المؤلفون: S. D. Rumyantsev, V. Y. Alekseev, A. V. Sorokan, G. F. Burkhanova, E. A. Cherepanova, I. V. Maksimov, S. V. Veselova, С. Д. Румянцев, В. Ю. Алексеев, А. В. Сорокан, Г. Ф. Бурханова, Е. А. Черепанова, И. В. Максимов, С. В. Веселова

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 28, № 3 (2024); 276-287 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 28, № 3 (2024); 276-287 ; 2500-3259 ; 10.18699/vjgb-24-30

مصطلحات موضوعية: биопрепараты, Schizaphis graminum, endophytes, PCR, RT-PCR, plant-microbial interactions, lipopeptides, biological control agents, эндофитные бактерии, ПЦР, ПЦР в реальном времени, растительно-микробные взаимодействия, липопептиды

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4141/1834; Alekseev V.Y., Veselova S.V., Rumyantsev S.D., Burkhanova G.F., Che repanova E.A., Maksimov I.V. Bacteria of the genus Bacillus and their lipopeptides enhance endurance of wheat plants to the greenbug aphid Schizaphis graminum Rond. AIP Conf. Proc. 2021; 2388(1):030001. DOI 10.1063/5.0071841; Andrić S., Meyer T., Rigolet A., Prigent-Combaret C., Höfte M., Balleux G., Steels S., Hoff G., De Mot R., McCann A., De Pauw E., Arias A.A., Ongena M. Lipopeptide interplay mediates molecular interactions between soil Bacilli and Pseudomonads. Microbiol. Spectr. 2021;9(3):e0203821. DOI 10.1128/spectrum.02038-21; Bindschedler L.V., Minibayeva F., Gardner S.L., Gerrish C., Davies D.R., Bolwell G.P. Early signaling events in the apoplastic oxidative burst in suspension cultured French bean cells involve cAMP and Ca2+. New Phytol. 2001;151(1):185-194. DOI 10.1046/j.1469-8137.2001.00170.x; Denoirjean T., Ameline A., Couty A., Dubois F., Coutte F., Doury G. Effects of surfactins, Bacillus lipopeptides, on the behavior of an aphid and host selection by its parasitoid. Pest Manag. Sci. 2022; 78(3):929-937. DOI 10.1002/ps.6702; Eid A.M., Fouda A., Abdel-Rahman M.A., Salem S.S., Elsa0935; Farzand A., Moosa A., Zubair M., Khan A.R., Massawe V.C.ied A., Oelmüller R., Hijri M., Bhowmik A., Elkelish A., Hassan S.E.-D. Harnessing bacterial endophytes for promotion of plant growth and biotechnological applications: an overview. Plants. 2021;10(5):935. DOI 10.3390/plants1005; Tahir H.A.S., Sheikh S.M.M., Ayaz M., Gao X. Suppression of Sclerotinia sclerotiorum by the induction of systemic resistance and regulation of antioxidant pathways in tomato using fengycin produced by Bacillus amyloliquefaciens FZB42. Biomolecules. 2019;9(10): 613. DOI 10.3390/biom9100613; Fu M., Xu M., Zhou T., Wang D., Tian S., Han L., Dong H., Zhang C. Transgenic expression of a functional fragment of harpin protein Hpa1 in wheat induces the phloem-based defence against English grain aphid. J. Exp. Bot. 2014;65(6):1439-1453. DOI 10.1093/jxb/ert488; Jiang M., Pang X., Liu H., Lin F., Lu F., Bie X., Lu Z., Lu Y. Iturin A induces resistance and improves the quality and safety of harvested cherry tomato. Molecules. 2021;26(22):6905. DOI 10.3390/molecules26226905; Koch K.G., Chapman K., Louis J., Heng-Moss T., Sarath G. Plant tolerance: a unique approach to control hemipteran pests. Front. Plant Sci. 2016;7:1363. DOI 10.3389/fpls.2016.01363; Ling S., Zhao Y., Sun S., Zheng D., Sun X., Zeng R., Chen D., Song Y. Enhanced anti-herbivore defense of tomato plants against Spodoptera litura by their rhizosphere bacteria. BMC Plant Biol. 2022; 22(1):254. DOI 10.1186/s12870-022-03644-3; Lu K., Zhang L., Qin L., Chen X., Wang X., Zhang M., Dong H. Importin β1 mediates nuclear entry of EIN2C to confer the phloem-based defense against aphids. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(10):8545. DOI 10.3390/ijms24108545; Maksimov I.V., Sorokan’ A.V., Cherepanova E.A., Yarullina L.G. Effects of salicylic and jasmonic acids on the components of pro/antioxidant system in potato plants infected with late blight. Russ. J. Plant Physiol. 2011;58(2):299-306. DOI 10.1134/S1021443711010109; Maksimov I.V., Blagova D.K., Veselova S.V., Sorokan A.V., Burkhanova G.F., Cherepanova E.A., Sarvarova E.R., Rumyantsev S.D., Alekseev V.Yu., Khayrullin R.M. Recombinant Bacillus subtilis 26DCryChS line with gene Btcry1Ia encoding Cry1Ia toxin from Bacillus thuringiensis promotes integrated wheat defense against pathogen Stagonospora nodorum Berk. and greenbug Schizaphis graminum Rond. Biol. Control. 2020;144:104242. DOI 10.1016/j.biocontrol.2020.104242; Miljaković D., Marinković J., Balešević-Tubić S. The significance of Bacillus spp. in disease suppression and growth promotion of field and vegetable crops. Microorganisms. 2020;8(7):1037. DOI 10.3390/microorganisms8071037; Morkunas I., Mai V.C., Gabrys B. Phytohormonal signaling in plant responses to aphid feeding. Acta Physiol. Plant. 2011;33(6):20572073. DOI 10.1007/s11738-011-0751-7; Oukala N., Aissat K., Pastor V. Bacterial endophytes: the hidden actor in plant immune responses against biotic stress. Plants. 2021; 10(5):1012. DOI 10.3390/plants10051012; Pangesti N., Reichelt M., van de Mortel J.E., Kapsomenou E., Gershenzon J., van Loon J.J., Dicke M., Pineda A. Jasmonic acid and ethylene signaling pathways regulate glucosinolate levels in plants during rhizobacteria-induced systemic resistance against a leaf-chewing herbivore. J. Chem. Ecol. 2016;42(12):1212-1225. DOI 10.1007/s10886-016-0787-7; Pieterse C.M., Zamioudis C., Berendsen R.L., Weller D.M., Van Wees S.C., Bakker P.A. Induced systemic resistance by beneficial microbes. Annu. Rev. Phytopathol. 2014;52:347-375. DOI 10.1146/annurev-phyto-082712-102340; Radchenko E.E., Abdullaev R.A., Anisimova I.N. Genetic resources of cereal crops for aphid resistance. Plants. 2022;11(11):1490. DOI 10.3390/plants11111490; Rani S., Kumar P., Dahiya P., Maheshwari R., Dang A.S., Suneja P. Endophytism: a multidimensional approach to plant–prokaryotic microbe interaction. Front. Microbiol. 2022;13:861235. DOI 10.3389/fmicb.2022.861235; Rashid M.H., Chung Y.R. Induction of systemic resistance against insect herbivores in plants by beneficial soil microbes. Front. Plant Sci. 2017;8:1816. DOI 10.3389/fpls.2017.01816; Rashid M.H., Kim H.-J., Yeom S.-I., Yu H.-A., Manir M.M., Moon S.- S., Kang Y.J., Chung Y.R. Bacillus velezensis YC7010 enhances plant defenses against brown planthopper through transcriptomic and metabolic changes in rice. Front. Plant Sci. 2018;9:1904. DOI 10.3389/fpls.2018.01904; Rodríguez M., Marín A., Torres M., Béjar V., Campos M., Sampedro I. Aphicidal activity of surfactants produced by Bacillus atrophaeus L193. Front. Microbiol. 2018;9:3114-3123. DOI 10.3389/fmicb.2018.03114; Rumyantsev S.D., Alekseev V.Y., Sorokan A.V., Burkhanova G.F., Cherepanova E.A., Garafutdinov R.R., Maksimov I.V., Veselova S.V. Additive effect of the composition of endophytic bacteria Bacillus subtilis on systemic resistance of wheat against greenbug aphid Schizaphis graminum due to lipopeptides. Life. 2023;13(1): 214. DOI 10.3390/life13010214; Sorokan A., Cherepanova E., Burkhanova G., Veselova S., Rumyantsev S., Alekseev V., Mardanshin I., Sarvarova E., Khairullin R., Benkovskaya G., Maksimov I. Endophytic Bacillus spp. as a prospective biological tool for control of viral diseases and non-vector Leptinotarsa decemlineata Say. in Solanum tuberosum L. Front. Microbiol. 2020;11:569457. DOI 10.3389/fmicb.2020.569457; Tunsagool P., Leelasuphakul W., Jaresitthikunchai J., Phaonakrop N., Roytrakul S., Jutidamrongphan W. Targeted transcriptional and proteomic studies explicate specific roles of Bacillus subtilis iturin A, fengycin, and surfactin on elicitation of defensive systems in mandarin fruit during stress. PLoS One. 2019;14(5):e0217202. DOI 10.1371/journal.pone.0217202; Veselova S.V., Nuzhnaya T.V., Maksimov I.V. The effect of 1-methylcyclopropene on the components of pro- and antioxidant systems of wheat and the development of defense reactions in fungal pathogenesis. Appl. Biochem. Microbiol. 2014;50(5):516-523. DOI 10.1134/S0003683814050111; Veselova S.V., Burkhanova G.F., Rumyantsev S.D., Blagova D.K., Maksimov I.V. Strains of Bacillus spp. regulate wheat resistance to greenbug aphid Schizaphis graminum Rond. Appl. Biochem. Microbiol. 2019;55(1):41-47. DOI 10.1134/S0003683819010186; Veselova S.V., Sorokan A.V., Burkhanova G.F., Rumyantsev S.D., Cherepanova E.A., Alekseev V.Y., Sarvarova E.R., Kasimova A.R., Maksimov I.V. By modulating the hormonal balance and ribonuclease activity of tomato plants Bacillus subtilis induces defense response against potato virus X and potato virus Y. Biomolecules. 2022;12(2):288. DOI 10.3390/biom12020288; Waewthongrak W., Leelasuphakul W., McCollum G. Cyclic lipopeptides from Bacillus subtilis ABS–S14 elicit defense-related gene expression in citrus fruit. PLoS One. 2014;9(10):e109386. DOI 10.1371/journal.pone.0109386; Xia Y., Liu J., Chen C., Mo X., Tan Q., He Y., Wang Z., Yin J., Zhou G. The multifunctions and future prospects of endophytes and their metabolites in plant disease management. Microorganisms. 2022; 10(5):1072. DOI 10.3390/microorganisms10051072; Zhu-Salzman K., Salzman R.A., Ahn J.-E., Koiwa H. Transcriptional regulation of sorghum defense determinants against a phloem-feeding aphid. Plant Physiol. 2004;134(1):420-431. DOI 10.1104/pp.103.028324; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4141

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4141
https://doi.org/10.18699/vjgb-24-32

المؤلفون: D. G. Pochernikov, N. T. Postovoytenko, N. A. Lipatova, A. I. Strelnikov, Д. Г. Почерников, Н. Т. Постовойтенко, Н. А. Липатова, А. И. Стрельников

المصدر: Andrology and Genital Surgery; Том 25, № 1 (2024); 87-94 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 25, № 1 (2024); 87-94 ; 2412-8902 ; 2070-9781

مصطلحات موضوعية: бессимптомная бактериоспермия, Steroid sex hormone level in men in the ejaculate, seminal plasma testosterone and estradiol levels, sex hormone binding globulin [SHBG], progesterone, testosterone, estradiol, free androgen index [FAI], testosterone/estradiol ratio, PCR real-time, PCR-RT, «Androflor®», male accessory gland infection, asymptomatic bacteriospermia, уровень половых гормонов в эякуляте мужчин, уровень тестостерона и эстрадиола в эякуляте, тестостерон, эстрадиол, прогестерон, глобулин, связывающий половые стероиды, индекс свободных андрогенов, тестостерон-эстрадиоловый индекс, ПЦР в реальном времени, «Андрофлор», инфекции добавочных мужских половых желез

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/739/570; Dericks-Tan JS, Bradler H, Taubert HD. Evaluation of proteohormon concentrations in serum and seminal fluid and its relationship with sperm count. Andrologia. 1978 May-Jun;10(3):175-82. DOI:10.1111/j.1439-0272.1978.tb03013.x.; Bain J, Duthie M, Keene J. Relationship of seminal plasma testosterone and dihydrotestosterone to sperm count and motility in man. Arch Androl. 1979;2(1):35-9. DOI:10.3109/01485017908987289.; Zufferey F, Rahban R, Garcia A, Gagnebin Y, Boccard J, Tonoli D, Jeanneret F, Stettler E, Senn A, Nef S, Rudaz S, Rossier MF. Steroid profiles in both blood serum and seminal plasma are not correlated and do not reflect sperm quality: Study on the male reproductive health of fifty young Swiss men. Clin Biochem. 2018 Dec;62:39-46. DOI:10.1016/j.clinbiochem.2018.03.008.; Vitku J, Kolatorova L, Hampl R. Occurrence and reproductive roles of hormones in seminal plasma. Basic Clin Androl. 2017 Sep 8;27:19. DOI:10.1186/s12610-017-0062-y.; Hampl R, Kubatova J, Heracek J, Sobotka V, Starka L. Hormones and endocrine disruptors in human seminal plasma. Endocr Regul. 2013 Jul;47(3):149-58. DOI:10.4149/endo_2013_03_149.; Álvarez-Rodríguez M, Martinez-Pastor F. Molecular Determinants of Seminal Plasma on Sperm Biology and Fertility. Int J Mol Sci. 2021 Mar 30;22(7):3555. DOI:10.3390/ijms22073555.; Hudson RW, Hayes KA, Crawford VA, McKay DE. Seminal plasma testosterone and dihydrotestosterone levels in men with varicoceles. Int J Androl. 1983 Apr;6(2):135-42. DOI:10.1111/j.1365-2605.1983.tb00332.x.; Mićić S, Dotlić R, Ilić V, Genbaćev O. Seminal plasma hormone profile in infertile men with and without varicocele. Arch Androl. 1986;17(3):173-8. DOI:10.3109/01485018608990193.; Bujan L, Mieusset R, Audran F, Lumbroso S, Sultan C. Increased oestradiol level in seminal plasma in infertile men. Hum Reprod. 1993 Jan;8(1):74-7. DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a137878.; Cooke PS, Nanjappa MK, Ko C, Prins GS, Hess RA. Estrogens in Male Physiology. Physiol Rev. 2017 Jul 1;97(3):995-1043. DOI:10.1152/physrev.00018.2016.; Akinloye O, Arowojolu AO, Shittu OB, Abbiyesuku FM, Adejuwon CA, Osotimehin B. Serum and seminal plasma hormonal profiles of infertile Nigerian male. Afr J Med Med Sci. 2006 Dec;35(4):468-73. PMID: 17722815.; Vigil P, Toro A, Godoy A. Physiological action of oestradiol on the acrosome reaction in human spermatozoa. Andrologia. 2008;40(3):146–151. DOI:10.1111/j.1439-0272.2007.00814.x.; Vigil P, Barrientos VM, Vargas GG, Machuca DA, Cortes ME. Assessment of the effect of testosterone on the acrosome reaction of human spermatozoa. Andrologia. 2012;44(Suppl 1):627–633. DOI:10.1111/j.1439-0272.2011.01241.x.; Zalata A, El-Mogy M, Abdel-Khabir A, El-Bayoumy Y, El-Baz M, Mostafa T. Seminal androgens, oestradiol and progesterone in oligoasthenoteratozoospermic men with varicocele. Andrologia. 2014;46(7):761–765. DOI:10.1111/and.12145.; Nesheim N, Ellem S, Dansranjavin T, Hagenkötter C, Berg E, Schambeck R, Schuppe HC, Pilatz A, Risbridger G, Weidner W, Wagenlehner F, Schagdarsurengin U. Elevated seminal plasma estradiol and epigenetic inactivation of ESR1 and ESR2 is associated with CP/CPPS. Oncotarget. 2018 Apr 13;9(28):19623-19639. DOI:10.18632/oncotarget.24714.; Kogan M, Naboka Y, Ferzauli A, Ibishev K, Gudima I, Ismailov R. Does the microbiota spectrum of prostate secretion affect the clinical status of patients with chronic bacterial prostatitis? IntJUrol. 2021 Dec;28(12):1254-1259. DOI:10.1111/iju.14685.; HoCH, FanCK, YuHJ, WuCC, ChenKC, LiuSP, ChengPC. Testosterone suppresses uropathogenic Escherichia coli invasion and colonization within prostate cells and inhibits inflammatory responses through JAK/STAT-1 signaling pathway. PLoSOne. 2017 Jun 30;12(6):e0180244. DOI:10.1371/journal.pone.0180244.; Mohamad NV, Wong SK, Wan Hasan WN, Jolly JJ, NurFarhana MF, Ima-Nirwana S, Chin KY. The relationship between circulating testosterone and inflammatory cytokines in men. Aging Male. 2019 Jun;22(2):129-140. DOI:10.1080/13685538.2018.1482487.; Ho CH, Lu YC, Fan CK, Yu HJ, Liu HT, Wu CC, Chen KC, Liu SP, Cheng PC. Testosterone regulates the intracellular bacterial community formation of uropathogenic Escherichia coli in prostate cells via STAT3. Int J Med Microbiol. 2020 Oct;310(7):151450. DOI:10.1016/j.ijmm.2020.151450.; Morgentaler A, Traish A. The History of Testosterone and the Evolution of its Therapeutic Potential. Sex Med Rev. 2020 Apr;8(2):286-296. DOI:10.1016/j.sxmr.2018.03.002.; Тюзиков И.А., Калинченко С.Ю., Ворслов Л.О., Греков Е.А. Коррекция андрогенного дефицита при хроническом инфекционном простатите как патогенетический метод преодоления неэффективности стандартной антибактериальной терапии на фоне растущей антибиотикорезистентности. Андрология и генитальная хирургия. 2013;14(1):55-63. DOI:10.17650/2070-9781-2013-1-55-63.; Черный А.А. Особенности клинического течения и лечения хронического бактериального простатита у пациентов с дефицитом тестостерона. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук. Ростов-на-Дону. 2015. C. 22.; Камалов А.А., Василевский Р.П., Охоботов Д.А., Неплохов Е.А. Сравнительная характеристика результатов лечения пациентов с доброкачественной гиперплазией предстательной железы в сочетании с гипогонадизмом. Урология. 2019; 4:58-61. DOI:10.18565/urology.2019.4.58-61.; Коган М.И., Авадиева Н.Э., Геворкян Л.С., Логинов Ю.А., Метелкин А.М., Митин А.А., Патрикеев А.А. Результаты многоцентрового проспективного сравнительного исследования препарата Андрогель® у мужчин с недостаточностью эндогенного тестостерона и симптомами нижних мочевыводящих путей при доброкачественной гиперплазии предстательной железы («ПОТОК»). Урология. 2023; 2:32-40. DOI:10.18565/urology.2023.2.32-40.; Сапожкова Ж.Ю., Милованова Г.А., Почерников Д.Г., Постовойтенко Н.Т. Диагностические возможности исследования осадка эякулята с помощью амплификации нуклеиновых кислот методом полимеразно-цепной реакции в режиме реального времени и микробиологического исследования при поиске причин нарушения мужской репродуктивной функции. Медицинские технологии. Оценка и выбор. 2022;44(2):62 71. DOI:10.17116/medtech20224402162.; Почерников Д.Г., Постовойтенко Н.Т., Давидова Ж.Ю. Результативность модификации преаналитического лабораторного этапа ПЦР с целью выявления скрытых урогенитальных инфекций у мужчин// Лабораторная и клиническая медицина. Фармация. 2023. Т. 3, № 2. С. 4–11. DOI:10.14489/lcmp.2023.02.pp.004-011.; Инструкция по применению набора реагентов для исследования микрофлоры урогенитального тракта мужчин методом ПЦР в режиме реального времени Андрофлор® (ООО НПО «ДНК-Технология»). Регистрационное удостоверение № РЗН 20164490. Доступно по ссылке: http:www.dnatechnology.ru/information/aboutamethod/.; Chung MC, Gombar S, Shi RZ. Implementation of Automated Calculation of Free and Bioavailable Testosterone in Epic Beaker Laboratory Information System. J Pathol Inform. 2017 Jul 25;8:28. DOI:10.4103/jpi.jpi_28_17.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/739

الاتاحة: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/739
https://doi.org/10.62968/2070-9781-2024-25-1-87-94

المؤلفون: Yu. L. Mikulovich, Yu. A. Savochkina, A. I. Zaytseva, A. E. Panova, A. S. Vinokurov, G. A. Shipulin, Ю. Л. Микулович, Ю. А. Савочкина, А. И. Зайцева, А. Е. Панова, А. С. Винокуров, Г. А. Шипулин

المصدر: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 101, № 4 (2023); 46-55 ; Туберкулез и болезни легких; Том 101, № 4 (2023); 46-55 ; 2542-1506 ; 2075-1230

مصطلحات موضوعية: ПЦР в реальном времени, drug resistant MTB, genetic markers of resistance, rifampicin, isoniazid, real-time PCR, генетические маркеры резистентности, рифампицин, изониазид

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1744/1753; Клинические рекомендации «Туберкулез у взрослых» 2022 г. - М.: 2022. URL: http://cr.minzdrav.gov.ru/recomend/16 [Дата обращения 15.06.2023]; Манаенкова Е. В., Савин А. А. Опыт применения тест-системы «ТБ-Биочип» в Тамбовской области // Клиническая лабораторная диагностика. - 2015. - № 2. - С. 59-62.; Нечаева О. Б. Эпидемическая ситуация при инфекционных социально-значимых заболеваниях в Российской Федерации в период пандемии COVID-19 (презентация от 04.09.2020) URL: https://may2020.rofconf.ru/uploads/presentation/nechaeva-o-b-epidemicheskaya-situaciya-pri-infekcionnyh-socialno-znachimyh-zabolevaniyah-v-rossiyskoy-federacii-v-period-pandemii-covid-19.pdf [Дата обращения 10.07.2023]; Afanas'ev M. V., Ikryannikova L. N., Il'ina E. N., Sidorenko S. V., Kuz'min A. V., Larionova E. E., Smirnova T. G., Chernousova L. N., Kamaev E. Yu., Skorniakov S. N., Kinsht V. N., Cherednichenko A. G., Govorun V. M. Molecular characteristics of rifampicin- and isoniazid-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates from the Russian Federation // Journal of Antimicrobial Chemotherapy. - 2007. - Vol. 59. - P. 1057-1064.; Campbell E. A., Korzheva N., Mustaev A., et al. Structural mechanism for rifampicin inhibition of bacterial RNA polymerase // Cell. - 2001. - Vol. 104. - № 6. - P. 901-912.; Catalogue of mutations in Mycobacterium tuberculosis complex and their association with drug resistance. Geneva: World Health Organization; 2021. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.; Chakravorty S., Simmons A. M., Rowneki M., Parmar H., Cao Y., Ryan J., Banada P. P., Deshpande S., Shenai S., Gall A., Glass J., Krieswirth B., Schumacher S. G., Nabeta P., Tukvadze N., Rodrigues C., Skrahina A., Tagliani E., Cirillo D. M., Davidow A., Denkinger C. M., Persing D., Kwiatkowski R., Jones M., Alland D. The new Xpert MTB/RIF Ultra: improving detection of Mycobacterium tuberculosis and resistance to rifampin in an assay suitable for point-of-care testing // mBio. - 2017. - № 8. - Р. e00812-17.; Clopper-Pearson Confidience Interval; Clopper C., Pearson E. (1934). The use of confidence or fiducial limits illustrated in the case of the binomial // Biometrika. - Vol. 26. - № 4. - P. 404-413. doi:10.2307/2331986.; de Freitas F. A., Bernardo V., Gomgnimbou M. K., Sola C., Siqueira H. R., Pereira M. A., Fandinho F. C., Gomes H. M., Araujo M. E., Suffys P. N., Marques E. A., Albano R. M. Multidrug resistant Mycobacterium tuberculosis: a retrospective katG and rpoB mutation profile analysis in isolates from a reference center in Brazil // PLoS One. - 2014. - Vol. 9. - № 8. - P. e104100.; El-Hajj H. H., Marras S. A., et al. Detection of rifampin resistance in Mycobacterium tuberculosis in a single tube with molecular beacons // J. Clin. Microbiol. - 2001. - Vol. 39. - № 11. - P. 4131-4137.; Global tuberculosis report 2020. Geneva: World Health Organization; 2020. - 208 p.; Herrera L., Jimenez S., Valverde A., Garda-Aranda M. A., Sáez-Nieto J. A. Molecular analysis of rifampicin-resistant Mycobacterium tuberculosis isolated in Spain (1996-2001). Description of new mutations in the rpoB gene and review of the literature // Int. J. Antimicrob. Agents. - 2003. - Vol. 21. - № 5. - P. 403-408.; Hillemann D., Weizenegger M., Kubica T., Richter E., Niemann S. Use of the genotype MTBDR assay for rapid detection of rifampin and isoniazid resistance in Mycobacterium tuberculosis complex isolates // J. Clin. Microbiol. - 2005. - Vol. 43. - № 8. - P. 3699-3703.; Lipin M. Y., Stepanshina V. N., Shemyakin I. G., Shinnick T. M. Association of specific mutations in katG, rpoB, rpsL and rrs genes with spoligotypes of multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates in Russia // Clin. Microbiol. Infect. - 2007. - Vol. 13. - № 6. - Р. 620-626.; Mokrousov I., Filliol I., Legrand E., Sola C., Otten T., Vyshnevskaya E., Limeschenko E., Vyshnevskiy B., Narvskaya O., Rastogi N. Molecular characterization of multiple-drug-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates from northwestern Russia and analysis of rifampin resistance using RNA/RNA mismatch analysis as compared to the line probe assay and sequencing of the rpoB gene // Res. Microbiol. - 2002. - Vol. 153. - № 4. - P. 213-219.; Sajduda A., Brzostek A., Poplawska M., Augustynowicz-Kopec E., Zwolska Z., Niemann S., Dziadek J., Hillemann D. Molecular characterization of rifampin- and isoniazid-resistant Mycobacterium tuberculosis strains isolated in Poland // J. Clin. Microbiol. - 2004. - Vol. 42, № 6. - P. 2425-2431.; Ramaswamy S. V., Reich R., Dou S.-J., Jasperse L., Pan X., Wanger A., et al. Single nucleotide polymorphisms in genes associated with isoniazid resistance in Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents Chemother. - 2003. - Vol. 47. - P. 1241-1250.; Sanchez-Padilla E., Merker M., Jochims F., Dlamini T., et al. Detection of drug-resistant tuberculosis by Xpert MTB/RIF in Swaziland // N. Engl. J. Med. - 2015. - Vol. 372. - P. 1181-1182.; Toungoussova O. S., Sandven P., Mariandyshev A. O., Nizovtseva N. I., Bjune G., Caugant D. A. Spread of drug-resistant Mycobacterium tuberculosis strains of the Beijing genotype in the Archangel Oblast, Russia // J. Clin. Microbiol. - 2002. - Vol. 40. - № 6. - P. 1930-1937.; Zhao L. L., Chen Y., Liu H. C. etc. Molecular characterization of multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates from China // Antimicrob. Agents Chemother. - 2014. - Vol. 58. - № 4. - P. 1997-2005.; https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1744

الاتاحة: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1744
https://doi.org/10.58838/2075-1230-2023-101-4-46-55

المؤلفون: A. A. Kashevarova, M. E. Lopatkina, O. Yu. Vasilyeva, D. A. Fedotov, E. A. Fonova, A. A. Sivtsev, A. A. Zarubin, I. N. Lebedev, А. А. Кашеварова, М. Е. Лопаткина, О. Ю. Васильева, Д. А. Федотов, Е. А. Фонова, А. А. Сивцев, А. А. Зарубин, И. Н. Лебедев

المصدر: Medical Genetics; Том 21, № 11 (2022); 36-39 ; Медицинская генетика; Том 21, № 11 (2022); 36-39 ; 2073-7998

مصطلحات موضوعية: секвенирование, array comparative genome hybridization, real-time PCR, sequencing, матричная сравнительная геномная гибридизация, ПЦР в реальном времени

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2196/1661; Boone P.M., Bacino C.A., Shaw C.A. et al. Detection of clinically relevant exonic copy-number changes by array CGH. Hum Mutat. 2010;31(12):1326-42.; Lindy A.S., Stosser M.B., Butler E. et al. Diagnostic outcomes for genetic testing of 70 genes in 8565 patients with epilepsy and neurodevelopmental disorders. Epilepsia. 2018;59(5):1062-1071.; Truty R., Paul J., Kennemer M., Lincoln S.E. et al. Prevalence and properties of intragenic copy-number variation in Mendelian disease genes. Genet Med. 2019;21(1):114-123.; Brandt T., Sack L.M., Arjona D. et al. Adapting ACMG/AMP sequence variant classification guidelines for single-gene copy number variants. Genet Med. 2020;22(2):336-344.; Gridina M.M., Matveeva N.M., Fishman V.S. et al. Allele-specific biased expression of the CNTN6 gene in iPS cell-derived neurons from a patient with intellectual disability and 3p26.3 microduplication involving the CNTN6 gene. Mol Neurobiol. 2018;55(8):6533-6546.; Кашеварова А.А., Лопаткина М.Е., Беляева Е.О. и др. Распространенность и спектр моногенных CNV у пациентов с нарушениями интеллектуального развития. Медицинская генетика. 2021;10(231):44-46.; Ivanovic V., Brankovic M., Bjelica B. et al. Yield of the PMP22 deletion analysis in patients with compression neuropathies. J Neurol. 2020;267(12):3617-3623.; https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2196

الاتاحة: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2196
https://doi.org/10.25557/2073-7998.2022.11.36-39

المؤلفون: T. N. Shapiro, N. A. Manucharova, E. S. Lobakova, Т. Н. Шапиро, Н. А. Манучарова, Е. С. Лобакова

المساهمون: The research was carried out with the financial support of the Russian National Science Foundation grant No. 21-14-00076 “Diversity and biotechnological potential of the soil microbiome under anthropogenic and abiogenic loads” and partly supported by the Interdisciplinary Scientific and Educational School of Moscow University “Molecular Technologies of the Living Systems and Synthetic Biology”.

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 26, № 6 (2022); 575-582 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 26, № 6 (2022); 575-582 ; 2500-3259 ; 2500-0462 ; 10.18699/VJGB-22-6

مصطلحات موضوعية: ПЦР в реальном времени, petroleum products, hydrocarbon-oxidizing bacteria, biodegradation, alkanmonooxygenase, alk B gene, real-time PCR, нефтепродукты, углеводородокисляющие бактерии, биодеградация, алканмонооксигеназы, ген alk B

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3479/1647; Andreoni V., Bernasconi S., Colombo M., van Beilen J.B., Cavalca L. Detection of genes for alkane and naphthalene catabolism in Rhodococcus sp. strain 1BN. Environ. Microbiol. 2000;2:572-577. DOI 10.1046/j.1462-2920.2000.00134.x.; Cappelletti M., Fedi S., Frascari D., Ohtake H., Turner R.J., Zannoni D. Analyses of both the alkB gene transcriptional start site and alkB promoter-inducing properties of Rhodococcus sp. strain BCP1 grown on n-alkanes. Appl. Environ. Microbiol. 2011;77(5):1619-1627. DOI 10.1128/AEM.01987-10.; Coon M.J. Cytochrome P450: nature’s most versatile biological catalyst. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2005;45:1-25.; Dedov A.G., Ivanova E.A., Sandzhieva D.A., Kashcheeva P.B., Buznik V.M., Lobakova E.S., Kirpichnikov M.P., Ishkov A.G. New materials and ecology: biocomposites for aquatic remediation. Theor. Found. Chem. Eng. 2017;51(4):617-630. DOI 0.1134/S0040579517040042.; Evans C.G.T., Herbert D., Tempest D.W. The continuous cultivation of micro-organisms: 2. Construction of a chemostat. In: Methods in Microbiology. Vol. 2. London; New York: Academic Press, 1970: 277-327. DOI 10.1016/S0580-9517(08)70227-7.; Funhoff E.G., Bauer U., García-Rubio I., Witholt B., van Beilen J.B. CYP153A6, a soluble P450 oxygenase catalyzing terminal-alkane hydroxylation. J. Bacteriol. 2006;188(14):5220-5227. DOI 10.1128/JB.00286-06.; Heiss-Blanquet S., Benoit Y., Marechaux C., Monot F. Assessing the role of alkane hydroxylase genotypes in environmental samples by competitive PCR. J. Appl. Microbiol. 2005;99(6):1392-1403. DOI 10.1111/j.1365-2672.2005.02715.x.; Ivanova A.E., Kravchenko I.K., Sukhacheva M.V., Kanat’eva A.Y.; Kurganov A.A. Hydrocarbon-oxidizing potential and genes for n- alkane biodegradation in a new acidophilic mycobacterial association from sulfur blocks. Microbiology. 2014;83(6):764-772.; Johnson E.L., Hyman M.R. Propane and n-butane oxidation by Pseudomonas putida GPo1. Appl. Environ. Microbiol. 2006;72(1):950-952. DOI 10.1128/AEM.72.1.950-952.2006.; Karimova S.A. Corrosion is the main enemy of aviation. Nauka i Zhizn’ = Science and Life. 2007;6:63-65. (in Russian); Kato T., Miyanaga A., Kanaya S., Morikawa M. Alkane inducible proteins in Geobacillus thermoleovorans B23. BMC Microbiol. 2009; 9(1):1-9. DOI 10.1186/1471-2180-9-60.; Kloos K., Munch J.C., Schloter M. A new method for the detection of alkane-monooxygenase homologous genes (alkB) in soils based on PCR-hybridization. J. Microbiol. Methods. 2006;66(3):486-496. DOI 10.1016/j.mimet.2006.01.014.; Kohno T., Sugimoto Y., Sei K., Mori K. Design of PCR primers and gene probes for general detection of alkane-degrading bacteria. Microbes Environ. 2002;17:114-121. DOI 10.1264/jsme2.17.114.; Korshunova A.V., Tourova T.P., Shestakova N.M., Mikhailova E.M., Nazina T.N., Poltaraus A.B. Detection and transcription of n-alkane biodegradation genes (alkB) in the genome of a hydrocarbonoxidizing bacterium Geobacillus subterraneus K. Microbiology. 2011;80(5):682-691.; Likhoshvay A., Lomakina A., Grachev M. The complete alk sequences of Rhodococcus erythropolis from Lake Baikal. Springerplus. 2014; 3(1):1-5. DOI 10.1186/2193-1801-3-621.; Liu C., Shao Z. Alcanivorax dieselolei sp. nov., a novel alkane-degrading bacterium isolated from sea water and deep-sea sediment. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2005;55(3):1181-1186. DOI 10.1099/ijs.0.63443-0.; Lomakina A.V., Pogodaeva T.V., Morozov I.V., Zemskaya T.I. Microbial communities of the discharge zone of oil- and gas-bearing fluids in low-mineral Lake Baikal. Microbiology. 2014;83(3):278-287. DOI 10.1134/S0026261714030126.; Lysak L.V., Dobrovol’skaya T.G., Skvortsova I.N. Methods for Assessing the Bacterial Diversity of Soils and the Identification of Soil Bacteria. Moscow: MAX Press Publ., 2003. (in Russian); Manucharova N.A., Pozdnyakov L.A., Vlasova A.P., Yanovich A.S., Ksenofontova N.A., Kovalenko M.A., Stepanov A.L. Metabolically active prokaryotic complex in grassland and forests’ sod-podzol under polycyclic aromatic hydrocarbon influence. Forests. 2021; 12(8):1103. DOI 10.3390/f12081103.; Martin-Sanchez P.M., Becker R., Gorbushina A.A., Toepel J. An improved test for the evaluation of hydrocarbon degradation capacities of diesel-contaminating microorganisms. Int. Biodeterior. Biodegr. 2018;129:89-94. DOI 10.1016/j.ibiod.2018.01.009.; Mohanty G., Mukherji S. Biodegradation rate of diesel range n-alkanes by bacterial cultures Exiguobacterium aurantiacum and Burkholderia cepacia. Int. Biodeterior. Biodegr. 2008;61(3):240-250. DOI 10.1016/j.ibiod.2007.06.011.; Paisse S., Duran R., Coulon F., Goñi-Urriza M. Are alkane hydroxylase genes (alkB) relevant to assess petroleum bioremediation processes in chronically polluted coastal sediments? Appl. Microbiol. Biotechnol. 2011;92(4):835-844. DOI 10.1016/j.ibiod.2007.06.011.; Powell S.M., Ferguson S.H., Bowman J.P., Snape I. Using real-time PCR to assess changes in the hydrocarbon-degrading microbial community in Antarctic soil during bioremediation. Microb. Ecol. 2006;52(3):523-532. DOI 10.1007/s00248-006-9131-z.; Redmond M.C., Valentine D.L., Sessions A.L. Identification of novel methane-, ethane-, and propane-oxidizing bacteria at marine hydrocarbon seeps by stable isotope probing. Appl. Environ. Microbiol. 2010;76(19):6412-6422. DOI 10.1128/AEM.00271-10.; Sameshima Y., Honda K., Kato J., Omasa T., Ohtake H. Expression of Rhodococcus opacus alkB genes in anhydrous organic solvents. J. Biosci. Bioeng. 2008;106(2):199-203. DOI 10.1263/jbb.106.199.; Shapiro T.N., Lobakova E.S., Dolnikova G.A., Ivanova E.A., Sandzhieva D.A., Burova A.A., Dedov A.G. Community of hydrocarbonoxidizing bacteria in petroleum products on the example of TS-1 jet fuel and AI-95 gasoline. Appl. Biochem. Microbiol. 2021;57(9): 949-961. DOI 10.1134/S0003683821090076.; Sierra-García I.N., Alvarez J.C., de Vasconcellos S.P., de Souza A.P., dos Santos Neto E.V., de Oliveira V.M. New hydrocarbon degradation pathways in the microbial metagenome from Brazilian petroleum reservoirs. Plos One. 2014;9(2):E90087. DOI 10.1371/journal.pone.0090087.; Smith C.B., Tolar B.B., Hollibaugh J.T., King G.M. Alkane hydroxylase gene (alkB) phylotype composition and diversity in northern Gulf of Mexico bacterioplankton. Front. Microbiol. 2013;4:370. DOI 10.3389/fmicb.2013.00370.; Smits T.H.M., Röthlisberger M., Witholt B., Van Beilen J.B. Molecular screening for alkane hydroxylase genes in Gram-negative and Gram-positive strains. Appl. Environ. Microbiol. 1999;1(4):307-317. DOI 10.1046/j.1462-2920.1999.00037.x.; Throne-Holst M., Wentzel A., Ellingsen T.E., Kotlar H.K., Zotchev S.B. Identification of novel genes involved in long-chain n-alkane degradation by Acinetobacter sp. strain DSM 17874. Appl. Environ. Microbiol. 2007;73(10):3327-3332. DOI 10.1128/AEM.00064-07.; Timergazina I.F., Perekhodova L.S. Biological oxidation of oil and petroleum products using hydrocarbon-oxidizing microorganisms. Neftegazovaya Geologiya. Teoriya i Praktika = Petroleum Geology. Theoretical and Applied Studies. 2012;7(1):15. (in Russian); Turova T.P., Nazina T.N., Mikhailova E.M., Rodionova T.A., Ekimov A.N., Mashukova A.V., Poltaraus A.B. AlkB homologues in thermophilic bacteria of the genus Geobacillus. Mol. Biol. (Mosk.). 2008;42(2):247-257.; Van Beilen J.B., Funhoff E.G. Alkane hydroxylases involved in microbial alkane degradation. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2007;74(1): 13-21. DOI 10.1007/s00253-006-0748-0.; Van Beilen J.B., Funhoff E.G., van Loon A., Just A., Kaysser L., Bouza M., Witholt B. Cytochrome P450 alkane hydroxylases of the CYP153 family are common in alkane-degrading eubacteria lacking integral membrane alkane hydroxylases. Appl. Environ. Microbiol. 2006;72(1):59-65. DOI 10.1128/AEM.72.1.59-65.2006.; Van Beilen J.B., Li Z., Duetz W.A., Smits T.H., Witholt B. Diversity of alkane hydroxylase systems in the environment. Oil Gas Sci. Technol. 2003;58(4):427-440. DOI 10.2516/ogst:2003026.; Van Beilen J.B., Smits T.H., Whyte L.G., Schorcht S., Röthlisberger M., Plaggemeier T., Witholt B. Alkane hydroxylase homologues in Gram-positive strains. Environ. Microbiol. 2002;4(11):676-682. DOI 10.1046/j.1462-2920.2002.00355.x.; Vomberg A., Klinner U. Distribution of alkb genes within n-alkanedegrading bacteria. J. Appl. Microbiol. 2000;89(2):339-348. DOI 10.1046/j.1365-2672.2000.01121.x.; Wang L., Wang W., Lai Q., Shao Z. Gene diversity of CYP153A and AlkB alkane hydroxylases in oil-degrading bacteria isolated from the Atlantic Ocean. Environ. Microbiol. 2010;12(5):1230-1242. DOI 10.1111/j.1462-2920.2010.02165.x.; Wasmund K., Burns K.A., Kurtböke D.I., Bourne D.G. Novel alkane hydroxylase gene (alkB) diversity in sediments associated with hydrocarbon seeps in the Timor Sea, Australia. Appl. Environ. Microbiol. 2009;75(23):7391-7398. DOI 10.1128/AEM.01370-09.; Whyte L.G., Hawari J., Zhou E., Bourbonnière L., Inniss W.E., Greer C.W. Biodegradation of variable-chain-length alkanes at low temperatures by a psychrotrophic Rhodococcus sp. Appl. Environ. Microbiol. 1998;64(7):2578-2584. DOI 10.1128/AEM.64.7.2578-2584.1998.; Whyte L.G., Smits T.H.M., Labbé D., Witholt B., Greer C.W., van Beilen J.B. Prevalence of alkane monooxygenase genes in Arctic and Antarctic hydrocarbon-contaminated and pristine soils. FEMS Microb. Ecol. 2002;41(2):141-150. DOI 10.1111/j.1574-6941.2002.tb00975.x.; Zhurina M.V., Strelkova E.A., Plakunov V.K., Belyaev S.S. Effect of reconstituted biofilm composition on bacterial hydrocarbonoxidizing activity. Microbiology. 2008;77(5):625-627.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3479

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3479
https://doi.org/10.18699/VJGB-22-70

المؤلفون: S. S. Dzhauari, M. N. Karagyaur, V. Yu. Balabanyan, M. N. Skryabina, A. L. Primak, D. V. Stambolsky, С. С. Джауари, М. Н. Карагяур, В. Ю. Балабаньян, М. Н. Скрябина, А. Л. Примак, Д. В. Стамбольский

المساهمون: The study was financially supported by the Ministry of Industry and Trade of the Russian Federation as part of the implementation of the Federal target program “Development of the pharmaceutical and medical industries of the Russian Federation for the period up to 2020 and beyond”., Работа выполнена при финасовой поддержке МинПромТорга РФ в рамках реализации Федеральной целевой программы «Развитие фармацевтической и медицинской промышленности Российской Федерации на период до 2020 года и дальнейшую перспективу».

المصدر: Pharmacokinetics and Pharmacodynamics; № 2 (2022); 46-57 ; Фармакокинетика и Фармакодинамика; № 2 (2022); 46-57 ; 2686-8830 ; 2587-7836

مصطلحات موضوعية: мыши, plasmid, dissemination, RealTime PCR, mice, плазмида, диссеминация, ПЦР в реальном времени

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/318/304; Одинак М.М., Живолупов С.А. Заболевания и травмы периферической нервной системы. Санкт-Петербург: Издательство «СпецЛит»; 2009.; Шевелев И.Н. Травматические поражения плечевого сплетения. – М.: Издательство «Москва»; 2005.; Karagyaur M, Rostovtseva A, Semina E, Klimovich P et al. A bicistronic plasmid encoding brain-derived neurotrophic factor and urokinase plasminogen activatorstimulates peripheral nerve regeneration after injury. J Pharmacol Exp Ther. 2020;372(3):248–255. DOI:10.1124/jpet.119.261594.; Boyd JG, Gordon T. Neurotrophic factors and their receptors in axonal regeneration and functional recovery after peripheral nerve injury. Mol Neurobiol. 2003;27(3):277–324. DOI:10.1385/MN:27:3:277.; Frostick SP, Yin Q, Kemp GJ. Schwann cells, neurotrophic factors, and peripheral nerve regeneration. Microsurgery. 1998;18(7):397–405. DOI:10.1002/(sici)1098-2752(1998)18:73.0.co;2-f.; Huang Q, Wei H, Wu Z, et al. Preferentially Expressed Antigen of Melanoma Prevents Lung Cancer Metastasis. PLoS One. 2016;11(7):e0149640. DOI:10.1371/journal.pone.0149640.; Maripuu A, Björkman A, Björkman-Burtscher IM, Mannfolk P et al. Reconstruction of sciatic nerve after traumatic injury in humans - factors influencing outcome as related to neurobiological knowledge from animal research. J Brachial Plex Peripher Nerve Inj. 2012 Oct 10;7(1):7. DOI:10.1186/1749-7221-7-7.; EMEA. Guideline on bioanalytical method validation. 2011.; US FDA. Guidance for industry: Q2B validation of analytical procedures: methodology. Rockville. MD: Nov 1996.; OECD. Guidance document on the validation and international acceptance of new or updated test methods for hazard assessment. 2005.; Schechtman LM. Internationally harmonized processes for test method evaluation. Validation and regulatory acceptance: The role of OECD guidance document 34. Japanese Society for Alternatives to Animal Experiments, 14, Special Issue. Рр. 475–782 (2008).; Хамиде З. Сеньюва, Гилберт Д. Простое руководство для пользователей по разработке и валидации методов / Перевод на русский язык под ред. А. Галкин. – М.: Издательство «ООО Ториус 77»; 2011.; Ermer J, Nethercote PW. Method Validation in Pharmaceutical Analysis. Wiley, 2014.; https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/318

الاتاحة: https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/318
https://doi.org/10.37489/2587-7836-2022-2-46-57

المؤلفون: A. S. Nizkorodova, E. R. Mal’tseva, Zh. A. Berdygulova, D. A. Naizabaeva, S. A. Kuatbekova, A. V. Zhigailov, N. Abdolla, A. S. Mashzhan, I. A. Akhmetollaev, Yu. A. Skiba, S. M. Mamadaliev, А. С. Низкородова, Э. Р. Мальцева, Ж. А. Бердыгулова, Д. А. Найзабаева, С. А. Куатбекова, А. В. Жигайлов, Н. Абдолла, А. С. Машжан, И. А. Ахметоллаев, Ю. А. Скиба, С. М. Мамадалиев

المساهمون: Финансирование. Проведенное исследование осуществлялось в рамках программы BR10764975 Министерства сельского хозяйства Республики Казахстан

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3 (2022); 170-172 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3 (2022); 170-172 ; 2658-719X ; 0370-1069

مصطلحات موضوعية: сибирская язва, real-time PCR, lambdaBA_5358, lambdaBA_5361, anthrax, ПЦР в реальном времени

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1740/1335; Koehler T.M., Dai Z., Kaufman-Yarbray M. Regulation of the Bacillus anthracis protective antigen gene: CO2 and a transacting element activate transcription from one of two promoters. J. Bacteriol. 1994; 3:586–95. DOI:10.1128/jb.176.3.586-595.1994.; Goel A.K. Anthrax: A disease of biowarfare and public health importance. World J. Clin. Cases. 2015; 1:20–33. DOI:10.12998/wjcc.v3.i1.20.; Ezzell J.W., Welkos S.L. The capsule of Bacillus anthracis, a review. J. Appl. Microbiol. 1999; 2:250–67. DOI:10.1046/j.13652672.1999.00881.x.; Helgason E., Okstad O.A., Caugant D.A., Johansen H.A., Fouet A., Mock M., Hegna I., Kolstø A.B. Bacillus anthracis, Bacillus cereus, and Bacillus thuringiensis – one species on the basis of genetic evidence. Appl. Environ. Microbiol. 2000; 6:2627–30. DOI:10.1128/AEM.66.6.2627-2630.2000.; Pannucci J., Okinaka R.T., Sabin R., Kuske C.R. Bacillus anthracis pXO1 plasmid sequence conservation among closely related bacterial species. J. Bacteriol. 2002; 1:134–41. DOI:10.1128/JB.184.1.134-141.2002.; Van der Auwera G.A., Andrup L., Mahillon J. Conjugative plasmid pAW63 brings new insights into the genesis of the Bacillus anthracis virulence plasmid pXO2 and of the Bacillus thuringiensis plasmid pBT9727. BMC Genomics. 2005; 6:103. DOI:10.1186/14712164-6-103.; Ågren J., Hamidjaja R.A., Hansen T., Ruuls R., Thierry S., Vigre H., Janse I., Sundström A., Segerman B., Koene M., Löfström C., Van Rotterdam B., Derzelle S. In silico and in vitro evaluation of PCR based assays for the detection of Bacillus anthracis chromosomal signature sequences. Virulence. 2013; 8:671–85. DOI:10.4161/viru.26288.; Shevtsov A., Lukhnova L., Izbanova U., Vernadet J.-P., Kuibagarov M., Amirgazin A., Ramankulov Y., Vergnaud G. Bacillus anthracis phylogeography: new clues from Kazakhstan, Central Asia. Front. Microbiol. 2021; 12:778225. DOI:10.3389/fmicb.2021.778225.; Nossa C.W., Oberdorf W.E., Yang L., Aas J.A., Paster B.J., Desantis T.Z., Brodie E.L., Malamud D., Poles M.A., Pei Z. Design of 16S rRNA gene primers for 454 pyrosequencing of the human foregut microbiome. World J. Gastroenterol. 2010; 16(33):4135–44. DOI:10.3748/wjg.v16.i33.4135.; McKiernan H.E., Danielson P.B. Molecular Diagnostic Applications in Forensic Science. In: Patrinos G.P., editor. Molecular Diagnostics (3d edition). Academic Press; 2017. Р. 371–94. DOI:10.1016/B978-0-12-802971-8.00021-3.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1740

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1740
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2022-3-170-172

المؤلفون: E. A. Khaova, N. M. Kashevarova, A. G. Tkachenko, Е. А. Хаова, Н. М. Кашеварова, А. Г. Ткаченко

المساهمون: Работа поддержана грантом Российского научного фонда № 18-73-10156.

المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 7, № 3 (2022); 150-161 ; 2587-9596 ; 2541-9420

مصطلحات موضوعية: ПЦР в реальном времени, indole, gene expression, real-time RT-PCR, индол, генная экспрессия

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3562/2364; Ткаченко А.Г. Молекулярные механизмы стрессорных ответов у микроорганизмов. Екатеринбург, 2012.; Tabor CW, Tabor H. Polyamines in microorganisms. Microbiol Rev. 1985; 49(1): 81-99. doi:10.1128/mr.49.1.81-99.1985; Kusano T, Berberich T, Tateda C, Takahashi Y. Polyamines: Essential factors for growth and survival. Planta. 2008; 228(3): 367-381. doi:10.1007/s00425-008-0772-7; Miller-Fleming L, Olin-Sandoval V, Campbell K, Ralser M. Remaining mysteries of molecular biology: The role of polyamines in the cell. J Mol Biol. 2015; 427(21): 3389-3406. doi:10.1016/j.jmb.2015.06.020; Igarashi K, Kashiwagi K. Modulation of cellular function by polyamines. Int J Biochem Cell Biol. 2010; 42(1): 39-51. doi:10.1016/j.biocel.2009.07.009; Igarashi K, Kashiwagi K. Effects of polyamines on protein synthesis and growth of Escherichia coli. J Biol Chem. 2018; 293(48): 18702-18709. doi:10.1074/jbc.TM118.003465; Igarashi K, Ito K, Kashiwagi K. Polyamine uptake systems in Escherichia coli. Res Microbiol. 2001; 152(3-4): 271-278. doi:10.1016/s0923-2508(01)01198-6; Agostinelli E, Marques MP, Calheiros R, Gil FP, Tempera G, Viceconte N, et al. Polyamines: Fundamental characters in chemistry and biology. Amino Acids. 2010; 38(2): 393-403. doi:10.1007/s00726-009-0396-7; Zarkan A, Liu J, Matuszewska M, Gaimster H, Summers DK. Local and universal action: The paradoxes of indole signalling in bacteria. Trends Microbiol. 2020; 28(7): 566-577. doi:10.1016/j.tim.2020.02.007; Нестерова Л.Ю., Ахова А.В., Ткаченко А.Г. Влияние индола на содержание клеточных полиаминов и антибиотикочувствительность Escherichia coli. Вестник Московского университета. Серия 16. Биология. 2021; 76(4): 219-224.; Tkachenko AG, Nesterova LY. Polyamines as modulators of gene expression under oxidative stress inEscherichia coli.Biochemistry (Mosc). 2003; 68(8): 850-856. doi:10.1023/a:1025790729797; Tkachenko AG, Shumkov MS, Akhova AV. Putrescine as a modulator of the level of RNA polymerase sigma S subunit in Escherichia coli cells under acid stress. Biochemistry (Mosc). 2006; 71(2): 185-193. doi:10.1134/s0006297906020118; Tkachenko AG, Kashevarova NM, Karavaeva EA, Shumkov MS. Putrescine controls the formation of Escherichia coli persister cells tolerant to aminoglycoside netilmicin. FEMS Microbiol Lett. 2014; 361(1): 25-33. doi:10.1111/1574-6968.12613; Tkachenko AG, Kashevarova NM, Tyuleneva EA, Shumkov MS. Stationary-phase genes upregulated by polyamines are responsible for the formation of Escherichia coli persister cells tolerant to netilmicin. FEMS Microbiol Lett. 2017; 364(9): fnx084. doi:10.1093/femsle/fnx084; Shah P, Swiatlo E. A multifaceted role for polyamines in bacterial pathogens. Mol Microbiol. 2008; 68(1): 4-16. doi:10.1111/j.1365-2958.2008.06126.x; Lang M, Krin E, Korlowski C, Sismeiro O, Varet H, Coppée JY, et al. Sleeping ribosomes: Bacterial signaling triggers RaiA mediated persistence to aminoglycosides. iScience. 2021; 24(10): 103128. doi:10.1016/j.isci.2021.103128; Magnusson LU, Farewell A, Nyström T. ppGpp: A global regulator in Escherichia coli. Trends Microbiol. 2005;13(5): 236-242. doi:10.1016/j.tim.2005.03.008; Hauryliuk V, Atkinson GC, Murakami KS, Tenson T, Gerdes K. Recent functional insights into the role of (p)ppGpp in bacterial physiology. Nat Rev Microbiol. 2015; 13(5): 298-309. doi:10.1038/nrmicro3448; Bougdour A, Gottesman S. ppGpp regulation of RpoS degradation via anti-adaptor protein IraP. Proc Natl Acad Sci USA. 2007; 104(31): 12896-12901. doi:10.1073/pnas.0705561104; Hengge-Aronis R. Signal transduction and regulatory mechanisms involved in control of the sigma(S) (RpoS) subunit of RNA polymerase. Microbiol Mol Biol Rev. 2002a; 66(3): 373-395. doi:10.1128/MMBR.66.3.373-395.2002; Hengge-Aronis R. Stationary phase gene regulation: What makes an Escherichia coli promoter sigmaS-selective? Curr Opin Microbiol. 2002b; 5(6): 591-595. doi:10.1016/s1369-5274(02)00372-7; Williams RM, Rimsky S. Molecular aspects of the E. coli nucleoid protein, H-NS: A central controller of gene regulatory networks. FEMS Microbiol Lett. 1997; 156(2): 175-185. doi:10.1111/j.1574-6968.1997.tb12724.x; Johansson J, Eriksson S, Sondén B, Wai SN, Uhlin BE. Heteromeric interactions among nucleoid-associated bacterial proteins: localization of StpA-stabilizing regions in H-NS of Escherichia coli. J Bacteriol. 2001; 183(7): 2343-2347. doi:10.1128/JB.183.7.2343-2347.2001; Prossliner T, Skovbo Winther K, Sørensen MA, Gerdes K. Ribosome hibernation. Annu Rev Genet. 2018; 52: 321-348. doi:10.1146/annurev-genet-120215-035130; Datsenko KA, Wanner BL. One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K-12 using PCR products. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000; 97(12): 6640-6645. doi:10.1073/pnas.120163297; Tabor H, Hafner EW, Tabor CW. Construction of an Escherichia coli strain unable to synthesize putrescine, spermidine, or cadaverine: Characterization of two genes controlling lysine decarboxylase. J Bacteriol. 1980; 144(3): 952-956. doi:10.1128/jb.144.3.952-956.1980; Ruijter JM, Ramakers C, Hoogaars WM, Karlen Y, Bakker O, van den Hoff MJ, et al. Amplification efficiency: Linking baseline and bias in the analysis of quantitative PCR data. Nucleic Acids Res. 2009; 37(6): e45. doi:10.1093/nar/gkp045; Rhee HJ, Kim EJ, Lee JK. Physiological polyamines: Simple primordial stress molecules. J Cell Mol Med. 2007; 11(4): 685-703. doi:10.1111/j.1582-4934.2007.00077.x; Lightfoot HL, Hall J. Endogenous polyamine function – the RNA perspective. Nucleic Acids Res. 2014; 42(18): 11275-11290. doi:10.1093/nar/gku837; Dorman CJ. H-NS: A universal regulator for a dynamic genome. Nat Rev Microbiol. 2004; 2(5): 391-400. doi:10.1038/nrmicro883; Fang FC, Rimsky S. New insights into transcriptional regulation by H-NS. Curr Opin Microbiol. 2008; 11(2): 113-120. doi:10.1016/j.mib.2008.02.011; Free A, Dorman CJ. The Escherichia coli stpA gene is transiently expressed during growth in rich medium and is induced in minimal medium and by stress conditions. J Bacteriol. 1997; 179(3): 909-918. doi:10.1128/jb.179.3.909-918.1997; Wada A. Growth phase coupled modulation of Escherichia coli ribosomes. Genes Cells. 1998; 3(4): 203-208. doi:10.1046/j.1365-2443.1998.00187.x; Polikanov YS, Blaha GM, Steitz TA. How hibernation factors RMF, HPF, and YfiA turn off protein synthesis. Science. 2012; 336(6083): 915-918. doi:10.1126/science.1218538; Agafonov DE, Kolb VA, Nazimov IV, Spirin AS. A protein residing at the subunit interface of the bacterial ribosome. Proc Natl Acad Sci U S A. 1999; 96(22): 12345-12349. doi:10.1073/pnas.96.22.12345; Li G, Young KD. Indole production by the tryptophanase TnaA in Escherichia coli is determined by the amount of exogenous tryptophan. Microbiology (Reading). 2013; 159(Pt 2): 402-410. doi:10.1099/mic.0.064139-0; Gaimster H, Cama J, Hernández-Ainsa S, Keyser UF, Summers DK. The indole pulse: A new perspective on indole signalling in Escherichia coli. PLoS One. 2014; 9(4): e93168. doi:10.1371/journal.pone.0093168; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3562

الاتاحة: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3562
https://doi.org/10.29413/ABS.2022-7.3.16

المؤلفون: A. L. Arkhipova, A. V. Babiy, A. V. Arkhipov, S. N. Kovalchuk

المصدر: Российский паразитологический журнал, Vol 12, Iss 3, Pp 47-54 (2019)

مصطلحات موضوعية: крупный рогатый скот, анаплазмоз, anaplasma marginale, пцр в реальном времени, cattle, anaplasmosis, pcr in real time mode, Biology (General), QH301-705.5

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://vniigis.elpub.ru/jour/article/view/480; https://doaj.org/toc/1998-8435; https://doaj.org/toc/2541-7843

URL الوصول: https://doaj.org/article/e5d6e43276104a5d9dd9f99191be6273

المؤلفون: Сергей Владимирович Баринов, Виталий Александрович Охлопков, Туран Шахин кызы Бабаева, Людмила Борисовна Синельникова, Татьяна Викторовна Терлецкая

المصدر: Мать и дитя в Кузбассе, Vol 20, Iss 1, Pp 42-48 (2019)

مصطلحات موضوعية: бактериальный вагиноз, микрофлора влагалища, условно-патогенные бактерии, рецидив, тест пцр в реальном времени, Pediatrics, RJ1-570, Gynecology and obstetrics, RG1-991

وصف الملف: electronic resource

Relation: http://mednauki.ru/index.php/MD/article/view/311; https://doaj.org/toc/1991-010X; https://doaj.org/toc/2542-0968

URL الوصول: https://doaj.org/article/20641a30bec542a88b4b5a14f76d50ad

المؤلفون: К.А. Резникова, B.Р. Чередниченко, C.В. Зубкова, А.В. Попенкова, Д.В. Ляпина

المصدر: ИННОВАЦИОННЫЕ НАУЧНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ, 7-1(9), 6-12, (2021-09-27)

مصطلحات موضوعية: микробиом кишечника, пробиотики, ПЦР в реальном времени, бактерии, бифидобактерии

Relation: https://doi.org/10.5281/zenodo.5529144; https://doi.org/10.5281/zenodo.5529145; oai:zenodo.org:5529145

الاتاحة: https://doi.org/10.5281/zenodo.5529145

المؤلفون: E. V. Naidenova, V. G. Dedkov, D. A. Agafonov, A. M. Senichkina, M. V. Safonova, V. V. Kutyrev, Е. В. Найденова, В. Г. Дедков, Д. А. Агафонов, А. М. Сеничкина, М. В. Сафонова, В. В. Кутырев

المساهمون: Авторский коллектив выражает свою благодарность за помощь в сборе образцов клинического и биологического материала сотрудникам Исследовательского института прикладной биологии Гвинеи (г. Kindia, Гвинейская Республика) и Института медицинской ветеринарии (г. Dalaba, Гвинейская Республика).

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 1 (2021); 110-115 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 1 (2021); 110-115 ; 2658-719X ; 0370-1069

مصطلحات موضوعية: Гвинейская Республика, Lujo hemorrhagic fever, real-time RT-PCR, Republic of Guinea, геморрагическая лихорадка Луйо, ОТ-ПЦР в реальном времени

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1445/1196; Paweska J.T., Sewlall N.H., Ksiazek T.G., Blumberg L.H., Hale M.J., Lipkin W.I., Weyer J., Nichol S.T., Rollin P.E., McMullan L.K., Paddock C.D., Briese T., Mnyaluza J., Dinh T.H., Mukonka V., Ching P., Duse A., Richards G., de Jong G., Cohen C., Ikalafeng B., Mugero C., Asomugha C., Malotle M.M., Nteo D.M., Misiani E., Swanepoel R., Zaki S.R. Nosocomial outbreak of novel arenavirus infection, Southern Africa. Emerg. Infect. Dis. 2009; 15(10):1598– 602. DOI:10.3201/eid1510.090211.; Briese T., Paweska J.T., McMullan L.K., Hutchison S.K., Street C., Palacios G., Khristova M.L., Weyer J., Swanepoel R., Egholm M., Nichol S.T., Lipkin W.I. Genetic detection and characterization of Lujo virus, a new hemorrhagic fever-associated arenavirus from Southern Africa. PLoS Pathog. 2009; 5(5):e1000455. DOI:10.1371/journal.ppat.1000455.; Ishii A., Thomas Y., Moonga L., Nakamura I., Ohnuma A., Hang'ombe B.M., Takada A., Mweene A.S., Sawa H. Molecular surveillance and phylogenetic analysis of Old World arenaviruses in Zambia. J. Gen. Virol. 2012; 93(Pt 10):2247–51. DOI:10.1099/vir.0.044099-0.; Сизикова Т.Е., Лебедев В.Н., Сыромятникова С.И., Борисевич С.В. Геморрагическая лихорадка Луйо. Вопросы вирусологии. 2017; 62(4):149–53. DOI:10.18821/0507-4088-2017-62-4-149-153.; Atkinson B., Chamberlain J., Dowall S.D., Cook N., Bruce C., Hewson R. Rapid molecular detection of Lujo virus RNA. J. Virol. Methods. 2014; 195:170–3. DOI:10.1016/j.jviromet.2013.09.006.; Найденова Е.В., Дедков В.Г., Сафонова М.В., Сеничкина А.М., Агафонов Д.А., Захаров К.С., Щербакова С.А., Кутырев В.В. Разработка методики выявления РНК вируса Луйо с использованием полимеразной цепной реакции с гибридизационнофлуоресцентной детекцией. В кн.: Покровский В.И., редактор. Сборник трудов Международной научно-практической конференции «Молекулярная диагностика 2018». Минск: СтройМедиаПроект; 2018. С. 453–4.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1445

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1445
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2021-1-110-115

المؤلفون: A. Kashevarova A., M. Lopatkina E., E. Belyaeva O., D. Fedotov A., G. Drozdov V., L. Nazarenko P., I. Lebedev N., А. Кашеварова А., М. Лопаткина Е., Е. Беляева О., Д. Федотов А., Г. Дроздов В., Л. Назаренко П., И. Лебедев Н.

المصدر: Medical Genetics; Том 20, № 10 (2021); 44-46 ; Медицинская генетика; Том 20, № 10 (2021); 44-46 ; 2073-7998

مصطلحات موضوعية: copy number variation, CNV, single-gene CNV, intellectual disability, real-time PCR, вариации числа копий участков ДНК, моногенные CNV, интеллектуальные нарушения, ПЦР в реальном времени

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/1987/1524; Kashevarova A.A., Nazarenko L.P., Schultz-Pedersen S. et al. Single gene microdeletions and microduplication of 3p26.3 in three unrelated families: CNTN6 as a new candidate gene for intellectual disability. Mol Cytogenet. 2014; 7(1): 97.; Vasilyev S.A., Skryabin N.A., Kashevarova A.A. et al. Differential DNA methylation of the IMMP2L gene in families with maternally inherited 7q31.1 microdeletions is associated with intellectual disability and developmental delay. Cytogenet Genome Res. 2021; 161(3-4): 105-119.; DECIPHER, DatabasE of genomiC varIation and Phenotype in Humans using Ensembl Resources. Available at: https://www.deciphergenomics.org/; Stuppia L., Antonucci I., Palka G., Gatta V. Use of the MLPA assay in the molecular diagnosis of gene copy number alterations in human genetic diseases. Int J Mol Sci. 2012;13(3):3245-76.; Duyzend M.H., Nuttle X., Coe B.P. et al. Maternal Modifiers and Parent-of-Origin Bias of the Autism-Associated 16p11.2 CNV. Am J Hum Genet. 2016; 98(1): 45-57.; Gridina M.M., Matveeva N.M., Fishman V.S. et al. Allele-Specific Biased Expression of the CNTN6 Gene in iPS Cell-Derived Neurons from a Patient with Intellectual Disability and 3p26.3 Microduplication Involving the CNTN6 Gene. Mol Neurobiol. 2018; 55(8): 6533-6546.; https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/1987

الاتاحة: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/1987
https://doi.org/10.25557/2073-7998.2021.10.44-46

المؤلفون: L. Shulenina V., D. Saleeva V., Л. Шуленина В., Д. Салеева В.

المصدر: Medical Genetics; Том 19, № 12 (2020); 66-67 ; Медицинская генетика; Том 19, № 12 (2020); 66-67 ; 2073-7998

مصطلحات موضوعية: miR-21, blood, PCR real time, standardization, validation, кровь, ПЦР в реальном времени, стандартизация, валидация

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/1819/1452; Sanders R., Bustin S., Huggett J., Mason D. Improving the standardization of mRNA measurement by RT-qPCR. Biomol Detect Quantif. 2018;15:13-17. doi:10.1016/j.bdq.2018.03.001.; Носырев П., Носырева М., Рассказова Т., Корнеева Н. Валидация аналитических методик: теория и практика. (Часть 1). Ремедиум. 2003; 10: 69-71; ГОСТ Р ИСО 5725-2002. Точность (правильность и прецизионность) методов и результатов измерений. http://docs.cntd.ru/document/1200029975; https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/1819

الاتاحة: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/1819

المؤلفون: Hajizadeh M., Falak R., Tavakoli-Yaraki M., Hosseinzadeh R., Alipour M., Ahmadpour E., Rafiei-Sefiddashti R.

المصدر: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 11, No 6 (2021); 1083-1088 ; Инфекция и иммунитет; Vol 11, No 6 (2021); 1083-1088 ; 2313-7398 ; 2220-7619

مصطلحات موضوعية: primary bone tumour, malignant tumour, benign tumour, toxoplasmosis, Toxoplasma gondii, real-time PCR, первичная опухоль кости, злокачественная опухоль, доброкачественная опухоль, токсоплазмоз, ПЦР в реальном времени

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1660/1383; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1660/6203; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1660/6204; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1660/6205; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1660/6206; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1660/6924; https://iimmun.ru/iimm/article/view/1660

الاتاحة: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1660
https://doi.org/10.15789/2220-7619-TGI-1660

المؤلفون: Yu. S. Alyapkina, A. A. Elov, L. K. Shipina, M. A. Vladimirskiy

المصدر: Туберкулез и болезни лёгких, Vol 96, Iss 12, Pp 18-24 (2019)

مصطلحات موضوعية: микобактерии туберкулеза, лекарственная устойчивость, рифампицин, изониазид, пцр в реальном времени, Diseases of the respiratory system, RC705-779

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1199; https://doaj.org/toc/2075-1230; https://doaj.org/toc/2542-1506

URL الوصول: https://doaj.org/article/749af684b58646ad90488fe2b1886685

المؤلفون: Yu. S. Аlyapkinа, E. E. Lаrionovа, T. G. Smirnovа, Ya. I. Аlekseev, L. N. Chernousovа, M. A. Vlаdimirskiy

المصدر: Туберкулез и болезни лёгких, Vol 95, Iss 11, Pp 27-35 (2017)

مصطلحات موضوعية: микобактерии туберкулеза, лекарственная устойчивость, этамбутол, аллель-специфичная пцр в реальном времени, Diseases of the respiratory system, RC705-779

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1060; https://doaj.org/toc/2075-1230; https://doaj.org/toc/2542-1506

URL الوصول: https://doaj.org/article/0df0f76d041f479796cd35564f877140

المؤلفون: A. A. Kubanov, A. A. Mineyeva

المصدر: Vestnik Dermatologii i Venerologii, Vol 0, Iss 5, Pp 73-80 (2017)

مصطلحات موضوعية: псориаз, гены tnfaip3, tnip1, tyk2, rel, snp, однонуклеотидные полиморфизмы, rs610604, rs17728338, rs12720356, rs702873, пцр в реальном времени, пдрф-анализ, psoriasis, tnfaip3, snp genes, single-nucleotide polymorphisms, real-time pcr, pflp assay, Dermatology, RL1-803

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://www.vestnikdv.ru/jour/article/view/67; https://doaj.org/toc/0042-4609; https://doaj.org/toc/2313-6294

URL الوصول: https://doaj.org/article/955830c9ddda41eba7d5a9beea3b687a

المؤلفون: Ufimtseva, M. A., Sabitov, A. U., Savchenko, N. V., Podymova, A. S., Voroshilina, E. S., Bochkarev, Yu. M., Gordon, E. A., Уфимцева, М. А., Сабитов, А. У., Савченко, Н. В., Подымова, А. С., Ворошилина, Е. С., Бочкарёв, Ю. М., Гордон, Е. О.

مصطلحات موضوعية: SKIN MICROBIOTA, HIV, CHILDREN, RT-PCR, МИКРОБИОТА КОЖИ, ВИЧ, ДЕТИ, ПЦР В РЕАЛЬНОМ ВРЕМЕНИ

وصف الملف: application/pdf

Relation: Уральский медицинский журнал. 2020. № 4(187).; Особенности микробиоты кожи у ВИЧ-инфицированных детей / М. А. Уфимцева, А. У. Сабитов, Н. В. Савченко [и др.]. – Текст: электронный // Уральский медицинский журнал. - 2020. – № 4(187). – С. 94-97.; http://elib.usma.ru/handle/usma/18971

الاتاحة: http://elib.usma.ru/handle/usma/18971

المؤلفون: Егорова М.С., Игнатов А.Н., Мазурин Е.С.

المصدر: RUDN Journal of Agronomy and Animal Industries

مصطلحات موضوعية: БАКТЕРИАЛЬНЫЙ ОЖОГ РИСА, BACTERIAL LEAF BLIGHT OF RICE, ПЦР "В РЕАЛЬНОМ ВРЕМЕНИ", БИО-ПЦР, BIO-PCR, REAL-TIME PCR

Relation: https://doi.org/10.22363/2312-797X-2014-2-22-27; https://openrepository.ru/article?id=250091

الاتاحة: https://openrepository.ru/article?id=250091