يعرض 1 - 20 نتائج من 592 نتيجة بحث عن '"Прогестерон"', وقت الاستعلام: 0.55s تنقيح النتائج
  1. 1
  2. 2
    Academic Journal
  3. 3
    Conference
  4. 4
    Academic Journal

    المصدر: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 17 (2024); 52-57 ; Медицинский Совет; № 17 (2024); 52-57 ; 2658-5790 ; 2079-701X

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8656/7599; Андреева ЕН, Шереметьева ЕВ, Фурсенко ВА. Ожирение – угроза репродуктивного потенциала России. Ожирение и метаболизм. 2019;16(3):20–28. https://doi.org/10.14341/omet10340.; Горелова ИВ, Рулев МВ, Попова ПВ. Влияние ожирения на результаты программ вспомогательных репродуктивных технологий (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2018;24(6):39–45. https://doi.org/10.17116/repro20182406139.; Махмадалиева МР, Коган ИЮ, Ниаури ДА, Мекина ИД, Гзгзян АМ. Влияние избытка массы тела и ожирения на эффективность программ вспомогательных репродуктивных технологий. Журнал акушерства и женских болезней. 2018;67(2):32–39. https://doi.org/10.17816/JOWD67232-39.; Долгушина НВ, Десяткова НВ, Донников АЕ, Высоких МЮ, Суханова ЮА, Долгушин ОА, Пархоменко АА. Роль адипокинов и генов-регуляторов адипокинов в эффективности программ вспомогательных репродуктивных технологий у пациенток с избыточной массой тела. Акушерство и гинекология. 2017;(2):71–78. https://doi.org/10.18565/aig.2017.2.71-8.; Bellver J, Marín C, Lathi RB, Murugappan G, Labarta E, Vidal C et al. Obesity Affects Endometrial Receptivity by Displacing the Window of Implantation. Reprod Sci. 2021;28(11):3171–3180. https://doi.org/10.1007/s43032-021-00631-1.; Yang Т, Zhao J, Liu F, Li Y. Lipid metabolism and endometrial receptivity. Hum Reprod Update. 2022;28(6):858–889. https://doi.org/10.1093/humupd/dmac026.; Заболотских ИБ, Анисимов МА, Горобец ЕС, Грицан АИ, Лебединский КМ, Мусаева ТС и др. Периоперационное ведение пациентов с сопутствующим ожирением. 2021.; Шмаков РГ, Пырегов АВ, Вавилова ТВ, Адамян ЛВ, Андреева МД, Артымук НВ и др. Венозные осложнения во время беременности и послеродовом периоде. Акушерская тромбоэмболия: клинические рекомендации. М.; 2022. 66 с. Режим доступа: http://disuria.ru/_ld/11/1153_kr22O22MZ.pdf.; Пшеничникова ЕБ, Пшеничникова ТБ, Макацария АД. Метаболический синдром и тромбофилия – состояние высокого риска у беременных. РМЖ. 2006;53–60. Режим доступа: https://www.rmj.ru/articles/ginekologiya/Metabolicheskiy_sindrom_i_trombofiliya__sostoyanie_vysokogo_riska_u_beremennyh.; Иловайская ИА. Влияние ожирения у женщин на фертильность и вынашивание беременности. РМЖ. 2016;(1):32–37. Режим доступа: https://www.rmj.ru/articles/endokrinologiya/Vliyanie_oghireniya_u_ghenschin_nafertilynostyi_vynashivanie_beremennosti.; Тимошина ИВ. Ожирение – фактор риска акушерских и перинатальных осложнений. Акушерство и гинекология: новости, мнения, обучение. 2014;(4). Режим доступа: acu-gin-journal.ru/ru/jarticles_acu/155.html.; Vuong LN, Pham TD, Le KTQ, Ly TT, Le HL, Nguyen DTN еt al. Micronized progesterone plus dydrogesterone versus micronized progesterone alone for luteal phase support in frozen-thawed cycles (MIDRONE): a prospective cohort study. Hum Reprod. 2021;36(7):1821–1831. https://doi.org/10.1093/humrep/deab093.; Ho T, Pham T, Le K, Ly T, Le H, Nguyen D et al. Micronized progesterone plus dydrogesterone versus micronized progesterone alone for luteal phase support in frozen-thawed cycles: a prospective cohort study. Hum Reprod. 2021;36(1). https://doi.org/10.1093/humrep/deab128.057.; Vidal A, Dhakal C, Weiss J, Lehnick D, Koh AS. What is the best luteal phase support in frozen-thawed embryo transfer cycle. Hum Reprod. 2021;36(1). https://doi.org/10.1093/humrep/deab130.653.; Gardner D, Weissman A, Howles CM, Shoham ZE. Textbook of Assisted Reproductive Technologies: laboratory and clinical perspectives. London: Informa Healthcare; 2009. 912 p.; Porcu E, Cipriani L, Damiani G. Dosage and delivery method of progesterone luteal support in overweight/obese women undergoing cryopreserved cycles. Fertil Steril. 2023;119(4):616–617. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2023.01.033.; Боярский КЮ, Браилко ОВ, Быковская ОС, Гзгзян АМ, Денисова ЮВ, Зорина ИВ и др. Поддержка лютеиновой фазы в программах вспомогательных репродуктивных технологий: необходимость оптимизации и важность персонализации. Проблемы репродукции. 2022;28(3):66–77. https://doi.org/10.17116/repro20222803166.; Корсак ВС, Долгушина НВ, Корнеева ИЕ, Колода ЮА, Смирнова АА, Аншина МБ и др. Женское бесплодие: клинические рекомендации. М.; 2021. 81 с. Режим доступа: https://mosgorzdrav.ru/uploads/imperavi/ru-RU/женское_бесплодие_2021.pdf.; Mejia RB, CoxTW, NguyenEB. Effect of body weight on early hormone levels in singleton pregnancies resulting in delivery after in vitro fertilization. Fertil Steril. 2018;110(7):1311–1317. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.08.047.; Labarta E, Mariani G, Rodriguez-Varela C, Bosch E. Individualized luteal phase support normalizes live birth rate in women with low progesterone levels on the day of embryo transfer in artificial endometrial preparation cycles. Fertil Steril. 2022;117(1):96–103. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2021.08.040.; Mignini Renzini MR, Brienza L, Gippone S, Brigante C, De Ponti E, Dal Canto M, Buratini J. Intravaginal progesterone dose and subcutaneous supplementation in luteal support protocols for frozen embryo transfers: a practical preliminary study. Hum Reprod. 2022;37(Suppl. 1):deac107.394. https://doi.org/10.1093/humrep/deac107.394.

  5. 5
    Academic Journal

    المصدر: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 17 (2024); 82-85 ; Медицинский Совет; № 17 (2024); 82-85 ; 2658-5790 ; 2079-701X

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8660/7603; Goisis A, Remes H, Martikainen P, Klemetti R, Myrskylä M. Medically assisted reproduction and birth outcomes: a within-family analysis using Finnish population registers. Lancet. 2019;393(10177):1225–1232. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(18)31863-4.; Ходжаева ЗС, Шмаков РГ, Адамян ЛВ, Артымук НВ, Башмакова НВ, Беженарь ВФ и др. Преждевременные роды: клинические рекомендации. 2020. 42 с. Режим доступа: https://cr.minzdrav.gov.ru/schema/331_1.; Тетруашвили НК, Долгушина НВ, Баранов ИИ, Кан НЕ, Королев АЮ, Пырегов АВ и др. Истмико-¬цервикальная недостаточность: клинические рекомендации. 2020. 54 с. Режим доступа: https://trmo.ru/wp-content/uploads/2021/10/istmiko-czervikalnaya-nedostatochnost.pdf.; Доброхотова ЮЭ, Боровкова ЕИ, Залесская СА, Нагайцева ЕА, Раба ДП. Диагностика и тактика ведения пациенток с истмико-цервикальной недостаточностью. Гинекология. 2018;20(2):41–45. https://doi.org/10.26442/2079-5696_2018.2.41-45.; Буланов МН. Ультразвуковая диагностика заболеваний шейки матки. М.: Издательский дом Видар-М; 2017. 304 с. Режим доступа: https://uzi.expert/sites/default/files/DOCS/bulanov_sheika_matki.pdf.; Кузнецова ОВ, Зарубеева ЕВ. Современный взгляд на проблему истмико-цервикальной недостаточности. РМЖ. Мать и дитя. 2019;2(4):286–291. Режим доступа: https://elibrary.ru/sfxtbc.; Madar H, Mattuizzi A, Sentilhes L. Cervical pessary combined with vaginal progesterone for the prevention of spontaneous preterm birth: is the evidence sufficient? J Perinat Med. 2018;46(6):691. https://doi.org/10.1515/jpm-2017-0300.; Saccone G, Rust O, Althuisius S, Roman A, Berghella V. Cerclage for short cervix in twin pregnancies: systematic review and meta-analysis of randomized trials using individual patient-level data. Acta Obstet Gynecol Scand. 2015;94(4):352–358. https://doi.org/10.1111/aogs.12600.; Crowther CA, McKinlay CJ, Middleton P, Harding JE. Repeat doses of prenatal corticosteroids for women at risk of preterm birth for improving neonatal health outcomes. Cochrane Database Syst Rev. 2015;2015(7):CD003935. https://doi.org/10.1002/14651858.cd003935.pub4.; Oh KJ, Kim SM, Hong JS, Maymon E, Erez O, Panaitescu B et al. Twenty-four percent of patients with clinical chorioamnionitis in preterm gestations have no evidence of either culture-proven intraamniotic infection or intraamniotic inflammation. Am J Obstet Gynecol. 2017;216(6):604. e1–604.e11. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2017.02.035.; Кан НЕ, Тютюник ВЛ, Ломова НА. Натуральный микронизированный прогестерон в комплексной терапии угрожающих преждевременных родов. Акушерство и гинекология: новости, мнения, обучение. 2018;2(20):83–87. Режим доступа: https://elibrary.ru/xpqbyl.; Пустотина ОА, Селиверстов АА. Рандомизированное клиническое исследование эффективности дидрогестерона, 17-оксипрогестерона капроата и микронизированного прогестерона в профилактике позднего выкидыша и преждевременных родов у беременных с короткой шейкой матки. Российский вестник Акушера-¬гинеколога. 2017;17(1):88–101. https://doi.org/10.17116/rosakush201717188-101.; Romero R, Conde-Agudelo A, El-Refaie W, Rode L, Brizot ML, Cetingoz E et al. Vaginal progesterone decreases preterm birth and neonatal morbidity and mortality in women with a twin gestation and a short cervix: an updated meta-analysis of individual patient data. Ultrasound Obstet Gynecol. 2017;49(3):303–314. https://doi.org/10.1002/uog.17397.; Беженарь ВФ, Кучукова ФР, Узденова ЗХ. Профилактика и лечение преждевременных родов у беременных с истмико-цервикальной недостаточностью. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2024;18(2):246–253. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.490.; Аполихина ИА, Тарнаева ЛА, Кондратьева НЕ. Результаты исследований биоэквивалентности препаратов диеногеста, прогестерона, левоноргестрела+эстрадиола у здоровых добровольцев после однократного приема натощак. Акушерство и гинекология. 2023;1:110–121. https://doi.org/10.18565/aig.2022.304.

  6. 6
    Academic Journal
  7. 7
    Academic Journal

    المؤلفون: Леміш, Н.Ю.

    المصدر: Ukrainian Journal of Perinatology and Pediatrics; No. 1(97) (2024): Ukrainian Journal of Perinatology and Pediatrics; 38-44 ; Украинский журнал Перинатология и Педиатрия; № 1(97) (2024): Український журнал Перинатологія і Педіатрія; 38-44 ; Український журнал Перинатологія і Педіатрія; № 1(97) (2024): Український журнал Перинатологія і Педіатрія; 38-44 ; 2707-1375 ; 2706-8757

    وصف الملف: application/pdf

  8. 8
    Academic Journal

    المساهمون: The authors declare no funding, Авторы заявляют об отсутствии финансовой поддержки

    المصدر: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 18, No 2 (2024); 246-253 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 18, No 2 (2024); 246-253 ; 2500-3194 ; 2313-7347

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/1993/1204; Preterm birth. World Health Organization, 2023. Режим доступа: www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/preterm-birth. [Дата обращения: 30. 01. 2024].; Oh K.J., Kim S.M., Hong J.S. et al. Twenty-four percent of patients with clinical chorioamnionitis in preterm gestations have no evidence of either culture-proven intraamniotic infection or intraamniotic inflammation. Am J Obstet Gynecol. 2017;216(6):604.e1–604.e11. doi:10.1016/j.ajog.2017.02.035.; Gomez-Lopez N., Romero R., Xu Y. et al. A role for the inflammasome in spontaneous preterm labor with acute histologic chorioamnionitis. Reprod Sci. 2017;24(10):1382–401. doi:10.1177/1933719116687656.; Yoon B.H., Romero R., Park J.Y. et al. Antibiotic administration can eradicate intraamniotic infection or intra-amniotic inflammation in a subset of patients with preterm labor and intact membranes. Am J Obstet Gynecol. 2019;221(2):142.e1–142.e22. doi:10.1016/j.ajog.2019.03.018.; Vink J., Mourad M. The pathophysiology of human premature cervical remodeling resulting in spontaneous preterm birth: where are we now? Semin Perinatol. 2017;41(7):427–37. doi:10.1053/j.semperi.2017.07.014.; Hernandez-Andrade E., Maymon E., Luewan S. et al. A soft cervix, categorized by shear-wave elastography, in women with short or with normal cervical length at 18-24 weeks is associated with a higher prevalence of spontaneous preterm delivery. J Perinat Med. 2018;46(5):489–501. doi:10.1515/jpm-2018-0062.; Gomez-Lopez N., Romero R., Xu Y. et al. Fetal T cell activation in the amniotic cavity during preterm labor: a potential mechanism for a subset of idiopathic preterm birth. J Immunol. 2019;203(7):1793–807. doi:10.4049/jimmunol.1900621.; Staneva A., Bogossian F., Pritchard M., Wittkowski A. The effects of maternal depression, anxiety, and perceived stress during pregnancy on preterm birth : a systematic review. Women Birth. 2015;28(3):179–93. doi:10.1016/j.wombi.2015.02.003.; Lima S.A.M., El Dib R.P., Rodrigues M.R.K. et al. Is the risk of low birth weight or preterm labor greater when maternal stress is experienced during pregnancy? A systematic review and meta-analysis of cohort studies. PLoS One. 2018;13(7):e0200594. doi:10.1371/journal.pone.0200594.; Matei A., Saccone G., Vogel J.P., Armson A.B. Primary and secondary prevention of preterm birth: a review of systematic reviews and ongoing randomized controlled trials. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2019;236:224–39. doi:10.1016/j.ejogrb.2018.12.022.; Di Renzo G.C., Tosto V., Giardina I. The biological basis and prevention of preterm birth. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2018;52:13–22. doi:10.1016/j.bpobgyn.2018.01.022.; Berghella V., Saccone G. Cervical assessment by ultrasound for preventing preterm delivery. Cochrane Database Syst Rev. 2019;9(9):CD007235. doi:10.1002/14651858.CD007235.pub4.; Zhang M., Zhang X., Yang H., Shi C. Cervical length at 28–32 weeks of gestation predicts preterm birth. Matern Med. 2021;3(3):185–9. doi:10.1097/FM9.0000000000000074.; Berghella V., Lesser T., Boelig R.C., Roman A. Cervical length screening after 24 weeks for prediction and prevention of preterm birth: not evidence based yet… Am J Obstet Gynecol MFM. 2020;2(2):100097. doi:10.1016/j.ajogmf.2020.100097.; Gulersen M., Divon M., Krantz D., Bornstein E. 466: The risk of anticipated delivery in asymptomatic women presenting with short cervix in early viability. Am J Obstet Gynecol. 2019;220(1):S311–S312. doi:10.1016/j.ajog.2018.11.487.; Бадретдинова Ф.Ф., Глебова Н.Н., Короткова Л.А. и др. Акушерская травма и рубцовая деформация шейки матки. Некоторые спорные вопросы проблемы (обзор литературы). Научное обозрение. Медицинские науки. 2016;(5):23–31.; Насырова С.Ф., Зиганшин А.М., Вдовина Т.Р. О методах диагностики состояния шейки матки у больных с посттравматическими нарушениями. Современные проблемы науки и образования. 2015;(6):237.; Hamou B., Sheiner E., Coreanu T. et al. Intrapartum cervical lacerations and their impact on future pregnancy outcome. J Matern Fetal Neonatal Med. 2020;33(5):883–7. doi:10.1080/14767058.2018.1505852.; Callejas A., Melchor J., Faris I.H., Rus G. Hyperelastic ex vivo cervical tissue mechanical characterization. Sensors (Basel). 2020;20(16):4362. doi:10.3390/s20164362.; Tantengco O.A.G., Menon R. Contractile function of the cervix plays a roleь in normal and pathological pregnancy and parturition. Med Hypotheses. 2020;145:110336. doi:10.1016/j.mehy.2020.110336.; Feigenbaum S.L., Crites Y., Hararah M.K. et al. Prevalence of cervical insufficiency in polycystic ovarian syndrome. Hum Reprod. 2012;27(9):2837–42. doi:10.1093/humrep/des193.; Клинические рекомендации – Истмико-цервикальная недостаточность – 2021-2022-2023 (13. 09. 2021). М.: Министерство здравоохранения Российской Федерации, 2021. 26 с. Режим доступа: http://disuria.ru/_ld/11/1102_kr21O34p3MZ.pdf. [Дата обращения: 30. 01. 2024].; Nagy B., Szekeres-Barthó J., Kovács G.L. et al. Key to life: physiological role and clinical implications of progesterone. Int J Mol Sci. 2021;22(20):11039. doi:10.3390/ijms222011039.; Jarde A., Lutsiv O., Beyene J., McDonald S.D. Vaginal progesterone, oral progesterone, 17-OHPC, cerclage, and pessary for preventing preterm birth in at-risk singleton pregnancies: an updated systematic review and network meta-analysis. J Obstet Gynaecol. 2019;126(5):556–67. doi:10.1111/1471-0528.15566.; Romero R., Conde-Agudelo A., Da Fonseca E. et al. Vaginal progesterone for preventing preterm birth and adverse perinatal outcomes in singleton gestations with a short cervix: a meta-analysis of individual patient data. Review Am J Obstet Gynecol. 2018;218(2):161–80. doi:10.1016/j.ajog.2017.11.576.; Romero R., Nicolaides K., Conde-Agudelo A. et al. Vaginal progesterone in women with an asymptomatic sonographic short cervix in the midtrimester decreases preterm delivery and neonatal morbidity : a systematic review and meta-analysis of individual patient data. Am J Obstet Gynecol. 2012;206(2):124.e1–19. doi:10.1016/j.ajog.2011.12.003.; Society for Maternal-Fetal Medicine Publications Committee, with assistance of Vincenzo Berghella. Progesterone and preterm birth prevention: translating clinical trials data into clinical practice. Am J Obstet Gynecol. 2012;206:376–86. doi:10.1016/j.ajog.2012.03.010.; Arabin B, Alfirevic Z. Cervical pessaries for prevention of spontaneous preterm birth: past, present and future. Ultrasound Obstet Gynecol. 2013;42(4):390–9. doi:10.1002/uog.12540.; Willan A.R. Accounting for treatment by center interaction in sample size determinations and the use of surrogate outcomes in the pessary for the prevention of preterm birth trial: a simulation study. Trials. 2016;7(1):310. doi:10.1186/s13063-016-1433-y.; Cannie M.M., Dobrescu O., Gucciardo L. et al. Arabin cervical pessary in women at high risk of preterm birth: a magnetic resonance imaging observational follow-up study. Ultrasound Obstet Gynecol. 2013;42(4):426–33. doi:10.1002/uog.12507.; Mendoza M., Goya M., Garson A. et al. Modification of cervical length after cervical pessary insertion: correlation weeks of gestation. J Matern Fetal Neonatal Med. 2017;30(13):1596–601. doi:10.1080/14767058.2016.1216538.; Goya M., de la Calle M., Pratcorona L. et al. Cervical pessary to prevent preterm birth in women with twin gestation and sonographic short cervix: a multicenter randomized controlled trial (PECEP-Twins). Am J Obstet Gynecol. 2016;214(2):145–52. doi:10.1016/j.ajog.2015.11.012.; Saccone G., Maruotti G.M., Giudicepietro A., Martinelli P.; Italian Preterm Birth Prevention (IPP) Working Group. Effect of cervical pessary on spontaneous preterm birth in women with singleton pregnancies and short cervical length: a randomized clinical trial. JAMA. 2017;318(23):2317–24. doi:10.1001/jama.2017.18956.; Barinov S.V., Shamina I.V., Di Renzo G.K. et al. The role of cervical pessary and progesterone therapy in the phenomenon of placenta previa migration. J Matern Fetal Neonatal Med. 2020;33(6):913–9. doi:10.1080/14767058.2018.1509068.; Nicolaides K.H., Syngelaki A., Poon L.C. et al. A randomized trial of a cervical pessary to prevent preterm singleton birth. N Engl J Med. 2016;374(11):1044–52. doi:10.1056/NEJMoa1511014.; Karbasian N., Sheikh M., Pirjani R. et al. Combined treatment with cervical pessary and vaginal progesterone for the prevention of preterm birth: A randomized clinical trial. J Obstet Gynaecol Res. 2016;42(12):1673–79. doi:10.1111/jog.13138.; ARABIN® Cerclage Pessar perforiert. Режим доступа: https://dr-arabin.de/produkt/arabin-cerclage-pessar-perforiert. [Дата обращения: 30. 01. 2024].; Shennan A., Chandiramani M., Bennett P. et al. MAVRIC: a multicenter randomized controlled trial of transabdominal vs transvaginal cervical cerclage. Am J Obstet Gynecol. 2020;222(3):261.e1– 261.e9. doi:10.1016/j.ajog.2019.09.040.; Ishioka S., Kim M., Mizugaki Y. et al. Transabdominal cerclage (TAC) for patients with ultra-short uterine cervix after uterine cervix surgery and its impact on pregnancy. J Obstet Gynaecol Res. 2018;44(1):61–6. doi:10.1111/jog.13487.; Brown R., Gagnon R., Delisle M.-F.; MATERNAL FETAL MEDICINE COMMITTEE. Cervical insufficiency and cervical cerclage. J Obstet Gynaecol Can. 2013;35(12):1115–27. doi:10.1016/S1701-2163(15)30764-7.; Alfirevic Z., Stampalija T., Medley N. Cervical stitch (cerclage) for preventing preterm birth in singleton pregnancy. Cochrane Database Syst Rev. 2017;6(6):CD008991. doi:10.1002/14651858.CD008991.pub3.; Ehsanipoor R.M., Seligman N.S., Saccone G. et al. Physical examination-indicated cerclage : a systematic review and meta-analysis. Obstet Gynecol. 2015;126(1):125–35. doi:10.1097/AOG.0000000000000850.; Ades A., Parghi S., Aref-Adib M. Laparoscopic transabdominal cerclage: outcomes of 121 pregnancies. Aust N Z J Obstet Gynaecol. 2018;58(6):606–11. doi:10.1111/ajo.12774.; Ades A., Aref-Adib M., Parghi S., Hong P. Laparoscopic transabdominal cerclage in pregnancy: a single centre experience. Aust N Z J Obstet Gynaecol. 2019;59(3):351–5. doi:10.1111/ajo.12848.; Курцер М.А., Азиев О.В., Панин А.В. и др. Лапароскопический серкляж при истмико-цервикальной недостаточности, вызванной ранее перенесенными операциями на шейке матки. Акушерство и гинекология. 2017;(5):58–62. doi:10.18565/aig.2017.5.58-62.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/1993

  9. 9
    Academic Journal

    المصدر: Andrology and Genital Surgery; Том 25, № 1 (2024); 87-94 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 25, № 1 (2024); 87-94 ; 2412-8902 ; 2070-9781

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/739/570; Dericks-Tan JS, Bradler H, Taubert HD. Evaluation of proteohormon concentrations in serum and seminal fluid and its relationship with sperm count. Andrologia. 1978 May-Jun;10(3):175-82. DOI:10.1111/j.1439-0272.1978.tb03013.x.; Bain J, Duthie M, Keene J. Relationship of seminal plasma testosterone and dihydrotestosterone to sperm count and motility in man. Arch Androl. 1979;2(1):35-9. DOI:10.3109/01485017908987289.; Zufferey F, Rahban R, Garcia A, Gagnebin Y, Boccard J, Tonoli D, Jeanneret F, Stettler E, Senn A, Nef S, Rudaz S, Rossier MF. Steroid profiles in both blood serum and seminal plasma are not correlated and do not reflect sperm quality: Study on the male reproductive health of fifty young Swiss men. Clin Biochem. 2018 Dec;62:39-46. DOI:10.1016/j.clinbiochem.2018.03.008.; Vitku J, Kolatorova L, Hampl R. Occurrence and reproductive roles of hormones in seminal plasma. Basic Clin Androl. 2017 Sep 8;27:19. DOI:10.1186/s12610-017-0062-y.; Hampl R, Kubatova J, Heracek J, Sobotka V, Starka L. Hormones and endocrine disruptors in human seminal plasma. Endocr Regul. 2013 Jul;47(3):149-58. DOI:10.4149/endo_2013_03_149.; Álvarez-Rodríguez M, Martinez-Pastor F. Molecular Determinants of Seminal Plasma on Sperm Biology and Fertility. Int J Mol Sci. 2021 Mar 30;22(7):3555. DOI:10.3390/ijms22073555.; Hudson RW, Hayes KA, Crawford VA, McKay DE. Seminal plasma testosterone and dihydrotestosterone levels in men with varicoceles. Int J Androl. 1983 Apr;6(2):135-42. DOI:10.1111/j.1365-2605.1983.tb00332.x.; Mićić S, Dotlić R, Ilić V, Genbaćev O. Seminal plasma hormone profile in infertile men with and without varicocele. Arch Androl. 1986;17(3):173-8. DOI:10.3109/01485018608990193.; Bujan L, Mieusset R, Audran F, Lumbroso S, Sultan C. Increased oestradiol level in seminal plasma in infertile men. Hum Reprod. 1993 Jan;8(1):74-7. DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a137878.; Cooke PS, Nanjappa MK, Ko C, Prins GS, Hess RA. Estrogens in Male Physiology. Physiol Rev. 2017 Jul 1;97(3):995-1043. DOI:10.1152/physrev.00018.2016.; Akinloye O, Arowojolu AO, Shittu OB, Abbiyesuku FM, Adejuwon CA, Osotimehin B. Serum and seminal plasma hormonal profiles of infertile Nigerian male. Afr J Med Med Sci. 2006 Dec;35(4):468-73. PMID: 17722815.; Vigil P, Toro A, Godoy A. Physiological action of oestradiol on the acrosome reaction in human spermatozoa. Andrologia. 2008;40(3):146–151. DOI:10.1111/j.1439-0272.2007.00814.x.; Vigil P, Barrientos VM, Vargas GG, Machuca DA, Cortes ME. Assessment of the effect of testosterone on the acrosome reaction of human spermatozoa. Andrologia. 2012;44(Suppl 1):627–633. DOI:10.1111/j.1439-0272.2011.01241.x.; Zalata A, El-Mogy M, Abdel-Khabir A, El-Bayoumy Y, El-Baz M, Mostafa T. Seminal androgens, oestradiol and progesterone in oligoasthenoteratozoospermic men with varicocele. Andrologia. 2014;46(7):761–765. DOI:10.1111/and.12145.; Nesheim N, Ellem S, Dansranjavin T, Hagenkötter C, Berg E, Schambeck R, Schuppe HC, Pilatz A, Risbridger G, Weidner W, Wagenlehner F, Schagdarsurengin U. Elevated seminal plasma estradiol and epigenetic inactivation of ESR1 and ESR2 is associated with CP/CPPS. Oncotarget. 2018 Apr 13;9(28):19623-19639. DOI:10.18632/oncotarget.24714.; Kogan M, Naboka Y, Ferzauli A, Ibishev K, Gudima I, Ismailov R. Does the microbiota spectrum of prostate secretion affect the clinical status of patients with chronic bacterial prostatitis? IntJUrol. 2021 Dec;28(12):1254-1259. DOI:10.1111/iju.14685.; HoCH, FanCK, YuHJ, WuCC, ChenKC, LiuSP, ChengPC. Testosterone suppresses uropathogenic Escherichia coli invasion and colonization within prostate cells and inhibits inflammatory responses through JAK/STAT-1 signaling pathway. PLoSOne. 2017 Jun 30;12(6):e0180244. DOI:10.1371/journal.pone.0180244.; Mohamad NV, Wong SK, Wan Hasan WN, Jolly JJ, NurFarhana MF, Ima-Nirwana S, Chin KY. The relationship between circulating testosterone and inflammatory cytokines in men. Aging Male. 2019 Jun;22(2):129-140. DOI:10.1080/13685538.2018.1482487.; Ho CH, Lu YC, Fan CK, Yu HJ, Liu HT, Wu CC, Chen KC, Liu SP, Cheng PC. Testosterone regulates the intracellular bacterial community formation of uropathogenic Escherichia coli in prostate cells via STAT3. Int J Med Microbiol. 2020 Oct;310(7):151450. DOI:10.1016/j.ijmm.2020.151450.; Morgentaler A, Traish A. The History of Testosterone and the Evolution of its Therapeutic Potential. Sex Med Rev. 2020 Apr;8(2):286-296. DOI:10.1016/j.sxmr.2018.03.002.; Тюзиков И.А., Калинченко С.Ю., Ворслов Л.О., Греков Е.А. Коррекция андрогенного дефицита при хроническом инфекционном простатите как патогенетический метод преодоления неэффективности стандартной антибактериальной терапии на фоне растущей антибиотикорезистентности. Андрология и генитальная хирургия. 2013;14(1):55-63. DOI:10.17650/2070-9781-2013-1-55-63.; Черный А.А. Особенности клинического течения и лечения хронического бактериального простатита у пациентов с дефицитом тестостерона. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук. Ростов-на-Дону. 2015. C. 22.; Камалов А.А., Василевский Р.П., Охоботов Д.А., Неплохов Е.А. Сравнительная характеристика результатов лечения пациентов с доброкачественной гиперплазией предстательной железы в сочетании с гипогонадизмом. Урология. 2019; 4:58-61. DOI:10.18565/urology.2019.4.58-61.; Коган М.И., Авадиева Н.Э., Геворкян Л.С., Логинов Ю.А., Метелкин А.М., Митин А.А., Патрикеев А.А. Результаты многоцентрового проспективного сравнительного исследования препарата Андрогель® у мужчин с недостаточностью эндогенного тестостерона и симптомами нижних мочевыводящих путей при доброкачественной гиперплазии предстательной железы («ПОТОК»). Урология. 2023; 2:32-40. DOI:10.18565/urology.2023.2.32-40.; Сапожкова Ж.Ю., Милованова Г.А., Почерников Д.Г., Постовойтенко Н.Т. Диагностические возможности исследования осадка эякулята с помощью амплификации нуклеиновых кислот методом полимеразно-цепной реакции в режиме реального времени и микробиологического исследования при поиске причин нарушения мужской репродуктивной функции. Медицинские технологии. Оценка и выбор. 2022;44(2):62 71. DOI:10.17116/medtech20224402162.; Почерников Д.Г., Постовойтенко Н.Т., Давидова Ж.Ю. Результативность модификации преаналитического лабораторного этапа ПЦР с целью выявления скрытых урогенитальных инфекций у мужчин// Лабораторная и клиническая медицина. Фармация. 2023. Т. 3, № 2. С. 4–11. DOI:10.14489/lcmp.2023.02.pp.004-011.; Инструкция по применению набора реагентов для исследования микрофлоры урогенитального тракта мужчин методом ПЦР в режиме реального времени Андрофлор® (ООО НПО «ДНК-Технология»). Регистрационное удостоверение № РЗН 20164490. Доступно по ссылке: http:www.dnatechnology.ru/information/aboutamethod/.; Chung MC, Gombar S, Shi RZ. Implementation of Automated Calculation of Free and Bioavailable Testosterone in Epic Beaker Laboratory Information System. J Pathol Inform. 2017 Jul 25;8:28. DOI:10.4103/jpi.jpi_28_17.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/739

  10. 10
    Academic Journal

    المساهمون: The work was carried out according to the state assignment (project AAAA-A21-121011590009-9) of the Ministry of Science and Education of the Russia., Работа выполнена по государственному заданию (проект АААА-А21-121011590009-9) Министерства науки и образования Российской Федерации.

    المصدر: Siberian journal of oncology; Том 23, № 3 (2024); 73-85 ; Сибирский онкологический журнал; Том 23, № 3 (2024); 73-85 ; 2312-3168 ; 1814-4861

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/3115/1235; Мерабишвили В.М., Семиглазов В.Ф., Комяхов А.В., Семиглазова Т.Ю., Криворотько П.В., Беляев А.М. Состояние онкологической помощи в России: рак молочной железы. Эпидемиология и выживаемость больных. Влияние эпидемии бета-варианта коронавируса SARS-CoV-2 (клинико-популяционное исследование). Опухоли женской репродуктивной системы. 2023; 19(3): 16–24. doi:10.17650/1994-4098-2023-19-3-16-24.; Nielsen T.O., Leung S.C.Y., Rimm D.L., Dodson A., Acs B., Badve S., Denkert C., Ellis M.J., Fineberg S., Flowers M., Kreipe H.H., Laenkholm A.V., Pan H., Penault-Llorca F.M., Polley M.Y., Salgado R., Smith I.E., Sugie T., Bartlett J.M.S., McShane L.M., Dowsett M., Hayes D.F. Assessment of Ki67 in Breast Cancer: Updated Recommendations From the International Ki67 in Breast Cancer Working Group. J Natl Cancer Inst. 2021; 113(7): 808–19. doi:10.1093/jnci/djaa201.; Hacking S.M., Wang Y. Practical Issues of Ki67 Evaluation in Breast Cancer Clinical Practice. J Clin Transl Pathol. 2022; 2(2): 53–6. doi:10.14218/jctp.2022.00012.; Fortunati N., Catalano M.G., Boccuzzi G., Frairia R. Sex Hormone-Binding Globulin (SHBG), estradiol and breast cancer. Mol Cell Endocrinol. 2010; 316(1): 86–92. doi:10.1016/j.mce.2009.09.012.; Dimou N.L., Papadimitriou N., Gill D., Christakoudi S., Murphy N., Gunter M.J., Travis R.C., Key T.J., Fortner R.T., Haycock P.C., Lewis S.J., Muir K., Martin R.M., Tsilidis K.K. Sex hormone binding globulin and risk of breast cancer: a Mendelian randomization study. Int J Epidemiol. 2019; 48(3): 807–16. doi:10.1093/ije/dyz107.; Elsaesser F. Effects of active immunization against oestradiol-17 beta, testosterone or progesterone on receptivity in the female rabbit and evaluation of specificity. J Reprod Fertil. 1980; 58(1): 213–8. doi:10.1530/jrf.0.0580213.; Rosenberg M., Amir D., Folman Y. The effect of active immunization against progesterone on plasma concentrations of total and free progesterone, estradiol-17beta and LH in the cyclic ewe. Theriogenology. 1987; 28(4): 417–26. doi:10.1016/0093-691x(87)90246-9.; Bochskanl R., Thie M., Kirchner C. Active immunization of rabbits against progesterone: increase in hormone levels, and changes in metabolic clearance rates and in genital tract tissues. J Steroid Biochem. 1989; 33(3): 349–55. doi:10.1016/0022-4731(89)90323-3.; Caldwell B.V., Tillson S.A., Esber H., Thorneycroft I.H. Survival of tumours after immunization against oestrogens. Nature. 1971; 231(5298): 118–9. doi:10.1038/231118a0.; Аверьянов А.В., Антонов А.В., Животовский А.С., Костянко М.В., Вафин И.А., Колпинский Г.И. Антитела класса G, специфичные к бензо[а]пирену, эстрадиолу и прогестерону у женщин с колоректальным раком и раком молочной железы. Сибирский онкологический журнал. 2022; 21(5): 52–8. doi:10.21294/1814-4861-2022-21-5-52-58.; Norfleet A.M., Clarke C.H., Gametchu B., Watson C.S. Antibodies to the estrogen receptor-alpha modulate rapid prolactin release from rat pituitary tumor cells through plasma membrane estrogen receptors. FASEB J. 2000; 14(1): 157–65. doi:10.1096/fasebj.14.1.157.; Luconi M., Francavilla F., Porazzi I., Macerola B., Forti G., Baldi E. Human spermatozoa as a model for studying membrane receptors mediating rapid nongenomic effects of progesterone and estrogens. Steroids. 2004; 69(8–9): 553–9. doi:10.1016/j.steroids.2004.05.013.; Modi D.N., Shah C., Puri C.P. Non-genomic membrane progesterone receptors on human spermatozoa. Soc Reprod Fertil Suppl. 2007; 63: 515–29.; Schwartz N., Verma A., Bivens C.B., Schwartz Z., Boyan B.D. Rapid steroid hormone actions via membrane receptors. Biochim Biophys Acta. 2016; 1863(9): 2289–98. doi:10.1016/j.bbamcr.2016.06.004.; Borkowski A., Gyling M., Muquardt C., Body J.J., Leslercq G. Estrogen-like activity of a subpopulation of natural antiestrogen receptor autoantibodies in man. Endocrinology. 1991; 128(6): 3283–92. doi:10.1210/endo-128-6-3283.; Tassignon J., Haeseleer F., Borkowski A. Natural antiestrogen receptor autoantibodies in man with estrogenic activity in mammary carcinoma cell culture: study of their mechanism of action; evidence for involvement of estrogen-like epitopes. J Clin Endocrinol Metab. 1997; 82(10): 3464–70. doi:10.1210/jcem.82.10.4313.; Chaudhri R.A., Schwartz N., Elbaradie K., Schwartz Z., Boyan B.D. Role of ERα 36 in membrane-associated signaling by estrogen. Steroids. 2014; 81: 74–80. doi:10.1016/j.steroids.2013.10.020.; Ortona E., Pierdominici M., Berstein L. Autoantibodies to estrogen receptors and their involvement in autoimmune diseases and cancer. J Steroid Biochem Mol Biol. 2014; 144: 260–7. doi:10.1016/j.jsbmb.2014.07.004.; Sömjen D., Amir-Zaltsman Y., Mor G., Gayer B., Lichter S., Barnard G., Kohen F. Anti-idiotypic antibody as an oestrogen mimetic in vivo: stimulation of creatin kinase specific activity in rat animal models. J Endocrinol. 1996; 149(2): 305–12. doi:10.1677/joe.0.1490305.; Sömjen D., Kohen F., Lieberherr M. Nongenomic effects of an anti-idiotypic antibody as an estrogen mimetic in female human and rat osteoblasts. J Cell Biochem. 1997; 65(1): 53–66. doi:10.1002/(SICI)1097-4644(199704)65:13.0.CO;2-Y.; Maselli A., Capoccia S., Pugliese P., Raggi C., Cirulli F., Fabi A., Malorni W., Pierdominici M., Ortona E. Autoantibodies specific to estrogen receptor alpha act as estrogen agonists and their levels correlate with breast cancer cell proliferation. Oncoimmunology. 2015; 5(2). doi:10.1080/2162402X.2015.1074375.; Поленок Е.Г., Гордеева Л.А., Мун С.А., Костянко М.В., Антонов А.В., Вержбицкая Н.Е., Байрамов П.В., Колпинский Г.И., Вафин И.А., Глушков А.Н. Кооперативное участие идиотипических и антиидиотипических антител в стероид-зависимом химическом канцерогенезе. Российский иммунологический журнал. 2023; 26(1): 27–40. doi:10.46235/1028-7221-1177-COI.; Jerne N.K. Idiotypic networks and other preconceived ideas. Immunol Rev. 1984; 79: 5–24. doi:10.1111/j.1600-065x.1984.tb00484.x.; Глушков А.Н., Поленок Е.Г., Мун С.А., Гордеева Л.А., Костянко М.В., Антонов А.В., Вержбицкая Н.Е., Вафин И.А. Индивидуальный иммунологический фенотип и риск рака молочной железы у женщин в постменопаузе. Российский иммунологический журнал. 2019; 13(1): 44–52. doi:10.31857/S102872210005019-5.; Greiner M., Pfeiffer D., Smith R.D. Principles and practical application of the receiver operating characteristic analysis for diagnostic test. Prev Vet Med. 2000; 45(1–2): 23–41. doi:10.1016/s0167-5877(00)00115-x.; Pruthi S., Yang L., Sandhu N.P., Ingle J.N., Beseler C.L., Suman V.J., Cavalieri E.L., Rogan E.G. Evaluation of serum estrogen-DNA adducts as potential biomarkers for breast cancer risk. J. Steroid Biochem. Mol Biol. 2012; 132(1–2): 73–9. doi:10.1016/j.jsbmb.2012.02.002.; Yang L., Zahid M., Liao Y., Rogan E.G., Cavalieri E.L., Davidson N.E., Yager J.D., Visvanathan K., Groopman J.D., Kensler T.W. Reduced formation of depurinating estrogen–DNA adducts by sulforaphane or KEAP1 disruption in human mammary epithelial MCF-10A cells. Carcinogenesis. 2013; 34(11): 2587–92. doi:10.1093/carcin/bgt246.; Yager J.D. Mechanisms of estrogen carcinogenesis: The role of E2/E1–quinone metabolites suggests new approaches to preventive intervention – A review. Steroids. 2015; 99: 56–60. doi:10.1016/j.steroids.2014.08.006.; Alluri P.G., Speers C., Chinnaiyan A.M. Estrogen receptor mutations and their role in breast cancer progression. Breast Cancer Res. 2014; 16(6): 494. doi:10.1186/s13058-014-0494-7.; Harrod A., Lai C.-F., Goldsbrough I., Simmons G.M., Oppermans N., Santos D.B., Győrffy B., Allsopp R.C., Toghill B.J., Balachandran K., Lawson M., Morrow C.J., Surakala M., Carnevalli L.S., Zhang P., Guttery D.S., Shaw J.A., Coombes R.C., Buluwela L., Ali S. Genome engineering for estrogen receptor mutations reveals differential responses to antiestrogens and new prognostic gene signatures for breast cancer. Oncogene. 2022; 41(44): 4905–15. doi:10.1038/s41388-022-02483-8.; Leclercq G. Natural anti-estrogen receptor alpha antibodies able to induce estrogenic responses in breast cancer cells: hypotheses concerning their mechanisms of action and emergence. Int J Mol Sci. 2018; 19(2): 411. doi:10.3390/ijms19020411.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/3115

  11. 11
    Academic Journal
  12. 12
    Academic Journal
  13. 13
    Academic Journal

    المصدر: Medical and Clinical Chemistry; No. 4 (2022); 101-106 ; Медицинская и клиническая химия; № 4 (2022); 101-106 ; Медична та клінічна хімія; № 4 (2022); 101-106 ; 2414-9934 ; 2410-681X ; 10.11603/mcch.2410-681X.2022.i4

    وصف الملف: application/pdf

  14. 14
    Academic Journal

    المصدر: Medical and Clinical Chemistry; No. 4 (2022); 43-48 ; Медицинская и клиническая химия; № 4 (2022); 43-48 ; Медична та клінічна хімія; № 4 (2022); 43-48 ; 2414-9934 ; 2410-681X ; 10.11603/mcch.2410-681X.2022.i4

    وصف الملف: application/pdf

  15. 15
    Academic Journal
  16. 16
    Academic Journal

    المصدر: Research and Practical Medicine Journal; Том 10, № 2 (2023); 10-20 ; Research'n Practical Medicine Journal; Том 10, № 2 (2023); 10-20 ; 2410-1893 ; 10.17709/2410-1893-2023-10-2

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/876/547; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/876/558; Fuentes N, Silva Rodriguez M, Silveyra P. Role of sex hormones in lung cancer. Exp Biol Med (Maywood). 2021 Oct;246(19):2098-2110. doi:10.1177/15353702211019697.; Fidler-Benaoudia MM, Torre LA, Bray F, Ferlay J, Jemal A. Lung cancer incidence in young women vs. young men: a systematic analysis in 40 countries. Int J Cancer 2020; 147:811–9. doi:10.1002/ijc.32809.; Kutilin D.S., Airapetova T.G., Anistratov P.A., Pyltsin S.P., Leiman I.A., Karnaukhov N.S., Kit O.I. Сopy number variation in tumor cells and extracellular DNA in patients with lung adenocarcinoma Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2019; 167. (6). 771-778 doi:10.1007/s10517-019-04620-y.; Харагезов Д.А., Лазутин Ю.Н., Мирзоян Э.А., Милакин А.Г., Статешный О.Н., Лейман И.А., Чубарян А.В., Иозефи К.Д. Молекулярные мишени немелколеточного рака легкого (НМРЛ) вне «главной тройки». Южно-Российский онкологический журнал. 2021; 2(4): 38-47. https://doi.org/10.37748/2686-9039-2021-2-4-5.; Leach DA, Brooke GN, Bevan CL. Roles of steroid receptors in the lung and COVID-19. Essays Biochem. 2021 Dec 17;65(6):1025-1038. doi:10.1042/EBC20210005.; Kocher K, Delot-Vilain A, Spencer D, LoTempio J, Délot EC. Paucity and Disparity of Publicly Available Sex-Disaggregated Data for the COVID-19 Epidemic Hamper Evidence-Based Decision-Making. Arch Sex Behav. 2021 Feb;50(2):407-426. doi:10.1007/s10508-020-01882-w.; Jin J.M., Bai P., He W., Wu F., Liu X.F., Han D.M., Liu S., Yang J.K. Gender Differences in Patients With COVID-19: Focus on Severity and Mortality. Front. Public Health. 2020;8:152. doi:10.3389/fpubh.2020.00152; Zheng Z, Peng F, Xu B, Zhao J, Liu H, Peng J, Li Q, Jiang C, Zhou Y, Liu S, Ye C, Zhang P, Xing Y, Guo H, Tang W. Risk factors of critical & mortal COVID-19 cases: A systematic literature review and meta-analysis. J Infect. 2020 Aug;81(2):e16-e25. doi:10.1016/j.jinf.2020.04.021.; Goren A, Cadegiani FA, Wambier CG, Vano-Galvan S, Tosti A, Shapiro J, Mesinkovska NA, Ramos PM, Sinclair R, Lupi O, Hercogova J, McCoy J. Androgenetic alopecia may be associated with weaker COVID-19 T-cell immune response: An insight into a potential COVID-19 vaccine booster. Med Hypotheses. 2021 Jan;146:110439. doi:10.1016/j.mehy.2020.110439.; Costeira R, Lee KA, Murray B, Christiansen C, Castillo-Fernandez J, Ni Lochlainn M, Capdevila Pujol J, Macfarlane H, Kenny LC, Buchan I, Wolf J, Rymer J, Ourselin S, Steves CJ, Spector TD, Newson LR, Bell JT. Estrogen and COVID-19 symptoms: Associations in women from the COVID Symptom Study. PLoS One. 2021 Sep 10;16(9):e0257051. doi:10.1371/journal.pone.0257051.; Wolfe J, Safdar B, Madsen TE, Sethuraman KN, Becker B, Greenberg MR, McGregor AJ. Sex- or Gender-specific Differences in the Clinical Presentation, Outcome, and Treatment of SARS-CoV-2. Clin Ther. 2021 Mar;43(3):557-571.e1. doi:10.1016/j.clinthera.2021.01.015.; Maitra R, Malik P, Mukherjee TK. Targeting Estrogens and Various Estrogen-Related Receptors against Non-Small Cell Lung Cancers: A Perspective. Cancers (Basel). 2021 Dec 24;14(1):80. doi:10.3390/cancers14010080; Hsu LH, Chu NM, Kao SH. Estrogen, estrogen receptor and lung cancer. Int J Mol Sci 2017; 18:1713–29 doi:10.3390/ijms18081713.; Smida T, Bruno TC, Stabile LP. Influence of estrogen on the NSCLC microenvironment: a comprehensive picture and clinical implications. Front Oncol 2020; 10:137. doi:10.3389/fonc.2020.00137.; Xu H, Wang Z, Feng C, Yu W, Chen Y, Zeng X, Liu C. Effects of SARS-CoV-2 infection on male sex-related hormones in recovering patients. Andrology. 2021 Jan;9(1):107-114. doi:10.1111/andr.12942.; LoMauro A, Aliverti A. Sex and gender in respiratory physiology. Eur Respir Rev. 2021 Nov 8;30(162):210038. doi:10.1183/16000617.0038-2021.; Harding AT, Heaton NS. The Impact of Estrogens and Their Receptors on Immunity and Inflammation during Infection. Cancers (Basel). 2022 Feb 12;14(4):909. doi:10.3390/cancers14040909; Vermillion M.S., Ursin R., Attreed S.E., Klein S.L. Estriol Reduces Pulmonary Immune Cell Recruitment and Inflammation to Protect Female Mice from Severe Influenza. Endocrinology. 2018;159:3306–3320. doi:10.1210/en.2018-00486.; Tramontana F, Battisti S, Napoli N, Strollo R. Immuno-Endocrinology of COVID-19: The Key Role of Sex Hormones. Front Endocrinol (Lausanne). 2021 Dec 2;12:726696. doi:10.3389/fendo.2021.726696.; Scully EP, Haverfield J, Ursin RL, Tannenbaum C, Klein SL. Considering how biological sex impacts immune responses and COVID-19 outcomes. Nat Rev Immunol. 2020 Jul;20(7):442-447. doi:10.1038/s41577-020-0348-8.; Al-Raddadi R.M., Shabouni O.I., Alraddadi Z.M., Alzalabani A.H., Al-Asmari A.M., Ibrahim A., Almarashi A., Madani T.A. Burden of Middle East respiratory syndrome coronavirus infection in Saudi Arabia. J. Infect. Public Health. 2020;13:692–696. doi:10.1016/j.jiph.2019.11.016.; Janes TA, Ambrozio-Marques D, Fournier S, Joseph V, Soliz J, Kinkead R. Testosterone Supplementation Induces Age-Dependent Augmentation of the Hypoxic Ventilatory Response in Male Rats With Contributions From the Carotid Bodies. Front Physiol. 2021 Dec 24;12:781662. doi:10.3389/fphys.2021.781662.; Zhao Y, Gao YT, Zhang X, Rockwood AL, Kushnir MM, Cai Q, Wu J, Shi J, Lan Q, Rothman N, Shyr Y, Shu XO, Zheng W, Yang G. Endogenous sex hormones, aromatase activity and lung cancer risk in postmenopausal never-smoking women. Int J Cancer. 2022 Sep 1;151(5):699-707. doi:10.1002/ijc.34005; Becerra-Diaz M, Song M, Heller N. Androgen and androgen receptors as regulators of monocyte and macrophage biology in the healthy and diseased lung. Front Immunol 2020; 11:1698. doi:10.3389/fimmu.2020.01698.; Zhou J, Wang H, Sun Q, Liu X, Wu Z, Wang X, Fang W, Ma Z. miR-224-5p-enriched exosomes promote tumorigenesis by directly targeting androgen receptor in non-small cell lung cancer. Mol Ther Nucleic Acids 2021; 23:1217–28 doi:10.1016/j.omtn.2021.01.028.; Siegfried JM, Stabile LP. Estrongenic steroid hormones in lung cancer. Semin Oncol 2014; 41:5–16 doi:10.1053/j.seminoncol.2013.12.009.; Marquez-Garban DC, Mah V, Alavi M, Maresh EL, Chen HW, Bagryanova L, Horvath S, Chia D, Garon E, Goodglick L, Pietras RJ. Progesterone and estrogen receptor expression and activity in human non-small cell lung cancer. Steroids. 2011 Aug;76(9):910-20. doi:10.1016/j.steroids.2011.04.015; Fuentes N, Silveyra P. Estrogen receptor signaling mechanisms. Adv Protein Chem Struct Biol 2019; 116:135–70 doi:10.1016/bs.apcsb.2019.01.001.; Edwards C, Klekot O, Halugan L, Korchev Y. Follow Your Nose: A Key Clue to Understanding and Treating COVID-19. Front Endocrinol (Lausanne). 2021 Nov 18;12:747744. doi:10.3389/fendo.2021.747744; Herrera RA, Deshpande K, Martirosian V, Saatian B, Julian A, Eisenbarth R, Das D, Iyer M, Neman J. Сortisol promotes breast-to-brain metastasis through the blood-cerebrospinal fluid barrier. Cancer Rep (Hoboken). 2022 Apr;5(4):e1351. doi:10.1002/cnr2.1351; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/876

  17. 17
    Academic Journal

    المصدر: Reproductive health of woman; No. 8 (2023); 39-46 ; Reproductive health of woman; № 8 (2023); 39-46 ; Репродуктивне здоров'я жінки; № 8 (2023); 39-46 ; 2708-8731 ; 2708-8723

    وصف الملف: application/pdf

  18. 18
    Academic Journal
  19. 19
    Academic Journal
  20. 20
    Academic Journal