المؤلفون: D. S. Rogozin, Д. С. Рогозин

المساهمون: The study was not sponsored, Исследование не имело спонсорской поддержки

المصدر: Urology Herald; Том 11, № 2 (2023); 235-242 ; Вестник урологии; Том 11, № 2 (2023); 235-242 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2023-11-2

مصطلحات موضوعية: необструктивная азооспермия, DNA fragmentation, spermatozoa, ICSI, sperm retrieval, micro-TESE, male infertility, non-obstructive azoospermia, ДНК-фрагментация сперматозоидов, ИКСИ, микро-TESE, мужское бесплодие

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/738/484; Гамидов С.И., Шатылко Т.В., Тамбиев А.Х., Токарева А.О., Чаговец В.В., Бицоев Тб., Стародубцева Н.Л., Попова А.Ю., Франкевич В.Е. Возможности липидомного анализа семенной плазмы в прогнозировании успеха microTESE у мужчин с азооспермией. Урология. 2022;(4):32–7. DOI:10.18565/urology.2022.4.32-37; Paffoni A, Somigliana E, Boeri L, Viganò P. The statistical foundation of the reference population for semen analysis included in the sixth edition of the WHO manual: a critical reappraisal of the evidence. Hum Reprod. 2022;37(10):2237-2245. DOI:10.1093/humrep/deac161; Henkel R, Morris A, Vogiatzi P, Saleh R, Sallam H, Boitrelle F, Garrido N, Arafa M, Gül M, Rambhatla A, Maldonado Rosas I, Agarwal A, Leisegang K, Siebert TI. Predictive value of seminal oxidation-reduction potential analysis for reproductive outcomes of ICSI. Reprod Biomed Online. 2022;45(5):1007-1020. DOI:10.1016/j.rbmo.2022.05.010; Hervás I, Pacheco A, Gil Julia M, Rivera-Egea R, Navarro-Gomezlechon A, Garrido N. Sperm deoxyribonucleic acid fragmentation (by terminal deoxynucleotidyl transferase biotin dUTP nick end labeling assay) does not impair reproductive success measured as cumulative live birth rates per donor metaphase II oocyte used. Fertil Steril. 2022;118(1):79-89. DOI:10.1016/j.fertnstert.2022.04.002; Dai C, Shan G, Jahangiri S, Chen W, Gholamhoseini B, Zhang Z, Moskovtsev S, Librach C, Jarvi K, Sun Y. Staining-free, Automated Sperm Analysis for In Vitro Fertilization Lab Use. J Urol. 2022;208(6):1303-1312. DOI:10.1097/JU.0000000000002903; Liu K, Meng T, Chen Q, Hou G, Wang X, Hu S, Gu X, Li H, Li Y, Xiong C, Cao J. Diurnal rhythm of human semen quality: analysis of large-scale human sperm bank data and timing-controlled laboratory study. Hum Reprod. 2022;37(8):1727-1738. DOI:10.1093/humrep/deac135; Elhakeem A, Taylor AE, Inskip HM, Huang J, Tafflet M, Vinther JL, Asta F, Erkamp JS, Gagliardi L, Guerlich K, Halliday J, Harskamp-van Ginkel MW, He JR, Jaddoe VWV, Lewis S, Maher GM, Manios Y, Mansell T, McCarthy FP, McDonald SW, Medda E, Nisticò L, de Moira AP, Popovic M, Reiss IKM, Rodrigues C, Salika T, Smith A, Stazi MA, Walker C, Wu M, Åsvold BO, Barros H, Brescianini S, Burgner D, Chan JKY, Charles MA, Eriksson JG, Gaillard R, Grote V, Håberg SE, Heude B, Koletzko B, Morton S, Moschonis G, Murray D, O'Mahony D, Porta D, Qiu X, Richiardi L, Rusconi F, Saffery R, Tough SC, Vrijkotte TGM, Nelson SM, Nybo Andersen AM, Magnus MC, Lawlor DA; Assisted Reproductive Technology and Future Health (ART-Health) Cohort Collaboration. Association of Assisted Reproductive Technology With Offspring Growth and Adiposity From Infancy to Early Adulthood. JAMA Netw Open. 2022;5(7):e2222106. DOI:10.1001/jamanetworkopen.2022.22106; Lotti F, Frizza F, Balercia G, Barbonetti A, Behre HM, Calogero AE, Cremers JF, Francavilla F, Isidori AM, Kliesch S, La Vignera S, Lenzi A, Marcou M, Pilatz A, Poolamets O, Punab M, Godoy MFP, Quintian C, Rajmil O, Salvio G, Shaeer O, Weidner W, Maseroli E, Cipriani S, Baldi E, Degl'Innocenti S, Danza G, Caldini AL, Terreni A, Boni L, Krausz C, Maggi M. The European Academy of Andrology (EAA) ultrasound study on healthy, fertile men: An overview on male genital tract ultrasound reference ranges. Andrology. 2022;10 Suppl 2(Suppl 2):118-132. DOI:10.1111/andr.13260; Panner Selvam MK, Baskaran S, O'Connell S, Almajed W, Hellstrom WJG, Sikka SC. Association between Seminal Oxidation-Reduction Potential and Sperm DNA Fragmentation-A Meta-Analysis. Antioxidants (Basel). 2022;11(8):1563. DOI:10.3390/antiox11081563; Jensen CFS, Ohl DA, Fode M, Jørgensen N, Giwercman A, Bruun NH, Elenkov A, Klajnbard A, Andersen CY, Aksglaede L, Grøndahl ML, Bekker MC, Sønksen J. Microdissection Testicular Sperm Extraction Versus Multiple Needle-pass Percutaneous Testicular Sperm Aspiration in Men with Nonobstructive Azoospermia: A Randomized Clinical Trial. Eur Urol. 2022;82(4):377-384. DOI:10.1016/j.eururo.2022.04.030; https://www.urovest.ru/jour/article/view/738

الاتاحة: https://www.urovest.ru/jour/article/view/738
https://doi.org/10.21886/2308-6424-2023-11-2-235-242

المؤلفون: D. S. Rogozin, Д. С. Рогозин

المصدر: Urology Herald; Том 10, № 4 (2022); 201-210 ; Вестник урологии; Том 10, № 4 (2022); 201-210 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2022-10-4

مصطلحات موضوعية: невынашивание беременности, assisted reproductive technologies, DNA fragmentation, spermatozoa, ICSI, male infertility, miscarriage, ДНК-фрагментация сперматозоидов, ИКСИ, ингибиторы ароматазы, мужское бесплодие

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/613/422; Chiu Y-H, Yland JJ, Rinaudo P, Hsu J, McGrath S, Hernández-Díaz S, et al. Effectiveness and safety of intrauterine insemination vs. assisted reproductive technology: emulating a target trial using an observational database of administrative claims. Fertil Steril. 2022;117(5):981–91. doi:10.1016/j.fertnstert.2022.02.003; Gamidov S, Shatylko T, Popova A, Gasanov N, Sukhikh G. Azoospermic men with isolated elevation of follicle-stimulating hormone represent a specific subpopulation of patients with poor reproductive outcomes. Clin Exp Reprod Med. 2022;49(1):62–9. doi:10.5653/cerm.2021.04623; Quinn MM, Ribeiro S, Juarez-Hernandez F, Simbulan RK, Jalalian L, Cedars MI, et al. Microfluidic preparation of spermatozoa for ICSI produces similar embryo quality to density-gradient centrifugation: a pragmatic, randomized controlled trial. Hum Reprod. 2022;37(7):1406–13. doi:10.1093/humrep/deac099; West R, Coomarasamy A, Frew L, Hutton R, Kirkman-Brown J, Lawlor M, et al. Sperm selection with hyaluronic acid improved live birth outcomes among older couples and was connected to sperm DNA quality, potentially affecting all treatment outcomes. Hum Reprod. 2022;37(6):1106–25. doi:10.1093/humrep/deac058; Ghieh F, Barbotin AL, Swierkowski-Blanchard N, Leroy C, Fortemps J, Gerault C, et al. Whole-exome sequencing in patients with maturation arrest: a potential additional diagnostic tool for prevention of recurrent negative testicular sperm extraction outcomes. Hum Reprod. 2022;37(6):1334–50. doi:10.1093/humrep/deac057; Reschini M, Pagliardini L, Boeri L, Piazzini F, Bandini V, Fornelli G, et al. COVID-19 Vaccination Does Not Affect Reproductive Health Parameters in Men. Front Public Heal. 2022;10. doi:10.3389/fpubh.2022.839967; Li K, Yang X, Wu T. The Effect of Antioxidants on Sperm Quality Parameters and Pregnancy Rates for Idiopathic Male Infertility: A Network Meta-Analysis of Randomized Controlled Trials. Front Endocrinol (Lausanne). 2022;13. doi:10.3389/fendo.2022.810242; Zhang Z, Dai C, Shan G, Chen X, Liu H, Abdalla K, et al. Quantitative selection of single human sperm with high DNA integrity for intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril. 2021;116(5):1308–18. doi:10.1016/j.fertnstert.2021.06.016; Wensink MJ, Lu Y, Tian L, Shaw GM, Rizzi S, Jensen TK, et al. Preconception Antidiabetic Drugs in Men and Birth Defects in Offspring. Ann Intern Med. 2022;175(5):665–73. doi:10.7326/M21-4389; Tharakan T, Corona G, Foran D, Salonia A, Sofikitis N, Giwercman A, et al. Does hormonal therapy improve sperm retrieval rates in men with non-obstructive azoospermia: a systematic review and meta-analysis. Hum Reprod Update. 2022;28(5):609–28. doi:10.1093/humupd/dmac016; https://www.urovest.ru/jour/article/view/613

الاتاحة: https://www.urovest.ru/jour/article/view/613
https://doi.org/10.21886/2308-6424-2022-10-4-201-210

المؤلفون: D. S. Rogozin, Д. С. Рогозин

المصدر: Urology Herald; Том 9, № 4 (2021); 147-155 ; Вестник урологии; Том 9, № 4 (2021); 147-155 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2021-9-4

مصطلحات موضوعية: COVID-19, artificial intelligence, assisted reproductive technologies, AZF factor, DNA fragmentation of sperm, ICSI, male infertility, nonobstructive azoospermia, varicocele, вспомогательные репродуктивные технологии, ДНК-фрагментация сперматозоидов, ИКСИ, искусственный интеллект, мужское бесплодие, необструктивная азооспермия, старший отцовский возраст, AZF-фактор

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/496/350; Рогозин Д. С., Миронов В. Н., Сергийко С. В., Рогозина А. А., Площанская О. Г. Патофизиологические и генетические аспекты бесплодия у мужчин старшей возрастной группы. Проблемы репродукции. 2020;26(3):76-84. DOI:10.17116/repro20202603176; Setti AS, Braga DPAF, Provenza RR, Iaconelli A Jr, Borges E Jr. Oocyte ability to repair sperm DNA fragmentation: the impact of maternal age on intracytoplasmic sperm injection outcomes. Fertil Steril. 2021;116(1):123-129. DOI:10.1016/j.fertnstert.2020.10.045.; Zhang L, Mao JM, Li M, Lian Y, Lin SL, Chen LX, Yan LY, Qiao J, Liu P. Poor intracytoplasmic sperm injection outcome in infertile males with azoospermia factor c microdeletions. Fertil Steril. 2021;116(1):96-104. DOI:10.1016/j.fertnstert.2021.01.025.; Рогозин Д. С., Миронов В. Н., Сергийко С. В., Рогозина А. А., Площанская О. Г. Клиническое значение “старшего отцовского возраста” в контексте мужского бесплодия и вспомогательных репродуктивных технологий. Экспериментальная и клиническая урология. 2019;11(4):60-6. DOI:10.29188/2222-8543-2019-11-4-60-66; McCarter K, Setton R, Chung A, An A, Rosenwaks Z, Spandorfer S. Is increasing paternal age negatively associated with donor oocyte recipient success? A paired analysis using sibling oocytes. Fertil Steril. 2021;116(2):373-379. DOI:10.1016/j.fertnstert.2021.03.037.; Riegler MA, Stensen MH, Witczak O, Andersen JM, Hicks SA, Hammer HL, Delbarre E, Halvorsen P, Yazidi A, Holst N, Haugen TB. Artificial intelligence in the fertility clinic: status, pitfalls and possibilities. Hum Reprod. 2021;36(9):2429-2442. DOI:10.1093/humrep/deab168.; Keihani S, Verrilli LE, Zhang C, Presson AP, Hanson HA, Pastuszak AW, Johnstone EB, Hotaling JM. Semen parameter thresholds and time-to-conception in subfertile couples: how high is high enough? Hum Reprod. 2021;36(8):2121-2133. DOI:10.1093/humrep/deab133.; Рогозин Д. С. Мужская фертильность: обзор литературы июля — сентября 2020 года. Вестник урологии. 2020;8(4):122-128. DOI; 10.21886/2308-6424-2020-84-122-128; Ignatieva EV, Osadchuk AV, Kleshchev MA, Bogomolov AG, Osadchuk LV. A Catalog of Human Genes Associated With Pathozoospermia and Functional Characteristics of These Genes. Front Genet. 2021;12:662770. DOI:10.3389/fgene.2021.662770.; Krenz H, Gromoll J, Darde T, Chalmel F, Dugas M, Tut-telmann F. The Male Fertility Gene Atlas: a web tool for collecting and integrating OMICS data in the context of male infertility. Hum Reprod. 2020;35 (9):1983-1990. DOI:10.1093/humrep/deaa155.; Гамидов С. И., Овчинников Р. И., Попова А. Ю., Хагапсоева Р. А., Ижбаев С. К. Современный подход к терапии мужского бесплодия у больных с варикоцеле. Терапевтический архив. 2012;84(10):56-61. eLIBRARY ID: 18515727; Salonia A., Bettocchi C., Carvalho J. Sexual and Reproductive Health. EAU Guidelines on Sexual and Reproductive Health presented at the EAU Annual Congress Amsterdam; 2020. EAU Guidelines Office. Place published: Arnhem, The Netherlands. 2020.; Коршунов М. Н., Коршунова Е. С., Даренков С. П. Прогностическая ценность показателя ДНК-фрагментации сперматозоидов в успехе программ вспомогательных репродуктивных технологий. Эмпирическая антиоксидантная терапия в коррекции ДНК-фрагментации на фоне патологического окислительного стресса эякулята. Экспериментальная и клиническая урология. 2017;(3):70-7. eLIBRARY ID: 30556997; Lira Neto FT, Roque M, Esteves SC. Effect of varicocelectomy on sperm deoxyribonucleic acid fragmentation rates in infertile men with clinical varicocele: a systematic review and meta-analysis. Fertil Steril. 2021;116(3):696-712. DOI:10.1016/j.fertnstert.2021.04.003.; Рогозин Д. С. Мужская фертильность: обзор литературы января — марта 2020 года. Вестник урологии. 2020;8(2):93-8. DOI:10.21886/2308-6424-2020-8-2-93-98; Gonzalez DC, Nassau DE, Khodamoradi K, Ibrahim E, Blachman-Braun R, Ory J, Ramasamy R. Sperm Parameters Before and After COVID-19 mRNA Vaccination. JAMA. 2021;326(3):273-274. DOI:10.1001/jama.2021.9976.; Драпкина Ю. С., Долгушина Н. В., Шатылко Т. В., Николаева М. А., Менжинская И. В., Иванец Т. Ю., Кречетова Л. В., Красный А. М., Гамидов С. И., Байрамова Г. Р., Сухих Г. Т. Вакцина Гам-КОВИД-Вак (Спутник V) не оказывает негативного влияния на сперматогенез у мужчин. Акушерство и гинекология. 2021;(7):88-94. DOI:10.18565/aig.2021.7.88-94; WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. Sixth Edition. Geneva: World Health Organization; 2021.; https://www.urovest.ru/jour/article/view/496

الاتاحة: https://www.urovest.ru/jour/article/view/496
https://doi.org/10.21886/2308-6424-2021-9-4-147-155

المؤلفون: M. N. Korshunov, E. S. Korshunova, P. S. Kyzlasov, D. M. Korshunov, S. P. Darenkov, М. Н. Коршунов, Е. С. Коршунова, П. С. Кызласов, Д. М. Коршунов, С. П. Даренков

المصدر: Urology Herald; Том 9, № 1 (2021); 95-104 ; Вестник урологии; Том 9, № 1 (2021); 95-104 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2021-9-1

مصطلحات موضوعية: невынашивание беременности, sperm DNA fragmentation, review, male infertility, varicocele, oxidative stress, reactive oxygen species, assisted reproductive technique, pregnancy loss, ДНК-фрагментация сперматозоидов, обзор литературы, мужское бесплодие, варикоцеле, окислительный стресс, реактивные формы кислорода, вспомогательные репродуктивные технологии

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/419/306; Agarwal A, Mulgund A, Hamada A, Chyatte MR. A unique view on male infertility around the globe. Reprod Biol Endocrinol. 2015;13:37. DOI:10.1186/s12958-015-0032-1; Лебедев Г.С., Голубев Н.А., Шадеркин И.А., Шадеркина В.А., Аполихин О.И., Сивков А.В., Комарова В.А. Мужское бесплодие в Российской Федерации: статистические данные за 2000-2018 годы. Экспериментальная и клиническая урология. 2019;4:4-12. DOI:10.29188/2222-8543-2019-11-4-4-12; Inhorn MC, Patrizio P. Infertility around the globe: new thinking on gender, reproductive technologies and global movements in the 21st century. Hum Reprod Update. 2015;21(4):411-26. DOI:10.1093/humupd/dmv016; Wang C, Swerdloff RS. Limitations of semen analysis as a test of male fertility and anticipated needs from newer tests. FertilSteril. 2014;102(6):1502-7. DOI:10.1016/j.fertn-stert.2014.10.021; Айткожина Л.К., Кудайбергенов Т.К., Бикташева Х.М., Бекзатова К.А. ДНК фрагментация сперматозоидов как один из клинических инструментов изучения идиопатического бесплодия. Обзор литературы. Евразийское научное объединение. 2019;48(2-2):93-96. eLIBRARY ID: 37134939; Santi D, Spaggiari G, Simoni M. Sperm DNA fragmentation index as a promising predictive tool for male infertility diagnosis and treatment management - meta-analyses. Re-prod Biomed Online. 2018;37(3):315-326. DOI:10.1016/j.rbmo.2018.06.023; Sakkas D, Alvarez JG. Sperm DNA fragmentation: mechanisms of origin, impact on reproductive outcome, and analysis. Fertil Steril. 2010;93(4):1027-36. DOI:10.1016/j.fertnstert.2009.10.046; Simon L, Zini A, Dyachenko A, Ciampi A, Carrell DT. A systematic review and meta-analysis to determine the effect of sperm DNA damage on in vitro fertilization and intracytoplasmic sperm injection outcome. Asian J Androl. 2017;19(1):80-90. DOI:10.4103/1008-682X.182822; Khadem N, Poorhoseyni A, Jalali M, Akbary A, Heydari ST. Sperm DNA fragmentation in couples with unexplained recurrent spontaneous abortions. Andrologia. 2014;46(2):126-30. DOI:10.1111/and.12056; Pollister AW, Mirsky AE. The nucleoprotamine of trout sperm. J Gen Physiol. 1946;30(2):101-16. DOI:10.1085/jgp.30.2.101; Watson JD, Crick FH. The structure of DNA. Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 1953;18:123-31. DOI:10.1101/sqb.1953.018.01.020; Leuchtenberger C, Schrader F, Weir DR, Gentile DP. The des-oxyribosenucleic acid (DNA) content in spermatozoa of fertile and infertile human males. Chromosoma. 1953;6(1):61-78. DOI:10.1007/BF01259931; Alfert M. Chemical differentiation of nuclear proteins during spermatogenesis in the salmon. J Biophys Biochem Cytol. 1956;2(2):109-14. DOI:10.1083/jcb.2.2.109; Sterzik K, Rosenbusch B, Sasse V, Wild E, Hutter W, Wolf A. Der Acridin-Orange-Test. Ein neuer Parameter zur Beur-teilung der Befruchtungsfahigkeit von Spermatozoen [The acridine orange test. A new parameter in assessing the fertilizing capacity of spermatozoa]. Zentralbl Gynakol. 1989;111(20):1361-7. (In German) PMID: 2588865; Hamidi J, Frainais C, Amar E, Bailly E, Clement P, Menezo Y. A double-blinded comparison of in situ TUNEL and aniline blue versus flow cytometry acridine orange for the determination of sperm DNA fragmentation and nucleus decondensation state index. Zygote. 2015;23(4):556-62. DOI:10.1017/S0967199414000288; Evenson DP. The Sperm Chromatin Structure Assay (SCSA(®)) and other sperm DNA fragmentation tests for evaluation of sperm nuclear DNA integrity as related to fertility. Anim Reprod Sci. 2016;169:56-75. DOI:10.1016/j.anirepro-sci.2016.01.017; Hughes CM, Lewis SE, McKelvey-Martin VJ, Thompson W. A comparison of baseline and induced DNA damage in human spermatozoa from fertile and infertile men, using a modified comet assay. Mol Hum Reprod. 1996;2(8):613-9. DOI:10.1093/molehr/2.8.613; Sharma R, Ahmad G, Esteves SC, Agarwal A. Terminal de-oxynucleotidyl transferase dUTP nick end labeling (TUNEL) assay using bench top flow cytometer for evaluation of sperm DNA fragmentation in fertility laboratories: protocol, reference values, and quality control. J Assist Reprod Genet. 2016;33(2):291-300. DOI:10.1007/s10815-015-0635-7; Fernandez JL, Muriel L, Rivero MT, Goyanes V, Vazquez R, Alvarez JG. The sperm chromatin dispersion test: a simple method for the determination of sperm DNA fragmentation. J Androl. 2003;24(1):59-66. PMID: 12514084; Fernandez JL, Muriel L, Goyanes V, Segrelles E, Gosalvez J, Enciso M, LaFromboise M, De Jonge C. Simple determination of human sperm DNA fragmentation with an improved sperm chromatin dispersion test. Fertil Steril. 2005;84(4):833-42. DOI:10.1016/j.fertnstert.2004.11.089; Li Z, Yang J, Huang H. Oxidative stress induces H2AX phosphorylation in human spermatozoa. FEBS Lett. 2006;580(26):6161-8. DOI:10.1016/j.febslet.2006.10.016; Enciso M, Pieczenik G, Cohen J, Wells D. Development of a novel synthetic oligopeptide for the detection of DNA damage in human spermatozoa. Hum Reprod. 2012;27(8):2254-66. DOI:10.1093/humrep/des201; Raimondo S, Gentile T, Cuomo F, De Filippo S, Aprea GE, Guida J. Quantitative evaluation of p53 as a new indicator of DNA damage in human spermatozoa. J Hum Reprod Sci. 2014;7(3):212-7. DOI:10.4103/0974-1208.142490; Брагина Е.Е., Арифулин Е.А., Хафизова П.О., Харчилава Р.Р. Структура хроматина сперматозоидов человека и фрагментация ДНК в норме и при нарушениях фертильности. Врач. 2013;(2):81-85. eLIBRARY ID: 18891055; Govin J, Caron C, Lestrat C, Rousseaux S, Khochbin S. The role of histones in chromatin remodelling during mammalian spermiogenesis. Eur J Biochem. 2004;271(17):3459-69. DOI:10.1111/j.1432-1033.2004.04266.x; Castillo J, Estanyol JM, Ballesca JL, Oliva R. Human sperm chromatin epigenetic potential: genomics, proteomics, and male infertility. Asian J Androl. 2015;17(4):601-9. DOI:10.4103/1008-682X.153302; Agarwal A, Cho CL, Majzoub A, Esteves SC. The Society for Translational Medicine: clinical practice guidelines for sperm DNA fragmentation testing in male infertility. Transl Androl Urol. 2017;6(Suppl 4):S720-S733. DOI:10.21037/tau.2017.08.06; Bianchi PG, Manicardi GC, Urner F, Campana A, Sakkas D. Chromatin packaging and morphology in ejaculated human spermatozoa: evidence of hidden anomalies in normal spermatozoa. Mol Hum Reprod. 1996;2(3):139-44. DOI:10.1093/molehr/2.3.139; Руднева С.А., Брагина Е.Е., Арифулин Е.А. и др. Фрагментация ДНК в сперматозоидах и ее взаимосвязь с нарушением сперматогенеза. Андрология и генитальная хирургия. 2014;15 (4):26-33. DOI:10.17650/2070-9781-2014-4; Gunes S, Al-Sadaan M, Agarwal A. Spermatogenesis, DNA damage and DNA repair mechanisms in male infertility. Reprod Biomed Online. 2015;31(3):309-19. DOI:10.1016/j.rbmo.2015.06.010; Moskovtsev SI, Jarvi K, Mullen JB, Cadesky KI, Hannam T, Lo KC. Testicular spermatozoa have statistically significantly lower DNA damage compared with ejaculated spermatozoa in patients with unsuccessful oral antioxidant treatment. Fertil Steril. 2010;93(4):1142-6. DOI:10.1016/j.fertn-stert.2008.11.005; Zelen I, Mitrovic M, Jurisic-Skevin A, Arsenijevic S. Activity of superoxide dismutase and catalase and content of malondialdehyde in seminal plasma of infertile patients. Med Pregl. 2010;63(9-10):624-9. DOI:10.2298/mpns1010624z; Dorostghoal M, Kazeminejad SR, Shahbazian N, Pourme-hdi M, Jabbari A. Oxidative stress status and sperm DNA fragmentation in fertile and infertile men. Andrologia. 2017;49(10). DOI:10.1111/and.12762; Евдокимов В.В., Жуков О.Б., Кастрикин Ю.В., Байжума-нов А.А., Туровецкий В.Б., Пирутин С.К. Оксидативный стресс и патозооспермия. Андрология и генитальная хирургия. 2017;18(2):24-32. DOI:10.17650/2070-9781-2017-18-2-27-32; Aitken RJ, Jones KT, Robertson SA. Reactive oxygen species and sperm function--in sickness and in health. J Androl. 2012;33(6):1096-106. DOI:10.2164/jandrol.112.016535; Боровец С.Ю., Егорова В.А., Гзгзян А.М., Аль-Шукри С.Х. Фрагментация ДНК сперматозоидов: клиническая значимость, причины, методы оценки и коррекции. Урологические ведомости. 2020;10(2):173-180. DOI:10.17816/uroved102173-180; Roque M, Esteves SC. Effect of varicocele repair on sperm DNA fragmentation: a review. Int Urol Nephrol. 2018;50(4):583-603. DOI:10.1007/s11255-018-1839-4; Paoli D, Pecora G, Pallotti F, Faja F, Pelloni M, Lenzi A, Lombardo F. Cytological and molecular aspects of the ageing sperm. Hum Reprod. 2019;34(2):218-227. DOI:10.1093/humrep/dey357; Рогозин Д.С., Миронов В.Н., Сергийко С.В., Рогозина А.А., Площанская О.Г. Клиническое значение «старшего отцовского возраста» в контексте мужского бесплодия и вспомогательных репродуктивных технологий. Экспериментальная и клиническая урология. 2019;(4):60-66. DOI:10.29188/2222-8543-2019-11-4-60-66; Moskovtsev SI, Willis J, Mullen JB. Age-related decline in sperm deoxyribonucleic acid integrity in patients evaluated for male infertility. Fertil Steril. 2006;85(2):496-9. DOI:10.1016/j.fertnstert.2005.05.075; Agarwal A, Rana M, Qiu E, AlBunni H, Bui AD, Henkel R. Role of oxidative stress, infection and inflammation in male infertility. Andrologia. 2018;50(11):e13126. DOI:10.1111/and.13126; Avendano C, Mata A, Sanchez Sarmiento CA, Doncel GF. Use of laptop computers connected to internet through Wi-Fi decreases human sperm motility and increases sperm DNA fragmentation. Fertil Steril. 2012;97(1):39-45.e2. DOI:10.1016/j.fertnstert.2011.10.012; Коршунов М.Н., Коршунова Е.С. Селективные ингибиторы обратного захвата серотонина и фертильный потенциал мужчины. Психиатрия и урология. На стыке смежных дисциплин. Урологические ведомости. 2016;6(3):19-25. DOI:10.17816/uroved6319-25; Boeri L, Capogrosso P, Ventimiglia E, Pederzoli F, Cazzaniga W, Chierigo F, Pozzi E, Clementi M, Vigano P, Montanari E, Montorsi F, Salonia A. High-risk human papillomavirus in semen is associated with poor sperm progressive motility and a high sperm DNA fragmentation index in infertile men. Hum Reprod. 2019;34(2):209-217. DOI:10.1093/humrep/dey348; Rahiminia T, Hosseini A, Anvari M, Ghasemi-Esmailabad S, Talebi AR. Modern human sperm freezing: Effect on DNA, chromatin and acrosome integrity. Taiwan J Obstet Gynecol. 2017;56(4):472-476. DOI:10.1016/j.tjog.2017.02.004; Коршунов М.Н., Коршунова Е.С., Даренков С.П. Прогностическая ценность показателя ДНК-фрагментации сперматозоидов в успехе программ вспомогательных репродуктивных технологий. Эмпирическая антиоксидантная терапия в коррекции ДНК-фрагментации на фоне патологического окислительного стресса эякулята. Экспериментальная и клиническая урология. 2017;(3):70-7. eLIBRARY ID: 30556997; Гамидов С.И., Овчинников Р.И., Попова А.Ю., Голубева О.Н., Ушакова И.В. Роль мужчины в привычном невынашивании беременности у супруги. Урология. 2016;(1-S1):35-43. eLIBRARY ID: 25849398; Cissen M, Wely MV, Scholten I, Mansell S, Bruin JP, Mol BW, Braat D, Repping S, Hamer G. Measuring Sperm DNA Fragmentation and Clinical Outcomes of Medically Assisted Reproduction: A Systematic Review and Meta-Analysis. PLoS One. 2016;11(11):e0165125. DOI:10.1371/journal.pone.0165125; Sugihara A, Van Avermaete F, Roelant E, Punjabi U, De Neu-bourg D. The role of sperm DNA fragmentation testing in predicting intra-uterine insemination outcome: A systematic review and meta-analysis. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2020;244:8-15. DOI:10.1016/j.ejogrb.2019.10.005; Авадиева Н.Э. Применение ДНК фрагментации спермы в андрологической практике. Вестник урологии. 2019;7(1):7-11. DOI:10.21886/2308-6424-2019-7-1-7-11; Oldereid NB, Wennerholm UB, Pinborg A, Loft A, Laivuori H, Petzold M, Romundstad LB, Soderstrom-Anttila V, Bergh C. The effect of paternal factors on perinatal and paediatric outcomes: a systematic review and meta-analysis. Hum Re-prod Update. 2018;24(3):320-389. DOI:10.1093/humupd/dmy005; Ji BT, Shu XO, Linet MS, Zheng W, Wacholder S, Gao YT, Ying DM, Jin F. Paternal cigarette smoking and the risk of childhood cancer among offspring of nonsmoking mothers. J Natl Cancer Inst. 1997;89(3):238-44. DOI:10.1093/jnci/89.3.238; https://www.urovest.ru/jour/article/view/419

الاتاحة: https://www.urovest.ru/jour/article/view/419
https://doi.org/10.21886/2308-6424-2021-9-1-95-104

المؤلفون: M. N. Korshunov, E. S. Korshunova, М. Н. Коршунов, Е. С. Коршунова

المصدر: Andrology and Genital Surgery; Том 17, № 2 (2016); 119-122 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 17, № 2 (2016); 119-122 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2016-17-2

مصطلحات موضوعية: 5-гидрокситриптофан, Neurodoz, sperm DNA fragmentation, spermogram, dopamine, serotonin, tyrosine, phenylalanine, 5-hydroxytryptophan, Нейродоз, ДНК-фрагментация сперматозоидов, спермограмма, дофамин, серотонин, тирозин, фенилаланин

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/196/186; http: www.issm.info/education/clinicalguidelines.; Porst H., Montorsi F., Rosen R. C. et al. The Premature ejaculation prevalence and attitudes (PEPA) survey: prevalence, comorbidities, and professional help-seeking. Eur Urol 2007;51(3):816–24.; McMahon C.G., Althof S. E., Waldinger M. D. et al. An evidence-based definition of lifelong premature ejaculation: report of the International Society for Sexual Medicine (ISSM) ad hoc committee for the definition of premature ejaculation. J Sex Med 2008;5(7):1590–606.; Lotti F., Corona G., Rastrelli G. et al. Clinical correlates of erectile dysfunction and premature ejaculation in men with couple infertility. J Sex Med 2012;9(10):2698–707.; http://uroweb.org/guideline//European association of urology. Guidelines 2015.; http://uroweb.org/guideline//European association of urology. Guidelines 2016.; Derogatis L. R., Burnett A. L. The epidemiology of sexual dysfunctions. J Sex Med 2008;5(2):289–300.; Spira A., Bajos N., Giami A., Michaels S. Cross-national comparisons of sexual behavior surveysmethodological difficulties and lessons for prevention. Am J Public Health 1998;88(5):730–1.; Whitaker-Azmitia P. M. The discovery of serotonin and its role in neuroscience. Neuropsychopharmacology 1999;21(2): 2S–8S.; Peroutka S. J., Snyder S. H. Multiple serotonin receptors: differential binding of [3H] 5-hydroxytryptamine, [3H] lysergic acid diethylamide and [3H] spiroperidol. Mol Pharmacol 1979;16(3):687–99.; Ahlenius S., Svensson L., Hjorth S. et al. Effects of a new type of 5-HT receptor agonist on male rat sexual behavior. Pharmacol Biochem Behav 1981;15(5):785–92.; Виноградов И. В., Коршунов М. Н., Коршунова Е. С. Задержанная эякуляция – редкий диагноз. Экспериментальная и клиническая урология 2014;(1):55–9. [Vinogradov I. V., Korshunov M. N., Korshunova E. S. Delayed ejaculation is a rare diagnosis. Eksperimental’naya i klinicheskaya urologiya = Experimental and Clinical Urology 2014; (1):55–9. (In Russ.)].; Jiménez-Trejo F., Tapia-Rodríguez M., Queiroz D. B. Serotonin concentration, synthesis, cell origin, and targets in the rat caput epididymis during sexual maturation and variations associated with adult mating status: morphological and biochemical studies. J Androl 2007;28(1):136–49.; Jiménez-Trejo F., Tapia-Rodríguez M., Cerbón M. Evidence of 5-HT components in human sperm: implications for protein tyrosine phosphorylation and the physiology of motility. Reproduction 2012;144(6):677–85.; Syed V., Gomez E., Hecht N. Messenger ribonucleic acids encoding a serotonin receptor and a novel gene are induced in Sertoli cells by a secreted factor(s) from male rat meiotic germ cells. Endocrinology 1999;140(12):5754–60.; Maier U., Koinig F. Andrological findings in young patients under long-term antidepressive therapy with clomipramine. Neuropsychopharmacology 1994;116(3):357–9.; Tanrikut C., Feldman A. S., Altemus M. Adverse effect of paroxetine on sperm. Fertil Steril 2010;94(3):1021–6.; Korshunov M., Vinogradov I., Gabliya M. et al. The influence of the selective serotonin re-uptake inhibitors on spermatogenesis in fertile men with depression. https//uroweb.org/urosource/abstract/3dc6b537.; Коршунов М. Н., Коршунова Е. С., Штыря Ю. А., Виноградов И. В. Влияние селективных ингибиторов обратного захвата серотонина на сперматогенез. Экспериментальная и клиническая урология 2015;(4):67–9. [Korshunov M. N., Korshunova E. S., Shtyrya Yu. A., Vinogradov I. V. Effect of selective serotonin re-uptake inhibitors on spermatogenesis. Eksperimental’naya i klinicheskaya urologiya = Experimental and Clinical Urology 2015; (4):67–9. (In Russ.)].; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/196

الاتاحة: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/196
https://doi.org/10.17650/2070-9781-2016-17-2-119-122