يعرض 1 - 20 نتائج من 313 نتيجة بحث عن '"ОВОЩНЫЕ КУЛЬТУРЫ"', وقت الاستعلام: 0.58s تنقيح النتائج
  1. 1
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 4 (2024); 5-14 ; Овощи России; № 4 (2024); 5-14 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2443/1568; Масленников И.П., Пименова А.С. Защита растений от болезней и вредителей в овощном хозяйстве. Московский рабочий. 1949. 144 с.; Масленников И.П. О вредителях семенников овощных культур и мерах борьбы с ними в овощном семеноводческом хозяйстве. ТСХА. 1951.; Масленников И.П., Осипов К.Н. Вредители бахчевых культур. М.: Сельхозгиз. 1939.; Пименова А.С. Болезни и вредители семенников капусты и меры борьбы с ними. Сад и огород. 1955;(6).; Пименова А.С. Новый антисептик (бактерицид Збарского) в борьбе со склеротинией. М., 1940.; Пименова А.С. Болезни овощных культур и меры борьбы с ними. В кн.: Семеноводство овощных культур. М., 1953.; Долженко В.И. Охрана здоровья растений: вчера, сегодня, завтра. V Всероссийский конгресс по защите растений : Сборник тезисов докладов Посвящается 300-летию Российской академии наук, Санкт-Петербург, 16–19 апреля 2024 года. Санкт-Петербург: Всероссийский институт защиты растений, 2024. С. 28. https://elibrary.ru/sgauvv; Pethybridge S.J., Kikker J.R., Hanson L.E., Nelson S.C. Challenges and prospects for building resilient disease management strategies and tactics for the New York table beet industry. Agronomy, 2018;8(7):112. https://doi.org/10.3390/agronomy8070112; West J.S., Townsend J.A., Stevens M., Fitt B.D.L. Comparative biology of different plant pathogens to estimate effects of climate change on crop diseases in Europe. European Journal of Plant Pathology. 2012;133(1):315-331. https://doi.org/10.1007/s10658-011-9932-x; Санин С.С. Фитосанитарные вызовы современного интенсивного растениеводства. Плодоводство и ягодоводство России. 2015;(43):178- 183. https://www.elibrary.ru/vebvlb; Velasquez A.C., Castroverde C.D.M., He S.Y. Plant—pathogen warfare under changing climate conditions. Current Biology. 2018;28(10):R619-R634. https://doi.org/10.1016/j.cub.2018.03.054; Рябушкина Н.А. Биотесты для скрининга аллелопатического потенциала диких и культурных видов растений. Биотехнология. Теория и практика. 2005;(5):5-15. https://www.elibrary.ru/umwtxx; Солдатенко А.В., Пивоваров В.Ф., Пышная О.Н., Гуркина Л.К., Пинчук Е.В. Селекция и семеноводство овощных культур – на инновационный путь развития. Овощи России. 2023;(1):5-13. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2023-1-5-13 https://www.elibrary.ru/wzovbp; Корганова Н.Н. Методика оценки устойчивости огурцов к оливковой пятнистости. ВАСХНИЛ. М., 1970.; Ореховская М.В., Гуркина Л.К. Методические рекомендации по защите семеноводческих посевов овощных культур от болезней и вредителей. М.:ВНИИССОК. 1969. 18 с.; Ореховская М.В., Гуркина Л.К. Вредители и болезни овощных культур и меры борьбы с ними. М., 1987. 15-29 с.; Першина Г.Ф. Патогенез сухой фузариозной гнили моркови и спосо¬бы борьбы с комплексом болезней в семеноводстве. М., 1988.; Коротцева И.Б., Корганова Н.Н., Кочеткова Л.А. Подбор сортов огурца, устойчивых к пероноспорозу. Картофель и овощи. 2005;(4):10-11. https://www.elibrary.ru/ypiokn; Ганнибал Ф.Б. Современные представления о биоразнообразии фитопатогенных грибов. V Всероссийский конгресс по защите растений : Сборник тезисов докладов Посвящается 300-летию Российской академии наук, Санкт-Петербург, 16–19 апреля 2024 года. Санкт-Петербург: Всероссийский институт защиты растений, 2024. С. 27. https://www.elibrary.ru/gaasms; Gannibal Ph.B. Polyphasic Approach to Fungal Taxonomy. Biology Bulletin Reviews. 2022;12(1):18-28. https://doi.org/10.1134/s2079086422010029 https://www.elibrary.ru/oryxix; Taylor J.W., Jacobson D.J., Kroken S., Kasuga T., Geiser D.M., Hibbett D.S., Fisher M.C. Phylogenetic Species Recognition and Species Concepts in Fungi. Fungal genetics and biology. 2000;(31):21-32. https://doi.org/10.1006/fgbi.2000.1228; Hami A., Rasool R.S., Khan N.A., Mansoor S., Mir M.A., Ahmed N., Masoodi K.Z. Morpho-Molecular Identification and First Report of Fusarium Equiseti in Causing Chilli Wilt from Kashmir (Northern Himalayas). Scientific Reports. 2021;(11):3610. https://doi.org/10.1038/s41598-021-82854-5; Shaheen N., Khan U.M., Azhar M.T., Tan D.K., Atif R.M., Israr M., Yang S.-H., Chung G., Rana I.A. Genetics and Genomics of Fusarium Wilt of Chilies: A Review. Agronomy. 2021;(11):2162.; Engalycheva I., Kozar E., Vetrova S., et al. Fusarium species causing pepper wilt in Russia Molecular identification and pathogenicity. Microorganisms. 2024;(12):343-359. https://doi.org/10.3390/microorganisms12020343; Vetrova S., Alyokhina K., Engalycheva I., Kozar E., Mukhina K., Sletova M., Krivenkov L., Tikhonova T., Kameneva A., Frolova S., et al. Identification and Pathogenicity of Fusarium Species Associated with Onion Basal Rot in the Moscow Region of Russian Federation. J. Fungi. 2024;(10):331. https://doi.org/10.3390/jof10050331; Anisimova O.K., Seredin T.M., Danilova O.A., Filyushin M. First report of fusarium proliferatum causing garlic clove rot in Russian Federation. Plant Disease. 2021;105(10):3308. https://doi.org/10.1094/PDIS-12-20-2743-PDN; Диаките С., Поляков А.В., Стахеев А.А., Алексеева Т.В., Завриев С.К., Said R.R. Видовой состав грибов рода Fusarium Link на культуре чеснока в условиях Московской области. Сельскохозяйственная биология. 2022;57(1):151-157. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2022.1.151rus https://www.elibrary.ru/zhqsaf; Енгалычева И.А., Козарь Е.Г., Пронина Е.П., Ушаков В.А. Иммунологическая оценка нового перспективного сорта бобов овощных (Vicia faba L.) Русские белые на устойчивость к наиболее вредоносным фитопатогенам. Российская сельскохозяйственная наука. 2022;(1):8-12. https://doi.org/10.31857/S2500262722010021 https://www.elibrary.ru/ebptsn; Тихонова Т.О., Козарь Е.Г., Енгалычева И.А., Степанов В.А. Скрининг коллекционных образцов моркови столовой и поиск источников устойчивости к белой гнили. Таврический вестник аграрной науки. 2023;4(36):159–173. https://doi.org/10.5281/zenodo.10280831 https://www.elibrary.ru/kjnhps; Engalycheva I., Kozar E., Ushakov A. Сornerstone of strategy aimed at creation of resistant variants of carrot (Daucus carota L.) to white and gray rot pathogens at the Federal Scientific Vegetable Center (FGBNU FNCO, Russia). Proceedings of the X International Scientific Agricultural Symposium “AgroSym 2019”. Jahorina (Bosnia and Herzegovina), 2019. P. 1090–1098.; Тимина Л.Т., Енгалычева И.А. Патогенная микробиота на овощных культурах в условиях Центрального региона РФ. Селекция и семеноводство овощных культур. 2014;(45):530-539. https://www.elibrary.ru/ukeqld; Соколова Л.М. Система комплексного применения селекционноиммунологических методов для создания сортов и гибридов моркови столовой с групповой устойчивостью к Аlternaria sp. и Fusarium sp. Методические рекомендации. Москва, 2022. 56 с. https://www.elibrary.ru/jvdkvs; Ветрова С.А., Козарь Е.Г., Енгалычева И.А., Мухина К.С. Скрининг селекционных линий свеклы столовой по устойчивости к фомозу. Таврический вестник аграрной науки. 2023;4(36):38–50. https://doi.org/10.5281/zenodo.10276686. https://www.elibrary.ru/fibqxb; Козарь Е.Г., Ветрова С.А., Енгалычева И.А., Федорова М.И. Оценка устойчивости селекционного материала свеклы столовой к церкоспорозу на фоне эпифитотии в условиях защищенного грунта Московской области. Овощи России. 2019;(6):124-132. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2019-6-124-132 https://www.elibrary.ru/xxchhd; Ветрова С.А., Козарь Е.Г., Мухина К.С. Оценка селекционного материала свеклы столовой на устойчивость к церкоспорозу. Генофонд и селекция растений: Материалы 7-й Международной конференции «Генофонд и селекция растений», посвященной 95-летию академика РАН П.Л. Гончарова (Новосибирск, Россия, 10–12 апреля 2024 г.). Федер. исслед. центр Ин-т цитологии и генетики Сиб. отделения Рос. академии наук. Новосибирск: ИЦиГ СО РАН, 2024. С.83-88. https://doi.org/10.18699/GPB2024-22; Слетова М.Е. Видовой состав возбудителей настоящей мучнистой росы тыквенных культур. Овощи России. 2022;(4):91-97. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2022-4-91-97 https://www.elibrary.ru/nbiftp; Слетова М.Е., Коротцева И.Б., Каменева А.В., Чижик В.К., Белов С.Н. Идентификация и изучение патогенных свойств гриба Рodosphaera xanthii – возбудителя настоящей мучнистой росы на культурах семейства Сucurbitaceae. Современная микология в России. Т. 10. Материалы международного микологического форума. М.: Национальная академия микологии, 2024. С.280-282. ISBN 978-5-901578-47-6.; Коротцева И.Б., Белов С.Н., Слетова М.Е. Селекция огурца для весенних пленочных теплиц на устойчивость к настоящей мучнистой росе. Овощи России. 2024;(1):61-67. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2024-1-61-67 https://www.elibrary.ru/kclgdx; Синиченко Н.А., Козарь Е.Г., Ванюшкина И.А., [и др.] Создание исходного материала томата на устойчивость к возбудителям альтернариоза. Инновационные технологии в агропромышленном комплексе : Материалы международной научно-практической конференции, Воронеж, 23 мая 2023 года. Воронеж: Воронежский государственный аграрный университет им. Императора Петра I, 2023. С. 242-248. https://www.elibrary.ru/kthvlx; Енгалычева И.А., Козарь Е.Г., Каменева А.В., Корнилова М.С. Состав и агрессивность микромицетов патокомплекса Cucumis melo L. в условиях богары волгоградской области. Биосфера. 2022;14(4):311-315. https://www.elibrary.ru/ssenrd; Scholthof K.B.G., Adkins S., Czosnek H., Palukaitis P., Jacquot E., Hohn T., Hohn B., Saunders K., Candresse T., Ahlquist P., Hemenway C., Foster G.D. Top 10 plant viruses in molecular plant pathology. Molecular Plant Pathology. 2011;12(9):938-954. https://doi.org/10.1111/j.1364-3703.2011.00752.x; Yu L., Zhang C., Shang H., Wang X., Wei M., Yang F., Shi Q. Exogenous hydrogen sulfide enhanced antioxidant capacity, amylase activities and salt tolerance of cucumber hypocotyls and radicles. Journal of Integrative Agriculture. 2013;12(3):445-456. https://doi.org/10.1016/S2095-3119(13)60245-2; Балашова Н.Н., Игнатов А.Н., Самохвалов А.Н., Рогачев Ю.Б., Шмыкова Н.А. Жизнеспособность микрогаметофита белокочанной капусты под влиянием возбудителей бактериозов и килы. Сельскохозяйственная биология. 1995;30(3):115.; Игнатов А.Н., Поляков К.Л., Самохвалов А.Н. Количественный анализ серологических признаков Хanthomonas campestris. Сельскохозяйственная биология. 1998;33(1):106-169.; Самохвалов А.Н., Игнатов А.Н., Рогачев Ю.Б., Колесников И.М. Сосудистый бактериоз капусты: биология и методы защиты. Картофель и овощи. 1997;(2):25.; Ушаков А.А., Козарь Е.Г., Енгалычева И.А. Влияние Xanthomonas campestris pv. campestris на рост этиолированных и фотосинтезирующих проростков Brassica oleracea. Овощи России. 2019;(6):133-140. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2019-6-133-140 https://www.elibrary.ru/wgpius; Енгалычева И.А., Павлова О.В. Межвидовая гибридизация салата (Lactuca sativa L.) в селекции на устойчивость к Tomato aspermy cucumovirus. Вестник защиты растений. 2016;3(89):68-70. https://www.elibrary.ru/wyrczt; Енгалычева И.А., Козарь Е.Г., Антошкин А.А., Пронина Е.П., Волков Ю.Г., Какарека Н.Н., Щелканов М.Ю., Гапека А.В. Перспективы селекции овощных культур семейства Fabaceae на устойчивость к вирусу желтой мозаики фасоли (Potyvirus, Potyviridae) в условиях Московской области. Овощи России. 2018;(6):77-83. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2018-6-77-83 https://www.elibrary.ru/ypojpv; Енгалычева И.А., Козарь Е.Г. Основные направления исследований вирусных болезней овощных культур в ФГБНУ ФНЦО (мониторинг, иммунитет, источники устойчивости). Аграрная наука. 2019;(S3):79-85. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2019-326-3-79-85 https://www.elibrary.ru/irkfmy; Енгалычева И.А., Козарь Е.Г., Домблидес А.С., Антошкин А.А., Пивоваров В.Ф., Ушаков А.А., Ушаков В.А. Особенности развития вируса обыкновенной мозаики фасоли (Potyvirus, Potyviridae) в условиях Московского региона и исходный материал для селекции на устойчивость. Сельскохозяйственная биология. 2020;55(5):901-919. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2020.5.901rus https://www.elibrary.ru/huvkhl; Тимин Н.И., Агафонов А.Ф., Гуркина Л.К. и др. Межвидовая гибридизация в роде Allium L. и ее использование (методические рекомендации). М., 2007. 47 с.; Пивоваров В.Ф., Пышная О.Н., Мамедов М.И. и др. Методические рекомендации по оценке и созданию исходного материала перца сладкого с устойчивостью к вирусу бронзовости томата. М., 2007. 24 с.; Тимин Н.И., Пышная О.Н., Агафонов А.Ф. и др. Межвидовая гибридизация овощных растений (Allium L. – лук, Daucus L. – морковь, Capsicum L. – перец). М., 2013. 188 с. ISBN: 978-5-901695-59-3 https://www.elibrary.ru/vrqhyt; Енгалычева И.А., Павлова О.В. Межвидовая гибридизация салата (Lactuca sativa L.) в селекции на устойчивость к Tomato Aspermy Cucumovirus. Вестник защиты растений. 2016;(3):68-69. https://www.elibrary.ru/wyrczt; Енгалычева И.А., Пышная О.Н., Джос Е.А. и др. Использование межвидовой гибридизации в селекции перца и салата на устойчивость к вирусной инфекции. Russian Agricultural Science Review. 2015;(6):2-4. https://www.elibrary.ru/ubzyuj; Пивоваров В.Ф., Балашова И.Т., Балашова Н.Н., Козарь Е.Г., Скворцова Р.В., Мамедов М.И., Пышная О.Н., Гуркина Л.К., Беспалько А.В., Урсул Н.А., Пинчук Е.В., Полетаева И.А. Селекционные технологии, созданные во ВНИИ селекции и семеноводства овощных культур на основе методов молекулярного анализа и селекции по микрогаметофиту. Сельскохозяйственная биология. 2005;40(3):92-100. https://www.elibrary.ru/pgckoh; Пинчук Е.В. Исходный материал для селекции томата с комплексной устойчивостью к абиотическим и биотическим стрессорам нечерноземной зоны, полученный на основе методов молекулярного анализа и гаметной селекции. М., 2005.; Мартынов В.В., Козарь Е.Г., Енгалычева И.А. Особенности первичной структуры гена Ph-3, выявленные при создании нового маркера устойчивости томата к фитофторозу. Сельскохозяйственная биология. 2022;57(5):954-964. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2022.5.954rus https://www.elibrary.ru/hbxwcl; Гар К.А. Новые технологические разработки и семеноводство овощных культур. М.: ВНИИССОК. 1987. 12 с.; Голышин Н.М. Фунгициды в сельском хозяйстве. М.:ВНИИССОК. 1982. 15 с.; Голышин Н.М. Химические и биологические средства защиты растений. М.:ВНИИССОК. 1989. 25-37 с.; Синиченко Н. А., Ванюшкина И. А., Козарь Е. Г., Маркарова М. Ю. Влияние биопрепаратов различной природы на развитие альтернариоза и урожайность растений томата в условиях Приморского края. Известия ФНЦО. 2023;(1):25-31. https://doi.org/10.18619/2658-4832-2023-1-25-31 https://www.elibrary.ru/wovluf; Markarova A.E., Markarova M.Y., Razin O.A., Nadezhkin S.M. The microorganisms natural consortia effectiveness in the white cabbage crop cultivation. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2022. P. 012035. https://doi.org/10.1088/1755-1315/953/1/012035. https://www.elibrary.ru/jfmsqa; Ушакова О.В., Маркарова М.Ю., Надежкин С.М. Перспективы использования биопрепаратов для нейтрализации кадмиевого стресса у овощных культур (на примере корнеплодных культур). Проблемы загрязнения объектов окружающей среды тяжелыми металлами: труды международной конференции, Тула, 28–30 сентября 2022 года. Тула: Тульский государственный педагогический университет им. Л.Н. Толстого, 2022. С. 226-229. https://www.elibrary.ru/lsntuj; Кайгородова И. М., Козарь Е. Г., Енгалычева И. А., Ушаков В. А. Влияние предпосевной обработки фитопрепаратами на продуктивность растений гороха овощного (Pisum sativum L.). Достижения и перспективы развития АПК России : Материалы XIII Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых, посвященной памяти Р.Г. Гареева, Казань, 30–31 марта 2023 года. Казань: Академия наук Республики Татарстан, 2023. С. 261-264. https://doi.org/10.37071/conferencearticle_65817337b539b7.19907362 https://www.elibrary.ru/bboexa; Козарь Е.Г., Енгалычева И.А., Антошкин А.А., Мащенко Н.Е. Скрининг биологической активности фитопрепаратов на основе вторичных метаболитов растений на культуре Phaseolus vulgaris. Овощи России. 2021;(5):89-97. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-5-89-97 https://www.elibrary.ru/jcdhyj; Gins M.S., Gins V.K., Kononkov P.F. The effect of amaranthine on the stress-resistance of tomatoes (Lycopersicon esculentum Mill.) invaded by the root-knot nematode (Meloidogyne incognita). Agricultural Biology. 2020;55(1):97-106. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2020.1.97rus https://www.elibrary.ru/phcpeb; Алексеева К.Л., Деревщюков С.Н., Ванюшкина И.А., Шишкина Е.В., Мишуров Н.П., Щеголихина Т.А. Методы защиты овощных культур открытого грунта от болезней и вредителей. Практические рекомендации. Изд.: ФГБНУ "Росинформагротех". 2022. 112 с. https://www.elibrary.ru/gdsgss; Шишкина Е.В., Одерова Е.В. Применение современных средств защиты капусты белокочанной от листогрызущих вредителей. Обеспечение продовольственной безопасности: стратегия и решения: Сборник материалов международного научно-практического агрофорума, Екатеринбург, 26–27 июля 2023 года. Екатеринбург: Издательство Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Уральский федеральный аграрный научно-исследовательский центр Уральского отделения Российской академии наук», 2023. С. 24-30. https://www.elibrary.ru/wxmxiz; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2443

  2. 2
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 5 (2023); 5-17 ; Овощи России; № 5 (2023); 5-17 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2233/1486; Аксенов А.Г., Сибирёв А.В., Козлова А.И. Методология разработки технологических и технических решений на возделывании овощных культур на примере посадки лука-севка. Интеллектуальные машинные технологии и техника для реализации государственной программы развития сельского хозяйства – международная научно-техническая конференция. – Москва: ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт механизации сельского хозяйства», 2015. С. 284–288.; Аксенов А.Г., Сибирёв А.В., Емельянов П.А. Обеспеченность техникой для овощеводства. Тракторы и сельхозмашины. 2016;(8):25-30.; Валге А.М. Формализация технологий растениеводства как динамических систем. Технологии и технические средства механизированного производства продукции растениеводства и животноводства. 2003;(74):26-34.; Морозов Ю.Л., Андрианов В.М., Максимов Д.А., Богданов К.В. Разработка адаптивных технологий производства продукции растениеводства. Государственное научное учреждение Северо-Западный научно-исследовательский институт механизации и электрификации сельского хозяйства Российской академии сельскохозяйственных наук. Санкт-Петербург, 2005.; Полуэктов Р.А. Динамические модели агроэкосистемы. Л.: Гидрометеоиздат, 1991. 312 с.; Измайлов А.Ю., Гришин А.А., Гришин А.П., Лобачевский Я.П. Экспертные системы интеллектуальной автоматизации технических средств сельскохозяйственного назначения. Инновационное развитие АПК России на базе интеллектуальных машинных технологий. Москва, 2014. С. 379–382.; Измайлов А.Ю., Лобачевский Я.П., Бейлис В.М., Ценч Ю.С. Инновационная система машинно-технологического обеспечения предприятий агропромышленного комплекса. Том Часть 1. Инновационная система машинно-технологического обеспечения сельскохозяйственных предприятий на длительную перспективу. Москва, 2019.; Попов В.Д., Валге А.М., Папушин Э.А. Повышение эффективности производства продукции растениеводства с использованием информационных технологий. Технологии и технические средства механизированного производства продукции растениеводства и животноводства. 2009;(81):32–39.; Лобачевский Я.П., Ценч Ю.С. Принципы формирования систем машин и технологий для комплексной механизации и автоматизации технологических процессов в растениеводстве. Сельскохозяйственные машины и технологии. 2022;16(4):4-12. DOI 10.22314/2073-7599-2022-16-4-4-12. EDN IDJFYV.; Сибирев А.В., Аксенов А.Г., Дорохов А.С. Уточненный расчет сепарирующей поверхности машины для уборки лука. Сельскохозяйственные машины и технологии. 2018;12(3):28-31. DOI 10.22314/2073-7599-2018-12-3-28-31. EDN UUULPD.; Измайлов А.Ю., Лобачевский Я.П., Дорохов А.С., Сибирев А.В., Крючков В.А., Сазонов Н.В. Современные технологии и техника для сельского хозяйства - тенденции выставки Аgritechnika. 2019. Тракторы и сельхозмашины.2020;(6):28-40.; Рейнгарт Э.С., Сорокин А.А., Пономарев А.Г. Унифицированные картофелеуборочные машины нового поколения. Тракторы и сельскохозяйственные машины. 2006;(10):3–5.; Hevko R.B., Tkachenko I.G., Synii S.V. Development of design and investigation of operation processes of small-sclale root crop and potato harvesters. INMATEH-agricultural engineering. 2016;(49):53 – 60.; Протасов А.А. Функциональной подход к созданию лукоуборочной машины // Вестник Федерального государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования Московский государственный агроинженерный университет им. В.П. Горячкина. 2011;(47):37-43.; Сорокин А.А. Теория и расчет картофелеуборочных машин (монография). М.: ВИМ. 2006. 159 с.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2233

  3. 3
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 4 (2023); 30-37 ; Овощи России; № 4 (2023); 30-37 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2202/1473; Сухомиров Г.И. Проблема самообеспечения сельскохозяйственными продуктами в регионах Дальневосточного федерального округа. Проблемы развития территории. 2017;1(87):173–186. EDN XSAJIV.; Шелепа А.С. Дальневосточное село: состояние и организационноэкономические проблемы развития. Хабаровск: ХГАЭП, 2006. 184 с.; Сакара Н.А., Солдатенко А.В., Пивоваров В.Ф., Сухомиров Г.И., Тарасова Т.С., Ознобихин В.И. Основные проблемы дальневосточного овощеводства. Овощи России. 2020;(6):3-9. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2020-6-3-9. EDN VDWOQQ.; Авченко В.Ф., Годун Б.К., Дьяков И.П. и др. Система возделывания овощных культур и картофеля в Приморском крае. Методич. рекомендации. Новосибирск: СО ВАСХНИЛ, 1982.112 с.; Березников К.П., Бажнова Л.Е., Ознобихин В.И. Средние многолетние запасы продуктивной влаги под озимыми и ранними яровыми зерновыми культурами по областям, краям, республикам и экономическим районам. Справочник /Дальний Восток. Л.: Гидрометеоиздат, 1989. Т. 2. Урал, Западная Сибирь, Дальний Восток, Казахстан, Средняя Азия. 67 с. А2.; Бортин Н.Н., Ознобихин В.И. Экологическая оценка мелиорации земель на Дальнем Востоке. Проблемы мелиорации и водного хозяйства на Дальнем Востоке: Сб. науч. тр. Владивосток: ДальНИИГиМ. 2014;(18):34-45.; Степанов А.Н. Осушение земель Дальнего Востока. М.: Колос.1976. 239 с.; Ротарь В.П., Голодный В.Н., Ничепоренко Е.Н., Ознобихин В.И. К изучению влияния некоторых приемов освоения на влажность переувлажненных почв. Агрометеорология. Тр. Дальневост. н.и. гидрометеорол. ин-та. Л.: Гидрометеоиздат. 1988;(134):80-83.; Якименко В.И., Ознобихин В.И., Морозов М.М., Пиценко И.Н. Урожайность культур на мелиорируемых землях в экстремальные по переувлажнению годы [после тайфуна Джуди]. Повышение эффективности мелиорации и водного хозяйства на Дальнем Востоке: итоги и перспективы исследований: Тез. докл. IV зон. науч. конф. г. Уссурийск. Ч. I. Мелиорация земель. Кн. 3. Программирование урожаев на мелиорируемых землях. Владивосток: ДВО АН СССР, 1987. С. 24-31.; Дербенцева А.М. Опасность дефляции почв Приморья. Почвоведение. 1987;(7):130-137.; Жулина Н.П., Корляков А.С., Ознобихин В.И. Технология орошения гребневых посевов суходольных культур по бороздам в рисовом севообороте. Экологические и экономические проблемы мелиорации и водного хозяйства на Дальнем Востоке России: Сб. тр. / ФГУП ДальНИИГиМ. Вып. 14. Владивосток: ДальНИИГиМ, 2001. С. 43-49.; Старожилов В.Т., Дербенцева А.М., Пуртова Л.Н., Степанова А.М., Сакара Н.А. и др. Ирригационная эрозия почв в условиях муссонного климата. Владивосток: Изд-во ДВУ, 2010. 120 с.; Степанов А.Н., Безруков А.Ю., Майстренко М.С. и др. Орошение овощных культур малыми поливными н нормами в условиях муссонного климата. Владивосток: ДальНИИГиМ, 1987. 60 с.; Амачаев В.П., Балябин В.Ф., Ознобихин В.И. и др. ехнико-экономический доклад (ТЭД) о противопаводковых мероприятиях для защиты народнохозяйственных объектов Приморского края от наводнений. Владивосток: Союздальгипрорис, 1993. 156 с.; Балябин В.Ф., Амачаев В.П., Бортин Н.Н. и др. Защита от наводнений Приморского края. Защита от наводнений населенных пунктов, народнохозяйственных объектов, сельскохозяйственных и других ценных земель в Приморье: Федераль. целев. программа. Владивосток: изд-во Вектор, 1996. 84 с.; Костенков Н.М., Ознобихин В.И., Голов В.И., и др. Агропромышленный комплекс [негативные процессы в почвах]. Долговременная программа охраны природы и рационального использования природных ресурсов Приморского края (Экологическая программа). Владивосток: Дальнаука, 1993. Ч. 1. (Продолжение). С. 287-347.; Костенков Н.М., Ознобихин В.И. Почвенные ресурсы Приморского края и рационализация их использования. Вестник ДВО РАН. 1993;(4-5):28-36.; Воложенин А.Г. О системе земледелия в Приморье. Владивосток: ДВ. кн. изд-во, 1971. 147с.; Синельников Э.П., Слабко Ю. Агрогенезис почв Приморья. М.: Изд-во ГНУ ВНИИА, 2005. 280 с.; Сакара Н.А., Колодкин В.Г., Тарасова Т.С., Жильцов А.Ю., Кольев Н.В., Нестерова О.В., Ознобихин В.И. Основные итоги и перспективы исследований в овощеводческом земледелии в условиях муссонного климата Приморья. Вестник ДВО РАН. 2019;(3):64-68. DOI 10.25808/08697698.2019.205.3.011. EDN OCOLER.; Пуртова Л.Н., Щапова Л.Н., Костенков Н.М. и др. Влияние гербицидов на процессы гумусообразования и микробиологическую активность лугово-бурых отбеленных почв Приморья. Агрохимия. 2008;(1):26-35. EDN IBYXPN.; Блохин В.Д., Моисеенко А.А., Ступин В.М. Научные основы земледелия на Дальнем Востоке России. Владивосток: Дальнаука, 2011. 216 с.; Грицун А.Т. Система удобрений. Агрохимическая характеристика почв СССР. Дальний Восток. М.: Наука, 1971. С. 46-69.; Федчун А.А. Известкование кислых почв в Приморском крае: Метод. указания / А.А. Федчун, Ю.И. Слабко, В.И. Ознобихин, А.А. Аксенов, А.А. Фёдоров, Б.К. Годун, В.И. Голов, Л.М. Рясинская, Н.В. Хавкина, Владивосток: ДВНЦ АН СССР (БПИ), 1985. 56 с.; Аксенов А.А., Ильина С.Н., Ознобихин В.И. Содержание различных форм калия при внесении калийных удобрений на известкуемых почвах с низким содержанием обменного калия. Изменение почвенного покрова Дальнего Востока в результате сельскохозяйственного использования и мелиорации: Тр. Примор. с.-х. ин-т, Уссурийск: ПСХИ. 1978. Вып. 52. С. 349-355.; Жарикова Е.А. Калий в почвах восточной буроземно-лесной области России. Владивосток: Дальнаука, 2006. 135 с.; Неунылов Б.А., Федчун А.А., Рясинская Л.М. К вопросу о поведении кальция при известковании почв. Изменение почвенного покрова Дальнего Востока в результате сельскохозяйственного использования и мелиорации. Сб. науч. тр. Примор. с.-х. ин-т. Уссурийск, 1978. Вып. 52. С.124-129.; Стрельченко Н.Е. Фосфатный режим переувлажняемых почв юга Дальнего Востока. Владивосток: Дальневост. кн. изд-во, 1982. 143 с.; Сычев В.Г., Шафран С.А., Виноградова С.Б. Плодородие почв в России и пути его регулирования. Агрохимия. 2020;(6):3–13. DOI 10.31857/S0002188120060125. EDN POXVQI.; Сакара Н.А., Колодкин В.Г., Тарасова Т.С., Ознобихин В.И., Кольев Н.В. Влияние хлористого калия на урожай и качество продукции в овощных севооборотах на окультуренных почвах юга Приморья. Вестник Дальневосточного отделения Российской академии наук. 2018;3(199):27-34. EDN YSDXJB.; Сакара Н.А., Ознобихин В.И., Тарасова Т.С. Ванюшкина И.А. К определению пригодности сельскохозяйственных земель под овощные плантации по почвенным показателям в Приморском крае. Известия ФНЦО. 2023;(1(:16-24. DOI 10.18619/2658-4832-2023-1-16-24. EDN TAIGBM.; Гребне-грядовая технология возделывания сельскохозяйственных культур на Дальнем Востоке. Хабаровск: кн. изд-во, 1974. 286 с.; Казьмин Г.Т. Мелиоративная система земледелия – основа грядо–гребневых технологий возделывания сельскохозяйственных культур на Дальнем Востоке. Хабаровск: кн. изд-во, 1990. 55 с.; Канделя М.В., Уланов С.А. Гребне-грядовая технология возделывания кукурузы и сои в условиях переувлажнённых почв. Вестник Приамурского государственного университета им. ШоломАлейхема. 2019;4(37):55-59. EDN POWKWA.; Колосков П.И. Метод гребневой обработки почвы для природных условий муссонного климата умеренного пояса. Тр. НИИ агроклиматологии. 1959;(7):85-92.; Сакара Н.А., Жильцов А.Ю. Севообороты в адаптивно-ландшафтных системах земледелия на Дальнем Востоке. Аграрная наука – сельскохозяйственному производству Дальнего Востока: сб. науч. тр. РАСХН, ДВНМЦ, Примор. НИИСХ. Владивосток: Дальнаука, 2005. С. 142-149.; Сакара Н.А. Особенности адаптивно-ландшафтного подхода при территориальной организации овощных агроландшафтов в Приморском крае. Картофель и овощи. 2006;(6):15-17. EDN HYIYPB.; Сакара Н.А., Иванов И.М. Современные подходы при построении и оценке овощных севооборотов в Приморском крае в рамках концепции экологически и экономически сбалансированного землепользования. Генезис и биология почв на юге Дальнего Востока. К 70-летию со дня рождения Г.И. Иванова. Владивосток: ДВО РАН, 1994. С. 349- 35Х; Сидоренко С.П. Технологическое обоснование комплекса машин для возделывания овощных культур в зоне Дальнего Востока. М.: ВНИИО, 1987. 23 с.; Федяй В.П. Итоги и перспективы исследований по разработке технологий производства овощей в Приморском крае. Аграрный вестник Приморья. 2018;4(12):23-27.; Колодкин В.Г., Юн В.Л. Механизированные технологии овощеводства на Дальнем Востоке. Картофель и овощи. 2014;(4):2-7. EDN SAFMVD.; Федяй В.П. Технологические основы овощеводства в Приморском крае. Современное состояние и перспективы развития овощеводства и картофелеводства на юге Дальнего Востока России: материалы науч.-практич. конф., посвящ. 20-летию ГНУ ПООС ВНИИО РАСХН. 2008. Артем: ПООС, 2008. С.135-143.; Федяй В.П. Осваивайте современные агротехнологии. Картофель и овощи. 2008;(5):8-10. EDN JUKHLH.; Федяй В.П. Технологические основы современного овощеводства на юге Дальнего Востока России. Вестник овощевода. 2011;(2):10-13.; Федяй В.П. Разработка технологии и комплекса для производства пряно-ароматических культур. Картофель и овощи. 2013;(6):11-12. EDN QZPRDX.; Федяй В.П. Механизация уборки лука в Приморье. Картофель и овощи. 2015;(10):28. EDN UNECIH.; Федяй В.П. Особенности проведения исследований по разработке технологий производства овощных культур в условиях Приморского края. Дальневосточный аграрный вестник. 2015;3(35):56-63.; Федяй В.П. Итоги, особенности и перспективы исследований по разработке технологий производства овощных культур в условиях Приморского края. Научное обеспечение отрасли овощеводства России в современных условиях / Сб. науч. тр. М.: ФГБНУ ВНИИО, 2015. С. 388-394.; Черненков А.Д. Гребневой способ возделывания сахарной свёклы в нечерноземой полосе СССР. Достижения в науке и передовой опыт в свекловодстве. М.: Сельхозгиз. 1957. С. 50-59.; Щупак К.Д. Картофель в условиях избыточного увлажнения почв Еврейской автономной области. Тр. Дальневосточного филила АН СССР им. В.Л. Комарова. Серия растениеводство. 1952. Т.1. С. 83- 100.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2202

  4. 4
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 3 (2023); 41-49 ; Овощи России; № 3 (2023); 41-49 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2182/1456; Федосов А.Ю., Меньших А.М., Иванова М.И., Рубцов А.А. Инновационные технологии орошения овощных культур. М., Издво Ким Л.А., 2021. 306 с.; Федосов А.Ю., Меньших А.М., Иванова М.И. Дефицитное орошение овощных культур. Овощи России. 2022;(3):44-49. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2022-3-44-49. EDN NGVSRG.; Жученко А.А. Экологическая генетика культурных растений и проблемы агросферы (теория и практика). Т. 1. М., 2004. 688 с.; Назаров П.А., Балеев Д.Н., Иванова М.И., Соколова Л.М., Каракозова М.В. Инфекционные болезни растений: этиология, современное состояние, проблемы и перспективы защиты растений. Acta Naturae (русскоязычная версия). 2020;12,3(46):46-59.; Федосов А.Ю., Меньших А.М., Иванова М.И. Оценка водного следа овощных культур. Овощи России. 2021;(4):57-64. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-4-57-64. EDN QDYYSU.; Огнивцев С.Б. Глобальные климатические изменения, углеродные балансы и влияние на них сельского хозяйства. Актуальные вопросы современной экономики. 2022;(7):238-249.; Hazra P., Samsul H.A., Sikder D., Peter K.V. Breeding tomato (Lycopersicon esculentum Mill) resistant to high temperature stress. International Journal of Plant Breeding. 2007;(1):31-40.; Erickson A.N., Markhart A.H. Flower developmental stage and organ sensitivity of bell pepper (Capsicum annuum L.) to elevated temperature. Plant Cell and Environment. 2012;(25):123-130.; Arora S.K., Partap P.S., Pandita M.L., Jalal I. Production problems and their possible remedies in vegetable crops. Indian Horticulture. 2010;(32):2-8.; Kurtar E.S. Modelling the effect of temperature on seed germination in some cucurbits. African Journal of Biotechnology. 2010;(9):9.; Ayyogari K., Sidhya P., Pandit M.K. Impact of climate change on vegetable cultivation a review. International Journal of Agriculture, Environment and Biotechnology. 2014;(7):145.; Солдатенко А.В., Иванова М.И., Бондарева Л.Л., Тареева М.М. Капустные зеленные овощи. М., Изд-во ФГБНУ ФНЦО, 2022. 296 с. ISBN 978-5-901695-89-0. EDN UNSAFI.; Sivakumar R., Nandhitha G.K., Boominathan P. Impact of Drought on Growth Characters and Yield of Contrasting Tomato Genotypes. Madras Agricultural Journal. 2016;(103):78-82.; Vadez V., Berger J.D., Warkentin T., Asseng S., Ratnakumar P., et al. Adaptation of grain legumes to climate change: a review. Agronomy for Sustainable Development. 2012;(32):31-44.; SrinivasaRao N.K., Bhatt R.M. Responses of tomato to moisture stress: Plant water balance and yield. Plant Physiology and Biochemistry, New Delhi. 2012;(19):36-36.; De la Peña R., Hughes J. Improving vegetable productivity in a variable and changing climate. Journal of SAT Agricultural Research. 2007;(4):1-22.; Yordanov I., Velikova V., Tsonev T. Plant responses to drought, acclimation, and stress tolerance. Photosynthetica. 2013;(38):171-186.; Dias M.C., Brüggemann W. Limitations of photosynthesis in Phaseolus vulgaris under drought stress: gas exchange, chlorophyll fluorescence and Calvin cycle enzymes. Photosynthetica. 2010;(48):96-102.; Isopp H., Frehner M., Long S.P., Nösberger J. Sucrose-phosphate synthase responds differently to source-sink relations and to photosynthetic rates: Lolium perenne L. growing at elevated pCO2 in the field. Plant, Cell and Environment. 2008;(23):597-607.; Andersen M.N., Asch F., Wu Y., Jensen C.R., Næsted H., et al. Soluble invertase expression is an early target of drought stress during the critical, abortion-sensitive phase of young ovary development in maize. Plant Physiology. 2012;(130):591-604.; Cheeseman J.M. Mechanisms of salinity tolerance in plants. Plant physiology. 2008;(87):547-550.; Jamil M., Rha E.S. The effect of salinity (NaCl) on the germination and seedling of sugar beet (Beta vulgaris L.) and cabbage (Brassica oleracea var. capitata L.). Korean Journal of Plant Research. 2014;(7):226-232.; Lopez M.A.H., Ulery A.L., Samani Z, Picchioni G., Flynn R.P. Response of chili pepper (Capsicum annuum L.) to salt stress and organic and inorganic nitrogen sources: i. growth and yield. Tropical and Subtropical Agroecosystems. 2011;(14):137-147.; Kaymakanova M., Stoeva N., Mincheva T. Salinity and its effects on the physiological response of bean (Phaseolus vulgaris L.). Journal of Central European Agriculture. 2008;(9):749-756.; Parent C., Capelli N., Berger A., Crèvecoeur M., Dat J.F. An overview of plant responses to soil waterlogging. Plant Stress. 2008;(2):20-27.; Drew M.C. Plant responses to anaerobic conditions in soil and solution culture. CurrAdv Plant Sci. 2009;(36):1-14.; Kawase M. Anatomical and morphological adaptation of plants to waterlogging. HortSci. 2011;(16):30-34.; Kuo D.G., Tsay J.S., Chen B.W., Lin P.Y. Screening for flooding tolerance in the genus Lycopersicon. HortSci. 2014;(17):76-78.; Kumar S.N. Climate Change and its Impacts on Food and Nutritional Security in India. Agriculture under Climate Change: Threats, Strategies and Policies. 2017;(1):48.; Folzer H,, Dat J,F,, Capelli N,, Rieffel D,, Badot P,M, Response of sessile oak seedlings (Quercus petraea) to flooding: an integrated study. Tree physiology. 2006;(26):759-766.; Liao C.T., Lin C.H. Effect of flooding stress on photosynthetic activities of Momordica charantia. Plant Physiology and Biochemistry. 2014;(32):479-485.; Gibbs J., Greenway H. Mechanisms of anoxia tolerance in plants. I. Growth, survival and anaerobic catabolism. Functional Plant Biology. 2008;(30):1-47.; Malik A.I., Colmer T.D., Lambers H., Setter T.L., Schortemeyer M. Short-term waterlogging has long-term effects on the growth and physiology of wheat. New Phytologist. 2012;(153):225-236.; Pautasso M., Doring T.F., Garbelotto M., Pellis L., Jeger M.J. Impacts of climate change on plant diseases-opinions and trends. European Journal of Plant Pathology. 2012;(133):295-313.; Ванеян С.С., Меньших А.М., Борисов В.А., Маркизов В.А. Влияние режимов орошения и минеральных удобрений на урожайность и сохраняемость свеклы столовой. Картофель и овощи. 2016;(3):15-18. EDN VQFQUV.; Jat M.K., Tetarwal A.S. Effect of changing climate on the insect pest population National Seminar on Sustainable Agriculture and Food Security: Challenges in Changing Climate. 2012.; Das D.K., Singh J., Vennila S. Emerging crop pest scenario under the impact of climate change-a brief review. Journal of Agricultural Physics. 2011;(11):13-20.; Newton A.C., Johnson S.N., Gregory P.J. Implications of climate change for diseases, crop yields and food security. Euphytica. 2011;(179):3-18.; Zhou X., Harrington R., Woiwod I.P., Perry J.N., Bale J.S., et al. Effects of temperature on aphid phenology. Global Change Biology. 2014;(1):303-313.; Hahn D.A., Denlinger D.L. Meeting the energetic demands of insect diapause: nutrient storage and utilization. Journal of Insect Physiology. 2007;(53):760-773.; Harrington R., Fleming R.A., Woiwod I.P. Climate change impacts on insect management and conservation in temperate regions: can they be predicted? Agricultural and Forest Entomology. 2010;(3):233-240.; Mboup M., Bahri B., Leconte M., Vallavieille P.D., Kaltz O., et al. Genetic structure and local adaptation of European wheat yellow rust populations: the role of temperature-specific adaptation. Evolutionary applications. 2012;(5):341-352.; Harvell C.D., Mitchell C.E., Ward J.R., Altizer S., Dobson A.P., et al. Climate warming and disease risks for terrestrial and marine biota. Science. 2006;(296):2158-2162.; Termorshuizen A.J. Climate change and bioinvasiveness of plant pathogens: comparing pathogens from wild and cultivated hosts in the past and the present. Pests and Climate Change. ]2008. pp: 6-9.; Boonekamp P.M. Are plant diseases too much ignored in the climate change debate?. European Journal of Plant Pathology. 2012;(133):291-294.; Солдатенко В.А., Борисов В.А. Экологическое овощеводство. М., Изд-во ФГБНУ ФНЦО, 2022. 504 с. ISBN 978-5-901695-88-3. EDN HBRGMW.; Борисов В.А., Васючков И.Ю., Успенская О.Н. Комплексная оценка различных систем удобрения в экологическом овощеводстве открытого грунта. Агрохимия. 2022;(1):32-38. DOI 10.31857/S0002188122010045. EDN HRXHSX.; Lee S.G., Huh Y.C., Sun Z.Y., Miguel A., King S.R., et al. Cucurbit grafting. Crit Rev Plant Sci. 2008;(27):50-74.; Martinez Rodriguez M.M., Estan M.T., Moyano E., Garcia Abellan J.O., Flores F.B., et al. The effectiveness of grafting to improve salt tolerance in tomato when an ‘excluder’genotype is used as scion. Environmental and Experimental Botany. 2010;(63):392-401.; Bhatt R.M., Rao N.K.S., Harish D.M. Significance of Grafting in Improving Tolerance to Abiotic Stresses in Vegetable Crops Under Climate Change Scenario. In: Climate-Resilient Horticulture: Adaptation and Mitigation Strategies. 2013. pp: 159-175.; He Y., Zhu Z., Yang J., Ni X., Zhu B. Grafting increases the salt tolerance of tomato by improvement of photosynthesis and enhancement of antioxidant enzymes activity. Environmental and Experimental Botany. 2009;(66):270-278.; Lee J.M., Kubota C., Tsao S.J., Bie Z., Echevarria P.H., et al. Current status of vegetable grafting: Diffusion, grafting techniques, automation. Scientia Horticulturae. 2010;(127):93-105.; Yetisir H., Caliskan M.E., Soylu S., Sakar M. Some physiological and growth responses of watermelon [Citrullus lanatus (Thunb.) Matsum. and Nakai] gafted onto Lagenaria siceraria to flooding. Environmental and Experimental Botany. 2006;(58):1-8.; Matsubara S (2012) Studies on salt tolerance of vegetables, 3: Salt tolerance of rootstocks. Scientific Reports of the Faculty of Agriculture Okayama University.; Abdelmageed A.H., Gruda N., Geyer B. Effects of temperature and grafting on the growth and development of tomato plants under controlled conditions. Rural Poverty Reduction through Research for Development and Transformation. 2014.; Altieri M.A., Nicholls C.I., Henao A., Lana M.A. Agroecology and the design of climate change-resilient farming systems. Agronomy for Sustainable Development. 2015;(35):869-890.; Foolad M.R., Zhang L.P., Subbiah P. Genetics of drought tolerance during seed germination in tomato: inheritance and QTL mapping. Genome. 2010;(46):536-545.; Бухарова А.Р., Бухаров А.Ф. Отдаленная гибридизация овощных пасленовых культур. Монография. Мичуринск, 2008. 274 с.; Бухаров А.Ф., Бухарова А.Р. Интрогрессия, гетерозис и адаптогенез в селекции перца. Монография. М., 2011. 292 с.; Fooland M.R., Jones R.A. Genetic analysis of salt tolerance during germination in Lycopersicon. Theoretical and Applied Genetics. 2011;(81):321-326.; Gur A., Zamir D. Unused natural variation can lift yield barriers in plant breeding. PLoSBiol. 2008;(2):e245.; Wang W., Vinocur B., Altman A. Plant responses to drought, salinity and extreme temperatures: towards genetic engineering for stress tolerance. Planta. 2003;(218):1-14.; Sung D.Y., Kaplan F., Lee K.J., Guy C.L. Acquired tolerance to temperature extremes. Trends in Plant science. 2003;(8):179-187.; Hsieh T.H., Lee J.T., Charng Y.Y., Chan M.T. Tomato plants ectopically expressing Arabidopsis CBF1 show enhanced resistance to water deficit stress. Plant Physiology. 2002;(130):618-626.; Пащенко А.И. Каменная Степь. Каменная Степь, 2017. 216 с.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2182

  5. 5
    Academic Journal
  6. 6
    Academic Journal

    المصدر: Агрофизический институт: 90 лет на службе земледелия и растениеводства

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: info:eu-repo/grantAgreement/EC/FP7/17226/EU/Determinarea parametrilor ce caracterizează rezistenţa plantelor cu nivel diferit de organizare la acţiunea temperaturilor extreme în scopul diminuării efectelor schimbărilor climatice./20.80009.7007.07; https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/167033

  7. 7
    Academic Journal

    المصدر: Овочівництво і баштанництво: історичні аспекти, сучасний стан, проблеми і перспективи розвитку (Ediția 8)

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: info:eu-repo/grantAgreement/EC/FP7/17226/EU/Determinarea parametrilor ce caracterizează rezistenţa plantelor cu nivel diferit de organizare la acţiunea temperaturilor extreme în scopul diminuării efectelor schimbărilor climatice./20.80009.7007.07; https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/167013

  8. 8
    Academic Journal
  9. 9
    Academic Journal

    المصدر: Odesa National University Herald. Biology; Vol. 6 No. 1 (2001); 17-22 ; Вестник Одесского национального университета. Биология; Том 6 № 1 (2001); 17-22 ; Вісник Одеського національного університету. Біологія; Том 6 № 1 (2001); 17-22 ; 2415-3125 ; 2077-1746

    وصف الملف: application/pdf

  10. 10
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 3 (2022); 5-15 ; Овощи России; № 3 (2022); 5-15 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/1976/1362; Мамедов М.И. Овощеводство в мире: производство основных овощных культур, тенденция развития за 1993-2013 годы по данным FAO. Овощи России. 2015;(2):3-9. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2015-2-3-9; Стадник А.Т., Чернова С.Г., Ожогова О.В., Целуйко И.Г. Тенденции производства, потребления, импорта овощей и картофеля в Российской Федерации. Культура. Наука. Производство. 2019;(3):79-84.; Приказ Минздрава России от 19 августа 2016 г. No 614 https:// www.rosminzdrav.ru/news/2016/08/26/3128-prikazom-minzdrava-rossii-utverzhdeny-rekomendatsii-po-ratsionalnym-normam-potrebleniya-pischevyh-produktov.; Rahman M., Michalak de Jiménez M. Behind the scenes of microspore-based double haploid development in Brassica napus: A review. J. Plant Sci. Mol. Breed. 2016;(5):1-9. http://dx.doi.org/10.7243/2050-2389-5-1.; Shamekova M.H., Volkov D.V., Zatybekov A.K., Zhambakin K.Zh. Double haploid production of spring rapeseed with the value traits. News of the National Academy of Sciences of the Republic of Kazakhstan. Series of Biological and Medical. 2015;3(309):5-11.; Kozar E., Domblides E. Protocol of European Radish (Raphanus sativus L.) Microspore Culture for Doubled Haploid Plant Production. In: Segui-Simarro J.M. (eds) Doubled Haploid Technology. Methods in Molecular Biology. 2021;(2288). Humana, New York, NY. https://doi.org/10.1007/978-1-0716-1335-1_13; Domblides, E., Shmykova, N., Khimich, G., Korotseva, I., Kan, L., Domblides, A., Pivovarov, V. and Soldatenko, A. Production of doubled haploid plants of Cucurbitaceae family crops through unpollinated ovule culture in vitro. Acta Horticulture. 2020;(1294):19-28. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2020.1294.4; Домблидес Е.А., Ермолаев Е.А., Белов С.Н. Получение удвоенных гаплоидов Cucurbita pepo L. Овощи России. 2021;(4):11-26. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-4-11-26; Zayachkovskaya T., Domblides E., Zayachkovsky V., Kan L., Domblides A., Soldatenko A. Рroduction of gynogenic plants of red beet (Beta vulgaris L.) in unpollinated ovule culture in vitro. Plants. 2021;(10):2703. https://doi.org/10.3390/plants10122703; Романова О.В., Середин Т.М., Романов В.С. Гаплоидия на шнитт-луке (Allium schoenoprasum L.) через гиногенез. В книге: Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и сельскохозяйственной микробиологии. Сборник тезисов докладов 20-й Всероссийской конференции молодых учёных, посвященной памяти академика РАСХН Георгия Сергеевича Муромцева. Москва, 2020. С.74-76. https://doi.org/10.48397/ARRIAB.2020.20.042; Kozar E.V., Domblides E.A., Soldatenko A.V. Embryogenesis of European Radish (Raphanus sativus L. subsp. sativusconvar. radicula) in culture of isolated microspores in vitro. Plants. 2021;(10):2117. https://doi.org/10.3390/plants10102117.; Shmykova N., Domblides E., Vjurtts T., Domblides A. Haploid embryogenesis in isolated microspore culture of carrots (Daucus carota L.). Life. 2021;(11):20. https://doi.org/10.3390/life11010020; Shumilina D., Kozar E., Chichvarina O., Korottseva K., Domblides E. Brassica rapa L. ssp. chinensis isolated microspore culture protocol. in: segui-simarro j.m. (eds) doubled haploid technology. Methods in Molecular Biology. 2021;(2288). Humana, New York, NY. https://doi.org/10.1007/978-1-0716-1335-1_9; Mineykina A., Bondareva L., Soldatenko A., Domblides E. Androgenesis of red cabbage inisolated microspore culture in vitro. Plants. 2021;(10):1950. https://doi.org/10.3390/plants10091950; Domblides E.A., Domblides A.S., Zayachkovskaya T.V., Bondareva L.L. Identification of cytoplasm types in accessions of the Brassicaceae family (Brassicaceae Burnett) by DNA markers. Russian Journal of Genetics: Applied Research. 2016;(6):510-519.; Домблидес А.С. Поиск генисточников признака стерильности у образцов лука репчатого с использованием ДНК маркеров. Овощи России. 2019;(5):15-19. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2019-5-15-19; Кохтенкова И.Г., Скорина В.В., Домблидес, А.С. Идентификация сортов чеснока озимого (Allium sativum L.) с использованием микросателлитных маркеров. Земледелие и растениеводство. 2021;3(136):44-47.; Домблидес А.С., Бондарева Л.Л., Пивоваров В.Ф. Оценка генетического разнообразия образцов капусты кочанной (Вrassica oleracea L.) с использованием SSR маркеров. Сельскохозяйственная биология. 2020;55(5):890-900. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2020.5.890rus; Слугина М.А., Джос Е.А., Щенникова А.В., Кочиева Е.З. содержание сахаров в спелом плоде томата коррелирует с уровнем экспрессии изоформы RIN2I гена Ripening Inhibitor. Физиология растений. 2021;68(6):589-599. https://doi.org/10.31857/S0015330321050195; Slugina M.A., Dzhos E.A., Schennikova A.V., Kochieva E.Z. The sugar content in the tomato ripe fruit correlates with the expression level of the RIN2I isform of the ripening inhibitor gene. Russian Journal of Plant Physiology. 2021;68(6):1038-1047.; Шафигуллин Д.Р., Гинс М.С., Пронина Е.П., Байков А.А. Онтогенетические изменения содержания вторичных метаболитов (спиртои водорастворимых антиоксидантов) в семенах сои овощной. Российская сельскохозяйственная наука. 2021;(2):25-29. https://doi.org/10.31857/S2500262721020058; Ушакова О.В., Молчанова А.В., Бондарева Л.Л. Содержание биологически активных веществ в проростках капусты рода Brassica L. Овощи России. 2021;(1):96-104. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-1-96-104; Антошкина М.С., Голубкина Н.А., Паслова Т.О., Бондарева Л.Л. Особенности обогащения селеном отдельных представителей капустных культур. В сборнике: Фундаментальные основы биогеохимических технологий и перспективы их применения в охране природы, сельском хозяйстве и медицине. Труды XII Международной биогеохимической школы, посвященной 175-летию со дня рождения В. В. Докучаева. Тула, 2021. С.330-334.; Голубкина Н.А., Химич Г.А., Антошкина М.С., Плотникова У.Д., Надежкин С.М., Коротцева И.Б. Особенности каротиноидного состава тыквы Конфетка, перспективы использования. Овощи России. 2021;(1):111-116. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-1-111-116; Кононков П.Ф., Гинс В.К., Гинс М.С., Рахимов М.В. Технология выращивания и переработки листовой массы амаранта как сырья для пищевой промышленности. М.: РУДН, 2008. 195 с.; Гинс М.С. Биологически активные вещества амаранта. М.: РУДН, 2002. 183 с.; Платонова С.Ю., Торрес Миньо К.Х., Гинс Е.М., Гинс М.С., Романова Е.В. Фенологические особенности развития красноокрашеннх сортов амаранта в условиях открытого грунта Московской области с высоким содержанием натурального пигмента амарантина. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Агрономия и животноводство. 2021;15(2):107-117. https://doi.org/10.22363/2312-797X-2021-16-2-107-117; Минзанова С.Т., Миронов В.Ф., Миндубаев А.З., Цепаева О.В., Миронова Л.Г., Милюков В.А., Гинс В.К., Гинс М.С., Кононков П.Ф., Бабаев В.М., Пивоваров В.Ф. Выделение и физико-химические свойства пектиновых полисахаридов из листьев амаранта. Сельскохозяйственная биология. 2021;56(3):591-601. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2021.3.591rus; Гаспарян Ш.В., Масловский С.А., Замятина М.Е., Карпова Н.А., Борисов В.А., Фильрозе Н.А. Технологическая оценка современных сортов и гибридов свеклы столовой как сырья для производства сушеной продукции. Пищевая промышленность. 2021;(1):12-15. https://doi.org/10.24411/0235-2486-2021-10002; Кашнова Е.В. Новый сорт капусты белокочанной сибирской селекции. Заметки ученого. 2021;(12-1):271-275.; Ибрагимбеков М.Г., Давлетбаева О.Р., Ховрин А.Н. Оценка новых сортообразцов лука репчатого в гибридном питомнике в условиях Центральной полосы России. Картофель и овощи. 2022;(1):37-40. https://doi.org/10.25630/PAV.2022.82.14.005; Филюшин М.А., Данилова О.А., Середин Т.М. Идентификация патогенных грибов в луковицах чеснока при хранении и в корневой сфере в период роста растений. Овощи России. 2021;(3):105-109. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-3-105-109; Anisimova O.K., Seredin T.M., Danilova O.A., Filyushin M. First report of fusarium proliferatum causing garlic clove rot in Russian Federation. Plant Dis. 2021. Apr 9. https://doi.org/10.1094/PDIS-12-20-2743-PDN; Енгалычева И.А., Козарь Е.Г., Пронина Е.П., Ушаков В.А. Иммунологическая оценка нового перспективного сорта бобов овощных (Vicia faba L.) Русские белые на устойчивость к наиболее вредоносным фитопатогенам. Российская сельскохозяйственная наука. 2022;(1):8-12. https://doi.org/10.31857/S2500262722010021; Бухаров А.Ф., Балеев Д.Н., Еремина Н.А. Развитие зародыша семян укропа после воздействия кратковременного температурного стресса. Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). 2021;2(59):7-17. https://doi.org/10.31677/2072-6724-2021-59-2-7-17; Мусаев Ф.Б., Белецкий С.Л., Потрахов Н.Н. Разработка компьютерной программы автоматического рентгенографического анализа качества семян овощных культур. Биология растений и садоводство: теория, инновации. 2021;3(160):86-95. https://doi.org/10.36305/2712-7788-2021-3-160-86-95; Мастяев И.С., Агафонов А.Ф., Кривенков Л.В., Подорогин В.А., Ушаков В.А. Влияния сроков, схемы, глубины посадки и размера маточных луковиц на продуктивность семенных растений и качество семян лука репчатого в условиях Предгорной зоны Северного Кавказа. Овощи России. 2022;(1):55-62. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2022-1-55-62; Способ стимуляции повышения всхожести семян. Патент на изобретение 2746803 C1. 21.04.2021. Зеленков В.Н., Бекузарова С.А., Косолапов В.М., Иванова М.И., Алексеева К.Л., Латушкин В.В., Разин О.А., Заявка No 2020120268 от 18.06.2020; Способ предпосевной обработки семян однолетних сельскохозяйственных культур / Патент на изобретение 2752532 C1, 29.07.2021. Зеленков В.Н., Бекузарова С.А., Потапов В.В., Иванова М.И., Косолапов В.М., Латушкин В.В., Разин А.Ф., Алексеева К.Л. Заявка No 2020120220 от 18.06.2020.; Борисов В.А., Успенская О.Н., Васючков И.Ю. Урожайность и качество овощных культур при использовании минеральной, органической и органо-минеральнойсистемудобрения. Агрохимия.2021;(12):42-46. https://doi.org/10.31857/S000218812112005X; Борисов В.А., Коломиец А.А., Васючков И.Ю., Бебрис А.Р. Продуктивность и качество репчатого лука при использовании минеральных удобрений, биокомпостов и регуляторов роста. Овощи России. 2021;(5):39-43. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-5-39-43; Успенская О.Н., Борисов В.А., Васючков И.Ю., Коломиец А.А., Костенко Г.А. Влияние минеральных удобрений на качество капусты белокочанной. Плодородие. 2021;4(121):22-25. https://doi.org/10.25680/S19948603.2021.121.07; Борисов В.А., Меньших А.М., Соснов В.С. Урожайность и качество перца сладкого при комплексном применении удобрений и орошения на обыкновенных черноземах. Картофель и овощи. 2021;(10):21-23. https://doi.org/10.25630/PAV.2021.35.63.007; Рябчикова Н.Б. Сравнительная оценка фолиарных обработок растений дыни водорастворимыми удобрениями и регуляторами роста. Известия ФНЦО. 2021;(3-4):94-100. https://doi.org/10.18619/2658-4832-2021-3-4-94-100; Рябчикова Н.Б., Быкова М.В., Бочерова И.Н. Сравнительная оценка фолиарных обработок растений арбуза столового водорастворимыми удобрениями и регуляторами роста. Бюллетень Государственного Никитского ботанического сада. 2021;(139):125-134. https://doi.org/10.36305/0513-1634-2021-139-125-134; Галичкина Е.А., Быкова М.В., Надежкин С.М., Цирульникова Н.В. Эффективность применения различных видов удобрений и способов их использования при выращивании арбуза столового. Овощи России. 202;(5):49-53. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-5-49-53; Енгалычева Н.А., Енгалычев Д.И., Алексеева К.Л. Эффективность применения гидрогеля при выращивании рассады огурца для открытого грунта. Известия ФНЦО. 2021;(1-2):84-89. https://doi.org/10.18619/2658-4832-2021-1-2-84-89; Пивоваров В.Ф., Надежкин С.М., Солдатенко А.В., Воронкин Е.В. Влияние длительного применения удобрений на плодородие чернозема выщелоченного, урожайность и качество овощных культур. Плодородие. 2021;3(120):89-92. https://doi.org/10.25680/S19948603.2021.120.17; Нестерова О.В., Семаль В.А., Бовсун М.А., Васенев И.И., Брикманс А.В., Карпенко Т.Ю., Сакара Н.А. Изменение свойств агропочв юга Дальнего Востока России при внесении биоугля. Агрохимический вестник. 2021;(5):18-23. https://doi.org/10.24412/1029-2551-2021-5-004; Ерошевская А.С. Оценка прохождения фенофаз томата на многоярусных установках «Фитопирамида». Овощи России. 2021;(5):54-58. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-5-54-58; Балашова И.Т., Беспалько Л.В., Молчанова А.В., Сирота С.М., Солдатенко А.В. Биохимический состав ряда лекарственных растений при культивации на многоярусных гидропонных конструкциях. В книге: Ароматические и лекарственные растения: интродукция, селекция, агротехника, биологически активные вещества, влияние на человека. Тезисы международной научно-практической конференции. Никитский ботанический сад – Национальный научный центр РАН. Симферополь, 2021. С.8.; Mishurov N.P., Selivanov V.G., Devochkina N.L., Rubtsov A.A. High-tech production of edible mushrooms on an industrial basis in the Russian Federation. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. Mechanization, engineering, technology, innovation and digital technologies in agriculture. 2021;(3):032080.; Девочкина Н.Л., Мукиенко С.В., Дугуниева Л.Г. Шиитаке. Введение в промышленную культуру дереворазрушающего экзотического гриба долголетия. Картофель и овощи. 2021;(5):17-20. https://doi.org/10.25630/PAV.2021.42.11.002; Алексеева К.Л., Сметанина Л.Г., Енгалычева Н.А., Енгалычев Д.И., Селиванов В.Г. Современные технологии интегрированно защиты тепличных овощных культур от болезней и вредителей. М.2021. 96 с.; Маркарова А.Э., Маркарова М.Ю., Разин О.А., Надежкин С.М. Совершенствование элементов технологии выращивания капусты белокочанной в Нечерноземной зоне России. Известия ФНЦО. 2021;(3-4)84-88. https://doi.org/10.18619/2658-4832-2021-3-4-84-88.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/1976

  11. 11
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 2 (2022); 72-87 ; Овощи России; № 2 (2022); 72-87 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/1958/1359; Sopeña F.M.C., Morillo E. Controlled release formulations of herbicides based on micro-encapsulation, Literature Review. Cien. Invas. Agr. 2009;35(1):27-42.; Kraehmer H., Baur P. Weed anatomy. London: Wiley-Blackwell, 2013. 504 p.; Rao S. Principles of weed science. 2ed. New York: Science Publishers, 2000. 526 p.; Hussein H.F. Estimation of critical period of crop-weed competition and nutrient removal by weeds in onion (Allium cepa L.) in sandy soil. Egypt. J. Agron. 2001;24(1):43-62.; Oerke E.C. Crop losses to pests. J. Agric. Sci. 2006;144(1):31-43.; Sharma A.R. Weed management in conservation agriculture systems-problems and prospects. In National Training on Advances in Weed Management, held at DWSR, Jabalpur on 14–23 January. 2014. P.1–9.; Bahadur S, Verma S.K., Prasad S.K, Madane A.J., Maurya S.P.,Verma V.K. and Sihag S.K. Eco-friendly weed management for sustainable crop production A review. J Crop and Weed. 2015;11(1):181–189.; Спиридонов Ю.А., Шестаков В.Г. Рациональная система поиска и отбора гербицидов на современном этапе. М., ВНИИФ, РАСХН, 2006. 266 с.; Candidoa V. Weed control and yield response of soil solarization with different plastic films in lettuce. Sci. Hortic. 2011;130(3):491-497.; Filizadeh Y., Rezazadeh A. and Younessi Z. Effects of crop rotation and tillage depth on weed competition and yield of rice in the paddy fields of northern. Iran J Agri Sci Tech. 2007;(9):99–105.; Marshall E.J.P., Brown V.K., Boatman N.D., Lutman P.J.W., Squire G.R. and Ward L.K. The role of weeds in supporting biological diversity within crop fields. Weed Res. 2003;(43):77–89.; Garrison A.J., Miller A.D., Ryan M.R., Roxburgh S.H. and Shea K. Stacked crop rotations exploit weed-weed competition for sustainable weed management. Weed Sci. 2014;(62):166–176.; Baker B.P. and Mohler C.L. Weed management by upstate New York organic farmers: strategies, techniques and research priorities. Renew. Agric Food Syst. 2014. http://dx.doi.org/10.1017/S1742170514000192.; Gonzalez-Diaz L., Van Den Berg F., Van Den Bosch F. and Gonzalez-Andújar J.L. Controlling annual weeds in cereals by deploying crop rotation at the landscape scale: Avena sterilis as an example. Ecol Appl. 2012;(22):982–992.; Feizabady A.Z. Effects of crop rotation and residue management on bread wheat. African J Plant Sci. 2013;7(5):176–184.; Davis A.S. and Liebman M. Cropping system effects on giant foxtail (Setaria faberi) demography: green manure and tillage timing. Weed Sci. 2003;(51):919–929.; Buhler D.D. Challenges and opportunities for integrated weed management. Weed Sci. 2002;(50):273–280.; Chamanabad H.R.M., Ghorbani A., Asghari A., Tulikov A.M. and Zargarzadeh F. Long-term effects of crop rotation and fertilizers on weed community in spring barley. Turk J Agric. 2009;(33):315–323.; Arentoft B.W., Ali A., Streibig J.C. and Andreasen C. A new method to evaluate the weed-suppressing effect of mulches: a comparison between spruce bark and cocoa husk mulches. Weed Res. 2013;(53):169–175.; Yeganehpoor F., Salmasi S.Z., Abedi G., Samadiyan F. and Beyginiya V. Effects of cover crops and weed management on corn yield. J Saudi Society of Agric Sci. 2015;14(2):178–181.; Talebbeigi R.M. and Ghadiri H. Effects of cowpea living mulch on weed control and maize yield. J Biol Env Sci. 2012;6(17):189–193.; Mirsky S.B.,Gallandt E.R., Mortensen D.A., Curran W.S. and Shumway D.L. Reducing the germinable weed seed bank with soil disturbance and cover crops. Weed Res. 2010;(50):341–352.; Altieri M.A., Lana M.A., Bittencourt H.V., Kieling A.S., Comin J.J. and Lovato P.E. Enhancing crop productivity via weed suppression in organic no-till cropping systems in Santa Catarina. Brazil J Sustain Agric. 2011;(35):855–869.; Haramoto E.R. and Gallandt E.R. Brassica cover cropping for weed management: a review. Renew. Agric. Food Syst. 2004;(19):187–198.; Dube E., Chiduza C., Muchaonyerwa P., Fanadzo M. and Mthoko T. Winter cover crops and fertiliser effects on the weed seed bank in a low-input maize-based conservation agriculture system. South Afr J Plant Soil. 2012;(29):195–197.; Graglia E., Melander B. and Jensen R.K. Mechanical and cultural strategies to control Cirsium arvense in organic arable cropping system. Weed Res. 2006;(46):304–312.; Liebman M. and Davis A.S. Integration of soil, crop, and weed management in low external-input farming systems. Weed Res. 2000;(40):27–47.; Jordan N.R., Zhang J. and Huerd S. Arbuscular-mychorrhizal fungi: potential roles in weed management. Weed Res. 2000;(40):397–410.; Thorsted M.D., Olesen J.E. and Weiner J. Width of clover strips and wheat rows influence grain yield in winter wheat/white clover intercropping. Field Crops Res. 2006;(95):280–290.; Yousefi A.R. and Rahimi M.R. Integration of soil-applied herbicides at the reduced rates with physical control for weed management in fennel (Foeniculum vulgare Mill.). Crop Prot. 2014;(63):107–112.; Jamshidi K., Yousefi A.R. and Oveisi M. Effect of cowpea intercropping on weed biomass and maize yield. New Zeal. J Crop Hort. 2013;41(4):180–188.; Steinmaus S., Elmore C.L. and Smith R.J. Mulched cover crops as an alternative to conventional weed management systems in vineyards. Weed Res. 2008;(48):273–281.; Hollander N.G., Bastiaans L. and Kropff M.J. Clover as a cover crop for weed suppression in an intercropping design. I. Characteristics of several clover species. Eur J Agron. 2007;26(2):92–103.; Yadollahi P., Borjibbad A.R., Khaje M., Reza M., Asgharipour and Amiri A. Effect of intercropping on weed control in sustainable agriculture. Int J Agric and Crop Sci. 2014;7(10):683–686.; Saudy H.S. Maize-cowpea intercropping as an ecological approach for nitrogenuse rationalization and weed suppression. Archives of Agron Soil Sci. 2015;(61):1–14.; Mason H.E. and Spaner D. Competitive ability of wheat in conventional and organic management systems: A review of the literature. Can J Plant Sci. 2006;(86):333–343.; Matloob A., Khaliq and Chauhan B.S. Weeds of rice in Asia: problems and opportunities. Adv. Agron. 2014. P. 130. http://dx.doi.org/10.1016/bs.agron.; Khaliq A. and Matloob A. Weed crop competition period in three fine rice cultivars under direct seeded rice culture. Pak J Weed Sci Res. 2011;(17):229–243.; Abdolraheem S. and Saeedipour S. Influence of seeding rate and reduced doses of super gallant herbicide on weed control, yield and component yield of mungbean. Research J Env Sci. 2015;(9):241–248.; Olsen J.M., Griepentrog H.W., Nielsen J. and Weiner J. How important are crop spatial pattern and density for weed suppression by spring wheat. Weed Sci. 2012;(60):501–509.; Kristensen L., Olsen J. and Weiner J. Crop density, sowing pattern, and nitrogen fertilization effects on weed suppression and yield in spring wheat. Weed Sci. 2008;(56):97–102.; Mahajan G. and Chauhan B.S. The role of cultivars in managing weeds in dry seeded rice production systems. Crop Prot. 2013;(49):52–57.; Krikland K.J., Holm F.A. and Stevenson F.C. Appropriate crop seeding rate when herbicide rate is reduced. Weed Tech. 2000;(14):692–698.; Fanadzo M., Chiduza C. and Mnkeni P.N.S. Effect of inter-row spacing and plant population on weed dynamics and maize yield at Zanyokwe irrigation scheme, Eastern Cape, South Africa. African J Agric Res. 2010;5(7):518–523.; Drews S., Neuhoff D. and Kopke U. Weed suppression ability of three winter wheat varieties at different row spacing under organic farming conditions. Weed Res. 2009;(49):526–533.; Борисов В.А. Система удобрения овощных культур. М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2016. 392 с.; Abouziena H.F., Hafez O.M., El-Metwally I.M., Sharma S.D. Comparison of weed suppression and mandarin fruit yield and quality obtained with organic mulches, synthetic mulches, cultivation, and glyphosate. Hort Sci. 2008;(43):795–799.; Major J., Steiner C., Ditommaso A., Falcao N.P. and Lehmann J. Weed composition and cover after three years of soil fertility management in the central Brazilian Amazon: compost, fertilizer, manure and charcoal applications. Weed Biol Manag. 2005;(5):69–76.; Blackshaw R.E., Molnar L.J. and Janzen H.H. Nitrogen fertilizer timing and application method affect weed growth and competition with spring wheat. Weed Sci. 2004;(52):614–622.; Dahal, Saugat and Tika B.K. Conservation agriculture based practices affect the weed dynamics in spring maize. World J Agric Res. 2014;2(6A):25–33.; Khankhane P.J., Barman K.K. and Varshney J.G. Effect of rice residue management practices on weed density, wheat yield and soil fertility in a swell-shrink soil. Ind J Weed Sci. 2009;(41):41–45.; Brar A.S. and Walia U.S. Rice residue management and planting techniques on herbicidal efficiency in relation to wheat productivity. In National Symposium on Integrated Weed Management in the Era of Climate Change, held at NAAS, New Delhi on 21–22 August, 2010. P. 7.; Chauhan B.S. Weed ecology and weed management strategies for dry-seeded rice in Asia. Weed Tech. 2012;(26):1–13.; Singh R. Weed management in major kharif and rabi crops. In National Training on Advance in Weed Management, held at DWSR, Jabalpur, on 14–23 January, 2014. pp. 31–40.; Gianessi L.P., Reigner N.P. Review: the value of herbicides in U.S. Crop Production. Weed Technol. 2007;21(2):559-566.; Carr P.M., Gramig G.G. and Liebig M.A. Impacts of organic zero tillage systems on crops, weeds, and soil quality. Sustainability. 2013;5:3172–3201.; Han H., Ning T. and Li Z. Effects of tillage and weed management on the vertical distribution of microclimate and grain yield in a winter wheat field. Plant Soil Env. 2013;59(5:201–207.; Sharma V. and Angiras N. Effect of row orientations, row spacing and weed control methods on light interception, canopy temperature and productivity of wheat. Ind J Agron. 1996;(41):390–396.; Sans F.X., Berner A., Armengot L. and Mader P. Tillage effects on weed communities in an organic winter wheat–sunflower–spelt cropping sequence. Weed Res. 2011;(51):413–421.; Литвинов С.С. Научные основы современного овощеводства. М., ВНИИО, РАСХН, 2008. 771 с.; Peter J.D., Monks W. and Katherine M.J. Effect of drip-applied herbicides on yellow nutsedge in plasticulture. Weed Tech. 2012;26(2):243–247.; Towa J.J. and Xiangping G. Effects of irrigation and weed control methods on growth of weed and rice. Int J Agric and Biol Eng. 2014;7(5):22–33.; Verma S.K. Enhancing sustainability in wheat production though irrigation regimes and weed management practices in eastern Uttar Pradesh. The Ecoscan, Special Issue. 2014;(6):115–119.; Daniel J.T., Templeton G.M., Smith R.J. and Fox W.T. Biological control of northern jointvetch in rice with an endemic fungal disease. Weed Sci. 1973;21(4):303–307.; Gnanavel I. Eco-friendly weed control options for sustainable agriculture. Sci International. 2015;3(2):37–47.; Kumar M., Ghorai A.K., Majumdar B., Mitra S. and Kundu D.K. Integration of Stale Seedbed with Herbicides for Weed Management in Jute and their Impact on Soil Microbes. J Agri Search. 2015;2(1):24–27.; Inderjit, Keating, K.I. Allelopathy: principles, procedures, processes, and promises for biological control. Adv. Agron. 1999;(67):141-231.; Grossman K., Hutzler J., Tresch S., Christiansen N., Looser R., Ehrhardt T. On the mode of action of the herbicides cinmethylin and 5-benzyloxymethyl-1,2-isoxazolines: putative inhibitors of plant tyrosine aminotransferase. Pest Manag. Sci. 2012;68(3):482-491.; Bingaman B.R., Christians N. E. Greenhouse screening of corn gluten meal as a natural control product for broadleaf and grass weeds. HortScience. 1995;30(6):12561259.; Meksawat S., Pornprom T. Allelopathic effect of itchgrass (Rottboellia cochinchinensis) on seed germination and plant growth. Weed Biol. Manage. 2010;10(1):16-24.; Sodaeizadeh H. and Hossein Z. Allelopathy an Environmentally Friendly Method for Weed Control. International Conference on Applied Life Sciences (ICALS 2012), Turkey, September 10–12, 2012. Pp. 387–392.; Zeng R.S. Allelopathy the solution is indirect. J Chem Ecol. 2014;(40):515–516.; Farooq M., Jabran K., Cheema Z.A., Wahid A. and Siddique K.H.M. Role of allelopathy in agricultural pest management. Pest Manag Sci. 2011;(67):494–506.; Narwal S.S. and Haouala R. Role of allelopathy in weed management for sustainable agriculture. Allelopathy, Current Trends and Future Application Ed. Cheema, Farooq M and Wahid A. 2013. Pp 217–250.; Smeda R.J. and Weller S.C. Potential of rye for weed management in transplanted tomatoes. Weed Sci. 1996;(44):596–602.; Wu H. Molecular approaches in improving wheat allelopathy. In: Harper J.D.I., An M., Wu H., Kent J.H. (eds.), Proceedings of fourth world congress on allelopathy. 2005.; Zimdahl R.L. Fundamentals of weed science. Waltham MA: Academic Press, 2013. Pp. 295–344.; Ascard J., Hatcher P.E., Melander B. and Upadhyay M.K. Thermal weed control. (Eds M. K. Upadhaya & R.E. Blackshaw). Non-chemical weed management. Principles, Concepts and technology. CABI, London, UK. 2007.; Pinel M.P.C., Bond W. and White J.G. Control of soil-borne pathogens and weeds in leaf salad monoculture by use of a self-propelled soil-steaming machine. Acta Hortic. 2000;532(14):125-130. DOI:10.17660/ActaHortic.2000.532.14; Hansson D., Svensson S.E. Steaming soil in narrow strips for intra-row weed control in sugar beet. In: EWRS workshop on physical and cultural weed control, 6, Lillehammer, 2004.; Sjursen H., Netland J. Thermal weed control by steaming in vegetable crops. In: 6th EWRS Workshop on Physical and Cultural Weed Control, 6., Lillehammer, 2004. Proceedings. Lillehammer: 2004. P. 179.; De-cauwer B., Bogaert S., Claerhout S., Bulcke R. and Reheul D. Efficacy and reduced fuel use for hot water weed control on pavements. Weed Res. 2015;(55):195–205.; Rask A.M., Kristofferrsen P. and Andreasen C. Controlling grassy weeds on hard surface: effect of time intervals between flam treatments. Weed Tech. 2012;(26):83–88.; Brodie G., Ryan C. and Lancaster C. Microwave technologies as part of an integrated weed management strategy: a review. Int J Agron. 2011. doi:10.1155/2012/ 636905.; Andreasen C., Hansen L. and Streibig J.C. The effect of ultraviolet radiation on the fresh weight of some weeds and crops. Weed Tech. 1999;(13):554–560.; Diprose M.F. and Benson F.A. Electrical methods of killing plants. J Agric Eng Res.1984;(29):197–209.; Johnson W.C., Benjamin G. and Mullinix J.R. Weed management in peanut using stale seedbed techniques. Weed Res. 1995;43(2):293–297.; Haidar M.A., Sidahmed M.M. Soil solarization and chicken manure for the control of Orobanche crenata and other weeds in Lebanon. Crop Protec. 2000;19(1):169-173.; Culman S.W., Duxbury J.M., Lauren J.G. and Thies J.E. Microbial community response to soil solarization in Nepal's rice-wheat cropping system. Soil Biol Biochem. 2006;(38):3359–3371.; Benlloglu S., Boz O., Yildiz A., Kaskavalci G. and Benlioglu K. Alternative soil solarization treatments for the control of soil-borne diseases and weeds of strawberry in the Western Anatolia of Turkey. J Phytopathol. 2005;(153):423–430.; Stapleton J.J. Soil solarization in various agricultural production systems. Crop Prot. 2000;(19):837–841.; Vito M.D., Zaccheo G., Catalano F., Campanelli R. Effect of soil solarization and low doses fumigants control of the root-knot nematode Meloidogyne incognita. Acta Hortic. 2000;532(1):171-173.; Silva P.V., Monquero P.A., Silva F.B., Bevilaqua N.C., Malardo M.R. Influence of sugarcane straw and sowing depth on the emergence of weed species. Planta Daninha. 2015;33(3):405-412.; Riley H., Brandsæter L.O., Danielsberg G. Mulching compared to physical weed control measures in organically grown vegetables. In: EWRS Workshop on Physical and Cultural Weed Control, 6., 2004, Lillehammer. Proceedings. Lillehammer: 2004.; Kurtar E.S., Cývelek C. Influences of organic and conventional fertilizing and mulching on yield and quality of melon and watermelon under protected cultivation. In: International conference on organic agriculture in scope of environment problems, 2010, Famagusta. Proceedings. Famagusta: 2010. P. 51-54.; Abdul-Baki A.A., Teasdale J.M. A non-tillage tomato production system using hairy vetch and subterranean clover mulched. Hortic. Sci. 1993;28(2):106-108.; Hussein H.F., Radwan S.M.A. Associative action between bio-organic farming & safety weed control methods on pea productivity. In: Symposium on scientific research and technological development outlook in the arab world, 3, 2004, Cairo. Proceedings. Cairo: 2004.; McMillen M. The effect of mulch type and thickness on the soil surface evaporation rate. San Luis Obispo: Horticulture and Crop Science Department/California Polytechnic State University, 2013. P.1-14.; Берназ Н.И., Дунаева Ю.С. Перспективная система защиты свеклы от сорняков. Картофель и овощи. 2008;3:34-35.; Берназ Н.И., Ирков И.И. Гербициды на капусте при безрассадном способе выращивания. Картофель и овощи. 2018;8:17-18.; Берназ Н.И. Эффективность гербицидов в посевах моркови. Вестник овощевода. 2012;4:25.; Ирков И.И., Берназ Н.И., Багров Р.А., Алексеева К.Л. Защита лука. Картофель и овощи. 2016;7:14-17.; Pot V., Benoit P., Menn M.L., Eklo O.-M., Sveistrup T., Kværner J., Metribuzin transport in undisturbed soil cores under controlled water potential conditions: experiments and modeling to evaluate the risk of leaching in a sandy loam soil profile. Pest Manage Sci. 2011;67(4):397-407.; Kewat M.L. Improved weed management in Rabi crops. National Training on Advances in Weed Management, 2014. Pp. 22–25.; Jabran K., Mahajan G., Sardana V. and Chauhan B.S. Allelopathy for weed control in agricultural systems. Crop Prote. 2015;(72):57–65.; Duke S. Why have no new herbicide modes of action appeared in recent years? Pest Management Science. 2012;(68):505–512.; Bechar A. and Vigneault C. Agricultural robots for field operations. part 2: Operations and systems. Biosystems Engineering. 2017;(153):110–128.; Utstumo T., Urdal F., Brevik A., Dоrum J., Netland J., Overskeid О., Berge T.W., Gravdahl J.T. Robotic in-row weed control in vegetables. Computers and Electronics in Agriculture. 2018;(154):36-45. DOI:10.1016/j.compag.2018.08.043.; Kunz C., Weber J.F., Peteinatos G.G., Sokefeld M., and Gerhards R. Camera steered mechanical weed control in sugar beet, maize and soybean. Precision Agriculture. 2018;19(4):708–720.; Young S. L. Beyond precision weed control: A model for true integration. Weed Technology. 2018;32(1):7–10.; Wang P., Lombi E., Zhao F.J., Kopittke P.M. Nanotechnology: a new opportunity in plant science. Trends Plant Sci. 2016;(21):699-712.; Zhao X., Cui H., Wang Y., Sun C., Cui B., Zeng Z. Development Strategies and Prospects of Nano-based Smart Pesticide Formulation. J. Agric. Food Chem. 2018;(66):6504-6512.; de Oliveira J.L., Ramos C.E.V., Fraceto L.F. Recent Developments and Challenges for Nanoscale Formulation of Botanical Pesticides for Use in Sustainable Agriculture. J. Agric. Food Chem. 2018;(66):8898–8913.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/1958

  12. 12
    Academic Journal

    المساهمون: The research has been carried out based on the results of a separate research project of the National Academy of Sciences of Belarus on the topic of “System of measures to develop the vegetable seed market of the Republic of Belarus, taking into account self-sufficiency and export potential”., Исследование выполнено по результатам отдельного проекта научных исследований Национальной академии наук Беларуси по теме «Разработка системы мер по развитию рынка семян овощных культур Республики Беларусь с учетом самообеспечения и экспортного потенциала».

    المصدر: Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus. Agrarian Series; Том 60, № 3 (2022); 263-278 ; Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия аграрных наук; Том 60, № 3 (2022); 263-278 ; 1817-7239 ; 1817-7204 ; 10.29235/1817-7204-2022-60-3

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/645/575; FAOSTAT. Data [Electronic resource] // Food and Agriculture Organization of the United Nations. – Mode of access: http://www.fao.org/faostat/en/#data. – Date of access: 19.12.2021.; Гусаков, Г. В. Комплексная система управления продовольственной безопасностью. Методологические и методические решения / Г. В. Гусаков. – Минск : Беларус. навука, 2018. – 209 с.; Гусаков, Г. Экологизация сельского хозяйства: мифы и реальность / Г. Гусаков // Наука и инновации. – 2020. – № 2 (204). – С. 24–31.; Сельское хозяйство Республики Беларусь [Электронный ресурс] : стат. сб. / Нац. стат. ком. Респ. Беларусь. – Минск, 2021. – Режим доступа: https://www.belstat.gov.by/upload/iblock/241/241db6e8c9671732fede4b275828d2ae.pdf. – Дата доступа: 10.09.2021.; Развитие семеноводства овощных культур в Беларуси / А. Чайковский [и др.] // Наука и инновации. – 2020. – № 7 (209). – С. 79–83.; Экспорт и импорт товаров в 2020–2021 гг. (6 знаков ТН ВЭД ЕАЭС) [Электронный ресурс] // Нац. стат. ком. Респ. Беларусь. – Режим доступа: https://www.belstat.gov.by/ofitsialnaya-statistika/realny-sector-ekonomiki/vneshnyayatorgovlya/godovye-dannye/eksport-i-import-tovarov-6-znakov-tn-ved-eaes/2020-2021/. – Дата доступа: 10.09.2021.; Макуценя, Е. П. Оценка внешнеторговых потоков семян овощных культур Республики Беларусь на мировом рынке / Е. П. Макуценя // Экономические вопросы развития сельского хозяйства Беларуси : межведомств. темат. сб. / Ин-т систем. исслед. в АПК НАН Беларуси. – Минск, 2021. – Вып. 49. – С. 257–272. https://doi.oirg/10.47612/0132-3555-2021-49; Карпович, Н. В. Развитие внешней торговли сельскохозяйственной продукцией и продовольствием Беларуси с учетом степени переработки товаров / Н. В. Карпович, Е. П. Макуценя // Аграр. экономика. – 2021. – № 9 (316). – С. 53–63. https://doi.org/10.29235/1818-9806-2021-9-53-63; Пилипук, А. В. Конкурентоспособность предприятий пищевой промышленности Беларуси в условиях построения Евразийского экономического союза / А. В. Пилипук; под ред. В. Г. Гусакова. – Минск : Ин-т систем. исслед. в АПК НАН Беларуси, 2018. – 237 с.; Клименко, Н. Н. Семеноводство овощных культур: дальнейший регресс или развитие? / Н. Н. Клименко // Картофель и овощи. – 2022. – № 1. – С. 4–9.; Макрак, С. В. Развитие рынка семян овощных культур в Республике Беларусь на основе инструментов государственного регулирования / С. В. Макрак // Аграр. экономика. – 2022. – № 4 (323). – С. 32–46. https://doi.org/10.29235/1818-9806-2022-4-32-46; Гусаков, Г. Сельское хозяйство: прошлое, настоящее, будущее / Г. Гусаков // Наука и инновации. – 2019. – № 5 (195). – С. 68–73.; Гусаков, Г. Сельское хозяйство: прошлое, настоящее, будущее / Г. Гусаков // Наука и инновации. – 2019. – № 6 (196). – С. 69–74.; Assosementi: Associazione Italiana Sementi [Electronic resource]. – Mode of access: http://www.sementi.it/. – Date of access: 10.01.2022.; Valstybinė Augalininkystės Tarnyba Prie Žemės Ūkio Ministerijos [Electronic resource]. – Mode of access: http://www.vatzum.lt/. – Date of access: 10.02.2022.; О законодательстве зарубежных стран и Российской Федерации в части государственного регулирования в области семеноводства сельскохозяйственных растений [Электронный ресурс] // Россельхознадзор. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/fsvps-docs/ru/news/files/5890/1.pdf. – Дата доступа: 15.01.2022.; Расторгуев, П. В. Регулирование качества семян овощных культур в Беларуси / П. В. Расторгуев, И. Г. Почтовая, Е. А. Расторгуева // Экономические вопросы развития сельского хозяйства Беларуси : межведомств. темат. сб. / Ин-т систем. исслед. в АПК НАН Беларуси. – Минск, 2021. – Вып. 49. – С. 305–317. https://doi.org/10.47612/0132-3555-2021-49; Федеральная государственная информационная система в сфере семеноводства сельскохозяйственных растений (ФГИС «Семеноводство») [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://semena.mcx.ru/. – Дата доступа: 15.01.2022.; Единые требования в сфере производства и обращения растениеводческой продукции [Электронный ресурс] // Евразийская экономическая комиссия. – Режим доступа: http://www.eurasiancommission.org/ru/act/prom_i_agroprom/dep_agroprom/ed_treb/Pages/crop-production.aspx. – Дата доступа: 15.03.2022.; Syngenta. Россия [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.syngenta.ru. – Дата доступа: 13.01.2022.; https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/645

  13. 13
  14. 14
    Academic Journal

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Техническое и кадровое обеспечение инновационных технологий в сельском хозяйстве : материалы Международной научно-практической конференции, Минск, 16–17 октября 2024 г. : в 2 ч. Ч. 1.; https://rep.bsatu.by/handle/doc/22299; 635.1:631.51.017

  15. 15
    Academic Journal

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Яхновец, М.Н. Влияние листовой фитомассы Acer Negundo и Robinia Pseudoacacia на культурные растения в полевых условиях / М.Н. Яхновец // Веснік Віцебскага дзяржаўнага ўніверсітэта. - 2024. - № 2. - С. 53-61.; https://rep.polessu.by/handle/123456789/31781

  16. 16
    Academic Journal

    المؤلفون: Яхновец, М. Н.

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Яхновец, М. Н. Влияние листовой фитомассы Acer Negundo и Robinia Pseudoacacia на культурные растения в полевых условиях / М. Н. Яхновец // Веснік Віцебскага дзяржаўнага ўніверсітэта. – 2024. – № 2. – С. 53-61.; d64a7b9fb739aebc29cbf889b91115a8; https://rep.vsu.by/handle/123456789/43843

  17. 17
    Academic Journal

    المؤلفون: Харитонова, И. Б.

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Харитонова, И. Б. Исследование химического состава и определение биологически активных веществ в некоторых овощных культурах / И. Б. Харитонова // Технология органических веществ : материалы 88-й науч.-технич. конф. профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов (с международным участием), Минск, 29 января – 16 февраля 2024 г. – Минск: БГТУ, 2024. – С. 411-414.; https://elib.belstu.by/handle/123456789/65327; 637

  18. 18
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 4 (2021); 57-64 ; Овощи России; № 4 (2021); 57-64 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/1795/1290; Пивоваров В.Ф., Разин А.Ф., Иванова М.И., Мещерякова Р.А., Разин О.A., Сурихина Т.Н., Лебедева Н.Н. Нормативно-правовое обеспечение рынка органической продукции (в мире, странах ЕАЭС, России). Овощи России. 2021;(1):5-19. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-1-5-19; Солдатенко А.В., Пивоваров В.Ф., Разин А.Ф., Мещерякова Р.А., Шатилов М.В., Иванова М.И., Тактарова С.В., Разин О.А. Экономика овощеводства: состояние и современность. Овощи России. 2018;(5):63-68. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2018-5-63; Солдатенко А.В., Разин А.Ф., Пивоваров В.Ф., Шатилов М.В., Иванова М.И., Россинская О.В., Разин О.А. Овощи в системе обеспечения продовольственной безопасности России. Овощи России. 2019;(2):9-15. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2019-2-9-15; Cassidy E.S., West P.C., Gerber J.S., Foley J.A. Redefining agricultural yields: From tonnes to people nourished per hectare. Environ. Res. Lett. 2013;(8):034015.; Chapagain A., Hoekstra A. The blue, green and grey water footprint of rice from production and consumption perspectives. Ecol. Econ. 2011;(70):749–758.; Conley D.J., Paerl H.W., Howarth R.W., Boesch D.F., Seitzinger S.P., Karl E., Lancelot C., Gene E. Controlling eutrophication: Nitrogen and phosphorus. Science. 2009;(123):1014–1015.; Deurer M., Green S.R., Clothier B.E., Mowat A. Can product water footprints indicate the hydrological impact of primary production? - A case study of New Zealand kiwifruit. J. Hydrol. 2011;(408):246–256.; Fader M., Gerten D., Thammer M., Heinke J., Lotze-Campen H., Lucht W., Cramer W. Internal and external green-blue agricultural water footprints of nations, and related water and land savings through trade. Hydrol. Earth Syst. Sci. 2011;(15):1641–1660.; Franke N.A., Boyacioglu H., Hoekstra A.Y. Grey Water Footprint Accounting: Tier 1 Supporting Guidelines; Value of Water Research Report Series No. 65; UNESCO-IHE: Delft, The Netherlands, 2013.; Ghufran M.A., Batool A., Irfan M.F., Butt M.A., Farooqi A. Water footprint of major cereals and some selected minor crops of Pakistan. J. Water Resour. Hydraul. Eng. 2015;(4):358–366.; Hanasaki N., Inuzuka T., Kanae S., Oki T. An estimation of global virtual water flow and sources of water withdrawal for major crops and livestock products using a global hydrological mode. J. Hydrol. 2010;(384):232–244.; Harris F., Moss C., Joy E.J.M., Quinn R., Scheelbeek P.F.D., Dangour A.D., Green R. The Water Footprint of Diets: A Global Systematic Review and Meta-analysis. Advances in Nutrition. 2020;11(2):375 386. https://doi.org/10.1093/advances/nmz091.; Hoekstra A.Y., Chapagain A.K. Globalization of Water: Sharing the Planet’s Freshwater Resources; John Wiley & Sons: New York, NY, USA, 2011.; Huang Z., Hejazi M., Tang Q., Vernon C.R., Liu Y., Chen M., Calvin K. Global agricultural green and blue water consumption under future climate and land use changes. J. Hydrol. 2019;(574):242–256.; Ingwersen W.W. Life cycle assessment of fresh pineapple from Costa Ric. J. Clean. Prod. 2012;(35):152–163.; ISO. ISO 14044:2006: Environmental Management-Life Cycle Assessment-Requirements and Guidelines; ISO: Geneva, Switzerland, 2006.; ISO. ISO 14046:2014: Life Cycle Assessment-Water Footprint-Principles, Requirements and Guidelines; ISO: Geneva, Switzerland, 2014.; Jefferie D., Muñoz I., Hodges J., King V.J., Aldaya M., Ercin A.E., Canals L.M., Hoekstra A.Y. Water footprint and life cycle assessment as approaches to assess potential impacts of products on water consumption. Key learning points from pilot studies on tea and margarine. J. Clean. Prod. 2010;(33):155–166.; le Roux B., van der Laan M., Vahrmeijer T., Annandale J.G., Bristow K.L. Estimating Water Footprints of Vegetable Crops: Influence of Growing Season, Solar Radiation Data and Functional Unit. Water. 2016;(8):473; doi:10.3390/w8100473.; Liu W., Yang H., Liu Y., Kummu M., Hoekstra A.Y., Liu J., Schulin R. Water resources conservation and nitrogen pollution reduction under global food trade and agricultural intensification. Sci. Total Environ. 2018;(633):1591–1601.; Liu W., Antonelli M., Kummu M., Zhao X., Wu P., Liu J., Zhuo L., Yang H. Savings and losses of global water resources in food-related virtual water trade. WIREs Water. 2019;(6):e1320.; Lovarelli D., Bacenetti J., Fiala M. Water footprint of crop productions: A review. Sci. Total Environ. 2016;(548–549):236–251.; Mahan L.K., Escott-Stump S. Krause’s Food, Nutrition, & Diet Therapy, 11th ed.; Elsevier: New York, NY, USA, 2004.; Mekonnen M.M., Gerbens-Leenes W. The Water Footprint of Global Food Production. Water. 2020;(12):26-96.; Mekonnen M., Hoekstra A. A global and high-resolution assessment of the green, blue and grey water footprint of wheat. Hydrol. Earth Syst. Sci. 2010;(14):1259–1276.; Mekonnen M.M., Hoekstra A.Y. The green, blue and grey water footprint of crops and derived crop products. Hydrol. Earth Syst. Sci. 2011;(15):1577–1600.; Mekonnen M.M., Hoekstra A.Y. A global assessment of the water footprint of farm animal products. Ecosystems. 2012;(15):401–415.; Multsch S., Pahlow M., Ellensohn J., Michalik T., Frede H.-G., Breuer L. A hotspot analysis of water footprints and groundwater decline in the high plains aquifer region, USA. Reg. Environ. Chang. 2016.; Nyambo P., Wakindiki I.I. Water footprint of growing vegetables in selected smallholder irrigation schemes in South Africa. Water SA. 2015;(41):571–578.; Pahlow M., Snowball J., Fraser G. Water footprint assessment to inform water management and policy making in South Africa. Water SA. 2015;(41):300–313.; Pegasys. Water Footprint Analysis for the Breede Catchment, South Africa Draft Report; Breede Overberg Catchment Management Agency: Cape Town, South Africa, 2012.; Ranchod N., Sheridan C.M., Pint N., Slatter K., Harding K.G. Assessing the bluewater footprint of an opencast platinum mine in South Africa. Water SA. 2015;(41): 287–293.; Rebitzer G., Ekvall T., Frischknecht R., Hunkeler D., Norris G., Rydberg T., Schmidt W.-P., Suh S., Weidema B.P., Pennington D.W. Life cycle assessment: Part 1: Framework, goal and scope definition, inventory analysis, and applications. Environ. Int. 2004;(30):701–720.; Rost S., Gerten D., Bondeau A., Lucht W., Rohwer J., Schaphoff S. Agricultural green and blue water consumption and its influence on the global water system. Water Resour. Res. 2008;(44):W09405. DOI:10.1029/2007WR006331; Scheepers M.E., Jordaan H. Assessing the blue and green water footprint of lucerne for milk production in South Africa. Sustainability. 2016;8(1), 49. https://doi.org/10.3390/su8010049.; Serio F., Miglietta P.P., Lamastra L., Ficocelli S., Intini F., De Deo F., De Donno A. Groundwater nitrate contamination and agricultural land use: A grey water footprint perspective in Southern Apulia Region (Italy). Sci. Total Environ. 2018;(645):1425–1431.; Siebert S., Döll P. Quantifying blue and green virtual water contents in global crop production as well as potential production losses without irrigation. J. Hydrol. 2010;(384):198–217.; Smolders A.J., Lucassen E.C., Bobbink R., Roelofs J.G., Lamers L.P. How nitrate leaching from agricultural lands provokes phosphate eutrophication in groundwater fed wetlands: The Sulphur bridge. Biogeochemistry. 2010;(98):1–7.; Sun S., Wu P., Wang Y., Zhao X. Temporal variability of water footprint for maize production: The case of Beijing from 1978 to 2008. Water Resour. Manag. 2013;(27): 2447–2463.; Yang M., Guan X., Liu Y., Cui J., Ding C., Wang J. Effects of drip irrigation pattern and water regulation on the accumulation and allocation of dry matter and nitrogen, and water use efficiency in summer maize. Acta Agron. Sin. 2019;(45):443–459.; Zhuo L., Mekonnen M.M., Hoekstra A.Y. Sensitivity and Uncertainty in Crop Water Footprint Accounting: A Case Study for the Yellow River Basin; UNESCO-IHE: Delft, The Netherlands, 2013.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/1795

  19. 19
    Academic Journal

    المصدر: Vegetable crops of Russia; № 4 (2021); 42-47 ; Овощи России; № 4 (2021); 42-47 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/1792/1286; Жизнь растений. Под редакцией акад. АН СССР А.Л. Тахтаджан. Е.5(2). Ч.2. М.: Просвещение, 1981. С. 35-39.; Орел Т.И. Оценка агроэкологических ресурсов Крыма для выращивания эфиромасличных и лекарственных растений. Симферополь: ИТ «Ариал», 2018. 72 с.; Плугатарь Ю.В., Корсакова С.П., Ильницкий О. А. Экологический мониторинг Южного берега Крыма. Симферополь: ИТ «АРИАЛ». 2015. 164 с.; Исиков В.П., Работягов В.Д., Хлыпенко Л.А. и др. Интродукция и селекция ароматических и лекарственных культур. Методологические и методические аспекты. Ялта: НБС–ННЦ, 2009. 110 с.; Голубкина Н.А., Кекина Е.Г., Молчанова А.В., Антошкина М.С., Надежкин С.М., Солдатенко А.В. Антиоксиданты растений и методы их определения. М.: Изд-во ФГБНУ ФНЦО, 2018. 66 с. DOI:10.12737/104542.; Методы технохимического контроля в виноделии. Под ред. В.Г. Гержиковой. – Симферополь: Таврида, 2002. 260 с.; Рихтер А.А. Использование в селекции взаимосвязей биохимических признаков. Труды Гос. Никит. Ботан. Сада. 1999;(108):121-129.; Оленников Д.Н., Потанина О.Г., Танхаева Л.М., Николаева Г.Г. Фармакогностическая характеристика листьев какалии копьевидной (Сacalia hastata L.). Химия растительного сырья. 2004;(3):43-52.; Логвиненко И.Е., Исиков В.П., Логвиненко Л.А. Лекарственные растения коллекции Никитского ботанического сада. Симферополь, Изд.-во: ИТ "АРИАЛ", 2017. 72 с.; Марко Н.В., Логвиненко Л.А., Шевчук О.М., Феськов С.А. Аннотированный каталог ароматических и лекарственных растений коллекции Никитского ботанического сада. Симферополь, Изд.-во «Ариал», 2018. 176 с.; Логвиненко Л.А., Шевчук О.М., Толкачева Н.В. Особенности развития Solanum laciniatum Ait. и содержание биологически активных веществ в условиях Южного берега Крыма. В сборнике: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. сборник научных трудов. Ижевск, 2017. С.39-41.; Кекина Е.Г., Шевчук О.М., Голубкина Н.А., Логвиненко Л.А., Хлыпенко Л.А., Молчанова А.В., Caruso G. Antioxidant properties and elemental composition of Withania somnifera L. Journal of International Scientific Publications: Agriculture & Food. 2019;(7):93-101.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/1792

  20. 20
    Academic Journal