المؤلفون: E. Yu. Zlatnik, A. B. Sagakyants, L. Yu. Vladimirova, A. V. Tishina, Е. Ю. Златник, А. Б. Сагакянц, Л. Ю. Владимирова, А. В. Тишина

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 4 (2024); 835-842 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 4 (2024); 835-842 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: лечение препаратами моноклональных антител, chemokines, multiplex analysis, colorectal cancer, KRAS mutation, monoclonal antibodies for treatment, хемокины, мультиплексный анализ, колоректальный рак, KRAS-мутация

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3057/1984; Златник Е.Ю., Новикова И.А., Бондаренко Е.С., Ульянова Е.П., Ситковская А.О. Характеристика системного и локального иммунитета и стволовых опухолевых клеток у больных колоректальным раком с различной распространенностью, динамикой и прогнозом // Медицинская иммунология, 2022. Т. 24, № 1. С. 1439-1452. doi 10.15789/1563-0625-COL-2352.; Кит О.И., Дженкова Е.А., Мирзоян Э.А., Геворкян Ю.А., Сагакянц А.Б., Тимошкина Н.Н., Каймакчи О.Ю., Каймакчи Д.О., Толмах Р.Е., Дашков А.В., Колесников В.Е., Милакин А.Г., Полуэктов С.И. Молекулярно-генетическая классификация подтипов колоректального рака: современное состояние проблемы // Южно-Российский онкологический журнал, 2021. Т. 2, № 2. С. 50-56.; Никипелова Е.А., Кит О.И., Шапошников А.В., Златник Е.Ю., Новикова И.А. Колоканцерогенез: онкоиммунология локальных изменений // Злокачественные опухоли, 2016. № 4S1 (21). С. 81-86.; Abdellateif M.S., Salem S.E., Badr D.M., Shaarawy S., Hussein Marwa M, Zekri A-R., Fouad M.A. The prognostic significance of 5-fluorouracil induced inflammation and immuno-modulation in colorectal cancer patients. J. Inflamm. Res., 2020, Vol. 31, no. 13. pp. 1245-1259.; Bond M.J.G., Bolhuis K., Loosveld O.J.L., de Groot J.W.B., Droogendijk H., Helgason H.H., Hendriks M.P., Klaase J.M., Kazemier G., Liem M.S.L., Rijken A.M., Verhoef C., de Wilt J.H.W., de Jong K.P., Gerhards M.F., van Amerongen M.J., Engelbrecht M.R.W., van Lienden K.P., Molenaar I.Q., de Valk B., Haberkorn B.C.M., Kerver E.D., Erdkamp F., van Alphen R.J., Mathijssen-van Stein D., Komurcu A., Lopez-Yurda M., Swijnenburg R.J., Punt C.J.A.; Dutch Colorectal Cancer Study Group. First-line systemic treatment strategies in patients with initially unresectable colorectal cancer liver metastases (CAIRO5): an open-label, multicentre, randomised, controlled, phase 3 study from the Dutch Colorectal Cancer Group. Lancet Oncol., 2023, Vol. 24, no. 7, pp. 757-771.; Czajka-Francuz P., Francuz T., Cison-Jurek S., Czajkac А., Fajkis M., Szymczak B., Kozaczka M., Malinowski K.Р., ojciech Zasada W., Wojnar J., Chudek J. Serum cytokine profile as a potential prognostic tool in colorectal cancer patients – one center study. Rep. Pract. Oncol. Radiother, 2020, Vol. 25, no. 6, pp. 867-875.; Espinosa-Cotton M., Rodman S.N., Ross K.A., Jensen I.J., Sangodeyi-Miller K., McLaren A.J., Dahl R.A., Gibson-Corley K.N., Koch A.T., Yang-Xin Fu, Badovinac V.P., Laux D., Narasimhan B., Simons A.L. Interleukin-1 alpha increases anti-tumor efficacy of cetuximab in head and neck squamous cell carcinoma. J. ImmunoTher. Cancer, 2019, Vol. 7, 79. doi:10.1186/s40425-019-0550-z.; Gelfo V., Rodia M-T., Pucci M., Dall’Ora M., Santi S., Solmi R., Roth L., Lindzen M., Bonafè M., Bertotti A., Caramelli E., Lollini P-L., Trusolino L., Yarden Y., D’Uva G., Lauriola M. A module of inflammatory cytokines defines resistance of colorectal cancer to EGFR inhibitors. Oncotarget, 2016, Vol. 7, no. 44, pp. 72167-72183.; Lee H.-M., Lee H.-J., Chang J.-E. Inflammatory Cytokine:An Attractive Target for Cancer Treatment. Biomedicines, 2022, Vol. 10, no. 9, pp. 2116-2126.; Lunardi S., Lim S.Y., Muschel R.J., Brunner T.B. IP-10/CXCL10 attracts regulatory T cells: Implication for pancreatic cancer. Oncoimmunology, 2015, Vol. 2, no. 4, 9, e1027473. doi:10.1080/2162402X.2015.1027473.; Mager L.F., Wasmer M.H., Rau T.T., Krebs P. Cytokine-Induced Modulation of Colorectal Cancer. Front. Oncol., 2016, Vol. 6, 96. doi:10.3389/fonc.2016.00096.; Tuomisto A.E., Mäkinen M.J., Väyrynen J.P. Systemic inflammation in colorectal cancer: Underlying factors, effects, and prognostic significance. World J. Gastroenterol., 2019, Vol. 25, no. 31, pp. 4383-4404.; van Cutsem E., Cervantes A., Adam R., Sobrero A., Van Krieken J.H., Aderka D., Aranda Aguilar E., Bardelli A., Benson A., Bodoky G., Ciardiello F., D’Hoore A., Diaz-Rubio E., Douillard J.Y., Ducreux M., Falcone A., Grothey A., Gruenberger T., Haustermans K., Heinemann V., Hoff P., Köhne C.H., Labianca R., Laurent-Puig P., Ma B., Maughan T., Muro K., Normanno N., Österlund P., Oyen W.J., Papamichael D., Pentheroudakis G., Pfeiffer P., Price T.J., Punt C., Ricke J., Roth A., Salazar R., Scheithauer W., Schmoll H.J., Tabernero J., Taïeb J., Tejpar S., Wasan H., Yoshino T., Zaanan A., Arnold D. ESMO consensus guidelines for the management of patients with metastatic colorectal cancer. Ann. Oncol., 2016, Vol. 27, pp. 1386-1422.; Xie Y.-H., Chen Y.-X., Fang J.-Y. Comprehensive review of targeted therapy for colorectal cancer. Signal Transduct. Target. Ther., 2020, Vol. 5, no. 1, 22. doi:10.1038/s41392-020-0116-z.; Zhang N., Tan Q., Tao D., Song Y., Song W., Wang J., Ma L., Wu D., Feng Y., Yao J., Han X., Shi Y. Cytokines screening identifies MIG (CXCL9) for postoperative recurrence prediction in operated non-small cell lung cancer patients. Cytokine, 2022, Vol. 149, 155759. doi:10.1016/j.cyto.2021.155759.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3057

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3057
https://doi.org/10.15789/1563-0625-DIS-16903

المؤلفون: N. V. Fisenko, T. A. Demura, G. A. Osipyan, K. S. Avetisov, Н. В. Фисенко, Т. А. Демура, Г. А. Осипян, К. С. Аветисов

المصدر: Ophthalmology in Russia; Том 20, № 2 (2023); 253-259 ; Офтальмология; Том 20, № 2 (2023); 253-259 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2023-2

مصطلحات موضوعية: мультиплексный анализ, bullous keratopathy, glaucoma, cytokine, aqueous humor, multiplex analysis, буллезная кератопатия, глаукома, цитокин, внутриглазная жидкость

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2104/1097; Национальное руководство по глаукоме для практикующих врачей. Под ред. Егорова ЕА, Астахова ЮС, Еричева ВП. 3-е изд. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2015. 456 c.; Terminology and guidelines for glaucoma (European Glaucoma Society). 5th edition. Ed. Azuara-Blanco A. Savona: PubliComm, 2020. 170 p.; Tham YC, Li X, Wong TY, Quigley HA, Aung T, Cheng CY. Global prevalence of glaucoma and projections of glaucoma burden through 2040: a systematic review and meta-analysis. Ophthalmology. 2014;121(11):2081–2090. doi:10.1016/j.ophtha.2014.05.013.; Taurone S, Ripandelli G, Pacella E, Bianchi E, Plateroti AM, De Vito S, Plateroti P, Grippaudo FR, Cavallotti C, Artico M. Potential regulatory molecules in the human trabecular meshwork of patients with glaucoma: immunohistochemical profile of a number of inflammatory cytokines. Mol Med Rep. 2015;11(2):1384–1390. doi:10.3892/mmr.2014.2772.; Черных ВВ, Коненков ВИ, Ермакова ОВ, Орлов НБ, Обухова ОО, Еремина АВ, Трунов АН. Содержание цитокинов и факторов роста во внутриглазной жидкости у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой. Бюллетень сибирской медицины. 2019;18(1):257–265. doi:10.20538/1682-0363-2019-1-257-265.; Burgos-Blasco B, Vidal-Villegas B, Saenz-Frances F, Morales-Fernandez L, Perucho-Gonzalez L, Garcia-Feijoo J, Martinez-de-la-Casa JM. Tear and aqueous humour cytokine profile in primary open-angle glaucoma. Acta Ophthalmol. 2020;98(6):e768–e772. doi:10.1111/aos.14374.; Chua J, Vania M, Cheung CM, Ang M, Chee SP, Yang H, Li J, Wong TT. Expression profile of inflammatory cytokines in aqueous from glaucomatous eyes. Mol Vis. 2012;18:431–438.; Engel LA, Muether PS, Fauser S, Hueber A. The effect of previous surgery and topical eye drops for primary open-angle glaucoma on cytokine expression in aqueous humor. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2014;252(5):791–799. doi:10.1007/s00417-014-2607-5.; Inoue T, Kawaji T, Inatani M, Kameda T, Yoshimura N, Tanihara H. Simultaneous increases in multiple proinflammatory cytokines in the aqueous humor in pseudophakic glaucomatous eyes. J Cataract Refract Surg. 2012;38(8):1389–1397. doi:10.1016/j.jcrs.2012.04.028.; Kokubun T, Tsuda S, Kunikata H, Yasuda M, Himori N, Kunimatsu-Sanuki S, Maruyama K, Nakazawa T. Characteristic profiles of inflammatory cytokines in the aqueous humor of glaucomatous eyes. Ocul Immunol Inflamm. 2017;16:1–12. doi:10.1080/09273948.2017.1327605.; Takai Y, Tanito M, Ohira A. Multiplex cytokine analysis of aqueous humor in eyes with primary open-angle glaucoma, exfoliation glaucoma, and cataract. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012;53(1):241–247. doi:10.1167/iovs.11-8434.; Hori J, Yamaguchi T, Keino H, Hamrah P, Maruyama K. Immune privilege in corneal transplantation. Prog Retin Eye Res. 2019;72:100758. doi:10.1016/j.preteyeres.2019.04.002.; Edelhauser HF. The balance between corneal transparency and edema: the Proctor Lecture. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2006;47(5):1754–1767. doi:10.1167/iovs.05-1139.; Труфанов СВ, Саловарова ЕП, Маложен СА, Баг РЗ. Эндотелиальная дистрофия роговицы Фукса. Вестник офтальмологии. 2017;133(6):106–112. doi:10.17116/oftalma20171336106-112.; Pricopie S, Istrate S, Voinea L, Leasu C, Paun V, Radu C. Pseudophakic bullous keratopathy. Rom J Ophthalmol. 2017;61(2):90–94. doi:10.22336/rjo.2017.17.; Matthaei M, Gillessen J, Muether PS, Hoerster R, Bachmann BO, Hueber A, Cursiefen C, Heindl LM. Epithelial-Mesenchymal Transition (EMT)-related cytokines in the aqueous humor of phakic and pseudophakic Fuchs’ Dystrophy eyes. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2015;56(4):2749–2754. doi:10.1167/iovs.15-16395.; Yamaguchi T, Higa K, Suzuki T, Nakayama N, Yagi-Yaguchi Y, Dogru M, Satake Y, Shimazaki J. Elevated cytokine levels in the aqueous humor of eyes with bullous keratopathy and low endothelial cell density. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2016;57(14):5954–5962. doi:10.1167/iovs.16-20187.; Yazu H, Yamaguchi T, Aketa N, Higa K, Suzuki T, Yagi-Yaguchi Y, Satake Y, Abe T, Tsubota K, Shimazaki J. Preoperative aqueous cytokine levels are associated with endothelial cell loss after Descemet’s stripping automated endothelial keratoplasty. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2018;59(2):612–620. doi:10.1167/iovs.17-23049.; Alvarado JA, Alvarado RG, Yeh RF, Franse-Carman L, Marcellino GR, Brownstein MJ. A new insight into the cellular regulation of aqueous outflow: how trabecular meshwork endothelial cells drive a mechanism that regulates the permeability of Schlemm’s canal endothelial cells. Br J Ophthalmol. 2005;89(11):1500–1505. doi:10.1136/bjo.2005.081307.; Пальцев МА, Иванов АА, Северин СЕ. Межклеточные взаимодействия. М.: Медицина, 2003. 288 c.; Rosenbaum JT, Planck ST, Huang XN, Rich L, Ansel JC. Detection of mRNA for the cytokines, interleukin-1α and interleukin-8, in corneas from patients with pseudophakic bullous keratopathy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1995;36(10):2151–2155.; Lahdou I, Engler C, Mehrle S, Daniel V, Sadeghi M, Opelz G, Terness P. Role of human corneal endothelial cells in T-cell–mediated alloimmune attack in vitro. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2014;55:1213–1221. doi: 0.1167/iovs.13-11930.; Sagoo P, Chan G, Larkin DF, George AJ. Inflammatory cytokines induce apoptosis of corneal endothelium through nitric oxide. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2004;45(11):3964–3973. doi:10.1167/iovs.04-0439.; Sugita S, Usui Y, Horie S, Futagami Y, Yamada Y, Ma J, Kezuka T, Hamada H, Usui T, Mochizuki M, Yamagami S. Human corneal endothelial cells expressing programmed death-ligand 1 (PD-L1) suppress PD-1+ T helper 1 cells by a contact-dependent mechanism. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2009;50(1):263–272. doi:10.1167/iovs.08-2536.; Фисенко НВ, Труфанов СВ, Аветисов КС, Вторушина ВВ, Суббот АМ. Определение уровня цитокинов во внутриглазной жидкости при эндотелиальной дистрофии роговицы Фукса и вторичной буллезной кератопатии. Вестник офтальмологии. 2021;137(3):13–18. doi:10.17116/oftalma202113703113.; Cubitt CL, Lausch RN, Oakes JE. Differences in interleukin-6 gene expression between cultured human corneal epithelial cells and keratocytes. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1995;36(2):330–336.; Yamagami H, Yamagami S, Inoki T, Amano S, Miyata K. The effects of proinflammatory cytokines on cytokine-chemokine gene expression profiles in the human corneal endothelium. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2003;44(2):514–520. doi:10.1167/iovs.02-0498.; Yagi-Yaguchi Y, Yamaguchi T, Higa K, Suzuki T, Aketa N, Dogru M, Satake Y, Shimazaki J. Association between corneal endothelial cell densities and elevated cytokine levels in the aqueous humor. Sci Rep. 2017;7(1):13603. doi:10.1038/s41598-017-14131-3.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2104

الاتاحة: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2104
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2023-2-253-259

المؤلفون: Z. R. Korobova, Areg A. Totolian, З. Р. Коробова, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 25, № 4 (2023); 773-778 ; Медицинская иммунология; Том 25, № 4 (2023); 773-778 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: дендритные клетки, COVID-19, chemokines, multiplex analysis, post-COVID, dendritic cells, хемокины, мультиплексный анализ, постковидный синдром

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2804/1691; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11768; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11769; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11770; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11771; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11772; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11773; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11774; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11775; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/12214; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/12232; Арсентьева Н.А., Любимова Н.Е., Бацунов О.К., Коробова З.Р., Станевич О.В., Лебедева А.А., Воробьев Е.А., Воробьева С.В., Куликов А.Н., Лиознов Д.А., Шарапова М.А., Певцов Д.Э., Тотолян А.А. Цитокины в плазме крови больных COVID-19 в острой фазе заболевания и фазе полного выздоровления. Медицинская иммунология. 2021;23(2):311-326.; Arsentieva N.A., Liubimova N.E., Batsunov O.K., et al. Predictive value of specific cytokines for lethal COVID-19 outcome // Russian Journal of Infection and Immunity. - 2022. - Vol. 12. - N. 5. - P. 859-868.; Boechat JL, Chora I, Morais A, Delgado L. The immune response to SARS-CoV-2 and COVID-19 immunopathology - Current perspectives. Pulmonology. 2021 Sep-Oct;27(5):423-437.; Borczuk, A.C., Yantiss, R.K. The pathogenesis of coronavirus-19 disease. J Biomed Sci 29, 87 (2022).; Chang T, Yang J, Deng H, Chen D, Yang X, Tang ZH. Depletion and Dysfunction of Dendritic Cells: Understanding SARS-CoV-2 Infection. Front Immunol. 2022 Feb 21;13:843342.; Ghizlane EA, Manal M, Abderrahim EK, Abdelilah E, Mohammed M, Rajae A, Amine BM, Houssam B, Naima A, Brahim H. Lymphopenia in Covid-19: A single center retrospective study of 589 cases. Ann Med Surg (Lond). 2021 Sep;69:102816.; Korobova ZR, Arsentieva NA, Liubimova NE, Batsunov OK, Dedkov VG, Gladkikh AS, Sharova AA, Adish Z, Chernykh EI, Kaschenko VA, Ratnikov VA, Gorelov VP, Stanevich OV, Kulikov AN, Pevtsov DE, Totolian AA. Cytokine Profiling in Different SARS-CoV-2 Genetic Variants. Int J Mol Sci. 2022 Nov 16;23(22):14146.; Liu YC, Kuo RL, Shih SR. COVID-19: The first documented coronavirus pandemic in history. Biomed J. 2020 Aug;43(4):328-333.; Merad M, Blish CA, Sallusto F, Iwasaki A. The immunology and immunopathology of COVID-19. Science. 2022 Mar 11;375(6585):1122-1127.; Salamanna F, Maglio M, Landini MP, Fini M. Body Localization of ACE-2: On the Trail of the Keyhole of SARS-CoV-2. Front Med (Lausanne). 2020 Dec 3;7:594495.; Tufa A, Gebremariam TH, Manyazewal T, Getinet T, Webb DL, Hellström PM, Genet S. Inflammatory mediators profile in patients hospitalized with COVID-19: A comparative study. Front Immunol. 2022 Jul 25;13:964179.; Ubanako P, Xelwa N, Ntwasa M. LPS induces inflammatory chemokines via TLR-4 signalling and enhances the Warburg Effect in THP-1 cells. PLoS One. 2019 Sep 27;14(9):e0222614.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2804

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2804
https://doi.org/10.15789/1563-0625-MCD-2804

المؤلفون: Arsentieva N.A., Liubimova N.E., Batsunov O.K., Korobova Z.R., Kuznetsova R.N., Rubinstein A.A., Stanevich O.V., Lebedeva A.A., Vorobyev E.A., Vorobieva S.V., Kulikov A.N., Gavrilova E.G., Pevtcov D.E., Polushin Y.S., Shlyk I.V., Totolian A.A.

المساهمون: 1

المصدر: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 12, No 5 (2022); 859-868 ; Инфекция и иммунитет; Vol 12, No 5 (2022); 859-868 ; 2313-7398 ; 2220-7619

مصطلحات موضوعية: cytokines, decision trees, multiplex analysis, COVID-19, severity, interleukins, цитокины, деревья решений, мультиплексный анализ, тяжесть, интерлейкины

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/2043/1569; https://iimmun.ru/iimm/article/view/2043/1647; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8910; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8911; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8912; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8913; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8914; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8915; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8916; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8917; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8918; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8919; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8920; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8929; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8930; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8931; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/8952; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/10261; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/10262; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2043/10263; https://iimmun.ru/iimm/article/view/2043

الاتاحة: https://iimmun.ru/iimm/article/view/2043
https://doi.org/10.15789/2220-7619-PVO-2043

المؤلفون: Наталья Николаевна Сушенцева, Олег Сергеевич Попов, Светлана Вячеславовна Апалько, Ирина Андреевна Полковникова, Анна Арьевна Анисенкова, Сергей Викторович Мосенко, Сергей Григорьевич Щербак

المصدر: University Therapeutic Journal, Vol 4 (2022)

مصطلحات موضوعية: COVID-19, биомаркеры, цитокины, мультиплексный анализ, Medicine

وصف الملف: electronic resource

Relation: http://ojs3.gpmu.org/index.php/Un-ther-journal/article/view/4739; https://doaj.org/toc/2713-1912; https://doaj.org/toc/2713-1920

URL الوصول: https://doaj.org/article/2dcc27e5b1d14185939659ebbcd74394

المؤلفون: N. A. Lapkina, A. A. Baranov, N. E. Abaytova, N. Yu. Levshin, O. P. Rechkina, E. A. Leontyeva, A. S. Avdeyeva, A. S. Artyukhov, E. L. Nasonov, Н. А. Лапкина, А. А. Баранов, Н. Е. Абайтова, Н. Ю. Левшин, О. П. Речкина, Е. А. Леонтьева, А. С. Авдеева, А. С. Артюхов, Е. Л. Насонов

المصدر: Rheumatology Science and Practice; Vol 60, No 5 (2022); 554-559 ; Научно-практическая ревматология; Vol 60, No 5 (2022); 554-559 ; 1995-4492 ; 1995-4484

مصطلحات موضوعية: мультиплексный анализ, interleukin 31, interleukin 33, multiplex analysis, интерлейкин 31, интерлейкин 33

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/3222/2226; Smolen JS, Aletaha D, McInnes IB. Rheumatoid arthritis. Lancet. 2016;388(10055):2023–2038. doi:10.1016/S0140-6736(16)30173-8; McInnes IB, Buckley CD, Isaacs JD. Cytokines in rheumatoid arthritis – Shaping the immunological landscape. Nat Rev Rheumatol. 2016;12(1):63–68. doi:10.1038/nrrheum.2015.171; Ridgley LA, Anderson AE, Pratt AG. What are the dominant cytokines in early rheumatoid arthritis? Curr Opin Rheumatol. 2018;30(2):207–214. doi:10.1097/BOR.0000000000000470; Alunno A, Carubbi F, Giacomelli R, Gerli R. Cytokines in the pathogenesis of rheumatoid arthritis: New players and therapeutic targets. BMC Rheumatol. 2017;1:3. doi:10.1186/s41927-017-0001-8; Chen Z, Bozec A, Ramming A, Schett G. Anti-inflammatory and immune-regulatory cytokines in rheumatoid arthritis. Nat Rev Rheumatol. 2019;15(1):9–17. doi:10.1038/s41584-; Liu C, Chu D, Kalantar-Zadeh K, George J, Young HA, Liu G. Cytokines: From clinical significance to quantification. Adv Sci (Weinh). 2021;8(15):e2004433. doi:10.1002/advs.202004433; Kany S, Vollrath JT, Relja B. Cytokines in inflammatory disease. Int J Mol Sci. 2019;20(23):6008. doi:10.3390/ijms20236008; Dong Y, Zhong J, Dong L. IL-33 in rheumatic diseases. Front Med (Lausanne). 2021;8:739489. doi:10.3389/fmed.2021.739489; Akdis M, Aab A, Altunbulakli C, Azkur K, Costa RA, Crameri R, et al. Interleukins (from IL-1 to IL-38), interferons, transforming growth factor β, and TNF-α: Receptors, functions, and roles in diseases. J Allergy Clin Immunol. 2016;138(4):984–1010. doi:10.1016/j.jaci.2016.06.033.; Murdaca G, Greco M, Tonacci A, Negrini S, Borro M, Puppo F, et al. IL-33/IL-31 axis in immune-mediated and allergic diseases. Int J Mol Sci. 2019;20(23):5856. doi:10.3390/ijms20235856; Cayrol C. IL-33, an alarmin of the IL-1 family involved in allergic and non allergic inflammation: Focus on the mechanisms of regulation of its activity. Cells. 2021;11(1):107. doi:10.3390/ cells11010107; Borgia F, Custurone P, Li Pomi F, Cordiano R, Alessandrello C, Gangemi S. IL-31: State of the art for an inflammation-oriented interleukin. Int J Mol Sci. 2022;23(12):6507. doi:10.3390/ ijms23126507; Pelaia C, Pelaia G, Longhini F, Crimi C, Calabrese C, Gallelli L, et al. Monoclonal antibodies targeting alarmins: A new perspective for biological therapies of severe asthma. Biomedicines. 2021;9(9):1108. doi:10.3390/biomedicines9091108; Aletaha D, Neogi T, Silman AJ, Funovits J, Felson DT, Bingham CO 3rd, et al. 2010 Rheumatoid arthritis classification criteria: An American College of Rheumatology/European League Against Rheumatism collaborative initiative. Arthritis Rheum. 2010;62(9):2569–2581. doi:10.1002/art.27584; England BR, Tiong BK, Bergman MJ, Curtis JR, Kazi S, Mikuls TR, et al. 2019 update of the American College of Rheumatology recommended rheumatoid arthritis disease activity measures. Arthritis Care Res (Hoboken). 2019;71(12):1540–1555. doi:10.1002/acr.24042; Новиков АА, Александрова ЕН, Герасимов АН, Каратеев ДЕ, Попкова ТВ, Лучихина ЕЛ и др. Применение многопараметрического анализа лабораторных биомаркеров для оценки активности ревматоидного артрита. Научно-практическая ревматология. 2015;53(6):591–595.; Eastman PS, Manning WC, Qureshi F, Haney D, Cavet G, Alexander C, et al. Characterization of a multiplex, 12-biomarker test for rheumatoid arthritis. J Pharm Biomed Anal. 2012;70:415–424. doi:10.1016/j.jpba.2012.06.003; Centola M, Cavet G, Shen Y, Ramanujan S, Knowlton N, Swan KA, et al. Development of a multi-biomarker disease activity test for rheumatoid arthritis. PLoS One. 2013;8(4):e60635. doi:10.1371/journal.pone.0060635; Laborde CM, Castro-Santos P, Díaz-Peña R. Contribution of multiplex immunoassays to rheumatoid arthritis management: From biomarker discovery to personalized medicine. J Pers Med. 2020;10(4):202. doi:10.3390/jpm10040202; Burska A, Boissinot M, Ponchel F. Cytokines as biomarkers in rheumatoid arthritis. Mediators Inflamm. 2014;2014:545493. doi:10.1155/2014/545493; Palmer G, Talabot-Ayer D, Lamacchia C, Toy D, Seemayer CA, Viatte S, et al. Inhibition of interleukin-33 signaling attenuates the severity of experimental arthritis. Arthritis Rheum. 2009;60(3): 738–749. doi:10.1002/art.24305; Li Y, Fu Y, Chen H, Liu X, Li M. Blocking interleukin-33 alleviates the joint inflammation and inhibits the development of collagen-induced arthritis in mice. J Immunol Res. 2020;2020:4297354. doi:10.1155/2020/4297354; Xu D, Jiang HR, Kewin P, Li Y, Mu R, Fraser AR, et al. IL-33 exacerbates antigen-induced arthritis by activating mast cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008;105(31):10913–10918. doi:10.1073/ pnas.0801898105; Xu D, Jiang HR, Li Y, Pushparaj PN, Kurowska-Stolarska M, Leung BP, et al. IL-33 exacerbates autoantibody-induced arthritis. J Immunol. 2010;184(5):2620–2626. doi:10.4049/jimmunol.0902685; Kunisch E, Chakilam S, Gandesiri M, Kinne RW. IL-33 regulates TNF-α dependent effects in synovial fibroblasts. Int J Mol Med. 2012;29(4):530–540. doi:10.3892/ijmm.2012.883; Biton J, Khaleghparast Athari S, Thiolat A, Santinon F, Lemeiter D, Hervé R, et al. In vivo expansion of activated Foxp3+ regulatory T cells and establishment of a type 2 immune response upon IL-33 treatment protect against experimental arthritis. J Immunol. 2016;197(5):1708–1719. doi:10.4049/jimmunol.1502124; Rivellese F, Suurmond J, Habets K, Dorjée AL, Ramamoorthi N, Townsend MJ, et al. Ability of interleukin-33- and immune complex-triggered activation of human mast cells to down-regulate monocyte-mediated immune responses. Arthritis Rheumatol. 2015;67(9):2343–2353. doi:10.1002/art.39192; Lee EJ, So MW, Hong S, Kim YG, Yoo B, Lee CK. Interleukin-33 acts as a transcriptional repressor and extracellular cytokine in fibroblast-like synoviocytes in patients with rheumatoid arthritis. Cytokine. 2016;77:35–43. doi:10.1016/j.cyto.2015.10.005; Ahmed A, Koma MK. Interleukin-33 triggers B1 cell expansion and its release of monocyte/macrophage chemoattractants and growth factors. Scand J Immunol. 2015;82(2):118–124. doi:10.1111/sji.12312; Sattler S, Ling GS, Xu D, Hussaarts L, Romaine A, Zhao H, et al. IL-10-producing regulatory B cells induced by IL-33 (Breg(IL-33)) effectively attenuate mucosal inflammatory responses in the gut. J Autoimmun. 2014;50(100):107–122. doi:10.1016/j.jaut.2014.01.032; Hong YS, Moon SJ, Joo YB, Jeon CH, Cho ML, Ju JH, et al. Measurement of interleukin-33 (IL-33) and IL-33 receptors (sST2 and ST2L) in patients with rheumatoid arthritis. J Korean Med Sci. 2011;26(9):1132–1139. doi:10.3346/jkms.2011.26.9.1132; Erfurt S, Hoffmeister M, Oess S, Asmus K, Ritter O, Patschan S, et al. Serum IL-33 as a biomarker in different diseases: Useful parameter or much need for clarification? J Circ Biomark. 2021;10:20–25. doi:10.33393/jcb.2021.2327; Mu R, Huang HQ, Li YH, Li C, Ye H, Li ZG. Elevated serum interleukin 33 is associated with autoantibody production in patients with rheumatoid arthritis. J Rheumatol. 2010; 37(10):2006–2013. doi:10.3899/jrheum.100184; Tang S, Huang H, Hu F, Zhou W, Guo J, Jiang H, et al. Increased IL-33 in synovial fluid and paired serum is associated with disease activity and autoantibodies in rheumatoid arthritis. Clin Dev Immunol. 2013;2013:985301. doi:10.1155/2013/985301; Choi IA, Lee SJ, Park W, Park SH, Shim SC, Baek HJ, et al. Effects of tocilizumab therapy on serum interleukin-33 and interleukin-6 levels in patients with rheumatoid arthritis. Arch Rheumatol. 2018;33(4):389–394. doi:10.5606/ArchRheumatol.2018.6753; Xiangyang Z, Lutian Y, Lin Z, Liping X, Hui S, Jing L. Increased levels of interleukin-33 associated with bone erosion and interstitial lung diseases in patients with rheumatoid arthritis. Cytokine. 2012;58(1):6–9. doi:10.1016/j.cyto.2011.12.010; Kageyama Y, Torikai E, Tsujimura K, Kobayashi M. Involvement of IL-33 in the pathogenesis of rheumatoid arthritis: the effect of etanercept on the serum levels of IL-33. Mod Rheumatol. 2012;22(1):89–93. doi:10.1007/s10165-011-0480-1; Shen J, Shang Q, Wong CK, Li EK, Wang S, Li RJ, et al. IL-33 and soluble ST2 levels as novel predictors for remission and progression of carotid plaque in early rheumatoid arthritis: A prospective study. Semin Arthritis Rheum. 2015;45(1):18–27. doi:10.1016/j.semarthrit.2015.02.001; Shi LJ, Liu C, Li JH, Zhu XY, Li YN, Li JT. Elevated levels of soluble ST2 were associated with rheumatoid arthritis disease activity and ameliorated inflammation in synovial fibroblasts. Chin Med J (Engl). 2018;131(3):316–322. doi:10.4103/0366- 6999.223847; Matsuyama Y, Okazaki H, Hoshino M, Onishi S, Kamata Y, Nagatani K, et al. Sustained elevation of interleukin-33 in sera and synovial fluids from patients with rheumatoid arthritis non-responsive to anti-tumor necrosis factor: Possible association with persistent IL-1β signaling and a poor clinical response. Rheumatol Int. 2012;32(5):1397–1401. doi:10.1007/s00296-011-1854-6; Sellam J, Rivière E, Courties A, Rouzaire PO, Tolusso B, Vital EM, et al. Serum IL-33, a new marker predicting response to rituximab in rheumatoid arthritis. Arthritis Res Ther. 2016; 18(1):294. doi:10.1186/s13075-016-1190-z; Rivière E, Sellam J, Pascaud J, Ravaud P, Gottenberg JE, Mariette X. Serum IL-33 level is associated with auto-antibodies but not with clinical response to biologic agents in rheumatoid arthritis. Arthritis Res Ther. 2018;20(1):122. doi:10.1186/s13075-018- 1628-6; https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/3222

الاتاحة: https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/3222
https://doi.org/10.47360/1995-4484-2022-554-559

المؤلفون: V. V. Neroev, S. V. Saakyan, L. A. Katargina, N. V. Balatskaya, I. G. Kulikova, E. B. Myakoshina, В. В. Нероев, С. В. Саакян, Л. А. Катаргина, Н. В. Балацкая, И. Г. Куликова, Е. Б. Мякошина

المصدر: Ophthalmology in Russia; Том 19, № 1 (2022); 156-166 ; Офтальмология; Том 19, № 1 (2022); 156-166 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2022-1

مصطلحات موضوعية: слезная жидкость, inflammation, cytokines, multiplex analysis, lacrimal fluid, воспаление, цитокины, мультиплексный анализ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1785/949; Саакян С.В., Балацкая Н.В., Катаргина Л.А., Куликова И.Г., Мякошина Е.Б. Субпопуляционный состав лимфоцитов периферической крови при увеальной меланоме. Медицинская иммунология. 2019;21(4):765–772. DOI:10.15789/1563-0625-2019-4-765-772; Кричевская Г.И., Слепова О.С., Саакян С.В., Мякошина Е.Б. Влияние герпесвирусных инфекций на уровень сывороточного интерферона-альфа и интерферона-гамма у пациентов с начальной меланомой хориоидеи. Российский офтальмологический журнал. 2014;7(2):28–31.; Симбирцев А.С. Цитокины — новая система регуляции защитных реакций организма. Цитокины и воспаление. 2002;1(1):9–16.; Нероев В.В., Зайцева О.В., Балацкая Н.В., Лазутова А.А. Локальная и системная продукция 45 цитокинов при осложненной пролиферативной диабетической ретинопатии. Медицинская иммунология. 2020;22(2):301–310. DOI:10.15789/1563-0625-LAS-1802; Егорова Э.В., Иошин И.Э., Толчинская А.И., Власова Т.И. Иммунологические методы прогноза в хирургии осложненных катаракт. Офтальмохирургия. 1997;3:25–32.; Nagarkatti-Gude N., Bronkhorst I.H., van Duinen S.G., Luyten G.P., Jager M.J. Cytokines and chemokines in the vitreous fluid of eyes with uveal melanoma. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012;53:6748–6755. DOI:10.1167/iovs.12-10123.; Franco R., Botti G., Mascolo M., Loquercio G., Liguori G., Ilardi G., Losito S., Mura A.L., Calemma R., Ierano C., Bryce J., D’Alterio C., Scalaet S. CXCR4-CXCL12 and VEGF correlate to uveal melanoma progression. Frontiers in bioscience (Elite edition). 2010;2:13–21. DOI:10.2741/e60; Лихванцева В.Г., Слепова О.С., Бровкина А.Ф. Кинетика продукции иммунорегуляторных пептидов цитокинового ряда у больных с различными стадиями увеальной меланомы. Медицинская иммунология. 1999;1(3–4):39–40.; Карагодин В.П., Мельниченко А.А., Орехов А.Н. Белки-хемокины: роль в канцерогенезе и воспалении. Патогенез. 2015;13(4):28–33.; Клинические рекомендации «Увеальная меланома», 2020. https://oncology-association.ru/files/newclinical-guidelines/uvealnaja_melanoma.pdf; Амирян А.Г., Саакян С.В. Факторы прогноза увеальной меланомы. Вестник офтальмологии. 2015;1:90–94. DOI:10.17116/oftalma2015131190-94; Мякошина Е.Б., Саакян С.В. Оптическая когерентная томография в диагностике начальной меланомы хориоидеи. Вестник офтальмологии. 2020;136(1):56–64. DOI:10.17116/oftalma202013601156; Mantovani A., Allavena P., Sica A., Balkwill F. Cancer-related inflammation. Nature. 2008 Jul 24;454(7203):436–444. DOI:10.1038/nature07205; Trinchieri G. Cancer and inflammation: an old intuition with rapidly evolving new concepts. Annu Rev Immunol. 2012;30:677–706. DOI:10.1146/annurev-immunol-020711-075008; Kaplan R.N., Riba R.D., Zacharoulis S., Bramley A.H., Vincent L., Costa C., Mac-Donald D.D., Jin D.K., Shido K., Kerns S.A., Zhu Z., Hicklin D., Wu Y., Port J.L., Altorki N., Port E.R., Ruggero D., Shmelkov S.V.,Jensen K.K., Rafii S., Lyden D. VEGFR1-positive haematopoietic bone marrow progenitors initiate the premetastatic niche. Nature. 2005;438(7069):820–827. DOI:10.1038/nature04186.8; Nguyen D.X., Bos P.D., Massague J. Metastasis: from dissemination to organ-specific colonization. Nat Rev Cancer. 2009;9(4):274–284. DOI:10.1038/nrc2622; Аronow M.E., Topham A.K., Singh A.D. Uveal Melanoma: 5-Year Update on Incidence, Treatment, and Survival (SEER 1973-2013). Ocul Oncol Pathol. 2018;4(3):145–151. DOI:10.1159/000480640; Dunavoelgyi R., Funk M., Sacu S., Georgopoulos M., Zlabinger G., Zehetmayer M., Schmidt-Erfurth U. Intraocular activation of angiogenic and inflammatory pathways in uveal melanoma. Retina. 2012;32:1373–1384. DOI:10.1097/IAE.0b013e318239e299; Vanky F., Nagy N., Hising C., Sjovall K., Larson B., Klein E. Human ex vivo carcinoma cells produce transforming growth factor beta and thereby can inhibit lymphocyte functions in vitro. Cancer Immunol Immunother. 1997;43:317–323.; Cao Y., Cao R., Hedlund E.M. R Regulation of tumor angiogenesis and metastasis by FGF and PDGF signaling pathways. J Mol Med (Berl). 2008;86:785–789. DOI:10.1007/s00109-008-0337-z; Ma D., Neiderkorn J.Y. Role of epidermal growth factor receptor in the metastasis of intraocular melanomas. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1998;39:1067–1075.; Crosby M.B., Yang H., Gao W., Zhang L., Grossniklaus H.E. Serum vascular endothelial growth factor (VEGF) levels correlate with number and location of micrometastases in a murine model of uveal melanoma. British Journal of Ophthalmology. 2011;95:112–117. DOI:10.1136/bjo.2010.182402; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1785

الاتاحة: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1785
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2022-1-156-166

المؤلفون: V. V. Neroev, S. V. Saakyan, L. A. Katargina, N. V. Balatskaya, I. G. Kulikova, E. B. Myakoshina, В. В. Нероев, С. В. Саакян, Л. А. Катаргина, Н. В. Балацкая, И. Г. Куликова, Е. Б. Мякошина

المصدر: Ophthalmology in Russia; Том 19, № 2 (2022); 378-383 ; Офтальмология; Том 19, № 2 (2022); 378-383 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2022-2

مصطلحات موضوعية: сыворотка крови, inflammation, cytokines, multiplex analysis, blood serum, воспаление, цитокины, мультиплексный анализ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1863/986; Hanahan D., Weinberg R.A. The Hallmarks of Cancer. Cell. 2000;100:57-70. DOI:10.1016/s0092-8674(00)81683-9; Colotta F., Allavena P., Sica A., Garlanda C., Mantovani A. Cancer-related inflammation, the seventh hallmark of cancer: links to genetic instability. Carcinogenesis. 2009;30:1073–1081. DOI:10.1093/carcin/bgp127; Mantovani A., Allavena P., Sica A., Balkwill F. Cancer-related inflammation. Nature. 2008 Jul 24;454(7203):436–444. DOI:10.1038/nature07205; Trinchieri G. Cancer and inflammation: an old intuition with rapidly evolving new concepts. Annu Rev Immunol. 2012;30:677–706. DOI:10.1146/annurev-immunol-020711-075008; Савельева О.Е., Перельмутер В.М., Таширева Л.А., Денисов Е.В., Исаева А.В. Воспаление как терапевтическая мишень при комплексном лечении злокачественных опухолей. Сибирский онкологический журнал. 2017;16(3):65–78. DOI:10.21294/1814-4861-2017-16-3-65-78; Клинические рекомендации «Увеальная меланома», 2020. https://oncology-association.ru/files/newclinical-guidelines/uvealnaja_melanoma.pdf; Kaplan R.N., Riba R.D., Zacharoulis S., Bramley A.H., Vincent L., Costa C., MacDonald D.D., Jin D.K., Shido K., Kerns S.A., Zhu Z., Hicklin D., Wu Y., Port J.L., Altorki N., Port E.R., Ruggero D., Shmelkov S.V., Jensen K.K., Rafii S., Lyden D. VEGFR1-positive haematopoietic bone marrow progenitors initiate the premetastatic niche. Nature. 2005 Dec 8;438(7069):820–827. DOI:10.1038/nature04186.8; Саакян С.В., Захарова Г.П., Мякошина Е.Б. Клеточное микроокружение увеальной меланомы: клинико-морфологические корреляции и предикторы неблагоприятного прогноза. Молекулярная медицина. 2020;18(3):27–33. DOI:10.29296/24999490-2020-03-04; Саакян С.В., Захарова Г.П., Мякошина Е.Б. Тучные клетки в микроокружении увеальной меланомы. Архив патологии. 2019;81(6):63–70. DOI:org/10.17116/patol20198106163; Мякошина Е.Б., Куликова И.Г., Балацкая Н.В., Катаргина Л.А., Саакян С.В. Трансформирующий фактор роста TGF-β при различном клиническом течении начальной меланомы хориоидеи до и после органосохранного лечения. Офтальмохирургия. 2020;3:58–64. DOI:10.25276/0235-4160-2020-3-58-64; Bierie В., Moses H.L. TGF-beta and cancer. Cytokine growth factor Rev. 2006;17:29–40.; Siegel Р., Massague J. Cytostatic and apoptotic actions of TGF-beta in homeostasis and cancer. Nat Rev Cancer. 2003;3:807–821. DOI:10.1038/nrc1208; Kawakami K., Kawakami M., Joshi B.H., Puri R.K. Interleukin-13 receptor-targeted cancer therapy in an immunodeficient animal model of human head and neck cancer. Cancer Res. 2001;61:6194–6200.; Hendrix M.J.C., Seftor E.A., Seftor R.E.B., Kirschmann D.A., Gardner L.M., Boldt H.C., Meyer M., Pe’er J., Folberg R. Regulation of uveal melanoma interconverted phenotype by hepatocyte growth factor/ scatter factor (HGF/SF). Am J Pathol. 1998;152:855–863.; Monique H., Hurks H., Metzelaar-Blok J.A., Barthen E. R., Zwinderman A.H., WolffRouendaal D., Keunen J.E., Jager M.J. Expression of epidermal growth factor receptor: risk factor in uveal melanoma. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2000;41:2023–2027.; Franco R., Botti G., Mascolo M., Loquercio G., Liguori G., Ilardi G., Losito S., Mura A.L., Calemma R., Ierano C., Bryce J., D’Alterio C., Scalaet S. CXCR4-CXCL12 and VEGF correlate to uveal melanoma progression. Frontiers in bioscience (Elite edition). 2010;2:13–21. DOI:10.2741/e60; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1863

الاتاحة: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1863
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2022-2-378-383

المؤلفون: E. L. Savlevich, A. V. Zurochka, O. M. Kurbacheva, V. I. Egorov, L. E. Gaganov, E. V. Lyubimova, Е. Л. Савлевич, А. В. Зурочка, О. М. Курбачева, В. И. Егоров, Л. Е. Гаганов, Е. В. Любимова

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 24, № 1 (2022); 147-156 ; Медицинская иммунология; Том 24, № 1 (2022); 147-156 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: ремоделирование слизистой оболочки верхних дыхательных путей, transforming growth factors TGF- β1, transforming growth factors TGF- β2, transforming growth factors TGF- β3, chronic rhinosinusitis, phenotypes, multiplex analysis, cytokines, asthma, allergic rhinitis, upper airway remodeling, трансформирующие факторы роста TGF- β1, трансформирующие факторы роста TGF- β2, трансформирующие факторы роста TGF- β3, фенотипы, мультиплексный анализ, цитокины, бронхиальная астма, аллергический ринит

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2365/1509; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8392; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8393; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8394; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8395; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8396; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8397; Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в биомедицинских исследованиях. Екатеринбург: РИО УрО РАН, 2018. 720 с.; Камышова Е.С., Бобкова И.Н., Кутырина И.М. Современные представления о роли микроРНК при диабетической нефропатии: потенциальные биомаркеры и мишени таргетной терапии // Сахарный диабет, 2017. Т. 20, № 1. С. 42-50.; Савлевич Е.Л., Дынева М.Е., Гаганов Л.Е., Егоров В.И., Герасимов А.Н., Курбачева О.М. Лечебно-диагностический алгоритм при разных фенотипах полипозного риносинусита // Российский аллергологический журнал, 2019. Т. 16, № 2. С. 50-60.; Савлевич E.Л., Курбачева О.М., Егоров В.И., Дынева М.Е., Шиловский И.П., Хаитов М.Р. Уровень экспрессии генов цитокинов при разных фенотипах полипозного риносинусита // Вестник оториноларингологии, 2019. Т. 84, № 6. С. 42-47.; Савлевич Е.Л., Курбачева О.М. Особенности течения полипозного риносинусита в сочетании с аллергическим ринитом // Медицинский Совет, 2019. №. 20. С. 38-43.; Савлевич Е.Л., Черенкова В.А., Молодницкая А.Ю. Принципы базисной терапии полипозного риносинусита // Медицинский Совет, 2020. № 16. С. 73-78.; Dropmann A., Dediulia T., Breitkopf-Heinlein K., Korhonen H., Janicot M., Weber S.N., Thomas M., Piiper A., Bertran E., Fabregat I., Abshagen K., Hess J., Angel P., Coulouarn C., Dooley S., Meindl-Beinker N.M. TGF-1 and TGF-2 abundance in liver diseases of mice and men. Oncotarget, 2016, Vol. 7, no. 15, pp. 19499-19518.; Hupin C., Gohy S., Bouzin C., Lecocq M., Polette M., Pilette C. Features of mesenchymal transition in the airway epithelium from chronic rhinosinusitis. Allergy, 2014, Vol. 69, no. 11, pp. 1540-1549.; Huriyati E., Darwin E., Yanwirasti Y., Wahid I. Association of Inflammation Mediator in Mucosal and Tissue of Chronic Rhinosinusitis with Recurrent Nasal Polyp. Open Access Maced. J. Med. Sci., 2019, Vol. 7, no. 10, pp. 1635-1640.; Komai T., Okamura T., Inoue M., Yamamoto K., Fujio K. Reevaluation of Pluripotent Cytokine TGF-3 in Immunity. Int. J. Mol. Sci., 2018, Vol. 19, no. 8, 2261. doi:10.3390/ijms19082261.; Li X., Li C., Zhu G., Yuan W., Xiao ZA. TGF-1 Induces Epithelial-Mesenchymal Transition of Chronic Sinusitis with Nasal Polyps through MicroRNA-21. Int. Arch. Allergy Immunol., 2019, Vol. 179, no. 4, pp. 304-319.; Li Y.C., An Y.S., Wang T., Zang H.R. Analysis of transforming growth factor  signaling in chronic rhinosinusitis. Chin. Med. J. (Engl.), 2013, Vol. 126, no. 17, pp. 3340-3343.; Little S.C., Early S.B., Woodard C.R., Shonka D.C. Jr, Han J.K., Borish L., Steinke J.W. Dual action of TGF-beta1 on nasal-polyp derived fibroblasts. Laryngoscope, 2008, Vol. 118, no. 2, pp. 320-324.; Okamura T., Sumitomo S., Morita K., Iwasaki Y., Inoue M., Nakachi S., Komai T., Shoda H., Miyazaki J., Fujio K., Yamamoto K. TGF-3-expressing CD4+CD25(-)LAG3+ regulatory T cells control humoral immune responses. Nat. Commun., 2015, Vol. 6, 6329. doi:10.1038/ncomms7329.; Schleimer R.P. Immunopathogenesis of Chronic Rhinosinusitis and Nasal Polyposis. Annu. Rev. Pathol., 2017, Vol. 12, pp. 331-357.; Serpero L., Petecchia L., Sabatini F., Giuliani M., Silvestri M., Di Blasi P., Rossi GA. The effect of transforming growth factor (TGF)-beta1 and (TGF)-beta2 on nasal polyp fibroblast activities involved upper airway remodeling: modulation by fluticasone propionate. Immunol. Lett., 2006, Vol. 105, no. 1, pp. 61-67.; Shi L.L., Xiong P., Zhang L., Cao P.P., Liao B., Lu X., Cui Y.H., Liu Z. Features of airway remodeling in different types of Chinese chronic rhinosinusitis are associated with inflammation patterns. Allergy, 2013, Vol. 68, no. 1, pp. 101-109.; Sidhu S.S., Yuan S., Innes A.L., Kerr S., Woodruff P.G., Hou L., Muller S.J., Fahy J.V. Roles of epithelial cell-derived periostin in TGF-beta activation, collagen production, and collagen gel elasticity in asthma. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 2010, Vol. 107, no. 32, pp. 14170-14175.; Teranishi Y., Jin D., Takano S., Sunami K., Takai S. Decrease in number of mast cells in resected nasal polyps as an indicator for postoperative recurrence of chronic rhinosinusitis. Immun. Inflamm. Dis., 2019, Vol. 7, no. 3, pp. 191-200.; Travis M.A., Sheppard D. TGF- activation and function in immunity. Annu. Rev. Immunol., 2014, Vol. 32, pp. 51-82.; Tsuchida Y., Sumitomo S., Ishigaki K., Suzuki A., Kochi Y., Tsuchiya H., Ota M., Komai T., Inoue M., Morita K., Okamura T., Yamamoto K., Fujio K. TGF-3 Inhibits Antibody Production by Human B Cells. PLoS One, 2017, Vol. 12, no. 1, e0169646. doi:10.1371/journal.pone.0169646.; van Bruaene N., Derycke L., Perez-Novo C.A., Gevaert P., Holtappels G., De Ruyck N., Cuvelier C., van Cauwenberge P., Bachert C. TGF-beta signaling and collagen deposition in chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol., 2009, Vol. 124, no. 2, pp. 253-259.; van Zele T., Claeys S., Gevaert P., van Maele G., Holtappels G., van Cauwenberge P., Bachert C. Differentiation of chronic sinus diseases by measurement of inflammatory mediators. Allergy, 2006, Vol. 61, no. 11, pp. 1280-1289.; Yamin M., Holbrook E.H., Gray S.T., Busaba N.Y., Lovett B., Hamilos D.L. Profibrotic transforming growth factor beta 1 and activin A are increased in nasal polyp tissue and induced in nasal polyp epithelium by cigarette smoke and Toll-like receptor 3 ligation. Int. Forum Allergy Rhinol., 2015, Vol. 5, no. 7, pp. 573-582.; Yang Y., Zhang N., Lan F., van Crombruggen K., Fang L., Hu G., Hong S., Bachert C. Transforming growth factor-beta 1 pathways in inflammatory airway diseases. Allergy, 2014, Vol. 69, no. 6, pp. 699-707.; Yarmohammadi M.E., Saderi H., Izadi P., Afshin MS., Hashemi M. The role of transforming growth factor beta 1 (TGF1) in nasal and paranasal sinuses polyposis. Iran J. Pathol., 2010, Vol. 5, no. 2, pp. 72-76.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2365

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2365
https://doi.org/10.15789/1563-0625-TGF-2365

المؤلفون: Олег Сергеевич Попов, Анна Арьевна Анисенкова, Сергей Викторович Мосенко, Сергей Григорьевич Щербак

المصدر: University Therapeutic Journal, Vol 4 (2022)

مصطلحات موضوعية: COVID-19, биомаркеры, цитокины, мультиплексный анализ, Medicine

Relation: http://ojs3.gpmu.org/index.php/Un-ther-journal/article/view/4739; https://doaj.org/toc/2713-1912; https://doaj.org/toc/2713-1920; https://doaj.org/article/2dcc27e5b1d14185939659ebbcd74394

الاتاحة: https://doaj.org/article/2dcc27e5b1d14185939659ebbcd74394

المؤلفون: N. Lapkina A., A. Baranov A., N. Abaytova E., N. Levshin Yu., A. Avdeyeva S., E. Leontyeva A., A. Artyukhov S., E. Nasonov L., Н. Лапкина А., А. Баранов А., Н. Абайтова Е., Н. Левшин Ю., А. Авдеева С., Е. Леонтьева А., А. Артюхов С., Е. Насонов Л.

المصدر: Rheumatology Science and Practice; Vol 59, No 6 (2021); 693-699 ; Научно-практическая ревматология; Vol 59, No 6 (2021); 693-699 ; 1995-4492 ; 1995-4484

مصطلحات موضوعية: rheumatoid arthritis, TOFA, cytokines, disease activity, multiplex analysis, ревматоидный артрит, ТОФА, цитокины, активность заболевания, мультиплексный анализ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/3103/2147; Насонов ЕЛ, Каратеев ДЕ. Ревматоидный артрит. Ревматология. Российские клинические рекомендации. М.: ГЭОТАР-Медиа;2020:17-57.; Smolen JS, Aletaha D, Barton A, Burmester GR, Emery P, Firestein GS, et al. Rheumatoid arthritis. Nat Rev Dis Primers. 2018;4:18001. doi:10.1038/nrdp.2018.1; McInnes IB, Schett G. The pathogenesis of rheumatoid arthritis. N Engl J Med. 2011;365(23):2205-2219. doi:10.1056/NEJMra1004965; Smolen JS, Aletaha D, Bijlsma JW, Breedveld FC, Boumpas D, Burmester G, et al.; T2T Expert Committee. Treating rheumatoid arthritis to target: Recommendations of an international task force. Ann Rheum Dis. 2010;69(4):631-637. doi:10.1136/ard.2009.123919; Smolen JS, Landewc RBM, Bijlsma JWJ, Burmester GR, Dougados M, Kerschbaumer A, et al. EULAR recommendations for the management of rheumatoid arthritis with synthetic and biological disease-modifying antirheumatic drugs: 2019 update. Ann Rheum Dis. 2020;79(6):685-699. doi:10.1136/annrheumdis-2019-216655; Fraenkel L, Bathon JM, England BR, StClair EW, Arayssi T, Carandang K, et al. 2021 American College of Rheumatology guideline for the treatment of rheumatoid arthritis. Arthritis Rheumatol. 2021;73(7):1108-1123. doi:10.1002/art.41752; Насонов ЕЛ (ред.). Ревматология. Российские клинические рекомендации. М.:ГЭОТАР-Медиа;2017.; Schwartz DM, Kanno Y, Villarino A, Ward M, Gadina M, O'Shea JJ. JAK inhibition as a therapeutic strategy for immune and inflammatory diseases. Nat Rev Drug Discov. 2017;16(12):843-862. doi:10.1038/nrd.2017.201; Насонов ЕЛ, Лила АМ. Ингибиторы Янускиназ при иммуновоспалительных ревматических заболеваниях: Новые возможности и перспективы. Научно-практическая ревматология. 2019;57(1):8-16. doi:10.14412/1995-4484-2019-8-16; Насонов ЕЛ. Новые подходы к фармакотерапии ревматоидного артрита: Тофацитиниб. Научно-практическая ревматология. 2014;52(2):209-221. doi:10.14412/1995-4484-2014-209-221; Насонов ЕЛ, Авдеева АС, Лила АМ. Эффективность и безопасность тофацитиниба при иммуновоспалительных ревматических заболеваниях (часть I). Научно-практическая ревматология. 2020;58(1):62-79. doi:10.14412/1995-4484-2020-62-79; Nash P, Kerschbaumer A, Dorner T, Dougados M, Fleischmann RM, Geissler K, et al. Points to consider for the treatment of immune-mediated inflammatory diseases with Janus kinase inhibitors: A consensus statement. Ann Rheum Dis. 2021;80(1):71-87. doi:10.1136/annrheumdis-2020-218398; Dhillon S. Tofacitinib: A review in rheumatoid arthritis. Drugs. 2017;77(18):1987-2001. doi:10.1007/s40265-017-0835-9; Авдеева АС, Мисиюк АС, Сатыбалдыев АМ, Лукина ГВ, Сороцкая ВН, Жиляев ЕВ, и др. Анализ результатов терапии тофацитинибом в реальной клинической практике (по данным Общероссийского регистра больных артритом ОРЕЛ). Научно-практическая ревматология. 2020;58(3):262-267. doi:10.14412/1995-4484-2020262-267; Каратеев ДЕ, Абдулганиева ДИ, Бабаева АР, Баранов АА, Евстигнеева ЛП, Иванова ОН, и др. Влияние тофацитиниба на показатели функции и качества жизни у больных ревматоидным артритом, резистентных к синтетическим и биологическим базисным противовоспалительным препаратам, в реальной клинической практике (результаты многоцентрового наблюдательного исследования). Современная ревматология. 2017;11(1):12-18. doi:10.14412/1996-7012-2017-1-12-18; Лучихина ЕЛ, Каратеев ДЕ, Демидова НВ, Мисиюк АС, Александрова ЕН, Новиков АА, и др. Эффективность и безопасность терапии тофацитинибом у больных активным ревматоидным артритом с резистентностью к стандартной терапии: предварительные результаты открытого клинического исследования. Современная ревматология. 2016;10(2):17-23. doi:10.14412/1996-7012-2016-2-17-23; Caporali R, Zavaglia D. Real-world experience with tofacitinib for the treatment of rheumatoid arthritis. Clin Exp Rheumatol. 2019;37(3):485-495.; Migita K, Izumi Y, Jiuchi Y, Kozuru H, Kawahara C, Izumi M, et al. Effects of Janus kinase inhibitor tofacitinib on circulating serum amyloid A and interleukin-6 during treatment for rheumatoid arthritis. Clin Exp Immunol. 2014;175(2):208-214. doi:10.1111/cei.12234; Li Y, Jie Y, Wang X, Lu J. Serum IL-35 is decreased in overweight patients with rheumatoid arthritis: Its correlation with Th1/Th2/Th17-related cytokines. BMC Immunol. 2021;22(1):42. doi:10.1186/s12865-021-00431-x; Aletaha D, Neogi T, Silman AJ, Funovits J, Felson DT, Bingham CO 3rd, et al. 2010 rheumatoid arthritis classification criteria: An American College of Rheumatology/European League Against Rheumatism collaborative initiative. Arthritis Rheum. 2010;62(9):2569-2581. doi:10.1002/art.27584; Новиков АА, Александрова ЕН, Герасимов АН, Каратеев ДЕ, Попкова ТВ, Лучихина ЕЛ, и др. Применение многопараметрического анализа лабораторных биомаркеров для оценки активности ревматоидного артрита. Научно-практическая ревматология. 2015;53(6):591-595. doi:10.14412/1995-4484-2015591-595; Eastman PS, Manning WC, Qureshi F, Haney D, Cavet G, Alexander C, et al. Characterization of a multiplex, 12-biomarker test for rheumatoid arthritis. J Pharm Biomed Anal. 2012;70:415-424. doi:10.1016/j.jpba.2012.06.003; Centola M, Cavet G, Shen Y, Ramanujan S, Knowlton N, Swan KA, et al. Development of a multi-biomarker disease activity test for rheumatoid arthritis. PLoS One. 2013;8(4):e60635. doi:10.1371/journal.pone.0060635; Laborde CM, Castro-Santos P, Díaz-Peña R. Contribution of multiplex immunoassays to rheumatoid arthritis management: From biomarker discovery to personalized medicine. J Pers Med. 2020;10(4):202. doi:10.3390/jpm10040202; Liu C, Chu D, Kalantar-Zadeh K, George J, Young HA, Liu G. Cytokines: From clinical significance to quantification. Adv Sci (Weinh). 2021;8(15):e2004433. doi:10.1002/advs.202004433; Burska A, Boissinot M, Ponchel F. Cytokines as biomarkers in rheumatoid arthritis. Mediators Inflamm. 2014;2014:545493. doi:10.1155/2014/545493; Ridgley LA, Anderson AE, Pratt AG. What are the dominant cytokines in early rheumatoid arthritis? Curr Opin Rheumatol. 2018;30(2):207-214. doi:10.1097/BOR.0000000000000470; McInnes IB, Byers NL, Higgs RE, Lee J, Macias WL, Na S, et al. Comparison of baricitinib, upadacitinib, and tofacitinib mediated regulation of cytokine signaling in human leukocyte subpopulations. Arthritis Res Ther. 2019;21(1):183. doi:10.1186/s13075-019-1964-1; Dowty ME, Lin TH, Jesson MI, Hegen M, Martin DA, Katkade V, et al. Janus kinase inhibitors for the treatment of rheumatoid arthritis demonstrate similar profiles of in vitro cytokine receptor inhibition. Pharmacol Res Perspect. 2019;7(6):e00537. doi:10.1002/prp2.537; https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/3103

الاتاحة: https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/3103
https://doi.org/10.47360/1995-4484-2021-693-699

المؤلفون: M. V. Smolnikova, N. N. Gorbacheva, M. V. Shubina, S. Yu. Tereschenko, М. В. Смольникова, Н. Н. Горбачева, М. В. Шубина, С. Ю. Терещенко

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 23, № 4 (2021); 887-894 ; Медицинская иммунология; Том 23, № 4 (2021); 887-894 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: тяжесть заболевания, child, cytokines, multiplex assay, polymorphism, disease severity, дети, цитокины, мультиплексный анализ, полиморфизм

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2434/1451; Arsentieva N.A., Totolyan A.A. Methodological difficulties in determining the content of some cytokines in the peripheral blood of practically healthy individuals. Medical Immunology (Russia), 2018, Vol. 20, no. 5, pp. 763-774. (In Russ.) doi:10.15789/1563-0625-2018-5-763-774; Beghe B., Hall I.P., Parker S.G., Moffatt M.F., Wardlaw A., Connolly M.J., Fabbri L.M., Ruse C., Sayers I. Polymorphisms in IL13 pathway genes in asthma and chronic obstructive pulmonary disease. Allergy, 2010, Vol. 65, no. 4, pp. 474-481.; Bidwell J., Keen L., Gallageher G., Huizinga T., McDermott M.F., Oksenberg J., McNicholl J., Pociot F., Hardt C., D’Alfonso S. Cytokine gene polymorphism in human disease: on-line databases. Supplement 1. Genes Immun., 2001, Vol. 2, no. 2, pp. 61-70.; Bijanzadeh M., Mahesh P.A., Ramachandra N.B. An understanding of the genetic basis of asthma. Indian J. Med. Res., 2011, Vol. 134, no 2, pp. 149-161.; Cosmi L., Liotta F., Maggi E., Romagnani S., Annunziato F. Th17-cells: new players in asthma pathogenesis. Allergy, 2011, Vol. 66, no. 8, pp. 989-998.; Daneshmandi S., Pourfathollah A.A, Pourpak Z., Heidarnazhad H., Kalvanagh P.A. Cytokine gene polymorphism and asthma susceptibility, progress and control level. Mol. Biol. Rep., 2012, Vol. 39, no. 2, pp. 1845-1853.; Drews A.C., Pizzichini M.M., Pizzichini E., Pereira M.U., Pitrez P.M., Jones M.H., Sly P.D., Stein R.T. Neutrophilic airway inflammation is a main feature of induced sputum in nonatopic asthmatic children. Allergy, 2009, Vol. 64, no. 11, pp. 1597-1601.; Durrant D.M., Metzger D.W. Emerging roles of T helper subsets in the pathogenesis of asthma. Immunol. Invest., 2010, Vol. 39, no. 4-5, pp. 526-549.; Grindebacke H., Wing K., Andersson A.C., Rak S., Rudin A. Defective suppression of Th2 cytokines by CD4CD25 regulatory T cells in birch allergies during birch pollen season. Clin. Exp. Allergy, 2004, Vol. 34, no. 9, pp. 1364-1372.; Iwakura Y., Nakae S., Saijo S., Ishigame H. The roles of IL-17A in inflammatory immune responses and host defense against pathogens. Immunol. Rev., 2008, Vol. 226, pp. 57-79.; Kawaguchi M., Adachi M., Oda N., Kokubu F., Huang S-K. IL-17 cytokine family. Allergy Clin. Immunol., 2004, Vol. 114, no. 6, pp. 1265-1273.; Ketlinsky S.A., Simbirtsev A.S. Cytokines. St. Petersburg: Folio, 2008, 552 p. (In Russ.); Nair R.P., Ruether A., Stuart P.E., Jenisch S., Tejasvi T., Hiremagalore R., Schreiber S., Kabelitz D., Lim H.W., Voorhees J.J., Christophers E., Elder J.T., Weichenthal M. Polymorphisms of the IL12B and IL23R genes are associated with psoriasis. J. Invest. Dermatol., 2008, Vol. 128, no. 7, pp. 1653-1661.; Nakae S., Komiyama Y., Nambu A., Sudo K., Iwase M., Homma I., Sekikawa K., Asano M., Iwakura Y. Antigen-specific T cell sensitization is impaired in IL-17-deficient mice, causing suppression of allergic cellular and humoral responses. Immunity, 2002, Vol. 17, no. 3, pp. 375-387.; Puzyrev V.P., Stepanov V.A. Pathological anatomy of the human genome. Novosibirsk: Nauka, 1997. 224 p. (In Russ.); Robinson D.S. The role of the T cell in asthma. J. Allergy Clin. Immunol., 2010, Vol. 126, no. 6, pp. 1081-1091.; Spencer L.A., Melo R.C., Perez S.A., Bafford S.P., Dvorak A.M., Weller P.F. Cytokine receptor mediated trafficking of preformed IL-4 in eosinophils identifies an innate immune mechanism of cytokine secretion. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 2006, Vol. 103, no. 9, pp. 3333-3338.; Wang Y.H., Wills-Karp M. The potential role of interleukin-17 in severe asthma. Curr. Allergy Asthma Rep., 2011, Vol. 11, no 5, pp. 388-394.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2434

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2434
https://doi.org/10.15789/1563-0625-STC-2279

المؤلفون: N. A. Arsentieva, N. E. Liubimova, O. K. Batsunov, Z. R. Korobova, O. V. Stanevich, A. A. Lebedeva, E. A. Vorobyov, S. V. Vorobyova, A. N. Kulikov, D. A. Lioznov, M. A. Sharapova, D. E. Pevtcov, A. A. Totolian, Н. А. Арсентьева, Н. Е. Любимова, О. К. Бацунов, З. Р. Коробова, О. В. Станевич, А. А. Лебедева, Е. А. Воробьев, С. В. Воробьева, А. Н. Куликов, Д. А. Лиознов, М. А. Шарапова, Д. Э. Певцов, А. А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 23, № 2 (2021); 311-326 ; Медицинская иммунология; Том 23, № 2 (2021); 311-326 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: мультиплексный анализ, SARS-CoV-2, cytokines, chemokines, convalescence, multiplex analysis, цитокины, хемокины, реконвалесценты

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2312/1374; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2312/8004; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2312/8005; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2312/8006; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2312/8007; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2312/8008; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2312/8009; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2312/8010; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2312/8018; Абатуров А.Е., Агафонова Е.А., Кривуша Е.Л., Никулина А.А. Патогенез COVID-19 // Здоровье ребенка, 2020. Т. 15, № 2. С. 133-144. [Abaturov A.E., Agafonova E.A., Krivusha E.L., Nikulina A.A. Pathogenesis of COVID-19. Zdorovye rebenka = Child’s Health, 2020, Vol. 15, no. 2, pp. 133-144. (In Russ.)]; Симбирцев А.С. Цитокины: классификация и функции // Цитокины и воспаление, 2004. Т. 3, № 2. С. 16-22. [Simbirtsev А.S. Cytokines: classification and functions. Tsitokiny i vospalenie = Cytokines and Inflammation, 2004, Vol. 3, no. 2, pp. 16-22. (In Russ.)]; Смирнов В.С., Тотолян Арег А. Некоторые возможности иммунотерапии при коронавирусной инфекции // Инфекция и иммунитет, 2020. Т. 10, № 3. С. 446-458. [Smirnov V.S., Totolian Areg A. Some opportunities for immunotherapy in coronavirus infection. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2020, Vol. 10, no. 3, pp. 446-458. (In Russ.)]; Abbas A.K., Trotta E.R., Simeonov D., Marson A., Bluestone J.A. Revisiting IL-2: biology and therapeutic prospects. J. Sci. Immunol., 2018, Vol. 3, no. 25, eaat1482. doi:10.1126/sciimmunol.aat1482.; Andrew D.P., Chang M.S., McNinch J., Wathen S.T., Rihanek M., Tseng J., Spellberg J.P., Elias C.G. 3rd. STCP-1 (MDC) CC chemokine acts specifically on chronically activated Th2 lymphocytes and is produced by monocytes on stimulation with Th2 cytokines IL-4 and IL-13. J. Immunol., 1998, Vol. 161, no. 9, pp. 5027-5038.; Breeching N.J., Fletcher T.E., Fowler R. COVID-19. BMJ Best Practices. Available at: https://bestpractice.bmj.com/topics/en-gb/3000168/pdf/3000168/COVID-19.pdf.; Costela-Ruiz V.J., Illescas-Montes R., Puerta-Puerta J.M., Ruiz C., Melguizo-Rodríguez L. SARS-CoV-2 infection: the role of cytokines in COVID-19 disease. Cytokine Growth Factor Rev., 2020, no. 54, pp. 62-75.; Fallon J., Reid S., Kinyamu R., Opole I., Opole R., Baratta J., Korc M., Endo T.L., Duong A., Nguyen G., Karkehabadhi M., Twardzik D., Patel S., Loughlin S. In vivo induction of massive proliferation, directed migration, and differentiation of neural cells in the adult mammalian brain. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2000, Vol. 97, no. 26, pp. 14686-14691.; Haidar J.H., Bazarbachi A., Mahfouz R., Haidar H.A., Jaafar H., Daher R. Serum Flt3 ligand variation as a predictive indicator of hematopoietic stem cell mobilization. J. Hematother. Stem Cell Res., 2002, Vol. 11, no. 3, pp. 533-538.; Hasichaolu, Zhang X., Li X., Li X., Li D. Circulating cytokines and lymphocyte subsets in patients who have recovered from COVID-19. BioMed Res. Int., 2020, Vol. 2020, 7570981. doi:10.1155/2020/7570981.; Huang C., Wang Y., Li X., Ren L., Zhao J., Hu Y. et al. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China. J. Lancet. 2020, no. 395, pp. 497-506.; Kox M., Waalders N.J.B., Kooistra E.J., Gerretsen J., Pickkers P. Cytokine levels in critically ill patients with COVID-19 and other conditions. JAMA, 2020, Vol. 3, no. 324 (15), pp. 1565-1567.; Laing A.G., Lorenc A., Del Molino Del Barrio I., Das A., Fish M., Monin L. et al. A dynamic COVID-19 immune signature includes associations with poor prognosis. J. Nat. Med., 2020, Vol. 26, no. 10, pp. 1623-1635.; Li W., Moore M.J., Vasilieva N., Sui J., Wong S.K., Berne M.A., Somasundaran M., Sullivan J.L., Luzuriaga K., Greenough T.C., Choe H., Farzan M. Angiotensin-converting enzyme 2 is a functional receptor for the SARS coronavirus. Nature, 2003, Vol. 426, no. 6965, pp. 450-454.; McInnes C., Wang J., Al Moustafa A.E., Yansouni C., O’Connor-McCourt M., Sykes B.D. Structurebased minimization of transforming growth factor-alpha (TGF-alpha) through NMR analysis of the receptorbound ligand. Design, solution structure, and activity of TGF-alpha 8-50. J. Biol. Chem., 1998, Vol. 273, no. 42, pp. 27357-27363.; Nakanishi K., Yoshimoto T., Tsutsui H., Okamura H. Interleukin-18 regulates both Th1 and Th2 responses. Annu. Rev. Immunol., 2001, Vol.19, pp. 423-474.; O’Shea J.J., Paul W.E. Regulation of T(H)1 differentiation – controlling the controllers. Nat. Immunol., 2002, no. 3, pp. 506-508.; Parasher A. COVID-19: Current understanding of its pathophysiology, clinical presentation and treatment. Postgrad. Med. J., 2020, postgradmedj-2020-138577. doi:10.1136/postgradmedj-2020-138577.; Restifo N.P., Dudley M.E., Rosenberg S.A. Adoptive immunotherapy for cancer: harnessing the T cell response. J. Nat. Rev. Immunol., 2012, Vol. 12, no. 4, pp. 269-281.; Rodriguez L., Brodin P. Unraveling the immune response in severe COVID-19. J. Clin. Immunol., 2020, Vol. 40, no. 7, pp. 958-959.; Takeda K., Tsutsui H., Yoshimoto T., Adachi O., Yoshida N., Kishimoto T., Akira S. Defective NK cell activity and Th1 response in IL-18-deficient mice. J. Immunity. 2008, Vol. 8, no. 3, pp. 383-390.; Tsutsui, H., Matsui, K., Kawada, N., Hyodo, Y., Hayashi, N., Okamura, H., Nakanishi, K. IL-18 accounts for both TNF-alpha and Fas ligand mediated hepatotoxic pathways in endotoxin induced liver injury in mice. J. Immunol., 1997, Vol. 159, no. 8, pp. 3961-3967.; Turner M.D., Nedjai B., Hurst T., Pennington D.J. Cytokines and chemokines: at the crossroads of cell signalling and inflammatory disease. Biochim. Biophys. Acta. 2014, Vol. 843, no. 11, pp. 2563-2582.; Vecchié A., Bonaventura A., Toldo S., Dagna L., Dinarello C.A., Abbate A. IL-18 and infections: is there a role for targeted therapies? J. Cell. Physiol., 2021, Vol. 236, no. 3, pp. 1638-1657.; Vignali D.A.A., Kuchroo V.K. IL-12 family cytokines: immunological playmakers. Nat. Immunol., 2012, no. 13, pp. 722-728.; Wang J., Jiang M., Chen X., Montaner L.J. Cytokine storm and leukocyte changes in mild versus severe SARS-CoV-2 infection: review of 3939 COVID-19 patients in China and emerging pathogenesis and therapy concepts. J. Leukoc. Biol., 2020,Vol. 108, no. 1, pp. 17-41.; Wang K., Long Q.X., Deng H.J., Hu J., Gao Q.Z., Zhang G.J., He C.L., Huang L.Y., Hu J.L., Chen J., Tang N., Huang A.L. Longitudinal dynamics of the neutralizing antibody response to SARS-CoV-2 infection. J. Clin. Infect. Dis., 2020, ciaa1143. doi:10.1093/cid/ciaa1143.; WHO Coronavirus Disease (COVID-19) Dashboard. Available at: https://covid19.who.int/.; Yuan X., Cheng G., Malek T.R. The importance of regulatory T-cell heterogeneity in maintaining selftolerance. J. Immunol. Rev., 2014, Vol. 203, no. 1, pp. 103-114.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2312

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2312
https://doi.org/10.15789/1563-0625-PCI-2312

المؤلفون: A. A. Kuznetsov, E. V. Tur, A. V. Zurochka, V. S. Rykun

المصدر: Российский офтальмологический журнал, Vol 10, Iss 4, Pp 20-28 (2018)

مصطلحات موضوعية: афлиберцепт, возрастная макулярная дегенерация, анти-vegf терапия, мультиплексный анализ, aflibercept, age-related macular degeneration, anti-vegf therapy, multiplex analysis, Ophthalmology, RE1-994

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://roj.igb.ru/jour/article/view/119; https://doaj.org/toc/2072-0076; https://doaj.org/toc/2587-5760

URL الوصول: https://doaj.org/article/d357f8ee4b4e4db2acd0a4ed7e971e02

المؤلفون: A. S. Boiko, I. S. Losenkov, E. G. Dmitrieva, А. С. Бойко, И. С. Лосенков, Е. Г. Дмитриева

المصدر: Drug development & registration; № 4 (2016); 212-217 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; № 4 (2016); 212-217 ; 2658-5049 ; 2305-2066

مصطلحات موضوعية: антипсихотическая терапия, prolactin, schizophrenia, multiplex analysis, antipsychotic therapy, пролактин, шизофрения, мультиплексный анализ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/177/175; R. Tandon, M. S. Keshavan, H. A. Nasrallah. Schizophrenia, «just the facts» what we know in 2008. 2. Epidemiology and etiology // Schizophr. Res. 2008. V. 102 (1-3). Р. 1-18.; А.С. Тиганов, А.В. Снежневский, Д.Д. Орловская и др. Руководство по психиатрии. В 2 томах. Т. 1 / Под ред. А.С. Тиганова. - М.: Медицина, 1999. 712 с.; А.В. Семке, Т.П. Ветлугина, Л.Д. Рахмазова, С.А. Иванова, Е.Д. Счастный, О.Ю. Федоренко, О.А. Лобачева, Е.В. Гуткевич, Е.Г. Корнетова, О.А. Даниленко. Биологические и клинико-социальные механизмы развития шизофрении (итоги комплексной темы НИР ФГБУ «НИИПЗ» СО РАМН, 2009-2012 гг.) // Сибирский вестник психиатрии и наркологии. 2013. № 4 (79). С. 18-26.; С.А. Иванова, О.Ю. Федоренко, Л.П. Смирнова, А.В. Семке. Поиск биомаркеров и разработка фармакогенетических подходов к персонализированной терапии больных шизофренией // Сибирский вестник психиатрии и наркологии. 2013. № 1. С. 12-16.; М.Г. Узбеков, И.Я. Гурович, С.А. Иванова. Потенциальные биомаркеры психических заболеваний в аспекте системного подхода // Социальная и клиническая психиатрия. 2016. Т. 26. Вып. 1. C. 5-11.; C.Y. Lai, E. Scarr, M. Udawela, I. Everall, W. J. Chen, B. Deani. Biomarkers in schizophrenia: A focus on blood based diagnostics and theranostics // World J Psychiatry. 2016. № 6(1). Р. 102-17.; L. Torner. Actions of Prolactin in the Brain: From Physiological Adaptations to Stress and Neurogenesis to Psychopathology // Front. Endocrinol. 2016. 7:25.; Л.Н. Горобец Нейроэндокринные дисфункции и нейролептическая терапия. - М.: Медпрактика-М, 2007.; Е. Г. Корнетова, C.А. Иванова, А.В. Семке, Ю.Н. Бородюк, А.С. Бойко. Гиперпролактинемия как побочный эффект антипсихотической терапии больных шизофренией // Пособие для врачей. - Томск, 2015. 28 с.; M.J. Green, S.L. Matheson, A. Shepherd, C.S. Weickert, V.J. Carr. Brain-derived neurotrophic factor levels in schizophrenia: a systematic review with meta-analysis // Mol Psychiatry. 2011. V. 16. № 9. P. 960-972.; H. J. Reis, R. Nicolato, I.G. Barbosa, P.H. Teixeira do Prado, M.A. Romano-Silva, A. L. Teixeira. Increased serum levels of brain-derived neurotrophic factor in chronic institutionalized patients with schizophrenia // Neurosci Lett. 2008. V. 439. № 2. P.157-159.; T.L. Huang, C.T. Lee. Associations between serum brain-derived neurotrophic factor levels and clinical phenotypes in schizophrenia patients // Journal of Psychiatry Research. 2006. V. 40. № 7. P. 664-668.; J.M. Stone, P.D. Morrison, L.S. Pilowsky. Glutamate and dopamine dysregulation in schizophrenia-a synthesis and selective review // J Psychopharmacol. 2007. V. 21. № 4. P. 440-452.; О.А. Юнилайнен, Е.Г. Старостина, Л.К. Дзеранова, Г.С. Колесникова. Н.П. Гончаров, Э.Г. Рытик, Г.Н. Кудряшкина, Е.Н. Тулинцева, Л. Г. Кессельман, П.А. Баранов, И.И. Дедов. Эпидемиологические характеристики гиперпролактинемии, ассоциированной с приемом нейролептиков // Современная терапия в психиатрии и неврологии. 2014. № 4. С. 12-23.; J. Montgomery, E. Winterbottom, M. Jessani, E. Kohegyi, J. Fulmer, B. Seamonds, R.C. Josiassen. Prevalence of hyperprolactinemia in schizophrenia: association with typical and atypical antipsychotic treatment // J. Clin. Psychiatry. 2004. V. 65. № 11. P. 1491-1498.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/177

الاتاحة: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/177

المؤلفون: N. Borovkova V., N. Doronina V., N. Mush A., Н. Боровкова В., Н. Доронина В., Н. Мушта А.

المصدر: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; № 4 (2011); 37-40 ; Трансплантология; № 4 (2011); 37-40 ; 2542-0909 ; 2074-0506 ; 10.23873/2074-0506-2011-0-4

مصطلحات موضوعية: antibodies to HLA, limphocytotoxicity test, multiplexed analysis, the Luminex platform, антитела к HLA, лимфоцитотоксический тест, мультиплексный анализ на платформе Luminex

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/322/383; HLA and MICA antibodies: further evidence of their impact on graft loss two years after their detection/L.E. Morales-Buenrostro, R. Rodriguez-Romo, de Leo //Clin. Transpl. -2006. -P. 207-218.; Clinical and anti-HLA antibody profile of nine renal transplant recipients with failed grafts: donor specific and nondonor-specific antibody development/L.M. Rebellato, M. Ozawa, K.M. Verbanac Литература //Clin. Transpl. -2006. -P. 24-253.; Detection of HLA and MICA antibodies before kidney graft failure/K. Mizutani, L. Shibata, M. Ozawa //Clin. Transpl. -2006. -P. 255-264.; Predicting kidney graft failure by HLA antibodies detection in kidney transplanted patients/R. Bardi, B. Boujemaa, Ch. Kallala [et al.[//Tissue Antigens. -Vol. 77. -Is. 5. -2011. -P. 443-444.; HLA-антитела и их значение при трансплантации почки/М.Ш. Хубутия, Н.В. Боровкова, Р.В. Сторожев //Трансплантология. -2010. -№ 3-4. -С. 32-36.; Zachary, A. ASHI Laboratory Manual/A. Zachary//American Society for Histocompatibility and Immunogenetics. -2 nd. -NY, 1990. -P. 307-320.; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/322

الاتاحة: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/322
https://doi.org/10.23873/2074-0506-2011-0-4-37-40

المؤلفون: O. P. Shevchenko, A. A. Ulybysheva, A. V. Aksyonova, N. P. Mozhejko, E. A. Stakhanova, V. V. Dontsov, E. A. Nikitina, A. O. Shevchenko, О. П. Шевченко, А. А. Улыбышева, А. В. Аксенова, Н. П. Можейко, Е. А. Стаханова, В. В. Донцов, Е. А. Никитина, А. О. Шевченко

المصدر: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 18, № 4 (2016); 71-76 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 18, № 4 (2016); 71-76 ; 2412-6160 ; 1995-1191 ; 10.15825/1995-1191-2016-4

مصطلحات موضوعية: ST2, rejection, biomarkers, multiplex analysis, sCD40L, PDGF-BB, PlGF-1, отторжение, биомаркеры, мультиплексный анализ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/702/592; Готье СВ, Шевченко АО, Попцов ВН. Пациент с трансплантированным сердцем: Руководство для врачей по ведению пациентов, перенесших трансплантацию сердца. М.: Тверь: Триада, 2014. 144. Gautier SV, Shevchenko AO, Poptsov VN. Patsient s transplantirovannym serdtsem: Rukovodstvo dlya vrachey po vedeniyu patsientov, perenesshikh trasnplantatsiyu serdtsa. M.: Tver’: Triada, 2014. 144.; Космачева ЕД, Кижватова НВ, Гордеева ЕВ и др. Осложнения в послеоперационном периоде у пациентов, перенесших ортоптическую трансплантацию сердца. Клиническая медицина. 2014; 92 (4): 30–34. Kosmacheva ED, Kizhvatova NV, Gordeeva EV i dr. Oslozhneniya v posleoperatsionnom periode u patsientov, perenesshikh ortopticheskuyu transplantatsiyu serdtsa. Klinicheskaya meditsina. 2014; 92 (4): 30–34.; Frick M, Antretter H, Pachinger O, Pölzl G. Biomarker for diagnosis of rejection after heart transplantation. Herz. 2010; 35 (1): 11–16.; Насырова АА, Шевченко АО. Функциональные показатели магистральных артерий и риск отторжения трансплантированного сердца. Трансплантология: итоги и перспективы. Том VII. 2015 год. Под ред. С.В. Готье. М. Тверь: Триада, 2016: 331–350. Nasyrova AA, Shevchenko AO. Funktsional’nye pokazateli magistral’nykh arteriy i risk ottorzheniya transplantirovannogo serdtsa. Transplantologiya: itogi i perspektivy. Tom VII. 2015 god. Pod red. SV Gautier. M. Tver’: Triada, 2016: 331–350.; Yusen RD, Edwards LB, Kucheryava AY et al. The Registry of International Society for Heart and Lung Transplantation: Thirty-second Offi cial Adult Heart Transplantation Report. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 2015. 34: 1264–1277.; Martinez-Dolz L, Almenar L, Reganon E. et al. What is the best biomarker for diagnosis of rejection in heart transplantation? Clinical Transplantation. 2009; 23: 672– 680.; Стаханова ЕА, Шевченко ОП. Роль мультиплексного анализа биомаркеров неоангиогенеза и воспаления при трансплантации сердца. Трансплантология: итоги и перспективы. Том VII. 2015 год. Под редакцией С.В. Готье. М. Тверь: Триада, 2016: 422–442. Stakhanova EA, Shevchenko OP. Rol’ mul’tipleksnogo analiza biomarkerov neoangiogeneza i vospaleniya pri transplantatsii serdtsa. Transplantologiya: itogi i perspektivy. Tom VII. 2015 god. Pod redaktsiey SV Gautier. M. Tver’: Triada, 2016: 422–442.; Kennel PJ, Schulze PC. Novel Biomarker Approaches for Managing Patients With Cardiac Transplantation. Current Heart Failure Reports. 2015 Oct; 12 (5): 328– 332. doi:10.1007/s11897-015-0269-1.; Sack FU, Vielfort TJ, Koch A. et al. The role of platelet derived growth factor in endomyocardial biopsies shortly after heart transplantation in relation to postoperative course. European Journal Cardiothoracic Surgery. 2004; 25 (1): 91–97.; Lee GY, Choi JO, Ju ES, Lee YJ, Jeon ES. Role of Soluble ST2 as a Marker for Rejection after Heart Transplant. Korean Circ. J. 2016 Nov; 46 (6): 811–820. doi:10.4070/kcj.2016.46.6.811.; Dengler TJ, Gleissner CA, Klingenberg R et al. Biomarkers after heart transplantation: nongenomic. Heart Failure Clin. 2007 Jan; 3 (1): 69–81.; Долгов ВВ, Шевченко ОП, Шевченко АО. Биомаркеры в лабораторной диагностике. М. Тверь: Триада, 2014. 288. Dolgov VV, Shevchenko OP, Shevchenko AO. Biomarkery v laboratornoy diagnostike. M. Tver’: Triada, 2014. 288.; Breen EJ, Polaskova V, Khan A. Bead-based multiplex immune-assays for cytokines, chemokines, growth factors and other analytes: median fl uorescence intensities versus their derived absolute concentration values for statistical analysis. Cytokine. 2015; 71 (2): 188–198.; Biancotto A, Wank A, Perl S. et al. Baseline levels and temporal stability of 27 multiplexed serum cytokine concentrations in healthy subjects. PLoS One. 2013; 8 (12): e76091.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/702

الاتاحة: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/702
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2016-4-71-76

المؤلفون: O. P. Shevchenko, E. A. Stakhanova, O. E. Gichkun, R. M. Kurabekova, I. I. Muminov, A. O. Shevchenko, О. П. Шевченко, Е. А. Стаханова, О. Е. Гичкун, Р. М. Курабекова, И. И. Муминов, А. О. Шевченко

المصدر: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 17, № 1 (2015); 12-17 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 17, № 1 (2015); 12-17 ; 2412-6160 ; 1995-1191 ; 10.15825/1995-1191-2015-1

مصطلحات موضوعية: PDGF, multiplex analysis, VEGF, MCP-1, мультиплексный анализ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/492/429; Zimmer RJ, Lee MS. Transplant coronary artery disease. JACC Cardiovasc Interv. 2010; 3: 367–377.; Lund LH, Edwards LB, Kucheryavaya AY, Dipchhand AI, Benden C, Christie JD et al. The registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: Thirtieth Official Adult Heart Transplant Report – 2013; Focus Theme: Age. J Heart Lung Transplant. 2013; 32 (10): 951–964.; Шевченко АО. Новые лабораторные маркеры ангиогенеза и повреждения атеросклеротической бляшки. Клиническая лабораторная диагностика. 2006; 6: 23–34. Shevchenko AO. Novye laboratornye markery angiogeneza i povrezhdeniya ateroskleroticheskoy blyashki. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 2006; 6: 23–34.; Martinez-Dolz L, Almenar L, Reganon E, Vila V, Sanchez-Soriano R, Martinez-Sales V et al. What is the best biomarker for diagnosis of rejection in heart transplantation? Clin. Transplant. 2009; 23: 672–680. doi:10.1111/j.l399-0012.2009.01074.x.; Шумаков ВИ, Шевченко ОП, Хубутия МШ, Орлова ОВ, Казаков ЭН, Кормер АЯ, Олефиренко ГА. Васкулопатия трансплантированного сердца: синергизм провоспалительных, проатерогенных факторов и вирусной инфекции. Вестник Российской академии медицинских наук. 2006; 11: 8–14. Shumakov VI, Shevchenko OP, Khubutiya MSh, Orlova OV, Kazakov EN, Kormer AYa, Olefirenko GA. Vaskulopatiya transplantirovannogo serdtsa: sinergizm provospalitel'nykh, proaterogennykh faktorov i virusnoy infektsii. Vestnik Rossiyskoy akademii meditsinskikh nauk. 2006; 11: 8–14.; Daly KP, Seifert ME, Chandraker A, Zurakowski D, Nohria A, Givertz MM et al. VEGF-C, VEGF-A and related angiogenesis factors as biomarkers of allograft vasculopathy in cardiac transplant recipients. J. Heart. Lung. Transplant. 2013; 32 (1): 120–128.; Richter B, Koller L, Hohensinner PJ, Zorn G, Brekalo M, Berger R et al. A multi-biomarker risk score improves prediction of long-term mortality in patients with advanced heart failure. International Journal of Cardiology. 2013; 168 (2): 1251–1257.; Tait BD, Süsal C, Gebel HM, Nickerson PW, Zachary AA, Claas FHJ et al. Consensus guidelines on the testing and clinical management issues associated with HLA and Non-HLA antibodies in transplantation. Transplantation. 2013; 95 (1): 19–47.; Patel JK, Kobashigawa JA. Thoracic organ transplantation: Laboratory methods. Methods in Molecular Biology. 2013; 1034: 127–143.; Andrikopoulou E, Mather PJ. Current insights: Use of Immuknow in heart transplant recipients. Progress in Transplantation. 2014; 24 (1): 44–50.; Breen EJ, Polaskova V, Khan A. Bead-based multiplex immuno-assays for cytokines, chemokines, growth factors and other analytes: Median fluorescence intensities versus their derived absolute concentration values for statistical analysis. Cytokine. 2015; 71 (2): 188–198.; Escudero-Esparza A, Martin TA, Davies ML, Jiang WG. PGF isoforms, PLGF-1 and PGF-2, in colorectal cancer and the prognostic significance. Cancer Genomics and Proteomics. 2009; 6 (4): 239–246.; Готье СВ, Иткин ГП, Шемакин СЮ, Саитгареев РШ, Попцов ВН, Захаревич ВМ и др. Первый опыт клинического применения отечественного аппарата вспомогательного кровообращения на базе имплантируемого осевого насоса для двухэтапной трансплантации сердца. Вестник трансплант. и искусств. органов. 2013; XV (3): 92–101. Gautier SV, Itkin GP, Shemakin SYu, Saitgareev RSh, Poptsov VN, Zakharevich VM et al. Pervyy opyt klinicheskogo primeneniya otechestvennogo apparata vspomogatel'nogo krovoobrashcheniya na baze implantiruemogo osevogo nasosa dlya dvukhetapnoy transplantatsii serdtsa. Vestnik transplant. i iskusstv. organov. 2013; XV (3): 92–101.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/492

الاتاحة: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/492
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2015-1-12-17

المؤلفون: I. G. Kulikova, O. S. Slepova, E. V. Denisova, L. A. Kovaleva, P. V. Makarov, D. N. Lovpache, И. Г. Куликова, О. С. Слепова, Е. В. Денисова, Л. А. Ковалева, П. В. Макаров, Д. Н. Ловпаче

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 17, № 2 (2015); 179-182 ; Медицинская иммунология; Том 17, № 2 (2015); 179-182 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2015-2

مصطلحات موضوعية: офтальмопатология, anterior eye chamber, organ-specific autoimmunity, multiplex analysis, migration inhibition test, leukocytes, ophthalmopathology, передняя камера глаза, органоспецифический аутоиммунитет, мультиплексный анализ, реакция торможения миграции лейкоцитов

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/837/773; Кетлинский С.А., Симбирцев А.С. Цитокины. СПб.: ФОЛИАНТ, 2008. С. 497-533. [Ketlinsky S.A., Simbirtsev A.S. Cytokines]. St. Petersburg: FOLIANT, 2008, pp. 497-533.; Куликова И.Г., Слепова О.С., Илуридзе С.Л. Модификация тестов, направленных на выявление аутоиммунных реакций при заболеваниях глаз // РОЖ, 2013. Т. 6, No 1. С. 69-72. [Kulikova I.G., Slepova O.S., Iluridze S.L. Modification of tests aimed at identifying the autoimmune reaction in eye diseases. Rossiyskiy oftol`mologtcheskiy zhurnal = Russian Ophthalmological Journal, 2013, Vol. 6, no. 1, pp. 69-72. (In Russ.)]; Слепова О.С. Патогенетическая роль цитокинов при различных заболеваниях глаз как основа прогнозирования и выбора тактики иммунокорректирующего лечения // РОЖ, 2008. Т. 1, No 3. С. 36-42. [Slepova O.S. The pathogenetic role of cytokines in various eye diseases as basis for prognostication and the choice of immune correction tactics. Rossiyskiy oftol`mologtcheskiy zhurnal = Russian Ophthalmological Journal, 2008, Vol. 1, no. 3, pp. 36-42. (In Russ.)]; Dariene A. Dart, Reza Dana, Patricia D’Amore, Jerry Y. Niederkorn. Immunology, infiammation and diseases of the eye. Academic Press., 2013, pp. 50-57, 38-42.; Denniston A.K., Kottoor S.H., Khan I., Oswal K., Williams G.P., Abbott J., Wallace G.R., Salmon M., Rauz S., Murray P.I., Curnow S.J. Endogenous cortisol and TGF-beta in human aqueous humor contribute to ocular immune privilege by regulating dendritic cell function. J. Immunol., 2011, Vol. 186, no. 1, pp. 305-11.; Horie S., Sugita S., Futagami Y., Kawaguchi T., Kamoi K., Shirato S., Mochizuki M. Human iris pigment epithelium suppresses activation of bystander T cells via TGFbeta-TGFbeta receptor interaction. Exp. Eye Res., 2009, Vol. 88, pp. 1033-42.; Kitaichi N., Namba K., Taylor A.W. Inducible immune regulation following autoimmune disease in the immune-privileged eye. J. Leukoc Biol., 2005, Vol. 77, pp. 496-502.; Stein-Streilein J., Streilein J.W. Anterior chamber associated immune deviation (ACAID): regulation, biological relevance, and implications for therapy. Int Rev Immunol., 2002, Vol. 21, pp. 123-52.; Sugita S., Horie S., Nakamura O., Futagami Y., Takase H., Keino H., Aburatani H., Katunuma N., Ishidoh K., Yamamoto Y., Mochizuki M. Retinal pigment epithelium-derived CTLA-2alpha induces TGFbeta-producing T regulatory cells. J. Immunol., 2008. Vol. 181, pp. 7525-36.; Taylor A.W. Ocular immunosuppressive microenvironment. Chem Immunol. Allergy., 2007, Vol. 92, pp. 71-85.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/837

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/837
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2015-2-179-182

المؤلفون: КУЛИКОВА ИРИНА ГЕННАДЬЕВНА, СЛЕПОВА О.С., ДЕНИСОВА Е.В., КОВАЛЕВА Л.А., МАКАРОВ П.В., ЛОВПАЧЕ Д.Н.

مصطلحات موضوعية: ЦИТОКИНЫ, ПЕРЕДНЯЯ КАМЕРА ГЛАЗА, ОРГАНОСПЕЦИФИЧЕСКИЙ АУТОИММУНИТЕТ, МУЛЬТИПЛЕКСНЫЙ АНАЛИЗ, РЕАКЦИЯ ТОРМОЖЕНИЯ МИГРАЦИИ ЛЕЙКОЦИТОВ, ОФТАЛЬМОПАТОЛОГИЯ

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/tsitokiny-vo-vlage-peredney-kamery-glaza-i-ih-rol-v-razvitii-sistemnogo-immunnogo-otveta-na-antigeny-tkaney-glaza
http://cyberleninka.ru/article_covers/15911282.png