-
1Academic Journal
المؤلفون: D. E. Alibiev, V. D. Zavadovskaya, T. V. Saprina, N. N. Musina, R. Ya. Murdinov, M. A. Zorkaltsev, O. Yu. Kilina, Д. Е. Алибиев, В. Д. Завадовская, Т. В. Саприна, Н. Н. Мусина, Р. Я. Мурдинов, М. А. Зоркальцев, О. Ю. Килина
المصدر: Diagnostic radiology and radiotherapy; Том 15, № 1 (2024); 7-14 ; Лучевая диагностика и терапия; Том 15, № 1 (2024); 7-14 ; 2079-5343
مصطلحات موضوعية: LIC (liver iron concentration), MRI (magnetic resonance imaging), relaxometry, SIR (signal intensity ratio), МРТ (магнитно-резонансная томография), релаксометрия
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/968/628; Еремина Е.Ю. Гемохроматоз в практике клинициста // Медицинский альманах. 2015. № 1. Т. 36, С. 74–78.; Суслова А.И., Егорова И.Э., Бахтаирова В.И. Механизмы регуляции гомеостаза железа в организме // Инновационные технологии в фармации. 2019. С. 114–118.; Лукина Е.А., Деженкова А.В. Метаболизм железа в норме и при патологии // Клиническая онкогематология. Фундаментальные исследования и клиническая практика. 2015. Т. 8, № 4. С. 355–361.; Wood J.C., Ghugre N. Magnetic resonance imaging assessment of excess iron in thalassemia, sickle cell disease and other iron overload diseases // Hemoglobin. 2008. Vol. 32, No. 1–2. Р. 85–96. doi:10.1080/03630260701699912.; Сквoрцoв В.В., Гoрбaч А.Н. Поражения печени при гемохроматозе: клинические проявления и диагностика // Эффективная фармакотерапия. 2020. Т. 16, № 1. С. 74–78. doi:10.33978/2307-3586-2020-16-1-74-78.; Струков А.И., Серов В.В. Патологическая анатомия: учебник / под ред. В.С.Паукова. 6-е изд., перераб. и доп. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2019. 880 с.: ил. ISBN 978-5-9704-4926-4.; Назарова Э.Э., Куприянов Д.А., Новичкова Г.А. и др. Неинвазивная диагностика перегрузки железом методом магнитно-резонансной томографии // Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2020. Т. 19, № 3. С. 158–163. doi:10.24287/1726-1708-2020-19-3-158-163.; Mangia А., Bellini D., Cillo U. et al. Hepatocellular carcinoma in adult thalassemia patients: an expert opinion based on current evidence // BMC gastroenterology. 2020. Vol. 20.1. Р. 1–14. doi:10.1186/s12876-020-01391-z.; Oliva E.N., Huey K., Deshpande S. et al A systematic literature review of the relationship between serum ferritin and outcomes in myelodysplastic syndromes // Journal of Clinical Medicine. 2022. Vol. 11, No. 3. Р. 895.; Kasprzak A. Nachtkamp K., Gattermann N. et al. Assessing the Prognosis of Patients with Myelodysplastic Syndromes (MDS) // Cancers. 2022. Vol. 14, Nо. 8. Р. 1941. doi:10.3390/cancers14081941.; Гаус О. В., Ливзан М.А.Заболевания, ассоциированные с неалкогольной жировой болезнью печени: что мы знаем о них? // Гастроэнтерология. Хирургия. Интенсивная терапия. Consilium Medicum. 2019. № 3. С. 45–51. doi:10.26442/26583739.2019.3.190481.; Одинец Д.Ф., Качар И.В., Плотникова и др. Значение метаболического синдрома и синдрома дисметаболической перегрузки железом в патогенезе неалкогольной жировой болезни печени // III Гродненские гастроэнтерологические чтения: сборник материалов областной научно-практической конференции. Т. 66. Гродно, 2012. С. 121. 2012. Т. 66. С. 121.; Deugnier Y., Bardou-Jacquet É., Lainé F. Dysmetabolic iron overload syndrome (DIOS) // La Presse Médicale. 2017. Vol. 46, No. 12. Р. e306-e311. doi:10.1016/j.lpm.2017.05.036.; Назарова Э.Э., Терещенко Г.В., Абакумов М.А. и др. Методика проведения Т2*-картирования печени у пациентов с вторичной перегрузкой железом // Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2017. Т. 16, № 3. С. 23–27. doi:10.24287/1726-1708-2017-16-3-23-27.; Anderson L.J., Holden S., Davis B., Prescott E. et al. Cardiovascular T2-star (T2*) magnetic resonance for the early diagnosis of myocardial iron overload // European heart journal. 2001. Vol. 22, No. 23. Р. 2171–2179. doi:10.1053/euhj.2001.2822.; Sirlin C.B., Reeder S.B. Magnetic resonance imaging quantification of liver iron // Magnetic Resonance Imaging Clinics. 2010. Vol. 18, No. 3. С. 359–381. doi:10.1016/j.mric.2010.08.014; Титова А.М., Труфанов Г.Е., Фокин В.А. Т2*-магнитно-резонансная релаксометрия печени в количественной оценке перегрузки железом // Вестник Российской военно-медицинской академии. 2018, № 2. С. 55–58.; St Pierre T. G., Clark P. R., Chua-anusorn W. Single spin-echo proton transverse relaxometry of iron-loaded liver // NMR in Biomedicine: An International Journal Devoted to the Development and Application of Magnetic Resonance In Vivo. 2004. Vol. 17, No. 7. Р. 446–458. doi:10.1002/nbm.905.; Alustiza J.M., Artetxe J., Castiella A. et al. MR quantification of hepatic iron concentration // Radiology. 2004. Vol. 230, No. 2. Р. 479–484. doi:10.1148/radiol.2302020820.; Banerjee R., Pavlides M., Tunnicliffe E.M., Piechnik S.K. et al. Multiparametric magnetic resonance for the non-invasive diagnosis of liver disease // J. Hepatol. 2014. Vol. 60, No. 1. Р. 69–77. doi:10.1016/j.jhep.2013.09.002.; Tziomalos K., Perifanis V. Liver iron content determination by magnetic resonance imaging // World J. Gastroenterol. 2010. Vol. 16, No. 13. Р. 1587–1597. doi:10.3748/wjg.v16.i13.1587.; Gandon Y., Olivie D., Guyader D. et al. Non-invasive assessment of hepatic iron stores by MRI // The Lancet. 2004. Vol. 363, No. 9406. Р. 357–362. doi:10.1016/S0140-6736(04)15436-6.; Chavhan G.B., Babyn P.S., Thomas B. et al. Principles, techniques, and applications of T2*-based MR imaging and its special applications // Radiographics. 2009. Vol. 29, No. 5. Р. 1433. doi:10.1148/rg.295095034.; Milic S., Mikolasevic I., Orlic L. et al. The role of iron and iron overload in chronic liver disease // Medical science monitor: international medical journal of experimental and clinical research. 2016. Т. 22. Р. 2144. doi:10.12659/MSM.896494.; Serai S.D., Fleck R.J., Quinn C.T. et al. Retrospective comparison of gradient recalled echo R2* and spin-echo R2 magnetic resonance analysis methods for estimating liver iron content in children and adolescents // Pediatric radiology. 2015. Vol. 45, No. 11. Р. 1629–1634. doi:10.1007/s00247-015-3378-9.; Wood J.C., Fassler J.D., Meade T. Mimicking liver iron overload using liposomal ferritin preparations // Magnetic Resonance in Medicine: An Official Journal of the International Society for Magnetic Resonance in Medicine. 2004. Vol. 51, No. 3. Р. 607–611. doi:10.1002/mrm.10735.; Шапиева З.М., Кучерук О.В., Синицын В.Е. и др. Магнитно-резонансная томография печени и селезенки в диагностике болезней накопления // Вестник рентгенологии и радиологии. 2015, № 4. С. 54–61.; https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/968
-
2Academic Journal
المؤلفون: N. N. Musina, T. S. Prokhorenko, T. V. Saprina, A. P. Zima, Н. Н. Мусина, Т. С. Прохоренко, Т. В. Саприна, А. П. Зима
المساهمون: Исследование выполнено при финансовой поддержке гранта РФФИ Аспиранты №19-315-90061 «Взаимосвязь нарушений феррокинетики и метаболических изменений при сахарном диабете».
المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 1 (2024); 57-66 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 1 (2024); 57-66 ; 2313-741X ; 1563-0625
مصطلحات موضوعية: скорость оседания эритроцитов, diabetes mellitus, inflammation, markers of differential diagnosis of anemia, hepcidin, erythrocytes sedimentation rate, сахарный диабет, маркеры воспаления, дифференциальная диагностика, анемии, гепсидин
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2623/1715; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2623/10399; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2623/10400; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2623/10401; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2623/10402; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2623/10403; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2623/10404; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2623/10405; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2623/10406; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2623/10709; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2623/10710; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2623/12667; Климонтов В.В., Тян Н.В., Фазуллина О.Н., Мякина Н.Е., Лыков А.П., Коненков В.И. Клинические и метаболические факторы, ассоциированные с хроническим воспалением низкой интенсивности, у больных сахарным диабетом 2 типа // Сахарный диабет, 2016. Т. 19, № 4. С. 295-302.; Прохоренко Т.С., Зима А.П., Саприна Т.В., Мусина Н.H., Шахманова Н.С., Васильева О.А., Новицкий В.В. Значение определения маркеров воспаления у беременных с анемическим синдромом и ожирением // Медицинская иммунология, 2018. Т. 20, № 5. С. 639-646. doi:10.15789/1563-0625-2018-5-639-646.; Саприна Т.В., Мусина Н.Н., Прохоренко Т.С., Зима А.П. Способ дифференциальной диагностики анемического синдрома при сахарном диабете 1 и 2 типа // Патент РФ на изобретение № 2770744 C1 Российская Федерация / 21.04.2022. МПК G01N 33/49.; Сахин В.Т., Григорьев М.А., Крюков Е.В., Казаков С.П., Рукавицын О.А. Влияние гепцидина и растворимого рецептора трансферрина на развитие анемии хронических заболеваний у ревматических пациентов // Гематология. Трансфузиология. Восточная Европа, 2020. Т. 6, № 3. С. 311-318.; Суржикова Г.С., Клочкова-Абельянц С.А. Гепсидин-25: новые возможности в диагностике железодефицитных анемий и анемий хронических заболеваний // Клиническая лабораторная диагностика, 2017. Т. 62, № 7. С. 414-417.; Addo L., Ikuta K., Tanaka H., Toki Y., Hatayama M., Yamamoto M., Ito S., Shindo M., Sasaki Y., Shimonaka Y., Fujiya M., Kohgo Y. The three isoforms of hepcidin in human serum and their processing determined by liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-tandem MS). Int. J. Hematol., 2016, Vol. 103, no. 1, pp. 34-43.; de Domenico I., Zhang T.Y., Koening C.L., Branch R.W., London N., Lo E., Daynes R.A., Kushner J.P., Li D., Ward D.M., Kaplan J. Hepcidin mediates transcriptional changes that modulate acute cytokine-induced inflammatory responses in mice. J. Clin. Invest., 2010, Vol. 120, no. 7, pp. 2395-2405.; Esser N., Legrand-Poels S., Piette J., Scheen A.J., Paquot N. Inflammation as a link between obesity, metabolic syndrome and type 2 diabetes. Diabetes Res. Clin. Pract., 2014, Vol. 105, no. 2, pp. 141-150.; Ganz T., Nemeth E. Hepcidin and iron homeostasis. Biochim. Biophys. Acta, 2012, no. 1823, pp. 1434-1443.; Huang J., Karnchanasorn R., Ou H.Y., Feng W., Chuang L.M., Chiu K.C., Samoa R. Association of insulin resistance with serum ferritin and aminotransferases-iron hypothesis. World J. Exp. Med., 2015, Vol. 5, no. 4, pp. 232-243.; Huth C., Beuerle S., Zierer A., Heier M., Herder C., Kaiser T., Koenig W., Kronenberg F., Oexle K., Rathmann W., Roden M., Schwab S., Seissler J., Stöckl D., Meisinger C., Peters A., Thorand B. Biomarkers of iron metabolism are independently associated with impaired glucose metabolism and type 2diabetes: the KORA F4 study. Eur. J. Endocrinol., 2015, Vol. 173, no. 5, pp. 643-653.; Kulaksiz H., Fein E., Redecker P., Stremmel W., Adler G., Cetin Y. Pancreatic beta-cells express hepcidin, an iron-uptake regulatory peptide. J. Endocrinol., 2008, Vol. 197, no. 2, pp. 241-249.; Nemeth E., Ganz T. The Role of hepcidin in iron metabolism. Acta Haematol., 2009. no. 122. pp. 78-86.; Pasricha S.R., Drakesmith H. Iron deficiency anemia: problems in diagnosis and prevention at the population level. Hematol. Oncol. Clin. North. Am., 2016, Vol. 30, no. 2, pp. 309-325.; Pechlaner R., Weiss G., Bansal S., Mayr M., Santer P., Pallhuber B., Notdurfter M., Bonora E., Willeit J., Kiechl S. Inadequate hepcidin serum concentrations predict incident type 2 diabetes mellitus. Diabetes Metab. Res. Rev., 2016, Vol. 32, no. 2, pp. 187-192.; Rabinovitch A., Suarez-Pinzon W.L. Roles of cytokines in the pathogenesis and therapy of type 1 diabetes. Cell Biochem. Biophys., 2007, Vol. 48, no. 2-3, pp. 159-163.; Uno S., Imagawa A., Okita K., Sayama K., Moriwaki M., Iwahashi H., Yamagata K., Tamura S., Matsuzawa Y., Hanafusa T., Miyagawa J., Shimomura I. Macrophages and dendritic cells infiltrating islets with or without beta cells produce tumour necrosis factor-alpha in patients with recent-onset type 1 diabetes. Diabetologia, 2007, Vol. 50, no. 3, pp. 596-601.; Wang Z., Shen X.-H., Feng W.-M., Ye G.-F., Qiu W., Li B. Analysis of inflammatory mediators in prediabetes and newly diagnosed type 2 diabetes patients. J. Diabetes Res., 2016, Vol. 2016, no. 4, pp. 1-10.; Yamamoto Y., Yamamoto H. RAGE-Mediated inflammation, type 2 diabetes, and diabetic vascular complication. Front. Endocrinol. (Lausanne), 2013, Vol. 4, no. 4, pp. 1-10.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2623
-
3Academic Journal
المؤلفون: M. A. Zorkaltsev, V. D. Zavadovskaya, T. V. Saprina, M. A. Zamyshevskaya, V. D. Udodov, A. V. Shestakov, A. A. Mikhailova, Yu. N. Loyko, N. N. Musina, М. А. Зоркальцев, В. Д. Завадовская, Т. В. Саприна, М. А. Замышевская, В. Д. Удодов, А. В. Шестаков, А. А. Михайлова, Ю. Н. Лойко, Н. Н. Мусина
المساهمون: Источник финансирования. Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ в рамках научного проекта № 20-115-50333
المصدر: Bulletin of Siberian Medicine; Том 21, № 3 (2022); 166-180 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 21, № 3 (2022); 166-180 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2022-21-3
مصطلحات موضوعية: молекулярная визуализация, diabetic foot syndrome, osteomyelitis, angiosome, perfusion, microbiota, molecular imaging, синдром диабетической стопы, остеомиелит, ангиосома, перфузия, микробиота
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4919/3266; Lauri C., Leone A., Cavallini M., Signore A., Giurato L., Uccioli L. Diabetic foot infections: the diagnostic challenges. J. Clin. Med. 2020;9(6):1779. DOI:10.3390/jcm9061779.; Llewellyn A., Kraft J., Holton C., Harden M., Simmonds M. Imaging for detection of osteomyelitis in people with diabetic foot ulcers: A systematic review and meta-analysis. Eur. J. Radiol. 2020;131:109215. DOI:10.1016/j.ejrad.2020.109215.; Chantelaua E.A., Antoniou S., Zweck B., Haage P. Follow up of MRI bone marrow edema in the treated diabetic Charcot foot – a review of patient charts. Diabet. Foot Ankle. 2018;9(1):1466611. DOI:10.1080/2000625X.2018.1466611.; Ruiz-Bedoya C.A., Gordon O., Mota F. et al. Molecular imaging of diabetic foot infections: new tools for old questions. Int. J. Mol. Sci. 2019;20(23):5984. DOI:10.3390/ijms20235984.; Massel D.H., Jenkins N.W., Rush A.J. 3rd et al. MRI and clinical risk indicators for osteomyelitis. Foot and Ankle Specialist. 2014;14(5):415–426. DOI: 0.1177/1938640020921572.; Duryea D., Bernard S., Flemming D., Walker E., French C. Outcomes in diabetic foot ulcer patients with isolated T2 marrow signal abnormality in the underlying bone: should the diagnosis of «osteitis» be changed to «early osteomyelitis»? Skeletal Radiol. 2017;46(10):1327–1333. DOI:10.1007/s00256-017-2666-x.; Jang Y.H., Park S., Park Y.U., Kwack K.S., Jeon S.W., Lee H.Y. Multivariate analyses of MRI findings for predicting osteomyelitis of the foot in diabetic patients. Acta Radiol. 2020;61(9):1205–1212. DOI:10.1177/0284185119897351.; Kotecha H.M., Lo H.S., Vedantham S., Shin H., Cerniglia C.A. Abbreviated MRI of the foot in patients with suspected osteomyelitis. Emerg. Radiol. 2020;27(1):9–16. DOI:10.1007/s10140-019-01722-y.; La Fontaine J., Bhavan K., Jupiter D., Lavery L.A., Chhabra A. Magnetic resonance imaging of diabetic foot osteomyelitis: imaging accuracy in biopsy-proven disease. J. Foot Ankle Surg. 2021;60(1):17–20. DOI:10.1053/j.jfas.2020.02.012; Jbara M., Gokli A., Beshai S. et al. Does obtaining an initial magnetic resonance imaging decrease the reamputation rates in the diabetic foot? Diabet. Foot Ankle. 2016;7:31240. DOI:10.3402/dfa.v7.31240.; Lauri C., Glaudemans A.W.J.M., Signore A. Leukocyte imaging of the diabetic foot. Curr. Pharm. Des. 2018;24(12):1270– 1276. DOI:10.2174/1381612824666180227094116.; Diez A.I.G., Fuster D., Morata L. et al. Comparison of the diagnostic accuracy of diffusion-weighted and dynamic contrast-enhanced MRI with 18F-FDG PET/CT to differentiate osteomyelitis from Charcot neuro-osteoarthropathy in diabetic foot. Eur. J. Radiol. 2020;132:109299. DOI:10.1016/j.ejrad.2020.109299.; Çildağ M.B., Ertuğrul M.B., Köseoğlu Ö.F., Armstrong D.G. A Factor increasing venous contamination on bolus chase three-dimensional magnetic resonance imaging: Charcot neuroarthropathy. J. Clin. Imaging Sci. 2018;8:13. DOI:10.4103/jcis.JCIS_77_17.; Uccioli L., Meloni M., Izzo V., Giurato L., Merolla S., Gandini R. Critical limb ischemia: current challenges and future prospects. Vasc. Health Risk Manag. 2018;14:63–74. DOI:10.2147/VHRM.S125065.; Zamyshevskaya M., Zavadovskaya V., Zorkaltsev M., Udodov V., Grigorev E. 3D DCE-MRA of pedal arteries in patients with diabetes mellitus. Journal of Physics Conference Series. 2016;677(1):012010. DOI:10.1088/17426596/677/1/012010; Liao D., Xie L., Han Y. et al. Dynamic contrast-enhanced magnetic resonance imaging for differentiating osteomyelitis from acute neuropathic arthropathy in the complicated diabetic foot. Skeletal Radiol. 2018;47(10):1337–1347. DOI:10.1007/s00256-018-2942-4.; Zhang N., Fan Z., Luo N. et al. Noncontrast MR angiography (MRA) of infragenual arteries using flow-sensitive dephasing (FSD)-prepared steady-state free precession (SSFP) at 3.0 Tesla: comparison with contrast-enhanced MRA. J. Magn. Reson. Imaging. 2016;43(2):364–372. DOI:10.1002/jmri.25003.; Lam A., Perchyonok Y., Ranatunga D. et al. Accuracy of non-contrast quiescent-interval single-shot and quiescent-interval single-shot arterial spin-labelled magnetic resonance angiography in assessment of peripheral arterial disease in a diabetic population. J. Med. Imaging Radiat. Oncol. 2020;64(1):35–43. DOI:10.1111/1754-9485.12987.; Abdel Razek A.A.K., Samir S. Diagnostic performance of diffusion-weighted MR imaging in differentiation of diabetic osteoarthropathy and osteomyelitis in diabetic foot. Eur. J. Radiol. 2017;89:221–225. DOI:10.1016/j.ejrad.2017.02.015.; Eren M.A., Karakaş E., Torun A.N., Sabuncu T. The Clinical value of diffusion-weighted magnetic resonance imaging in diabetic foot infection. J. Am. Podiatr. Med. Assoc. 2019;109(4):277–281. DOI:10.7547/17-066.; Lauri C., Tamminga M., Glaudemans A.W.J.M. et al. Detection of Osteomyelitis in the Diabetic Foot by Imaging Techniques: A Systematic Review and Meta-analysis Comparing MRI, White Blood Cell Scintigraphy, and FDG-PET. Diabetes Care. 2017;40(8):1111–1120. DOI:10.2337/dc17-0532.; Signore A., Jamar F., Israel O., Buscombe J., Martin-Comin J., Lazzeri E. Clinical indications, image acquisition and data interpretation for white blood cells and anti-granulocyte monoclonal antibody scintigraphy: an EANM procedural guideline. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2018;45(10):1816–1831. DOI:10.1007/s00259-018-4052-x.; Lauri C., Glaudemans A.W.J.M., Campagna G. et al. Comparison of White Blood Cell Scintigraphy, FDG PET/CT and MRI in Suspected Diabetic Foot Infection: Results of a Large Retrospective Multicenter Study. J. Clin. Med. 2020;9(6):1645. DOI:10.3390/jcm9061645.; Ahmed N., Fatima S., Saeed M.A., Zia M., Irfan Ullah J. 99m Tc-ceftizoxime: synthesis, characterization and its use in diagnosis of diabetic foot osteomyelitis. J. Med. Imaging Radiat. Oncol. 2019;63(1):61–68. DOI:10.1111/1754-9485.12841.; Ankrah A.O., Klein H.C., Elsinga P.H. New imaging tracers for the infected diabetic foot (nuclear and optical imaging). Curr. Pharm. Des. 2018;24(12):1287–1303. DOI:10.2174/1381612824666180227094454.; Vouillarmet J., Moret M., Morelec I., Michon P., Dubreuil J. Application of white blood cell SPECT/CT to predict remission after a 6 or 12 week course of antibiotic treatment for diabetic foot osteomyelitis. Diabetologia. 2017;60(12):2486– 2494. DOI:10.1007/s00125-017-4417-x.; Jeffcoate W.J. Osteomyelitis of the foot: non-surgical management, SPECT/CT scanning and minimizing the duration of antibiotic use. Diabetologia. 2017;60(12):2337–2340. DOI:10.1007/s00125-017-4429-6.; Ahluwalia R., Bilal A., Petrova N. et al. The role of bone scintigraphy with SPECT/CT in the characterization and early diagnosis of stage 0 Charcot neuroarthropathy. J. Clin. Med. 2020;9(12):4123. DOI:10.3390/jcm9124123.; Yang H., Zhuang H., Rubello D., Alavi A. Mild-to-moderate hyperglycemia will not decrease the sensitivity of 18F-FDG PET imaging in the detection of pedal osteomyelitis in diabetic patients. Nucl. Med. Commun. 2016;37(3):259–262. DOI:10.1097/MNM.0000000000000434.; Glaudemans A.W.J.M., Jutte P.C., Cataldo M.A. et al. Consensus document for the diagnosis of peripheral bone infection in adults: a joint paper by the EANM, EBJIS, and ESR (with ESCMID endorsement). Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2019;46(4):957–970. DOI:10.1007/s00259-019-4262-x.; Удодов В.Д., Зоркальцев М.А., Завадовская М.А. и др. Гибридная ОФЭКТ/МРТ в диагностике синдрома диабетической стопы. Медицинская визуализация. 2016;2:36–42.; Meacock L., Petrova N.L., Donaldson A. et al. Novel semi quantitative bone marrow oedema score and fracture score for the magnetic resonance imaging assessment of the active Charcot foot in diabetes. J. Diabetes Res. 2017;2017:8504137. DOI:10.1155/2017/8504137.; Alvelo J.L., Papademetris X., Mena-Hurtado C. et al. Radiotracer imaging allows for noninvasive detection and quantification of abnormalities in angiosome foot perfusion in diabetic patients with critical limb ischemia and nonhealing wounds. Circ. Cardiovasc. Imaging. 2018;11(5):e006932. DOI:10.1161/CIRCIMAGING.117.006932; Mahendra M., Singh R. Diagnostic accuracy and surgi cal utility of MRI in complicated diabetic foot. J. Clin. Diagn. Res. 2017;11(7):RC01–RC04. DOI:10.7860/JCDR/2017/25902.10154.; Chou T.H., Atway S.A., Bobbey A.J., Sarac T.P., Go M.R., Stacy M.R. SPECT/CT imaging a noninvasive approach for evaluating serial changes in angiosome foot perfusion in critical limb ischemia. Adv. Wound Care (New Rochelle). 2020;9(3):103–110. DOI:10.1089/wound.2018.0924; Chen H.J., Roy T.L., Wright G.A. Perfusion measures for symptom severity and differential outcome of revascularization in limb ischemia: preliminary results with arterial spin labeling reactive hyperemia. J. Magn. Reson. Imaging. 2018;47(6):1578–1588. DOI:10.1002/jmri.25910.; Zheng J., Muccigrosso D., Zhang X. et al. Oximetric angiosome imaging in diabetic feet. J. Magn. Reson. Imaging. 2016;44(4):940–946. DOI:10.1002/jmri.25220.; Edalati M., Hastings M.K., Muccigrosso D. et al. Intravenous contrast-free standardized exercise perfusion imag ing in diabetic feet with ulcers. J. Magn. Reson. Imaging. 2019;50(2):474–480. DOI:10.1002/jmri.26570.; Stacy M.R., Qiu M., Papademetris X. et al. Application of BOLD Magnetic Resonance Imaging for Evaluating Regional Volumetric Foot Tissue Oxygenation: A Feasibility Study in Healthy Volunteers. Eur. J. Vasc. Endovasc. Surg. 2016;51(5):743–749. DOI:10.1016/j.ejvs.2016.02.008.; Forsythe R.O., Apelqvist J., Boyko E.J. et al. Performance of Prognostic Markers in the Prediction of Wound Hea ling or Amputation among Patients with Foot Ulcers in Diabetes: A Systematic Review. Diabetes/Metabolism Research and Reviews. 2020;36(Suppl.1):e3278. DOI:10.1002/dmrr.3278.; Lung C.W., Wu F.L., Liao F., Pu F., Fan Y. et al. Emerg ing technologies for the prevention and management of diabetic foot ulcers. J. Tissue Viability. 2020;29(2):61–68. DOI:10.1016/j.jtv.2020.03.003.; Golledge J., Fernando M., Lazzarini P. et al. The potential role of sensors, wearables and telehealth in the remote management of diabetes-related foot disease. Sensors. 2020;20(16):4527. DOI:10.3390/s20164527.; Bus S.A., Lavery L.A., Monteiro-Soares M. et al. Guidelines on the prevention of foot ulcers in persons with diabetes (IWGDF 2019 update). Diabetes Metab. Res. Rev. 2020;36 (Suppl.1):e3269. DOI:10.1002/dmrr.3269.; Lung C.W., Hsiao-Wecksler E.T., Burns S., Lin F., Jan Y.K. Quantifying dynamic changes in plantar pressure gradient in diabetics with peripheral neuropathy. Front Bioeng Biotechnol. 2016;4:54. DOI:10.3389/fbioe.2016.00054.; Bus S.A., Maas J.C., Otterman N.M. Lower-extremity dynamics of walking in neuropathic diabetic patients who wear a forefoot-offloading shoe. Clin. Biomech. (Bristol, Avon). 2017;50:21–26. DOI:10.1016/j.clinbiomech.2017.10.003; Abbott C.A., Chatwin K.E., Foden P. et al. Innovative intelligent insole system reduces diabetic foot ulcer recurrence at plantar sites: a prospective, randomised, proof-of-con cept study. Lancet Digit Health. 2019;1(6):e308–e318. DOI:10.1016/S2589-7500(19)30128-1.; Fernando M.E., Crowther R.G., Lazzarini P.A. et al. Gait in people with nonhealing diabetes-related plantar ulcers. Phys. Ther. 2019;99(12):1602–1615. DOI:10.1093/ptj/pzz119.; Brodie M.A., Okubo Y., Annegarn J., Wieching R., Lord S.R., Delbaere K. Disentangling the health benefits of walking from increased exposure to falls in older people using remote gait monitoring and multi-dimensional analysis. Physiol. Meas. 2017;38(1):45–62. DOI:10.1088/1361-6579/38/1/45; Lee S.H., Lee H.J., Chang W.H. et al. Gait performance and foot pressure distribution during wearable robot-assisted gait in elderly adults. J. Neuroeng. Rehabil. 2017;14(1):123. DOI:10.1186/s12984-017-0333-z.; Kang S., Cho H., Jeon D. et al. A Matrix metalloproteinase sensing biosensor for the evaluation of chronic wounds. Bio. Chip. J. 2019;13:323–332. DOI:10.1007/s1206-019-3403-4.; Luanraksa S., Jindatanmanusan P., Boonsiri T., Nimmanon T., Chaovanalikit T., Arnutti P. An MMP/TIMP ratio scoring system as a potential predictive marker of diabetic foot ulcer healing. J. Wound Care. 2018;27(12):849–855. DOI:10.12968/jowc.2018.27.12.849.; Krisp C., Jacobsen F., McKay M.J., Molloy M.P., Steinstraesser L., Wolters D.A. Proteome analysis reveals antiangiogenic environments in chronic wounds of diabetes mellitus type 2 patients. Proteomics. 2013;13(17):2670–2681. DOI:10.1002/pmic.201200502.; Jones J.I., Nguyen T.T., Peng Z., Chang M. Targeting MMP-9 in diabetic foot ulcers. Pharmaceuticals (Basel). 2019;12(2):79. DOI:10.3390/ph12020079.; Ramirez-Acuña J.M., Cardenas-Cadena S.A., Marquez Salas P.A. et al. Diabetic foot ulcers: current advances in antimicrobial therapies and emerging treatments. Antibiotics (Basel). 2019;8(4):193. DOI:10.3390/antibiotics8040193.; Shao M., Hussain Z., Thu H.E. et al. Emerging trends in therapeutic algorithm of chronic wound healers: recent advances in drug delivery systems, concepts-to-clinical application and future prospects. Critical Reviews in Therapeutic Drug Carrier Systems.2017;34(5):387–452. DOI:10.1615/critrevtherdrugcarriersyst.2017016957.; Jneid J., Cassir N., Schuldiner S. et al. Exploring the microbiota of diabetic foot infections with culturomics. Front Cell Infect. Microbiol. 2018;8:282. DOI:10.3389/fcimb.2018.00282.; Malone M., Johani K., Jensen S.O. et al. Next generation DNA sequencing of tissues from infected diabetic foot ulcers. eBioMedicine. 2017;21:142–149. DOI:10.1016/j.ebiom.2017.06.026.; Park J.U., Oh B., Lee J.P., Choi M.H., Lee M.J., Kim B.S. Influence of microbiota on diabetic foot wound in comparison with adjacent normal skin based on the clinical features. Biomed. Res. Int. 2019;2019:7459236. DOI:10.1155/2019/7459236.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4919
-
4Academic Journal
المؤلفون: J. A. Kostitsyna, N. N. Musina, M. B. Arzhanik, T. V. Saprina, Я. А. Костицына, Н. Н. Мусина, М. Б. Аржаник, Т. В. Саприна
المساهمون: the work was supported by the RFBR grant r_a No. 16-44-700246, работа выполнена при поддержке гранта РФФИ р_а № 16-44-700246
المصدر: Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 36, № 3 (2021); 87-96 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 36, № 3 (2021); 87-96 ; 2713-265X ; 2713-2927
مصطلحات موضوعية: диабетическая ретинопатия, red blood cell distribution width, dyslipidemia, diabetes mellitus, diabetic retinopathy, ширина распределения эритроцитов, дислипидемия, сахарный диабет
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/1248/643; Kim K.M., Lui L.Y., Cauley J.A., Ensrud K.E., Orwoll E.S., Schousboe J.T. et al. Red сell distribution width is a risk factor for hip fracture in elder ly men without anemia. J. Bone Miner Res. 2020;35(5):869–874. DOI:10.1002/jbmr.3963.; Krishna V., Pillai G., Velickakathu Sukumaran S. Red сell distribution width as a predictor of mortality in patients with sepsis. Cureus. 2021;13(1):e12912. DOI:10.7759/cureus.12912.; Lee J.J., Montazerin S.M., Jamil A., Jamil U., Marszalek J., Chuang M.L. et al. Association between red blood cell distribution width and mortality and severity among patients with COVID-19: A systematic review and meta-analysis. J. Med. Virol. 2021;93(4):2513–2522. DOI:10.1002/jmv.26797.; Саприна Т.В., Зима А.П., Мусина Н.Н., Прохоренко Т.С., Латыпова А.В., Шахманова Н.С. и др. Патогенетические аспекты нарушения метаболизма гепсидина и феррокинетики при патологии углеводного обмена. Сахарный диабет. 2018;21(6):506–512. DOI:10.14341/DM9378.; Шварц В. Воспаление жировой ткани. Часть 2. Патогенетическая роль при сахарном диабете 2-го типа. Проблемы эндокринологии. 2009;55(4):43–48. DOI:10.14341/probl200955543-48.; Древаль В.И. Изменение липидного и белкового компонентов плаз-; Панькив В.И. Сахарный диабет 2-го типа и неалкогольная жировая болезнь печени. Эффекты метформина. Международный эндокринологический журнал. 2013;53(5):55–62.; Zhou L., Lin S., Zhang F., Ma Y., Fu Z., Gong Y. et al. The correlation between RDW, MPV and weight indices after metabolic surgery in patients with obesity and DM/IGR: Follow-up observation at 12 months. Diabetes Ther. 2020;11(10):2269–2281. DOI:10.1007/s13300-020-00897-9.; Roumeliotis S., Stamou A., Roumeliotis A., Theodoridis M., Leivaditis K., Panagoutsos S. et al. Red blood cell distribution width is associated with deterioration of renal function and cardiovascular morbidity and mortality in patients with diabetic kidney disease. Life (Basel). 2020;10(11):301. DOI:10.3390/life10110301.; Van Ta T., Bich Thi Nguyen H., Thanh Tran H., The Pham H. Evaluating the association of red blood cell parameters and glycemic control in type 2 diabetic patients at Tien Giang General Hospital. Arch. Pharma Pract. 2019;10(4):153–159.; Blaslov K., Kruljac I., Mirošević G., Gaćina P., Kolonić S.O., Vrkljan M. The prognostic value of red blood cell characteristics on diabetic retinopathy development and progression in type 2 diabetes mellitus. Clin. Hemorheol. Microcirc. 2019;71(4):475–481. DOI:10.3233/CH180422.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/1248