المؤلفون: Паламарчук, Марина Анатольевна, Кириллов, Дмитрий Валерьевич, Шадрин, Дмитрий Михайлович

المصدر: Turczaninowia; Том 27 № 4 (2024): Turczaninowia; 86–91 ; Turczaninowia; Vol 27 No 4 (2024): Turczaninowia; 86–91 ; 1560-7267 ; 1560-7259

مصطلحات موضوعية: biodiversity, DNA barcoding, ITS, Komi Republic, Koygorodsky National Park, mycobiota, Pechoro-Ilychsky Reserve, specially protected natural areas, биоразнообразие, ДНК-штрихкодирование, микобиота, национальный парк «Койгородский», особо охраняемые природные территории, Печоро-Илычский заповедник, Республика Коми

وصف الملف: application/pdf

Relation: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/16627/14294; http://turczaninowia.asu.ru/article/view/16627

الاتاحة: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/16627
https://doi.org/10.14258/turczaninowia.27.4.9

المؤلفون: Ольга Евгеньевна Валуйских, Дмитрий Михайлович Шадрин

المصدر: Turczaninowia, Vol 24, Iss 4, Pp 12-22 (2021)

مصطلحات موضوعية: вздутоплодник, днк-штрихкодирование, генетическое разнообразие растений, гербарные коллекции, красная книга, республика коми, урал, its, Botany, QK1-989

وصف الملف: electronic resource

Relation: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/10767; https://doaj.org/toc/1560-7259; https://doaj.org/toc/1560-7267

URL الوصول: https://doaj.org/article/03199d33c7484164893eee51b09b751b

المؤلفون: Nebesikhina, N.A., Bugaev, L.A., Alimova, A.Sh., Gaydamachenko, V.N., Meshchankina, V.S.

مصطلحات موضوعية: Gobiidae, СOI, CytB, Видовая идентификация, ДНК штрихкодирование, DNA barcoding, ASFA_2015::M::mtDNA, ASFA_2015::I::Identification, ASFA_2015::G::Genetic polymorphism

جغرافية الموضوع: Azov Sea

وصف الملف: pp.73-76

Relation: http://hdl.handle.net/1834/42909

الاتاحة: http://hdl.handle.net/1834/42909

المؤلفون: A. V. Razuvaeva, E. G. Ulyanova, E. S. Skolotneva, I. V. Andreeva, А. В. Разуваева, Е. Г. Ульянова, Е. С. Сколотнева, И. В. Андреева

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 27, № 3 (2023); 240-249 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 27, № 3 (2023); 240-249 ; 2500-3259 ; 2500-0462 ; 10.18699/VJGB-23-24

مصطلحات موضوعية: COI, species identification, allozyme analysis, MALDI-TOF MS, DNA barcoding, PCR-RFLP, ITS, молекулярная идентификация, аллозимный анализ, ДНК- штрихкодирование, ПЦР-ПДРФ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3735/1703; Ahmad F., Babalola O.O., Tak H.I. Potential of MALDI-TOF mass spectrometry as a rapid detection technique in plant pathology: identification of plant-associated microorganisms. Anal. Bioanal. Chem. 2012;40(4):1247-1255. DOI 10.1007/s00216-012-6091-7.; Ahuja A., Somvanshi V.S. Diagnosis of plant-parasitic nematodes using loop-mediated isothermal amplification (LAMP): a review. Crop Prot. 2021;147:105459. DOI 10.1016/j.cropro.2020.105459.; Akhatov A.K. Guide to the Identification of Acarids and Insects in Vegetable Greenhouses. Moscow: KMK Publ., 2016. (in Russian); Alam M.T., Das M.K., Dev V., Ansari M.A., Sharma Y.D. PCR-RFLP method for the identification of four members of the Anopheles annularis group of mosquitoes (Diptera: Culicidae). Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 2007;101(3):239-244. DOI 10.1016/j.trstmh.2006.03.007.; Altukhov Yu.P. Genetic Processes in Populations. Moscow: Akademkniga Publ., 2003. (in Russian); Arabuli T., Negm M.W., Matsuda T., Kitashima Y., Abramishvili T., Akimov I.A., Zhovnerchuk O.V., Popov S.Ya., Gotoh T. Morphological identification of Amphitetranychus species (Acari: Tetranychidae) with crossbreeding, esterase zymograms and DNA barcode data. PLoS One. 2019;14(9):e0221951. DOI 10.1371/journal.pone.0221951.; Arimoto M., Satoh M., Uesugi R., Osakabe M. PCR-RFLP analysis for identification of Tetranychus spider mite species (Acari: Tetranychidae). J. Econ. Entomol. 2013;106(2):661-668. DOI 10.1603/EC12440.; Balykina E.B., Yagodinskaya L.P., Rybareva T.S., Balitsky N.V. Influence of acarocides on the structure of a phytovorous acarid complex. Byulleten Gosudarstvennogo Nikitskogo Botanicheskogo Sada = Bulletin of the Nikita Botanical Garden. 2017;123:58-64. (in Russian); Ben-David T., Melamed S., Gerson U., Morin S. ITS2 sequences as barcodes for identifying and analyzing spider mites (Acari: Tetranychidae). Exp. Appl. Acarol. 2007;41(3):169-181. DOI 10.1007/s10493-007-9058-1.; Bikbulatova S.M., Chemeris D.А., Nikonorov Yu.М., Mashkov О.I., Garafutdinov R.R., Chemeris A.V., Vakhitov V.А. Methods for detecting polymerase chain reaction in real-time mode. Vestnik Bashkirskogo Universiteta = Herald of the Bashkir State University. 2012;17(1):59-67. (in Russian); Chaires-Grijalva M.P., Serrano-Domínguez A.K., Coronado-Blanco J.M. Mites associated with maize in Mexico. Rev. Mex. Cienc. Agríc. 2021;12(8):1497-1510. DOI 10.29312/remexca.v12i8.2718.; Chen Y., Woolley L., Nguyen D., Gupta R., Chandler G.T., Nehl D., Herron G.A. Development and use of a single real-time PCR assay to identify the three spider mite species Tetranychus urticae, Tetranychus lambi and Tetranychus ludeni (Acari: Tetranychidae). Austral. Entomol. 2020;59(3):630-638. DOI 10.1111/aen.12457.; Dermauw W., Moerkercke Y.V., Ebrahimi N., Casteels H., Bonte J., Witters J. A loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assay for rapid identification of Ceratitis capitata and related species. Curr. Res. Insect Sci. 2022;2:100029. DOI 10.1016/j.cris.2022.100029.; Devi M., Challa N., Mahesh G. Important mite pests of temperate and sub-tropical crops: a review. J. Entomol. Zool. Stud. 2019;7(4): 1378-1384.; Enohara K., Amano H. Simple method for discriminating six common species of red Tetranychus spider mites (Acari: Tetranychidae) in Japan. Jpn. J. Appl. Entomol. Zool. 1996;40(4):311-315. DOI 10.1303/jjaez.40.311. (in Japanese); Folmer O., Black M., Hoeh W., Lutz R., Vrijenhoek R. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Mol. Mar. Biol. Biotechnol. 1994;3(5):294-299.; Goka K., Takafuji A. Electrophoretic detection of enzyme variation among Japanese red-coloured spider mites of the genus Tetranychus (Acari: Tetranychidae). Exp. Appl. Acarol. 1998;22:167-176. DOI 10.1023/A:1006006129339.; Gotoh T. Separation of Panonychus ulmi, P. thelytokus and P. bambusicola (Acari: Tetranychidae) by esterase zymograms. Appl. Entomol. Zool. 1992;27(4):598-601. DOI 10.1303/aez.27.598.; Gotoh T., Gutierrez J., Navajas M. Molecular comparison of the sibling species Tetranychus pueraricola Ehara et Gotoh and T. urticae Koch (Acari: Tetranychidae). Entomol. Sci. 1998;1(1):55-57.; Gotoh T., Kitashima Y., Adachi I. Geographic variation of esterase and malate dehydrogenases in two spider mite species, Panonychus osmanthi and P. citri (Acari: Tetranychidae) in Japan. Int. J. Acarol. 2004;30(1):45-54. DOI 10.1080/01647950408684368.; Gotoh T., Kitashima Y., Goka K. Tetranychus mite species identification using esterase and phosphoglucomutase zymograms. Appl. Entomol. Zool. 2007;42(4):579-585. DOI 10.1303/aez.2007.579.; Hajibabaei M., Singer G.A.C., Hebert P.D.N., Hickey D.A. DNA barcoding: how it complements taxonomy, molecular phylogenetics and population genetics. Trends Genet. 2007;23(4):167-172. DOI 10.1016/j.tig.2007.02.001.; Han H., Cho M.R., Jeon H.Y., Lim C.K., Jang H.I. PCR-RFLP identification of three major Meloidogyne species in Korea. J. Asia Pac. Entomol. 2004;7(2):171-175. DOI 10.1016/S1226-8615(08)60212-5.; Hillis D.M., Dixon M.T. Ribosomal DNA: molecular evolution and phylogenetic inference. Q. Rev. Biol. 1991;66(4):411-453. DOI 10.1086/417338.; Hinomoto N., Tran D.P., Pham A.T., Le T.B.N., Tajima R., Ohashi K., Osakabe M., Takafuji A. Identification of spider mites (Acari: Tetranychidae) by DNA sequences: a case study in Northern Vietnam. Int. J. Acarol. 2007;33(1):53-60. DOI 10.1080/01647950708684501.; Hsieh C.-H., Wang H.-Y., Chen Y.-F., Ko C.-C. Loop-mediated isothermal amplification for rapid identification of biotypes B and Q of the globally invasive pest Bemisia tabaci, and studying population dynamics. Pest Manag. Sci. 2012;68(8):1206-1213. DOI 10.1002/ps.3298.; Hurtado M.A., Ansaloni T., Cros-Arteil S., Jacas J.A., Navajas M. Sequence analysis of the ribosomal internal transcribed spacers region in spider mites (Prostigmata: Tetranychidae) occurring in citrus orchards in Eastern Spain: use for species discrimination. Ann. Appl. Biol. 2008;153(2):167-174. DOI 10.1111/j.1744-7348.2008.00250.x.; İnak E., Çobanoğlu S., Auger P., Migeon A. Molecular identification and phylogenetic analysis of spider mites (Prostigmata: Tetranychidae) of Turkey. Exp. Appl. Acarol. 2022;87:195-205. DOI 10.1007/s10493-022-00728-5.; Kajiwara H., Hinomoto N., Gotoh T. Mass fingerprint analysis of spider mites (Acari) by matrix-assisted laser desorption/ionization time-offlight mass spectrometry for rapid discrimination. Rapid Commun. Mass Spectrom. 2016;30(8):1037-1042. DOI 10.1002/rcm.7534.; Kamayev I.O. Oligonychus (Acari: Tetranychidae) mites occurring in conifer planting material. In: Lectures in memoriam O.A. Kataev. Dendrobiont Invertebrates and Fungi and Their Role in Forest Ecosystems. Vol. 1. Insects and other invertebrates. Proceed. of the int. conf. St. Petersburg, Oct. 22–25, 2018. St. Petersburg, 2018;44. (in Russian); Kamayev I.O. Approach to diagnostics of spider mites (Acari: Tetranychidae) in phytosanitary practice. In: Monitoring and Biological Control Methods of Woody Plant Pests and Pathogens: From theory to practice. Proceed. of Second int. conf. Moscow, April 22–26, 2019. Moscow; Krasnoyarsk, 2019;82. (in Russian); Kamayev I.O., Karpun N.N. A new data on spider mites (Acari: Trombidiformes: Tetranychidae) inhabiting ornamental plants on the Black Sea coast of Krasnodar Region, Russia. Kavkazskiy Entomologicheskiy Bulleten = Caucasian Entomological Bulletin. 2020;16(2):295-298. DOI 10.23885/181433262020162-295298. (in Russian); Kamayev I.O., Mironova M.K. The phytosanitary risk of herbivorous mites (Arachnida: Acariformes). Karantin Rasteniy. Nauka i Praktika = Plant Quarantine: Science and Policy. 2018;3(25):13-20. (in Russian); Khaing T.M., Lee J.-H., Lee W.-G., Lee K.-Y. A new record of Amphitetranychus quercivorus (Acari: Tetranychidae) in Korea and molecular comparison with A. viennensis. J. Asia Pac. Entomol. 2013; 16(2):155-160. DOI 10.1016/j.aspen.2012.12.003.; Khaing T.M., Shim J.-K., Lee K.-Y. Molecular identification and phylogenetic analysis of economically important acaroid mites (Acari: Astigmata: Acaroidea) in Korea. Entomol. Res. 2014;44(6):331-337. DOI 10.1111/1748-5967.12085.; Khaing T.M., Shim J.-K., Lee K.-Y. Molecular identification of four Panonychus species (Acari: Tetranychidae) in Korea, including new records of P. caglei and P. mori. Entomol. Res. 2015;45:345-353. DOI 10.1111/1748-5967.12135.; Konoplev N.D., Ignatov A.N., Popov S.Ya. To question of opportunity of Tetranychus urticae and T. atlanticus (Acari: Tetranychidae) identification using mtDNA COI gene. Vestnik Zashchity Rasteniy = Plant Protection News. 2017;4(94):43-47. (in Russian); Koshkin E.I., Andreeva I.V., Guseinov G.G., Guseinov K.G., Dzhalilov F.S.-U., Mityushev I.M. Specific aspects of the plant and phytophage interactions in agroecosystems under climate change. Agro khimiya = Agrochemistry. 2021;1:79-96. DOI 10.31857/S0002188121010063. (in Russian); Kutlunina N.A., Ermoshin A.A. Molecular Methods in Plant Studies. Yekaterinburg: Urals State Univ. Publ., 2017. (in Russian); Lampo M., Rangel Y., Mata A. Genetic markers for the identification of two tick species, Amblyomma dissimile and Amblyomma rotundatum. J. Parasitol. 1997;83(3):382-386. DOI 10.2307/3284398.; Li D., Fan Q.-H., Waite D.W., Gunawardana D., George S., Kumarasinghe L. Development and validation of a real-time PCR assay for rapid detection of two-spotted spider mite, Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae). PLoS One. 2015;10(7):e0131887. DOI 10.1371/journal.pone.0131887.; Matsuda T., Fukumoto C., Hinomoto N., Gotoh T. DNA-based identification of spider mites: molecular evidence for cryptic species of the genus Tetranychus (Acari: Tetranychidae). J. Econ. Entomol. 2013;106(1):463-472. DOI 10.1603/EC12328.; Matsuda T., Hinomoto N., Singh R.N., Gotoh T. Molecular-based identification and phylogeny of Oligonychus species (Acari: Tetranychidae). J. Econ. Entomol. 2012;105(3):1043-1050. DOI 10.1603/EC11404.; Matsuda T., Morishita M., Hinomoto N., Gotoh T. Phylogenetic analysis of the spider mite sub-family Tetranychinae (Acari: Tetranychidae) based on the mitochondrial COI gene and the 18S and the 5′ end of the 28S rRNA genes indicates that several genera are polyphyletic. PLoS One. 2014;9(10):e108672. DOI 10.1371/journal.pone.0108672.; Migeon A., Nouguier E., Dorkeld F. Spider Mites Web: a comprehensive database for the Tetranychidae. In: Sabelis M., Bruin J. (Eds.) Trends in Acarology. Dordrecht: Springer, 2010;557-560. DOI 10.1007/978-90-481-9837-5_96.; Mitrofanov V.I., Strunkova Z.I., Livshits I.Z. Guide to Spider Mites in the Fauna of the USSR and Neighboring Countries. Dushanbe: Donish Publ., 1987. (in Russian); Morphological Identification of Spider Mites (Tetranychidae) Affecting Imported Fruits. The Secretariat of the North American Plant Protection Organization, Canada, 2014.; Murugaiyan J., Roesler U. MALDI-TOF MS profiling-advances in species identification of pests, parasites, and vectors. Front. Cell Infect. Microbiol. 2017;7:184. DOI 10.3389/fcimb.2017.00184.; Musolin D.L., Saulich A.K. Responses of insects to the current climate change: from physiology and behavior to range shifts. Entomological Review. 2012;92(7):715-740. DOI 10.1134/S0013873812070019.; Navajas M., Fenton B. The application of molecular markers in the study of diversity in acarology: a review. Exp. Appl. Acarol. 2000; 24(10-11):751-774. DOI 10.1023/a:1006497906793.; Notomi T., Okayama H., Masubuchi H., Yonekawa T., Watanabe K., Amino N., Hase T. Loop-mediated isothermal amplification of DNA. Nucleic Acids Res. 2000;28(12):e63. DOI 10.1093/nar/28.12.e63.; Obasa K., Alabi O.J., Sétamou M. Wheat curl mite: a new source of the Eriophyoid mite in wheat fields identified. PhytoFrontiers. 2022;2(4):342-346. DOI 10.1094/PHYTOFR-04-22-0038-SC.; Osakabe Mh. Difference of esterase isozymes between non-diapausing and diapausing strains of the citrus red mite, Panonychus citri (McGregor) (Acarina: Tetranychidae). Appl. Entomol. Zool. 1987; 22(4):577-584. DOI 10.1303/aez.22.577.; Osakabe Mh., Hirose T., Satô M. Discrimination of four Japanese Tetranychus species (Acari: Tetranychidae) using PCR-RFLP of the inter-transcribed spacer region of nuclear ribosomal DNA. Appl. Entomol. Zool. 2002;37(3):399-407. DOI 10.1303/aez.2002.399.; Osakabe Mh., Kotsubo Yu., Tajima R., Hinomoto N. Restriction fragment length polymorphism catalog for molecular identification of Japanese Tetranychus spider mites (Acari: Tetranychidae). J. Econ. Entomol. 2008;101(4):1167-1175. DOI 10.1093/jee/101.4.1167.; Osakabe Mh., Sakagami Y. RFLP analysis of ribosomal DNA in sibling species of spider mite, genus Panonychus (Acari: Tetranychidae). Insect Mol. Biol. 1994;3(1):63-66. DOI 10.1111/j.1365-2583.1994.tb00152.x.; Ovalle T.M., Vásquez-Ordóñez A.A., Jimenez J., Parsa S., Cuellar W.J., Lopez-Lavalle L.A.B. A simple PCR-based method for the rapid and accurate identification of spider mites (Tetranychidae) on cassava. Sci. Rep. 2020;10(1):19496. DOI 10.1038/s41598-020-75743-w.; Petrov D.L., Zhorov D.G., Sautkin F.V. Leaf gall mite Aceria erinea (Nalepa, 1891) (Acariformes: Eriophyidae) – a new invasive species of pests of walnut (Juglans regia L.) in Belarus. Vestnik Belorusskogo Gosudarstvennogo Unversiteta = Vestnik BGU. 2016;2:75(in Russian); Popov S.Ya. The Ecological Aspect of Controlling the Harm of Insect and Mite Populations: A collection of articles. Moscow: RGAUMSKhA Publ., 2013. (in Russian); Rak N.S., Litvinova S.V. Hazardous organisms migration and acclimatization during the plant introduction in the Far North Russia greenhouses. Hortus Botanicus. 2010;5:2. (in Russian); Ratcliffe S.T., Webb D.W., Weinzievr R.A., Robertson H.M. PCRRFLP identification of Diptera (Calliphoridae, Muscidae and Sarcophagidae) – a generally applicable method. J. Forensic Sci. 2003; 48(4):783-785. DOI 10.1520/JFS2002136.; Ros V.I.D., Breeuwer J.A.J. Spider mite (Acari: Tetranychidae) mitochondrial COI phylogeny reviewed: host plant relationships, phylogeography, reproductive parasites and barcoding. Exp. Appl. Acarol. 2007;42(4):239-262. DOI 10.1007/s10493-007-9092-z.; Sakamoto H., Gotoh T. Non-destructive direct polymerase chain reaction (direct PCR) greatly facilitates molecular identification of spider mites (Acari: Tetranychidae). Appl. Entomol. Zool. 2017;52: 661-665. DOI 10.1007/s13355-017-0512-1.; Shim J.-K., Khaing T.M., Seo H.-E., Ahn J.-Y., Jung D.-O., Lee J.-H., Lee K.-Y. Development of species-specific primers for rapid diagnosis of Tetranychus urticae, T. kanzawai, T. phaselus and T. truncatus (Acari: Tetranychidae). Entomol. Res. 2016;46(2):162-169. DOI 10.1111/1748-5967.12154.; Sinaie S., Sadeghi Namaghi H., Fekrat L. A multiplex PCR assay for simultaneous discrimination of two predominant spider mites of the genus Tetranychus (Acari: Tetranychidae) in greenhouses of Iran. J. Agr. Sci. Tech. 2018;20(4):733-744.; Sinaie S., Sadeghi-Namaghi H., Fekrat L. Loop-mediated isothermal amplification combined with PCR for specific identification of injurious mite, Tetranychus urticae (Trombidiformes: Tetranychidae). Biologia. 2019;74(5):477-485. DOI 10.2478/s11756-018-00187-7.; Singhal N., Kumar M., Kanaujia P.K., Virdi J.S. MALDI-TOF mass spectrometry: an emerging technology for microbial identification and diagnosis. Front. Microbiol. 2015;6:791. DOI 10.3389/fmicb.2015.00791.; Tomita N., Mori Y., Kanda H., Notomi T. Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) of gene sequences and simple visual detection of products. Nat. Protoc. 2008;3(5):877-882. DOI 10.1038/nprot.2008.57.; Turak E., Hales D.F. An allozyme method for identifying individual aphids of morphologically similar taxa (Hemiptera: Aphididae). J. Aust. Ent. Soc. 1994;33(1):57-59. DOI 10.1111/j.1440-6055.1994.tb00920.x.; Ulyanova E., Andreeva I., Shatalova E. The species composition of herbivorous acarofauna in the south of Western Siberia. Persian J. Acarol. 2022;11(2):365-370. DOI 10.22073/pja.v11i2.72456.; Vásquez C., Colmenárez Y. Invasive mite species in the Americas: bioecology and impact. In: Haouas D., Hufnagel L. (Eds.) Pests Control and Acarology. London: IntechOpen, 2020. DOI 10.5772/intechopen.86127.; Volkova M.V., Matveikina E.A. Structural changes in the phytophagous mite complex in the commercial vineyards of the Crimea. Plodovodstvo i Vinogradarstvo Yuga Rossii = Fruit Growing and Viticulture of South Russia. 2016;38(2):130-139. (in Russian); Walter D.E., Krantz G.W. Collecting, rearing and preparing specimens. In: Krantz G.W., Walter D.E. (Eds.) A Manual of Acarology. Texas Tech Univ. Press, 2009;91-92.; Zeynalov A.S. Ecological and phytosanitary consequences of climate change in the plantings of fruit cultures. Uspekhi Sovremennoy Nauki = Modern Science Success. 2017;2(9):94-100. (in Russian); Zeynalov A.S., Orel D.S. Change in species composition, bioecology and harmfulness of main applian phytophages in the Central Region of the Non-Black Earth Zone of Russia under the influence of climate factors. Vestnik Kazanskogo GAU = Vestnik of the Kazan State Agrarian University. 2021;16(1):15-21. DOI 10.12737/2073-0462-2021-15-21. (in Russian); Zélé F., Weill M., Magalhães S. Identification of spider-mite species and their endosymbionts using multiplex PCR. Exp. Appl. Acarol. 2018;74(2):123-138. DOI 10.1007/s10493-018-0224-4.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3735

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3735
https://doi.org/10.18699/VJGB-23-30

المؤلفون: S. V. Volobuev, N. V. Shakhova, С. В. Волобуев, Н. В. Шахова

المساهمون: The authors are grateful to Dr. A.B. Ismailov (Mountain Botanical Garden, DFRC RAS, Makhachkala) for help in the organisation of field studies. This research was carried out within the framework of the institutional research project of the Komarov Botanical Institute RAS (project no. 122011900032‐7, “Herbarium funds of the BIN RAS (history, preservation, study and enrichment)”) using the equipment of the Core Facility Centre “Cell and Molecular Technologies in Plant Science” at the Komarov Botanical Institute, RAS (St. Petersburg, Russia)., Авторы благодарят к.б.н. А.Б. Исмаилова (Горный ботанический сад ДФИЦ РАН, Махачкала) за помощь в организации полевых исследований. Работа выполнена в рамках государственного задания БИН РАН по теме №122011900032‐7 «Гербарные фонды БИН РАН (история, сохранение, изучение и пополнение)» с использованием оборудования Центра коллективного пользования научным оборудованием «Клеточные и молекулярные технологии изучения растений и грибов» Ботанического института им. В.Л. Комарова РАН (Санкт‐Петербург).

المصدر: South of Russia: ecology, development; Том 18, № 2 (2023); 44‐52 ; Юг России: экология, развитие; Том 18, № 2 (2023); 44‐52 ; 2413-0958 ; 1992-1098 ; 10.18470/1992-1098-2023-2

مصطلحات موضوعية: баттаррея весёлковая, DNA barcoding, fungal conservation, gasteromycetes, NorthEastern Caucasus, phylogeny, Red Data Book, sandy stiltball, ДНК‐штрихкодирование, охрана грибов, гастеромицеты, макромицеты, Северо‐Восточный Кавказ, филогения, Красная книга

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2825/1343; Baldrian P., Valášková V. Degradation of cellulose by basidiomycetous fungi // FEMS Microbiology Reviews. 2008. V. 32. N 3. P. 501–521. https://doi.org/10.1111/j.1574‐6976.2008.00106.x; Мухин В.А., Воронин П.Ю. Микогенное разложение древесины и эмиссия углерода в лесных экосистемах // Экология. 2007. N 1. С. 24–29.; Казарцев И.А., Рощин В.И., Соловьев В.А. Разложение углеводов древесины Populus tremula и Picea abies под действием лигнинразрушающих грибов // Микология и фитопатология. 2014. Т. 48. N 2. С. 112–117.; Boddy L., Frankland J.C., van West P. Ecology of saprotrophic basidiomycetes. London, Elsevier Academic Press, 2008, 372 p.; Bahram M., Netherway T. Fungi as mediators linking organisms and ecosystems // FEMS Microbiology Reviews. 2022. V. 46. N 2. Article id: fuab058. https://doi.org/10.1093/femsre/fuab058; Geml J., Leal C.M., Nagy R., Sulyok J. Abiotic environmental factors drive the diversity, compositional dynamics and habitat preference of ectomycorrhizal fungi in Pannonian forest types // Frontiers in Microbiology. 2022. V. 13. Art. 1007935. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.1007935; Mueller G.M., Cunha K.M., May T.W., Allen J.L., Westrip J.R.S., Canteiro C., Costa‐Rezende D.H., Drechsler‐Santos E.R., Vasco‐Palacios A.M., Ainsworth A.M., Alves‐Silva G., Bungartz F., Chandler A., Gonçalves S.C., Krisai‐Greilhuber I., Iršėnaitė R., Jordal J.B., Kosmann T., Lendemer J., McMullin R.T., Mešić A., Motato‐Vásquez V., Ohmura Y., Næsborg R.R., Perini C., Saar I., Simijaca D., Yahr R., Dahlberg A. What do the first 597 Global Fungal Red List assessments tell us about the threat status of fungi? // Diversity. 2022. V. 14. N 9. Art. 736. https://doi.org/10.3390/d14090736; Mace G.M., Collar N.J., Gaston K.J., Hilton‐Taylor C., Akçakaya H.R., Leader‐Williams N., Milner‐Gulland E.J., Stuart S.N. Quantification of extinction risk: IUCN’s system for classifying threatened species // Conservation Biology. 2008. V. 22. N 6. P. 1424–1442. https://doi.org/10.1111/j.1523‐1739.2008.01044.x; Dahlberg A., Genney D.R., Heilmann‐Clausen J. Developing a comprehensive strategy for fungal conservation in Europe: current status and future needs // Fungal Ecology. 2010. V. 3. N 2. P. 50–64. https://doi.org/10.1016/j.funeco.2009.10.004; Красная книга Республики Дагестан. Махачкала: Типография ИП Джамалудинов М.А., 2020. 800 с.; Pegler D.N., Læssøe T., Spooner B.M. British puffballs, earthstars and stinkhorns. Kew, 1995, 255 p.; Volobuev S., Shakhova N. Towards the discovery of active lignocellulolytic enzyme producers: a screening study of xylotrophic macrofungi from the Central Russian Upland // Iranian Journal of Science and Technology, Transactions A: Science. 2022. V. 46. N 1. P. 91–100. https://doi.org/10.1007/s40995‐021‐01245‐7; Benson D.A., Cavanaugh M., Clark K., Karsch‐Mizrachi I., Lipman D.J., Ostell J., Eric W. Sayers E.W. GenBank // Nucleic Acids Research. 2013. V. 41. N D1. P. D36–D42. https://doi.org/10.1093/nar/gks1195; Katoh K., Standley D.M. MAFFT multiple sequence alignment software version 7: improvements in performance and usability // Molecular Biology and Evolution. 2013. V. 30. N 4. P. 772–780. https://doi.org/10.1093/molbev/mst010; Katoh K., Rozewicki J., Yamada K.D. MAFFT online service: multiple sequence alignment, interactive sequence choice and visualization // Briefings in Bioinformatics. 2019. V. 20. N 4. P. 1160–1166. https://doi.org/10.1093/bib/bbx108; Trifinopoulos J., Nguyen L.T., von Haeseler A., Minh B.Q. W‐IQ‐TREE: a fast online phylogenetic tool for maximum likelihood analysis // Nucleic Acids Research. 2016. V. 44. N W1. P. W232–W 235. https://doi.org/10.1093/nar/gkw256; Martín M.P., Johannesson H. Battarea phalloides and B. stevenii, insight into a long‐standing taxonomic puzzle // Mycotaxon. 2000. V. 76. P. 67–75.; Martín M.P., Rusevska K., Dueñas M., Karadelev M. Battarrea phalloides in Macedonia: genetic variability, distribution and ecology // Acta Mycologica. 2013. V. 48. N 1. P. 113–122. https://doi.org/10.5586/am.2013.013; Garrido‐Benavent I. The Battarrea phalloides‐stevenii complex: multiple sources of evidence as a strategy to unveil cryptic species within poorly characterized taxa // Butlletí Societat Micològica Valenciana. 2014. V. 19. P. 17–35.; Shepherd L.D., Cooper J.A. First record of the fungus Battarrea phalloides (Agaricaceae) in New Zealand // New Zealand Journal of Botany. 2018. V. 56. N 1. P. 109–114. http://dx.doi.org/10.1080/0028825X.2017.1385491; iNaturalist contributors, iNaturalist (2022). iNaturalist Research‐grade Observations. iNaturalist.org. Occurrence dataset https://doi.org/10.15468/ab3s5x2022‐12‐20. URL: https://www.gbif.org/occurrence/4034748523 (дата обращения: 20.12.2022); Pilát A. (ed.) Gasteromycetes. Flora ČSR. B. 1. Praha, 1958, 836 p.; Ivančević B, Mešić A, Tkalčec Z, Kušan I, Horjan I. Studies on Croatian Basidiomycota 3: the first record of Battarrea phalloides (Agaricales) with a worldwide taxonomic review of Battarrea species // Nova Hedwigia. 2016. V. 102. N 1–2. P. 197–209. https://doi.org/10.1127/nova_hedwigia/2015/0300; Akata İ., Altuntaş D., Sahin E., Alli H., Kabaktepe Ş. A note on Battarrea phalloides in Turkey // Mantar Dergisi. 2021. V. 12. N 1. P. 1–9. https://doi.org/10.30708.mantar.800585; Fraiture A., Otto P. Distribution, ecology and status of 51 macromycetes in Europe. Results of the ECCF Mapping Programme // Scripta Botanica Belgica. 2015. V. 53. P. 1–247.; Battarrea phalloides. URL: https://redlist.info/iucn/species_view/159853/ (дата обращения: 16.12.2022); Красная книга Республики Калмыкия. В 2‐х томах. Том 2. Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения растения и грибы. Элиста: ЗАОр «НПП «Джангар», 2014. 199 с.; Gargano M.L., Venturella G., Ferraro V. Is Battarrea phalloides really an endangered species? // Plant Biosystems – An International Journal Dealing with all Aspects of Plant Biology. 2021. V. 155. N 4. P. 759–762. https://doi.org/10.1080/11263504.2020.1779847; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2825

الاتاحة: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2825
https://doi.org/10.18470/1992-1098-2023-2-44-52

المؤلفون: Исмаилов, Азиз Бадаутдинович, Волобуев, Сергей Викторович, Катаева, Ольга Адриановна

المصدر: Turczaninowia; Том 26 № 4 (2023): Turczaninowia; 31-38 ; Turczaninowia; Vol 26 No 4 (2023): Turczaninowia; 31-38 ; 1560-7267 ; 1560-7259

مصطلحات موضوعية: biodiversity, broad-leaved forest, Caucasus, DNA barcoding, HPTLC, lichenized fungi, molecular phylogeny, protected area, биоразнообразие, ДНК-штрихкодирование, Кавказ, лихенизированные грибы, молекулярная филогения, охраняемая территория, широколиственный лес

وصف الملف: application/pdf

Relation: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/14469/12263; http://turczaninowia.asu.ru/article/view/14469

الاتاحة: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/14469
https://doi.org/10.14258/turczaninowia.26.4.7

المؤلفون: Власенко, Вячеслав Александрович, Волобуев, Сергей Викторович, Власенко, Анастасия Владимировна

المصدر: Turczaninowia; Том 26 № 2 (2023): Turczaninowia; 114-120 ; Turczaninowia; Vol 26 No 2 (2023): Turczaninowia; 114-120 ; 1560-7267 ; 1560-7259

مصطلحات موضوعية: DNA barcoding, new records, polyporoid fungi, rare species, Western Siberia, ДНК-штрихкодирование, Западная Сибирь, новые находки, полипороидные грибы, редкие виды

وصف الملف: application/pdf

Relation: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/13439/11262; http://turczaninowia.asu.ru/article/view/13439

الاتاحة: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/13439
https://doi.org/10.14258/turczaninowia.26.2.9

المؤلفون: Ваганов, Алексей Владимирович, Синицына, Татьяна Александровна, Куцев, Максим Геннадьевич, Скапцов, Михаил Викторович, Жолнерова, Елизавета Алексеевна, Косачев, Петр Алексеевич, Кечайкин, Алексей Анатольевич, Смирнов, Сергей Владимирович, Шмаков, Александр Иванович

المصدر: Turczaninowia; Том 25 № 4 (2022): Turczaninowia; 5-11 ; Turczaninowia; Vol 25 No 4 (2022): Turczaninowia; 5-11 ; 1560-7267 ; 1560-7259

مصطلحات موضوعية: Altai, biodiversity, endemics, flora, herbarium, plant DNA barcoding, sequencing, Алтай, биоразнообразие, гербарий, ДНК-штрихкодирование растений, секвенирование, флора, эндемик

وصف الملف: application/pdf

Relation: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/12179/10020; http://turczaninowia.asu.ru/article/view/12179

الاتاحة: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/12179
https://doi.org/10.14258/turczaninowia.25.4.1

المؤلفون: Воробьева, М. М., Дмитрович, Н.П., Кузнецов, Н.А., Козлова, Т.В.

مصطلحات موضوعية: нуклеотидные последовательности, ген COI, ДНК-штрихкодирование, род Carassius, С. carassius, C. auratus, BOLD

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://rep.polessu.by/handle/123456789/32889

الاتاحة: https://rep.polessu.by/handle/123456789/32889

المؤلفون: Оношко, В.О.

مصطلحات موضوعية: ДНК-штрихкодирование, виды тлей, генетический полиморфизм

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://rep.polessu.by/handle/123456789/32772

الاتاحة: https://rep.polessu.by/handle/123456789/32772

المؤلفون: Yu. Yu. Ivanushenko, S. V. Volobuev, Ю. Ю. Иванушенко, С. В. Волобуев

المساهمون: This study was funded by the RFBR according to research project No19‐34‐50111. The research was done using the equipment of the Core Facility Centre, Cell and Molecular Technologies in Plant Science at the Komarov Botanical Institute, Russian Academy of Sciences (St‐Petersburg, Russia). Morphological studies of LE specimens were carried out within the framework of the research project of the Koma‐ rov Botanical Institute RAS, Herbarium Funds of the BIN RAS (History, Conservation, Study and Supplementation) (АААА‐А18‐118022090078‐2)., Исследование выполнено при поддержке РФФИ в рамках научного проекта №19‐34‐50111 с использованием оборудования ЦКП «Клеточные и молекулярные технологии изучения растений и грибов» Ботанического института им. В.Л. Комарова РАН (Санкт‐Петербург). Морфологическое изучение образцов из гербария LE проведено в рамках госзадания БИН РАН по теме «Гербарные фонды БИН РАН: история, сохранение, изучение и пополнение» (АААА‐А18‐118022090078‐2).

المصدر: South of Russia: ecology, development; Том 15, № 3 (2020); 165-173 ; Юг России: экология, развитие; Том 15, № 3 (2020); 165-173 ; 2413-0958 ; 1992-1098 ; 10.18470/1992-1098-2020-3

مصطلحات موضوعية: Кавказ, basidiomycetes, distribution of fungi, ITS phylogeny, DNA barcodes, Tomentella, Dagestan, Caucasus, базидиомицеты, распространение грибов, ITS‐филогения, ДНК‐штрихкодирование, Дагестан

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2025/1169; Иванушенко Ю.Ю. История изучения афиллофороидных грибов в Республике Дагестан // Университетская экология. Сборник научных трудов. Махачкала: Типография ИПЭ, 2019. С. 16-18.; Багдасарова А.Ф. Грибы лианового леса дельты реки Самур // Ботаника, физиология растений и растениеводства. Махачкала: Даг. кн. изд., 1965. С. 64-70.; Ghobad-Nejhad M., Hallenberg N., Parmasto E., Kotiranta H. A first annotated checklist of corticioid and polypore basidiomycetes of the Caucasus region // Mycologia Balcanica. 2009. V. 6. Iss. 3. P. 123-168. DOI:10.5281/zenodo.2550071; Винер И.А. Новые находки трутовых и кортициоидных грибов в Дагестане // Труды государственного природного заповедника «Дагестанский». Махачкала: Алеф, 2017. Вып. 13. С. 13-19.; Волобуев С.В., Иванушенко Ю.Ю., Исмаилов А.Б. Auriporia aurulenta – кандидат в Красную книгу Республики Дагестан // Материалы Международной конференции «Флора и заповедное дело на Кавказе: история и современное состояние изученности», Пятигорск, 2019. С. 32-33.; Иванушенко Ю.Ю., Исмаилов А.Б., Волобуев С.В. Первые сведения о трутовых грибах плато Гуниб (Республика Дагестан) // Материалы XXI Международной научной конференции «Биологическое разнообразие Кавказа и Юга России», Магас, 2019. С. 163-166.; Volobuev S.V., Ivanushenko Yu.Yu. Aphyllophoroid fungi (Basidiomycota) on juniper on the Gunib Plateau, inner-mountain Dagestan // Czech Mycology. 2020. V. 72. Iss. 1. P. 83-93. DOI:10.33585/cmy.72106; Volobuev S.V. Aphyllophoroid fungi of the "Samurskiy" national park (Dagestan) // Mikologiya i fitopatologiya. 2020. V. 54. N 4. P. 235-243. DOI:10.31857/S002636482004011X; Волобуев С.В., Иванушенко Ю.Ю., Исмаилов А.Б. Новые для Дагестана виды рода Tomentella (Thelephorales, Basidiomycota) // Юг России: экология, развитие. 2019. Т. 14. N 2. C. 172-179. DOI:10.18470/1992-10982019-2-172-179; Kõljalg U. Tomentella (Basidiomycota) and related genera in temperate Eurasia. Fungiflora, Oslo, 1996.; White T.J., Bruns T., Lee S., Taylor J. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: PCR protocols: a guide to methods and applications. San Diego: Academic Press. 1990. P. 315-322.; Gardes M., Bruns T.D. ITS primers with enhanced specificity for Basidiomycetes: application to the identification of mycorrhizae and rusts // Mol Ecol. 1993. V. 2. P. 113-118.; Tamura K., Stecher G., Peterson D., Filipski A., Kumar S. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 6.0. // Molecular Biology and Evolution. 2013. V. 30. Iss. 12. P. 2725-2729. DOI:10.1093/molbev/mst197; GenBank. URL: www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank/ (дата обращения 20.04.2020); UNITE. URL: https://unite.ut.ee/index.php (дата обращения 20.04.2020); Katoh K., Rozewicki J., Yamada K.D. MAFFT online service: multiple sequence alignment, interactive sequence choice and visualization // Briefings in Bioinformatics. 2019. V. 20. P. 1160-1166. DOI:10.1093/bib/bbx108; MAFFT version 7. URL: http://mafft.cbrc.jp/alignment/server/ (дата обращения 20.04.2020); Trifinopoulos J., Nguyen L.T., von Haeseler A., Minh B.Q. W-IQ-TREE: a fast online phylogenetic tool for maximum likelihood analysis // Nucleic Acids Research. 2016. V. 44. Iss. W1. P. W232-W235. DOI:10.1093/nar/gkw256; Tedersoo L., Harend H., Buegger F., Pritsch K., Saar I., Kõljalg U. Stable isotope analysis, field observations and synthesis experiments suggest that Odontia is a nonmycorrhizal sister genus of Tomentella and Thelephora // Fungal Ecology. 2014. V. 11. P. 80-90. DOI:10.1016/j.funeco.2014.04.006; Martini E. Odontia duemmeri (Wakef.) Kõljalg // Excerpts from Crusts & Jells. Iss. 123. P. 1-8.; Змитрович И.В., Столярская М.В., Калиновская Н.И., Попов Е.С., Мясников А.Г., Морозова О.В., Волобуев С.В., Большаков С.Ю., Светашева Т.Ю., Бондарцева М.А., Коваленко А.Е. Макромицеты Нижне-Свирского заповедника (аннотированный список видов) / Под ред. М. В. Столярской. СПб.: ООО «Свое издательство», 2015. 185 c.; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2025

الاتاحة: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2025
https://doi.org/10.18470/1992-1098-2020-3-165-173

المؤلفون: Воробьева, М.М.

مصطلحات موضوعية: ДНК-штрихкодирование и депонирование

وصف الملف: application/pdf

Relation: Воробьева, М.М. Оценка зависимости уровня генетической изменчивости чужеродных инвазивных видов полужесткокрылых от перечня кормовых растений и географической приуроченности / М.М. Воробьева // Молодежь в науке - 2023 : тезисы докладов XХ Международной научной конференции молодых ученых, Минск, 20-22 сентября 2023 г.: аграрные, биологические, гуманитарные науки и искусства, медицинские, физико-математические, физико-технические, химия и науки о Земле / Национальная академия наук Беларуси, Совет молодых ученых; редкол.: В. Г. Гусаков (гл. ред.) [и др.]. - Минск : Беларуская навука, 2023. - С. 119-122.; https://rep.polessu.by/handle/123456789/29495

الاتاحة: https://rep.polessu.by/handle/123456789/29495

مصطلحات موضوعية: entomological survey, энтомологические исследования, Крымский полуостров, visceral leishmaniasis, ДНК-штрихкодирование, Crimean Peninsula, DNA barcoding, sandfly fevers, москитные лихорадки, sand flys, висцеральный лейшманиоз, москиты

URL الوصول: https://explore.openaire.eu/search/publication?articleId=doi_________::61c6b449d94313c05819b8a049a9cdd3

المؤلفون: Prokofiev, Artem M., Balanov, Andrei A., Emelianova, Olga R., Orlov, Alexei M., Orlova, Svetlana Yu.

المصدر: Diversity. 2022. Vol. 14, № 11. P. 972 (1-13)

مصطلحات موضوعية: глубоководные рыбы, подводные хребты, таксономия, ДНК-штрихкодирование, Тихий океан, лучеперые рыбы, костистые рыбы, бельдюговые

Relation: koha:001015836; https://vital.lib.tsu.ru/vital/access/manager/Repository/koha:001015836

الاتاحة: https://doi.org/10.3390/d14110972
https://vital.lib.tsu.ru/vital/access/manager/Repository/koha:001015836

المؤلفون: Prozorov, Alexey M., Prozorova, Tatiana A., Volkova, Julia S., Yakovlev, Roman V., Nedoshivina, Svetlana V., Pinzari, Manuela, Pinzari, Mario, Scalercio, Stefano, Bianco, Giovanni, Saldaitis, Aidas, Hausmann, Axel, Revay, Edita E., Müller, Günter C.

المصدر: Zootaxa. 2022. Vol. 5195, № 4. P. 337-360

مصطلحات موضوعية: ДНК-штрихкодирование, Палеарктика, осенний шелкопряд одуванчиковый, Италия, бабочки, брамеи

Relation: koha:001015945; https://vital.lib.tsu.ru/vital/access/manager/Repository/koha:001015945

الاتاحة: https://doi.org/10.11646/zootaxa.5195.4.2
https://vital.lib.tsu.ru/vital/access/manager/Repository/koha:001015945

المؤلفون: S. V. Shekhovtsov, N. E. Bazarova, D. I. Berman, N. A. Bulakhova, E. V. Golovanova, S. V. Konyaev, T. M. Krugova, I. I. Lyubechanskii, S. E. Peltek, С. В. Шеховцов, Н. Э. Базарова, Д. И. Берман, Н. А. Булахова, Е. В. Голованова, С. В. Коняев, Т. М. Кругова, И. И. Любечанский, С. Е. Пельтек

المساهمون: бюджетный проект VI.58.1.3, Государственным заданием 6.1957.2014/К и грант Президента Российской Федерации MK-6685.2015.4, Т.С.Всеволодова-Перель

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 20, № 1 (2016); 125-130 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 20, № 1 (2016); 125-130 ; 2500-3259

مصطلحات موضوعية: цитохром оксидаза 1, Lumbricidae, West Siberia, DNA barcoding, cox1, cytochrome oxidase, Западная Сибирь, ДНК-штрихкодирование

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/471/758; Всеволодова-Перель Т.С. Дождевые черви России: кадастр и определитель: М.: Наука, 1997.; Стриганова Б.Р., Порядина Н.М. Животное население почв бореальных лесов Западно-Сибирской Равнины: М.: КМК; 2005.; Birky C.W. Jr., Adams J., Gemmel M., Perry J. Using population genetic theory and DNA sequences for species detection and identification in asexual organisms. PLoS One. 2010; 5(5):10609. DOI:10.1371/journal.pone.0010609; Bienert F., De Danieli S., Miquel C., Coissac E., Poillot C., Brun J-J. Tracking earthworm communities from soil DNA. Molecular Ecology. 2012;21(8):2017-30. DOI:10.1111/j.1365-294X.2011.05407.x; Buckley T.R., James S., Allwood J., Bartlam S., Howitt R., Prada D. Phylogenetic analysis of New Zealand earthworms (Oligochaeta: Megascolecidae) reveals ancient clades and cryptic taxonomic diversity. Molecular Phylogenetics and Evolution. 2011; 58:e85–96. DOI:10.1016/j.ympev.2010.09.024; Chang C.-H., James S. A critique of earthworm molecular phylogenetics. Pedobiologia. 2011;54:S3-S9. DOI:10.1016/j.pedobi.2011.07.015; Decaëns T., Porco D., Rougerie R., Brown G.G., James S.W. Potential of DNA barcoding for earthworm research in taxonomy and ecology. Applied Soil Ecology. 2013; 65:35-42. http://dx.doi.org/10.1016/j.apsoil.2013.01.001; Fernández R., Almodóvar A., Novo M., Simancas B., Díaz Cosín D.J. Adding complexity to the complex: New insights into the phylogeny, diversification and origin of parthenogenesis in the Aporrectodea caliginosa species complex (Oligochaeta, Lumbricidae). Mol. Phylogen. and Evol. 2012; 64(2):368-79. http://dx.doi.org/10.1016/j.ympev.2012.04.011; Giska I., Sechi P., Babik W. Deeply divergent sympatric mitochondrial lineages of the earthworm Lumbricus rubellus are not reproductively isolated. BMC Evolutionary Biology. 2015;15:217. Barcoding animal life: cytochrome c oxidase subunit 1 divergences among closely related species. DOI 10.1186/s12862-015-0488-9; Hebert P.D.N., Ratnasingham S., deWaard J.R. Barcoding animal life: cytochrome c oxidase subunit 1 divergences among closely related species. 2003; 270:96-9. DOI 10.1098/rsbl.2003.0025; Hendrix P.F., Callaham M.A., Drake J.M., Huang C.-Y., James S.W., Snyder B.A. et al. Pandora’s Box Contained Bait: The Global Problem of Introduced Earthworms. Annual Reviews of Ecology, Evolution and Systematics. 2008;39:593-613. 10.1146/annurev.ecolsys.39.110707.173426; James S.W., Davidson S.K. Molecular phylogeny of earthworms (Annelida : Crassiclitellata) based on 28S, 18S and 16S gene sequences. Invertebrate Systematics. 2012; 26:213–29. http://dx.doi.org/10.1071/IS11012; King R.A., Tibble A.L., Symondson W.O.C. Opening a can of worms: unprecedented sympatric cryptic diversity within British lumbricid earthworms. Molecular Ecology. 2008; 17(21):4684-98. DOI:10.1111/j.1365-294X.2008.03931.x; Pérez-Losada M., Bloch R., Breinholt J.W., Pfenninger M., Domínguez J. Taxonomic assessment of Lumbricidae (Oligochaeta) earthworm genera using DNA barcodes. European Journal of Soil Biology. 2012;48:41-7. DOI:10.1016/j.ejsobi.2011.10.003; Pop A.A., Cech G., Wink M., Csuzdi C., Pop V.V. Application of 16S, 8S rDNA and COI sequences in the molecular systematics of the earthworm family Lumbricidae (Annelida, Oligochaeta). European Journal of Soil Biology. 2007;43:S43-S52. DOI:10.1016/j.ejsobi.2007.08.007; Porco D., Decaens T., Deharveng L., James S.W., Skarzynski D., Erséus C. et al. Biological invasions in soil: DNA barcoding as a monitoring tool in a multiple taxa survey targeting European earthworms and springtails in North America. Biological Invasions. 2013;15:899-910. DOI 10.1007/s10530-012-0338-2; Richard B., Decaëns T., Rougerie R., James S.W., Porco D., Hebert PDN. Re-integrating earthworm juveniles into soil biodiversity studies: species identification through DNA barcoding. Molecular Ecology Resources. 2010;10(4):606-14. DOI:10.1111/j.1755-0998.2009.02822.x; Shekhovtsov S.V., Golovanova E.V., Peltek S.E. Cryptic diversity within the Nordenskiold’s earthworm, Eisenia nordenskioldi subsp. nordenskioldi (Lumbricidae, Annelida). European Journal of Soil Biology. 2013;58:13-8. DOI:10.1016/j.ejsobi.2013.05.004; Shekhovtsov S.V., Golovanova E.V., Peltek S.E. Genetic diversity of the earthworm Octolasion tyrtaeum (Lumbricidae,Annelida). Pedobiologia. 2014a;57:245-50. http://dx.doi.org/10.1016/j.pedobi.2014.09.002; Shekhovtsov S.V., Golovanova E.V., Peltek S.E. Invasive lumbricid earthworms of Kamchatka (Oligochaeta). Zoological Studies. 2014b;53:52. DOI:10.1186/s40555-014-0052-0; Shekhovtsov S.V., Berman D.I., Peltek S.E. Phylogeography of the Earthworm Eisenia nordenskioldi nordenskioldi (Lumbricidae, Oligochaeta) in Northeastern Eurasia. Doklady Biological Sciences. 2015;461:1-4. DOI:10.1134/S0012496615020039; Tamura K., Peterson D., Peterson N., Stecher G., Nei M., Kumar S. MEGA5: Molecular Evolutionary Genetics Analysis using Maximum Likelihood, Evolutionary Distance, and Maximum Parsimony Methods. Molecular Biology and Evolution. 2011;28:2731-9. DOI:10.1093/molbev/msr121; Waugh J. DNA barcoding in animal species: progress, potential and pitfalls. BioEssays. 2007;29:188–97. DOI:10.1002/bies.20529 Available at http:// http://www.ncbi.nlm.nih.gov Available at http://www.boldsystems.org; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/471

الاتاحة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/471
https://doi.org/10.18699/VJ15.110

المؤلفون: Olga Valuyskikh, Dmitry Shadrin

المصدر: Turczaninowia; Том 24 № 4 (2021): Turczaninowia; 12-22
Turczaninowia; Vol 24 No 4 (2021): Turczaninowia; 12-22

مصطلحات موضوعية: Ecology, Phlojodicarpus, вздутоплодник, гербарные коллекции, Республика Коми, herbarium collections, Plant Science, Ural, Red Data Book, plant genetic diversity, Урал, генетическое разнообразие растений, DNA barcoding, ДНК-штрихкодирование, Красная книга, ITS, Komi Republic, Ecology, Evolution, Behavior and Systematics

وصف الملف: application/pdf

URL الوصول: https://explore.openaire.eu/search/publication?articleId=doi_dedup___::5d15b84cb67bf69506b12da83c95bd15
http://turczaninowia.asu.ru/article/view/10767

المؤلفون: Чикурова, А. Д., Валуйских, О. Е., Шадрин, Д. М.

مصطلحات موضوعية: PHLOJODICARPUS VILLOSUS, ДНК-ШТРИХКОДИРОВАНИЕ, КРАСНАЯ КНИГА, ОХРАНА РАСТЕНИЙ

وصف الملف: application/pdf

Relation: Современные методы и подходы в защите растений. — Екатеринбург, 2020; Чикурова А. Д. Идентификация Phlojodicarpus villosus (Apiaceae) на основе анализа нуклеотидных последовательностей ITS2 и trnH-psbA / А. Д. Чикурова, О. Е. Валуйских, Д. М. Шадрин // Современные методы и подходы в защите растений : материалы II международной научной конференции (Екатеринбург, 16–18 ноября 2020 г.). — Екатеринбург : Издательство АМБ, 2020. — С. 258-259.; http://elar.urfu.ru/handle/10995/96486

الاتاحة: http://elar.urfu.ru/handle/10995/96486

المؤلفون: Коваленко, К. А., Валуйских, О. Е., Шадрин, Д. М.

مصطلحات موضوعية: PARRYA NUDICAULIS, ITS2, ДНК-ШТРИХКОДИРОВАНИЕ

وصف الملف: application/pdf

Relation: Современные методы и подходы в защите растений. — Екатеринбург, 2020; Коваленко К. А. Генетическая идентификация охраняемого в Республике Коми вида Parrya nudicaulis (L.) Boiss. с использованием последовательности ITS2 / К. А. Коваленко, О. Е. Валуйских, Д. М. Шадрин // Современные методы и подходы в защите растений : материалы II международной научной конференции (Екатеринбург, 16–18 ноября 2020 г.). — Екатеринбург : Издательство АМБ, 2020. — С. 248-249.; http://elar.urfu.ru/handle/10995/96480

الاتاحة: http://elar.urfu.ru/handle/10995/96480

المؤلفون: Воробьёва, М.М., Пошелюк, А.Д.

مصطلحات موضوعية: ДНК-штрихкодирование, ДНК-паспортизация, ДНК-баркодинг

وصف الملف: application/pdf

Relation: Воробьёва, М.М. ДНК-паспортизация некоторых редких видов растений фауны Беларуси / М.М. Воробьёва, А.Д. Пошелюк // Биотехнология: достижения и перспективы развития: сборник материалов V международной научно–практической конференции, Пинск, 25–26 ноября 2021 г. / Министерство образования Республики Беларусь [и др.]; редкол.: В.И. Дунай [и др.]. – Пинск : ПолесГУ, 2021. – С. 4-8.; https://rep.polessu.by/handle/123456789/23679

الاتاحة: https://rep.polessu.by/handle/123456789/23679