يعرض 1 - 20 نتائج من 507 نتيجة بحث عن '"ПЛАЗМА КРОВИ"', وقت الاستعلام: 0.70s تنقيح النتائج
  1. 1
    Academic Journal

    المصدر: Surgery and Oncology; Том 14, № 4 (2024); 86-92 ; Хирургия и онкология; Том 14, № 4 (2024); 86-92 ; 2949-5857

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.onco-surgery.info/jour/article/view/759/487; Sung H., Ferlay J., Siegel R.L. et al. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin 2021;71(3):209–49. DOI:10.3322/caac.21660; Заридзе Д.Г., Каприн А.Д., Стилиди И.С. Динамика заболеваемости и смертности от злокачественных новообразований в России. Вопросы онкологии 2018;64(5):578–90.; Герштейн Е.С., Огнерубов Н.А., Чанг В.Л. и др. Растворимые формы PD-1 и PD-L1 в плазме крови больных раком желудка и их связь с клиническими и морфологическими характеристиками заболевания. Клиническая лабораторная диагностика 2020;65(6):347–52. DOI: http://dx.doi.org/10.18821m69-2084-2020-65-6-347-352; Guo Y., Walsh A.M., Canavan M. et al. Immune checkpoint inhibitor PD-1 pathway is down-regulated in synovium at various stages of rheumatoid arthritis disease progression. PLoS ONE 2018;13(2):e0192704. DOI:10.1371/journal.pone.0192704; Theodoraki M.N., Yerneni S.S., Hoffmann T.K. et al. Clinical significance of PD-L1+ exosomes in plasma of head and neck cancer patients. Clin Cancer Res 2018;24(4):896–905. DOI:10.1158/1078-0432.CCR-17-2664; Герштейн Е.С., Уткин Д.О., Горячева И.О. и др. Растворимые формы рецептора контрольной точки иммунитета PD-1 и его лиганда PD-L1 в плазме крови больных новообразованиями яичников. Альманах клинической медицины 2018;46(7):690–8. DOI:10.18786/2072-0505-2018-46-7-690-698; Ковалева О.В., Грачев А.Н., Макарова Э.И. и др. Прогностическая значимость sPD-1/sPD-L1 при раке о почки в зависимости от фенотипа опухолевых и стромальных клеток. Онкоурология 2022;18(2):17–28. DOI:10.17650/1726-9776-2022-18-2-17-28; Guo X., Wang J., Jin J. et al. High serum level of soluble programmed death ligand 1 is associated with a poor prognosis in Hodgkin lymphoma. Transl Oncol 2018;11(3):779–85. DOI:10.1016/j.tranon.2018.03.012; Kim H.J., Park S., Kim K.J., Seong J. Clinical significance of soluble programmed cell death ligand-1 (sPD-L1) in hepatocellular carcinoma patients treated with radiotherapy. Radiother Oncol 2018;129(1):130–5. DOI:10.1016/j.radonc.2017.11.027; Kabir T.F., Chauhan A., Anthony L., Hildebrandt G.C. Immune checkpoint inhibitors in pediatric solid tumors: Status in 2018. Ochsner J 2018;18(4):370–6. DOI:10.31486/toj.18.0055; Shigemori T., Toiyama Y., Okugawa Y. et al. Soluble PD-L1 expression in circulation as a predictive marker for recurrence and prognosis in gastric cancer: direct comparison of the clinical burden between tissue and serum PD-L1 expression. Ann Surg Oncol 2019;26(3):876–83. DOI:10.1245/s10434-018-07112-x; Choi Y.Y., Kim H., Shin S.J. et al. Microsatellite instability and programmed cell death-ligand 1 expression in stage II/III gastric cancer: post hoc analysis of the CLASSIC Randomized Controlled study. Ann Surg 2019;270(2):309–16. DOI:10.1097/SLA.0000000000002803; Niu M., Liu Y., Yi M. et al. Biological characteristics and clinical significance of soluble PD-1/PD-L1 and exosomal PD-L1 in cancer. Front Immunol 2022;13:827921. DOI:10.3389/fimmu.2022.827921; Chmielewska I., Grenda A., Krawczyk P. et al. The influence of plasma sPD-L1 concentration on the effectiveness of immunotherapy in advanced NSCLC patients. Cancer Immunol Immunother 2023;72(12):4169–77. DOI:10.1007/s00262-023-03552-x; Kovaleva O.V., Podlesnaya P.A., Chang V.L. et al. Comprehensive analysis of stromal and serum markers in gastric cancer. Acta Naturae 2022;14(4):75–83. DOI:10.32607/actanaturae.11753.; Shin K., Kim J., Park S.J. et al. Prognostic value of soluble PD-L1 and exosomal PD-L1 in advanced gastric cancer patients receiving systemic chemotherapy. Sci Rep 2023;13:6952. DOI:10.1038/s41598-023-33128-9; Kurosaki T., Chamoto K., Suzuki S. et al. The combination of soluble forms of PD-1 and PD-L1 as a predictive marker of PD-1 blockade in patients with advanced cancers: a multicenter retrospective study. Front Immunol 2023;14:1325462. DOI:10.3389/fimmu.2023.1325462; Kawakami H., Sunakawa Y., Inoue E. et al. Soluble programmed cell death ligand 1 predicts prognosis for gastric cancer patients treated with nivolumab: blood-based biomarker analysis for the DELIVER trial. Eur J Cancer 2023;184:10–20. DOI:10.1016/j.ejca.2023.02.003.

  2. 2
    Academic Journal

    المساهمون: 0

    المصدر: Almanac of Clinical Medicine; Vol 52, No 3 (2024); 120-131 ; Альманах клинической медицины; Vol 52, No 3 (2024); 120-131 ; 2587-9294 ; 2072-0505

    وصف الملف: application/pdf

  3. 3
    Academic Journal

    المصدر: Drug development & registration; Том 13, № 2 (2024); 171-180 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 13, № 2 (2024); 171-180 ; 2658-5049 ; 2305-2066

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1802/1268; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/downloadSuppFile/1802/2235; De la Torre B. G., Albericio F. Peptide Therapeutics 2.0. Molecules. 2020;25(10):2293. DOI:10.3390/molecules25102293.; Torchilin V. Intracellular delivery of protein and peptide therapeutics. Drug Discovery Today: Technologies. 2008;5(2–3):e95–e103. DOI:10.1016/j.ddtec.2009.01.002.; Al Shaer D., Al Musaimi O., Albericio F., de la Torre B. G. 2018 FDA Tides Harvest. Pharmaceuticals. 2019;12(2):52. DOI:10.3390/ph12020052.; Al Shaer D., Al Musaimi O., Albericio F., de la Torre B. G. 2019 FDA TIDES (Peptides and Oligonucleotides) Harvest. Pharmaceuticals. 2020;13(3):40. DOI:10.3390/ph13030040.; Al Musaimi O., Al Shaer D., Albericio F., de la Torre B. G. 2020 FDA TIDES (Peptides and Oligonucleotides) Harvest. Pharmaceuticals. 2021;14(2):145. DOI:10.3390/ph14020145.; Al Shaer D., Al Musaimi O., Albericio F., de la Torre B. G. 2021 FDA TIDES (Peptides and Oligonucleotides) Harvest. Pharmaceuticals. 2022;15(2):222. DOI:10.3390/ph15020222.; Al Musaimi O., Al Shaer D., Albericio F., de la Torre B. G. 2022 FDA TIDES (Peptides and Oligonucleotides) Harvest. Pharmaceuticals. 2023;16(3):336. DOI:10.3390/ph16030336.; Kaspar A. A., Reichert J. M. Future directions for peptide therapeutics development. Drug Discovery Today. 2013;18(17–18):807–817. DOI:10.1016/j.drudis.2013.05.011.; Apostolopoulos V., Bojarska J., Chai T.-T., Elnagdy S., Kaczmarek K., Matsoukas J., New R., Parang K., Paredes Lopez O., Parhiz H., Perera C. O., Pickholz M., Remko M., Saviano M., Skwarczynski M., Tang Y., Wolf W. M., Yoshiya T., Zabrocki J., Zielenkiewicz P., AlKhazindar M., Barriga V., Kelaidonis K., Mousavinezhad Sarasia E., Toth I. A Global Review on Short Peptides: Frontiers and Perspectives. Molecules. 2021;26(2):430. DOI:10.3390/molecules26020430.; Ewles M., Goodwin L. Bioanalytical approaches to analyzing peptides and proteins by LC-MS/MS. Bioanalysis. 2011;3(12):1379–1397. DOI:10.4155/bio.11.112.; Rauh M. LC-MS/MS for protein and peptide quantification in clinical chemistry. Journal of Chromatography B. 2012;883–884:59–67. DOI:10.1016/j.jchromb.2011.09.030.; Fisher E. N., Melnikov E. S., Gegeckori V., Potoldykova N. V., Enikeev D. V., Pavlenko K. A., Agatonovic-Kustrin S., Morton D. W., Ramenskaya G. V. Development and Validation of an LC-MS/MS Method for Simultaneous Determination of Short Peptide-Based Drugs in Human Blood Plasma. Molecules. 2022;27(22):7831. DOI:10.3390/molecules27227831.; Ding J.-S., Peng W.-X., Zhang Z.-H., Li H.-D., Jiang X.-H. Determination of octreotide in human plasma by HPLC-MS with solid-phase extraction and study on the relative bioavailability of domestic and imported octreotide injections. Yao Xue Xue Bao. 2004;39(7):542–545.; Sauter M., Uhl P., Burhenne J., Haefeli W. E. Application of triple quadrupole tandem mass spectrometry to the bioanalysis of collision-induced dissociation-resistant cyclic peptides – Ultra-sensitive quantification of the somatostatin-analog pasireotide utilizing UHPLC-MS/MS. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 2021;194:113728. DOI:10.1016/j.jpba.2020.113728.; Aydin S. A short history, principles, and types of ELISA, and our laboratory experience with peptide/protein analyses using ELISA. Peptides. 2015;72:4–15. DOI:10.1016/j.peptides.2015.04.012.; Chen Y., Liang Y., Lv R., Xia N., Xue T., Zhao S. An immunological determination of somatostatin in pharmaceutical by sandwich ELISA based on IgY and polyclonal antibody. Microchemical Journal. 2019;145:532–538. DOI:10.1016/j.microc.2018.11.019.; Oh H. S., Choi M., Lee T. S., An Y., Park E. J., Kim T. H., Shin S., Shin B. S. Pharmacokinetics and brain distribution of the therapeutic peptide liraglutide by a novel LC-MS/MS analysis. Journal of Analytical Science and Technology. 2023;14(1):19. DOI:10.1186/s40543-023-00382-5.; Malm-Erjefält M., Bjørnsdottir I., Vanggaard J., Helleberg H., Larsen U., Oosterhuis B., van Lier J. J., Zdravkovic M., Olsen A. K. Metabolism and Excretion of the Once-Daily Human Glucagon-Like Peptide-1 Analog Liraglutide in Healthy Male Subjects and Its In Vitro Degradation by Dipeptidyl Peptidase IV and Neutral Endopeptidase. Drug Metabolism and Disposition. 2010;38(11):1944–1953. DOI:10.1124/dmd.110.034066.; De Souza I. D., Queiroz M. E. C. Advances in sample preparation and HPLC–MS/MS methods for determining amyloid-β peptide in biological samples: a review. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2023;415(18):4003–4021. DOI:10.1007/s00216-023-04631-9.; Hamman J. H., Enslin G. M., Kotzé A. F. Oral Delivery of Peptide Drugs. BioDrugs. 2005;19(3):165–177. DOI:10.2165/00063030-200519030-00003.; Le Maux S., Nongonierma A. B., FitzGerald R. J. Improved short peptide identification using HILIC–MS/MS: Retention time prediction model based on the impact of amino acid position in the peptide sequence. Food Chemistry. 2015;173:847–854. DOI:10.1016/j.foodchem.2014.10.104.; Doulou E., Kalomiraki M., Parla A., Thermos K., Chaniotakis N. A., Panderi I. Hydrophilic Interaction Liquid Chromatography Coupled with Fluorescence Detection (HILIC-FL) for the Quantitation of Octreotide in Injection Forms. Analytica. 2021;2(4):121–129. DOI:10.3390/analytica2040012.; Kang L., Weng N., Jian W. LC-MS bioanalysis of intact proteins and peptides. Biomedical Chromatography. 2020;34(1): e4633. DOI:10.1002/bmc.4633.; Böttger R., Hoffmann R., Knappe D. Differential stability of therapeutic peptides with different proteolytic cleavage sites in blood, plasma and serum. PLOS ONE. 2017;12(6):e0178943. DOI:10.1371/journal.pone.0178943.; Powell M. F. Chapter 30. Peptide Stability in Drug Development: in vitro Peptide Degradation in Plasma and Serum. Annual Reports in Medicinal Chemistry. 1993;28:285–294.; Zee B. M., Garcia B. A. Discovery of lysine post-translational modifications through mass spectrometric detection. Essays in Biochemistry. 2012;52:147–63. DOI:10.1042/bse0520147.; Lin S., Garcia B. A. Examining Histone Posttranslational Modification Patterns by High-Resolution Mass Spectrometry. Methods in Enzymology. 2012;512:3–28. DOI:10.1016/B978-0-12-391940-3.00001-9.; Bonaldi T., Imhof A., Regula J. T. A combination of different mass spectroscopic techniques for the analysis of dynamic changes of histone modifications. Proteomics. 2004;4(5):1382–1396. DOI:10.1002/pmic.200300743.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1802

  4. 4
    Academic Journal

    المصدر: Drug development & registration; Том 13, № 1 (2024); 257-271 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 13, № 1 (2024); 257-271 ; 2658-5049 ; 2305-2066

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1768/1257; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/downloadSuppFile/1768/2157; Концевая А. В., Муканеева Д. К., Игнатьева В. И., Анциферова А. А., Драпкина О. М. Экономика профилактики сердечно-сосудистых заболеваний в Российской Федерации. Российский кардиологический журнал. 2023;28(9):5521. DOI:10.15829/1560-4071-2023-5521.; Campbell N. R., Ordunez P., Giraldo G., Morales Y. A., Lombardi C., Khan T., Padwal R., Tsuyuki R. T., Varghese C. WHO HEARTS: a global program to reduce cardiovascular disease burden: experience implementing in the Americas and opportunities in Canada. Canadian Journal of Cardiology. 2021;37(5):744–755. DOI:10.1016/j.cjca.2020.12.004.; Movsisyan N. K., Vinciguerra M., Medina-Inojosa J. R., Lopez-Jimenez F. Cardiovascular diseases in central and eastern Europe: a call for more surveillance and evidence-based health promotion. Annals of global health. 2020;86(1):21. DOI:10.5334/aogh.2713.; Şahin B., İlgün G. Risk factors of deaths related to cardiovascular diseases in World Health Organization (WHO) member countries. Health & Social Care in the Community. 2022;30(1):73–80. DOI:10.1111/hsc.13156.; Nasarian E., Abdar M., Fahami M. A., Alizadehsani R., Hussain S., Basiri M. E., Zomorodi-Moghadam M., Zhou X., Pławiak P., Acharya U. R., Tan R. S. Association between work-related features and coronary artery disease: A heterogeneous hybrid feature selection integrated with balancing approach. Pattern Recognition Letters. 2020;133:33–40. DOI:10.1016/j.patrec.2020.02.010.; Rehman S., Rehman E., Ikram M., Jianglin Z. Cardiovascular disease (CVD): assessment, prediction and policy implications. BMC Public Health. 2021;21(1):1–4. DOI:10.1186/s12889-021-11450-z.; Timmis A., Townsend N., Gale C. P., Torbica A., Lettino M., Petersen S. E., Mossialos E. A., Maggioni A. P., Kazakiewicz D., May H. T., De Smedt D. European Society of Cardiology: cardiovascular disease statistics 2019. European heart journal. 2020;41(1):12–85. DOI:10.1093/eurheartj/ehz859.; Roth G. A., Mensah G. A., Johnson C. O., Addolorato G., Ammirati E., Baddour L. M., Barengo N. C., Beaton A. Z., Benjamin E. J., Benziger C. P., Bonny A. Global burden of cardiovascular diseases and risk factors, 1990–2019: update from the GBD 2019 study. Journal of the American College of Cardiology. 2020;76(25):2982–3021. DOI:10.1016/j.jacc.2020.11.010.; Крыжановский С. А., Лихошерстов А. М., Цорин И. Б., Столярук В. Н., Вититнова М. Б., Мокров Г. В., Гудашева Т. А. Скрининг кардиотропной активности в ряду α, ω-диарилметильных производных бис-(ω-аминоалкил) аминов. Фармакокинетика и фармакодинамика. 2016;(2):10–13.; Severino P., D’Amato A., Pucci M., Infusino F., Adamo F., Birtolo L. I., Netti L., Montefusco G., Chimenti C., Lavalle C., Maestrini V. Ischemic heart disease pathophysiology paradigms overview: from plaque activation to microvascular dysfunction. International journal of molecular sciences. 2020;21(21):8118. DOI:10.3390/ijms21218118.; Сизова Ж. М. Фармакотерапевтические подходы к лечению стабильной стенокардии: трудные вопросы-простые решения. Медицинский совет. 2021;(4):34–40. DOI:10.21518/2079-701X-2021-4-34-40.; Orellana-Urzúa S., Rojas I., Líbano L., Rodrigo R. Pathophysiology of ischemic stroke: role of oxidative stress. Current pharmaceutical design. 2020;26(34):4246–4260. DOI:10.2174/1381612826666200708133912.; Стаценко М. Е., Туркина С. В., Фабрицкая С. В., Полетаева Л. В. Миокардиальная цитопротекция при ишемической болезни сердца: что мы знаем об этом с позиции доказательной медицины? Вестник Волгоградского государственного медицинского университета. 2011;(2):9–14.; Хабибулина М. М., Шамилов М. Д. Влияние метаболической терапии на состояние церебральной гемодинамики при гипоэстрогенемии. Врач. 2023;34(3):52–56. DOI:10.29296/25877305-2023-03-10.; Ковансков В. Е., Кушнир В. И., Булатова С. А. Оценка влияния производных малоновой кислоты на выживаемость мышей в условиях гипоксии. Молодая фармация – потенциал будущего: Сборник материалов XII всероссийской научной конференции школьников, студентов и аспирантов с международным участием, Санкт-Петербург, 14 марта – 22 апреля 2022 года. Санкт-Петербург: Изд-во СПХФУ; 2022. С. 342–345.; Авенирова Е. Л., Алексеева П. А., Баранова Н. И., Басс М. С., Бурякина А. В., Питухина Н. Н., Федорова Е. В. Молекулярные аспекты создания лекарственных препаратов: использование методов компьютерного моделирования с целью создания нового противоишемического средства. Биомедицина. 2014;(1):4–10.; Юсковец В. Н., Яковлев И. П., Наркевич И. А. Способ получения 4-[(3-этокси-3-оксопропаноил)амино]бензойной кислоты. Патент России № 2515245 C1 от 07.02.2013.; Генералова Ю. Э., Тернинко И. И., Зеленцова А. Б. Сквозная стандартизация оригинальных лекарственных средств при определении родственных примесей. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2023;12(4):209–216. DOI:10.33380/2305-2066-2023-12-4-1573.; Ивкин Д. Ю., Карпов А. А., Драчева А. В., Питухина Н. Н., Ивкина А. С., Бурякина А. В., Теслев А. А. Влияние производного бензойной кислоты на формирование экспериментальной хронической сердечной недостаточности. Фармация. 2016;63(4):49–52.; Вайнштейн В. А., Теслев А. А., Сорокин В. В., Яковлев И. П., Наркевич И. А., Бурякина А. В., Ивкин Д. Ю. Фармацевтическая композиция с антиишемической и антиоксидантной активностью и способ ее получения. Патент России № 2013153648/15 от 03.12.2013. Доступно по: https://patentimages.storage.googleapis.com/08/87/3b/8e4964eac4f9fd/RU2545833C1.pdf. Ссылка активна на 22.02.2024.; Вайнштейн В. А., Теслев А. А., Наркевич И. А., Яковлев И. П. Cпособ получения водорастворимого лиофилизата 4-(3-оксо-3-этоксипропаноил)амино)бензойной кислоты, обладающей антиишемической и антиоксидантной активностью. Патент России № 2015124309/15 от 22.06.2015.; Ивкин Д. Ю., Карпов А. А., Ковансков В. Е., Титович И. А. Экспериментальная оценка фармакологической безопасности нового производного пропандиовой кислоты с кардиотропным действием. Биомедицина. 2023;19(3Е):95–98. DOI:10.33647/2713-0428-19-3Е-95-98.; Ивкин Д. Ю., Карпов А. А. Экспериментальная оценка эффективности и безопасности нового производного пропандиовой кислоты с кардиотропным действием. Биомедицина. 2022;18(3):109–112. DOI:10.33647/2074-5982-18-3-109-112.; Гришина А. Ю, Караваева А. В. Изучение аллергизирующих свойств этмабена. От молекулы до лекарственного препарата: Сборник материалов I Всероссийской научной конференции. Санкт-Петербург, 27 октября 2023 года. Санкт-Петербург: Изд-во СПХФУ; 2023. C. 52–54.; Гришина А. Ю., Евгеньева Е. М., Елецкая Е. И. Оценка мутагенного потенциала производного малоновой кислоты этмабена. От молекулы до лекарственного препарата: Сборник материалов I Всероссийской научной конференции. Санкт-Петербург, 27 октября 2023 года. Санкт-Петербург: Изд-во СПХФУ; 2023. C. 55–57.; Адамова А. А. Количественное определение стандартного образца 4-((3-оксо-3-этоксипропаноил)амино)бензойной кислоты (этмабена) методом материального баланса. Молодая фармация – потенциал будущего: Сборник материалов XIII Всероссийской научной конференции школьников, студентов и аспирантов с международным участием, Санкт-Петербург, 01–11 марта 2023 года. Санкт-Петербург: Изд-во СПХФУ; 2023. C. 163-166.; Гришина А. Ю., Карпов А. А. Изучение фармакокинетических параметров – 4-((3-оксо-3-этоксипропаноил)амино)бензойной кислоты (этмабена). От молекулы до лекарственного препарата: Сборник материалов I Всероссийской научной конференции. Санкт-Петербург, 27 октября 2023 года. Санкт-Петербург: Изд-во СПХФУ; 2023. C. 58–61.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1768

  5. 5
    Academic Journal
  6. 6
  7. 7
    Conference

    المساهمون: Короткова, Елена Ивановна

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Химия и химическая технология в XXI веке : материалы XXIV Международной научно-практической конференции студентов и молодых ученых имени выдающихся химиков Л. П. Кулёва и Н. М. Кижнера, посвященной 85-летию со дня рождения профессора А. В. Кравцова, Томск, 15-19 мая 2023 г. Т. 1; Чеченина, Е. Е. Разработка биоаналитической методики количественного определения PAV-0056 в плазме крови человека методом ВЭЖХ/МС / Е. Е. Чеченина, К. Е. Кожуховский; науч. рук. Е. И. Короткова // Химия и химическая технология в XXI веке : материалы XXIV Международной научно-практической конференции студентов и молодых ученых имени выдающихся химиков Л. П. Кулёва и Н. М. Кижнера, посвященной 85-летию со дня рождения профессора А. В. Кравцова, Томск, 15-19 мая 2023 г. : в 2 т. — Томск : Изд-во ТПУ, 2023. — Т. 1. — [С. 464-465].; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/76693

  8. 8
    Academic Journal
  9. 9
  10. 10
    Academic Journal
  11. 11
    Academic Journal

    المساهمون: The study was carried out within the framework of the basic budget financing projects of the Ministry of Education and Science of Russia (No. 121030200173-6) and the Ministry of Health of Russia (No. 121031300227-2)., Исследование выполнено в рамках проектов базового бюджетного финансирования Минобрнауки России (№ 121030200173-6) и Минздрава России (№ 121031300227-2).

    المصدر: Advances in Molecular Oncology; Том 10, № 2 (2023); 78-89 ; Успехи молекулярной онкологии; Том 10, № 2 (2023); 78-89 ; 2413-3787 ; 2313-805X ; 10.17650/2313-805X-2023-10-2

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/543/302; Sung H., Ferlay J., Siegel R.L. et al. Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin 2021;71(3):209–49. DOI:10.3322/caac.21660; Eberhardt W.E., Pöttgen C., Gauler T.C. et al. Phase III study of surgery versus definitive concurrent chemoradiotherapy boost in patients with resectable stage IIIA(N2) and selected IIIB non-small-cell lung cancer after induction chemotherapy and concurrent chemoradiotherapy (ESPATUE). J Clin Oncol 2015;33(35):4194–201. DOI:10.1200/JCO.2015.62.6812; Chang K., Wang H. The cancer genome atlas pan-cancer analysis project. Nat Genet 2013;45(10):1113–20. DOI:10.3779/j.issn.1009-3419.2015.04.02; Sempere L.F., Azmi A.S., Moore A. microRNA-based diagnostic and therapeutic applications in cancer medicine. Wiley Interdiscip Rev RNA 2021;12(6):e1662. DOI:10.1002/wrna.1662; Dhawan A., Scott J.G., Harris A.L., Buffa F.M. Pan-cancer characterisation of microRNA across cancer hallmarks reveals microRNA-mediated downregulation of tumour suppressors. Nat Commun 2018;9(1):5228. DOI:10.1038/s41467-018-07657-1; He B., Zhao Z., Cai Q. et al. miRNA-based biomarkers, therapies, and resistance in cancer. Int J Biol Sci 2020;16(14):2628–47. DOI:10.7150/ijbs.4720; Fredsøe J., Rasmussen A.K.I., Thomsen A.R. et al. Diagnostic and prognostic microRNA biomarkers for prostate cancer in cell-free urine. Eur Urol Focus 2018;4(6):825–33. DOI:10.1016/j.euf.2017.02.018; Hu C., Meiners S., Lukas C. et al. Role of exosomal microRNAs in lung cancer biology and clinical applications. Cell Prolif 2020;53(6):e12828. DOI:10.1111/cpr.12828; Yi M., Liao Z., Deng L. et al. High diagnostic value of miRNAs for NSCLC: quantitative analysis for both single and combined miRNAs in lung cancer. Ann Med 2021;53(1):2178–93. DOI:10.1080/07853890.2021.2000634; Gao S., Guo W., Liu T. et al. Plasma extracellular vesicle microRNA profiling and the identification of a diagnostic signature for stage I lung adenocarcinoma. Cancer Sci 2022;113(2):648–59. DOI:10.1111/cas.15222; Osipov I.D., Zaporozhchenko I.A., Bondar A.A. et al. Cell-free miRNA-141 and miRNA-205 as prostate cancer biomarkers. Adv Exp Med Biol 2016;924:9–12. DOI:10.1007/978-3-319-42044-8_2; Zaporozhchenko I.A., Morozkin E.S., Ponomaryova A.A. et al. Profiling of 179 miRNA expression in blood plasma of lung cancer patients and cancer-free individuals. Sci Rep 2018;8(1):6348. DOI:10.1038/s41598-018-24769-2; Li C., Yin Y., Liu X. et al. Non-small cell lung cancer associated microRNA expression signature: integrated bioinformatics analysis, validation and clinical significance. Oncotarget 2017;8(15):24564–78. DOI:10.18632/oncotarget.15596; Huang W., Huang W., Hu J. et al. Two microRNA panels to discriminate three subtypes of lung carcinoma in bronchial brushing specimens. Am J Respir Crit Care Med 2012;186(11):1160–7. DOI:10.1164/rccm.201203-0534OC; Wu C., Cao Y., He Z. et al. Serum levels of miR-19b and miR-146a as prognostic biomarkers for non-small cell lung cancer. Tohoku J Exp Med 2014;232(2):85–95. DOI:10.1620/tjem.232.85; Boeri M., Verri C., Conte D. et al. MicroRNA signatures in tissues and plasma predict development and prognosis of computed tomography detected lung cancer. Proc Natl Acad Sci USA 2011;108(9):3713–8. DOI:10.1073/pnas.1100048108; Zhou X., Wen W., Shan X. et al. A six-microRNA panel in plasma was identified as a potential biomarker for lung adenocarcinoma diagnosis. Oncotarget 2016;8(4):6513–25. DOI:10.18632/oncotarget.14311; Liu M., Gao J., Huang Q. et al. Downregulating microRNA-144 mediates a metabolic shift in lung cancer cells by regulating GLUT1 expression. Oncol Lett 2016;11(6):3772–6. DOI:10.3892/ol.2016.4468; Pan H.L., Wen Z.S., Huang Y.C. et al. Down-regulation of microRNA-144 in air pollution-related lung cancer. Sci Rep 2015;5:14331. DOI:10.1038/srep14331; Zhang G., An H., Fang X. MicroRNA-144 regulates proliferation, invasion, and apoptosis of cells in malignant solitary pulmonary nodule via zinc finger E-box-binding homeobox 1. Int J Clin Exp Pathol 2015;8(5):5960–7.; Ling B., Wang G.X., Long G. et al. Tumor suppressor miR-22 suppresses lung cancer cell progression through post-transcriptional regulation of ErbB3. J Cancer Res Clin Oncol 2012;138(8):1355–61. DOI:10.1007/s00432-012-1194-2; Xin M., Qiao Z., Li J. et al. miR-22 inhibits tumor growth and metastasis by targeting ATP citrate lyase: evidence in osteosarcoma, prostate cancer, cervical cancer and lung cancer. Oncotarget 2014;7(28):44252–65. DOI:10.18632/oncotarget.10020; Hosseini S.A., Seidi M., Yaghoobi H. Designed miR-19a/b sponge induces apoptosis in lung cancer cells through the PI3K-PTEN-Akt pathway regulation. Mol Biol Rep 2022;49(9):8485–93. DOI:10.1007/s11033-022-07670-0; Zhang X., Wang X., Chai B. et al. Downregulated miR-18a and miR-92a synergistically suppress non-small cell lung cancer via targeting Sprouty 4. Bioengineered 2022;13(4):11281–95. DOI:10.1080/21655979.2022.2066755; Reis P.P., Drigo S.A., Carvalho R.F. et al. Circulating miR-16-5p, miR-92a-3p, and miR-451a in plasma from lung cancer patients: potential application in early detection and a regulatory role in tumorigenesis pathways. Cancers 2020;12(8):2071. DOI:10.3390/cancers12082071; Wang Z., Pan L., Yang L. et al. Long non-coding RNA GATA6-AS1 sponges miR-324-5p to inhibit lung cancer cell proliferation and invasion. Onco Targets Ther 2020;13:9741–51. DOI:10.2147/OTT.S256336; Zhang Y., Xu H. Serum exosomal miR-378 upregulation is associated with poor prognosis in non-small-cell lung cancer patients. J Clin Lab Anal 2020;34(6):e23237. DOI:10.1002/jcla.23237; Ji K.X., Cui F., Qu D. et al. MiR-378 promotes the cell proliferation of non-small cell lung cancer by inhibiting FOXG1. Eur Rev Med Pharmacol Sci 2018;22(4):1011–9. DOI:10.26355/eurrev_201802_14383; Cao X., Zhong W., Guo S. et al. Low expression of miR-27b in serum exosomes of non-small cell lung cancer facilitates its progression by affecting EGFR. Open Med (Wars) 2022;17(1):816–25. DOI:10.1515/med-2022-0472; Zhong S., Golpon H., Zardo P. et al. miRNAs in lung cancer. A systematic review identifies predictive and prognostic miRNA candidates for precision medicine in lung cancer. Transl Res 2021;230:164–96. DOI:10.1016/j.trsl.2020.11.012; Konoshenko M.Y., Lekchnov E.A., Bryzgunova O.E. et al. Isolation of extracellular vesicles from biological fluids via the aggregation-precipitation approach for downstream miRNAs detection. Diagnostics 2012;11(3):384. DOI:10.3390/diagnostics11030384; Lekchnov E.A., Zaporozhchenko I.A., Morozkin E.S. et al. Protocol for miRNA isolation from biofluids. Anal Biochem 2016;499:78–84. DOI:10.1016/j.ab.2016.01.025; Konoshenko M.Y., Lekchnov E.A., Bryzgunova O.E. et al. The panel of 12 cell-Free microRNAs as potential biomarkers in prostate neoplasms. Diagnostics 2020;10(1):38. DOI:10.3390/diagnostics10010038; Landoni E., Miceli R., Callari M. et al. Proposal of supervised data analysis strategy of plasma miRNAs from hybridisation array data with an application to assess hemolysis-related deregulation. BMC Bioinformatics 2015;16:388. DOI:10.1186/s12859-015-0820-9; Bryzgunova O.E., Zaporozhchenko I.A., Lekchnov E.A. et al. Data analysis algorithm for the development of extracellular miRNA-based diagnostic systems for prostate cancer. PLoS One 2019;14(4):e0215003. DOI:10.1371/journal.pone.0215003; Bryzgunova O.E., Konoshenko M.Y., Zaporozhchenko I.A. et al. Isolation of cell-free miRNA from biological fluids: influencing factors and methods. Diagnostics (Basel) 2021;11(5):865. DOI:10.3390/diagnostics11050865; Dejima H., Iinuma H., Kanaoka R. et al. Exosomal microRNA in plasma as a non-invasive biomarker for the recurrence of non-small cell lung cancer. Oncol Lett 2017;13(3):1256–63. DOI:10.3892/ol.2017.5569; Kanaoka R., Iinuma H., Dejima H. et al. Usefulness of plasma exosomal microRNA-451a as a noninvasive biomarker for early prediction of recurrence and prognosis of non-small cell lung cancer. Oncology 2018;94(5):311–23. DOI:10.1159/000487006; Liu Q., Yu Z., Yuan S. et al. Circulating exosomal microRNAs as prognostic biomarkers for non-small-cell lung cancer. Oncotarget 2017;8(8):13048–58. DOI:10.18632/oncotarget.14369; Munagala R., Aqil F., Gupta R.C. Exosomal miRNAs as biomarkers of recurrent lung cancer. Tumor Biol 2016;37(8):10703–14. DOI:10.1007/s13277-016-4939-8; Silva J., García V., Zaballos Á. et al. Vesicle-related microRNAs in plasma of nonsmall cell lung cancer patients and correlation with survival. Eur Respir J 2011;37(3):617–23. DOI:10.1183/09031936.00029610; Zhuang L., Shou T., Li K. et al. MicroRNA-30e-5p promotes cell growth by targeting PTPN13 and indicates poor survival and recurrence in lung adenocarcinoma. J Cell Mol Med 2017;21(11):2852–62. DOI:10.1111/jcmm.13198; Li W., Yang P., Zhong C. et al. The circ-PITX1 promotes non-small cell lung cancer development via the miR-30e-5p/ITGA6 axis. Cell Cycle 2022;21(3):304–21. DOI:10.1080/15384101.2021.2020041; Dong W., Zhang H., Dai Y. et al. circRNA circFAT1(e2) Elevates the development of non-small-cell lung cancer by regulating miR-30e-5p and USP22. BioMed Res Int 2021;2021:6653387. DOI:10.1155/2021/6653387; Gao W., Shen H., Liu L. et al. MiR-21 overexpression in human primary squamous cell lung carcinoma is associated with poor patient prognosis. J Cancer Res Clin Oncol 2011;137(4):557–66. DOI:10.1007/s00432-010-0918-4; Ning Z.Q., Lu H.L., Chen C. et al. MicroRNA-30e reduces cell growth and enhances drug sensitivity to gefitinib in lung carcinoma. Oncotarget 2017;8(3):4572–81. DOI:10.18632/oncotarget.13944; Turchinovich A., Burwinkel B. Distinct AGO1 and AGO2 associated miRNA profiles in human cells and blood plasma. RNA Biol 2012;9(8):1066–75. DOI:10.4161/rna.21083; Lunavat T.R., Lesley C., Dae-Kyum K. et al. Small RNA deep sequencing discriminates subsets of extracellular vesicles released by melanoma cells – evidence of unique microRNA cargos. RNA Biol 2015;12(8):810–23. DOI:10.1080/15476286.2015.1056975; Huang X., Tiezheng Y., Tschannen M. et al. Characterization of human plasma-derived exosomal RNAs by deep sequencing. BMC Genomics 2013;14:319. DOI:10.1186/1471-2164-14-319; Markou A., Sourvinou I., Vorkas P.A. et al. Clinical evaluation of microRNA expression profiling in non small cell lung cancer. Lung Cancer 2013;81(3):388–96. DOI:10.1016/j.lungcan.2013.05.007; Cui Y., Zhao L., Zhao S. et al. MicroRNA-30e inhibits proliferation and invasion of non-small cell lung cancer via targeting SOX9. Human Cell 2019;32(3):326–33. DOI:10.1007/s13577-018-0223-0; Xu G., Cai J., Wang L. et al. MicroRNA-30e-5p suppresses non-small cell lung cancer tumorigenesis by regulating USP22-mediated Sirt1/JAK/STAT3 signaling. Exp Cell Res 2018;362(2):268–78. DOI:10.1016/j.yexcr.2017.11.027; He J., Jin S., Zhang W. et al. Long non-coding RNA LOC554202 promotes acquired gefitinib resistance in non-small cell lung cancer through upregulating miR-31 expression. J Cancer 2019;10(24):6003–13. DOI:10.7150/jca.35097; Liu X., Sempere L.F., Ouyang H. et al. MicroRNA-31 functions as an oncogenic microRNA in mouse and human lung cancer cells by repressing specific tumor suppressors. J Clin Invest 2010;120(4):1298–309. DOI:10.1172/JCI39566; Zhu C., Wang S., Zheng M. et al. miR-31-5p modulates cell progression in lung adenocarcinoma through TNS1/p53 axis. Strahlenther Onkol 2022;198(3):304–14. DOI:10.1007/s00066-021-01895-x; Hou C., Sun B., Jiang Y. et al. MicroRNA-31 inhibits lung adenocarcinoma stem-like cells via down-regulation of MET-PI3K-Akt signaling pathway. Anticancer Agents Med Chem 2016;16(4):501–18. DOI:10.2174/1871520615666150824152353; Zhang J., Li D., Zhang Y. et al. Integrative analysis of mRNA and miRNA expression profiles reveals seven potential diagnostic biomarkers for non-small cell lung cancer. Oncol Rep 2020;43(1):99–112. DOI:10.3892/or.2019.7407; Cheng X., Sha M., Jiang W. et al. LINC00174 suppresses non-small cell lung cancer progression by up-regulating LATS2 via sponging miR-31-5p. Cell J 2022;24(3):140–7. DOI:10.22074/cellj.2022.7991; Wang Y., Shang S., Yu K. et al. miR-224, miR-147b and miR-31 associated with lymph node metastasis and prognosis for lung adenocarcinoma by regulating PRPF4B, WDR82 or NR3C2. Peer J 2020;8:e9704. DOI:10.7717/peerj.9704; Meng W., Ye Z., Cui R. et al. MicroRNA-31 predicts the presence of lymph node metastases and survival in patients with lung adenocarcinoma. Clin Cancer Res 2013;19(19):5423–33. DOI:10.1158/1078-0432.CCR-13-0320; Zeng X., Liu D., Peng G. et al. MiroRNA-31-3p promotes the invasion and metastasis of non-small-cell lung cancer cells by targeting forkhead Box 1 (FOXO1). Comput Math Methods Med 2022;2022:4597087. DOI:10.1155/2022/4597087; Sun X., Zhang S., Ma X. Prognostic value of microRNA-125 in various human malignant neoplasms: a meta-analysis Clin Lab 2015;61(11):1667–74. DOI:10.7754/clin.lab.2015.150408; Kazempour Dizaji M., Farzanegan B., Bahrami N. et al. Expression of miRNA1, miRNA133, miRNA191, and miRNA24, as good biomarkers, in non-small cell lung cancer using real-time PCR method. Asian Pac J Cancer Prev 2022;23(5):1565–70. DOI:10.31557/APJCP.2022.23.5.1565; Liu S., Chen J., Zhang T. et al. MicroRNA-133 inhibits the growth and metastasis of the human lung cancer cells by targeting epidermal growth factor receptor. J BUON 2012;24(3):929–35.; Liu G., Li Y.I., Gao X. Overexpression of microRNA-133b sensitizes non-small cell lung cancer cells to irradiation through the inhibition of glycolysis. Oncol Lett 2016;11(4):2903–8. DOI:10.3892/ol.2016.4316; Wei G., Xu Y., Peng T. et al. miR-133 involves in lung adenocarcinoma cell metastasis by targeting FLOT2. Artif Cells Nanomed Biotechnol 2018;46(2):224–30. DOI:10.1080/21691401.2017.1324467; Xiao B., Liu H., Gu Z. et al. Expression of microRNA-133 inhibits epithelial-mesenchymal transition in lung cancer cells by directly targeting FOXQ1. Arch Bronconeumol 2016;52(10):505–11. DOI:10.1016/j.arbres.2015.10.016; Xu M., Wang Y.Z. miR-133a suppresses cell proliferation, migration and invasion in human lung cancer by targeting MMP-14. Oncol Rep 2013;30(3):1398–404. DOI:10.3892/or.2013.2548; Peinado P., Andrades A., Martorell-Marugán J. et al. The SWI/SNF complex regulates the expression of miR-222, a tumor suppressor microRNA in lung adenocarcinoma. Human Mol Gen 2021;30(23):2263–71. DOI:10.1093/hmg/ddab187; Wu Q., Yu L., Lin X. et al. Combination of serum miRNAs with serum exosomal miRNAs in early diagnosis for non-small-cell lung cancer. Cancer Manag Res 2020;12:485–95. DOI:10.2147/CMAR.S232383; Chen W., Li X. MiR-222-3p promotes cell proliferation and inhibits apoptosis by targeting PUMA (BBC3) in non-small cell lung cancer. Technol Cancer Res Treat 2020;19:1533033820922558. DOI:10.1177/1533033820922558; Garofalo M., Romano G., Di Leva G. et al. EGFR and MET receptor tyrosine kinase-altered microRNA expression induces tumorigenesis and gefitinib resistance in lung cancers. Nat Med 2011;18:74–82. DOI:10.1038/nm.2577; Mao K.P., Zhang W.N., Liang X.M. et al. MicroRNA-222 expression and its prognostic potential in non-small cell lung cancer. Sci World J 2014;908326. DOI:10.1155/2014/908326; Zhong C., Ding S., Xu Y. et al. MicroRNA-222 promotes human non-small cell lung cancer H460 growth by targeting p27. Int J Clin Exp Med 2015;8(4):5534–40.; Sun Q., Jiang C.W., Tan Z.H. et al. MiR-222 promotes proliferation, migration and invasion of lung adenocarcinoma cells by targeting ETS1. Eur Rev Med Pharmacol Sci 2017;21(10):2385–91.; Hetta H.F., Zahran A.M., El-Mahdy R.I. et al. Assessment of circulating miRNA-17 and miRNA-222 expression profiles as non-invasive biomarkers in egyptian patients with non-small-cell lung cancer. Asian Pac J Cancer Prev 2019;20(6):1927–33. DOI:10.31557/APJCP.2019.20.6.1927; Kim Y., Sim J., Kim H. et al. MicroRNA-374a expression as a prognostic biomarker in lung adenocarcinoma. J Pathol Transl Med 2019;53(6):354–60. DOI:10.4132/jptm.2019.10.01; Wang G., Ji X., Li P. et al. Human bone marrow mesenchymal stem cell-derived exosomes containing microRNA-425 promote migration, invasion and lung metastasis by down-regulating CPEB1. Regen Ther 2022;20:107–16. DOI:10.1016/j.reth.2022.03.007; Guo Z., Ye H., Zheng X. et al. Extracellular vesicle-encapsulated microRNA-425-derived from drug-resistant cells promotes non-small-cell lung cancer progression through DAPK1-medicated PI3K/AKT pathway. J Cell Physiol 2021;236(5):3808–20. DOI:10.1002/jcp.30126; Zhou J.S., Yang Z.S., Cheng S.Y. et al. miRNA-425-5p enhances lung cancer growth via the PTEN/PI3K/AKT signaling axis. BMC Pulm Med 2020;20(1):223. DOI:10.1186/s12890-020-01261-0; Jiang L., Ge W., Geng J. miR-425 regulates cell proliferation, migration and apoptosis by targeting AMPH-1 in non-small-cell lung cancer. Pathol Res Pract 2019;215(12):152705. DOI:10.1016/j.prp.2019.152705.; Fu Y., Li Y., Wang X. et al. Overexpression of miR-425-5p is associated with poor prognosis and tumor progression in non-small cell lung cancer. Cancer Biomark 2020;27(2):147–56. DOI:10.3233/cbm-190782; Yuwen D., Ma Y., Wang D. et al. Prognostic role of circulating exosomal miR-425-3p for the response of NSCLC to platinum-based chemotherapy. Cancer Epidemiol Biomark Prevent 2019;28(1):163–73. DOI:10.1158/1055-9965.epi-18-0569; Fortunato O., Boeri M., Moro M. et al. Mir-660 is downregulated in lung cancer patients and its replacement inhibits lung tumorigenesis by targeting MDM2-p53 interaction. Cell Death Dis 2014;5(12):e1564. DOI:10.1038/cddis.2014.507; Qi Y., Zha W., Zhang W. Exosomal miR-660-5p promotes tumor growth and metastasis in non-small cell lung cancer. J BUON 2019;24(2):599–607.; Moro M., Di Paolo D., Milione M. et al. Coated cationic lipid-nanoparticles entrapping miR-660 inhibit tumor growth in patient-derived xenografts lung cancer models. J Control Release 2019;308:44–56. DOI:10.1016/j.jconrel.2019.07.006; https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/543

  12. 12
    Academic Journal

    المساهمون: The work was carried out at the IMCh RAS within the framework of the state task of the Ministry of Education and Science., Работа выполнена в ИМЧ РАН в рамках государственного задания Минобрнауки.

    المصدر: Siberian journal of oncology; Том 22, № 1 (2023); 55-65 ; Сибирский онкологический журнал; Том 22, № 1 (2023); 55-65 ; 2312-3168 ; 1814-4861

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2431/1076; Preusser M., de Ribaupierre S., Wöhrer A., Erridge S.C., Hegi M., Weller M., Stupp R. Current concepts and management of glioblastoma. Ann Neurol. 2011; 70(1): 9–21. doi:10.1002/ana.22425.; Коновалов А.Н., Потапов А.А., Лошаков В.А., Олюшин В.Е., Улитин А.Ю., Корниенко В.Н., Пронин И.Н., Шишкина Л.В., Голанов А.В., Таняшин С.В., Ураков С.В., Кобяков Г.Л. Стандарты, рекомендации и опции в лечении глиальных опухолей головного мозга у взрослых. Вопросы нейрохирургии им. Н.Н. Бурденко. 2006; 2: 3–11.; Karsy M., Arslan E., Moy F. Current Progress on Understanding MicroRNAs in Glioblastoma Multiforme. Genes Cancer. 2012; 3(1): 3–15. doi:10.1177/1947601912448068.; Kuznetsov V.A., Tang Z., Ivshina A.V. Identification of common oncogenic and early developmental pathways in the ovarian carcinomas controlling by distinct prognostically significant microRNA subsets. BMC Genomics. 2017; 18(Suppl 6): 692. doi:10.1186/s12864-017-4027-5.; Barciszewska A.M. MicroRNAs as efficient biomarkers in highgrade gliomas. Folia Neuropathol. 2016; 54(4): 369–74. doi:10.5114/fn.2016.64812.; Visani M., de Biase D., Marucci G., Cerasoli S., Nigrisoli E., Bacchi Reggiani M.L., Albani F., Baruzzi A., Pession A.; PERNO study group. Expression of 19 microRNAs in glioblastoma and comparison with other brain neoplasia of grades I-III. Mol Oncol. 2014; 8(2): 417–30. doi:10.1016/j.molonc.2013.12.010. Erratum in: Mol Oncol. 2015; 9(1): 334. Erratum in: Mol Oncol. 2015; 9(1): 334.; Zhang K., Zhou X., Han L., Chen L., Chen L., Shi1 Z., Yang M., Ren Y., Yang J., Frank T. S., Zhang C., Zhang J., Pu P., Zhang J., Jiang T., Wagner E. J., Li M., Kang C. MicroRNA-566 activates EGFR signaling and its inhibition sensitizes glioblastoma cells to nimotuzumab. Mol Cancer. 2014; 13: 63. doi:10.1186/1476-4598-13-6.; Xu L.F., Wu Z.P., Chen Y., Zhu Q.S., Hamidi S., Navab R. MicroRNA21 (miR-21) regulates cellular proliferation, invasion, migration, and apoptosis by targeting PTEN, RECK and Bcl-2 in lung squamous carcinoma, Gejiu City, China. PLoS One. 2014; 9(8). doi:10.1371/journal.pone.0103698.; Zhou X., Ren Y., Moore L., Mei M., You Y., Xu P., Wang B., Wang G., Jia Z., Pu P., Zhang W., Kang C. Downregulation of miR-21 inhibits EGFR pathway and suppresses the growth of human glioblastoma cells independent of PTEN status. Lab Invest. 2010; 90(2): 144–55. doi:10.1038/labinvest.2009.126.; Adlakha Y.K., Saini N. MicroRNA-128 downregulates Bax and induces apoptosis in human embryonic kidney cells. Cell Mol Life Sci. 2011; 68(8): 1415–28. doi:10.1007/s00018-010-0528-y.; Cui J.G., Zhao Y., Sethi P., Li Y.Y., Mahta A., Culicchia F., Lukiw W.J. Micro-RNA-128 (miRNA-128) down-regulation in glioblastoma targets ARP5 (ANGPTL6), Bmi-1 and E2F-3a, key regulators of brain cell proliferation. J Neurooncol. 2010; 98(3): 297–304. doi:10.1007/s11060-009-0077-0.; Sun G., Shi L., Yan S., Wan Z., Jiang N., Fu L., Li M., Guo J. MiR15b targets cyclin D1 to regulate proliferation and apoptosis in glioma cells. Biomed Res Int. 2014; doi:10.1155/2014/687826.; Chen L.P., Zhang N.N., Ren X.Q., He J., Li Y. miR-103/miR-195/ miR-15b Regulate SALL4 and Inhibit Proliferation and Migration in Glioma. Molecules. 2018; 23(11): 2938. doi:10.3390/molecules23112938.; Yang T., Lu X., Wu T., Ding D., Zhao Z., Chen G., Xie X., Li B., Wei Y., Guo L., Zhang Y., Huang Y., Zhou Y., Du Z. MicroRNA-16 inhibits glioma cell growth and invasion through suppression of BCL2 and the nuclear factor-jB1⁄MMP9 signaling pathway. Cancer Sci. 2014; 105(3): 265–71. doi:10.1111/cas.12351.; Lai N.S., Wu D.G., Fang X.G., Lin Y.C., Chen S.S., Li Z.B., Xu S.S. Serum microRNA-210 as a potential noninvasive biomarker for the diagnosis and prognosis of glioma. Br J Cancer. 2015; 112(7): 1241–6. doi:10.1038/bjc.2015.91.; Wang Z., Yin B., Wang B., Ma Z., Liu W., Lv G. MicroRNA-210 promotes proliferation and invasion of peripheral nerve sheath tumor cells targeting EFNA3. Oncol Res. 2013; 21(3): 145–54. doi:10.3727/096504013X13841340689573.; Liu B., Peng X.C., Zheng X.L., Wang J., Qin Y.W. MiR-126 restoration down-regulate VEGF and inhibit the growth of lung cancer cell lines in vitro and in vivo. Lung Cancer. 2009; 66(2): 169–75. doi:10.1016/j.lungcan.2009.01.010.; Yamakuchi M., Ferlito M., Lowenstein C.J. miR-34a repression of SIRT1 regulates apoptosis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008; 105(36): 13421–6. doi:10.1073/pnas.0801613105.; Lu X., Wang H., Su Z., Cai L., Li W. MicroRNA-342 inhibits the progression of glioma by directly targeting PAK4. Oncol Rep. 2017; 38(2): 1240–50. doi:10.3892/or.2017.5783.; Peng Y., Croce C.M. The role of MicroRNAs in human cancer. Signal Transduct Target Ther. 2016; 1. doi:10.1038/sigtrans.2015.4.; Селиверстов Р. Ю., Зарайский М.И., Катаева Г.В., Гурчин А.Ф. Способ прогнозирования эволюции церебральных глиом. Патент РФ № 2740194, бюллетень № 2. Опубл. 12.01.2021.; Мацко Д.Е., Мацко М.В., Имянитов Е.Н. Классификация опухолей центральной нервной системы ВОЗ (2016). Практическая онкология. 2017; 18(1): 103–11.; Louis D.N., Perry A., Wesseling P., Brat D.J., Cree I.A., FigarellaBranger D., Hawkins C., Ng H.K., Pfister S.M., Reifenberger G., Soffietti R., von Deimling A., Ellison D.W. The 2021 WHO Classification of Tumors of the Central Nervous System: a summary. Neuro Oncol. 2021; 23(8): 1231–51. doi:10.1093/neuonc/noab106.; Селиверстов Р.Ю., Зарайский М.И., Тюрин Р.В., Нарышкин А.Г., Валерко В.Г., Семиглазов В.В., Takahachi C. МикроРНК в мониторинге эволюции глиальных церебральных опухолей. Сибирский онкологический журнал. 2020; 19(3): 47–53. doi: 10,21294/1814-4861-2020-19-3-47-53.; Rao X., Huang X., Zhou Z., Lin X. An improvement of the 2ˆ(-delta delta CT) method for quantitative real-time polymerase chain reaction data analysis. Biostat Bioinforma Biomath. 2013; 3(3): 71–85.; Бююль А., Цефель П. SPSS: искусство обработки информации, Анализ статистических данных и восстановление скрытых закономерностей. М., 2005. 608 с.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2431

  13. 13
    Academic Journal

    المصدر: Siberian journal of oncology; Том 22, № 1 (2023); 95-100 ; Сибирский онкологический журнал; Том 22, № 1 (2023); 95-100 ; 2312-3168 ; 1814-4861

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2435/1080; Каприн А.Д., Старинский В.В., Шахзадова А.О. Злокачественные новообразования в России в 2019 году (заболеваемость и смертность). М., 2020. 252 с.; Рак. Всемирная организация здравоохранения URL: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/cancer. [cited 2022 Apr 1].; Дубовиченко Д.М., Вальков М.Ю., Мерабишвили В.М., Карпунов А.А., Щербаков А.М., Валькова Л.Е., Панкратьева А.Ю. Эпидемиологическая оценка выживаемости при раке прямой кишки: обзор литературы и собственное исследование. Вопросы онкологии. 2020; 66(1): 36–41. doi:10.37469/0507-3758-2020-66-1-36-41.; Каприн А.Д., Гамеева Е.В., Поляков А.А., Корниецкая А.Л., Рубцова Н.А., Феденко А.А. Влияние пандемии COVID-19 на онкологическую практику. Сибирский онкологический журнал. 2020; 19(3): 5–22. doi:10.21294/1814-4861-2020-19-3-5-22.; Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2020. CA Cancer J Clin. 2020; 70(1): 7–30. doi:10.3322/caac.21590.; Camici M., Garcia-Gil M., Pesi R., Allegrini S., Tozzi M.G. PurineMetabolising Enzymes and Apoptosis in Cancer. Cancers (Basel). 2019; 11(9): 1354. doi:10.3390/cancers11091354.; Battelli M.G., Polito L., Bortolotti M., Bolognesi A. Xanthine oxidoreductase in cancer: more than a differentiation marker. Cancer Med. 2016; 5(3): 546–57. doi:10.1002/cam4.601.; Wang L., Londono L.M., Cowell J., Saatci O., Aras M., Ersan P.G., Serra S., Pei H., Clift R., Zhao Q., Phan K.B., Huang L., LaBarre M.J., Li X., Shepard H.M., Deaglio S., Linden J., Thanos C.D., Sahin O., Cekic C. Targeting Adenosine with Adenosine Deaminase 2 to Inhibit Growth of Solid Tumors. Cancer Res. 2021; 81(12): 3319–32. doi:10.1158/00085472.CAN-21-0340.; Liu D., Yun Y., Yang D., Hu X., Dong X., Zhang N., Zhang L., Yin H., Duan W. What Is the Biological Function of Uric Acid? An Antioxidant for Neural Protection or a Biomarker for Cell Death. Disease Markers. 2019; 31: 1–9. doi:10.1155/2019/4081962.; Allard B., Allard D., Buisseret L., Stagg J. The adenosine pathway in immuno-oncology. Nat Rev Clin Oncol. 2020; 17(10): 611–29. doi:10.1038/s41571-020-0382-2. Epub 2020 Jun 8. Erratum in: Nat Rev Clin Oncol. 2020.; Tritsch G.L. Validity of the continuous spectrophotometric assay of Kalckar for adenosine deaminase activity. Anal Biochem. 1983; 129(1): 207–9. doi:10.1016/0003-2697(83)90070-2.; Карпищенко А.И., Алипов А.Н., Алексеев В.В. Медицинские лабораторные технологии: руководство по клинической лабораторной диагностике. М., 2013.; Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951; 193(1): 265–75.; Kuo T., Kim-Muller J.Y., McGraw T.E., Accili D. Altered Plasma Profile of Antioxidant Proteins as an Early Correlate of Pancreatic β Cell Dysfunction. J Biol Chem. 2016; 291(18): 9648–56. doi:10.1074/jbc.M115.702183.; Eisenstein A., Chitalia S.V., Ravid K. Bone Marrow and Adipose Tissue Adenosine Receptors Effect on Osteogenesis and Adipogenesis. Int J Mol Sci. 2020; 21(20): 7470. doi:10.3390/ijms21207470.; Zhou R., Zhang S., Gu X., Ge Y., Zhong D., Zhou Y., Tang L., Liu X.L., Chen J.F. Adenosine A2A receptor antagonists act at the hyperoxic phase to confer protection against retinopathy. Molecular Medicine. 2018; 24(41): 1–13. doi:10.1186/s10020-018-0038-1.; Vigano S., Alatzoglou D., Irving M., Ménétrier-Caux C., Caux C., Romero P., Coukos G. Targeting Adenosine in Cancer Immunotherapy to Enhance T-Cell Function. Front. Immunol. 2019; 10: 925. doi:10.3389/fimmu.2019.00925.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2435

  14. 14
    Academic Journal
  15. 15
    Academic Journal

    المساهمون: The study was performed without external funding., Работа выполнялась без спонсорской поддержки.

    المصدر: Biological Products. Prevention, Diagnosis, Treatment; Том 23, № 3-1 (2023): Разработка и совершенствование отечественных биологических лекарственных средств; 411-421 ; БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение; Том 23, № 3-1 (2023): Разработка и совершенствование отечественных биологических лекарственных средств; 411-421 ; 2619-1156 ; 2221-996X

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/513/768; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/513/704; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/513/718; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/513/771; Gburek J, Konopska B, Gołab K. Renal handling of albumin — from early findings to current concepts. Int J Mol Sci. 2021;22(11):5809. https://doi.org/10.3390/ijms22115809; Mishra V, Heath RJ. Structural and biochemical features of human serum albumin essential for eukaryotic cell culture. Int J Mol Sci. 2021;22(16):8411. https://doi.org/10.3390/ijms22168411; Тхай СВ, Захаров ВВ, Русанов ВМ. Альбумин — наиболее востребованный препарат крови в трансфузиологической практике. Вестник службы крови России. 2012;(3):40–5.; Kragh-Hansen U, Chuang VTG, Otagiri M. Practical aspects of the ligand-binding and enzymatic properties of human serum albumin. Biol Pharm Bull. 2002;25(6):695–704. https://doi.org/10.1248/bpb.25.695; Tajmir-Riahi НА. An overview of drug binding to human serum albumin: protein folding and unfolding. Scientia Iranica. 2007;14(2):87–95.; Boldt J. Use of albumin: an update. Br J Anaesth. 2010;104(3):276–84. https://doi.org/10.1093/bja/aep393; Oettl K, Stauber RE. Physiological and pathological changes in the redox state of human serum albumin critically influence its binding properties. Br J Pharmacol. 2007;151(5):580–90. https://doi.org/10.1038/sj.bjp.0707251; Клигуненко ЕН, Зозуля ОА. Человеческий сывороточный альбумин (прошлое и будущее). Медицина неотложных состояний. 2017;(5):26–30. https: //doi.org/10.22141/2224-0586.5.84.2017.109356; https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/513

  16. 16
    Academic Journal

    المساهمون: 0

    المصدر: Almanac of Clinical Medicine; Vol 51, No 1 (2023); 23-31 ; Альманах клинической медицины; Vol 51, No 1 (2023); 23-31 ; 2587-9294 ; 2072-0505

    وصف الملف: application/pdf

  17. 17
    Academic Journal
  18. 18
    Academic Journal
  19. 19
    Academic Journal
  20. 20
    Academic Journal