المؤلفون: O. V. Boiprav, E. S. Belousova, N. V. Bogush, S. E. Savanovich, M. M. Kasperovich, A. V. Gusinsky, I. A. Zakharov, О. B. Бойправ, Е. С. Белоусова, Н. В. Богуш, С. Э. Саванович, М. М. Касперович, А. В. Гусинский, И. А. Захаров

المصدر: Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus. Physical-technical series; Том 69, № 1 (2024); 17-27 ; Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия физико-технических наук; Том 69, № 1 (2024); 17-27 ; 2524-244X ; 1561-8358 ; 10.29235/1561-8358-2024-69-1

مصطلحات موضوعية: электромагнитное излучение, absorption coefficient, powdered activated charcoal, electromagnetic radiation, коэффициент поглощения, порошкообразный активированный древесный уголь

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vestift.belnauka.by/jour/article/view/827/656; Effect on Source Signal Condition for Pyramidal Microwave Absorber Performance / H. Nornikman [et al.] // Int. Conf. on Computer and Communication Engineering (ICCCE’10). – 2010. – Vol. 10. – P. 11–13. https://doi.org/10.1109/ICCCE.2010.5556825; Rodriguez, V. Basic Rules for Indoor Anechoic Chamber Design [Measurements Corner] / V. Rodriguez // IEEE Antennas Propag. Mag. – 2016. – Vol. 58, № 6. – P. 82–93. https://doi.org/10.1109/MAP.2016.2609821; Design of Microwave Pyramidal Absorber for Semi Anechoic Chamber in 1 GHz~20 GHz Range / Z. Ali [et al.] // Int. J. Microw. Wirel. Technol. – 2020. – Vol. 2. – P. 22–29. https://doi.org/10.5815/ijwmt.2020.02.03; Enhanced Microwave Absorption of Rice Husk-Based Pyramidal Microwave Absorber with Different Lossy Base Layer / L. Y. Seng [et al.] // IET Microwaves, Antennas & Propagation. – 2020. – Vol. 14, iss. 3. – P. 215–222. https://doi.org/10.1049/iet-map.2019.0571; Investigate the Effect of Dielectric Properties on Microwave Absorption of Pyramidal Microwave Absorber / B. Vagananthan [et al.] // J. Microw., Optoelectron. Electromagn. Appl. – 2022. – Vol. 21, № 2. – P. 328–336. http://dx.doi.org/10.1590/2179-10742022v21i2257631; Electromagnetic Absorber Composite Made of Carbon Fibers Loaded Epoxy Foam for Anechoic Chamber Application / C. Méjean [et al.] // Mater. Sci. Eng., B. – 2017. – Vol. 220. – P. 59–65. https://doi.org/10.1016/j.mseb.2017.03.009; Product Design From Waste: A Novel Eco-Efficient Pyramidal Microwave Absorber Using Rice Husks and Medium Density Fibreboard Residues / C. F. Jung [et al.] // Waste Manage. (Oxford). – 2021. – Vol. 119. – P. 91–100. https://doi.org/10.1016/j.wasman.2020.08.047; A New Fire-Resistant Thin Pyramidal Absorber Based Straw and Gypsum Powder for Cost-Effective EMC Test Chambers / I. B. Basyigit [et al.] // Eng. Sci. Technol. Int. J. – 2023. – Vol. 40. – Art. ID 101344. https://doi.org/10.1016/j.jestch.2023.101344; Orakwue, S. I. Pyramidal Microwave Absorber Design for Anechoic Chamber in the Microwave Frequency Range of 1 GHz to 10 GHz / S. I. Orakwue, I. P. Onu // Eur. J. Eng. Res. Sci. – 2019. – Vol. 4, № 10. http://doi.org/10.24 018/ejers.2019.4.10.1409; Charcoal-Containing Building Materials for Electromagnetic Radiation Shielding / O. V. Boiprav [et al.] // Mag. Civ. Eng. – 2023. – Vol. 117, № 1. – Art. ID 11709. https://doi.org/10.34910/MCE.117.9; Специальные цементы / Т. В. Кузнецова [и др.]. – СПб.: Стройиздат, 1997. – 314 с.; Resistance against Penetration of Electromagnetic Radiation for Ultra-Light Cu/Ni-Coated Polyester Fibrous Materials / K. Yang [et al.] // Polymers (Basel). – 2020. – Vol. 12, № 9. – P. 2029. https://doi.org/10.3390/polym12092029; Electromagnetic Waves Absorbing Characteristics of Composite Material Containing Carbonyl Iron Particles / V. A. Zhuravlev [et al.] // Mater. Sci. Appl. – 2014. – Vol. 5, № 11. – P. 803–811. https://doi.org/10.4236/msa.2014.511080; Dielectric Properties of Heterogeneous Mineral Compositions Based on Bentonite and Gypsum / A. Morozov [et al.] // Transp. Res. Procedia. – 2023. – Vol. 68. – P. 947–954. https://doi.org/10.1016/j.trpro.2023.02.132; Funt, B. L. Dielectric Properties of Polyvinyl Acetals / B. L. Funt, T. H. Sutherland // Can. J. Chem. – 1952. – Vol. 30, № 12. – P. 940–947. https://doi.org/10.1139/v52-114; The Rational Design of Polyurea & Polyurethane Dielectric Materials / R. G. Lorenzini [et al.] // Polymer. – 2013. – Vol. 54, iss. 14. – P. 3529−3533. https://dx.doi.org/10.1016/j.polymer.2013.05.003; Chung, D. D. L. Electromagnetic Skin Depth of Cement Paste and Its Thickness Dependence / D. D. L. Chung, M. Ozturk // J. Build. Eng. – 2022. – Vol. 52. – Art. ID 104393. https://doi.org/10.1016/j.jobe.2022.104393; Pyramidal Metamaterial Absorber for Mode Damping in Microwave Resonant Structures / N. Chikhi [et al.] // Sci. Rep. – 2020. – Vol. 10. – Art. ID 19352. https://doi.org/10.1038/s41598-020-76433-3; Microwave Absorption Performance of Porous Carbon Particles Modified by Nickel with Different Morphologies / Z. Shen [et al.] // J. Mater. Sci. Technol. – 2023. – Vol. 137. – P. 79–90. https://doi.org/10.1016/j.jmst.2022.07.036; https://vestift.belnauka.by/jour/article/view/827

الاتاحة: https://vestift.belnauka.by/jour/article/view/827
https://doi.org/10.29235/1561-8358-2024-69-1-17-27

المؤلفون: M. V. Piterskiy, A. A. Storozhev, Yu. A. Zakharova, I. A. Zakharov, A. V. Semenov, М. В. Питерский, А. А. Сторожев, Ю. А. Захарова, И. А. Захаров, А. В. Семенов

المساهمون: Financing of the study was carried out at theexpense of a subsidy for the implementation of research work (reg. number in the Unified State information system for accounting of research, development and technological works for civil purposes 121041500042-8) p.1.2.1 of the Rospotrebnadzor sectorial program for 2021–2025. «Scientific support of epidemiological surveillance and sanitary protection of the Russian Federation. Creation of new technologies, means and methods of control and prevention of infectious and parasitic diseases»., Работа выполнена в рамках государственного задания ФБУН ФНИИВИ «Виром» Роспотребнадзора за счет субсидии на выполнение НИР (рег. номер в ЕГИСУ НИОКТР 121041500042-8) п.1.2.1 отраслевой программы Роспотребнадзора на 2021-2025 гг. «Научное обеспечение эпидемиологического надзора и санитарной охраны территории Российской Федерации. Создание новых технологий, средств и методов контроля и профилактики инфекционных и паразитарных болезней».

المصدر: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 23, № 1 (2024); 14-20 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 23, № 1 (2024); 14-20 ; 2619-0494 ; 2073-3046

مصطلحات موضوعية: иммунизация, HIV infection, hepatitis B virus, injecting drug users, prisoners, seroprevalence, immunization, ВИЧ-инфекция, вирус гепатита В, потребители инъекционных наркотиков, лица из мест лишения свободы, серопревалентность

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1935/1008; Шамшева О. В., Кочетова Е. О., Полеско И. В. и др. Характеристика поствакцинального иммунитета у студентов, вакцинированных против гепатита В на первом году жизни. Детские инфекции. Общество с ограниченной ответственностью «Диавакс», 2021. Т. 20, № 3.– С. 29–32. doi:10.22627/2072-8107-2021-20-3-29-32; Параскив А. Анализ заболеваемости хроническим гепатитом B в Республике Молдова в условиях массовой вакцинации. Журнал МедиАль. 2020. Т. 26, № 2.– С. 24–29. doi:10.21145/2225-0026-2020-2-24-29; Вяльцин С., Клюева К., Плотникова Е. и др. Заболеваемость населения в Оренбургской области вирусным гепатитом за период с 2016-2020 годы. Общественное здоровье. 2023. Т. 3, № 2.– С. 47–55. doi:10.21045/2782-1676-2023-3-2-47-55; World Health Organization. Interim guidance for country validation of viral hepatitis elimination. Geneva: WHO. 2021. 96 p.; Cui F., Blach S., Manzengo Mingiedi C., et al. Global reporting of progress towards elimination of hepatitis B and hepatitis C. The Lancet Gastroenterology & Hepatology. 2023. Vol. 8, № 4. P. 332–342. doi:10.1016/S2468-1253(22)00386-7.; Кузин С. Н., Семененко Т. А., Клушкина В. В. и др. Состояние популяционного иммунитета к гепатиту В населения Российской Федерации в 2017–2019 годы. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. Общество с ограниченной ответственностью «Нумиком», 2022. Т. 21, № 2.– С. 29–37. doi:10.31631/2073-3046-2022-21-2-29-37.; Методические указания МУ 3.1.2943-11 «Организация и проведение серологического мониторинга состояния коллективного иммунитета к инфекциям, управляемым средствами специфической профилактики (дифтерия, столбняк, коклюш, корь, краснуха, эпидемический паротит, полиомиелит, гепатит В)» (утв. Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом РФ 15 июля 2011 г.). Доступно на: https://base.garant.ru/70102912/ Ссылка активна на 21 декабря 2023.; Ырысова М. Поствакцинальный скрининг иммунологической эффективности вакцинации против гепатита В групп риска инфицирования (медработники, заключенные) в городе Бишкек. Наука и новые технологии. 2009. № 7.– С. 41–43.; Медуницын Н., Олефир Ю., Меркулов В., и др. Персональный и коллективный иммунитет при вакцинации. БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2016. Т. 16, № 4 (60). С. 195–207.; Ashby B., Best A. Herd immunity // Current biology. 2021. Vol. 31, № 4. P. R174–R177. doi:10.1016/j.cub.2021.01.006.; Goyal A., Murray J.M. The Impact of Vaccination and Antiviral Therapy on Hepatitis B and Hepatitis D Epidemiology. PLoS ONE. 2014. Vol. 9, № 10. P. e110143. doi:10.1371/journal.pone.0110143.; Шапиева Н. Т., Понежева Ж. Б., Макашова В. В. и др. Современные аспекты хронического гепатита В. Лечащий врач. 2019. № 5.– С. 82.; Полянина А. В., Быстрова Т. Н. Молекулярно-эпидемиологическая характеристика вируса гепатита В в условиях массовой вакцинопрофилактики. Журнал МедиАль. 2019. Т. 24, № 2.– С. 10–39. doi:10.21145/2225-0026-2019-2-10-39.; Kamarulzaman A., Reid S.E., Schwitters A., et al. Prevention of transmission of HIV, hepatitis B virus, hepatitis C virus, and tuberculosis in prisoners. The Lancet. 2016. Vol. 388, № 10049. P. 1115-1126 doi:10.1016/S0140-6736(16)30769-3.; Ануфриева Е. В., Серикова Е. Н., Останкова Ю. В. и др. Структура распределения маркеров некоторых гемоконтактных инфекций среди лиц из пенитенциарных учреждений. ВИЧинфекция и иммуносупрессии. 2023. Т. 15, № 3.– С. 95–104. doi:10.22328/2077-9828-2023-15-3-95-104; Singh K.P., Crane M., Audsley J., et al. HIV-hepatitis B virus coinfection: epidemiology, pathogenesis, and treatment. AIDS. 2017. Vol. 31, № 15. P. 2035–2052. doi:10.1097/QAD.0000000000001574.; Пономарев С. Б., Стерликов С. А., Михайлов А. Ю. Эпидемическая ситуация по ВИЧ-инфекции в пенитенциарной системе Российской Федерации. Туберкулез и болезни легких. 2022. Т. 100, № 3.– С. 39–45. doi:10.21292/2075-1230-2022-100-3-39-45; Hammer Ø., Harper D.A. Past: paleontological statistics software package for educaton and data anlysis: 1. Palaeontologia electronica. 2001. Vol. 4, № 1.– P. 1.; Dan-Nwafor C.C., Adeoye I., Aderemi K., et al. Serological markers and risk factors associated with Hepatitis B virus infection among Federal Capital Territory prison inmates, Nigeria: Should we be concerned? PLOS ONE. 2021. Vol. 16, № 3. P. e0248045. doi:10.1371/journal.pone.0248045.; Rezende G.R., Lago B.V., Puga M.A., et al. Prevalence, incidence and associated factors for HBV infection among male and female prisoners in Central Brazil: A multicenter study // International journal of infectious diseases: IJID: official publication of the International Society for Infectious Diseases. 2020. Vol. 96. P. 298–307. doi:10.1016/j.ijid.2020.04.019.; Еремеева Ж. Г., Фазылов В. Х., Тураев Р. Г. и др. Поствакцинальный иммунитет к гепатиту В в группе риска. Вестник гематологии. 2018. Т. 14, № 4.– С. 26–26.; Асратян А. А., Мусина Е. Е., Новикова Ю. Б. и др. Оценка напряженности и длительности поствакцинального иммунитета против гепатита В у медицинского персонала крупной наркологической больницы. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика, 2011. Т. 58, № 3.– С. 64–69.; Эсауленко Е.В., Лялина Л.В., Трифонова Г.Ф., и др. Вирусные гепатиты в Российской Федерации. Аналитический обзор. Выпуск 11. Санкт-Петербург: ФБУН НИИЭМ имени Пастера, 2018. 112 с.; Corcorran M.A., Kim N. Chronic hepatitis B and HIV coinfection. Topics in Antiviral Medicine. 2023. Vol. 31, № 1. P. 14–22. PMID: 37018732; Budd J., Robertson R., Elton R. Hepatitis B vaccination and injecting drug users // The British Journal of General Practice: The Journal of the Royal College of General Practitioners. 2004. Vol. 54, № 503. P. 444–447. PMID: 15186567; Haussig J.M., Nielsen S., Gassowski M., et al. A large proportion of people who inject drugs are susceptible to hepatitis B: Results from a bio-behavioural study in eight German cities. International journal of infectious diseases: IJID: official publication of the International Society for Infectious Diseases. 2018. Vol. 66. P. 5–13. doi:10.1016/j.ijid.2017.10.008.; Palmateer N.E., Goldberg D.J., Munro A., et al. Association between universal hepatitis B prison vaccination, vaccine uptake and hepatitis B infection among people who inject drugs. Addiction. 2018. Vol. 113, № 1. P. 80–90. doi:10.1111/add.13944.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1935

الاتاحة: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1935
https://doi.org/10.31631/2073-3046-2024-23-1-14-20

المؤلفون: I. A. Zakharov, И. А. Захаров

المساهمون: The research is conducted under the grant МК2046.2022.2., Исследование выполнено за счет гранта МК2046.2022.2.

المصدر: Izvestiya Rossiiskoi Akademii Nauk. Seriya Geograficheskaya; Том 87, № 5 (2023); 690–700 ; Известия Российской академии наук. Серия географическая; Том 87, № 5 (2023); 690–700 ; 2658-6975 ; 2587-5566

مصطلحات موضوعية: религия, religious polarization, religion, religious competition, religious freedom, religious composition of the population, religious policy, конфессиональная структура населения, религиозная конкуренция, религиозная политика, религиозные свободы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://izvestia.igras.ru/jour/article/view/2313/1418; Антигегн Г.К. Оценка религиозной ситуации, мира и конфликта в Эфиопии после 1991 г. // Вест. Рос. ун-та дружбы народов. Сер.: Международные отношения. 2019. № 4. С. 607–614.; Балашова Г.А. Эфиопский перекресток // Азия и Африка сегодня. 2011. № 7. С. 47–51.; Виноградова К.В. Из истории российско-эфиопских церковных связей XV–XIX вв. // Вопросы Истории. 2000. № 6. С. 49–52.; Горохов С.А. География религий: Циклы развития глобального конфессионального пространства. М.: Юнити-Дана, 2020. 235 с.; Захаров И.А. Государственное регулирование деятельности религиозных организаций в странах Африки в конце ХХ–начале XXI вв.: макрорегиональные тенденции // Электронный научно-образовательный журн. “История”. 2022. № 6. https://history.jes.su/s207987840021692-0-1/; Захаров И.А. Факторы поляризации конфессионального пространства Эфиопии // Вестн. Рязанского гос. ун-та имени С.А. Есенина. 2016. № 4. С. 179–190.; Захаров И.А., Горохов С.А., Дмитриев Р.В. Трансформация конфессионального пространства Африки в ХХ–начале XXI вв. // Изв. РАН. Сер. геогр. 2020. № 3. С. 359–368.; Исмагилова Р.Н. Эфиопия: особенности федерализма. М.: Институт Африки РАН, 2018. 544 с.; Исмагилова Р.Н. Эфиопия: победа сидама в вековой борьбе за самоопределение // Ученые записки Инта Африки РАН. 2021. № 2. С. 47–65.; Каплан С. Воздвижение Креста Господня и свержение императора Эфиопии: лидж Иясу и драма во время праздника Мэскэль // Государство, религия, церковь в России и за рубежом. 2015. № 2. С. 182–197.; Львова Э.С. Эта многоликая Эфиопия: очерки по истории, культуре, этнографии. М., 2009. 332 с.; Ныгусие Кассае В.М., Морозова Н.Н. Взаимодействие России и Русской православной церкви с христианскими общинами Египта и Эфиопии во второй половине XIX–начале ХХ в. // Российский журн. истории Церкви. 2021. № 4. С. 26–36.; Стрелецкий В.Н. Этноконфессиональный облик России: унаследованные пространственные структуры и сдвиги в конце XX–начале XXI веков // География мирового развития / отв. ред. Л.М. Синцеров. М., 2010. Вып. 2. С. 442–459.; Цыпкин Г.В. Россия и Эфиопия на пути к установлению дипломатических отношений // Электронный научно-образовательный журн. “История”. 2016. № 3. https://history.jes.su/s207987840001452-6-1/; Цыпкин Г.В., Ягья В.С. История Эфиопии в новое и новейшее время. М., 1989. 405 с. Ягья В.С. Эфиопия в новейшее время. М., 1978. 327 с.; Arkew E.D. The right of religious institution to acquire legal personality in Ethiopia: emphasis on the new proclamation to provide legal personality to Ethiopian Islamic Affairs General Council // Developing Country Studies. 2020. Vol. 10. № 10. P. 19–22.; Brown D., James P. Religious characteristics of states sataset project – Demographics v. 2.0 (RCS-Dem 2.0), Countries only. 2019.; Desplat P. The articulation of religious identities and their boundaries in Ethiopia: labelling difference and processes of contextualization in Islam // J. of Religion in Africa. 2005. № 4. P. 482–505.; Desplat P., Østebø T. Muslims in Ethiopia: The Christian legacy, identity politics, and Islamic reformism // Muslim Ethiopia. NY, 2013.; Haustein J., Østebø T. EPRDF’s revolutionary democracy and religious plurality: Islam and Christianity in postDerg Ethiopia // J. of Eastern African Studies. 2011. № 4. P. 755–772.; Østebø T. Salafism, state-politics, and the question of “extremism” in Ethiopia // Comparative Islamic Studies. 2014. № 1–2. P. 165–184.; Pankhurst R. A social history of Ethiopia. Addis Ababa, 1990.; Pankhurst S. Ethiopia. A cultural history. Woodford Green, 1955.; Serawit B.D. Religion and politics in post-1991 Ethiopia: making sense of Bryan S. Turner’s ‘Managing Religions’ // Religion, State and Society. 2018. № 1. P. 26–42.; Sorsa Sumamo: an Ethiopian evangelist. http://www.theimtn.org/main/documents/trainingexamples/BF%20Sorsa%20Sumamo.pdf (дата обращения 06.07.2022).; https://izvestia.igras.ru/jour/article/view/2313

الاتاحة: https://izvestia.igras.ru/jour/article/view/2313
https://doi.org/10.31857/S2587556623050096

المؤلفون: D. A. Romanov, I. A. Zakharov, E. V. Shaikevich, Д. А. Романов, И. А. Захаров, Е. В. Шайкевич

المساهمون: The study was supported by the Russian Foundation for Basic Research, Project No. 19-04-00739. Collection of aphids in Zvenigorod and Lyubertsy was performed by D.A. Romanov in the framework of State Assignment, Project No. 0112-2019-0002.

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 24, № 6 (2020); 673-682 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 24, № 6 (2020); 673-682 ; 2500-3259 ; 2500-0462 ; 10.18699/VJ20.647

مصطلحات موضوعية: мутуализм, endosymbionts, PCR, plant pests, mutualism, эндосимбионты, ПЦР, вредители растений

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2783/1433; Augustinos A.A., Santos-Garcia D., Dionyssopoulou E., Moreira M., Papapanagiotou A., Scarvelakis M., Doudoumis V., Ramos S., Aguiar A.F., Borges P.A.V., Khadem M., Latorre A., Tsiamis G., Bourtzis K. Detection and characterization of Wolbachia infections in natural populations of aphids: is the hidden diversity fully unraveled? PLoS One. 2011;6(12):e28695. DOI 10.1371/journal.pone.0028695.; Baldo L., Dunning Hotopp J.C., Jolley K.A., Bordenstein S.R., Biber S.A., Choudhury R.R., Hayashi C., Maiden M.C., Tettelin H., Werren J.H. Multilocus sequence typing system for the endosymbiont Wolbachia pipientis. Appl. Environ. Microbiol. 2006;72(11): 7098-7110. DOI 10.1128/AEM.00731-06.; Binetruy F., Bailly X., Chevillon C., Martin O.Y., Bernasconi M.V., Duron O. Phylogenetics of the Spiroplasma ixodetis endosymbiont reveals past transfers between ticks and other arthropods. Ticks TickBorne Dis. 2019;10:575-584.; Brady C.M., Asplen M.K., Desneux N., Heimpel G.E., Hopper K.R., Linnen C.R., Oliver K.M., Wulff J.A., White J.A. Worldwide populations of the aphid Aphis craccivora are infected with diverse facultative bacterial symbionts. Microb. Ecol. 2014;67:195-204. DOI 10.1007/s00248-013-0314-0.; Burland T.G. DNASTAR’s Lasergene sequence analysis software. Methods Mol. Biol. 2000;132:71-91.; Clewley J.P. Macintosh sequence analysis software. DNASTAR’s LaserGene. Mol. Biotechnol. 1995;3:221-224.; De Clerck C., Fujiwara A., Joncour P., Léonard S., Félix M.L., Francis F., Jijakli M.H., Tsuchida T., Massart S. A metagenomic approach from aphid’s hemolymph sheds light on the potential roles of coexisting endosymbionts. Microbiome. 2015;3:63. DOI 10.1186/s40168-015-0130-5.; Douglas A. Nutritional interactions in insect-microbial symbioses: aphids and their symbiotic bacteria Buchnera. Annu. Rev. Entomol. 1998;43:17-37.; Ferrari J., West J.A., Via S., Godfray H.C. Population genetic structure and secondary symbionts in host-associated populations of the pea aphid complex. Evolution. 2012;66(2):375-390. DOI 10.1111/j.1558-5646.2011.01436.x.; Folmer O., Black M., Hoeh W., Lutz R., Vrijenhoek R. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Mol. Mar. Biol. Biotechnol. 1994;3:294-299.; Fukatsu T., Tsuchida T., Nikoh N., Koga R. Spiroplasma symbiont of the pea aphid, Acyrthosiphon pisum (Insecta: Homoptera). Appl. Environ. Microbiol. 2001;67(3):1284-1291. DOI 10.1128/AEM.67.3.1284-1291.2001.; Gauthier J.-P., Outreman Y., Mieuzet L., Simon J.-C. Bacterial communities associated with host-adapted populations of pea aphids revealed by deep sequencing of 16S ribosomal DNA. PLoS One. 2015; 10(3):e0120664. DOI 10.1371/journal.pone.0120664.; Glowska E., Dragun-Damian A., Dabert M., Gerth M. New Wolbachia supergroups detected in quill mites (Acari: Syringophilidae). Infect. Genet. Evol. 2016;30:140-146.; Goryacheva I., Blekhman A., Andrianov B., Zakharov I.A. Heritable bacterial endosymbionts in native and invasive populations of Harmonia axyridis. Biol. Invasions. 2017;19:493-502. DOI 10.1007/s10530-016-1298-8.; Guidolin A.S., Cônsoli F.L. Diversity of the most commonly reported facultative symbionts in two closely-related aphids with different host ranges. Neotrop. Entomol. 2018;47(4):440-446. DOI 10.1007/s13744-017-0532-0.; Guo J., Hatt S., He K., Chen J., Francis F., Wang Z. Nine facultative endosymbionts in aphids. A review. J. Asia­Pac. Entomol. 2017;20: 794-801. DOI 10.1016/j.aspen.2017.03.025.; Haynes S., Darby A.C., Daniell T.J., Webster G., Van Veen F.J., Godfray H.C., Prosser J.I., Douglas A.E. Diversity of bacteria associated with natural aphid populations. Appl. Environ. Microbiol. 2003; 69(12):7216-7223. DOI 10.1128/aem.69.12.7216-7223.2003.; Heck M. Insect transmission of plant pathogens: a systems biology perspective. mSystems. 2018;3(2):e00168-17. DOI 10.1128/mSystems. 00168-17.; Ilinsky Y., Kosterin O.E. Molecular diversity of Wolbachia in Lepidoptera: prevalent allelic content and high recombination of MLST genes. Mol. Phylogenet. Evol. 2017;109:164-179. DOI 10.1016/j.ympev.2016.12.034.; Jain M., Fleites L.A., Gabriel D.W. A small Wolbachia protein directly represses phage lytic cycle genes in “Candidatus Liberibacter asiaticus” within psyllids. mSphere. 2017;2(3):e00171-17. DOI 10.1128/mSphereDirect.00171-17.; Jones R.T., Bressan A., Greenwell A.M., Fierer N. Bacterial communities of two parthenogenetic aphid species cocolonizing two host plants across the Hawaiian Islands. Appl. Environ. Microbiol. 2011; 77(23):8345-8349. DOI 10.1128/AEM.05974-11.; Malyshina M.S., Peterson A.M., Glinskaya E.V. Ecological and physiological aspects of the formation of microbial cenoses in aphids (Hemiptera: Aphididae) feeding on woody and shrubby plants in Saratov oblast. Trudy Russkogo Entomologicheskogo Obshchestva = Proceedings of the Russian Entomological Society. 2014;85(2):40- 46. (in Russian); Manzano-Marín A. No evidence for Wolbachia as a nutritional co-obligate endosymbiont in the aphid Pentalonia nigronervosa. bioRxiv. 2019. Preprint doi:10.1101/609511. Publ. Microbiome. 2020;8:72. DOI 10.1186/s40168-020-00865-2.; Mathé-Hubert H., Kaech H., Ganesanandamoorthy P., Vorburger C. Evolutionary costs and benefits of infection with diverse strains of Spiroplasma in pea aphids. Evolution. 2019;73(7):1466-1481. DOI 10.1111/evo.13740.; Moreira M., Aguiar A.M.F., Bourtzis K., Latorre A., Khadem M. Wolbachia (Alphaproteobacteria: Rickettsiales) infections in isolated aphid populations from Oceanic Islands of the Azores Archipelago: revisiting the supergroups M and N. Environ. Entomol. 2019;48(2): 326-334. DOI 10.1093/ee/nvy189.; Nyabuga F.N., Outreman Y., Simon J.-C., Heckel D.G., Weisser W.W. Effects of pea aphid secondary endosymbionts on aphid resistance and development of the aphid parasitoid Aphidius ervi: a correlative study. Entomol. Exp. Appl. 2010;136(3):243-253. DOI 10.1111/j.1570-7458.2010.01021.x.; Russell J.A., Weldon S., Smith A.H., Kim K.L., Hu Y., Łukasik P., Doll S., Anastopoulos I., Novin M., Oliver K.M. Uncovering symbiont-driven genetic diversity across North American pea aphids. Mol. Ecol. 2013;22(7):2045-2059. DOI 10.1111/mec.12211.; Sakurai M., Koga R., Tsuchida T., Meng X.-Y., Fukatsu T. Rickettsia symbiont in the pea aphid Acyrthosiphon pisum: novel cellular tropism, effect on host fitness, and interaction with the essential symbiont Buchnera. Appl. Environ. Microbiol. 2005;71(7):4069-4075. DOI 10.1128/AEM.71.7.4069-4075.2005.; Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecular Cloning: a laboratory manual. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989.; Sanada-Morimura S., Matsumura M., Noda H. Male killing caused by a Spiroplasma symbiont in the small brown planthopper, Laodelphax striatellus. J. Hered. 2013;104(6):821-829. DOI 10.1093/jhered/est052.; Shaikevich E., Bogacheva A., Rakova V., Ganushkina L., Ilinsky Y. Wolbachia symbionts in mosquitoes: intra- and intersupergroup recombinations, horizontal transmission and evolution. Mol. Phylogenet. Evol. 2019;134:24-34. DOI 10.1016/j.ympev.2019.01.020.; Simon J.-C., Boutin S., Tsuchida T., Koga R., Le Gallic J.F., Frantz A., Outreman Y., Fukatsu T. Facultative symbiont infections affect aphid reproduction. PLoS One. 2011;6(7):e21831. DOI 10.1371/journal.pone.0021831.; Simon J.-C., Sakurai M., Bonhomme J., Suchida T., Koga R., Fukatsu T. Elimination of a specialised facultative symbiont does not affect the reproductive mode of its aphid host. Ecol. Entomol. 2007;32(3): 296-301. DOI 10.1111/j.1365-2311.2007.00868.x.; Smith A.H., Łukasik P., O’Connor M.P., Lee A., Mayo G., Drott M.T., Doll S., Tuttle R., Disciullo R.A., Messina A., Oliver K.M., Russell J.A. Patterns, causes and consequences of defensive microbiome dynamics across multiple scales. Mol. Ecol. 2015;24(5):1135-1149. DOI 10.1111/mec.13095.; Stothard D.R., Clark J.B., Fuerst P.A. Ancestral divergence of Rickettsia bellii from the spotted fever and typhus groups of Rickettsia and antiquity of the genus Rickettsia. Int. J. Syst. Bacteriol. 1994; 44(4):798-804.; Tabata J., Hattori Y., Sakamoto H., Yukuhiro F., Fujii T., Kugimiya S., Mochizuki A., Ishikawa Y., Kageyama D. Male killing and incomplete inheritance of a novel Spiroplasma in the moth Ostrinia zaguliaevi. Microb. Ecol. 2011;61:254-263. DOI 10.1007/s00248-010-9799-y.; Tamura K., Stecher G., Peterson D., Filipski A., Kumar S. MEGA6: molecular evolutionary genetics analysis version 6.0. Mol. Biol. Evol. 2013;30(12):2725-2729. DOI 10.1093/molbev/mst197.; Tinsley M., Majerus M. A new male-killing parasitism: Spiroplasma bacteria infect the ladybird beetle Anisosticta novemdecimpunctata (Coleoptera: Coccinellidae). Parasitology. 2006;132(6):757-765. DOI 10.1017/S0031182005009789.; Tsuchida T., Koga R., Shibao H., Matsumoto T., Fukatsu T. Diversity and geographic distribution of secondary endosymbiotic bacteria in natural populations of the pea aphid, Acyrthosiphon pisum. Mol. Ecol. 2002;11(10):2123-2135. DOI 10.1046/j.1365-294x.2002.01606.x.; Wang Z., Su X.-M., Wen J., Jiang Li-Y., Qiao G. Widespread infection and diverse infection patterns of Wolbachia in Chinese aphids. Insect Sci. 2014;21:313-325. DOI 10.1111/1744-7917.12102.; Weinert L., Werren J., Aebi A., Stone G., Jiggins F. Evolution and diversity of Rickettsia bacteria. BMC Biol. 2009;7:6. DOI 10.1186/1741-7007-7-6.; Zytynska S.E., Meyer S.T., Sturm S., Ullmann W., Mehrparvar M., Weisser W.W. Secondary bacterial symbiont community in aphids responds to plant diversity. Oecologia. 2016;180(3):735-747. DOI 10.1007/s00442-015-3488-y.; Zytynska S.E., Weisser W.W. The natural occurrence of secondary bacterial symbionts in aphids. Ecol. Entomol. 2016;41:13-26. DOI 10.1111/een.12281.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2783

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2783
https://doi.org/10.18699/VJ20.661

المؤلفون: Yu. A. Stolpovskiy, I. A. Zakharov-Gezekhus, Ю. А. Столповский, И. А. Захаров-Гезехус

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 21, № 4 (2017); 477-486 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 21, № 4 (2017); 477-486 ; 2500-3259

مصطلحات موضوعية: крупный рогатый скот, breed, inbreeding depression, effective population size, genetic diversity, DNA analysis, sheep, cattle, порода, инбредная депрессия, эффективная численность, генетическое разнообразие, ДНК-анализ, овцы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1029/944; Aleksanyan S.M. Agrobioraznoobrazie i geopolitika [Agrobiodiversity and geopolitics]. St. Petersburg: GNTc RF VIR Publ., 2002. (in Russian); Altukhov Yu.P., Korochkin L.I., Rychkov Yu.G. Hereditary biochemical diversity in the processes of evolution and individual development. Genetika = Genetics (Moscow). 1996;32(6):1450-1473. (in Russian); Altukhov Yu.P., Rychkov Yu.G. Population systems and their structural components. Genetic stability and variability. Zhurnal obshchey biologii = Journal of General Biology. 1970;31(5):507-526. (in Russian); Altukhov Yu.P., Salmenkova E.A., Kurbatova O.L., Pobedonostseva E.Yu., Politov D.V., Evsyukov A.N., Zhukova O.V., Zakharov I.A., Moiseeva I.G., Stolpovsky Yu.A., Pukhal’skiy V.A., Pomortsev A.A., Upel’niek V.P., Kalabushkin B.A. Dinamika populyatsionnykh genofondov zhivotnykh [Dynamics of populational animal gene pools]. Dinamika populyatsionnykh genofondov pri antropogennykh vozdeystviyakh. Pod red. Yu.P. Altukhova [Yu.P. Altukhov (Ed.) The Dynamics of Populational Gene Pools under Human Actions]. Moscow: Nauka Publ., 2004;110-294. (in Russian); Belyayev D.K. Problems and prospects for research on animal genetics and breeding. Genetika = Genetics (Moscow). 1987;23(6):937-946. (in Russian); Bodo I. Methods and experiences with in situ preservation of farm animals. Department of Animal Husbandry Univ. of Veterinary Sci. Budapest, 1989.; Brem G., Graf F., Krausslich H. Genetic and economic differences among methods of gene conservation in farm animals. Livestock Production Sci. 1984;11(l):65-68.; Diamond J. Evolution, consequences and future of plant and animal domestication. Nature. 2002;418:700-707.; Dragunesku C. Ratiunsi procedure penru conservarea materialului de genetic la animalele domestic. Rev. Cresteria Anim. 1975;3:25-30.; Drucker A.G., Anderson S. Economic analysis of animal genetic resources and the use of rural appraisal methods: Lesson from South-East Mexico. Int. J. Agricult. Sustainability. 2004;2:77-97.; EAAP/FAO. Survey of Livestock populations global animal genetic data bank EAAP. Hanover: EAAP/FAO, 1991.; Ernst L.K., Dmitriev N.G., Paronyan I.A. Geneticheskie resursy selskokhozyaystvennykh zhivotnykh v Rossii i sopredelnykh stranakh [Farm Animal Genetic Resources in Russia and Neighboring Countries]. St. Petersburg: All-Russian Research Institute of Genetics and Breeding Farm Animals Publ., 1994. (in Russian); Ernst L.K., Zinovieva N.A. Biologicheskie problemy zhivotnovodstva v XXI veke [Biological issues of breeding in the 21th century]. Moscow: Russian Academy of Agricultural Sciences Publ., 2008. (in Russian); Erokhin A.L., Erokhin S.A. Ovtsevodstvo [Sheep Breeding]. Moscow: Moscow State University Publ., 2004. (in Russian); Evanno G., Regnaut S., Goud J. Detecting the number of clusters of individuals using the software STRUCTURE: a simulation study. Mol. Ecology. 2005;14:2611-2620.; FAO. Primary guidelines for development of national farm animal genetic resources management plans. Rome, 1998.; FAO. The state of Food Security in the World. Rome: FAO, 2000.; FAO. Marker assisted selection current status and future perspectives in crops, livestock, forestry and fish. Ed. El. Guimaraes, J. Ruane, A. Sonnino, B. Scherf, J.D. Dargie. Rome, 2007.; FAO. Polozhenie del v oblasti prodovolstviya i selskogo khozyaystva. Zhivotnovodstvo: v poiskakh balansa [Situation in the field of food and agriculture. Breeding: in search of the balance]. Rome: FAO, 2009. (in Russian); FAO. Vtoroy doklad o sostoyanii mirovykh geneticheskikh resursov zhivotnykh dlya proizvodstva prodovolstviya i vedeniya selskogo khozyaystva. Kratkoe izlozhenie [The second report on the state of the world’s animal genetic resources for food and agriculture. Summary]. Rome: FAO, 2015. (in Russian); FAO. Development of integrated multipurpose animal recording systems. Rome, 2016.; Franklin J.R. Evolutionary changes in small populations. Soulé M.E., Wilcox B.A. (Eds) Conservation Biology. Sunderland: Sinauer Associates Inc. Publishers, 1980;135-149 (Russ. ed.: M. Suley, B. Uilkoks (Eds). Biologiya okhrany prirody. Perevod S.A. Ostroumova; Pod red. A.V. Yablokova. Moscow: Mir Publ., 1983;160- 176). (in Russian); Gandini G.C., Villa E. Analysis of the cultural value of local livestock breeds: a methodology. J. Anim. Breed. Genet. 2003;120(1):1-11.; Glazko V.I., Stolpovsky Yu.A., Tarasyuk S.I., Bukarov N.G., Popov N.A. Genetic structure of Pinzgau breed in the Carpathian region. Genetika = Genetics (Moscow). 1996;32(5):676-684. (in Russian); Glembotsky Y.L., Kopylovskaya G.Ya. The problems of saving farm animals gene pools. Zhivotnovodstvo = Farm Аnimals. 1972;6:59-61. (in Russian); Ivanov M.F. Porody selskokhozyaystvennoy ptitsy [Fowl breeds]. Moscow: Ekon. zhizn Publ., 1924. (in Russian); Krasota V.F., Lobanov V.T., Dzhaparidze T.G. Razvedenie selskokhozyaystvennykh zhivotnykh [Breeding of Farm Animals]. Moscow: Kolos Publ., 1983. (in Russian); Lobashev M.E. Ocherki po istorii russkogo zhivotnovodstva. Otv. red. I.F. Shulzhenko [I.F. Shulzhenko (Exec. ed.) Essays on the history of Russian animal breeding]. Moscow; Leningrad, 1954. (in Russian); Maijala K. Need and methods of gene conservation in animal breeding. Ann. Genet. Sel. Anim. 1970;2:403-415.; Marzanov N.S. Genetic resources of animals are a national concern. Izvestiya Timiryazevskoy selskokhozyaystvennoy akademii = Proceedings of the Timiryazev Agricultural Academy. 2007;5:135-141. (in Russian); Meuwissen T., Hayes B., Goddard M. Genomic selection: A paradigm shift in animal breeding. Anim. Front. 2016;6(1):6-14.; Meuwissen T.H.E., Hayes B.J., Goddard M.E. Prediction of total genetic value using genome- wide dense marker maps. Genetics. 2001; 157:1819-1829.; Moiseeva I.G. Otechestvennye porody kur [Russian breeds of chickens]. Moiseeva I.G., Zakharov I.A., Mitichashvili R.S., Tikhonov V.N. Geneticheskie resursy selskokhozyaystvennykh zhivotnykh: redkie i ischezayushchie otechestvennye porody. Otv. red. I.A. Zakharov [I.A. Zakharov (Ed.) Farm Animal Genetic Resources: Rare and Endangered Russian Breeds]. Moscow: Nauka Publ., 1992;11-112. (in Russian); Moiseeva I.G., Ukhanov S.V., Stolpovsky Yu.A., Sulimova G.E., Kashtanov S.N. Genofondy selskokhozyaystvennykh zhivotnykh: geneticheskie resursy zhivotnovodstva Rossii. Otv. red. I.A. Zakharov [I.A. Zakharov (Ed.) Gene Pools of Farm Animals: Genetic Resources for Russian Animal Breeding]. Moscow: Nauka Publ., 2006;467. (in Russian); Negrini R., Nijman I.J., Milanesi E., Moazami-Goudarzi K., Williams J.L., Erhardt G., Dunner S., Rodellar C., Valentini A., Bradley D.G., Olsaker I., Kantanen J., Ajmone-Marsan P., Lenstra J.A. Differentiation of European cattle by AFLP fingerprinting. Anim. Genet. 2007;38:60-66.; Nesteruk L.V., Makarova N.N., Evsyukov A.N., Svisheva G.R., Lhasaranov B.B., Stolpovsky Yu.A. Comparative evaluation of sheep breeds gene pool based on ISSR analysis. Genetika = Genetics (Moscow). 2016;3:1-11. (in Russian); Oldenbroek J.K. Genebanks and the Conservation of Farm Animal Genetic Resources. Lelystad, the Netherlands: DLO Institute for Anim. Science and Health, 1999.; Paronyan I.A. Geneticheskie resursy selskokhozyaystvennykh zhivotnykh [Genetic Pool of Russian Domesticated Animals]. St. Petersburg: Prospekt Nauki Publ., 2016. (in Russian); Paronyan I.A., Prokhorenko P.N. Genofond domashnikh zhivotnykh Rossii [Genetic Pool of Russian Domesticated Animals]. St. Petersburg– Moscow–Krasnodar: Lan Publ., 2008. (in Russian); Potokina E.K., Aleksandrova T.G. Coefficients of genetic originality of Vicia sativa L. species collection on the results of molecular marking. Genetika = Genetics (Moscow). 2008;44(11):1508-1516. (in Russian); Raoul J., Danchin-Burge C., de Rochambeau H., Verrier E. Salvage a software to manage a population with few pedigrees. Book of Abstracts of the 55th Annual Meeting of the European Association for Animal Production, Bled, Slovenia, 5–9 Sept. 2004. Ed. Y. van der Honing. Wageningen, the Netherlands: Wageningen Acad. Publ., 2004.; Rychkov Yu.G. The system of ancient human isolates of North Asia in the highlight of population stability and evolution. Voprosy antropologii = Problems of Anthropology. 1973;44:3-22 (in Russian); Sambraus H.H. Warum sollten alte und gefahrdete nutztierrassen er halten warden. Bongo. 1990;16:17-32.; Senner J. Inbreeding depression and the survival of zoo populations. Conservation Biology. Ed. V. Soule, B. Wilcox. Massachusetts, 1980;151-169.; Serebrovsky A.S. Genogeografiya i genofond selskokhozyaystvennykh zhivotnykh [Farm animals genogeography and gene pools]. Nauchnoe slovo = Scientific Word (Moscow). 1928;9:3-22. (in Russian); Simon D.L. Conservation of animal genetic recourses – A review. Livestock Product. Sci. 1984;11(1):23-36.; Smaragdov M.G. Genomic selection of milk cattle: the practical application over five years. Genetika = Genetics (Moscow). 2013;49(11): 1251-1260. (in Russian); Stolpovsky Yu.A., Evsyukov A.N., Sulimova G.E. Cattle breeds genomic diversity on intermicrosatellite polymorphism markers. Genetika = Genetics (Moscow). 2013;49(5):641- 648. (in Russian); Stolpovsky Yu.A., Kol N.V., Evsyukov A.N., Ruzina M.N., Shimiyit L.V., Sulimova G.E. Analysis of the genetic structure of Tuvinian short-fattailed sheep populations with the use of the ISSR- PCR method. Genetika = Genetics (Moscow). 2010a;46(12):1660-1670. (in Russian); Stolpovsky Yu.A., Lazebny O.E., Stolpovsky K.Yu., Sulimova G.E. The use of the ISSR-PCR method for identifying domesticated animal breeds and species, inferring their population structures, and assessing gene pool similarity. Genetika = Genetics (Moscow). 2010b; 46(6):1-9. (in Russian); Soulé M.E. Thresholds for survival: maintaining fitness and evolutionary potential. Soulé M.E., Wilcox B.A. (Eds) Conservation Biology. Sunderland: Sinauer Associates Inc. Publishers, 1980;151-159; (Russ. ed.: M. Suley, B. Uilkoks (Eds). Biologiya okhrany prirody. Perevod S.A. Ostroumova; Pod red. A.V. Yablokova. Moscow: Mir Publ., 1983;177-197).; Sulimova G.E. DNA markers in genetic studies: types of markers, their properties and applications. Uspekhi sovremennoy biologii = Advances in Current Biology. 2004;124(3):260-271. (in Russian); Tisdell C. Socioeconomic causes of loss of animal genetic diversity: analysis and assessment. Ecol. Economics. 2003;45(3):365-376.; Veprintsev B.N., Rott N.N. Strategiya sokhraneniya zhivotnogo i rastitelnogo mira Zemli [Strategy for the preservation of the flora and fauna of the Earth]. Konservatsiya geneticheskikh resursov [Conservation of Genetic Resources]. Pushchino, 1991;5-18. (in Russian); Yudin N.S., Lukyanov K.I., Voevoda M.I., Kolchanov N.A. Application of reproductive technologies to the improvement of dairy cattle genomic selection. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2015;19(3):277-285. (in Russian); https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1029

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1029
https://doi.org/10.18699/VJ17.266

المؤلفون: И. А. Захаров-Гезехус

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 18, № 1 (2014); 93-102 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 18, № 1 (2014); 93-102 ; 2500-3259

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/230/232; Джинкс Дж. Нехромосомная наследственность. СПб.: Изд-во СПб. гс. ун-та, 2012. Гл. 5, разд. 5.4. С. 174–183.; Инге-Вечтомов С.Г. Генетика с основами селекции. СПб.: Изд-во Н-Л., 2010. Гл. 11. С. 269–301.; Квитко К.В., Захаров И.А. Генетика микроорганизмов. СПб.: Изд-во СПб. гос. ун-та, 2012. 268 с.; ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ЛИТЕРАТУРА; Абрамсон Н.И. Филогеография: итоги, проблемы, перспективы // Информ. вестн. ВОГиС. 2007. Т. 11. № 2. С. 307–331.; Мережковский К.С. Теория двух плазм как основа симбиогенезиса, нового учения о происхождении организмов. Казань: Изд-во Импер. ун-та, 1909. 102 с.; Иванов М.К., Дымшиц Г.М. Цитоплазматическая мужская стерильность и восстановление фертильности пыльцы у высших растений // Генетика. 2007. Т. 43. № 4. С. 451–468.; Романов Д.А., Андрианов Б.В. Митохондриальные последовательности в ядерном геноме животных // Усп. соврем. биологии. 2013. Т. 133. № 3. С. 254–268.; Сукерник Р.И., Дербенева О.А., Стариковская Е.Б. и др. Митохондриальный геном и митохондриальные болезни человека // Генетика. 2002. Т. 38. № 2. С. 1–10.; Birky C.W. Uniparental inheritance of mitochondrial and chloroplast genes: mechanisms and evolution // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1995. V. 82. P. 11331–11338.; Birky C.W. The inheritance of genes in mitochondria and chloroplasts: laws, mechanisms, and models // Annu. Rev. Genet. 2001. V. 35. P. 125–148.; Boore J.L. Animal mitochondrial genomes // Nucl. Acids Res. 1999. V. 27. P. 1767–1780.; Hagemann R. The foundation of extranuclear inheritance: plastid and mitochondrial genetics // Mol. Genet. Genomics. 2010. V. 283. P. 199–209.; Mereschkovsky C. Uber Natur und Ursprung der Chromatophoren im Pfl anzen reiche // Biol. Zentr.-Bl. 1905. Bd. 85. No. 18. S. 593–604.; Rokas A., Ladoukakis E., Zouros E. Animal mitochondrial DNA recombination revisited // Trends Ecol. Evol. 2003. V. 18. P. 411–417.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/230

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/230

المؤلفون: И. А. Захаров-Гезехус

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 17, № 3 (2013); 568-570 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 17, № 3 (2013); 568-570 ; 2500-3259

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/179/181; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/179

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/179

المؤلفون: A. V. Blekhman, I. A. Zakharov, I. I. Goryacheva, А. В. Блехман, И. А. Захаров, И. И. Горячева

المصدر: Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya; № 4 (2010); 50-53 ; Вестник Московского университета. Серия 16. Биология; № 4 (2010); 50-53 ; 0137-0952 ; 10.1234/XXXX-XXXX-2010-4

مصطلحات موضوعية: географическая изменчивость, geographic variability, polymorphism, полиморфизм

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/201/200; Воронцов Н.Н., Блехман А.В. Феногеография и геногеография окраски надкрылий в популяциях восточно- азиатской коровки Harmonia (Lais) axyridis Pall. (Coleoptera, Coccinellidae) // Докл. АН СССР. 1986. Т. 286. № 1. С. 205—208.; Захаров И.А., Блехман А.В. Популяционная генетика кокцинеллид: старые и новые проблемы // Эволю¬ция, экология, биоразнообразие: Мат-лы конф. памяти Николая Николаевича Воронцова (1934—2000). Москва, 26—27 декабря 2000 г. М.: Издат. отдел УНЦ ДО, 2001. С. 134—149.; Корсун О.В. Полиморфизм в природных популяциях божьей коровки Harmonia axyridis Pall. (Insecta: Coleoptera, Coccinellidae) Восточного Забайкалья // Проблемы экологии и рационального использования природных ресурсов в Дальневосточном регионе: Мат-лы региональной науч.-практ. конф. Благовещенск, 21—23 декабря 2004 г. Т. 1. Благовещенск: Изд-во БГПУ, 2004. С. 195—199.; Блехман А.В. Популяционная изменчивость встреча¬емости элитрального гребня у божьей коровки Harmonia axyridis Pallas // Генетика. 2008. Т. 44. № 11. С. 1553—1557.; Блехман А.В. Изменчивость рисунка пронотума у божьей коровки Harmonia axyridis Pallas (Coleoptera, Coccinellidae) // Экологическая генетика. 2007. Т. 5. № 2. С. 25—36.; Блехман А.В. Внутрипопуляционная и географическая изменчивость широкоареального вида Harmonia axy- ridis Pallas по комплексу полиморфных признаков: Авто- реф. дис. . канд. биол. наук. М., 2009. 24 с.; Dobrzansky Th. 1924. Die geographisce und individu- elle variabilitat won Harmonia axyridis // Biol. Zbl. Vol. 44. N 6. P. 401—421.; https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/201

الاتاحة: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/201
https://doi.org/10.1234/XXXX-XXXX-2010-4-50-53