2020; 1128: 62–71. doi:10.1016/j.aca.2020.06.064.; Monedeiro F., Monedeiro-Milanowski M., Ligor T., Buszewski B. A Review of GC‐Based Analysis of Non‐Invasive Biomarkers of Colorectal Cancer and Related Pathways. J Clin Med. 2020; 9: 3191–224. doi:10.3390/jcm9103191.; Sun L., Kang Q., Pan Y., Li N., Wang X., He Y., Wang H., Yu D., Xie H., Yang L., Lu Y., Jin P., Sheng J. Serum metabolite profiling of familial adenomatous polyposis using ultra performance liquid chromatography and tandem mass spectrometry. Cancer Biol Ther. 2019; 20(7): 1–12. doi:10.1080/15384047.2019.1595277.; Arab L., Akbar J. Biomarkers and the measurement of fatty acids. Public Health Nutr. 2002; 5: 865–71. doi:10.1079/phn2002391.; Zeleniuch-Jacquotte A., Chajes V., Van Kappel A.L., Riboli E., Toniolo P. Reliability of fatty acid composition in human serum phospholipids. Eur J Clin Nutr. 2000; 54: 367–72. doi:10.1038/sj.ejcn.1600964.; Katan M.B., van Birgelen A., Deslypere J.P., Penders M., van Staveren W.A. Biological markers of dietary intake, with emphasis on fatty acids. Ann Nutr Metab. 1991; 35: 249–52. doi:10.1159/000177653.; Mika A., Kobiela J., Czumaj A., Chmielewski M., Stepnowski P., Sledzinski T. Hyper-Elongation in Colorectal Cancer Tissue – Cerotic Acid is a Potential Novel Serum Metabolic Marker of Colorectal Malignancies. Cell Physiol Biochem. 2017; 41(2): 722–30. doi:10.1159/000458431.; Rifkin S.B., Shrubsole M.J., Cai Q., Smalley W.E., Ness R.M., Swift L.L., Zheng W., Murff H.J. PUFA levels in erythrocyte membrane phospholipids are differentially associated with colorectal adenoma risk. Br J Nutr. 2017; 117(11): 1615–22. doi:10.1017/S0007114517001490.; Crotti S., Agnoletto E., Cancemi G., Di Marco V., Traldi P., Pucciarelli S., Nitti D., Agostini M. Altered plasma levels of decanoic acid in colorectal cancer as a new diagnostic biomarker. Analytical and bioanalytical chemistry. 2016; 408(23): 6321–8. doi:10.1007/s00216-016-9743-1.; Kang J.X., Wang J. A simplified method for analysis of polyunsaturated fatty acids. BMC Biochem. 2005; 6: 5–13. doi:10.1186/1471-2091-6-5.; Shashkov M.V., Sidelnikov V.N. Properties of columns with several pyridinium and imidazolium ionic liquid stationary phases. J Chromatogr A. 2013; 1309: 56–63. doi:10.1016/j.chroma.2013.08.030.; Breiman L. Random Forests. Machine Learning. 2001; 45: 5–32. https://doi.org/10.1023/A:1010933404324.; Gradilla A.-C., Sanchez-Hernandez D., Brunt S., Scholpp L. From top to bottom: Cell polarity in Hedgehog and Wnt trafficking. BMC Biology. 2018; 16: 37–46. doi:10.1186/s12915-018-0511-x.; Doll S., Freitas F.P., Shah R., Aldrovandi M., da Silva M.C., Ingold I., Goya Grocin A., Xavier da Silva T.N., Panzilius E., Scheel C.H., Mourao A., Buday K., Sato M., Wanninger J., Vignane T., Mohana V., Rehberg M., Flatley A., Schepers A., Kurz A., White D., Sauer M., Sattler M., Tate E.W., Schmitz W., Schulze A., O’Donnell V., Proneth B., Popowicz G.M., Pratt D.A., Angeli J.P.F., Conrad M. FSP1 is a glutathioneindependent ferroptosis suppressor. Nature. 2019; 575(7784): 693–8. doi:10.1038/s41586-019-1707-0.; Igal R.A. Stearoyl-CoA desaturase-1: a novel key player in the mechanisms ofcell proliferation, programmed cell death and transformation to cancer. Carcinogenesis. 2010; 31: 1509–15. doi:10.1093/carcin/bgq131.; Danielsen S.A., Eide P.W., Nesbakken A., Guren T., Leithe E., Lothe R.A. Portrait of the PI3K/AKT pathway in colorectal cancer. Biochim Biophys Acta. 2015; 1855: 104–21. doi:10.1016/j.bbcan.2014.09.008.; Zhou X.P., Loukola A., Salovaara R., Nystrom-Lahti M., Peltomaki P., de laChapelle A., Aaltonen L.A., Eng C. PTEN mutational spectra, expression levels,and subcellular localization in microsatellite stable and unstable colorectalcancers. Am J Pathol. 2002; 161: 439–47. doi:10.1016/S0002-9440(10)64200-9.; Baro L., Hermoso J.C., Nunez M.C., Jimenez-Rios J.A., Gil A. Abnormalities in plasma and red blood cell fatty acid profiles of patients with colorectal cancer. Br J Cancer. 1998; 77: 1978–83. doi:10.1038/bjc.1998.328.; Veglia F., Tyurin V.A., Blasi M., De Leo A., Kossenkov A.V., Donthireddy L., To T.K.J., Schug Z., Basu S., Wang F., Ricciotti E., Di Russo C., Murphy M.E., Vonderheide R.H., Lieberman P.M., Mulligan C., Nam B., Hockstein N., Masters G., Guarino M., Lin C., Nefedova Y., Black P., Kagan V.E., Gabrilovich D.I. Fatty acid transport protein 2 reprograms neutrophils in cancer. Nature. 2019; 569(7754): 73–8. doi:10.1038/s41586-019-1118-2.; Kortlever R.M., Sodir N.M., Wilson C.H., Burkhart D.L., Pellegrinet L., Swigart L.B., Littlewood T.D., Evan G.I. Myc Cooperates with Ras by Programming Inflammation and Immune Suppression. Cell. 2017; 171: 1301–15. doi:10.1016/j.cell.2017.11.013.; Singh K.B., Hahm E.R., Kim S.H., Wendell S.G., Singh S.V. A novel metabolic function of Myc in regulation of fatty acid synthesis in prostate cancer. Oncogene. 2021; 40(3): 592–602. doi:10.1038/s41388-020-01553-z.; Duman C., Yaqubi K., Hoffmann A., Acikgoz A.A., Korshunov A., Bendszus M., Herold-Mende C., Liu H.K., Alfonso J. Acyl-CoA-Binding Protein Drives Glioblastoma Tumorigenesis by Sustaining Fatty Acid Oxidation. Cell Metabolism. 2019; 30(2): 274–89. doi:10.1016/j.cmet.2019.04.004.; Aregger M., Lawson K.A., Billmann M., Costanzo M., Tong A.H.Y., Chan K., Rahman M., Brown K.R., Ross C., Usaj M., Nedyalkova L., Sizova O., Habsid A., Pawling J., Lin Z.-Y., Abdouni H., Wong C.J., Weiss A., Mero P., Dennis J.W., Gingras A.C., Myers C.L., Andrews B.J., Boone C., Moffat J. Systematic mapping of genetic interactions for de novo fatty acid synthesis identifies C12orf49 as a regulator of lipid metabolism. Nature Metabolism. 2020; 2: 499–513. doi:10.1038/s42255-020-0211-z.; Yessoufou A., Ple A., Moutairou K., Hichami A., Khan N.A. Docosahexaenoic acid reduces suppressive and migratory functions of CD4+CD25+ regulatory T-cells. J Lipid Res. 2009; 50: 2377–88. doi:10.1194/jlr.M900101-JLR200.; Woodworth H.L., McCaskey S.J., Duriancik D.M., Clinthorne J.F., Langohr I.M., Gardner E.M., Fenton J.I. Dietary fish oil alters T lymphocyte cell populations and exacerbates disease in a mouse model of inflammatory colitis. Cancer Res 2010; 70(20): 7960–9. doi:10.1158/0008-5472.CAN-10-1396.; Ohmori H., Fujii K., Kadochi Y., Mori S., Nishiguchi Y., Fujiwara R., Kishi S., Sasaki T., Kuniyasu H. Elaidic Acid, a Trans-Fatty Acid, Enhances the Metastasis of Colorectal Cancer Cells. Pathobiology. 2017; 84(3): 144–51. doi:10.1159/000449205.; Cockbain A.J., Toogood G.J., Hull M.A. Omega-3 polyunsaturated fatty acids for the treatment and prevention of colorectal cancer. Gut. 2012; 61: 135–49. doi:10.1136/gut.2010.233718.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2091

  20. 20
    Academic Journal

    المصدر: Ophthalmology in Russia; Том 19, № 2 (2022); 378-383 ; Офтальмология; Том 19, № 2 (2022); 378-383 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2022-2

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1863/986; Hanahan D., Weinberg R.A. The Hallmarks of Cancer. Cell. 2000;100:57-70. DOI:10.1016/s0092-8674(00)81683-9; Colotta F., Allavena P., Sica A., Garlanda C., Mantovani A. Cancer-related inflammation, the seventh hallmark of cancer: links to genetic instability. Carcinogenesis. 2009;30:1073–1081. DOI:10.1093/carcin/bgp127; Mantovani A., Allavena P., Sica A., Balkwill F. Cancer-related inflammation. Nature. 2008 Jul 24;454(7203):436–444. DOI:10.1038/nature07205; Trinchieri G. Cancer and inflammation: an old intuition with rapidly evolving new concepts. Annu Rev Immunol. 2012;30:677–706. DOI:10.1146/annurev-immunol-020711-075008; Савельева О.Е., Перельмутер В.М., Таширева Л.А., Денисов Е.В., Исаева А.В. Воспаление как терапевтическая мишень при комплексном лечении злокачественных опухолей. Сибирский онкологический журнал. 2017;16(3):65–78. DOI:10.21294/1814-4861-2017-16-3-65-78; Клинические рекомендации «Увеальная меланома», 2020. https://oncology-association.ru/files/newclinical-guidelines/uvealnaja_melanoma.pdf; Kaplan R.N., Riba R.D., Zacharoulis S., Bramley A.H., Vincent L., Costa C., MacDonald D.D., Jin D.K., Shido K., Kerns S.A., Zhu Z., Hicklin D., Wu Y., Port J.L., Altorki N., Port E.R., Ruggero D., Shmelkov S.V., Jensen K.K., Rafii S., Lyden D. VEGFR1-positive haematopoietic bone marrow progenitors initiate the premetastatic niche. Nature. 2005 Dec 8;438(7069):820–827. DOI:10.1038/nature04186.8; Саакян С.В., Захарова Г.П., Мякошина Е.Б. Клеточное микроокружение увеальной меланомы: клинико-морфологические корреляции и предикторы неблагоприятного прогноза. Молекулярная медицина. 2020;18(3):27–33. DOI:10.29296/24999490-2020-03-04; Саакян С.В., Захарова Г.П., Мякошина Е.Б. Тучные клетки в микроокружении увеальной меланомы. Архив патологии. 2019;81(6):63–70. DOI:org/10.17116/patol20198106163; Мякошина Е.Б., Куликова И.Г., Балацкая Н.В., Катаргина Л.А., Саакян С.В. Трансформирующий фактор роста TGF-β при различном клиническом течении начальной меланомы хориоидеи до и после органосохранного лечения. Офтальмохирургия. 2020;3:58–64. DOI:10.25276/0235-4160-2020-3-58-64; Bierie В., Moses H.L. TGF-beta and cancer. Cytokine growth factor Rev. 2006;17:29–40.; Siegel Р., Massague J. Cytostatic and apoptotic actions of TGF-beta in homeostasis and cancer. Nat Rev Cancer. 2003;3:807–821. DOI:10.1038/nrc1208; Kawakami K., Kawakami M., Joshi B.H., Puri R.K. Interleukin-13 receptor-targeted cancer therapy in an immunodeficient animal model of human head and neck cancer. Cancer Res. 2001;61:6194–6200.; Hendrix M.J.C., Seftor E.A., Seftor R.E.B., Kirschmann D.A., Gardner L.M., Boldt H.C., Meyer M., Pe’er J., Folberg R. Regulation of uveal melanoma interconverted phenotype by hepatocyte growth factor/ scatter factor (HGF/SF). Am J Pathol. 1998;152:855–863.; Monique H., Hurks H., Metzelaar-Blok J.A., Barthen E. R., Zwinderman A.H., WolffRouendaal D., Keunen J.E., Jager M.J. Expression of epidermal growth factor receptor: risk factor in uveal melanoma. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2000;41:2023–2027.; Franco R., Botti G., Mascolo M., Loquercio G., Liguori G., Ilardi G., Losito S., Mura A.L., Calemma R., Ierano C., Bryce J., D’Alterio C., Scalaet S. CXCR4-CXCL12 and VEGF correlate to uveal melanoma progression. Frontiers in bioscience (Elite edition). 2010;2:13–21. DOI:10.2741/e60; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1863