-
1Academic Journal
المؤلفون: E. I. Kondratieva, A. Yu. Voronkova, S. A. Krasovskiy, E. L. Amelina, N. V. Petrova, T. A. Adyan, A. V. Chernyak, M. A. Starinova, V. D. Sherman, E. K. Zhekayte, N. Yu. Kashirskaya, M. E. Aleksanyan, I. L. Alimova, I. K. Asherova, A. V. Basilaya, Yu. V. Gorinova, I. E. Zilber, O. G. Zonenko, V. N. Ivleva, Yu. E. Kalinina, V. S. Ledneva, M. A. Mukhina, O. B. Novikova, T. V. Stashkevich, V. V. Smirnova, E. V. Stezhkina, L. V. Ulyanova, T. A. Filimonova, R. A. Zinchenko, S. I. Kutsev, Е. И. Кондратьева, А. Ю. Воронкова, С. А. Красовский, Е. Л. Амелина, Н. В. Петрова, Т. А. Адян, А. В. Черняк, М. А. Старинова, В. Д. Шерман, Е. К. Жекайте, Н. Ю. Каширская, М. Э. Алексанян, И. Л. Алимова, И. К. Ашерова, А. В. Басилая, Ю. В. Горинова, И. Е. Зильбер, О. Г. Зоненко, В. Н. Ивлева, Ю. Э. Калинина, В. С. Леднева, М. А. Мухина, О. Б. Новикова, Т. В. Сташкевич, В. В. Смирнова, Е. В. Стежкина, Л. В. Ульянова, Т. А. Филимонова, Р. А. Зинченко, С. И. Куцев
المساهمون: The research was carried out within the state assignment of Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation., Работа выполнена в рамках государственного задания Министерства науки и высшего образования России на выполнение НИР.
المصدر: Medical Genetics; Том 19, № 1 (2020); 24-37 ; Медицинская генетика; Том 19, № 1 (2020); 24-37 ; 2073-7998
مصطلحات موضوعية: функция внешнего дыхания, CFTR gene, register, Central Federal District, pseudomonas infection, MRSA, external respiration function, ген CFTR, регистр, Центральный федеральный округ, синегнойная инфекция
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/769/474; Капранов Н.И., Каширская Н.Ю. Муковисцидоз. М.:ИД «Медпрактика-М»; 2014. 672с; Kelly J. Environmental scan of cystic fibrosis research worldwide. J Cyst Fibros. 2017;16(3):367–370. doi:10.1016/j.jcf.2016.11.002; Cfww.org [Internet]. Cystic Fibrosis Worldwide (CFW). Available from: https://www.cfww.org/. (дата обращения: 12.06.2019); MacKenzie T., Gifford A.H., Sabadosa K.A. et al. Longevity of patients with cystic fibrosis in 2000 to 2010 and beyond: survival analysis of the Cystic Fibrosis Foundation patient registry. Ann Intern Med. 2014; 161(4):233–241. doi:10.7326/M13-0636.; Шерман В.Д., Кондратьева ЕИ., Воронкова А.Ю. и др. Влияние неонатального скрининга на течение муковисцидоза на примере групп пациентов Московского региона. Медицинский совет. 2017. 18: 124–128.; Красовский С.А., Каширская Н.Ю., Амелина Е.Л. и др. Регистр больных муковисцидозом в Российской Федерации. 2012 год. Пульмонология. 2015; (Приложение): 1–58; Красовский С.А., Амелина Е.Л., Горинова Ю.В. и др. Динамика некоторых показателей здоровья взрослых больных муковисцидозом, наблюдаемых в НИИ пульмонологии, за 2003-2018 гг. Клиническая практика. 2018;9(4):26–27 doi:10.17816/clinpract9425–32; Воронкова А.Ю., Амелина Е.Л., Каширская Н.Ю. и др. Регистр больных муковисцидозом в Российской Федерации. 2017 год. М.: ИД «Медпрактика-М», 2019. 68с.; Красовский С.А., Амелина Е.Л., Черняк А.В. и др. Роль регистра московского региона в ведении больных муковисцидозом. Пульмонология. 2013;(2):27–32. https://doi.org/10.18093/08690189-2013-0-2-27-32; Красовский С.А., Черняк А.В., Амелина Е.Л. и др. Динамика выживаемости больных муковисцидозом в Москве и Московской области за периоды 1992–2001 и 2002–2011 гг. Пульмонология 2012; 3: 79–86; Quon B.S., Rowe S.M. New and emerging targeted therapies for cystic fibrosis. BMJ. 2016;352:i859. doi:10.1136/bmj.i859; https://www.ecfs.eu/ecfspr (дата обращения: 12.06.2019); Шерман В.Д., Каширская Н.Ю., Кондратьева Е.И. и др. Муковисцидоз, определение, диагностические критерии, терапия. Раздел «Диагностика муковисцидоза». Педиатрия. 2017; 96 (2): 90–99; Polgar G., Promadhat V. Pulmonary function testing in children: Techniques and standards. Philadelphia: W.B.Saunders Co; 1971; Quanjer P.H., Tammeling G.J., Cotes J.E. et al. Lung volumes and forced ventilatory flows. Report Working Party Standardization of Lung Function Tests, European Community for Steel and Coal. Official Statement of the European Respiratory Society. Eur.Respir. J. 1993; 6 (Suppl. 16): 5–40; Sinaasappel M., Stern M., Littlewood J. et al. Nutrition in patients with cystic fibrosis: a European Consensus. J. Cyst.Fibros. 2002; 1 (2): 51–75; Castellani C., Duff A.J.A., Bell S.C. et al ECFS best practice guidelines: the 2018 revision. J Cyst Fibros. 2018 Mar; 17(2): 153–178. doi:10.1016/j.jcf.2018.02.006; WHO. Physical status: the use and interpretation of anthropometry. Report of a WHO Expert Committee. WHO Technical Report Series 854. Geneva: World Health Organization;1995; Петрова Н.В., Кондратьева Е.И., Красовский С.А. и др. Проект национального консенсуса «Муковисцидоз: определение, диагностические критерии, терапия». Раздел «Генетика муковисцидоза. Молекулярно-генетическая диагностика при муковисцидозе». Медицинская генетика 2016;15(11):29–45; Lee T.W.R., Brownlee L.G., Conway S.P. et al. Evaluation of a new definition for chronic Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis patients. J. Cyst.Fibros. 2003; 2(1): 29–34; Proesmans M., Balinska-Miskiewicz W., Dupont L. et al. Evaluating the «Leeds criteria»for Pseudomonas aeruginosa infection in a cystic fibrosis centre. Eur.Resp. J. 2006; 27: 937–943; https://www.orkambi.com/ (дата обращения: 12.06.2019); https://www.symdeko.com/ (дата обращения: 12.06.2019); Saiman L., Marshall B.C., Mayer-Hamblett N. et al. Azithromycin in patients with cystic fibrosis chronically infected with seudomonas aeruginosa: a randomized controlled trial. JAMA. 2003; 290: 1749–1756; https://mukoviscidoz.org/doc/konsensus/CF_consensus_2017.pdf : 127–128; Krasovsky S., Gorinova Y., Amelina E. Phenotypic manifestations of rare missense mutations 41th European Cystic Fibrosis Conference, Belgrad, Serbia, 6–9 June 2018/ Journal of Cystic Fibrosis. 2018; 17(Suppl. 3): S47 EPS2.06; Marson F.A., Bertuzzo C.S., Ribeiro J.D. Classification of CFTR mutation classes. Lancet Respir Med. 2016 Aug; 4 (8):37–38 doi:10.1016/S2213-2600(16)30188-6; https://mukoviscidoz.org/doc/konsensus/CF_consensus_2017.pdf : 80-81; https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/769
-
2Academic Journal
المؤلفون: S. A. Krasovskiy, E. L. Amelina, E. I. Kondrat'eva, I. A. Shaginyan, M. Yu. Chernukha, A. V. Chernyak, N. Yu. Kashirskaya, L. R. Avetisyan, S. V. Polikarpova, N. V. Pivkina, A. Yu. Voronkova, M. V. Usacheva, Yu. E. Kalinina, N. A. Kanukova, L. S. Kozyreva, Yu. A. Kondakova, L. E. Konovalova, T. Yu. Korneeva, Yu. V. Gorinova, A. E. Lavrova, L. N. Ledeneva, V. S. Ledneva, D. E. Lyagusha, O. I. Golubtsova, N. B. Merzlova, V. V. Mukhacheva, V. S. Nikonova, A. F. Neretina, O. B. Novikova, E. V. Osipova, O. V. Usacheva, P. I. Pavlov, Yu. S. Pinegina, A. I. Petrova, I. V. Polyakova, D. F. Ibragimova, T. A. Ponomareva, T. A. Protasova, O. G. Pyaterkina, D. F. Sergienko, N. I. Kapranov, С. А. Красовский, Е. Л. Амелина, Е. И. Кондратьева, И. А. Шагинян, М. Ю. Чернуха, А. В. Черняк, Н. Ю. Каширская, Л. Р. Аветисян, С. В. Поликарпова, Н. В. Пивкина, А. Ю. Воронкова, М. В. Усачева, Ю. Э. Калинина, Н. А. Канукова, Л. С. Козырева, Ю. А. Кондакова, Л. Е. Коновалова, Т. Ю. Корнеева, Ю. В. Горинова, А. Е. Лаврова, Л. Н. Леденева, В. С. Леднева, Д. Э. Лягуша, О. И. Голубцова, Н. Б. Мерзлова, В. В. Мухачева, В. С. Никонова, А. Ф. Неретина, О. Б. Новикова, Е. В. Осипова, О. В. Усачева, П. И. Павлов, Ю. С. Пинегина, А. И. Петрова, И. В. Полякова, Д. Ф. Ибрагимова, Т. А. Пономарева, Т. А. Протасова, О. Г. Пятеркина, Д. Ф. Сергиенко, Н. И. Капранов
المصدر: PULMONOLOGIYA; Том 26, № 4 (2016); 421-435 ; Пульмонология; Том 26, № 4 (2016); 421-435 ; 2541-9617 ; 0869-0189 ; 10.18093/0869-0189-2017-21-8
مصطلحات موضوعية: Россия, register, microflora, pathogens, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Burkholderia cepacia, Achromobacter spp, Alcaligenes xylosoxidans, Stenotrophomonas maltophilia, Russia, регистр, микрофлора, патогены
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/742/642; Капранов Н.И., Каширская Н.Ю., ред. Муковисцидоз. M.: Медпрактика; 2014.; Каширская Н.Ю., Красовский С.А., Черняк А.В. и др. Динамика продолжительности жизни больных муковисцидозом, проживающих в Москве, и ее связь с получаемой терапией: ретроспективный анализ за 1993–2013 гг. Вопросы современной педиатрии. 2015; 14 (4): 503–508.; Красовский С.А., Черняк А.В., Каширская Н.Ю. и др. Муковисцидоз в России: создание национального регистра. Педиатрия. Журнал им. Г.Н.Сперанского. 2014; 93 (4): 44–55.; Чесноков С.В. Медицинские регистры: опыт и проблемы разработки и внедрения. В кн.: Информационные технологии в медицине. М.: Москва; 2002: 58–60.; Lee T.W.R., Brownlee K.G., Conway S.P. et al. Evalution of a new definition for chronic Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis patients. J. Cyst. Fibros. 2003; 2 (1): 29–34.; Байкова Г.В. Клинико-генетическая характеристика муковисцидоза у детей Республики Башкортостан: Дисс. … канд. мед. наук. Уфа; 2001.; Шадрина В.В. Муковисцидоз у детей: распространенность, возрастные особенности клинико-лабораторных показателей и оптимизация наблюдения в специализированном центре: Дисс. . канд. мед. наук. Пермь; 2007.; Бушина М.Г. Распространенность и клинико-лабораторные особенности муковисцидоза у детей и подростков оренбургского региона: Дисс. . канд. мед. наук. Оренбург; 2009.; Сероклинов В.Н. Частота, распространенность и клинико-генетическая характеристика муковисцидоза у детей Алтайского края: Дисс. . канд. мед. наук. Барнаул; 2004.; Чикунов В.В. Совершенствование диагностики и диспансерного наблюдения больных муковисцидозом в Красноярском крае: Дисс. . канд. мед. наук. Красноярск; 2008.; Голубцова О.И., Красовский С.А., Кожевникова С.Л. и др. Клинические особенности поражения органов дыхания у детей с муковисцидозом в Чувашской Республике. Вопросы современной педиатрии. 2012; 11 (4): 54–59.; Леднева В.С. Эффективность современных технологий ранней диагностики муковисцидоза, возможности оптимизации терапии и прогноза: Дисс. . д-ра мед. наук. Воронеж; 2013.; Поликарпова С.В. Мониторинг патогенов нижних дыхательных путей и их антибиотикорезистентности у детей с муковисцидозом: Дисс. . канд. мед. наук. М.; 2005.; Лазарева А.В. Современный спектр возбудителей хронического воспаления при болезнях органов дыхания у детей и оптимизация антибактериальной терапии: Дисс. . канд. мед. наук. М., 2010.; Аветисян Л.Р., Чернуха М.Ю., Шагинян И.А. и др. Антибиотикочувствительность Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa и бактерий Burkholderia cepacia complex, персистирующих в легких больных муковисцидозом. Журнал микробиологии. 2015; 6: 3–10.; Чернуха М.Ю., Аветисян Л.Р., Шагинян И.А. и др. Фенотипические и генотипические особенности штаммов бактерий Burkholderia cepacia complex, выделенных от больных муковисцидозом. Педиатрия. Журнал им. Г.Н.Сперанского. 2014; 93 (4): 24–31.; ECFS Patient Registry. Annual Data Report. 2013. www.ecfs.eu; UK CF Registry. Annual data report 2014. Cystic Fibrosis Trust 2015. www.cftrust.org.uk; Cystic Fibrosis Foundation, Patient Registry 2014 Annual Report, Cystic Fibrosis Foundation, Bethesda, Md, USA, 2015. www.cff.org; Cystic Fibrosis in Australia 2013. 16th annual report Australian cystic fibrosis data registry. www.cysticfibrosis.org.au; Canadian Cystic Fibrosis Patient Data Registry Report 2013. www.cysticfibrosis.ca; Kosorok M.R., Zeng L., West S.E. et al. Acceleration of lung disease in children with cystic fibrosis after Pseudomonas aeruginosa acquisition. Pediatr. Pulm. 2001; 32: 277–287.; Doring G., Flume P., Heijerman H., Elborn J.S. Treatment of lung infection in patients with cystic fibrosis: current and future strategies. J. Cyst. Fibros. 2012; 11: 461–479.; Littlewood J.M. History of cystic fibrosis. In: Hodson M., Geddes D., Bush A., eds. Сystic fibrosis. London: Edward Arnold (publishers) Ltd. 2007: 3–19.; Drevinek P., Mahenthiralingam E. Burkholderia cenocepacia in cystic fibrosis: epidemiology and molecular mechanisms of virulence. Clin. Microbiol. Infect. 2010; 16 (7): 821–830.; Alexander B.D., Petzold E.W., Reller L.B. et al. Survival after lung transplantation on cystic fibrosis patients infected with Burkholderia cepacia. Am. J. Transplant. 2008; 8: 1025–1030.; Семыкин C.Ю., Постников С.С., Поликарпова С.В. и др. Burkholderia cepacia – новая угроза для больных муковисцидозом. Детская больница. 2013; 2: 52–55.; Красовский С.А. Выживаемость больных муковисцидозом в течение 5 и 10 лет с момента инфицированности респираторного тракта различной грамотрицательной флорой. В кн.: Сборник трудов XXV Национального конгресса по болезням органов дыхания. М.: Дизайн-Пресс; 2015: 127.; Ашерова И.К., Монахова С.И., Ершова М.Г. и др. Распространенность и источники возможного инфицирования больных Achromobacter xylosoxidans и Stenotrophomonas maltophilia в региональном центре муковисцидоза. Пульмонология. 2012; 2: 65–70.; Воронина О.Л., Кунда М.С., Рыжова Н.Н. и др. Разнообразие и опасность Achromobacter spp., поражающих дыхательные пути больных муковисцидозом. Пульмонология. 2015; 25 (4): 389–401.; Чернуха М.Ю., Аветисян Л.Р., Шагинян И.А. и др. Алгоритм микробиологической диагностики хронической инфекции легких у больных муковисцидозом. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2014; 16 (4): 178–190.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/742
-
3Academic Journal
المؤلفون: V. P. Terletskiy, V. I. Tyshchenko, O. B. Novikova, E. D. Dzhavadov, I. Ya. Shakhtamirov, N. L. Adaev, В. П. Терлецкий, В. И. Тыщенко, О. Б. Новикова, Э. Д. Джавадов, И. Я. Шахтамиров, Н. Л. Адаев
المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 19, № 3 (2015); 270-276 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 19, № 3 (2015); 270-276 ; 2500-3259 ; 2500-0462
مصطلحات موضوعية: E. coli, restriction enzymes, DNA digestion, labeling, molecular epizootology, ферменты рестрикции, расщепление ДНК, мечение, молекулярная эпизоотология
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/407/471; Борисенкова А.Н., Новикова О.Б., Оконевский П. Флорфеникол в птицеводстве. Птицеводство. 2012;3:43-45.; Добрина М.Н. Нужен постоянный контроль сальмонеллеза. Животноводство России. 2011;3:11-13.; Жебрун А.Б., Мукомолов С.Л., Нарвская О.В. Генотипирование и молекулярное маркирование бактерий и вирусов в эпидемиологическом надзоре за актуальными инфекциями. Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2011;4:28-36.; Макаров В.В. Истоки и эволюция современной эпизоотологии. Ветеринар. патология. 2007;3:8-17.; Тапальский Д.В., Осипов В.А., Жаворонок С.В. Фенотипическое и молекулярно-генетическое типирование сальмонелл: реалии и перспективы. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиологии. 2005;6:88-93.; Bikandi J., SanMillan R Rementeria. A., Garaizar J. In silico analysis of complete bacterial genomes PCR AFLP PCR and endonuclease restriction Bioinformatics. 2004;20(5):798-799.; Fakhr M.K., Nolan L.K., Logue C.M. Multilocus sequence typing lacks the discriminatory ability of pulsed-field gel electrophoresis for typing Salmonella enterica serovar Typhimurium J. Clin. Microbiol. 2005; 435):2215-2219.; Foxman B., Zhang L., Koopman J.S., Manning S.D., Marrs C.F. Choosing an appropriate bacterial typing technique for epidemiological studies. Epidemiol. Perspect. Innov. 20052(10). DOI:10.1186/1742- 5573-2-10; Higgins J., Hohn C., Hornor S., Frana M. Denver M., Joeger R. Genotyping of Escherichia coli from environment and animal samples. J. Microbiol. Methods. 2007;70(2):227-235.; Hunter P.R., Gaston M.A. Numerical index of the discriminatory ability of typing systems: an application of Simpson’s index of diversity. J. Clin. Microbiol. 198826(11):2465-2466.; Hussein A.H., Ghanem I.A., Eid A.A., Ali M.A., Sherwood J.S., Li G., Nolan L.K., Logue C.M. Molecular and phenotypic characterization of Escherichia coli isolated from broiler chicken flocks in Egypt. Avian Dis. 2013;573):602-611.; Koort J.M.K., Lukinmaa S., Rantala M. Unkila E., Siitonen A. Technical improvement to prevent DNA degradation of enteric pathogens in pulsed-field gel electrophoresis J. Clin. Microbiol. 200240(9): 3497-3498.; Lukinmaa S., Nakari U-M., Eklund M., Siitonen A. Application of molecular genetic methods in diagnostics and epidemiology of foodborne bacterial pathogens APMIS. 2004112(11/):908-929.; Lyhs U., Ikonen I., Pohjanvirta K.Raninen K., Perko-Mäkelä P., Pelkonen S.Extraintestinal pathogenic Escherichia coli in poultry meat products on the Finnish retail marketActa Vet. Scand. 20125464). DOI:10.1186/1751-0147-54-64; Mitani N., Koizumi A., Sano R.Masutani T., Murakawa K., Mikasa K., Okamoto Y. Molecular typing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus by PCR-RFLP and its usefulness in an epidemiological study of an outbreakJpn. J. Infect. Dis. 2005 58250-252.; Terletski V., Schwarz S., Carnwath J., Niemann H. Typing of Salmonella enterica subsp. enterica serovars Choleraesuis, Typhimurium, Dublin and laboratory strains of Escherichia coli using subtracted restriction fingerprinting (SRF). Microbiol. Res. 2003;158135-142.; Terletskiy V., Kuhn G., Francioli P., Blanc D. Application and evaluation of double digest selective label (DDSL) typing technique for Pseudomonas aeruginosa hospital isolates J. Microbiol. Methods. 2008283-287.; Terletskiy V., Tyshchenko V., Martinez-Ballesteros I. Garaizar J., Bikandi J. Validation of Double Digest Selective Label database for sequenced prokaryotic genomes Bioinformatics. 2010):417-418.; Van Belkum A., Tassios P.T., Dijkshoorn L., Haeggman S., Cookson B., Fry N.K., Fussing V., Green J., Feil E., Gerner-Smidt P., Brisse S., Struelens M., Escmid E. Guidelines for the validation and application of typing methods for the use in bacterial epidemiology Clin.; Microbial. Infect. 2007:Suppl.31-46.; Willse A., Straub T.M., Wunschel S.C. Small J.A., Call D.R., Daly D.S., Chandler D.P. Quantitative oligonucleotide microarray fingerprinting of Salmonella enterica isolatesNucl Acids Res. 2004;32(5): 1848-1856.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/407