المؤلفون: И. В. Николаева, В. М. Шейбак, О. Б. Островская, Е. М. Дорошенко, В. Ю. Смирнов

المصدر: Žurnal Grodnenskogo Gosudarstvennogo Medicinskogo Universiteta, Vol 21, Iss 5, Pp 477-482 (2023)

مصطلحات موضوعية: орегонин, аминокислоты, микробиоценоз, кишечник, печень, плазма, Medicine

وصف الملف: electronic resource

Relation: http://journal-grsmu.by/index.php/ojs/article/view/3092; https://doaj.org/toc/2221-8785; https://doaj.org/toc/2413-0109

URL الوصول: https://doaj.org/article/2124485983bf4d28baca11c560cf0cf8

المؤلفون: I. V. Nikolaeva, G. S. Shaikhieva, L. R. Gaynatullina, И. В. Николаева, Г. С. Шайхиева, Л. Р. Гайнатуллина

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 69, № 5 (2024); 45-51 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 69, № 5 (2024); 45-51 ; 2500-2228 ; 1027-4065

مصطلحات موضوعية: кесарево сечение, probiotics, gastrointestinal problems, microecological problems, cesarean delivery, пробиотики, гастроинтестинальные нарушения, микроэкологические нарушения

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/2064/1530; Derrien M., Alvarez A.S., de Vos W.M. The gut microbiota in the first decade of life. Trends Microbiol 2019; 27(12): 997–1010. DOI:10.1016/j.tim.2019.08.001; Papathoma E., Triga M., Fouzas S., Dimitriou G. Cesarean section delivery and development of food allergy and atopic dermatitis in early childhood. Pediatr Allergy Immunol 2016; 27(4): 419–424. DOI:10.1111/pai.12552; Francino M.P. Birth mode-related differences in gut microbiota colonization and immune system development. Ann Nutr Metab 2018; 73(Suppl 3): 12–16. DOI:10.1159/000490842; Li N., Liang S., Chen Q., Zhao L., Li B., Huo G. Distinct gut microbiota and metabolite profiles induced by delivery mode in healthy Chinese infants. J Proteomics 2021; 232: 104071. DOI:10.1016/j.jprot.2020.104071; Dogra S., Sakwinska O., Soh S. E., Ngom-Bru C., Brück W.M., Berger B. et al. Dynamics of infant gut microbiota are influenced by delivery mode and gestational duration and are associated with subsequent adiposity. MBio 2015; 6 (1): E02419–14. DOI:10.1128/mBio.02419–14; Николаева И.В. Формирование кишечной микрофлоры и факторы, влияющие на этот процесс. Детские инфекции 2011; 10 (3): 39–42.; Navarro-Tapia E., Sebastiani G., Sailer S., Toledano LA., Serra-Delgado M., García-Algar Ó. et al. Probiotic Supplementation During the Perinatal and Infant Period: Effects on Gut Dysbiosis and Disease. Nutrients 2020;12(8):2243. DOI:10.3390/nu12082243; Николаева И.В., Анохин В.А., Купчихина Л.А., Халиуллина С.В. Риск развития инфекционных и соматических заболеваний у детей раннего возраста, рожденных кесаревым сечением. Практическая медицина 2013; 6 (75): 93–96.; Николаева И.В., Шайхиева Г.С., Хаертынов Х.С., Гатауллин М.Р., Урманчеева Ю.Р. Этиологическая структура и особенности клинических проявлений неонатальных инфекций у детей, рожденных путем кесарева сечения. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2017; 62(5): 88–92.; Gong Y., Zhong H., Wang J., Wang X., Huang L., Zou Y. et al. Effect of probiotic supplementation on the gut microbiota composition of infants delivered by cesarean section: an exploratory, randomized, open-label, parallel-controlled Trial. Curr Microbiol 2023; 80 (11): 341. DOI:10.1007/s00284–023–03444–4; Korpela K., Salonen A., Vepsäläinen O., Suomalainen M., Kolmeder C., Varjosalo M. et al. Probiotic supplementation restores normal microbiota composition and function in antibiotic-treated and in caesarean-born infants. Microbiome 2018; 6(1): 182. DOI:10.1186/s40168–018–0567–4; Ahmadi E., Alizadeh-Navaei R., Sadegh Rezai M. Efficacy of probiotic use in acute rotavirus diarrhea in children: A systematic review and meta-analysis. Caspian J Intern Med 2015; 6(4): 187–195.; Guandalini S., Cernat E., Moscoso D. Prebiotics and probiotics in irritable bowel syndrome and inflammatory bowel disease in children. Benef Microbes 2015; 6(2): 209–217. DOI:10.3920/BM2014.0067; Blaabjerg S., Artzi D.M., Aabenhus R. Probiotics for the prevention of antibiotic-associated diarrhea in outpatients — a systematic review and meta-analysis. Antibiotics (Basel) 2017; 6(4): 21. DOI:10.3390/antibiotics6040021; Руженцова Т.А., Хавкина Д.А., Плоскирева А.А., Мешкова Н.А. Рациональные подходы к терапии нарушений функции желудочно-кишечного тракта у детей. Медицинский Совет 2020; 1: 106–112.; Robertson C., Savva G.M., Clapuci R., Jones J., Maimouni H., Brown E. et al. Incidence of necrotising enterocolitis before and after introducing routine prophylactic Lactobacillus and Bifidobacterium probiotics. Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed 2020; 105: 380–386. DOI:10.1136/archdis-child-2019–317346; Shirazinia R., Golabchifar A.A., Fazeli M.R. Efficacy of probiotics for managing infantile colic due to their anti-inflammatory properties: a meta-analysis and systematic review. Clin Exp Pediatr 2021; 64(12): 642–651. DOI:10.3345/cep.2020.01676; Мазанкова Л.Н., Рыбальченко О.В., Корниенко Е.А., Перловская С.Г. Пробиотики в педиатрии: за и против с позиции доказательной медицины. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2016; 1: 16–26.; Андреева И.В., Стецюк О.У. Эффективность и безопасность комбинации Lactobacillus acidophilus LA 5 и Bifido-bacterium lactis ВB 12 в гастроэнтерологии, педиатрии и аллергологии. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2016; 2(18): 113–124.; Jungersen M., Wind A., Johansen E., Christensen J.E., Stuer-Lauridsen B., Eskesen D. The Science behind the Probiotic Strain Bifidobacterium animalis subsp. Lactis BB-12. Microorganisms 2014; 2: 92–110. DOI:10.3390/microor-ganisms2020092; Sharma R., Bhaskar B., Sanodiya B.S., Thakur G.S., Jaiswal P., Yadav N. et al. Probiotic Efficacy and Potential of Streptococcus thermophilus modulating human health: A synoptic review. J Pharm Biol Scie 2014; 9(3): 52–58. DOI:10.9790/3008–09325258; Patel S., Chaudhari M., Kadam S., Rao S., Patole S. Standardized feeding and probiotic supplementation for reducing necrotizing enterocolitis in preterm infants in a resource limited set up. Eur J Clin Nutr 2018; 72: 281–287. DOI:10.1038/s41430–017–0040–7; Plummer E.L., Bulach D.M., Murray G.L., Jacobs S.E., Tabrizi S.N., Garland S.M. Gut microbiota of preterm infants supplemented with probiotics: sub-study of the ProPrems trial. BMC Microbiol 2018; 18(1): 184. DOI:10.1186/s12866–018–1326–1; Пахомовская Н.Л., Венедиктова М.М. Влияние микробиоты ребенка первого года жизни на его развитие. Медицинский совет 2018; 2: 200–205.; Мазанкова Л.Н., Яковлева Г.Ю., Ардатская М.Д. Ротавирусная инфекция у детей раннего возраста: обоснование пробиотической терапии. Детские инфекции 2011; 2: 52–56.

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/2064
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2024-69-5-45-51

المؤلفون: I. V. Nikolaeva, D. R. Semenova, G. S. Shaikhieva, И. В. Николаева, Д. Р. Семенова, Г. С. Шайхиева

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 68, № 5 (2023); 22-29 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 68, № 5 (2023); 22-29 ; 2500-2228 ; 1027-4065

مصطلحات موضوعية: гипервирулентность, Klebsiella, resistance, antibiotics, hypervirulence, клебсиелла, резистентность, антибиотики

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1870/1409; Rebekah M. M., Michael A.B. Colonization, Infection, and the Accessory Genome of Klebsiella pneumonia. Front Cell Infect Microbiol 2018; 8: 4. DOI:10.3389/fcimb.2018.00004; Ramasethu J. Prevention and treatment of neonatal nosocomial infections. Matern Health Neonatol Perinatol 2017; 3: 1–11. DOI:10.1186/s40748–017–0043–3; Boucher H. W., Talbot G. H., Bradley J. S., Edwards J. E, Gilbert D., Rice L.B. et al. Bad bugs, no drugs: no ESKAPE! An update from the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis 2009; 48: 1–12. DOI:10.1086/595011; Бондаренко В.М. Генетические маркеры вирулентности условно патогенных бактерий. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.2011; 3: 94–99.; Нозокомиальная пневмония у взрослых. Российские национальные рекомендации. Под ред. Б.Р. Гельфанда. М.: Медицинское информационное агентство, 2016; 176.; Kishibe S., Okubo Y., Morino S., Hirotaki S., Tame T., Aoki K. et al. Pediatric hypervirulent Klebsiella pneumoniae septic arthritis. Pediatr Int 2016; 58(5):382–385. DOI:10.1111/ped.12806; Carrie C., Walewski V., Levy C., Alexandre C. Klebsiella pneumonia and Klebsiella oxytoca meningitis in infants. Epidemiological and clinical features. Archives de Pédiatrie 2019; 26(1):12–15; Coleman S., Unterhauser K., Rezaul K., Ledala N., Lesmes S., Caimano M.J. et al. High-resolution microbiome analysis reveals exclusionary Klebsiella species competition in preterm infants at risk for necrotizing enterocolitis. Sci Rep 2023; 12: 7893. DOI:10.1038/s41598–023–34735–2; Лекманов А.У., Миронов П.И., Александрович Ю.С. Азовский Д.К., Попов Д.А., Пшениснов К.В. и др. Сепсис у детей. Федеральные клинические рекомендации (проект). Российский вестник детской хирургии, анестезиологии и реаниматологии 2021; 2(11): 241–292.; Janda J.M., Abbott S.L. The Genera Klebsiella and Raoultella. The Enterobacteria. Washington, 2006; 115–129; Сухорукова М.В., Эйдельштейн М.В., Иванчик Н.В., Склеенова Е.Ю., Шайдуллина Э.Р. Антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов Enterobacteriaceae в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования «Марафон 2015–2016»; Исследовательская группа «Марафон». Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2019; 2(21): 147–159.; Paczosa M.K., Mecsas J. Klebsiella pneumoniae: Going on the Offense with a Strong Defense. Microbiol Mol Biol Rev 2016; 80(3): 629–661. DOI:10.1128/MMBR.00078–15; Holt K.E., Wertheim H., Zadoks R.N., Baker S., Whitehouse C.A., Dance D. et al. Genomic analysis of diversity, population structure, virulence, and antimicrobial resistance in Klebsiella pneumoniae, an urgent threat to public health. Proc Natl Acad Sci USA 2015;112: E3574–81. DOI:10.1073/pnas.1501049112; Murphy C., Clegg S. Klebsiella pneumoniae and type 3 fimbriae: nosocomial infection, regulation and biofilm formation. Future Microbiol 2012; 7 (8): 991–1002. DOI:10.2217/fmb.12.74; Russo T.A., Olson R., Fang C.T., Stoesser N., Miller M., MacDonald U. et al. Identification of Biomarkers for Differentiation of Hypervirulent Klebsiella pneumoniae from Classical K. pneumoniae. J Clin Microbiol 2018; 56(9): e00776–18. DOI:10.1128/JCM.00776–18; Faïs Т., Delmas J., Barnich N., Bonnet R., Dalmasso G. Colibactin: More Than a New Bacterial Toxin. Toxins (Basel) 2018; 10(4): 151. DOI:10.3390/toxins10040151; Lu M.C., Chen Y.T., Chiang M.K., Wang Y.C., Hsiao P.Y., Huang Y.J. et al. Colibactin Contributes to the Hypervirulence of pks+ K1 CC23 Klebsiella pneumoniae in Mouse Meningitis Infections. Front Cell Infect Microbiol 2017; 7: 103. DOI:10.3389/fcimb.2017.00103; Хаертынов Х.С., Анохин В.А., Ризванов А.А., Давидюк Ю.H., Халиуллина С.В., Любин С.А. и др. Вирулентность и антибиотикорезистентность изолятов Klebsiella pneumoniae у новорожденных с локализованными и генерализованными формами клебсиеллезной инфекции. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2018; 5(3): 139–146.; Lee I.R., Molton J.S., Wyres K.L., Gorrie C., Wong J., Hoh C.H. et al. Differential host susceptibility and bacterial virulence factors driving Klebsiella liver abscess in an ethnically diverse population. Sci Rep 2016; 6: 29316. DOI:10.1038/srep29316; Shon A.S., Bajwa R.P., Russo T.A. Hypervirulent (hypermucoviscous) Klebsiella pneumoniaе: a new and dangerous breed. Virulence 2013; 4(2): 107–118. DOI:10.4161/viru.22718; Агеевец В.А., Агеевец И.В., Сидоренко С.В. Конвергенция множественной резистентности и гипервирулентности у Кlebsiella pneumoniae. Инфекции и иммунитет 2022; 3(12): 450–460.; Семенова Д.Р., Николаева И.В., Фиалкина С.В., Хаертынов Х.С., Анохин В.А., Валиуллина И.Р. Частота колонизации «гипервирулентными» штаммами Klebsiella pneumoniae новорожденных и грудных детей с внебольничной и нозокомиальной клебсиеллезной инфекцией. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2020; 5(65): 158–163.; Naas T., Cuzon G., Villegas M.V., Lartigue MF., Quinn J.P., Nordmann P. Genetic structures at the origin of acquisition of the beta–lactamase bla KPC gene. Antimicrob Agents Chemother 2008; 52(4): 1257–1263. DOI:10.1128/AAC.01451–07; Qiu Y., Lin D., Xu Y., ChengY., WangF., Zhu Q. et al. Invasive Klebsiella pneumoniae Infections in Community-Settings and Healthcare Settings. Infect Drug Resist 2021; 14: 2647–2656. DOI:10.2147/IDR.S315871; Mukherjee S., Mitra S., Dutta S., Basu S. Neonatal Sepsis: The Impact of Carbapenem-Resistant and Hypervirulent Klebsiella pneumoniae. Front Med (Lausanne) 2021; 11(8): 634349. DOI:10.3389/fmed.2021.634349; Wyres K.L., Holt K.E. Klebsiella pneumoniae as a key trafficker of drug resistance genes from environmental to clinically important bacteria. Curr Opin Microbiol 2018; 45: 131–140. DOI:10.1016/j.mib.2018.04.004; Николаева И.В., Шайхиева Г.С., Григорьева Т.В., Васильев И.Ю., Герасимова Е.С. Антибиотикорезистентность кишечных штаммов Kl. pneumoniae, выделенных у новорожденных в родильном доме. Практическая медицина 2020; 6(18): 128–132.; Ильина В.Н., Струнин О.В., Соловьев О.Н., Самойлова Л.М., Горбатых Ю.Н. К вопросу резистентности Klebsiella pneumoniae у детей раннего возраста с врожденными пороками сердца. Анестезиология реаниматология и перфузиология 2012; 1(16): 57–60.; Bor M., Ilhan O. Carbapenem-Resistant Klebsiella pneumoniae Outbreak in a Neonatal Intensive Care Unit: Risk Factors for Mortality. 2021; 67 (3):fmaa057. DOI:10.1093/tropej/fmaa057; Akturk H. Carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae colonization in pediatric and neonatal intensive care units: risk factors for progression to infection. Braz J Infect Dis 2016; 20(2): 134–140. DOI:10.1016/j.bjid.2015.12.004.52; Bialek-Davenet S., Criscuolo A., Ailloud F., Passet V., Jones L., Delannoy-Vieillard A.S. et al. Genomic definition of hypervirulent and multidrug-resistant Klebsiella pneumoniae clonal groups. Emerg Infect Dis 2014; 20(11): 1812–1820. DOI:10.3201/eid2011.140206; Алексеева А.Е., Бруснигина Н.Ф., Гординска Н.А. Молекулярно-генетическая характеристика карбапенем устойчивого штамма Кlebsiella pneumoniae KP254 как представителя эволюционной ветки высоковирулентных штаммов. Инфекция и иммунитет 2021; 3(11): 506–516.; Khaertynov K.S., Anokhin V.A., Davidyuk Y.N., Nicolaeva I.V., Khalioullina S.V., Semyenova D.R. et al. Case of Meningitis in a Neonate Caused by an Extended-Spectrum-Beta-Lactamase-Producing Strain of Hypervirulent Klebsiella pneumoniae. Front Microbiol 2017; 8: 1576; Callewaert L., Van Herreweghe J. M., Vanderkelen L., Leysen S., Voet A., Michiels C.W. Guards of the great wall: bacterial lysozyme inhibitors. Trends Microbiol 2012; 20(10): 501–510. DOI:10.1016/j.tim.2012.06.005; Николаева И.В., Царегородцев А.Д., Шайхиева Г.С. Формирование кишечной микробиоты ребенка и факторы, влияющие на этот процесс. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2018; 3(63): 13–18.; Vasilyev I.Y., Siniagina M.N., Kharchenko A.M., Nikolaeva I.V., Shaikhieva G.S. Multidrug-Resistant Hypervirulent Klebsiella pneumoniae Found Persisting Silently in Infant Gut Microbiota. Int J Microbiol 2020; 2020:4054393. DOI:10.1155/2020/4054393; Мазанкова Л.Н., Рыбальченко О.В., Николаева И.В. Микродисбиоз и эндогенные инфекции. Руководство для врачей. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2018; 336.; Бухарова Е.В., Попкова С.М., Ракова Е.Б., Джиоев Ю.П., Шабанова Н.М., Немченко У.М. и др. Детекция генетических маркеров факторов патогенности при ассоциативном симбиозе аутоштаммов Klebsiella spp. и Staphylococcus aureus, выделенных от детей первого года жизни. Бюллетень ВСНЦ СО РАМН 2015; 5: 44–47.; Nanayakkara D., Liyanapathirana V., Kandauda C., Gihan C., Ekanayake A., Adasooriya D. Maternal vaginal colonization with selected potential pathogens of neonatal sepsis in the era of antimicrobial resistance, a single center experience from Sri Lanka. BMC Infect Dis 2018; 18(1): 351. DOI:10.1186/s12879–018–3262-y; Самсыгина Г.А. О предрасполагающих факторах и факторах риска развития неонатального сепсиса и о современных подходах его лечения. Педиатрия 2012; 3 (91): 32–37.; Rakotondrasoa A., Passet V., Herindrainy P., Garin B. , Kermorvant-Duchemin E, Delarocque-Astagneau E. et al. Characterization of Klebsiella pneumoniae isolates from a mother–child cohort in Madagascar. J Antimicrob Chemother 2020; 75 (7): 1736–1746. DOI:10.1093/jac/dkaa107; Dorota P., Chmielarczyk A., Katarzyna L. Klebsiella pneumoniae in breast milk–a cause of sepsis in neonate. Аrch Med 2017; 9 (1): 6. DOI:10.21767/1989–5216.1000189; Hartantyo S.H., Chau M.L., Koh T.H., Yap M. , Yi T., Cao D.Y.H. et al. Foodborne Klebsiella pneumonia: Virulence Potential, Antibiotic Resistance, and Risks to Food Safety. J Food Prot 2020; 83(7): 1096–1103. DOI:10.4315/JFP-19–520; Haller S., Eller C., Hermes J., Kaase M., Steglich M., Radonić A. et al. What caused the outbreak of ESBL–producing Klebsiella pneumoniae in a neonatal intensive care unit, Germany 2009 to 2012? Reconstucting transmission with epidemiological analysis and whole–genome sequencing. BMJ 2015; 5: e007397. DOI:10.1136/bmjopen-2014- 007397; Царегородцев А.Д., Хаертынов Х.С., Анохин В.А., Николаева И.В., Семенова Д.Р., Любин С.А. и др. Клебсиеллезный неонатальный сепсис. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2016; 4: 49–54.; Shah J., Jeffries A.L., Yoon E.W., Lee S.K., Shah P.S. Risk factors and outcomes of late-onset bacterial sepsis in preterm neonates born at; Chaudhary P., Bhandari D., Thapa K., Thapa P , Shrestha D., Chaudhary H.K. et al. Prevalence of Extended Spectrum Beta–Lactamase Producing Klebsiella pneumoniae Isolated From Urinary Tract Infected Patients. J Nepal Health Res Counc 2016; 14(33): 111–115; Rock C., Thom K. A., Masnick M., Johnson J.K., Harris AD., Morgan D.J. Frequency of Klebsiella pneumoniae carbapenemase (KPC)-producing and non-KPC-producing Klebsiella species contamination of healthcare workers and the environment. Infect Control Hosp Epidemiol 2014; 35(4): 426–429. DOI:10.1086/675598; Gupta A., Della-Latta P., Todd B., Gabriel P.S., Haas J.P., Wu F. et al. Outbreak of extended-spectrum beta-lactamase-producing Klebsiella pneumoniae in a neonatal intensive care unit linked to artificial nails. Infect Control Hosp Epidemiol 2004; 25(3): 210–215. DOI:10.1086/502380; Gu D., Dong N., Zheng Z., Lin D., Huang M., Wang L. et al. A fatal outbreak of ST11 carbapenem-resistant hypervirulent Klebsiella pneumoniae in a Chinese hospital: a molecular epidemiological study. Lancet Infect Dis 2018; 18(1): 37–46. DOI:10.1016/S1473–3099(17)30489–9; Wang H. High risk factors analysis of nosocomial infection in neonatal Intensive Care Units. J New Med 2018; 28(1): 61–63. DOI:10.12659/MSM.917185; Misallati A., el-Bargathy S., Shembesh N. Blood-culture-proven neonatal septicaemia: a review of 36 cases. East Mediterr Health J 2000; 6(2–3): 483–486. DOI:10.26719/2000.6.2–3.483; Rossi P., Botgros R., Shane T. Report on the Expert Meeting on Neonatal and Paediatric Sepsis. London: European Medicines Agency, 2010: 6; Al-Harthi A.A., Dagriri K.A., Asindi A.A., Bello C.S. Neonatal meningitis. Saudi Med J 2000; 21(6): 550–553; Kuiper-Prins E., Debast S.B., d’ Haens E. J., Hemels М.А. Neonatal cellulitis-adenitis syndrome caused by Klebsiella oxytoca. J Clin Neonatol 2017; 6:185–186. DOI:10.4103/jcn.JCN_116_16; Yeh P.J., Chen h.C., Lai M.W, Yeh H.Y., Chao H.C. Pediatric Liver Abscess: Trends in the Incidence, Etiology, and Outcomes Based on 20-Years of Experience at a Tertiary Center. Front Pediatr 2020; 8: 111. DOI:10.3389/fped.2020.00111; Eke F., Agbedeyi G., Eke U. Case Report Haemolyticuraemic syndrome associated with Klebsiella empyema-case report and literature review. J Clin Med Res 2011; 3(8): 109–113. DOI:10.5897/JCMR11.062; Qureshi S. Klebsiella infections. https://emedicine.medscape.com/article/219907-treatment. / Ссылка активна на 21.08.2023.; Даудова А.Д., Абдрахманова Р.О., Ясенявская А.Л., Демина Ю.З., Рубальский М.О., Рубальский О.В. и др. Перспективы фаготерапии бактериальных инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи. Антибиотики и химиотерапия 2022; 67(11–12): 56–63.; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1870

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1870
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2023-68-5-22-29

المؤلفون: В. М. Шейбак, А. В. Лемеш, И. В. Николаева, Р. Э. Якубцевич, О. Б. Островская

المصدر: Гепатология и гастроэнтерология, Vol 7, Iss 1, Pp 43-47 (2023)

مصطلحات موضوعية: антибиотики, кишечная микробиота, карбапенемы, тонкий кишечник, Diseases of the digestive system. Gastroenterology, RC799-869

Relation: http://hepatogastro.grsmu.by/index.php/journalHandG/article/view/300; https://doaj.org/toc/2616-5546; https://doaj.org/toc/2708-5309; https://doaj.org/article/bac1fe5b579843db8dc23a5a65759769

الاتاحة: https://doi.org/10.25298/2616-5546-2023-7-1-43-47
https://doaj.org/article/bac1fe5b579843db8dc23a5a65759769

المؤلفون: I. V. Nikolaeva, O. S. Mikhailova, S. V. Tkacheva, G. Sh. Isaeva, I. D. Reshetnikova, V. B. Ziatdinov, V. A. Aleshkin, A. G. Lyutov, И. В. Николаева, О. С. Михайлова, С. В. Ткачева, Г. Ш. Исаева, И. Д. Решетникова, В. Б. Зиатдинов, В. А. Алешкин, А. Г. Лютов

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 4 (2020); 81-85 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 4 (2020); 81-85 ; 2658-719X ; 0370-1069

مصطلحات موضوعية: габриглобин, immuno-replacement therapy, gabriglobin, иммунозаместительная терапия

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1409/1169; Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом у взрослых. Клинические рекомендации. М.; 2016.; Jonsson C.B., Figueiredo L.T.M., Vapalahti O. A global perspective on hantavirus ecology, epidemiology, and disease. Clin. Microbiol. Rev. 2010; 23(2):412–41. DOI:10.1128/CMR.00062-09.; Avšič-Županc T., Saksida A., Korva M. Hantavirus infections. Clin. Microbiol. Infect. 2019; 21S:e6–e16. DOI:10.1111/1469-0691.12291.; Савицкая Т.А., Трифонов В.А., Исаева Г.Ш., Решетникова И.Д., Пакскина Н.Д., Серова И.В., Иванова А.В., Сафронов В.А., Попов Н.В. Обзор современной эпидемиологической обстановки по заболеваемости геморрагической лихорадкой с почечным синдромом в мире и прогноз заболеваемости на территории Российской Федерации в 2019 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2019; 2:30–6. DOI:10.21055/0370-1069-2019-2-30-36.; Савицкая Т.А., Иванова А.В., Исаева Г.Ш., Решетникова И.Д., Трифонов В.А., Зиатдинов В.Б., Серова И.В.,. Сафронов В.А Оценка эпидемиологической ситуации по геморрагической лихорадке с почечным синдромом в мире и России, прогноз на 2020 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2020; 2:62–70. DOI:10.21055/0370-1069-2020-2-62-70.; Pettersson L., Thunberg T., Rocklöv J., Klingström J., Evander M., Ahlm C. Viral load and humoral immune response in association with disease severity in Puumala hantavirus-infected patients-implications for treatment. Clin. Microbiol. Infect. 2014; 20(3):235–41. DOI:10.1111/1469-0691.12259.; Malinin O.V., Platonov A.E. Insufficient efficacy and safety of intravenous ribavirin in treatment of haemorrhagic fever with renal syndrome caused by Puumala virus. Infect. Dis. (Lond). 2017; 49(7):514–20. DOI:10.1080/23744235.2017.1293841.; Ющук Н.Д., Венгеров Ю.Я., редакторы. Инфекционные болезни: национальное руководство. 2-е изд., перераб. и доп. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2018. С. 894–904.; Мингазова Э.М., Шайхуллина Л.Р., Валишин Д.А., Хунафина Д.Х. Современные аспекты этиотропной терапии геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Медицинский вестник Башкортостана. 2015; 10(1):108–13.; Vial P.A., Valdivieso F., Calvo M., Rioseco M.L., Riquelme R., Araneda A., Tomicic V., Graf J., Paredes L., Florenzano M., Bidart T., Cuiza A., Marco C., Hjelle B., Ye C., Hanfelt-Goade D., Vial C., Rivera J.C., Delgado I., Mertz G.J. A non-randomized multicentre trial of human immune plasma for treatment of hantavirus cardiopulmonary syndrome caused by Andes virus. Antivir. Ther. 2015; 20(4):377–86. DOI:10.3851/IMP2875.; Суздальцев А.А., Алексеев О.А., Потапов В.С., Гавриловская И.Н. Способ лечения геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Авторское свидетельство № 1814903, опубл. 15.05.1993. Бюл. № 18.; Гавриловская И.Н., Богданова С.Б., Горбачкова Е.А., Чумаков М.П., Апекина Н.С., Линев М.Б., Мясников Ю.А., Мухутдинов И.З., Потапов В.С., Бойко В.А., Мухутдинова Р.Г., Ягнова Л.В., Камалов Ф.З. Получение препарата человеческого иммуноглобулина против вируса геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Казанский медицинский журнал. 1988; 1:22–3.; Лютов А.Г., Алешкин В.А., Мостовская Е.В. Терапевти¬ ческие возможности отечественного препарата иммуноглобулина для внутривенного введения габриглобина-IgG. В кн.: Ревишвили А.Ш., Земсков В.М., Земсков А.М., редакторы. Опти¬ мизация диагностики и лечения гнойно-воспалительных забо¬ леваний (инновационные технологии). Практическое руковод¬ ство. СПб.: СпецЛит; 2020. С. 268–300.; Алeшкин В.А., Лютов А.Г., Новикова Л.И., Евсеева С.А., Николаева И.В., Ткачева С.В., Исаева Г.Ш., Решетникова И.Д. Динамика содержания противовирусных антител у больных ГЛПС на фоне иммуномодулирующей терапии габриглобином. В кн.: Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом: эпидемиология, профилактика и диагностика на современном этапе: Сборник материалов Региональной научно-практической конференции. Казань; 2019. С. 37–9.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1409

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1409
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2020-4-81-85

المؤلفون: D. R. Semenova, I. V. Nikolaeva, S. V. Fialkina, Kh. S. Khaertynov, V. A. Anohin, I. R. Valiullina, Д. Р. Семенова, И. В. Николаева, С. В. Фиалкина, Х. С. Хаертынов, В. А. Анохин, И. Р. Валиуллина

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 65, № 5 (2020); 158-163 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 65, № 5 (2020); 158-163 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2020-65-5

مصطلحات موضوعية: ген rmpА, infancy, “hypervirulent” Klebsiella pneumoniae, colonization, nosocomial infection, rmpA gene, грудной возраст, «гипервирулентная» Klebsiella pneumoniae, колонизация, нозокомиальная инфекция

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1252/997; Воложанцев Н.В., Мякинина В.П., Веревкин В.В., Комиса-рова Е.В., Красильникова В.М. и др. Выделение и молекулярно-генетический анализ бактериофагов для идентификации патогенных эшерихий и клебсиелл. Инфекция и иммунитет 2016; 6(3): 15.; Paczosa M.K., Mecsas J. Klebsiella pneumoniae: going on the offense with a strong defense. Microbiol Mol Biol Rev 2016; 80(3): 629-661. DOI:10.1128/MMBR.00078-15; Broberg C.A., Palacios M., Miller V.L. Klebsiella: a long way to go towards understanding this enigmatic jet-setter. F1000Prime Rep 2014; 6: 6-64. DOI:10.12703/P6-64; Rice L.B. Progress and challenges in implementing the research on ESKAPE pathogens. Infect Control Hosp Epidemiol 2010; 31: 7-10. DOI:10.1086/655995; Pendleton J.N., Gorman S.P., Gilmore B.F. Clinical Relevance of the ESKAPE Pathogens. Expert Rev Anti Infect Ther 2013; 11(3): 297-308. DOI:10.1586/eri.13.12.; Li B., Zhao Y., Liu C., Chen Z, Zhou D. Molecular pathogenesis of Klebsiella pneumoniae. Future Microbiol 2014; 9(9): 1071-1081. DOI:10.2217/fmb.14.48; Podschun R., Ullmann U.Klebsiella spp. As Nosocomial Pathogens: Epidemiology, Taxonomy, Typing Methods, and Pathogenicity Factors. Clin Microbiol Rev 1998; 4(11): 589-603.; Aljanaby A.A.J., Alhasani A.H.A. Virulence factors and antibiotic susceptibility patterns of multidrug resistance Klebsiella pneumoniae isolated from different clinical infections. Afr J Microbiol Res 2016; 10: 829-843.; Janda J.M., Abbott S.L. The Genera Klebsiella and Raoultella. The Enterobacteria. 2nd ed. Washington, USA: ASM Press, 2006; 115-129.; Hentzien M., Rosman J., Decre D., Brenkle K., Mendes-Mar-tins L., Mateu P. Seven hypervirulent ST380 Klebsiella pneumoniae septic localizations. Med Mal Infect 2017; 47: 171— 173. DOI:10.1016/j.medmal.2016.10.002; Shon A.S., Bajwa R.P., Russo T.A. Hypervirulent (hyper-mucoviscous) Klebsiella pneumoniae: a new and dangerous breed. Virulence 2013; 4: 107-118. DOI:10.4161/viru.22718; Marcoleta A.E., Bernos-Pasten C., Nunez G., Monasterio O., Lagos R. Klebsiella pneumoniae asparagine tDNAs are integration hotspots for different genomic islands encoding mi-crocin E492 production determinants and other putative virulence factors present in hypervirulent strains. Front Microbiol 2016; 7: 1-17. DOI:10.3389/fmicb.2016.00849; Conlan S., Kong H.H., Segre J.A. Species-level analysis of DNA sequence data from the NIH Human Microbiome Project. PloS One 2012; 7(10): 47075-47077. DOI:10.1371/journal.pone.0047075; Sun Y., Wu H., Shen D. Detection and Analysis of Regional Trends of Klebsiella pneumoniae Causing Liver Abscess. Clin Microbiol 2015; 4: 208. DOI:10.4172/2327-5073.1000208; Janda J.M. The Genus Klebsiella: An Ever-Expanding Panorama of Infections, Disease-Associated Syndromes, and Problems for Clinical Microbiologist. Clin Microbiol Case Rep 2015; 1: 2.; Lee I.R., Molton J.S., Wyres K.L., Gorrie C., Wong J., Hoh C.H. et al. Differential host susceptibility and bacterial virulence factors driving Klebsiella liver abscess in an ethnically diverse population. Sci Rep 2016; 6: 29316. DOI:10.1038/srep29316; TuY.C., Lu M.C., Chiang M.K., Huang S.P., Peng H.L., Chang H.Y. et al. Genetic requirements for Klebsiella pneu-moniae-induced liver abscess in an oral infection model. Infect Immunity 2009; 77(7): 2657-2671. DOI:10.1128/IAI.01523-08; Khaertynov K.S., Anokhin V.A., Davidyuk Y.N., Nico-laeva I.V., Khalioullina S.V., Semyenova D.R. et al. Case of Meningitis in a Neonate Caused by an Extended-Spectrum-Beta-Lactamase-Producing Strain of Hypervirulent Klebsiella pneumoniae. Front Microbiol 2017; 8: 1576. DOI:10.3389/fmicb.2017.01576; Gu D.X., Huang Y.L., Ma J.H., Zhou H.W., Fang Y, Cai J.C. et al. Detection of colistin resistance gene mcr-1in hypervirulent Klebsiella pneumonia and Escherichia coli isolates from an infant with diarrhea in China. Antimicrob Agents Chemo-ther 2016; 60: 5099-5100. DOI:10.1128/AAC.00476-16; Kishibe S., Okubo Y., Morino S., Hirotaki S, Tame T., Aoki K. et al. Pediatric hypervirulent Klebsiella pneumoniae septic arthritis. Pediatr Int 2016; 58(5): 382-385. DOI:10.1111/ped.12806; Harada S, Tateda K., Mitsui H., Hattori Y., Okubo M., Kimu-ra S. et al. Familial spread of a virulent clone of Klebsiella pneumoniae causing primary liver abscess. J Clin Microbiol 2011; 49(6): 2354-2356. DOI:10.1128/JCM.00034-11; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1252

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1252
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2020-65-5-158-163

المؤلفون: I. V. Nikolaeva, G. S. Shaikhieva, V. A. Anokhin, A. D. Tsaregorodtsev, I. Kh. Sharafutdinov, И. В. Николаева, Г. С. Шайхиева, В. А. Анохин, А. Д. Царегородцев, И. Х. Шарафутдинов

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 64, № 2 (2019); 81-86 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 64, № 2 (2019); 81-86 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2019-64-2

مصطلحات موضوعية: газожидкостная хроматография, cesarean section, meconium, microbiota, short-chain fatty acids, gas-liquid chromatography, кесарево сечение, меконий, микробиота, короткоцепочечные жирные кислоты

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/861/769; Бондаренко В.М., Мацулевич Т.В. Дисбактериоз кишечника как клинико-лабораторный синдром: современное состояние проблемы. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2007; 300.; Thursby E., Juge N. Introduction to the human gut microbiota. Biochem J 2017; 474(11): 1823–1836. DOI:10.1042/BCJ20160510; Hesla H.M., Stenius F., Jäderlund L., Nelson R., Engstrand L., Alm J. et al. Impact of lifestyle on the gut microbiota of healthy infants and their mothers – the ALADDIN birth cohort. Microbiol Ecol 2014; 90(3): 791–801. DOI:10.1111/1574-6941.12434; Biasucci G., Rubini M., Riboni S., Morelli L., Bessi E., Retetangos C. Mode of delivery affects the bacterial community in the newborn gut. Early Hum Dev 2010; 86(1):13–18. DOI:10.1016/j.earlhumdev.2010.01.004; Jakobsson H.E., Abrahamsson T.R., Jenmalm M.C., Harris K., Quince C., Jernberg C. et al. Decreased gut microbiota diversity, delayed Bacteroidetes colonisation and reduced Th1 responses in infants delivered by caesarean section. Gut 2014; 63(4): 559–566. DOI:10.1136/gutjnl-2012-303249; Bager P., Wohlfahrt J., Westergaard T. Caesarean delivery and risk of atopy and allergic disease: meta-analyses. Clin Exp Allergy 2008; 38(4): 634–642. DOI:10.1111/j.1365-2222.2008.02939.x; Nagpal R., Tsuji H., Takahashi T., Nomoto K., Kawashima K., NagataS. et al. Ontogenesis of the Gut Microbiota Composition in Healthy, Full-Term, Vaginally Born and BreastFed Infants over the First 3 Years of Life: A Quantitative Bird’s-Eye View. Front Microbiol 2017; 8: 1388–1397. DOI:10.3389/fmicb.2017.01388; Nagpal R., Tsuji H., Takahashi T., Kawashima K., Nagata S., Nomoto K. et al. Sensitive quantitative analysis of the meconium bacterial microbiota in healthy term infants born vaginally or by cesarean section. Front Microbiol 2017; 7: 1997–2006. DOI:10.3389/fmicb.2016.01997; Tsuji H., Oozeer R., Matsuda K., Matsuki T., Ohta T., Nomoto K. et al. Molecular monitoring of the development of intestinal microbiota in Japanese infants. Benef Microbes 2012; 3(2): 113–125. DOI:10.3920/BM2011.0038; Николаева И.В., Анохин В.А., Купчихина Л.А. Формирование кишечной микрофлоры у детей, рожденных естественным и оперативным путем. Казанский медицинский журнал 2009; 6(90): 852–856.; Dominguez-Bello M., Elizabeth K., Contreras M., Magris M., Hidalgo G., Fierer N. et al. Delivery mode shapes the acquisition and structure of the initial microbiota across multiple body habitats in newborns. PNAS 2010; 107(26): 11971–11975. DOI:10.1073/pnas.1002601107; Булатов В.П., Камалова А.А., Удачина Э.И., Зинкевич О.Д., Сафина Н.А., Шакирова А.Р. Современные методы диагностики дисбактериоза кишечника. Практическая медицина 2010; 6(45): 50–54.; Мескина Е.Р. Особенности микробиоты у детей с отягощенным преморбидным состоянием при вирусных диареях. Способы коррекции нарушений. РМЖ 2011; 19(18):1126–1130.; Ардатская М.Д., Минушкин О.Н. Современные принципы диагностики и фармакологической коррекции. Гастроэнтерология (Прил. к журн. Consilium Medicum) 2006; 2: 4–17.; Tan J., McKenzie C., Potamitis M., Thorburn A.N., Mackay C.R., Macia L. The role of short-chain fatty acids in health and disease. Adv Immunol 2014; 121: 91–119. DOI:10.1016/B978-0-12-800100-4.00003-9; Захарова И.Н., Сугян Н.Г., Ардатская М.Д. Метаболическая активность кишечной микрофлоры у детей раннего возраста с нарушениями пищеварения. Эффективная фармакотерапия 2011; 29: 16–21.; Мартынова Г.П., Коган Н.В., Соловьева И.А. Нарушения метаболической активности кишечной микрофлоры и местного иммунитета при ротавирусной инфекции. Детские инфекции 2014; 13(2): 5–8.; Богданова С.В., Сенцова Т.Б., Денисова С.Н., Ильенко Л.И., Ревякина В.А., Тарасова О.В. и др. Метаболическая активность кишечной микрофлоры и характер сенсибилизации при различных видах вскармливания у здоровых детей. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2015; 5: 135–142.; Мазанкова Л.Н., Ильина Н.О., Бегиашвили Л.В. Метаболические эффекты пробиотической терапии при вирусных диареях у детей. РМЖ 2010; 18(20): 1232–1236.; Pluznick J. Gut microbes and host physiology: what happens when you host billions of guests? Front Endocrinol (Lausanne) 2014; 5: 91. DOI:10.3389/fendo.2014.00091; Li L., Ma L., Fu P. Gut microbiota-derived short-chain fatty acids and kidney diseases. 2017; 11: 3531–3542. Drug Design, Development and Therapy DOI:10.2147/DDDT.S150825; Aagaard K., Ma J., Antony K.M., Ganu R., Petrosino J., Versalovic J. The placenta harbors a unique microbiome. Sci Trans Med 2014; 6: 237. DOI:10.1126/scitranslmed.3008599; Romero R., Hassan S.S., Gajer P., Tarca A.L., Fadrosh D.W., Nikita L. et al. The composition and stability of the vaginal microbiota of normal pregnant women is different from that of non-pregnant women. Microbiome 2014; 2(1): 4. DOI:10.1186/2049-2618-2-4; Moles L., Gómez M., Heilig H., Bustos G., Fuentes S., de Vos W. et al. Bacterial diversity in meconium of preterm neonates and evolution of their fecal microbiota during the first month of life. PLoS One 2013; 8(6). DOI:10.1371/journal.pone.0066986; Захарова И.Н., Ардатская М.Д., Свинцицкая В.И., Сугян Н.Г., Елезова Л.И., Гадзова И.С. Метаболическая активность кишечной микрофлоры у детей на фоне применения cинбиотика, содержащего bifidobacterium bb-12, lactobacillus acidophilus la-5 и фруктоолигосахарид. Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Сперанского 2011; 90(3): 118–123.; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/861

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/861
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2019-64-2-81-86

المؤلفون: I. V. Nicolaeva, V. A. Anokhin, G. S. Shaykhieva, M. R. Gataullin, Yu. R. Urmancheeva, И. В. Николаева, В. А. Анохин, Г. С. Шайхиева, М. Р. Гатауллин, Ю. Р. Урманчеева

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 64, № 5 (2019); 230-234 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 64, № 5 (2019); 230-234 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2019-64-5

مصطلحات موضوعية: лечение, infancy, meningococcal meningitis, subdural empyema, epiduritis, treatment, грудной возраст, менингококковый менингит, субдуральная эмпиема, эпидурит

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/998/855; Лобзин Ю.В., Скрипченко Н.В., Вильниц А.А., Иванова М.В., Кветная А.С., Волкова М.О. и др. Клинико-эпидемиологические аспекты генерализованной менингококковой инфекции у детей и подростков Санкт-Петербурга. Журнал инфектологии 2016; 8(1): 19–25. [Lobzin Yu.V., Skripchenko N.V., Vil’nic A.A., Ivanova M.V., Kvetnaja A.S., Volkova M.O. et al. Clinical and epidemiological aspects of generalized meningococcal infections in children and adolescents of Saint-Petersburg. Zhurnal infektologii 2016; 8(1): 19–25 (in Russ.)]; Скрипченко Н.В., Вильниц А.А. Менингококковая инфекция у детей. СПб.: Тактик-Студио, 2015; 840. [Skripchenko N.V., Vil’nic A.A. Meningococcal infection in children. SPb.: Taktik-Studio, 2015; 840 (in Russ.)]; Мазанкова Л.Н., Гусева Г.Д., Солдатова И.А. Эпидемиологические и клинические особенности бактериальных гнойных менингитов у детей г. Москвы. Детские инфекции 2018; 1(17): 5–11. [Mazankova L.N., Guseva G.D., Soldatova I.A. Epidemiological and clinical features of bacterial purulent meningitis in children of Moscow. Detskie infektsii 2018; 1(17): 5–11 (in Russ.)]; Таточенко В.К. Вакцинопрофилактика в XXI веке. Ремедиум 2006; 2: 16–20. [Tatochenko V.K. Vaccinal protection in XXI century. Remedium 2006; 2: 16–20 (in Russ.)]; Liu Z.H., Chen N.Y., Tu P.H., Lee S.T., Wu C.T. The treatment and outcome of postmeningitic subdural empyema in infants. Neurosurg Pediatrics 2010; 6(1): 38–42. DOI:10.3171/2010.4.PEDS09433; Yip K., Gosling R.D., Jones V., Hosein I.K. An unusual case of meningococcal meningitis complicated with subdural empyema in a 3 month old infant: a case report. Cases J 2009; 2: 6335. DOI:10.4076/1757-1626-2-6335; Anderson V., Anderson P., Grimwood K., Nolan T. Cognitive and executive function 12 years after childhood bacterial meningitis: effect of acute neurologic complications and age of onset. J Pediatr Psychol 2004; 29(2): 67–81. DOI:10.1093/jpepsy/jsh011; МУК 4.2.1887–04. Лабораторная диагностика менингококковой инфекции и гнойных бактериальных менингитов: Методические указания. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2005; 48. [Laboratory diagnosis of meningococcal infection and purulent bacterial meningitis. M.: Federalʹnyy tsentr gigieny i ehpidemiologii Rospotrebnadzora, 2005; 48 (in Russ.)]; Agrawal A., Timothy J., Pandit L., Shetty L., Shetty J. A review of subdural empyema and its management. Infect Dis Clin Pract 2007; 15: 149–153. DOI:10.1097/01.idc.0000269905.67284.c7; Snedeker J.D., Kaplan S.L., Dodge P.R., Holmes S.J., Feigin R.D. Subdural effusion and its relationship withneurologic sequelae of bacterial meningitis in infancy: a prospective study. Pediatrics 1990; 86: 163–171.; Dawodu S.T., Lorenzo N. Subdural Empyema. Medscape; Updated 2017 Nov27. Available from: https://emedicine.medscape.com/article/1168415-overview.; De Bonis P., Anile C., Pompucci A., Labonia M., Lucantoni C., Mangiola A. Cranial and spinal subdural empyema. Br J Neurosurg 2009; 23(3): 335–340. DOI:10.1080/02688690902939902; Germiller J.A., Monin D.L., Sparano A.M., Tom L.W. Intracranial complications of sinusitis in children and adolescents and their outcomes. Arch Otolaryngol Head Neck Surg 2006; 132(9): 969–976.; Gupta S., Vachhrajani S., Kulkarni A.V., Taylor M.D., Dirks P., Drake J.M. et al. Neurosurgical management of extraaxial central nervous system infections in children. J Neurosurg Pediatr 2011; 7(5): 441–451. DOI:10.3171/2011.2.PEDS09500; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/998

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/998
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2019-64-5-230-234

المؤلفون: I. V. Nikolaeva, A. D. Tsaregorodtsev, G. S. Shaikhieva, И. В. Николаева, А. Д. Царегородцев, Г. С. Шайхиева

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 63, № 3 (2018); 13-18 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 63, № 3 (2018); 13-18 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2018-63-3

مصطلحات موضوعية: грудное вскармливание, intestinal microbiota, fetal period, neonatal period, caesarian section, breastfeeding, кишечная микробиота, внутриутробный период, неонатальный период, кесарево сечение

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/667/631; Бондаренко В.М., Мацулевич Т.В. Дисбактериоз кишечника как клинико – лабораторный синдром: современное состояние проблемы. Москва: ГЭОТАР-Медиа 2007; 300.; Munyaka P.M., Khafipour E., Ghia J. External Influence of Early Childhood Establishment of Gut Microbiota and Subsequent Health Implications. Front Pediatr 2014; 2: 109– 117. DOI:10.3389/fped.2014.00109; Qin J., Li R., Raes J., Arumugam M., Burgdorf K.S., Mani- chanh C. et al. A human gut microbial gene catalogue established by metagenomic sequencing. MetaHIT Consortium. Nature 2010; 464 (7285): 59–65. DOI:10.1038/nature08821; Landman C., Quévrain E. Gut microbiota: Description, role and pathophysiologic implications Rev Med Interne 2016; 37 (6): 418–423. DOI:10.1016/j.revmed. 2015.12.012; Eckburg P.B., Bik E.M., Bernstein C.N., Purdom E., Dethlefsen L., Sargent M. et al. Diversity of the human intestinal microbial flora. Science 2005; 308 (5728):1635–1638. DOI:10.1126/science.1110591; Marchesi J.R., Adams D.H., Fava F., Hermes G.D., Hirschfield G.M., Hold G. et al. The gut microbiota and host health: A new clinical frontier Gut 2016; 65: 330–339. DOI:10.1136/gutjnl-2015-309990; Sherman M.P. New concepts of microbial translocation in the neonatal intestine: mechanisms and prevention. Clin Perinatol 2010; 37 (3): 565–579. DOI:10.1016/j.clp. 2010.05.006; Корниенко Е.А. Антибиотикоассоциированная диарея у детей. Consilium Medicum. Педиатрия 2015; 01: 59–62.; Анохин В.А., Бондаренко В.М., Поздеев О.К., Халиуллина С.В. Бактериурия: этиология, механизмы формирования, прогноз. Казань: Фэн, 2004; 158.; Boulangé C.L., Neves A.L., Chilloux J., Nicholson J.K., Dumas M. Impact of the gut microbiota on inflammation, obesity, and metabolic disease. Genome Medicine 2016; 8 (42): 1–12. DOI:10.1186/s13073-016-0303-2; Zhang Y., Zhang H. Microbiota associated with type 2 diabetes and its related complications. Food Science and Human Wellness 2013; 2: 167–172. DOI:10.1016/j.fshw.2013.09.002; Jose P.A., Raj D. Gut microbiota in hypertension. Curr Opin Nephrol Hypertens 2015; 24 (5): 403–409. DOI:10.1097/MNH.0000000000000149; Kostic A.D., Xavier R.J., Gevers D. The microbiome in inflammatory bowel disease: current status and the future ahead. Gastroenterology 2014; 146 (6):1489–1499. DOI:10.1053/j.gastro.2014.02.009; Terzić J., Grivennikov S., Karin E., Karin M. Inflammation and colon cancer. Gastroenterol 2010; 138: 2101–2114. DOI:10.1053/j.gastro.2010.01.058; Lynch S.V. Gut Microbiota and Allergic Disease. Ann Am Thorac 2016; 13: 51–54. DOI:10.1513/AnnalsATS.201507451MG; Короткий Н.Г., Наринская Н.М., Бельмер С.В., Ардатская М.Д. Микробиотические и моторные расстройства желудочно-кишечного тракта при тяжелом атопическом дерматите у детей. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология 2016; 1 (125): 21–27.; Sampson T.R., Debelius J.W., Thron T., Janssen S., Shastri G.G., Ilhan Z.E. et al. Gut Microbiota Regulate Motor Deficits and Neuroinflammation in a Model of Parkinson’s Disease. Cell 2016; 167 (6): 1469–1480. DOI:10.1016/j.cell.2016.11.018; Урсова Н.И. Актуальные и нерешенные проблемы пробиотикотерапии. Лечащий врач 2013; 8: 60–65.; Sonnenburg J., Sonnenburg E. Assembling Our Lifelong Community of Companions. In The good gut: Taking control of your weight, your mood, and your long-term health. New York: Penguin Publishing Group 2015; 45–57.; Risnes K.R., Belanger K., Murk W., Bracken M.B. Antibiotic exposure by 6 months and asthma and allergy at 6 years Findings in a cohort of 1,401 US children. Am J Epidemiol 2011; 173 (3): 310–318. DOI:10.1093/aje/kwq400; Shaw S.Y., Blanchard J.F., Bernstein C.N. Association between the use of antibiotics in the first year of life and pediatric inflammatory bowel disease. Am J Gastroenterol 2010; 105 (12): 2687–2692. DOI:10.1038/ajg.2010.398; Krajmalnik-Brown R., Lozupone C., Kang D-W., Adams J.B. Gut bacteria in children with autism spectrum disorders: challenges and promise of studying how a complex community influences a complex disease. Microbial Ecology in Health&Disease 2015; 26: 26914–26922. DOI:10.3402/ mehd.v26.26914; Li Q., Han Y., Dy АB.C., Hagerman R.J. The Gut Microbiota and Autism Spectrum Disorders Frontiers in Cellular Neuroscience 2017; 11: 120. DOI:10.3389/fncel.2017.00120; Kang D.W., Park J.G., Ilhan Z.E., Wallstrom G., Labaer J., Adams J.B. et al. Reduced incidence of Prevotella and other fermenters in intestinal microflora of autistic children PLoS One 2013; 8 (7): e68322. DOI:10.1371/journal.pone.0068322; Ekiel A., Aptekorz M., Kazek B., Wiechuła B., Wilk I., Martirosian G. Intestinal microflora of autistic children. Med Dosw Mikrobiol 2010; 62 (3): 237–243.; Kang D.W., Adams J.B., Gregory A.C., Borody T., Chittick L., Fasano A. et al. Microbiota Transfer Therapy alters gut ecosystem and improves gastrointestinal and autism symptoms: an open-label study. Microbiome 2017; 5 (1): 10. DOI:10.1186/s40168-016-0225-7; Miller W.B. The Eukaryotic Microbiome: Origins and Implications for Fetal and Neonatal Life. Front Pediatr 2016; 4: 96. DOI:10.3389/fped.2016.00096; Fox C., Eichelberger K. Maternal microbiome and pregnancy outcomes. Fertil Steril 2015; 104 (6): 1358–1363. DOI:10.1016/j.fertnstert. 2015.09.037; Gosalbes M.J., Llop S., Vallès Y., Moya A., Ballester F., Francino M.P. Meconium microbiota types dominated by lactic acid or enteric bacteria are differentially associated with maternal eczema and respiratory problems in infants. Clin Exp Allergy 2013; 43 (2): 198–211. DOI:10.1111/cea.12063; Hansen R., Scott K.P., Khan S., Martin J.C., Berry S.H., Stevenson M. et al. First-Pass Meconium Samples from Healthy Term Vaginally-Delivered Neonates: An Analysis of the Microbiota. PLoS ONE 2015; 10 (7). DOI:10.1371/journal.pone.0133320; Aagaard K., Ma J., Antony K.M., Ganu R., Petrosino J., Versalovic J. The placenta harbors a unique microbiome. Sci Trans Med 2014; 6: 237. DOI:10.1126/scitranslmed.3008599; Mysorekar I.U., Cao B. Microbiome in parturition and preterm birth. Semin Reprod Med 2014; 32 (1): 50–55. DOI:10.1055/s-0033-1361830; Prince A.L., Antony K.M., Ma J., Aagaard K.M. The microbiome and development: a mother’s perspective. Semin Reprod Medm 2014; 32: 14–22. DOI:10.1055/s-0033-1361818; Dasanayake A.P., Li Y., Wiener H., Ruby J.D., Lee M.J. Salivary Actinomyces naeslundii genospecies 2 and Lactobacillus casei levels predict pregnancy outcomes. J Periodontol 2005; 76 (2): 171–178. DOI:10.1902/jop.2005.76.2.171; DiGiulio D.B., Callahan B.J., McMurdie P.J., Costello E.K., Lyell D.J., Robaczewska A. et al. Temporal and spatial variation of the human microbiota during pregnancy. Proc Natl Acad Sci USA 2015; 112: 11060–11065. DOI:10.1073/pnas.1502875112; Romero R., Hassan S.S., Gajer P., Tarca A.L. et al. The composition and stability of the vaginal microbiota of normal pregnant women is different from that of non-pregnant women. Microbiome 2014; 2 (1): 4. DOI:10.1186/2049-2618-2-4.; Moles L., Gómez M., Heilig H., Bustos G., Fuentes S., de Vos W. et al. Bacterial diversity in meconium of preterm neonates and evolution of their fecal microbiota during the first month of life. PLoS One 2013; 8 (6). DOI:10.1371/journal.pone.0066986; Мазанкова Л.Н., Захарова И.Н., Дмитриева Ю.А. Концептуальный подход к назначению пробиотиков-синбиотиков у детей. Детские инфекции 2010; 1: 27–32.; Hesla H.M., Stenius F., Jäderlund L., Nelson R., Engstrand L., Alm J. et al. Impact of lifestyle on the gut microbiota of healthy infants and their mothers–the ALADDIN birth cohort. Microbiol Ecol 2014; 90 (3):791–801. DOI:10.1111/1574-6941.12434; Кафарская Л.И., Ефимов Б.А., Шкопоров А.Н., Голубцова Ю.М., Шуникова М.Л. Пробиотики в педиатрической практике. Эффективная фармакотерапия 2011;5: 44–48.; Vaishampayan P.A., Kuehl J.V., Froula J.L., Morgan J.L., Ochman M.H., Francino P. Comparative Metagenomics and Population Dynamics of the Gut Microbiota in Mother and Infant. Genome Biol. Evol 2010; 2: 53–66. DOI:10.1093/gbe/evp057; Jakobsson H.E., Abrahamsson T.R., Jenmalm M.C., Harris K., Quince C., Jernberg C. et al. Decreased gut microbiota diversity, delayed Bacteroidetes colonisation and reduced Th1 responses in infants delivered by caesarean section. Gut 2014; 63 (4): 559–566. DOI:10.1136/gutjnl-2012-303249; Bai D.L., Wu K.M., Tarrant M. Association between intrapartum interventions and breastfeeding duration. J Midwifery Womens Health 2013; 58 (1): 25–32. DOI:10.1111/j.15422011.2012.00254.x; Lee E., Kim B-J., Kang M-J., Choi K.Y., Cho H-J., Kim Y. et al. Dynamics of gut microbiota according to the delivery mode in healthy Korean infants. Allergy Asthma Immunol Res 2016; 8 (5): 471–478. DOI:10.4168/aair.2016.8.5.471; Dogra S., Sakwinska O., Soh S.E., Ngom-Bru C., Brück W.M., Berger B. Dynamics of infant gut microbiota are influenced by delivery mode and gestational duration and are associated with subsequent adiposity. MBio 2015; 6 (1). DOI:10.1128/mBio.02419-14; Николаева И.В., Анохин В.А., Купчихина Л.А. Формирование кишечной микрофлоры у детей, рожденных естественным и оперативным путем. Казанский медицинский журнал 2009; 6 (90): 852–856.; Adlerberth I., Lindberg E., Aberg N., Hesselmar B., Saalman R., Strannegȧrd I.L. et al. Reduced Enterobacterial and Increased Staphylococcal Colonization of the Infantile Bowel: An Effect of Hygienic Lifestyle? Pediatric Res 2006; 59 (1): 96–101. DOI:10.1203/01.pdr.0000191137.12774.b2; Rutayisire E., Huang K., Liu Y., Tao F. The mode of delivery affects the diversity and colonization pattern of the gut microbiota during the first year of infants’ life: a systematic review. BMC Gastroenterology 2016; 16: 86. DOI 10.1186/s12876016-0498-0; Cong X., Xu W., Romisher R., Poveda S., Forte S., Starkweather A. et al. Gut Microbiome and Infant Health: Brain-GutMicrobiota Axis and Host Genetic Factors. Yale J Biol Med 2016; 89 (3): 299–308.; Николаева И.В., Бондаренко В.М., Фиалкина С.В., Коновалова Г.Н., Купчихина Л.А., Анохин В.А. Влияние микрофлоры матери на состав микробиоценоза кишечника ребенка в период грудного вскармливания. Журн микробиол эпидемиол и иммунобиол 2008; 5: 87–92.; Garrido D., Ruiz-Moyano S., Mills D.A. Release and utilization of N-acetyl-D-glucosamine from human milk oligosaccharides by Bifidobacterium longum subsp. Infantis Anaerobe 2012; 18 (4): 430–435. DOI:10.1016/j.anaerobe.2012.04.012; Zivkovic A.M., German J.B., Lebrilla C.B., Mills D.A. Human milk glycobiome and its impact on the infant gastrointestinal microbiota. Proc Natl Acad Sci USA 2011; 108 (1): 4653– 4661. DOI:10.1073/pnas.1000083107; Урсова Н.И. Значение грудного вскармливания для роста и развития младенца. Альманах клинической медицины 2015; 42: 23–37.; Perez P.F., Doré J., Leclerc M., Levenez F., Benyacoub J., Serrant P. et al. Bacterial imprinting of the neonatal immune system: lessons from maternal cells? Pediatrics 2007; 119 (3): 724–732. DOI:10.1542/peds. 2006–1649; Penders J., Thijs C., Vink C., Stelma F.F., Snijders B., Kummeling I. et al. Factors influencing the composition of the intestinal microbiota in early infancy. Pediatrics 2006; 118 (2): 511–521. DOI:10.1542/peds. 2005–2824; Bezirtzoglou E., Tsiotsias A., Welling G.W. Microbiota profile in feces of breast- and formula-fed newborns by using fluorescence in situ hybridization (FISH). Anaerobe 2011; 17 (6): 478–482. DOI:10.1016/j.anaerobe. 2011.03.009; Fallani M., Young D., Scott J., Norin E., Amarri S., Adam R. et al. Intestinal microbiota of 6-week-old infants across Europe: geographic influence beyond delivery mode, breastfeeding, and antibiotics. J Pediatr Gastroenterol Nutr 2010; 51 (1): 77–84. DOI:10.1097/MPG.0b013e3181d1b11e; Palmer C., Bik E.M., DiGiulio D.B., Relman D.A., Brown P.O. Development of the human infant intestinal microbiota. PLoS Biol 2007; 5 (7): 177. DOI:10.1371/journal.pbio. 0050177; Ley R.E., Turnbaugh P.J., Klein S., Gordon JI. Microbial ecology: human gut microbes associated with obesity. Nature 2006; 444 (7122): 1022–1025. DOI:10.1038/4441022a; Agans R., Rigsbee L., Kenche H., Michail S., Khamis H.J., Paliy O. Distal Gut Microbiota Of Adolescent Children Is Different From That Of Adults. FEMS Microbiol Ecol 2011; 77 (2): 404–412. DOI:10.1111/j.1574-6941.2011.01120.x; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/667

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/667
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2018-63-3-13-18

المؤلفون: I. V. Nikolaeva, I. V. Shestakova, G. K. Murtazina, И. В. Николаева, И. В. Шестакова, Г. Х. Муртазина

المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 3, № 1 (2018); 34-42 ; 2587-9596 ; 2541-9420

مصطلحات موضوعية: псевдомембранозный колит, Clostridium difficile, antibiotic-associated diarrhea, pseudomembranous colitis

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/534/535; Алексеечкина О.А., Дубров Э.Я., Владимирова Е.С., Пинчук Т.П., Титова Г.П. Возможности ультразвукового исследования в диагностике псевдомембранозного колита у хирургических больных // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии и колопроктологии. - 2012. - № 2. - С. 29-35; Алёшкин В.А., Селькова Е.П., Миронов А.Ю., Гренкова Т.А., Шелыгин Ю.А., Сухина М.А., Ачкасов С.И., Сафин А.Л. Лабораторная диагностика Clostridium difficile-ассоциированных диарей. Федеральные клинические рекомендации. - М., 2017. - 24 с; Волчкова Е.В., Белоусова Е.А., Макарчук П.А., Русанова Э.В., Великанов Е.В. Частота выявления инфекции Clostridium difficile в больничных условиях // Альманах клинической медицины. - 2014. № 33. - С. 71-76; Дмитриева Н.В., Ключникова И.А., Шильникова И.И. Clostridium difficile-ассоциированная диарея (обзор литературы) // Сибирский онкологический журнал. - 2014. - № 1 (61). - С. 46-53; Захарова Н.В., Филь Т.С. Микробиологические и клинические особенности инфекции Clostridium difficile // Инфекционные болезни. - 2015. - Т. 13, № 3. - С. 81-86; Захарова Н.В., Филь Т.С. С. difficile и микробиота: как предупредить, диагностировать и лечить инфекцию // Дневник казанской медицинской школы. - 2014. - Т. 3, № 6. - С. 53-58; Ивашкин В.Т., Ющук Н.Д., Маев И.В., Лапина Т.Л., Полуэктова Я.А., Шифрин О.С., Тертычный А.С., Трухманов А.С., Шептулин А.А., Баранская Е.К., Ляшенко О.С., Ивашкин К.В. Рекомендации Российской гастроэнтерологической ассоциации по диагностике и лечению Clostridium difficile-ассоциированной болезни // Российский журнал гастроэнтерологии гепатологии и колопроктологии. - 2016. - № 26 (5). - С. 56-65; Карпов И.А., Горбич Ю.Л., Соловей Н.В., Стома И.О. Инфекции, вызванные Clostridium difficile: подходы к диагностике и лечению: учебно-методическое пособие. - Минск: БГМУ, 2014. - 35 с; Корнеева О.Н., Ивашкин В.Т. Антибиотикоассоциированный колит: патоморфология, клиника, лечение // Российский журнал гастроэнтерологии гепатологии и колопроктологии. - 2007. - Т. 17, № 3. - С. 65-70; Лобзин Ю.В., Захаренко С.М., Иванов Г.А. Современные представления об инфекции Clostridium difficile // Клиническая микробиология и антимикробная терапия. - 2002. - Т. 4, № 3. - С. 200-232; Пинчук Т.П., Савельева Н.С., Титова Г.П., Черненькая Т.В., Аванесова В.А., Ярцев П.А. Эндоскопическая диагностика псевдомембранозного колита у реанимационных больных // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. - 2012. - № 10. - С. 13-16; Рациональная фармакотерапия заболеваний органов пищеварения. Руководство для практикующих врачей; 2-е изд., испр. и доп. / Под общ. ред. В.Т. Ивашкина. - М.: Литтерра, 2011. - 848 с; Aldrete S.M., Magee M.J., Friedman-Monaco R., Kraft C.S., Chan A., Hutcherson D., Langston A.A., Greenwell B.I., Burd E.M. (2015) Characteristics and antibiotic use associated with short-term risk of Clostridium difficile infection among hospitalized patients. Am J Clin Pathol, 143 (6), 895-900.; Bartlett J.C. (2006). Narrative review: the new epidemic of Clostridium difficile-associated enteric disease. Ann Intern Med, 145 (10), 758-764.; Bauer M.P., Notermans D.W., van Benthem B.H., Brazier J.S., Wilcox M.H., Rupnik M., Monnet D.L., van Dissel J.T., Kuijper E.J., ECDIS Study Group. (2011). Clostridium difficile infection in Europe: a hospital-based survey. Lancet, 377, 63-73. doi:10.1016/S0140-6736(10)61266-4.; Benedek O., Podbielski A., Warnke P. (2016). Laboratory experience with the liaison analyzer in the diagnosis of Clostridium difficile-associated diarrhea. Eur J Microbiol Immunol, 6 (3), 215-218.; Benes J., Husa P., Nyc O. Diagnosis and therapy of Clostridium difficile infection: Czech national guidelines. Klin Mikrobiol Infekc Lek, 20 (2), 56-66.; Bobo L.D., Dubberke E.R., Kollef M. (2016). Clostridium difficile in the ICU: the struggle continues. Chest, 140 (6), 1643-1653.; Brien J.A., Caro J.J. (2007). The emerging infectious challenge of Clostridium difficile-associated disease in Massachusetts hospitals: clinical and economic consequences. Infect Control Hosp Epidemiol, 28 (11), 1219-1227.; Burnham C.A. (2013). Carroll diagnosis of Clostridium difficile infection: an ongoing conundrum for clinicians and for clinical laboratories. KCClin Microbiol Rev, 26 (3), 604-630.; Chang J.Y., Antonopoulos D.A., Kalra A., Tonelli A., Khalife W.T., Schmidt T.M., Young V.B. (2008). Decreased diversity of the fecal microbiome in recurrent Clostridium difficile-associated diarrhea. J Infect Dis, 197 (3), 435-438. doi:10.1086/525047.; Chitnis A.S., Holzbauer S.M., Belflower R.M., Winston L.G., Bamberg W.M., Lyons C., Farley M.M., Dumyati G.K., Wilson L.E., Beldavs Z.G., Dunn J.R., Gould L.H., MacCannell D.R., Gerding D.N., McDonald L.C., Lessa F.C. (2011). Epidemiology of community associated Clostridium difficile infection 2009 through. JAMA Intern Med, 173, 1359-1367.; Cohen S.H., Gerding D.N., Johnson S., Kelly C.P., Loo V.G., McDonald L.C., Pepin J., Wilcox M.H. (2010) Clinical practice guidelines for Clostridium difficile infection in adults: 2010 update by the Society for Healthcare Epidemiology of America (SHEA) and the Infectious Diseases Society of America (IDSA). Infect Control Hosp Epidemiol, 31 (5), 431-455. doi:10.1086/651706.; Debast S.B., Bauer M.P. (2014). European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases: update of the treatment guidance document for Clostridium difficile infection (CDI). Clin Microbiol Infect, 20 (2), 45-48.; Gerding D.N., Johnson S., Rupnik M., Aktories K. (2014). Clostridium difficile binary toxin CDT: Mechanism, epidemiology, and potential clinical importance. Gut Microbes, 5, 1-13.; Gerding D.N., Muto C.A., Owens R.C. (2008). Treatment of Clostridium difficile infection. Clin Infect Dis, 46 (1), 32-42.; Gupta A., Khanna S. (2014). Community-acquired Clostridium difficile infection: an increasing public health threat. Infect Drug Resist, 7, 63-72.; Johal S.S., Hammond J., Solomon K., James P.D., Mahida Y.R. (2004). Clostridium difficile associated diarrhoea in hospitalised patients: onset in the community and hospital and role of flexible sigmoidoscopy. Gut, 53 (5), 673-677.; Kazanowski M., Smolarek S., Kinnarney F., Grzebieniak Z. (2014). Clostridium difficile: Epidemiology, diagnostic and therapeutic possibilities - A systematic review. Tech Coloproctol, 18 (3), 223-232.; Kelly C.P., La Mont J.T. (2008). Clostridium difficile -more difficult than ever. N Engl J Med, 359 (18), 1932-1940.; Khanna S., Pardi D.S. (2014). Clostridium difficile infection: management strategies for a difficult disease. Ther Adv Gastroenterol, 7 (2), 72-86.; Knight D.R., Elliott B., Chang B.J., Perkins T.T., Riley T.V. (2015). Diversity and evolution in the genome of clostridium difficile. Clin Microbiol Rev, 28 (3), 721-741. doi:10.1128/CMR.00127-14.; Korman T.M. (2015). Diagnosis and management of Clostridium difficile infection. Semin Respir Crit Care Med, 36 (1), 31-43.; Kostic A.D., Xavier R.J., Gevers D. (2015). The microbiome in iflammatory bowel diseases: current status and the future ahead. Gastroenterology, 146 (6), 1489-1499.; Kurti Z., Lovasz B.D., Mandel M.D., Csima Z., Golovics P.A., Csako B.D., Mohas A., Gönczi L., Gecse K.B., Kiss L.S., Szathmari M., Lakatos P.L. (2015). Burden of Clostridium difficile infection between 2010 and 2013: Trends and outcomes from an academic center in Eastern Europe. World J Gastroenterol, 21 (21), 6728-6735.; Lowy I., Molrine D., Leav B. (2010). Treatment with monoclonal antibodies against Clostridium difficile toxins. N Engl J Med, 362, 197-205.; Lupse M., Flonta M., Cioara A. (2013). Predictors of first recurrence in Clostridium diffcile-associated disease. A study of 306 patients hospitalized in a Romanian tertiary referral center. J Gastrointestin Liver Dis, 22 (4), 397-403.; McFarland L.V. (2006). Meta-analysis of probiotics for the prevention of antibiotic associated diarrhea and the treatment of Clostridium difficile disease. Am J Gastroenterol, 101, 812-822.; Miller M.A. (2007). Clinical management of Clostridium difficile-associated disease. Clin Infect Dis, 45, Suppl 2, 122-128.; Nelson R.L., Kelsey P., Leeman H., Meardon N., Patel H., Paul K., Rees R., Taylor B., Wood E., Malakun R. (2011) Antibiotic treatment for Clostridium difficile associated diarrhea in adult. Cochrane Database Syst Rev, 9. Available at: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21901692. doi:10.1002/14651858; Norman J.M., Handley S.A., Baldridge M.T., Droit L., Liu C.Y., Keller B.C., Kambal A., Monaco C.L., Zhao G., Fleshner P., Stappenbeck T.S., McGovern D.P., Keshavarzian A., Mutlu E.A., Sauk J., Gevers D., Xavier R.J., Wang D., Parkes M., Virgin H.W. (2016). Disease-specific alterations in the enteric virome in inflammatory bowel disease. NIH Public Access, 160 (3), 447-460. doi:10.1016/j.cell.2015.01.002.; Qin J., Li Y., Cai Z., Li S., Zhu J., Zhang F., Liang S., Zhang W., Guan Y., Shen D., Peng Y., Zhang D., Jie Z., Wu W., Qin Y., Xue W., Li J., Han L., Lu D., Wu P., Dai Y., Sun X., Li Z., Tang A., Zhong S., Li X., Chen W., Xu R., Wang M., Feng Q., Gong M., Yu J., Zhang Y., Zhang M., Hansen T., Sanchez G., Raes J., Falony G., Okuda S., Almeida M., LeChatelier E., Renault P., Pons N., Batto J.M., Zhang Z., Chen H., Yang R., Zheng W., Li S., Yang H., Wang J., Ehrlich S.D., Nielsen R., Pedersen O., Kristiansen K., Wang J. (2012). A metagenome-wide association study of gut microbiota in type 2 diabetes. Nature, 490 (7418), 55-60.; Russello G., Russo A., Sisto F., Scaltrito M.M., Farina C. (2012). Laboratory diagnosis of Clostridium difficile associated diarrhoea and molecular characterization of clinical isolates. New Microbiol, 35, 307-316.; Semenyuk E.G., Laning M.L., Foley J., Johnston P.F., Knight K.L., Gerding D.N., Driks A. (2014). Spore formation and toxin production in Clostridium difficile biofilms. PLoS One, 9 (1), 1-14. doi:10.1371/journal.pone.0087757; Seo G.S. (2013). Clostridium difficile infection: what’s new? In test Res, (11), 1-13.; Shah D.N., Aitken S.L., Barragan L.F., Bozorgui S., Goddu S., Navarro M.E., Xie Y., DuPont H.L., Garey K.W. (2016). Economic burden of primary compared with recurrent Clostridium difficile infection in hospitalized patients: a prospective cohort study. J Hosp Infect Elsevier, 93 (3), 286-289. doi:10.1016/j.jhin.2016.04.004.; Slimings C., Riley T.V. (2014). Antibiotics and hospital-acquired Clostridium difficile infection: update of systematic review and meta-analysis. J Antimicrob Chemother, 69, 881-891; Surawicz C.M., Brandt L.J., Binion D.G., Ananthakrishnan A.N., Curry S.R., Gilligan P.H., McFarland L.V., Mellow M., Zuckerbraun B.S. (2013). Guidelines for diagnosis, treatment, and prevention of Clostridium difficile infections. Am J Gastroenterol, 108 (4), 478-498. doi:10.1038/ajg.2013.4.; Turgeon D.K., Novicki T.J., Quick J., Carlson L., Miller P., Ulness B., Cent A., Ashley R., Larson A., Coyle M., Limaye A.P., Cookson B.T., Fritsche T.R. (2003) Six rapid tests for direct detection of Clostridium difficile and its toxins in fecal samples compared with the fibroblast cytotoxicity assay. J Clin Microbiol, 41 (2), 667-670.; Videlock E., Cremonini F. (2012) Meta-analysis: probiotics in antibiotic-associated diarrhea. Aliment Pharmacol Ther, 35 (12), 1355-1369.; Yoldaş Ö., Altindiş M., Cufali D., Aşik G., Keşli RAu. (2016). A diagnostic algorithm for the detection of Clostridium difficile-associated diarrhea. Balkan Med J, 33 (1), 80-86. doi:10.5152/balkanmedj.2015.15159.; Zhang S., Palazuelos-Munoz S., Balsells E.M., Nair H., Chit A., Kyaw M.H. (2016). Cost of hospital management of Clostridium difficile infection in the United States - a meta-analysis and modelling study. BMC Infect Dis, 16, 1-18.; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/534

الاتاحة: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/534
https://doi.org/10.29413/ABS.2018-3.1.5

المؤلفون: I. V. Nikolaeva, G. S. Shaikhieva, Kh. S. Khaertynov, M. R. Gataullin, Yu. R. Urmancheeva, И. В. Николаева, Г. С. Шайхиева, Х. С. Хаертынов, М. Р. Гатауллин, Ю. Р. Урманчеева

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 62, № 5 (2017); 88-92 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 62, № 5 (2017); 88-92 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2017-62-5

مصطلحات موضوعية: гнойно-воспалительные заболевания, cesarean section, acute respiratory viral infections, diarrhea, pyoinflammatory diseases, кесарево сечение, острые респираторные вирусные инфекции, диарея

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/556/543; Betrán A.P., Ye J., Moller A.B., Zhang J., Gülmezoglu A.M., Torloni M.R. The Increasing Trend in Caesarean Section Rates: Global, Regional and National Estimates: 1990-2014. PLoS One 2016; 11 (2): 1–12. DOI:10.1371/journal.pone.0148343; Betrán A.P., Merialdi M., Lauer J.A., Bing-Shun W., Thomas J., Van Look P. et al. Rates of caesarean section: analysis of global, regional and national estimates. Paediatr Perinat Epidemiol 2007; 21 (2): 98–113. DOI:10.1111/j.1365-3016.2007.00786.x; Althabe F., Sosa C., Belizán J.M., Gibbons L., Jacquerioz F., Bergel E. Cesarean section rates and maternal and neonatal mortality in low-, medium-, and highincome countries: an ecological study. Birth 2006; 33 (4): 270–277. DOI:10.1111/j.1523-536X.2006.00118.x; Ronsmans C., Holtz S., Stanton C. Socioeconomic differentials in caesarean rates in developing countries: a retrospective analysis. Lancet 2006; 368 (9546): 1516–1539. DOI:10.1016/S0140-6736(06)69639-6; Signore C., Klebanoff M. Neonatal morbidity and mortality after elective cesarean delivery. Clin Perinatol 2008; 35 (2): 361–371. DOI:10.1016/j.clp.2008.03.009; Bager P., Wohlfahrt J., Westergaard T. Caesarean delivery and risk of atopy and allergic disease: meta-analyses. Clin Exp Allergy 2008; 38 (4): 634–642. DOI:10.1111/j.1365-2222.2008.02939.x; Decker E., Engelmann G., Findeisen A., Gerner P., Laass M., Ney D. et al. Cesarean Delivery Is Associated With Celiac Disease but Not Inflammatory Bowel Disease in Children. Pediatrics 2010; 125 (6): 1433–1440. DOI:10.1542/peds.2009-2260; Yang I., Corwin J., Brennan A., Jordan S., Murphy R., Dunlopet A. The In-fant Microbiome: Implications for Infant Health and Neurocognitive Develop-ment. Nursing Research 2016; 65 (1):76–88. DOI:10.1097/NNR.0000000000000133; Cortese F., Scicchitano P., Gesualdo M., Filaninno A., De Giorgi E., Schettini F., et al. Early and late infections in Newborns: Where do we stand? A review. Pediatr Neonatol 2016; 57 (4): 265–273. DOI:10.1016/j.pedneo.2015.09.007; Moore H.C., de Klerk N., Richmond P., Lehmann D. A retrospective population-based cohort study identifying target areas for prevention of acute lower respiratory infections in children. BMC Public Health 2010; 10: 757–866. DOI:10.1186/1471-2458-10-757; Николаева И.В., Анохин В.А., Купчихина Л.Н., Халиуллина С.В. Риск развития инфекционных и соматических заболеваний у детей раннего возраста, рожденных кесаревым сечением. Практическая медицина 2013; 6: 93–97. [Nikolaeva I.V., Anohin V.A., Kupchihina L.N., Haliullina S.V. Risk of infectious and somatic diseases in infants, born by cesarean section. Prakticheskaja meditsina 2013; 6: 93–97. (in Russ)]; Мазанкова Л.Н., Захарова И.Н., Дмитриева Ю.А. Концептуальный подход к назначению пробиотиков-синбиотиков у детей. Детские инфекции 2010; 1: 27–32. [Mazankova L.N., Zaharova I.N., Dmitrieva Yu.A. A conceptual approach to prescribing probiotics-synbiotics in children. Detskie infekcii 2010; 1: 27–32. (in Russ)]; Penders J., Thijs C., Vink C., Stelma F.F., Snijders B., Kummeling I. et al. Factors influencing the composition of the intestinal microbiota in early infancy. Pediatrics 2006; 118 (2): 511–521. DOI:10.1542/peds.2005-2824; Biasucci G., Benenati B., Morelli L., Bessi E., Boehm G. Cesarean Delivery May Affect the Early Biodiversity of Intestinal Bacteria. J Nutr 2008; 138 (9): 1796–1800.; Madan J.C., Farzan S.F., Hibberd P.L., Karagas M.R. Normal neonatal microbiome variation in relation to environmental factors, infection and allergy. Curr Opin Pediatr 2012; 24 (6): 753–759. DOI:10.1097/MOP.0b013e32835a1ac8; Holgerson P. L., Harnevik L., Hernell O., Tanner A.C.R., Johansson I. Mode of Birth Delivery Affects Oral Microbiota in Infants. J Dent Res 2011; 90 (10): 1183–1188. DOI:10.1177/0022034511418973; Jiménez E., Fernández L., Marín M.L., Martín R., Odriozola J.M., Nueno-Palop C. et al. Isolation of commensal bacteria from umbilical cord blood of healthy neonates born by cesarean section. Curr Microbiol 2005; 51 (4): 270–274. DOI:10.1007/s00284-005-0020-3; Zhong M., Yan P., Xie M. Human rotavirus infection in perinatal transmission. Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi 1997; 32 (12): 735–742.; Moore H.C., de Klerk N., Holt P., Richmond P.C. Hospitalization for bronchiolitis in infants is more common after elective caesarean delivery. Arch Dis Childh 2011; 97 (5): 410–414. DOI:10.1136/archdischild-2011-300607; Zhang G., Rowe J., Kusel M., Bosco A., McKenna K., de Klerk N. et al. Interleukin- 10/interleukin-5 responses at birth predict risk for respiratory infections in children with atopic family history. Am J Respir Crit Care Med 2009; 179 (3): 205–216. DOI:10.1164/rccm.200803-438OC; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/556

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/556
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2017-62-5-88-92

المؤلفون: S. V. Khaliullina, V. A. Anokhin, I. V. Nikolaeva, O. A. Nazarova, С. В. Халиуллина, В. А. Анохин, И. В. Николаева, О. А. Назарова

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 62, № 5 (2017); 171-174 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 62, № 5 (2017); 171-174 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2017-62-5

مصطلحات موضوعية: низкоосмолярные растворы, rotavirus gastroenteritis, treatment, low osmolar solutions, ротавирусный гастроэнтерит, лечение

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/572/559; Farthing M., Salam M., Lindberg G. Acute diarrhea in adults and children: a global perspective. World Gastroenterology Organisation Global Guidelines. 2012. http://www.worldgastroenterology.org/guidelines/global-guidelines/acute-diarrhea/acute-diarrhea-russian Ссылка активна на 06.07.2017.; King C.K., Glass R., Bresee J.S., Duggan C. The Management of Acute Diarrhea in Children: Oral Rehydration, Maintenance, and Nutritional Therapy. СDC. MMWR. 2003. https://www.cdc.gov/mmwr/preview/mmwrhtml/rr5216a1.htm Ссылка активна на 06.07.2017.; Global burden of disease. Health Metrics and Evaluation (IHME), University of Washington, 2013. http://www.healthdata.org/sites/default/files/files/policy_report/2013/WB_EuropeCentralAsia/IHME_GBD_WorldBank_EuropeCentralAsia_FullReport_RUSSIAN.pdf Ссылка активна на 06.07.2017.; Guarino А., Ashkenazi S., Gedrel D. ESPGHAN/ESPID Evidence-based Guidelines for the Management of Acute Gastroenteritis in Children in Europe. Update 2014. J Pediatr Gastroenterol Nutr 2014; 59 (1): 132–152. DOI:10.1097/MPG.0000000000000375; Szajewska H. Advances and limitations of evidence-based medicine – impact for probiotics. Ann Nutr Metab 2010; 57: 6–9. DOI:10.1159/000309015.; Olek A., Woynarowski M., Ahren I.L., Kierkuś J., Socha P., Larsson N., Önning G. Efficacy and Safety of Lactobacillus plantarum DSM 9843 (LP299V) in the Prevention of Antibiotic- Associated Gastrointestinal Symptoms in Children-Randomized, Double-Blind, Placebo- Controlled Study. J Pediatr 2017; 186: 82-86. DOI:10.1016/j.jpeds.2017.03.047.; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/572

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/572
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2017-62-5-171-174

المؤلفون: A. D. Tsaregorodtsev, Kh. S. Khaertynov, V. A. Anokhin, I. V. Nikolaeva, D. R. Semenova, S. A. Lyubin, I. V. Agapova, N. N. Skvortsova, А. Д. Царегородцев, Х. С. Хаертынов, В. А. Анохин, И. В. Николаева, Д. Р. Семенова, С. А. Любин, И. В. Агапова, Н. Н. Скворцова

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 61, № 4 (2016); 49-54 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 61, № 4 (2016); 49-54 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2017-4-4

مصطلحات موضوعية: продуценты β-лактамаз расширенного спектра, neonatal sepsis, Klebsiella, extended-spectrum β-lactamase-producers, неонатальный сепсис, клебсиелла

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/352/381; Самсыгина Г. А. О предрасполагающих факторах и факторах риска развития неонатального сепсиса и о современных подходах его лечения. Педиатрия 2012; 91: 3: 32–37. (Samsygina G. A. About predisposing factors and risk factors for neonatal sepsis and modern approaches its treatment. Pediatrija 2012; 91: 3: 32–37.); Verma P., Berwal P. K., Nagaraj N. et al. Neonatal sepsis: epidemiology, clinical spectrum, recent antimicrobial agents and their antibiotic susceptibility pattern. Int J Contemp Pediatr 2015; 2: 3:176–180.; Camacho-Gonzales A., Spearman P. W., Stoll B. J. Neonatal infectious diseases: evaluation of neonatal sepsis. Pediatr Clin North Am 2013; 60: 367–389.; Lawn J. E., Cousens S., Zupan J. T. Lancet Neonatal Survival Steering. 4 million neonatal deaths: when? Where? Why? Lancet 2005; 365: 9462: 891–900.; Tissieres P., Ochoda A., Dunn-Siegrist I. et al. Innate Immune Deficiency of Extremely Premature Neonates Can Be Reversed by Interferon-γ. PLos ONE 2012; 7: 3.; Stoll B. J., Hansen N., Fanaroff A. A. et al. Late-onset sepsis in very low birth weight neonates: the experience of the NICHD Neonatal Research Network. Pediatrics 2002; 110: 1: 285–291.; Stoll B. J., Hansen N. I., S´anchez P. J. et al. Early onset neonatal sepsis: the burden of group B streptococcal and E.coli disease continues. Pediatrics 2011; 127: 5: 817–826.; Dong Y., Speer C. P. Late-onset neonatal sepsis: recent developments. Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed 2014; 0: F1–F7. Doi:10.1136/archdischild-2014–30621305.; Janda J. M., Abbott S. L. The Genera Klebsiella and Raoultella. The Enterobacteria. 2nd ed. Washington, USA: ASM Press 2006; 115–129.; Broberg C. A., Palacios M., Miller V. L. Klebsiella: a long way to go towards understanding this enigmatic jet-setter. F1000Prime Reports 2014; 6: 64: doi:10.12703/P6– 64.; Podschun R., Ullmann U. Klebsiella spp. As Nosocomial Pathogens: Epidemiology, Taxonomy, Typing Methods, and Pathogenicity Factors. Clin Microbiol Rev 1998; 4: 11: 589–603.; Asensio A., Oliver A., González-Diego P. et al. Outbreak of a multiresistant Klebsiella pneumoniae strain in an intensive care unit: antibiotic use as risk factor for colonization and infection. Clin Infect Dis 2000; 30: 55.; Страчунский Л. С. β-лактамазы расширенного спектра — быстро растущая и плохо осознаваемая угроза. Клин Микробиол Антибак Химотер 2005; 1: 7: 92–96. (Strachunskij L. S. β-lactamase spread spectrum — growing and the perceived threat of bad. Klin Mikrobiol Antibak Himoter 2005; 1: 7: 92–96.); Damian M., Usein C. R., Palade A. M. Molecular Epidemiology and Virulence Characteristics of Klebsiella pneumoniae Strains Isolated from Hospital-Associated Infections. Open Epidemiol J 2009; 2: 69–78.; Schroll C., Barken K. B., Krogfelt K. A. et al. Role of type 1 and type 3 fimbriae in Klebsiella pneumoniae biofilm formation. BMC Microbiol 2010; 10: 179.; Li B., Zhao Y., Liu C. et al. Molecular pathogenesis of Klebsiella pneumonia. Future Microbiol 2014; 9: 9: 1071–1081.; Brisse B., Fevre C., Passet V. et al. Virulent Clones of Klebsiella pneumoniae: Identification and Evolutionary Scenario Based on Genomic and Phenotypic Characterization. Plos One 2009; 4: 3: e4982. doi:10.1371/journal.pone.0004982.; Shon A. S., Bajwa R. P., Russo T. A. Hypervirulent (hypermucoviscous) Klebsiella pneumoniae: a new and dangerous breed. Virulence 2013; 4: 2: 107–118.; Shon A. S., Russo T. A. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae: the next superbug? Future Microbiol 2012; 7: 6: 669–671.; Cortes G., Borrell N., De Astorza B. et al. Molecular analysis of the contribution of the capsular polysaccharide and the lipopolysaccharide O side chain to the virulence of Klebsiella pneumoniae in a murine model of pneumonia. Infect Immun 2002; 70: 5: 2583– 2590.; Lawlor M. S., Handley S. A., Miller V. L. Comparison of the host responses to wild-type and cpsB mutant Klebsiella pneumoniae infections. Infect Immun 2006; 74: 9: 5402–5407.; Regueiro V., Campos M. A., Pons J. et al. The uptake of a Klebsiella pneumoniae capsule polysaccharide mutant triggers an inflammatory response by human airway epithelial cells. Microbiol 2006; 152: 2: 555–566.; Regueiro V., Moranta D., Frank C. G. et al. Klebsiella pneumoniae subverts the activation of inflammatory responses in a NOD1‑dependent manner. Cell Microbiol 2011; 13: 1: 135– 153.; Evrard B., Balestrino D., Dosgilbert A. et al. Roles of capsule and lipopolysaccharide O antigen in interactions of human monocyte-derived dendritic cells and Klebsiella pneumoniae.Infect Immun 2010; 78: 1: 210–219.; March C., Moranta D., Regueiro V. et al. Klebsiella pneumoniae outer membrane protein A is required to prevent the activation of airway epithelial cells. J Biol Chem 2011; 286: 12: 9956–9967.; March C., Cano V., Moranta D. et al. Role of bacterial surface structures on the interaction of Klebsiella pneumoniae with phagocytes. PLoS ONE 2013; 8: 2: e56847.; Hansen D. S., Mestre F., Alberti S. et al. Klebsiella pneumoniae lipopolysaccharide O typing: revision of prototype strains and O-group distribution among clinical isolates from different sources and countries. J Clin Microbiol 1999; 37: 1: 56–62.; Merino S., Altarriba M., Izquierdo L. et al. Cloning and sequencing of the Klebsiella pneumoniae O5 wb gene cluster and its role in pathogenesis. Infect Immun 2000; 68: 5: 2435– 2440.; Hsieh P. F., Lin T. L., Yang F. L. et al. Lipopolysaccharide O1 antigen contributes to the virulence in Klebsiella pneumoniae causing pyogenic liver abscess. PLoS ONE 2012; 7: 3: e33155.; Murphy C. N., Mortensen M. S., Krogfelt K. A. et al. Role of Klebsiella pneumoniae type 1 and type 3 fimbriae in colonizing silicone tubes implanted into the bladders of mice as a model of catheter-associated urinary tract infections. Infect Immun 2013; 81: 8: 3009–3017.; Yu V. L., Hansen D. S., Ko W. Ch. Virulence Characteristics of Klebsiella and Clinical Manifestations of K. pneumoniae Bloodstream Infections. Emerging Infect Dis 2007; 13: 7: 986–993.; Russo T. A., Shon A. S., Beanan J. M. et al. Hypervirulent K. pneumoniae secretes more and more active iron-acquisition molecules than ‘classical’ K. pneumoniae thereby enhancing its virulence. PLoS ONE 2011; 6: 10: e26734.; Nassif X., Fournier J. M., Arondel J. et al. Mucoid phenotype of Klebsiella pneumoniae is a plasmid-encoded virulence factor. Infect Immun 1989; 57: 546–552.; Bachman M. A., Lenio S., Schmidt L. et al. Interaction of lipocalin 2, transferrin, and siderophores determines the replicative niche of Klebsiella pneumoniae during pneumonia. MBio 2012; 3: e00224–11.; Alyssa S. S., Rajinder P. S. B., Thomas A. R. Hypervirulent (hypermucoviscous) Klebsiella pneumoniae. A new and dangerous breed. Virulence 2013; 4: 2: 107–118.; Wang J. H., Liu Y. C., Lee S. S. et al. Primary liver abscess due to Klebsiella pneumoniae in Taiwan. Clin Infect Dis 1998; 26: 1434.; Ni Y. H., Yeh K. M., Peng M. Y. et al. Community-acquired brain abscess in Taiwan: etiology and probable source of infection. J Microbiol Immunol Infect 2004; 37: 231.; Park C. H., Joo Y. E., Choi S. K. et al. Klebsiella pneumoniae septic arthritis in a cirrhotic patient with hepatocellular carcinoma. J Korean Med Sci 2004; 19: 608.; Yu W. L., Cheng C. C., Chuang Y. C. First report of acute purulent pericarditis by capsule genotype K1 Klebsiella pneumoniae in an alcoholic patient. Diagn Microbiol Infect Dis 2009; 63: 346.; Such J., Runyon B. A. Spontaneous bacterial peritonitis. Clin Infect Dis 1998; 27: 669.; Bush K. New beta-lactamases in Gram-negative bacteria: diversity and impact on selection of antimicrobial therapy. Clin Infect Dis 2001; 32: 1085–1089.; Kanj S. S., Kanafani Z. A. Current Concepts in Antimicrobial Therapy Against Resistant Gram-Negative Organisms: Extended-Spectrum β-Lactamase — Producing Enterobacteriaceae, Carbapenem-Resistant Enterobacteriaceae, and Multidrug-Resistant Pseudomonas aeruginosa. Mayo Clin Proc 2011; 86: 3: 250–259.; Yigit H., Queenan A. M., Anderson G. J. et al. Novel carbapenemhydrolyzing beta- lactamase, KPC-1, from a carbapenemresistant strain of Klebsiella pneumoniae. Antimicrob Agents Chemother 2001; 45: 1151–1161.; Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Vital signs: carbapenem-resistant Enterobacteriaceae. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 2013; 62: 165–170.; Arif S. H., Ahmad I., Ali S. M. et al. Thrombocytopenia and Bacterial Sepsis in Neonates. Indian J Hematol Blood Transfus 2012; 28: 3: 147–151.; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/352

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/352
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2016-61-4-49-54

المؤلفون: I. V. Nikolaeva, A. D. Tsaregorodtsev, И. В. Николаева, А. Д. Царегородцев

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 60, № 5 (2015); 162-167 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 60, № 5 (2015); 162-167 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; undefined

مصطلحات موضوعية: вакцины, pertussis, epidemiology, diagnosis, prevention, vaccines, коклюш, эпидемиология, диагностика, профилактика

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/173/214; Centers for Disease Control and Prevention. Pertussis in other countries. 2013; http://www.cdc.gov/pertassis/countries.litml.; World Health Organization. SAGE Working Group on Pertussis Vaccines (established March 2013). Background paper. 2014; http://www.who.int/immunization/sage/meet-ings/2014/april/l_Pertussis_background_FINAL4_web.pdf; Mattoo S., Cherry J.D. Molecular pathogenesis, epidemiology, and clinical manifestations of respiratory infections due to Bordetella pertussis and other Bordetella subspecies. Clin Microbiol Rev 2005; 18: 2: 326-382.; Winter K., GlaserC, Watt J. et al. Pertussis Epidemic — California, 2014. Morb Mortal Wkly Rep 2014; 63: 1129-1132.; Таточенко В.К. Коклюш — недоуправляемая инфекция. Вопр соврем педиат 2014; 13: 2: 78—82. (Tatochenko V.K. Whooping cough — the non operated infection. Vopr sovrem pediat2014;13:2:78-82.); Liko J., Steve G., Robison B.S. et al. Priming with whole-cell versus acellular pertussis vaccine. N Engl J Med 2013; 7: 368: 6:581-582.; Кудин А.П., Дралова В.В., Марукович В.В. и др. Применение ингаляционных глюкокортикоидов при лечении коклюша у детей. Мед журн 2013; 4: 125—128. (KudinA.P., Dralova V.V., Marukovich V.V. et al. Application of inhalation glucocorticoids at treatment of pertussis at children. Med zhurn2013; 4: 125-128.); Cherry J.D. Why do pertussis vaccines fail? Pediatrics 2012; 129: 968-970.; Moot F.R. Bordetella pertussis and vaccination: the persistence of a genetically monomorphic pathogen. Infect Genet Evol 2010; 10: 1:36-49.; Борисова О.Ю., Мазурова И.К., Ивашинникова Г.А. и др. Генетическая характеристика штаммов Bordetella pertussis, выделенных от больных коклюшем в России. Медицинский альманах 2012; 2: 30—34. (Borisova O.Yu., Mazurova I.К., Ivashinnikova G.A. et al. The genetic characteristic of the strains Bordetella pertussis, allocated from patients with whooping cough in Russia. Meditsinskij al'manakh2012; 2: 30-34.); Guiso N. Bordetella pertussis and pertussis vaccines. Clin Infect Dis 2009; 49:10 :1565-1569.; Cherry J. D., Heininger U. Pertussis and other Bordetella infections. In: R.D. Feigin, J.D. Cherry, G.J. Demmler, S. Kaplan (eds.). Textbook of pediatric infectious diseases. 5th ed. TheW. B. Saunders Co, Philadelphia 2004; 1588-1608.; Лапий Ф.И? Актуальность эффективной защиты против коклюша. Здоровье ребенка 2010; 3: 84—86. (Lapij F.I. Relevance of effective protection against whooping cough. Zdorov'e rebenka 2010; 3: 84-86.); Bisgard K.M., PascualF.B., Ehresmann K.R. etal. Infant pertussis: who was the source? Pediat Infect Dis J 2004; 23: 985-989.; Lobzin Y.V., Bakhareva N. V. Retrospective Study of the Clinical Epidemiological Characteristics of Pertussis in Infants Prior to Their First Vaccination in the Russian Federation. Infectious diseases and therapy 2015; 4: 1.; Locht С Molecular aspects of Bordetella pertussis pathogenesis. Int Microbiol 1999; 2: 3: 137-44.; Soares S., Rocha G., Pissarra S. et al. Impact of rapid leukode-pletion on the outcome of severe clinical pertussis in young infants. Pediatrics 2010; 126: 816-827.; Sawa M., Cohen M., Irazmta J.E. et al. Fulminant pertussis: a multi-center study with new insights into the clinico-pathological mechanisms. Pediat Pulmonol 2009; 44: 10: 970-980.; Paddock CD., Sanden G.N., Cherry J.D. et al. Pathology and Pathogenesis of Fatal Bordetella pertussis Infection in Infants. Clin Infect Dis 2008; 47: 3: 328-338.; Попова О.П., Петрова М.С., Федорова ИМ. и др. Клини-ко-иммунологические особенности сочетанного течения коклюша и респираторного микоплазмоза у детей. Инфекционные болезни 2012; 10: 2: 43—48. (Popova О.Р., Petrova M.S., Fedorova I.M. et al. Clinical and immunologi-cal features of the combined course of whooping cough and respiratory mycoplasmosis at children. Infektsionnye bolezni 2012; 10: 2: 43-48.); Centers for Disease Control and Prevention. Pertussis (Whooping Cough), Clinicians, Clinical Complications. 2012; http:/www.cdc.gov/pertussis/clinical/features.html.; Bortolussi R., Miller В., Ledwith M., Halperin S. Clinical course of pertussis in immunized children. Pediat Infect Dis J 1995; 14: 870.; Сиземов А.П., Комелева Е.В. Коклюш: клиника, диагностика, лечение. Лечащий врач 2005; 7: 82—87. (Sizemov A.N., Komeleva E.V Whooping cough: clinic, diagnostics, treatment. Lechashhij vrach 2005; 7: 82-87.); Marshall П., Clarke M., Rasiah K. et al. Predictors of disease severity in children hospitalized for pertussis during an epidemic. Pediat Infect Dis J 2015; 34: 4: 339-345.; Centers for Disease Control and Prevention. Pertussis—United States, 1997—2000. Age distribution and incidence of reported cases. 2002; http: //www.cdc.gov/nip/ed/slides/per-tussis8p.pp; Kundraft S.L., Wolek T.L., Rowe-Telow M. Malignant pertussis in the pediatric intensive care unit. Dimens Crit Care Nurs 2010; 29: 1-5.; Rowlands HE., Goldman A.P., Harrington K. et al. Impact of rapid leukodepletion on the outcome of severe clinical pertussis in young infants. Pediatrics 2010; 126: 816—827.; Theilen U., Johnston E.D., Robinson P.A. Rapidly fatal invasive pertussis in young infants—how can we change the outcome? BMJ 2008; 27: 337-343.; Surridge J., Segedin E.R., Grant C.C. Pertussis requiring intensive care. Arch Dis Child 2007; 92: 11: 970-975.; Versteegh E.G., Mooi-Kokenberg E.A., Schellekens J.F. et al. Bordetella pertussis and mixed infections. Minerva Pediat 2006; 58: 131.; Nuolivirta K., Koponen P., He Q. et al. Bordetella pertussis infection is common in nonvaccinated infants admitted for bronchiolitis. Pediat Infect Dis J 2010; 29: 1013.; ZouariA., TouatiA., Smaoui H. etal. Dual infection with Bordetella pertussis and Mycoplasma pneumoniae in three infants: case reports. Infection 2012; 40: 213.; СП 3.1.2.3162-14. Профилактика коклюша. Санитарно-эпидемиологические правила. 2014; http://35. rospotrebnadzor.ru/Default.aspx?et=4&ig (SP 3.1.2.3162-14. Prevention of whooping cough. Sanitary and epidemio-logic rules. 2014; http://35.rospotrebnadzor.ru/Default. aspx?et=4&ig); Ценева Г.Я., Курова Н.Н. Микробиологическая характеристика возбудителя коклюша и лабораторная диагностика коклюша. Клин микробиол и антимикробная химиотер 2003; 4: 329—341. (Tseneva G.Ya., Kurova N.N. Microbiological characteristic of the causative agent of whooping cough and laboratory diagnosis of whooping cough. Klin mikrobiol i antimikrobnaya khi-mioter 2003; 4: 329-341.); Centers for Disease Control and Prevention. Updated recommendations for use of tetanus toxoid, reduced diphtheria toxoid, and acellular pertussis vaccine (Tdap) in pregnant women — Advisory Committee on Immunization Practices (ACIP). Morb Mortal Wkly Rep 2013; 62: 7: 131-135.; Zepp F., Heininger U., Mertsola J. et al. Rationale for pertussis booster vaccination throughout life in Europe. Lancet Infect Dis 2011; 11: 7: 557–570.; Centers for Disease Control and Prevention. Updated recommendations for use of tetanus toxoid, reduced diphtheria toxoid and acellular pertussis (Tdap) vaccine from the Advisory Committee on Immunization Practices. Morb Mortal Wkly Rep 2011; 60: 13–15.; Terranella A., Asay G.R., Messonnier M.L. et al. Pregnancy dose Tdap and postpartum cocooning to prevent infant pertussis: a decision analysis. Pediatrics 2013; 131: 5: 1748–1756.; Kharbanda E.O., Vazquez-Benitez G., Lipkind H.S. et al. Evaluation of the association of maternal pertussis vaccination with obstetric events and birth outcomes. JAMA 2014; 312: 18: 1897–1904.; Fedele G., Bianco M., Debrie A.S. et al. Attenuated Bordetella pertussis vaccine candidate BPZE1 promotes human dendritic cell CCL21-induced migration and drives a Th1/Th17 response. J Immunol 2011; 186: 5388–5396.; Jahnmatz M., Amu S., Ljungman M. et al. B-cell responses after intranasal vaccination with the novel attenuated Bordetella pertussis vaccine strain BPZE1 in a randomized phase I clinical trial. Vaccine 2014; 32: 3350.; Cherry J.D. Pertussis: Challenges Today and for the Future. PLoS Pathog 2013; 9: 7: 1003418.; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/173; undefined

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/173

المؤلفون: И. В. Николаева, I. V. Nikolaeva

المصدر: CHILDREN INFECTIONS ; ДЕТСКИЕ ИНФЕКЦИИ

مصطلحات موضوعية: Ergoferon, release active drugs, acute respiratory viral infection (ARVI), antiviral therapy, children, Эргоферон, релиз-активные препараты, грипп, острые респираторный вирусные инфекции (ОРВИ), противовирусная терапия, детский возраст

Relation: http://rour.neicon.ru:80/xmlui/bitstream/rour/387233/1/55.pdf; https://openrepository.ru/article?id=387233

الاتاحة: https://openrepository.ru/article?id=387233
https://doi.org/10.22627/2072-8107-2014-13-3-45-50