-
1Academic Journal
المؤلفون: N. Kulchenko G., Н. Кульченко Г.
المصدر: Research and Practical Medicine Journal; Том 9, № 1 (2022); 117-124 ; Research'n Practical Medicine Journal; Том 9, № 1 (2022); 117-124 ; 2410-1893 ; 2409-2231 ; 10.17709/2410-1893-2022-9-1
مصطلحات موضوعية: male infertility, mast cells, pathogenesis, seminal plasma, ejaculate, inflammation, hemato-testicular barrier, мужское бесплодие, тучные клетки, патогенез, семенная плазма, эякулят, воспаление, гемато-тестикулярный барьер
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/779/476; Тарасова Т. В., Саушев И. В. Генетические причины азооспермии. Вестник Биомедицина и социология. 2019;4(2):16–20. https://doi.org/10.26787/nydha-2618-8783-2019-4-2-16-20; Тактаров В. Г., Ройтберг Г. Е., Алексеева М-Ф. Ф., Барсков И. В. Особенности клинического наблюдения варикоцеле в сочетании с патоспермией. Врач скорой помощи. 2020;(12):72–79. https://doi.org/10.33920/med-02-2012-05; Krausz C, Riera-Escamilla A. Genetics of male infertility. Nat Rev Urol. 2018 Jun;15(6):369–384. https://doi.org/10.1038/s41585-018-0003-3; Гамидов С. И., Шатылко Т. В., Попова А. Ю., Гасанов Н. Г., Гамидов Р. С. Оксидативный стресс сперматозоидов: клиническое значение и коррекция. Медицинский совет. 2021;(3):19–27. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2021-3-19-27; Сапожкова Ж. Ю., Милованова Г. А., Пацап О. И. Лабораторная диагностика мужского бесплодия. Маркеры. Часть I. Лабораторная и клиническая медицина. Фармация. 2021;1(1):57–68. https://doi.org/10.14489/lcmp.2021.01.pp.057-068; Саркисян Д. В., Виноградов И. В. Современный взгляд на лечение кист придатка яичка как фактора обструктивной азооспермии. Вестник урологии. 2019;7(3):47–54. https://doi.org/10.21886/2308-6424-2019-7-3-47-54; Костин А. А., Каприн А. Д., Семин А. В., Круглов Д. П., Даниелян А. А. Бесплодие как аспект качества жизни онкологических больных. Онкоурология. 2009;5(4):63–67. https://doi.org/10.17650/1726-9776-2009-5-4-63-67; Schuppe H-C, Pilatz A, Hossain H, Meinhardt A, Bergmann M, Haidl G, et al. Orchitis and male infertility. Urologe A. 2010 May;49(5):629–635. https://doi.org/10.1007/s00120-010-2256-1; Кадыров З. А., Москвичев Д. Д., Фаниев М. В. Показатели ингибина В в сыворотке крови у инфертильных больных. Андрология и генитальная хирургия. 2016;17(1):23–27. https://doi.org/10.17650/2070-9781-2016-17-1-23-27; Kulchenko N, Pashina N. Association of leukocyte activity and dna fragmentation in men with non-obstructive azoospermia. Georgian Med News. 2020 Feb;(299):26–29.; Atyakshin D, Samoilova V, Buchwalow I, Boecker W, Tiemann M. Characterization of mast cell populations using different methods for their identification. Histochem Cell Biol. 2017 Jun;147(6):683–694. https://doi.org/10.1007/s00418-017-1547-7; Frungieri MB, Weidinger S, Meineke V, Köhn FM, Mayerhofer A. Proliferative action of mast-cell tryptase is mediated by PAR2, COX2, prostaglandins, and PPARgamma: Possible relevance to human fibrotic disorders. Proc Natl Acad Sci U S A. 2002 Nov 12;99(23):15072– 15077. https://doi.org/10.1073/pnas.232422999; Atiakshin D, Buchwalow I, Tiemann M. Mast cells and collagen fibrillogenesis. Histochem Cell Biol. 2020 Jul;154(1):21–40. https://doi.org/10.1007/s00418-020-01875-9; Shea-Donohue T, Stiltz J, Zhao A, Notari L. Mast cells. Curr Gastroenterol Rep. 2010 Oct;12(5):349–357. https://doi.org/10.1007/s11894-010-0132-1; Atiakshin D, Buchwalow I, Samoilova V, Tiemann M. Tryptase as a polyfunctional component of mast cells. Histochem Cell Biol. 2018 May;149(5):461–477. https://doi.org/10.1007/s00418-018-1659-8; Atiakshin D, Buchwalow I, Tiemann M. Mast cell chymase: morphofunctional characteristics. Histochem Cell Biol. 2019 Oct;152(4):253–269. https://doi.org/10.1007/s00418-019-01803-6; Wang X, Lin L, Chai X, Wu Y, Li Y, Liu X. Hypoxic mast cells accelerate the proliferation, collagen accumulation and phenotypic alteration of human lung fibroblasts. Int J Mol Med. 2020 Jan;45(1):175–185. https://doi.org/10.3892/ijmm.2019.4400; Соболева М. Ю., Никитюк Д. Б., Алексеева Н .Т., Клочкова С. В., Атякшин Д. А., Гзрасимова О. А. и др. Гистотопография тучных клеток кожи при моделировании ожога в условиях применения различных методов регионарного воздействия. Гены и Клетки. 2021;16(1):69–74. https://doi.org/10.23868/202104011; Wilgus TA, Ud-Din S, Bayat A. A Review of the Evidence for and against a Role for Mast Cells in Cutaneous Scarring and Fibrosis. Int J Mol Sci. 2020 Dec 18;21(24):E9673. https://doi.org/10.3390/ijms21249673; Ud-Din S, Wilgus TA, Bayat A. Mast Cells in Skin Scarring: A Review of Animal and Human Research. Front Immunol. 2020;11:552205. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.552205; Соболева М. Ю., Алексеева Н. Т., Клочкова С. В. Клеточно-матриксные взаимодействия при спонтанном заживлении ожоговой раны (ультраструктурные и цитологические особенности). Морфология. 2020;157(2-3):197–198.; Dong J, Chen L, Zhang Y, Jayaswal N, Mezghani I, Zhang W, et al. Mast Cells in Diabetes and Diabetic Wound Healing. Adv Ther. 2020 Nov;37(11):4519–4537. https://doi.org/10.1007/s12325-020-01499-4; Masini M, Suleiman M, Novelli M, Marselli L, Marchetti P, De Tata V. Mast Cells and the Pancreas in Human Type 1 and Type 2 Diabetes. Cells. 2021 Jul 23;10(8):1875. https://doi.org/10.3390/cells10081875; Bot I, Shi G-P, Kovanen PT. Mast cells as effectors in atherosclerosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2015 Feb;35(2):265–271. https://doi.org/10.1161/ATVBAHA.114.303570; Hermans M, Lennep JR van, van Daele P, Bot I. Mast Cells in Cardiovascular Disease: From Bench to Bedside. Int J Mol Sci. 2019 Jul 10;20(14):3395. https://doi.org/10.3390/ijms20143395; Wezel A, Lagraauw HM, van der Velden D, de Jager SCA, Quax PHA, Kuiper J, et al. Mast cells mediate neutrophil recruitment during atherosclerotic plaque progression. Atherosclerosis. 2015 Aug;241(2):289–296. https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2015.05.028; Parrella E, Porrini V, Benarese M, Pizzi M. The Role of Mast Cells in Stroke. Cells. 2019 May 10;8(5):437. https://doi.org/10.3390/cells8050437; Haidl G, Duan Y-G, Chen S-J, Kohn F-M, Schuppe H-C, Allam J-P. The role of mast cells in male infertility. Expert Rev Clin Immunol. 2011 Sep;7(5):627–634. https://doi.org/10.1586/eci.11.57; Yamanaka K, Fujisawa M, Tanaka H, Okada H, Arakawa S, Kamidono S. Significance of human testicular mast cells and their subtypes in male infertility. Hum Reprod. 2000 Jul;15(7):1543–1547. https://doi.org/10.1093/humrep/15.7.1543; Кульченко Н. Г. Нарушение сперматогенеза. Морфологические аспекты. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Медицина. 2018;22(3):265–271. https://doi.org/10.22363/2313-0245-2018-22-3-265-271; Apa DD, Cayan S, Polat A, Akbay E. Mast cells and fibrosis on testicular biopsies in male infertility. Arch Androl. 2002 Oct;48(5):337– 344. https://doi.org/10.1080/01485010290099183; Adam M, Schwarzer JU, Köhn FM, Strauss L, Poutanen M, Mayerhofer A. Mast cell tryptase stimulates production of decorin by human testicular peritubular cells: possible role of decorin in male infertility by interfering with growth factor signaling. Hum Reprod. 2011 Oct;26(10):2613–2625. https://doi.org/10.1093/humrep/der245; Welter H, Köhn FM, Mayerhofer A. Mast cells in human testicular biopsies from patients with mixed atrophy: increased numbers, heterogeneity, and expression of cyclooxygenase 2 and prostaglandin D2 synthase. Fertil Steril. 2011 Aug;96(2):309–313. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2011.05.035; Abdel-Hamid AAM, Atef H, Zalata KR, Abdel-Latif A. Correlation between testicular mast cell count and spermatogenic epithelium in non-obstructive azoospermia. Int J Exp Pathol. 2018 Feb;99(1):22–28. https://doi.org/10.1111/iep.12261; Roaiah MMF, Khatab H, Mostafa T. Mast cells in testicular biopsies of azoospermic men. Andrologia. 2007 Oct;39(5):185–189. https://doi.org/10.1111/j.1439-0272.2007.00793.x; Windschuttl S, Nettersheim D, Schlatt S, Huber A, Welter H, Schwarzer JU, et al. Are testicular mast cells involved in the regulation of germ cells in man? Andrology. 2014 Jul;2(4):615–622. https://doi.org/10.1111/j.2047-2927.2014.00227.x; Elieh Ali Komi D, Shafaghat F, Haidl G. Significance of mast cells in spermatogenesis, implantation, pregnancy, and abortion: Cross talk and molecular mechanisms. Am J Reprod Immunol. 2020 May;83(5):e13228. https://doi.org/10.1111/aji.13228; Allam J-P, Langer M, Fathy A, Oltermann I, Bieber T, Novak N, et al. Mast cells in the seminal plasma of infertile men as detected by flow cytometry. Andrologia. 2009 Feb;41(1):1–6. https://doi.org/10.1111/j.1439-0272.2008.00879.x; Cincik M, Sezen SC. The mast cells in semen: their effects on sperm motility. Arch Androl. 2003 Aug;49(4):307–311. https://doi.org/10.1080/01485013090204995; El-Karaksy A, Mostafa T, Shaeer OK, Bahgat DR, Samir N. Seminal mast cells in infertile asthenozoospermic males. Andrologia. 2007 Dec;39(6):244–247. https://doi.org/10.1111/j.1439-0272.2007.00795.x; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/779
-
2Academic Journal
المؤلفون: N. A. Kurashova, B. G. Dashiev, L. A. Grebenkina, S. I. Kolesnikov, L. I. Kolesnikova, Н. А. Курашова, Б. Г. Дашиев, Л. А. Гребенкина, С. И. Колесников, Л. И. Колесникова
المصدر: Andrology and Genital Surgery; Том 23, № 1 (2022); 30-36 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 23, № 1 (2022); 30-36 ; 2412-8902 ; 2070-9781
مصطلحات موضوعية: семенная плазма, infertility, men, oxidative stress, chemiluminescence, seminal plasma, патозооспермия, мужчины, окислительный стресс, хемилюминесценция
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/542/449; Курашова Н.А. Оценка репродуктивного потенциала мужского населения. Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук 2014;2(96):104–9. [Kurashova N.A. Assessment of reproduotive potential of men. Bjulletenʼ Vostochno-Sibirskogo nauchnogo centra Sibirskogo otdelenija Rossijskoj akademii medicinskih nauk = Bulletin of the East Siberian Scientific Center of the Siberian Branch of the Russian Academy of Medical Sciences 2014;2(96);104–9. (In Russ.)].; Velez D., Ohlander S., Niederberger C. Pyospermia: background and controversies. F S Rep 2021;2(1):2–6. DOI:10.1016/j.xfre.2021.01.001.; Kolesnikova L.I., Kurashova N.A., Dolgikh M.I. et al. Parameters of proand antioxidant status in ejaculate of men of fertile age. Bull Exp Biol Med 2015;159(6):726–8. DOI:10.1007/s10517-015-3059-6.; Kolesnikova L.I., Kurashova N.A., Bairova T.A. et al. Features of lipoperoxidation, antioxidant defense, and thiol/disulfide system in the pathogenesis of infertility in males, carriers of nonfunctional variants of GSTT1 and GSTM1 gene polymorphisms. Bull Exp Biol Med 2017;163(3):378–80. DOI:10.1007/s10517-017-3808-9.; Seymen C.M. The other side of COVID-19 pandemic: Effects on male fertility. J Med Virol 2021;93(3):1396– 1402. DOI:10.1002/jmv.26667.; Брагина Е.Е. Вирусное инфицирование сперматозоидов. Часть 2. Герпесвирусы человека, вирус иммунодефицита человека, вирус гепатита С, вирус Зика (обзор литературы). Андрология и генитальная хирургия 2020;21(4):20–30. [Bragina E.E.Viral infection of sperm. Part 2. Human herpes viruses, human immunodeficiency virus, hepatitis C virus, Zika virus (review). Andrologiya i genitalʼnaja khirurgija = Andrology and Genital Surgery 2020;21(4):20–30. (In Russ.)]. DOI:10.17650/2070-9781-2020-21-4- 20-30.; Sheikhzadeh Hesari F., Hosseinzadeh S.S., Asl Monadi Sardroud M.A. Review of COVID-19 and male genital tract. Andrologia 2021;53(1):e13914. DOI:10.1111/and.13914.; Сорокина Т.М., Брагина Е.Е., Сорокина Е.А. и др. Влияние перенесенной инфекции COVID-19 на спермиологические показатели мужчин с нарушением фертильности. Андрология и генитальная хирургия 2021;22(3): 25–33. [Sorokina T.M., Bragina E.E., Sorokina E.A. et al. Effect of COVID-19 infection on characteristics of sperm in men with impaired fertility. Andrologiya i genitalʼnaja khirurgija = Andrology and Genital Surgery 2021;22(3):25–33. (In Russ.)]. DOI 10.17650/1726-9784-2021-22-3-25-33.; Darbandi M., Darbandi S., Agarwal A. et al. Reactive oxygen species-induced alterations in H19-Igf2 methylation patterns, seminal plasma metabolites, and semen quality. J Assist Reprod Genet 2019;36(2):241–53. DOI:10.1007/s10815-018-1350-y.; Darenskaya M., Kolesnikova L., Kolesnikov S. The association of respiratory viruses with oxidative stress and antioxidants. Implications for the COVID-19 pandemic. Curr Pharm Des 2021;27(13):1618–27. DOI:10.2174/1381612827666210222113351.; Agarwal A., Durairajanayagam D., Halabi J. et al. Proteomics, oxidative stress and male infertility. Reprod Biomed Online 2014;29(1):32–58. DOI:10.1016/j.rbmo.2014.02.013.; Владимиров Ю.А., Проскурнина Е.В., Измайлов Д.Ю. Кинетическая хемилюминесценция как метод изучения реакций свободных радикалов. Биофизика 2011;56(6):1081–90. [Vladimirov Yu.A., Proskurnina E.V., Izmaylov D.Yu. Kinetic chemiluminescence as a method for studying the reactions of free radicals. Biofizika = Biophysics 2011;56(6):1081–90. (In Russ.)].; Кривохижина Л.В., Ермолаева Е.Н., Сурина-Марышева Е.Ф. и др. Хемилюминесценция сыворотки при физических нагрузках различной интенсивности. Здоровье и образование в XXI веке 2016;18(2):542–7. [Krivohizhina L.V., Ermolaeva E.N., Surina-Marysheva E.F. et al. Serum chemiluminescence during physical activity of varying intensity. Zdorovʼe i obrazovanie v XXI veke = Health and education in the XXI century. 2016;18(2):542–7. (In Russ.)].; Piskarev I.M., Ivanova I.P. Assessment of oxidative and antioxidant capacity of biological substrates by chemiluminescence induced by fenton reaction. Sovremennye tehnologii v medicine 2016;8(3):16–26. DOI:10.17691/stm2016.8.3.02.; Hamdi S., Bendayan M., Huyghe E. et al. COVID-19 and andrology: Recommendations of the Frenchspeaking society of andrology (Société d’Andrologie de langue Française SALF). Basic Clin Androl 2020;30:10. DOI:10.1186/s12610-020-00106-4.; Liu X., Chen Y., Tang W. et al. Single-cell transcriptome analysis of the novel coronavirus (SARS-CoV-2) associated gene ACE2 expression in normal and non-obstructive azoospermia (NOA) human male testes. Sci China Life Sci 2020;63:1006–15. DOI:10.1007/s11427-020-1705-0.; Sengupta P., Leisegang K., Agarwal A. The impact of COVID-19 on the male reproductive tract and fertility: A systematic review. Arab J Urol 2021;19(3):423–36. DOI:10.1080/2090598X.2021.1955554.; Vessey W., Perez-Miranda A., Macfarquhar R. et al. Reactive oxygen species in human semen: validation and qualification of a chemiluminescence assay. Fertil Steril 2014;102(6):1576–83.e4. DOI:10.1016/j.fertnstert.2014.09.009.; Azadi L., Tavalaee M., Deemeh M.R. et al. Effects of Tempol and Quercetin on Human Sperm Function after Cryopreservation. Cryo Letters 2017;38(1):29–36.; Agarwal A., Ahmad G., Sharma R. Reference values of reactive oxygen species in seminal ejaculates using chemiluminescence assay. J Assist Reprod Genet 2015;32(12):1721–9. DOI:10.1007/s10815-015-0584-1.; Kulchenko N., Pashina N. Association of leukocyte activity and DNA fragmentation in men with nonobstructive azoospermia. Georgian Med News 2020;(299):26–9.; Sánchez V., Redmann K., Wistuba J. et al. Oxidative DNA damage in human sperm can be detected by Raman microspectroscopy. Fertil Steril 2012;98(5):1124-9.e1-3. DOI:10.1016/j.fertnstert.2012.07.1059.; Massarotti C., Garolla A., Maccarini E. et al. SARS-CoV-2 in the semen: Where does it come from? Andrology 2021;9(1):39–41. DOI:10.1111/andr.12839.; Li H., Xiao X., Zhang J. et al. Impaired spermatogenesis in COVID-19 patients. EClinicalMedicine 2020;28:100604. DOI:10.1016/j.eclinm.2020.100604.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/542
-
3Academic Journal
المؤلفون: S. I. Gamidov, T. V. Shatylko, A. Kh. Tambiev, A. O. Tokareva, V. V. Chagovets, T. B. Bitsoev, N. L. Starodubtseva, A. Yu. Popova, V. E. Frankevich, С. И. Гамидов, Т. В. Шатылко, А. Х. Тамбиев, А. О. Токарева, В. В. Чаговец, Т. Б. Бицоев, Н. Л. Стародубцева, А. Ю. Попова, В. Е. Франкевич
المساهمون: The study was carried out with the financial support of the Russian Foundation for Basic Research (RFBR) and The National Natural Science Foundation of China (NSFC) in the framework of a scientific project № 19-515-55021 China., Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ и ГФЕН в рамках научного проекта № 19-515-55021 Китай_а.
المصدر: Urology Herald; Том 9, № 4 (2021); 30-39 ; Вестник урологии; Том 9, № 4 (2021); 30-39 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2021-9-4
مصطلحات موضوعية: семенная плазма, sperm maturation arrest, semen lipidomics, seminal plasma, остановка созревания сперматоизоидов, липидом эякулята
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/501/354; Jarow JP, Espeland MA, Lipshultz LI. Evaluation of the azoospermic patient. J Urol. 1989;142 (1):62-5. DOI:10.1016/S0022-5347(17)38662-7.; Esteves SC. Clinical management of infertile men with nonobstructive azoospermia. Asian J Androl. 2015;17 (3):459-70. DOI:10.4103/1008-682X.148719.; Schlegel PN, Palermo GD, Goldstein M, Menendez S, Zaninovic N, Veeck LL, Rosenwaks Z. Testicular sperm extraction with intracytoplasmic sperm injection for nonobstructive azoospermia. Urology. 1997;49 (3):435-40. DOI:10.1016/S0090-4295(97)00032-0.; Nicopoullos JD, Gilling-Smith C, Almeida PA, Norman-Taylor J, Grace I, Ramsay JW. Use of surgical sperm retrieval in azoospermic men: a meta-analysis. Fertil Steril. 2004;82 (3):691-701. DOI:10.1016/j.fertnstert.2004.02.116.; Hung AJ, King P, Schlegel PN. Uniform testicular maturation arrest: a unique subset of men with nonobstructive azoospermia. J Urol. 2007;178 (2):608-12; discussion 612. DOI:10.1016/j.juro.2007.03.125.; Kim ED, Leibman BB, Grinblat DM, Lipshultz LI. Varicocele repair improves semen parameters in azoospermic men with spermatogenic failure. J Urol. 1999;162 (3 Pt 1):737-40. DOI:10.1097/00005392-199909010-00031.; Kadioglu A, Tefekli A, Cayan S, Kandirali E, Erdemir F, Tellaloglu S. Microsurgical inguinal varicocele repair in azoospermic men. Urology. 2001;57 (2):328-33. DOI:10.1016/s0090-4295(00)00908-0.; Ishikawa T, Fujioka H, Fujisawa M. Clinical and hormonal findings in testicular maturation arrest. BJU Int. 2004;94 (9):1314-6. DOI:10.1111/j.1464-410X.2004.05163.x.; Micic S. The effect of the gametogenesis on serum FSH, LH and prolactin levels in infertile men. Acta Eur Fertil. 1983;14 (5):337-40. PMID: 6424374.; Foresta C, Moro E, Ferlin A. Y chromosome microdeletions and alterations of spermatogenesis. Endocr Rev. 2001;22 (2):226-39. DOI:10.1210/edrv.22.2.0425.; Gonsalves J, Sun F, Schlegel PN, Turek PJ, Hopps CV, Greene C, Martin RH, Pera RA. Defective recombination in infertile men. Hum Mol Genet. 2004;13 (22):2875-83. DOI:10.1093/hmg/ddh302.; Ferras C, Fernandes S, Marques CJ, Carvalho F, Alves C, Silva J, Sousa M, Barros A. AZF and DAZ gene copy-specific deletion analysis in maturation arrest and Sertoli cell-only syndrome. Mol Hum Reprod. 2004;10 (10):755-61. DOI:10.1093/molehr/gah104.; Esteves SC, Prudencio C, Seol B, Verza S, Knoedler C, Agarwal A. Comparison of sperm retrieval and reproductive outcome in azoospermic men with testicular failure and obstructive azoospermia treated for infertility. Asian J Androl. 2014;16 (4):602-6. DOI:10.4103/1008-682X.126015.; Schoor RA, Elhanbly S, Niederberger CS, Ross LS. The role of testicular biopsy in the modern management of male infertility. J Urol. 2002;167 (1):197-200. PMID: 11743304.; Weedin JW, Bennett RC, Fenig DM, Lamb DJ, Lipshultz LI. Early versus late maturation arrest: reproductive outcomes of testicular failure. J Urol. 2011;186 (2):621-6. DOI:10.1016/j.juro.2011.03.156.; Dabaja AA, Schlegel PN. Microdissection testicular sperm extraction: an update. Asian J Androl. 2013;15 (1):35-9. DOI:10.1038/aja.2012.141.; Chagovets V, Wang Z, Kononikhin A, Starodubtseva N, Borisova A, Salimova D, Popov I, Kozachenko A, Chingin K, Chen H, Frankevich V, Adamyan L, Sukhikh G. A Comparison of Tissue Spray and Lipid Extract Direct Injection Electrospray Ionization Mass Spectrometry for the Differentiation of Eutopic and Ectopic Endometrial Tissues. J Am Soc Mass Spectrom. 2018;29 (2):323-330. DOI:10.1007/s13361-017-1792-y.; Ezeh UI, Taub NA, Moore HD, Cooke ID. Establishment of predictive variables associated with testicular sperm retrieval in men with non-obstructive azoospermia. Hum Reprod. 1999;14 (4):1005-12. DOI:10.1093/humrep/14.4.1005.; Seo JT, Ko WJ. Predictive factors of successful testicular sperm recovery in non-obstructive azoospermia patients. Int J Androl. 2001;24 (5):306-10. DOI:10.1046/j.1365-2605.2001.00307.x.; Yang J, Liu JH, Zou XF, Yuan YH, Xiao RH, Wu GQ, Wang XN, Wu YT, Long DZ, Liu FL, Liu M, Xu H. [Sperm retrieval and the predictive parameter of non-obstructive azoospermia: a meta-analysis of literatures 1990 to 2008]. Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 2008;88 (30):2131-5. (In Chinese). PMID: 19080475.; Sicchieri F, Silva AB, Santana VP, Vasconcelos MAC, Fer-riani RA, Vireque AA, Dos Reis RM. Phosphatidylcholine and L-acetyl-carnitine-based freezing medium can replace egg yolk and preserves human sperm function. Transl An-drol Urol. 2021;10 (1):397-407. DOI:10.21037/tau-20-1004.; Vireque AA, Tata A, Silva OF, LoTurco EG, Azzolini A, Ferreira CR, Dantas MH, Ferriani RA, Reis RM. Effects of n-6 and n-3 polyunsaturated acid-rich soybean phosphatidylcholine on membrane lipid profile and cryotolerance of human sperm. Fertil Steril. 2016;106 (2):273-283.e6. DOI:10.1016/j.fertnstert.2016.03.044.; Boguenet M, Bocca C, Bouet PE, Serri O, Chupin S, Tessier L, Blanchet O, El Hachem H, Chao de la Barca JM, Reynier P, May-Panloup P. Metabolomic signature of the seminal plasma in men with severe oligoasthenospermia. Andrology. 2020;8 (6):1859-1866. DOI:10.1111/andr.12882.; Arienti G, Carlini E, Polci A, Cosmi EV, Palmerini CA. Fatty acid pattern of human prostasome lipid. Arch Biochem Biophys. 1998;358 (2):391-5. DOI:10.1006/abbi.1998.0876.; Rivera-Egea R, Garrido N, Sota N, Meseguer M, Remolh J, Dominguez F. Sperm lipidic profiles differ significantly between ejaculates resulting in pregnancy or not following intra-cytoplasmic sperm injection. J Assist Reprod Genet. 2018;35 (11):1973-1985. DOI:10.1007/s10815-018-1284-4.; https://www.urovest.ru/jour/article/view/501
-
4Academic Journal
المؤلفون: A. G. Brzhozovskiy, N. L. Starodubtseva, A. E. Bugrova, A. S. Kononihin, V. V. Chagovets, T. V. Shatylko, S. I. Gamidov, A. Kh. Tambiyev, A. Yu. Popova, N. G. Gasanov, T. B. Bitsoyev, V. E. Frankevich, А. Г. Бржозовский, Н. Л. Стародубцева, А. Е. Бугрова, А. С. Кононихин, В. В. Чаговец, Т. В. Шатылко, С. И. Гамидов, А. Х. Тамбиев, А. Ю. Попова, Н. Г. Гасанов, Т. Б. Бицоев, В. Е. Франкевич
المساهمون: The work was supported by the project of the Russian Science Foundation (No 18-75-10097). Chromato-mass spectrometric analysis was carried out on the equipment of the Center for Collective Use “New materials and New technologies” of the N.M. Emanuel Institute of Biochemical Physics of the Russian Academy of Sciences., Работа выполнена при поддержке проекта Российского научного фонда (№ 18-75-10097). Хромато-масс-спектрометрический анализ проводился на оборудовании Центра коллективного пользования «Новые материалы и новые технологии» ФГБУН Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН.
المصدر: Andrology and Genital Surgery; Том 22, № 3 (2021); 18-24 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 22, № 3 (2021); 18-24 ; 2412-8902 ; 2070-9781
مصطلحات موضوعية: семенная плазма, ejaculate proteome, male infertility, seminal plasma, протеом эякулята, мужское бесплодие
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/501/424; Wosnitzer M., Goldstein M., Hardy M.P. Review of Azoospermia. Spermatogenesis 2014;4:e28218. DOI:10.4161/spmg.28218.; Oates R. Evaluation of the azoospermic male. Asian J Androl 2012;14(1):82–7. DOI:10.1038/aja.2011.60.; Гасанов Н.Г., Гамидов С.И., Шатылко Т.В. и др. Роль пункционной биопсии яичка в ведении пациентов с азооспермией. Исследования и практика в медицине 2020;7(3):43–50. DOI:10.17709/2409-2231-2020-7-3-4.; Berookhim B.M., Palermo G.D., Zaninovic N. et al. Microdissection testicular sperm extraction in men with Sertoli cell-only testicular histology. Fertil Steril 2014;102(5):1282–6. DOI:10.1016/j.fertnstert.2014.08.007.; Liu X., Wang W., Zhu P. et al. In-depth quantitative proteome analysis of seminal plasma from men with oligoasthenozoospermia and normozoospermia. Reprod Biomed Online 2018;37(4):467–79. DOI:10.1016/j.rbmo.2018.06.025.; Шатылко Т.В., Гамидов С.И., Франкевич В.Е. и др. Астенозооспермия и протеомные факторы регуляции подвижности сперматозоидов. Акушерство и гинекология 2020;4:37–44. DOI:10.18565/aig.2020.4.37-44.; Starodubtseva N.L., Kononikhin A.S., Bugrova A.E. et al. Investigation of urine proteome of preterm newborns with respiratory pathologies. J Proteomics 2016;149:31–7. DOI:10.1016/j.jprot.2016.06.012.; Mosevitsky M.I., Snigirevskaya E.S., Komissarchik Y.Y. Immunoelectron microscopic study of BASP1 and MARCKS location in the early and late rat spermatids. Acta Histochem 2012;114(3):237–43. DOI:10.1016/j.acthis.2011.06.009.; Tomar A.K., Sooch B.S., Singh S., Yadav S. Quantification studies in human seminal plasma samples identify prolactin inducible protein as a plausible marker of azoospermia. Biomarkers 2012;17(6):545–51. DOI:10.3109/1354750X.2012.699555.; Chiu W.W., Chamley L.W. Human seminal plasma prolactininducible protein is an immunoglobulin G-binding protein. J Reprod Immunol 2003;60(2):97–111. DOI:10.1016/s0165-0378(03)00084-6.; Kumar S., Tomar A.K., Singh S. et al. Human serum albumin as a new interacting partner of prolactin inducible protein in human seminal plasma. Int J Biol Macromol 2012;50(2):317–22. DOI:10.1016/j.ijbiomac.2011.12.015.; Hassan M.I., Bilgrami S., Kumar V. et al. Crystal structure of the novel complex formed between zinc alpha2-glycoprotein (ZAG) and prolactin-inducible protein (PIP) from human seminal plasma. J Mol Biol 2008;384(3):663–72. DOI:10.1016/j.jmb.2008.09.072.; Jerczynski O., Lacroix-Pépin N., Boilard E. et al. Role of Dicer1-Dependent Factors in the Paracrine Regulation of Epididymal Gene Expression. PLoS One 2016;11(10):e0163876. DOI:10.1371/journal.pone.0163876.; Qi Y.N., Ma J., Han R.Y. et al. [Correlation of seminal plasma zinc alpha-2 glycoprotein with semen quality in obese males (In Chinese)]. Zhonghua Nan Ke Xue 2018;24(3):216–20. PMID: 30161306.; Silva G.P., Grangeiro V.P.X., de Oliveira C.F.D., Neto F.L. Cystatin C and Seminal Parameter Evaluation in Patients with End-Stage Renal Disease. Curr Urol 2020;14(4):178–82. DOI:10.1159/000499241.; Silva G.P., Grangeiro V.P.X., de Oliveira C.F.D. et al. α1-Acid glycoprotein and seminal parameter in chronic hemodialysis patients. Urologia 2021;88(1):46–9. DOI:10.1177/0391560319899842.; Panidis D., Rousso D., Panidou E., Asseo P. Orosomucoid levels in the seminal plasma or fertile and infertile men. Arch Androl 1993;30(3):161–4. DOI:10.3109/01485019308987751.; Xu C., Cai J., Liu L., Ren J. Prosaposin in seminal plasma on the day of oocyte retrieval is associated with normal fertilization and embryo development in in vitro fertilization cycles. PeerJ 2019;7:e8177. DOI:10.7717/peerj.8177.; Del Giudice P.T., da Silva B.F., Lo Turco E.G. et al. Changes in the seminal plasma proteome of adolescents before and after varicocelectomy. Fertil Steril 2013;100(3):667–72. DOI:10.1016/j.fertnstert.2013.04.036.; Kherraf Z.-E., Christou-Kent M., Karaouzene T. et al. SPINK2 deficiency causes infertility by inducing sperm defects in heterozygotes and azoospermia in homozygotes. EMBO Mol Med 2017;9(8):1132–49. DOI:10.15252/emmm.201607461.; Zhang H.-W., Zhang L., Chen Y.-M. et al. The role of SPAG6/SPINK2 protein complex in the formation of sperm acrosome in mice (In Chinese). Zhonghua Nan Ke Xue 2019;25(3):202–8. PMID: 32216237.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/501
-
5Academic Journal
المؤلفون: A. Yu. Tsukanov, A. S. Delitsin, А. Ю. Цуканов, А. С. Делицин
المصدر: Andrology and Genital Surgery; Том 18, № 1 (2017); 99-101 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 18, № 1 (2017); 99-101 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2017-18-1
مصطلحات موضوعية: андродоз, seminal plasma, male infertility, androdoz, семенная плазма, мужское бесплодие
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/230/217; WHO manual for the standardized investigation, diagnosis and management of the infertile male / World Health Organization. Cambridge: Cambridge University Press, 2000.; Аляев Ю.Г., Григорян В.А., Чалый М.Е. Нарушения половой и репродуктивной функции у мужчин. М.: Литтерра, 2006. 188 с.; Неймарк А.И., Клепикова И.И., Неймарк Б.А., Ноздрачев Н.А. Применение препарата андродоз у мужчин с нарушением фертильности. Андрология и генитальная хирургия 2013;4:49–52.; Аполихин О.И., Сивков А.В., Бешлиев Д.А. и др. Анализ уронефрологической заболеваемости в Российской Федерации по данным официальной статистики. Экспериментальная и клиническая урология 2010;1:4–11.; Андрология. Мужское здоровье и дисфункция репродуктивной системы. Пер. с англ.; под ред. Э. Нишлага, Г.М. Бере. М.: МИА, 2005.; Сухих Г.Т., Божедомов В.А. Мужское бесплодие. М.: Эксмо, 2009. 240 с.; Камалов А.А., Абоян И.А., Ситдыкова М.Э. и др. Применение биологически активного комплекса андродоз у пациентов с патоспермией и иммунологическим фактором инфертильности. Результаты мультицентрового клинического исследования. Фарматека 2014;4 (277):32–43.; Тиктинский О.Л., Михайличенко В.В. Андрология. СПб.: Медиа-Пресс, 1999. 464 с.; Васильченко Г., Агаркова Т., Агарков С. и др. Сексопатология: Справочник. М.: Медицина, 1990. 576 с.; Порудомский И.М. Бесплодие у мужчин. М.: Медицина, 1964. 232 с.; Губергриц А.Я., Линевский Ю.В. Лечебное питание: Справочное пособие. 3-е изд., перераб. и доп. Киев: Выща школа, 1989. 398 с.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/230
-
6Academic Journal
مصطلحات موضوعية: GLYCODELIN, SEMINAL PLASMA, FERTILITY, ГЛИКОДЕЛИН, СЕМЕННАЯ ПЛАЗМА, ФЕРТИЛЬНОСТЬ
وصف الملف: application/pdf
Relation: Уральский медицинский журнал. 2015. T. 131, № 8.; Мшак-Манукян, Г. Н. Гликоделин как возможный маркер мужской фертильности / Г. Н. Мшак-Манукян, Е. В. Брюхина. – Текст: электронный // Уральский медицинский журнал. - 2015. – T. 131, № 8. – С. 127-131.; http://elib.usma.ru/handle/usma/14023
-
7Academic Journal
المؤلفون: Tarasova, M. N., Chistjakova, G. N., Gazieva, I. A., Remisova, I. I., Тарасова, М. Н., Чистякова, Г. Н., Газиева, И. А., Ремизова, И. И.
مصطلحات موضوعية: SPERMATOGENESIS, CYTOKINES, SEMINAL PLASMA, INFERTILITY, NORMOSPERMIA, PATOSPERMIA, СПЕРМАТОГЕНЕЗ, ЦИТОКИНЫ, СЕМЕННАЯ ПЛАЗМА, БЕСПЛОДИЕ, НОРМОСПЕРМИЯ, ПАТОСПЕРМИЯ
وصف الملف: application/pdf
Relation: Уральский медицинский журнал. 2009. Т. 57, № 3.; Современный взгляд на иммунологические факторы нарушения мужской репродуктивной функции / М. Н. Тарасова, Г. Н. Чистякова, И. А. Газиева, И. И. Ремизова. – Текст: электронный // Уральский медицинский журнал. - 2009. – T. 57, № 3. – С. 116-122.; http://elib.usma.ru/handle/usma/16541
-
8
المصدر: Андрология и генитальная хирургия.
مصطلحات موضوعية: НАРУШЕНИЕ ФЕРТИЛЬНОСТИ,СЕМЕННАЯ ПЛАЗМА,МУЖСКОЕ БЕСПЛОДИЕ,АНДРОДОЗ,IMPAIRMENT OF FERTILITY,SEMINAL PLASMA,MALE INFERTILITY,ANDRODOZ
وصف الملف: text/html
-
9
المصدر: Фундаментальные исследования.
مصطلحات موضوعية: ПРОТЕОГЛИКАНЫ, СЕМЕННАЯ ПЛАЗМА, СПЕРМАТОЗОИДЫ, КАПАЦИТАЦИЯ
وصف الملف: text/html
-
10Academic Journal
المؤلفون: Плосконос М.В., Хиляль А.
المصدر: Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии
مصطلحات موضوعية: полиамины, семенная плазма, сперматозоиды, лимфоциты, апоптоз, фертильность, polyamines, seminal plasma, sperm, lymphocytes, apoptosis, fertility