-
1Academic Journal
المؤلفون: E. V. Chekrygina, A. S. Volynkina, O. A. Zaitseva, Ya. V. Lisitskaya, I. V. Tishchenko, O. A. Gnusareva, D. V. Rostovtseva, E. I. Vasilenko, N. O. Tkachenko, O. V. Vasilyeva, K. A. Purmak, N. I. Solomashchenko, A. N. Kulichenko, Е. В. Чекрыгина, А. С. Волынкина, О. А. Зайцева, Я. В. Лисицкая, И. В. Тищенко, О. А. Гнусарева, Д. В. Ростовцева, Е. И. Василенко, Н. О. Ткаченко, О. В. Васильева, К. А. Пурмак, Н. И. Соломащенко, А. Н. Куличенко
المصدر: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 22, № 4 (2023); 24-34 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 22, № 4 (2023); 24-34 ; 2619-0494 ; 2073-3046
مصطلحات موضوعية: ортохантавирус, Natural Focal Diseases, Stavropol Territory, Francisella tularensis, Coxiella burnetii, Borrelia sp, Ricckettsia sp, Crimean-Congo hemorrhagic fever virus, West Nile Virus, Ortohantavirus, боррелии, риккетсии группы КПЛ, природно-очаговые инфекции, Ставропольский край, вирус Крымской-Конго геморрагической лихорадки, вирус Западного Нила
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1849/952; Малецкая О. В., Прислегина Д. А., Таран Т. В. и др. Природно-очаговые вирусные лихорадки на юге европейской части России. Лихорадка Западного Нила. Проблемы особо опасных инфекций. 2020. №1. С. 109−114. https:.doi.org/10.21055/0370-1069-2020-1-109-114; Малецкая О. В., Таран Т. В., Прислегина Д. А. и др. Природно-очаговые вирусные лихорадки на юге европейской части России. Крымская геморрагическая лихорадка. Проблемы особо опасных инфекций. 2020. №4. С. 75–80. https:.doi.org/10.21055/0370-1069-2020-4-75-80; Pley C, Evans M, Lowe R, et al. Digital and technological innovation in vector-borne disease surveillance to predict, detect, and control climate-driven outbreaks. Lancet Planet Heal. 2021. Vol. 10, N5. P. e739–e745. doi:10.1016/S2542-5196(21)00141-8; Василенко Н. Ф., Прислегина Д. А., Манин Е. А. и др. Современное состояние природных очагов клещевых трансмиссивных инфекций на территории Ставропольского края. Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2021. T. 1, №12. С. 72−78. https:.doi.org/2219-5238/2021-29-12-72-78; Gardy JL, Loman NJ. Towards a genomics-informed, real-time, global pathogen surveillance system. Nat Rev Genet. 2018. Vol. 19, N1. P. 9–20. doi:10.1038/nrg.2017.88; Braks M, Giglio G, Tomassone L, et al. Making Vector-Borne Disease Surveillance Work: New Opportunities From the SDG Perspectives. Front Vet Sci. 2019. N6. P. 232. doi:10.3389/fvets.2019.00232; Ciccozzi M, Lai A, Zehender G, et al. The phylogenetic approach for viral infectious disease evolution and epidemiology: An updating review. J Med Virol. 2019. Vol. 91, N10. P. 1707–1724. doi:10.1002/jmv.25526; Mediannikov O, Diatta G, Fenollar F, et al. Tick-borne rickettsioses, neglected emerging diseases in rural Senegal. PLoS Negl. Trop. Dis. 2010. N4. P. e821. doi:10.1371/journal.pntd.0000821; Klempa B, Fichet-Calvet E, Lecompte E, et al. Hantavirus in African Wood Mouse, Guinea. Emerging Infectious Diseases. 2006. Vol. 12, N5. P. 838–840. doi:10.3201/eid1205.051487; Johansson A, Farlow J, Larsson P, et al. Worldwide Genetic Relationships among Francisella tularensis Isolates Determined by Multiple-Locus Variable-Number Tandem Repeat Analysis. J. Bacteriol. 2004. Vol. 186, N17. P. 5808–5818; MLVAnet support site [Internet]. Coxiella burnetii 2014 cooperative database. Доступно на: http:.mlva.u-psud.fr/mlvanet/spip.php?rubrique50 Ссылка активна на 24 августа 2022.; Yin X, Guo S, Ding C, et al. Spotted Fever Group Rickettsiae in Inner Mongolia, China, 2015–2016. Emerg Infect Dis. 2018. Vol. 24, N11. P. 2105−2107. doi:10.3201/eid2411.162094; Wijnveld M, Shhotta A-M, Pinter A, et al. Novel Rickettsia raoultii strain isolated and propagated from Austrian Dermacentor reticulatus ticks. Parasites & Vectors. 2016. N9. P. 567. doi:10.1186/s13071-016-1858-x; Fukunaga M, Hamase A, Okada K, et al. Characterization of spirochetes isolated from ticks (Ixodes tanuki, Ixodes turdus, and Ixodes columnae) and comparison of the sequences with those of Borrelia burgdorferi sensu lato strains . Appl. Environ. Microbiol. 1996. Vol. 62, N7. P. 2338−2344. DOI:10.1128/aem.62.7.2338-2344.1996; Куличенко А. Н., Волынкина А. С., Котенев Е. С. и др. Новый генетический вариант вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки, выявленный в Крыму. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2016. Т. 34, №2. С. 76−80.; Платонов А. Е., Карань Л. С., Шопенская Т. А. и др. Генотипирование штаммов вируса лихорадки Западного Нила, циркулирующих на юге России, как метод эпидемиологического расследования: принципы и результаты. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2011. Т. 88, №2. С. 29−37.; Тимофеев В. С., Кудрявцева Т. Ю., Мокриевич А. Н. и др. Молекулярное типирование штаммов Francisella tularensis методом мультилокусного анализа вариабельности числа тандемных повторов. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2014. № 1. С.8−15.; Власов В. В., Иголкина Я. П., Рар В. А. и др. Клещевые риккетсиозы в Западной Сибири. Первыt Российские случаи риккетсиозов, вызванных Rickettsia aeshlimannii, Rickettsia raoultii и Rockettsia slovaca. Национальные приоритеты России. 2021. T. 42, №3. С. 122−126.; Fournier PE, Grunnenberger F, Jaulhac B, et al. Evidence of Rickettsia helvetica infection in humans, eastern France. Emerg Infect Dis. 2000. N6. P. 389−392. doi:10.3201/eid0604.000412; Vitale G, Mansuelo S, Rolain JM, et al. Rickettsia massiliae Human Isolation. Emerg Infect Dis. 2006. N12. P. 174−175. doi:10.3201/eid1201.050850; Коренберг Э. И., Нефедова В. В., Фадеева И. А., Горелова Н. Б. Основные итоги генотипирования боррелий в России. Бюллетень сибирской медицины. 2006. №5. С.87−92. https:.doi.org/10.20538/1682-0363-2006--87-92; Platonov AE, Karan LS, Kolyasnikova NM, et al. Humans infected with relapsing fever spirochete Borrelia miyamotoi, Russia. Emerg. Infect. Dis. 2011. N17, P. 1816−1822.; Крымская геморрагическая лихорадка. Онищенко Г. Г., Куличенко А. Н., ред.: Воронеж. ООО «Фаворит», 2018. 288c.; Chinikar S, Bouzari S, Shokrgozar MA, et al. Genetic Diversity of Crimean Congo Hemorrhagic Fever Virus Strains from Iran. J Arthropod Borne Dis. 2016. Vol.10. N2. P. 127−140.; Plyusnin A, Vapalahti O, Lankinen H, et al. Tula virus: a newly detected hantavirus carried by European common voles. J. Virol. 1994. №.68. p. 7833−9.; Яшина Л. Н., Зайковская А. В., Протопопова Е. В. и др. Хантавирус Тула на территории Крыма. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2015. Т. 33, № 4. С. 38−40.; Якименко В. В., Гаранина С. Б., Малькова М. Г. и др. Итоги изучения хантавирусов в Западной Сибири. Тихоокеанский медицинский журнал. 2008. № 2. С. 20−6.; Hofmann J, Kramer S, Herrlinger KR, et al. Tula Virus as Causative Agent of Hantavirus Disease in Immunocompetent Person, Germany. Emerg Infect Dis. 2021. Vol. 27, N4. P. 1234–1237. doi:10.3201/eid2704.203996; Schmidt-Chanasit J, Essbauer S, Petraityte R, et al. Extensive host sharing of central European Tula virus . J. Virol. 2010. Vol. 84. P. 459−474. doi:10.1128/JVI.01226-09; Bennett SN, Gu SH, Kang HJ, et al. Reconstructing the evolutionary origins and phylogeography of hantaviruses. Trends Microbiol. 2014. Vol. 22, N8. P.473−482. doi:10.1016/j.tim.2014.04.008; Батурин А. А., Ткаченко Г. А., Леденева М. Л. и др. Молекулярно-генетический анализ вариантов вируса Западного Нила, циркулирующих на европейской части России в 2010–2019 гг. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2021. Т. 98, №3. С.308−318 https:.doi.org/10.36233/0372-9311-85; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1849
-
2Academic Journal
المؤلفون: A. S. Volynkina, O. V. Maletskaya, O. N. Skudareva, Ya. V. Lisitskaya, L. I. Shaposhnikova, D. A. Prislegina, E. I. Vasilenko, Yu. M. Tokhov, I. V. Tishchenko, A. V. Kolosov, D. V. Rostovtseva, N. F. Vasilenko, V. M. Dubyansky, E. V. Yatsmenko, A. N. Kulichenko, А. С. Волынкина, О. В. Малецкая, О. Н. Скударева, Я. В. Лисицкая, Л. И. Шапошникова, Д. А. Прислегина, Е. И. Василенко, Ю. М. Тохов, И. В. Тищенко, А. В. Колосов, Д. В. Ростовцева, Н. Ф. Василенко, В. М. Дубянский, Е. В. Яцменко, А. Н. Куличенко
المساهمون: Part of the research (making forecast of CCHF incidence in the Stavropol Territory for 2022) was funded by a grant from the Russian Science Foundation (project No. 19-75-20088). Executives: V.M. Dubyansky, D.A. Prislegina., Часть исследования (составление прогноза по заболеваемости КГЛ в Ставропольском крае на 2022 г.) выполнена за счет гранта Российского научного фонда (проект № 19-75-20088). Исполнители: В.М. Дубянский, Д.А. Прислегина.
المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 2 (2022); 6-11 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 2 (2022); 6-11 ; 2658-719X ; 0370-1069
مصطلحات موضوعية: прогноз, epidemiological situation, epizootiological monitoring, morbidity, forecast, эпидемиологическая ситуация, эпизоотологический мониторинг, заболеваемость
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1687/1293; Смирнова С.Е. Крымская-Конго геморрагическая лихорадка (этиология, эпидемиология, лабораторная диагностика). М.: АТ иСО; 2007. 304 с.; Аристова В.А., Колобухина Л.В., Щелканов М.Ю., Львов Д.К. Экология вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки и особенности клиники на территории России и сопредельных стран. Вопросы вирусологии. 2001; 46(4):7–15.; Bente D.A., Forrester N.L., Watts D.M., McAuley A.J., Whitehouse C.A., Bray M. Crimean-Congo hemorrhagic fever: history, epidemiology, pathogenesis, clinical syndrome and genetic diversity. Antiviral Res. 2013; 100(1):159–89. DOI:10.1016/j.antiviral.2013.07.006.; Б утенко А.М. Крымская геморрагическая лихорадка. РЭТ-ИНФО. 2005; 3:45–8.; Vawda S., Goedhals D., Bester P.A., Burt F. Seroepidemiologic survey of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in selected risk groups, South Africa. Emerg. Infect. Dis. 2018; 24(7):1360–3. DOI:10.3201/eid2407.172096.; Смирнова С.Е. Мировой ареал вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки. Бюллетень сибирской медицины. 2006; Приложение 1:79–87.; Al-Abri S.S., Hewson R., Al-Kindi H., Al-Abaidani I., AlJardani A., Al-Maani A., Almahrouqi S., Atkinson B., Al-Wahaibi A., Al-Rawahi B., Bawikar S., Beeching N.J. Clinical and molecular epidemiology of Crimean-Congo hemorrhagic fever in Oman. PLoS Negl. Trop. Dis. 2019; 13(4):e0007100. DOI:10.1371/journal.pntd.0007100.; Camp J.V., Kannan D.O., Osman B.M., Shah M.S., Howarth B., Khafaga T., Weidinger P., Karuvantevida N., Kolodziejek J., Mazrooei H., Wolf N., Loney T., Nowotny N. Crimean-Congo hemorrhagic fever virus endemicity in United Arab Emirates, 2019. Emerg. Infect. Dis. 2020; 26(5):1019–21. DOI:10.3201/eid2605.191414.; Chinikar S., Bouzari S., Shokrgozar M.A., Mostafavi E., Jalali T., Khakifirouz S., Nowotny N., Fooks A.R., Shah-Hosseini N. Genetic diversity of Crimean Congo hemorrhagic fever virus strains from Iran. J. Arthropod Borne Dis. 2016; 10(2):127–40.; Farhadpour F., Telmadarraiy Z., Chinikar S., Akbarzadeh K., Moemenbellah-Fard M.D., Faghihi F., Fakoorziba M.R., Jalali T., Mostafavi E., Shahhosseini N., Mohammadian M. Molecular detection of Crimean-Congo haemorrhagic fever virus in ticks collected from infested livestock populations in a New Endemic Area, South of Iran. Trop. Med. Int. Health. 2016; 21(3):340–7. DOI:10.1111/tmi.12667.; Saghafipour A., Mousazadeh-Mojarrad A., Arzamani N., Telmadarraiy Z., Rajabzadeh R., Arzamani K. Molecular and seroepidemiological survey on Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in Northeast of Iran. Med. J. Islam. Repub. Iran. 2019; 33:41. DOI:10.34171/mjiri.33.41.; Zakham F., Alaloui A., Levanov L., Vapalahti O. Viral haemorrhagic fevers in the Middle East. Rev. Sci. Tech. 2019; 38(1):185– 98. DOI:10.20506/rst.38.1.2952.; Hoch T., Breton E., Vatansever Z. Dynamic modeling of Crimean Congo hemorrhagic fever virus (CCHFV) spread to test control strategies. J. Med. Entomol. 2018; 55(5):1124–32. DOI:10.1093/jme/tjy035.; Abdiyeva K., Turebekov N., Dmitrovsky A., Tukhanova N., Shin A., Yeraliyeva L., Heinrich N., Hoelscher M., Yegemberdiyeva R., Shapiyeva Z., Kachiyeva Z., Zhalmagambetova A., Montag J., Dobler G., Zinner J., Wagner E., Frey S., Essbauer S. Seroepidemiological and molecular investigations of infections with Crimean-Congo haemorrhagic fever virus in Kazakhstan. Int. J. Infect. Dis. 2019; 78:121–7. DOI:10.1016/j.ijid.2018.10.015.; Khurshid A., Hassan M., Alam M.M., Aamir U.B., Rehman L., Sharif S., Shaukat S., Rana M.S., Angez M., Zaidi S.S. CCHF virus variants in Pakistan and Afghanistan: Emerging diversity and epidemiology. J. Clin. Virol. 2015; 67:25–30. DOI:10.1016/j.jcv.2015.03.021.; Nurmakhanov T., Sansyzbaev Y., Atshabar B., Deryabin P., Kazakov S., Zholshorinov A., Matzhanova A., Sadvakassova A., Saylaubekuly R., Kyraubaev K., Hay J., Atkinson B., Hewson R. Crimean-Congo haemorrhagic fever virus in Kazakhstan (1948– 2013). Int. J. Infect. Dis. 2015; 38:19–23. DOI:10.1016/j.ijid.2015.07.007.; Sahak M.N., Arifi F., Saeedzai S.A. Descriptive epidemiology of Crimean-Congo hemorrhagic fever (CCHF) in Afghanistan: Reported cases to National surveillance system, 2016–2018. Int. J. Infect. Dis. 2019; 88:135–40. DOI:10.1016/j.ijid.2019.08.016.; Yaqub T., Oneeb M., Mukhtar N., Tahir Z., Shahid F., Subhan S., Salman M. Crimean-Congo haemorrhagic fever: Case study analysis of a sporadic outbreak from Chakwal, Pakistan. Zoonoses Public Health. 2019; 66(7):871–3. DOI:10.1111/zph.12623.; Yadav P.D., Cherian S.S., Zawar D., Kokate P., Gunjikar R., Jadhav S., Mishra A.C., Mourya D.T. Genetic characterization and molecular clock analyses of the Crimean-Congo hemorrhagic fever virus from human and ticks in India, 2010–2011. Infect. Genet. Evol. 2013; 14:223–31. DOI:10.1016/j.meegid.2012.10.005.; Ahmeti S., Berisha L., Halili B., Ahmeti F., von Possel R., Thome-Bolduan C., Michel A., Priesnitz S., Reisinger E.C., Gunther S., Kruger A., Sherifi K., Jakupi X., Hemmer C.J., Emmerich P. Crimean-Congo hemorrhagic fever, Kosovo, 2013–2016. Emerg. Infect. Dis. 2019; 25(2):321–4. DOI:10.3201/eid2502.171999.; Papa A., Markatou F., Maltezou H.C., Papadopoulou E., Terzi E., Ventouri S., Pervanidou D., Tsiodras S., Maltezos E. Crimean-Congo haemorrhagic fever in a Greek worker returning from Bulgaria, June 2018. Euro Surveill. 2018; 23(35):1800432. DOI:10.2807/1560-7917.ES.2018.23.35.1800432.; Papa A., Pappa S., Panayotova E., Papadopoulou E., Christova I. Molecular epidemiology of Crimean-Congo hemorrhagic fever in Bulgaria – An update. J. Med. Virol. 2016; 88(5):769–73. DOI:10.1002/jmv.24400.; Бутенко А.М., Трусова И.Н. Заболеваемость Крымской геморрагической лихорадкой в странах Европы, Африки и Азии (1943–2012 гг.). Эпидемиология и инфекционные болезни. 2013; 5:46–8.; Куличенко А.Н., Малецкая О.В., Василенко Н.Ф., Бейер А.П., Санникова И.В., Пасечников В.Д., Ковальчук И.В., Ермаков А.В., Бутаев Т.М., Смирнова С.Е., Карань Л.С., Малеев В.В., Платонов А.Е. Крымская геморрагическая лихорадка в Евразии в XXI веке: эпидемиологические аспекты. Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2012; 3:42–53.; Papa A., Weber F., Hewson R., Weidmann M., Koksal I., Korukluoglu G., Mirazimi A. Meeting report: First International Conference on Crimean-Congo hemorrhagic fever. Antiviral Res. 2015; 120:57–65. DOI:10.1016/j.antiviral.2015.05.005.; Serretiello E., Astorri R., Chianese A., Stelitano D., Zannella C., Folliero V., Santella B., Galdiero M., Franci G., Galdiero M. The emerging tick-borne Crimean-Congo haemorrhagic fever virus: A narrative review. Travel Med. Infect. Dis. 2020; 37:101871. DOI:10.1016/j.tmaid.2020.101871.; Maltezou H.C., Andonova L., Andraghetti R., Bouloy M., Ergonul O., Jongejan F., Kalvatchev N., Nichol S., Niedrig M., Platonov A., Thomson G., Leitmeyer K., Zeller H. Crimean-Congo hemorrhagic fever in Europe: current situation calls for preparedness. Euro Surveill. 2010; 15(10):19504.; Онищенко Г.Г., Куличенко А.Н., редакторы. Крымская геморрагическая лихорадка. Воронеж: Фаворит; 2018. 288 с.; Гублер Е.В. Вычислительные методы анализа и распознавания патологических процессов. Л.: Медицина; 1978. 294 с.; Гублер Е.В., Генкин А.А. Применение непараметрических критериев статистики в медико-биологических исследованиях. 2-е изд. Л.: Медиа Сфера; 1973. 141 с.; Дубянский М.А., Кенжебаев А., Степанов В.М., Асенов Г.А., Дубянская Л.Д. Прогнозирование эпизоотической активности чумы в Приаралье и Кызылкумах. Нукус: Каракалпакстан; 1992. 240 с.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1687
-
3Academic Journal
المؤلفون: A. S. Volynkina, O. V. Maletskaya, O. N. Skudareva, I. V. Tishchenko, E. I. Vasilenko, Ya. V. Lisitskaya, L. I. Shaposhnikova, A. V. Kolosov, D. V. Rostovtseva, N. F. Vasilenko, V. M. Dubyansky, D. A. Prislegina, E. V. Yatsmenko, A. N. Kulichenko, А. С. Волынкина, О. В. Малецкая, О. Н. Скударева, И. В. Тищенко, Е. И. Василенко, Я. В. Лисицкая, Л. И. Шапошникова, А. В. Колосов, Д. В. Ростовцева, Н. Ф. Василенко, В. М. Дубянский, Д. А. Прислегина, Е. В. Яцменко, А. Н. Куличенко
المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 1 (2021); 17-22 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 1 (2021); 17-22 ; 2658-719X ; 0370-1069
مصطلحات موضوعية: прогноз, epidemiological situation, epizootiologicall monitoring, morbidity, forecast, эпидемиологическая ситуация, эпизоотологический мониторинг, заболеваемость
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1434/1185; Смирнова С.Е. Крымская-Конго геморрагическая лихорадка (этиология, эпидемиология, лабораторная диагностика). М.: АТиСО; 2007. 304 с.; Аристова В.А., Колобухина Л.В., Щелканов М.Ю., Львов Д.К. Экология вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки и особенности ее клиники на территории России и сопредельных стран. Вопросы вирусологии. 2001; 4:7–15.; Bente D.A., Forrester N.L., Watts D.M., McAuley A.J., Whitehouse C.A., Bray M. Crimean-Congo hemorrhagic fever: history, epidemiology, pathogenesis, clinical syndrome and genetic diversity. Antiviral Res. 2013; 100(1):159–89. DOI:10.1016/j. antiviral.2013.07.006.; ICTV. Virus Taxonomy 2016 [Электронный ресурс]. URL: https://talk.ictvonline.org/ictv-reports/ictv_online_report/ (дата обращения 31.01.2021).; Бутенко А.М. Крымская геморрагическая лихорадка. РЭТ-ИНФО. 2005; 3:45–8.; Смирнова С.Е. Мировой ареал вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки. Бюллетень сибирской медицины. 2006; Приложение 1:79–87.; Vawda S., Goedhals D., Bester P.A., Burt F. Seroepidemiologic survey of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in selected risk groups, South Africa. Emerg. Infect. Dis. 2018; 24(7):1360–3. DOI:10.3201/eid2407.172096.; Al-Abri S.S., Hewson R., Al-Kindi H., Al-Abaidani I., AlJardani A., Al-Maani A., Almahrouqi S., Atkinson B., Al-Wahaibi A., Al-Rawahi B., Bawikar S., Beeching N.J. Clinical and molecular epidemiology of Crimean-Congo hemorrhagic fever in Oman. PLoS Negl. Trop. Dis. 2019; 13(4):e0007100. DOI:10.1371/journal. pntd.0007100.; Camp J.V., Kannan D.O., Osman B.M., Shah M.S., Howarth B., Khafaga T., Weidinger P., Karuvantevida N., Kolodziejek J., Mazrooei H., Wolf N., Loney T., Nowotny N. Crimean-Congo hemorrhagic fever virus endemicity in United Arab Emirates, 2019. Emerg. Infect. Dis. 2020; 26(5):1019–21. DOI:10.3201/eid2605.191414.; Chinikar S., Bouzari S., Shokrgozar M.A., Mostafavi E., Jalali T., Khakifirouz S., Nowotny N., Fooks A.R., Shah-Hosseini N. Genetic diversity of Crimean Congo hemorrhagic fever virus strains from Iran. J. Arthropod Borne Dis. 2016; 10(2):127–40.; Farhadpour F., Telmadarraiy Z., Chinikar S., Akbarzadeh K., Moemenbellah-Fard M.D., Faghihi F., Fakoorziba M.R., Jalali T., Mostafavi E., Shahhosseini N., Mohammadian M. Molecular detection of Crimean-Congo haemorrhagic fever virus in ticks collected from infested livestock populations in a New Endemic Area, South of Iran. Trop. Med. Int. Health. 2016; 21(3):340–7. DOI:10.1111/ tmi.12667.; Saghafipour A., Mousazadeh-Mojarrad A., Arzamani N., Telmadarraiy Z., Rajabzadeh R., Arzamani K. Molecular and seroepidemiological survey on Crimean-Congo Hemorrhagic Fever Virus in Northeast of Iran. Med. J. Islam. Repub. Iran. 2019; 33:41. DOI:10.34171/mjiri.33.41.; Zakham F., Alaloui A., Levanov L., Vapalahti O. Viral haemorrhagic fevers in the Middle East. Rev. Sci. Tech. 2019; 38(1):185– 98. DOI:10.20506/rst.38.1.2952.; Hoch T., Breton E., Vatansever Z. Dynamic modeling of Crimean Congo hemorrhagic fever virus (CCHFV) spread to test control strategies. J. Med. Entomol. 2018; 55(5):1124–32. DOI:10.1093/jme/tjy035.; Abdiyeva K., Turebekov N., Dmitrovsky A., Tukhanova N., Shin A., Yeraliyeva L., Heinrich N., Hoelscher M., Yegemberdiyeva R., Shapiyeva Z., Kachiyeva Z., Zhalmagambetova A., Montag J., Dobler G., Zinner J., Wagner E., Frey S., Essbauer S. Seroepidemiological and molecular investigations of infections with Crimean-Congo haemorrhagic fever virus in Kazakhstan. Int. J. Infect. Dis. 2019; 78:121–7. DOI:10.1016/j.ijid.2018.10.015.; Khurshid A., Hassan M., Alam M.M., Aamir U.B., Rehman L., Sharif S., Shaukat S., Rana M.S., Angez M., Zaidi S.S.Z. CCHF virus variants in Pakistan and Afghanistan: Emerging diversity and epidemiology. J. Clin. Virol. 2015; 67:25–30. DOI:10.1016/j. jcv.2015.03.021.; Nurmakhanov T., Sansyzbaev Y., Atshabar B., Deryabin P., Kazakov S., Zholshorinov A., Matzhanova A., Sadvakassova A., Saylaubekuly R., Kyraubaev K., Hay J., Atkinson B., Hewson R. Crimean-Congo haemorrhagic fever virus in Kazakhstan (1948–2013). Int. J. Infect. Dis. 2015; 38:19–23. DOI:10.1016/j. ijid.2015.07.007.; Sahak M.N., Arifi F., Saeedzai S.A. Descriptive epidemiology of Crimean-Congo hemorrhagic fever (CCHF) in Afghanistan: Reported cases to National Surveillance System, 2016–2018. Int. J. Infect. Dis. 2019; 88:135–40. DOI:10.1016/j.ijid.2019.08.016.; Yaqub T., Oneeb M., Mukhtar N., Tahir Z., Shahid F., Subhan S., Salman M. Crimean-Congo haemorrhagic fever: Case study analysis of a sporadic outbreak from Chakwal, Pakistan. Zoonoses Public Health. 2019; 66(7):871–3. DOI:10.1111/zph.12623.; Yadav P.D., Cherian S.S., Zawar D., Kokate P., Gunjikar R., Jadhav S., Mishra A.C., Mourya D.T. Genetic characterization and molecular clock analyses of the Crimean-Congo hemorrhagic fever virus from human and ticks in India, 2010–2011. Infect. Genet. Evol. 2013; 14:223–31. DOI:10.1016/j.meegid.2012.10.005.; Ahmeti S., Berisha L., Halili B., Ahmeti F., von Possel R., Thome-Bolduan C., Michel A., Priesnitz S., Reisinger E.C., Günther S., Krüger A., Sherifi K., Jakupi X., Hemmer C.J., Emmerich P. Crimean-Congo hemorrhagic fever, Kosovo, 2013–2016. Emerg. Infect. Dis. 2019; 25(2):321–4. DOI:10.3201/eid2502.171999.; Papa A., Markatou F., Maltezou H.C., Papadopoulou E., Terzi E., Ventouri S., Pervanidou D., Tsiodras S., Maltezos E. Crimean-Congo haemorrhagic fever in a Greek worker returning from Bulgaria, June 2018. Euro Surveill. 2018; 23(35):1800432. DOI:10.2807/1560-7917.ES.2018.23.35.1800432.; Papa A., Pappa S., Panayotova E., Papadopoulou E., Christova I. Molecular epidemiology of Crimean-Congo hemorrhagic fever in Bulgaria – An update. J. Med. Virol. 2016; 88(5):769–73. DOI:10.1002/jmv.24400.; Бутенко А.М., Трусова И.Н. Заболеваемость Крымской геморрагической лихорадкой в странах Европы, Африки и Азии (1943–2012 гг.). Эпидемиология и инфекционные болезни. 2013; 5:46–8.; Куличенко А.Н., Малецкая О.В., Василенко Н.Ф., Бейер А.П., Санникова И.В., Пасечников В.Д., Ковальчук И.В., Ермаков А.В., Бутаев Т.М., Смирнова С.Е., Карань Л.С., Малеев В.В., Платонов А.Е. Крымская геморрагическая лихорадка в Евразии в XXI веке: эпидемиологические аспекты. Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2012; 3:42–53.; Papa A., Weber F., Hewson R., Weidmann M., Koksal I., Korukluoglu G., Mirazimi A. Meeting report: First International Conference on Crimean-Congo hemorrhagic fever. Antiviral Res. 2015; 120:57–65. DOI:10.1016/j.antiviral.2015.05.005.; Serretiello E., Astorri R., Chianese A., Stelitano D., Zannella C., Folliero V., Santella B., Galdiero M., Franci G., Galdiero M. The emerging tick-borne Crimean-Congo haemorrhagic fever virus: A narrative review. Travel Med. Infect. Dis. 2020; 37:101871. DOI:10.1016/j.tmaid.2020.101871.; Maltezou H.C., Andonova L., Andraghetti R., Bouloy M., Ergonul O., Jongejan F., Kalvatchev N., Nichol S., Niedrig M., Platonov A., Thomson G., Leitmeyer K., Zeller H. Crimean-Congo hemorrhagic fever in Europe: current situation calls for preparedness. Euro Surveill. 2010; 15(10):19504.; Crimean-Congo hemorrhagic fever and travel: Gideon blog. – July 5th 2014 [Электронный ресурс]. URL: https://www.gideononline.com/2014/07/05/crimean-congo-hemorrhagic-feverand-travel/ (дата обращения 15.01.2021).; Chamberlain J., Atkinson B., Logue C.H., Latham J., Newman E.N.C., Hewson R. Genome Sequence of Ex-Afghanistan Crimean-Congo hemorrhagic fever virus SCT strain, from an imported United Kingdom case in October 2012. Genome Announc. 2013; 1(3):e00161-13. DOI:10.1128/genomeA.00161-13.; Atkinson B., Latham J., Chamberlain J., Logue C., O’Donoghue L., Osborne J., Carson G., Brooks T., Carroll M., Jacobs M., Hopkins S., Hewson R. Sequencing and phylogenetic characterisation of a fatal Crimean-Congo haemorrhagic fever case imported into the United Kingdom, October 2012. Euro Surveill. 2012; 17(48):20327.; Lumley S., Atkinson B., Dowall S., Pitman J., Staplehurst S., Busuttil J., Simpson A., Aarons E., Petridou C., Nijjar M., Glover S., Brooks T., Hewson R. Non-fatal case of Crimean-Congo haemorrhagic fever imported into the United Kingdom (ex Bulgaria), June 2014. Euro Surveill. 2014; 19(30):20864. DOI:10.2807/1560-7917.es2014.19.30.20864.; Gargili A., Estrada-Peña A., Spengler J.R., Lukashev A., Nuttall P.A., Bente D.A. The role of ticks in the maintenance and transmission of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus: A review of published field and laboratory studies. Antiviral Res. 2017; 144:93–119. DOI:10.1016/j.antiviral.2017.05.010.; Esser H.J., Mogling R., Cleton N.B., van der Jeugd H., Sprong H., Stroo A., Koopmans М.P.G., de Boer F.W., Reusken C.B.E.M. Risk factors associated with sustained circulation of six zoonotic arboviruses: a systematic review for selection of surveillance sites in non-endemic areas. Parasit. Vectors. 2019; 12(1):265. DOI:10.1186/s13071-019-3515-7.; Hoch T., Breton E., Vatansever Z. Dynamic modeling of Crimean Congo hemorrhagic fever virus (CCHFV) spread to test control strategies. J. Med. Entomol. 2018; 55(5):1124–32. DOI:10.1093/jme/tjy035. 37. Spengler J.R., Estrada-Peña A., Garrison A.R., Schmaljohn C., Spiropoulou C.F., Bergeron É., Bente D.A. A chronological review of experimental infection studies of the role of wild animals and livestock in the maintenance and transmission of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus. Antiviral Res. 2016; 135:31–47. DOI:10.1016/j.antiviral.2016.09.013.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1434
-
4Academic Journal
المؤلفون: Yu. S. Kovtun, A. A. Kurilova, L. S. Katunina, E. I. Vasilenko, Ю. С. Ковтун, А. А. Курилова, Л. С. Катунина, Е. И. Василенко
المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3 (2021); 60-65 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3 (2021); 60-65 ; 2658-719X ; 0370-1069
مصطلحات موضوعية: микробы-ассоцианты, malachite green, inhibition, selective agents, nutrient medium, Brucella, unwanted organisms, малахитовый зеленый, ингибиция, селективные агенты, питательная среда, бруцеллы
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1548/1233; Шепелин А.П., Дятлов И.А. Питательные среды для энтеробактерий. М.: Династия; 2017. С. 76.; Подплетенная И.М., Мищенко Д.Н. Модифицированная среда Кесслер для обнаружения бактерий группы кишечной палочки. Патент РФ № 2202618, опубл. 20.04.2003. Бюл. № 11.; Васильев Д.А., Щербаков А.А., Карпунина Л.В., Золотухин С.Н. Методы частной бактериологии. Учебнометодическое пособие. Ульяновск: Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия; 2004. 222 с.; Питательные среды для культивирования бруцеллеза. [Электронный ресурс]. URL: https://virus-infekciya.ru/bakterialnye/pitatelnye-sredy-dlya-kultivirovaniya-brucelleza.html (дата обращения 17.11.2020).; Jones L.M., Morgan W.J.B. A preliminary report on a selective medium for the culture of Brucella, including fastidious types. Bull. World Health Organ. 1958; 19(1):200–3.; Keness J., Friedrich I., Banai M., Schonfeld S. Brucella melitensis growth on Loewen-stein-Jensen egg medium from a case of Brucella meningitis. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 1993; 17(4):271–3. DOI:10.1016/0732-8893(93)90035-6.; Friedrich I., Schonfeld S., Keness Y. The ability of Brucella melitensis to grow on Loewenstein-Jensen egg medium: presentation of a case with Brucella meningitis. Isr. J. Med. Sci. 1992; 28(11):806–7.; Hornsby R.L. Selective media for isolation of Brucella abortus strain RB51. Iowa, Ames: Iowa State University; 1998. [Электронный ресурс]. URL: https://lib.dr.iastate.edu/rtd/17852 (дата обращения 22.08.2019).; Пономаренко Д.Г., Русанова Д.В., Хачатурова А.А., Скударева О.Н., Логвиненко О.В., Ракитина Е.Л., Костюченко М.В., Семенко О.В., Малецкая О.В., Куличенко А.Н. Анализ эпидемической и эпизоотической ситуации по бруцеллезу в мире в 2019 г. и прогноз на 2020 г. в Российской Федерации. Проблемы особо опасных инфекций. 2020; (2):48–56. DOI:10.21055/0370-1069-2020-2-48-56.; Karagul M.S., Ikiz S. The evaluation of Brucella spp. isolation rates in ruminant abortion cases by using different selective media. Mac. Vet. Rev. 2018; 41(2):177–86. DOI:10.2478/macvetrev-2018-0024.; Vicente A.F., Antunes J.M.А.Р., Lara G.H.В., Mioni M.S.R., Allendorf S.D., Peres M.G., Appolinário C.M., Listoni F.J.P., Ribeiro M.G., Megid J. Evaluation of three formulations of culture media for isolation of Brucella spp. regarding their ability to inhibit the growth of contaminating organisms. BioMed. Res. Int. 2014; 2014:702072. DOI:10.1155/2014/702072.; Ковтун Ю.С., Курилова А.А., Катунина Л.С, Василенко Е.И. Сравнительная оценка белковых гидролизатов при разработке на их основе питательной среды для культивирования бруцелл. Проблемы особо опасных инфекций. 2016; (4):93–7. DOI:10.21055/0370-1069-2016-4-93-97.3; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1548
-
5Academic Journal
المؤلفون: Yu. S. Kovtun, A. A. Kurilova, L. S. Katunina, E. I. Vasilenko, Ю. С. Ковтун, А. А. Курилова, Л. С. Катунина, Е. И. Василенко
المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 4 (2019); 17-25 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 4 (2019); 17-25 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2019-4
مصطلحات موضوعية: тест-штаммы, nutrient media, cultivation, isolation, identification, differentiation, test strain, питательные среды, культивирование, выделение, идентификация
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1211/1069; Пономаренко Д.Г, Ежлова Е.Б., Русанова Д.В., Хачатурова А.А., Пакскина Н.Д., Бердникова Т.В., Манин Е.А., Семенко О.В., Логвиненко О.В., Ракитина Е.Л., Костюченко М.В., Малецкая О.В., Куличенко А.Н. Анализ эпизоотолого-эпидемиологической обстановки по бруцеллезу в Российской Федерации в 2018 г. и прогноз на 2019 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2019; 2:14-21. DOI:10.21055/0370-1069-2019-2-14-21.; Онищенко Г.Г, Кутырев В.В., редакторы. Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней. Практическое руководство. М.: ЗАО «Шико»; 2013. 560 с.; Corbel M.J. Food and Agriculture Organization of the United Nations, World Health Organization, World Organization for Animal Health. Brucellosis in humans and animals. Geneva; 2006. 89 p.; World Organization for Animal Health. Terrestrial Manual. [Электронный ресурс]. URL: https://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Healthstandards/tahm/3.01.04_BRUCELLOSIS.pdf (дата обращения 22.08.2019).; Whatmore A.M., Davison N., Cloeckaert A., Al Dahouk S., Zygmunt M.S., Brew S.D., Perrett L.L., Koylass M.S., Vergnaud G., Quance C., Scholz H.C., Dick E.J. Jr., Hubbard G., Schrnbritz-Loutsevitch N.E. Brucella papionis sp. nov., isolated from baboons (Papio spp.). Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2014; 64(Pt 12):4120-8. DOI:10.1099/ijs.0.065482-0.; Scholz H.C., Revilla-Fernandez S., Al Dahouk S., Hammerl J.A., Zygmunt M.S., Cloeckaert A., Koylass M.S., Whatmore A.M., Blom J., Vergnaud G., Witte A., Aistleitner K., Hofer E. Brucella vulpis sp. nov., isolated from mandibular lymph nodes of red foxes (Vulpes vulpes). Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2016; 66(5):2090-8. DOI:10.1099/ijsem.0.000998.; Казанев А.П., Буланьков Ю.И. Бруцеллез. В кн.: Лобзин Ю.В., Жданов К.В, редакторы. Руководство по инфекционным болезням. В 2 кн. Кн. 1. СПб: ООО «Издательство Фолиант»; 2011. С. 389-400.; Министерство здравоохранения Российской Федерации. Бруцеллез у взрослых. Клинические рекомендации. 2014. 71 с.; Таран И.Ф., Лямкин ГИ. Бруцеллез (микробиология, иммунология, эпидемиология, профилактика). Ставрополь; 1996. 172 с.; Joint FAO/WHO expert committee on brucellosis. World Health Organ. Tech. Rep. Ser. 1986; 740:1-132. PMID: 3097967.; The OXOID MANUAL. 9th Edition. 2006. 624 p.; Диагностика особо опасных инфекций (ООИ). HiMedia Laboratories Pvt. Limited (Индия). [Электронный ресурс]. URL: http://www.himedialabs.ru/ooi/(дата обращения 22.08.2019).; Соболев В.В., Мельник Н.В., Скляров О.Д., Тройнин А.С., Зенов Н.И., Климанов А.И., Шумилов К.В., Литенкова И.Ю., Рахманин П.П., Крюков С.В., Тренев В.Н., Соловьев Б.В., Балашов В.Г. Способ получения бруцеллезного антигена из штамма Brucella abortus 19 для изготовления единого бруцеллезного антигена для РА, РСК и РДСК, бруцеллезного антигена для розбенгал пробы (РБП) и бруцеллезного антигена для кольцевой реакции (КР) с молоком, способ изготовления бруцеллезной диагностической сыворотки и диагностические наборы. Патент РФ № 2361610, опубл. 20.07.2009 г. Бюл. № 20.; Пяткова Н.В., Суслопаров А.А., Федотов А.К., Юдников В.А., Полищук В.И., Охапкина В.Ю., Дармов И.В. Способ получения биомассы бруцелл вакцинных штаммов при глубинном вырашцвании с использованием жидкой питательной среды минимизированного состава. Патент РФ 2687373, опубл. 13.05.2019 г. Бюл. № 14.; Кабахова П.М., Хаиров С.Г., Юсупов О.Ю., Яникова Э.А. Сравнительное изучение разных питательных сред для промышленного культивирования бруцелла абортус 19. Ветеринарная медицина. 2014; 2:6-8.; Девришов Д.А., Шведов В.В., Шведов Д.В., Бедоева З.М. Сравнительная оценка ростовых свойств производственных культур бруцелл на различных питательных средах. Ветеринарная медицина. 2014; 1:19-34.; Ковтун Ю.С., Курилова А.А., Катунина Л.С, Василенко Е.И. Сравнительная оценка белковых гидролизатов при разработке на их основе питательной среды для культивирования бруцелл. Проблемы особо опасных инфекций. 2016; 4:93-7. DOI:10.21055/0370-1069-2016-4-93-97.; Мамлеева Н.К., Торбина М.П., Белозерова Г.А. Питательная среда для диагностики бруцеллеза. Авторское свидетельство СССР № 1806186, опубл. 30.03.1993 г. Бюл. № 12.; Зайцева А.И. Изучение эффективности лечебной бруцеллезной вакцины, приготовленной на среде с дрожжевым автолизатом. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1961; 1:107-10.; Иванов М.М., Михайлов Н.А. Питательная среда для выращивания микроорганизмов. Авторское свидетельство СССР № 382682, опубл. 23.05.1973 г. Бюл. № 23.; Головнева С.И., Лямкин Г.И., Катунина Л.С., Ляпустина Л.В., Старцева О.Л., Малецкая О.В., Ефременко В.И. Питательная среда для культивирования бруцелл. Патент РФ № 2299238, опубл. 20.05.2007 г. Бюл. № 14.; Tripathi K.K., Bhatnagar L., Seiffge D Jankowski R.P., Aikins H.E., Gupta K.G. On the growth of Brucella species in presence of erythritol in defined and undefined media and amniotic fluid of human, cow and sheep. Zentralbl. Bakteriol. Orig. A. 1977; 237(2-3):324-9.; Karagul M.S. Evaluation of adding erythritol to Farrell medium for primary isolation of the Brucella melitensis strains. Kocatepe Vet. J. 2019; 12(1):75-81. DOI:10.30607/kvj.494891.; Miranda K.L., Dorneles E.M.S., Poester F.P., Martins Filho P.S., Pauletti R.B., Lage A.P. Different resistance patterns of reference and field strains of Brucella abortus. Braz. J. Microbiol. 2015; 46(1):265-9. DOI:10.1590/S1517-838246120130625.; Девришов Д.А., Кабардиев С.Ш., Юсупов О.Ю. Способ изготовления вакцины против бруцеллеза мелкого рогатого скота. Патент РФ № 2642316, опубл. 24.01.2018 г.; Обзор основных компонентов питательных сред. [Электронный ресурс]. Справочник по микробиологии Merck - питательные среды, добавки, экспресс-тесты, пробоотборники воздуха. 679 с. URL: http://www.dia-m.ru/upload/iblock/34b/Spravochnik%20po%20mikrobiologii%20Mersk%20-%20pitatel'nyye%20sredy,%20dobavki,%20ekspress-testy,%20probootborniki%20vozdukha,%20russk.,%20679%20str.pdf (дата обращения 22.08.19 г).; Gerhardt P, Wilson J.B. The nutrition of brucellae: growth in simple chemically defined media. J. Bacteriol. 1948; 56(1):17-24. PMID: 16561542. PMCID: PMC518538.; Rode L.J., Oglesby G., Schuhardt VT. The cultivation of brucellae on chemically defined media. J. Bacteriol. 1950; 60(5):661-8.; Цыганкова Р.Е., Майский В.Г., Ляпустина Л.В., Лямкин ГИ. Синтетическая питательная среда для выращивания бруцелл. Патент РФ 2148638, опубл. 10.05.2000 г.; Perez-Etayo L., de Miguel M.J., Conde-Alvarez R., Munoz P.M., Khames M., Iriarte M., Moriyon I., Zuniga-Ripa A. The CO2-dependence of Brucella ovis and Brucella abortus biovars is caused by defective carbonic anhydrases. Vet. Res. 2018, 49(1):85. DOI:10.1186/s13567-018-0583-1.; Меринов С.П., Широков В.А., Голубинский Е.П., Пинигин А.Ф., Петухова о.С. Синтетическая питательная среда для выращивания бруцелл. Авторское свидетельство СССР № 933702, опубл. 07.06.1982 г. Бюл. № 21.; Донской Д.Н., Пинигин А.Ф., Голубинский Е.П., Меринов С.П. Минимальная синтетическая питательная среда для Brucella. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1983; 11:112.; Алимов А.М., Зайнеев Н.Ш., Салмаков К.М., Хазипов Н.З. Синтетическая среда для определения сахаролитической активности бруцелл. Авторское свидетельство СССР 1210453, опубл. 23.03.1988 г. Бюл. № 11.; Marin C.M., Alabart J.L., Blasco J.M. Effect of antibiotics contained in two Brucella selective media on growth of Brucella abortus, B. melitensis, and B. ovis. J. Clin. Microbiol. 1996; 34(2):426-8.; Hornsby R.L. Selective media for isolation of Brucella abortus strain RB51. 1998. [Электронный ресурс]. URL: https://lib.dr.iastate.edu/cgi/viewcontent.cgi?article=18852&context=rtd (дата обращения 22.08.2019).; Huddleston I. Forrest, Hasley D.E., Torrey J.P. Further studies on the isolation and cultivation of Bacterium abortus (Bang). J. Infect. Dis. 1927; 40(20):352-68. DOI:10.1093/infdis/40.2.352.; Henry B.S., Traum J., Haring C.M. Methods for the isolation of Brucella abortus. Hilgardia. 1932; 6(12):355-79. DOI:10.3733/hilg.v06nk2p355.; Kuzdas C.D., Morse E.V A selective medium for the isola-tion of brucellae from contaminated materiales. J. Bacteriol. 1953; 66(4):502-4. PMID: 13096514. PMCID: PMC317420.; Jones L.M., Morgan W. J.B. A preliminary report on a selec-tive medium for the culture of Brucella, including fastidious types. Bull. World Health Organ. 1958; 19(19:200-3.; The Modification of Technical Annexes of Council Directive 64/432/EEC to take account of Scientific Developments regarding Tuberculosis, Brucellosis and Enzootic Bovine Leucosis. [Электронный ресурс]. URL: http://ec.europa.eu/food/sites/food/files/safety/docs/sci-com_scah_out33_en.pdf (дата обращения 22.08.19 г).; Farell I.D. The development of a new selective medium for the isolation of Brucella abortus from contaminated sources. Res. Vet. Sci. 1974; 16(3):280-6. DOI:10.1016/S0034-5288(18)33726-3.; Stack J.A., Harrison M., Perrett L.L. Evaluation of a selective medium for Brucella isolation using natamycin. J. Appl Microbiol. 2002; 92(4):724-8. DOI:10.1046/j.1365-2672.2002.01595.x.; De Miguel M.J., Marin C.M., Munoz P.M., Dieste L., Grillo M.J., Blasco J.M. Development of a selective culture medium for primary isolation of the main Brucella species. J. Clin. Microbiol. 2011; 49(4):1458-63. DOI:10.1128/JCM.02301-10.; Marin C.M., Jimenez de Bagues M.P., Barberan M., Blasco J.M. Comparison of two selective media for the isolation of Brucella melitensis from naturally infected sheep and goats. Vet Rec. 1996; 138(17):409-11. DOI:10.1136/vr.138.17.409.; Vicente A.F., Antunes J.MA.R, Lara G.H.B., Mioni M.S.R., Allendorf S.D., Peres M.G., Appolinario C.M., Listoni F. J.P., Ribeiro M.G., Megid J. Evaluation of three formulations of culture media for isolation of Brucella spp. regarding their ability to inhibit the growth of contaminating organisms. Biomed. Res. Int. 2014; 2014:702072. DOI:10.1155/2014/702072.; World Organization for Animal Health. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. 6th ed. OIE; 2008. P. 628.; Karagul M.S., Ikiz S. Comparison of the isolation and inhibition abilities of selective media used for Brucella spp. Isolation. Turk. J. Vet. Anim. Sci. 2017; 41:781-6. DOI:10.3906/vet-1701-50.; Brodie J., Sinton G.P. Fluid and solid media for isolation of Brucella abortus. J. Hyg. (bond). 1975; 74(3):359-67. DOI:10.1017/s0022172400046878.; Омарова С.М., Ахмедова Э.М., Меджидов Ш.М., Муртузалиева П.М. Питательная среда для выделения бруцелл. Патент РФ № 2266956, опубл. 27.12.2005 г. Бюл. № 36.; Грубер И/M., Мельникова B.A., Шостак O.A., Черкасова ЛС. Специфическая активность селективной питательной среды для выделения бактерий рода Haemophilus. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2005; 3:15-7.; Васильев Д.А., Карпунина Л.В., Щербаков А.А., Назарова Л.С., Швиденко И.Г., Золотухин Сн. L-формы возбудителей зооантропонозов. Ульяновск: изд-во УГСХА им. П.А. Столыпина; 2013. 118 с.; Михайлов Л.М., Маевский М.П., Кузнецов В.И., Калиновский А.И., Татарникова О.Г. Питательная среда для выделения и культивирования L-форм бруцелл. Патент РФ № 2415918, опубл. 10.04.2011 г. Бюл. № 10.; Михайлов Л.М., Калиновский А.И., Баранникова Н.Л., Кузнецов В.И., Атлас А.Г., Андреевская Н.М., Михайлова В.А., Татарникова О.Г., Гордиенко Л.Н., Куликова Е.В., Балахонов С.В. Конструирование питательных сред для бруцелл в L-форме. Проблемы особо опасных инфекций. 2012; 3:89-93. DOI:10.21055/0370-1069-2012-3-89-93.; Geresu M.A., Ameni G., Wubete A., Arenas-Gamboa A.M., Gezahegne M. K. Isolation and identification of Brucella species from dairy cattle by biochemical tests: The first report from Ethiopia. World Vet. J. 2016; 6(2):80-8. DOI:10.5455/wvj.20160471.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1211
-
6Academic Journal
المؤلفون: Yu. S. Kovtun, A. A. Kurilova, L. S. Katunina, E. I. Vasilenko, Ю. С. Ковтун, А. А. Курилова, Л. С. Катунина, Е. И. Василенко
المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 4 (2016); 93-97 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 4 (2016); 93-97 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2016-4
مصطلحات موضوعية: бруцеллы, nutrient medium, biological parameters, Brucella, питательная среда, биологические показатели
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/356/352; Калягина С.Ю. Создание питательной среды из отходов мясного сырья и оценка ее свойств. Журн. микробиол, эпидемиол. и иммунобиол. 2008; 3:91–4.; Ковтун Ю.С., Курилова А.А., Таран Т.В., Катунина Л.С., Чурикова Н.В. Сравнительная оценка потенциальных белковых основ микробиологических сред. Пробл. особо опасных инф. 2014; 3:92–5.; Никифоров А.К., Антонычева М.В., Волох О.А., Еремин С.А., Киреев М.Н., Жулидов И.М., Алешина Ю.А., Авдеева Н.Г., Вахрушина Н.И., Холматов К.И. Разработка питательных сред на основе непищевого сырья для глубинного культивирования штаммов холерного вибриона. Пробл. особо опасных инф. 2015; 1:85–8.; Диагностика особо опасных инфекций (ООИ). HiMedia Laboratories Pvt. Limited (Индия). [Электронный ресурс]. URL: http:// www.himedialabs.ru/m074-m348/ (дата обращения 15.01.2016 г.).; Difco and BBL Manual: Manual of Microbiological Culture Media, 2nd edition. Becton Dickinson and Company; 2009. Р 104.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/356