المؤلفون: G. Bulava V., S. Rey I., G. Berdnikov A., O. Nikitina V., A. Shabanov K., N. Borovkova V., N. Salina N., M. Godkov A., Г. Булава В., С. Рей И., Г. Бердников А., О. Никитина В., А. Шабанов К., Н. Боровкова В., Н. Салина Н., М. Годков А.

المصدر: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; Том 9, № 2 (2020); 201-209 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; Том 9, № 2 (2020); 201-209 ; 2541-8017 ; 2223-9022 ; 10.23934/2223-9022-2020-9-2

مصطلحات موضوعية: sepsis, septic shock, endotoxin lipopolysaccharide selective hemosorbtion, Polymyxin B hemoperfusion, LPS adsorber Alteco, extracorporeal hemocorrection, сепсис, септический шок, эндотоксин, селективная гемосорбция липополисахаридов, Полимиксин-В, гемоперфузия, ЛПС-адсорбер Альтеко, экстракорпоральная гемокоррекция

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/929/766; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/929/856; Rhee С, Dantes R, Epstein L, Murphy DJ, Seymour CW, Iwashyna TJ, et al. Incidence and Trends of Sepsis in US Hospitals Using Clinical vs Claims Data, 2009-2014. JAMA. 2017;318(13):1241–1249. PMID: 28903154 https://doi.org/10.1001/jama.2017.13836; Vincent JL, Lefrant JY, Kotfis K, Nanchal R, Martin-Loeches I, Wittebole X, et al. Comparison of European ICU patients in 2012 (ICON) versus 2002 (SOAP). Intensive Care Med. 2018;44(3):337–344. PMID: 29450593 https://doi.org/10.1007/s00134-017-5043-2; Singer M, Deutschman CS, Seymour CW, Shankar-Hari M, Annane D, Bauer M, et al. The Third International Consensus Definitions for Sepsis and Septic Shock (Sepsis-3). JAMA. 2016;315(8):801–810. PMID: 26903338 https://doi.org/10.1001/jama.2016.0287; Chen XH, Yin YJ, Zhang JX. Sepsis and immune response. World J Emerg Med. 2011;2(2):88–92. PMID: 25214990; Lewis DH, Chan DL, Pinheiro D, Armitage-Chan E, Garden OA. The immunopathology of sepsis: pathogen recognition, systemic inflammation, the compensatory anti-inflammatory response, and regulatory T cells. J Vet Intern Med. 2012;26:457–482. PMID: 22428780 https://doi.org/10.1111/j.1939-1676.2012.00905.x; Яковлев М.Ю. Кишечный липополисахарид: системная эндотоксинемия – эндотоксиновая агрессия – SIRS-полиорганная недостаточность как звенья одной цепи. Бюллетень ВНЦ СО РАМН. 2005;(1):15–18.; Triantafilou M, Triantafilou K. Sepsis: molecular mechanisms underlying lipopolysaccharide recognition. Expert Rev Mol Med. 2004;6(4):1–18. PMID: 14987416 https://doi.org/10.1017/S1462399404007409; Marshall JC, Foster D, Vincent JL, Cook DJ, Cohen J, Dellinger RP, et al. Diagnostic and Prognostic Implications of Endotoxemia in Critical Illness: Results of the MEDIC Study. J Infect Dis. 2004;190(3):527–534. PMID: 15243928 https://doi.org/10.1086/422254; Reade MC, Huang DT, Bell D, Coats TJ, Cross AM, Moran JL, et al. Variability in management of early severe sepsis. Emerg. Med. J. 2010;27(2):110–115. PMID: 20156862 https://doi.org/10.1136/emj.2008.070912; Solomkin JS, Bauman MR, Neeson RD, Simmons RL. Neutrophils dysfunction during the course of intra-abdominal infection. Ann Surg. 1981;194(1):9–17. PMID: 7247540 https://doi.org/10.1097/00000658-198107000-00003; Triantafilou M, Triantafilou K. Lipopolysaccharide recognition: CD14, TLRs and the LPS-activation cluster. Trends Immunol. 2002;23(6):301– 304. PMID: 12072369; Cruz DN, Perazella MA, Dellomo R, de Cal M, Polanco N, Corradi V, еt al. Effectivnes of polymyxin B-immobilized fiber column in sepsis: a systematic review. Crit Care. 2007;11(2);R 47 PMID: 17448226 https://doi.org/10.1186/cc5780; Ikeda T, Ikeda K, Nagura M, Taniuchi H, Matsushita M, Kiuchi S, et al. Clinical evaluation of PMX-DHP for hypercytokinemia caused by septic multiple organ failure. Ther Apher Dial. 2004;8(4):293–298. PMID: 15274680 https://doi.org/10.1111/j.1526-0968.2004.00167.x; Cruz DN, Antonelli M, Fumagalli R, Foltran F, Brienza N, Donati A, et al. Early use of polymyxin B hemoperfusion in abdominal septic shock: the EUPHAS randomized controlled trial. JAMA. 2009;301(23):2445–2452. PMID: 19531784 https://doi.org/10.1001/jama.2009.856; Payen DM, Guilhot J, Launey Y, Lukaszewicz AC, Kaaki M, Veber B, et al. Early use of polymyxin B hemoperfusion in patients with septic shock due to peritonitis: a multicenter randomized control trial. Intensive Care Med. 2015;41(6):975–984. PMID: 25862039 https://doi.org/10.1007/s00134-015-3751-z; Cutuli SL, Artigas A, Fumagalli R, Monti G, Ranieri VM, Ronco C, et al. EUPHAS 2 Collaborative Group. Polymyxin-B hemoperfusion in septic patients: analysis of a multicenter registry. Ann Intensive Care. 2016;6(1):77. PMID: 27502196 https://doi.org/10.1186/s13613-016-0178-9; Dellinger RP, Bagshaw SM, Antonelli M, Foster DM, Klein DJ, Marshall JC, et al. EUPHRATES Trial Investigators. Effect of Targeted Polymyxin B Hemoperfusion on 28-Day Mortality in Patients With Septic Shock and Elevated Endotoxin Level: The EUPHRATES Randomized Clinical Trial. JAMA. 2018;320(14):1455–1463. PMID: 30304428 https://doi.org/10.1001/jama.2018.14618; Klein DJ, Foster D, Walker PM, Bagshaw SM, Mekonnen H, Antonelli M. Polymyxin B hemoperfusion in endotoxemic septic shock patients without extreme endotoxemia: a post hoc analysis of the EUPHRATES trial. Intensive Care Med. 2018;44(12):2205–2212. PMID: 30470853 https://doi.org/10.1007/s00134-018-5463-7; Adamik B, Zielinski S, Smiechowicz J, Kübler A. Endotoxin Elimination in Patients with Septic Shock: An Observation Study. Arch Immunol Ther Exp (Warsz). 2015;63(6):475–483. PMID: 26093653 https://doi.org/10.1007/s00005-015-0348-8; Zagli G, Bonizzoli M, Spina R, Cianchi G, Pasquini A, Anichini V, et al. Effects of hemoperfusion with an immobilized polymixin-B fibers column on cytokine plasma levels in patients with abdominal sepsis.; Nakamura T, Ebihara I, Shimada N, Koide H. Changes in plasma erythropoietin and interkeukin-6 concentranions in patients with septic shock after hemoperfusion with polymixin B- immobilized fibers. Intensive Care Med. 1998;24(12):1272–1276. PMID: 9885879; Крстич М., Зулькарнаев А.Б. Селективная адсорбция эндотоксина в лечении гнойно-септических осложнений у пациентов с урологическими заболеваниями после трансплантации почки. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2014;16(1):21–28.; Yaroustovsky M, Plyushch M, Popov D, Samsonova N, Abramyan M, Popok Z, et al. Prognostic value of endotoxin activity assay in patients with severe sepsis after cardiac surgery. J Inflamm (Lond). 2013;10(1):8. PMID: 23510603 https://doi.org/10.1186/1476-9255-10-8; Nakamura T, Sato E, Fujiwara N, Kawagoe Y, Maeda S, Yamagishi S. Suppression of high-mobility group box-1 and receptor for advanced glycation end-product axis by polymyxin B-immobilized fiber hemoperfusion in septic shock patients. J Crit Care. 2011;26(6):546–549. PMID: 21273029 https://doi.org/10.1016/j.jcrc.2010.11.010; Coudroy R, Payen D, Launey Y, Lukaszewicz AC, Kaaki M, Veber B, et al. Modulation by Polymyxin-B Hemoperfusion of Inflammatory Response Related to Severe Peritonitis. Shock. 2017;47(1):93-99. PMID: 27984535 https://doi.org/10.1097/SHK.0000000000000725; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/929

الاتاحة: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/929
https://doi.org/10.23934/2223-9022-2020-9-2-201-209

المؤلفون: G. Bulava V., M. Androsova V., A. Shabanov K., O. Nikitina V., I. Alexandrova V., Г. Булава В., М. Андросова В., А. Шабанов К., О. Никитина В., И. Александрова В.

المصدر: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; Том 6, № 1 (2017); 13-19 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; Том 6, № 1 (2017); 13-19 ; 2541-8017 ; 2223-9022 ; 10.23934/2223-9022-2017-6-1

مصطلحات موضوعية: sepsis, predictors of sepsis, сепсис, маркеры — предикторы сепсиса

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/338/406; Савельев В.С., Гельфанд Б.Р. (ред.) Сепсис: классификация, клинико-диагностическая концепция и лечение: практическое руководство. 3-е изд., доп. и пераб. М.: Медицинское информационное агентство, 2013. 360 с.; Lewis D.H., Chan D.L., Pinheiro D., et al. The immunopathology of sepsis: pathogen recognition, systemic inflammation, the compensatory antiinflammatory respons, and regulatory T сells. J. Vet. Intern. Med. 2012; 26(3): 457–482. PMID: 22428780 DOI:10.1111/j.1939-1676.2012.00905.x.; Antonelli M. Sepsis and septic shock: pro-inflammatory or antiinflammatory state? J. Chemother. 1999; 11(6): 536–540. PMID: 10678797 DOI:10.1179/joc.1999.11.6.536.; Cavaillon J.M., Annane D. Compartmentalization of the inflammatory response in sepsis and SIRS. J. Endotoxin Res. 2006; 12(3): 151–170. PMID: 16719987 DOI:10.1179/096805106X102246.; Marshall J.C., Reinhart K. Biomarkers of sepsis. Crit. Care Med. 2009; 37(7): 2290–2298. PMID: 19487943 DOI:10.1097/CCM.0b013e3181a02afc.; Козлов В.К. Сепсис: этиология, иммунопатогенез, концепция современной иммунотерапии. СПб.: Диалект, 2006. 300 с.; Boomer J.S., To K., Chang K.C., et al. Immunosuppression in patients who die of sepsis and multiple organ failure. JAMA. 2011; 306(23): 2594–2605. PMID: 22187279 DOI:10.1001/jama.2011.1829.; Петров Р.В. Иммунология и иммуногенетика. М.: Медицина, 1976. 336 с.; Reinhart K., Meisner M. Biomarkers in the critically ill patient: procalcitonin. Crit. Care Clin. 2011; 27(2): 253–263. PMID: 21440200 DOI:10.1016/j.ccc.2011.01.002.; Hotchkiss R.S., Nicholson D.W. Apotosis and caspases regulate death and inflammation in sepsis. Nat. Rev. Immunol. 2006; 6(11): 813–822. PMID: 17039247 DOI:10.1038/nri1943.; Gaini S., Koldkjaer O.G., Pedersen C., Pedersen S.S. Procalcitonin, lipopolysac charide-binding protein, interleukin-6 and C-reactive protein in community-acquired infections and sepsis: a prospective study. Crit. Care. 2006; 10(2): R53. PMID: 16569262 DOI:10.1186/cc4866.; Heper Y., Akalin E.H., Mistik R., et al. Evaluation of serum C-reactive protein, procalcitonin, tumor necrosis factor alpha, and interleukin-10 levels as diagnostic and prognostic parameters in patients with community-acquired sepsis, severe sepsis, and septic shock. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2006; 25(8): 481–491. PMID: 16896829 DOI:10.1007/s10096-006-0168-1.; Lobo S.M., Lobo F.R., Bota D.P., et al. C-reactive protein levels correlate with mortality and organ failure in critically ill patients. Chest. 2003; 123(6): 2043–2049. PMID: 12796187.; Reinhart K., Bauer M., Riedemann N.C., Hartoga Ch.S. New approaches to sepsis: molecular diagnostics and biomarkers. Clin. Microbiol. Rev. 2012; 25(4): 609–634. PMID: 2303432 DOI:10.1128/CMR.00016-12.; Dandona P., Nix D., Wilson M.F., et al. Procalcitonin increase after endotoxin injection in normal subjects. J. Clin. Endocrin. Metab. 1994; 79(6): 1605–1608. PMID: 7989463 DOI:10.1210/jcem.79.6.7989463.; Вельков В.В. Прокальцитонин в диагностике критических состояний. Лабораторная медицина. 2009; (10): 49–54.; Maier M., Wutzler S., Lehnert M. et al. Serum procalcitonin levels in patients with multiple injuries including visceral trauma. J. Trauma. 2009; 66(1): 243–249. PMID: 19131834 DOI:10.1097/TA.0b013e31817c966f.; Шабанов А.К., Булава Г.В., Кислухина Е.В., Хубутия М.Ш. Критерии высокого риска развития инфекционных легочных осложнений при тяжелей сочетанной травме. Анестезиология и реаниматология. 2015; (2): 16–20.; Claeys R., Vinken S., Spapen H., et al. Plasma procalcitonin and Creactive protein in acuteseptic shock: clinical and biological correlates. Crit. Care Med. 2002; 30(4): 757–762. PMID: 11940741.; Villar J., Perez-Mundez L., Espinosa E., et al. Serum lipopolysaccharide binding protein levels predict severity of lung injury and mortality in patients with severe sepsis. PLoS One. 2009; 4(8): e6818. PMID: 19718443 DOI:10.1371/journal.pone.0006818.; Kellum J.A., Kong L., Fink M.P., et al. Understanding the inflammatory cytokine response in pneumonia and sepsis. Arch. Intern. Med. 2007; 167(15): 1655–1663. PMID: 17698689 DOI:10.1001/archinte.167.15.1655.; Giannoudis P.V., Hildebrand F., Pape H.C. Inflammatory serum markers in patients with multiple trauma. Can they predict outcome? J. Bone Joint Surg. Br. 2004; 86(3): 313–323. PMID: 15125116.; Гусев Е.Ю., Юрченко Л.Н., Черешнев В.А. и др. Варианты развития острого системного воспаления. Цитокины и воспаление. 2008; (2): 9–17.; Козлов В.К., Винницкий Л.И. Дисфункция иммунной системы в патогенезе сепсиса. Общая реаниматология. 2005; (4): 65–76.; Bone R.C., Balk R.A., Cerra F.B., et al. Definitions for sepsis and organ failure and guidelines for the use of innovative therapies in sepsis. The ACCP/SCCM Consensus Conference Committee. American College of Chest Physicians/Society of Critical Care Medicine. Chest. 1992; 101(6): 1644–1655. PMID: 1303622.; Levy M.M., Fink M.P., Marshall J.C., et al. 2001 SCCM/ESICM/ACCP/ATS/SIS International Sepsis Definitions Conference. Crit. Care Med. 2003; 31(4): 1250–1256. PMID: 12682500.; Kahlke V., Schafmayer C., Schniewind B., et al. Are postoperative complications genetically determined by TNF-β Ncol gene polymorphism? Surgery. 2004; 135(4): 365–373. PMID: 15041959 DOI:10.1016/j.surg.2003.08.012.; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/338

الاتاحة: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/338
https://doi.org/10.23934/2223-9022-2017-6-1-13-19

المؤلفون: G. Bulava V., Г. Булава В.

المصدر: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; № 2 (2013); 47-56 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; № 2 (2013); 47-56 ; 2541-8017 ; 2223-9022 ; undefined

مصطلحات موضوعية: сепсис, иммунологические маркеры

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/35/37; Antonopoulou A., Giamarellos-Bourboulis E.J. Immunomodulation in sepsis: state of the art and future perspective // Immunotherapy. – 2011. – Vol. 3, N. 1. – P. 117–128.; Levy M.M., Fink M.P., Marshal J.C. et al. 2001 SCCM/ESICM/ACCP/ATS/ SIS International Sepsis Definitions Conference // Crit. Care. Med. – 2003. – Vol. 31, N. 4. – P. 1250–1256.; Vogel T.R., Dombrovskiy V.Y., Carson J.L. et al. Postoperative Sepsis in the United States // Ann. Surg. – 2010. – Vol. 252, N. 6. – P. 1065–1071.; Vincent J.L., Sakr Y., Sprung C.L. et al. Sepsis in European intensive care units: Results of the SOAP study // Crit. Care. Med. – 2006. – Vol. 34, N. 2. – P. 344–353.; Wafaisade А., Lefering R., Bouillon B. et al. Epidemiology and Risk Factors of Sepsis after Multiple Trauma. An Analysis of 29,829 Patients From the Trauma Registry of the German Society for Trauma Surgery // Crit. Care Med. – 2011. – Vol. 39, N. 4. – P. 621–628.; Dellinger R.P., Levy M.M., Carlet J.M. et al. Surviving Sepsis Campaign: international guidelines for management of severe sepsis and septic shock: 2008 // Int. Care Med. – 2008. – Vol. 36, N. 1. – P. 296–327.; Wagner J.A., Williams S.A., Webster C.J. Biomarkers and surrogate end points for fit-for-purpose development and regulatory evaluation of new drugs // Clin. Pharmacol. Ther. – 2007. – Vol. 81. – P. 104–107.; The Biomarker Definitions Working Group. Biomarkers and surrogate endpoints: preferred definitions and conceptual framework // Clin. Pharmacol. Ther. – 2001. – Vol. 69. – P. 89–95.; Marshall J.C., Vincent J.L., Fink M.P. et al. Measures, markers, and mediators: toward a staging system for clinical sepsis: a report of the Fifth Toronto Sepsis Roundtable, Toronto, Ontario, Canada, October 25–26, 2000 // Crit. Care Med. – 2003. – Vol. 31. – P. 1560–1567.; Faist E. The mechanisms of host defense dysfunction following shock and trauma // Pathology of Septic Shock / E.T. Rietschel, H. Wagner.- Heidelberg: Springer-Verlag, 1996. – P. 259–274.; Guillou P.J. Biological variation in the development of sepsis after surgery or trauma // Surgery. – 1993. – Vol. 342. – P. 217–220.; Hensler T., Hecker H., Heeg K. et al. Distinct mechanisms of immunosuppression as a consequence of major surgery // Int. Immunol. – 1997. – Vol. 65. – P. 2283–2291.; Wakefield C.H., Carey P.D., Foulds S. et al. Changes in major histocompatibility complex class II expression in monocytes and T cells of patients developing infection after surgery // Br. J. Surg. – 1993. – Vol. 80. – P. 205–209.; Windzor A.C., Klava A., Somers S.S. et al. Manipulation of local and systemic host defence in the prevention of perioperative sepsis // Br. J. Surg. – 1995. – Vol. 82. – P. 1460–1467.; Brune I.B., Wilke W., Hensler T. et al. Down-regulation of Th1 immune response and altered pro- and anti-inflammatory T cell cytokine balance following conventional, but not laparoscopic, surgery // Am. J. Surg. – 1999. – Vol. 177. – P. 55–60.; Carlei F., Schietroma M., Cianca G. et al. Effects of laparoscopic and conventional (open) cholejystectomy on human leukocyte antigen-DR expression peripheral blood monocytes: correlations with immunologic status // World J. Surg. – 1999. – Vol. 23. – P. 18–22.; Decker D., Schondorf M., Bidlingmaier F. et al. Surgical stress induces a shift in the type-1/type-2 T-helper cell balance, suggesting downregulation of cell-mediated and up-regulation of antibody-mediated immunity commensurate to the trauma // Surgery. – 1996. – Vol. 119. – P. 316–325.; Von Dossow V., Rotard K., Redlich U. et al. Circulating immune parameters predicting the progression from hospital-acquired pneumonia to septic shock in surgical patients // Crit. Care. – 2005. – Vol. 9, N. 6. – R662–R669.; Hershman M.J., Cheadle W.G., Wellhausen S.R. et al. Monocyte HLADR antigen expression characterizes clinical outcome in the trauma patients // Br. J. Surg. – 1990. – Vol. 77. – P. 204–207.; Monneret G., Lepape A., Voirin N. et al. Persisting low monocyte human leukocyte antigen-DR expression predicts mortality in septic shock // Intensive Care Med. – 2006. – Vol. 32. – P. 1175–1183.; Riese J., Warner K., Zimmermann P. et al. Association of a TNFbeta gene polymorphism with complications after major abdominal operations // Shock 2003. – Vol. 19. – P. 1–4.; Kahlke V., Schafmayer C., Schniewind B. et al. Are postoperative complications genetically determined by TNF-? Ncol gene polymorphism? // Surgery. – 2004. – Vol. 135. – P. 365–373.; Majetschak M., Flohė S., Obertacke U. et al. Relation of a TNF gene polymorphism to severe sepsis in trauma patients // Ann. Surg. – 1999. – Vol. 230. – P. 207–214.; Mira J.P., Cariou A., Grall F. et al. Association of TNF2, a TNF-alpha promoter polymorphism, with septic shock susceptibility and mortality: a multicenter study // JAMA. – 1999. – Vol. 282. – P. 561–568.; Stuber F., Petersen M., Bokelmann F., Schade U. A genomic polymorphism within the tumor necrosis factor locus influences plasma tumor necrosis factor-alpha concentrations and outcome of patients with severe sepsis // Crit. Care Med. – 1996. – Vol. 24. – P. 381–384.; Reinhart K., Meier-Hellmann A., Beale R. et al. Open randomized phase II trial of an extracorporeal endotoxin absorber in suspected Gram-negative sepsis // Crit. Care Med. – 2004. – Vol. 32. – P. 1662–1668.; Abraham E., Anzueto A., Gutierrez G. et al. Double-blind randomised controlled trial of monoclonal antibody to human tumour necrosis factor in treatment of septic shock. NORASEPT II Study Group // Lancet. – 1998. – Vol. 351. – P. 929–933.; Opal S.M., Fisher C.J., Dhainaut J.F. et al. Confirmatory interleukin-1 receptor antagonist trial in severe sepsis: a phase III, randomized, double-blind, placebo-controlled, multicenter trial. The Interleukin-1 Receptor Antagonist Sepsis Investigator Group // Crit. Care Med. – 1997. – Vol. 25. – P. 1115–1124.; Kellum J.A., Kong L., Fink M.P. et al. Understanding the inflammatory cytokine response in pneumonia and sepsis // Arch. Intern. Med. – 2007. – Vol. 167, N. 15. – P. 1655–1663.; Kinasewitz G.T., Yan S.B., Basson B. et al. Universal changes in biomarkers of coagulation and inflammation occur in patients with severe sepsis, regardless of causative micro-organism // Crit. Care. – 2004. – Vol. 8, N. 2. – R82–R90.; Oberholzer A., Souza S.M., Tschoeke S.K. et al. Plasma cytokine measurements augment prognostic scores as indicators of outcome in patients with severe sepsis // Shock. – 2005. – Vol. 23, N. 6. – P. 488–493.; Groeneveld A.B., Bossink A.W., van Mierlo G.J., Hack C.E. Circulating inflammatory mediators in patients with fever: predicting bloodstream infection // Clin. Diagn. Lab. Immunol. – 2001. – Vol. 8, N. 6. – P. 1189– 1195.; Mokart D., Merlin M., Sannini A. et al. Procalcitonin, interleukin 6 and systemic inflammatory response syndrome (SIRS): early markers of postoperative sepsis after major surgery // Brit. J Anaes. – 2005. – Vol.94, N.6.- P.767-773.; Zweigner J., Schumann R., Weber J.R. The role of lipopolysaccharidebinding protein in modulating the innate immune response // Microbe. s Infect. – 2006. – Vol. 8, N. 3. – P. 946–952.; Kaden J., Zwerenz P., Lambrecht H.G., Dostatni R. Lipopolysaccharidebinding protein as a new and reliable infection marker after kidney transplantation // Transpl. Int. – 2002. – Vol. 15, N. 4. – P. 163–172.; Zweigner J., Gramm H.J., Singer O.C. et al. High concentrations of lipopolysaccharide-binding protein in serum of patients with severe sepsis or septic shock inhibit the lipopolysaccharide response in human monocytes // Blood. – 2001. – Vol. 98, N. 13. – P. 3800–3808.; Blairon L., Wittebole X., Laterre P.F. Lipopolysaccharide-binding protein serum levels in patients with severe sepsis due to gram-positive and fungal infections // J. Infect. Dis. – 2003. – Vol. 187, N. 2. – P. 287–291.; Hopstaken R.M., Cals J.W.L., Dinant G.J. Accuracy of lipopolysaccharidebinding protein (LBP) and fibrinogen compared to C-reactive protein (CRP) in differentiating pneumonia from acute bronchitis in primary care // Prim. Care Respir J. – 2009. – Vol. 18, N. 3. – P. 227–230.; Oude Nijhuis C.S., Vellenga E., Daenen S.M. et al. Lipopolysaccharidebinding protein: a possible diagnostic marker for Gram-negative bacteremia in neutropenic cancer patients // Int. Care Med. – 2003. – Vol. 29, N. 12. – P. 2157–2161.; Villar J., Perez-Mundez L., Espinosa E. et al. Serum lipopolysaccharide binding protein levels predict severity of lung injury and mortality in patients with severe sepsis // PLoS One. – 2009. – Vol. 4, N. 8. – P. e6818.; Hensler T., Heidecke C.D., Hecker H. et al. Increased susceptibility to postoperative sepsis in patients with impaired monocyte IL-12 production // J. Immunol. – 1998. – Vol. 161, N. 5. – P. 2655–2659.; Steinhausen M.L., Hogaboam C.M., Lukacs N., et al. Multiple roles for IL- 12 in a model of acute septic peritonitis // J Immunol. – 1999. – Vol. 162, N. 9. – P. 5437–5443.; Zisman D.A., Kunkel S.L., Strieter R.M. et al. Anti-interleukin-12 therapy protects mice in lethal endotoxemia but impairs clearance in murine Escherichia coli peritoneal sepsis // Shock. – 1997. – Vol. 8, N. 5. – P. 349–356.; Weighardt H., Heidecke C.D., Westerholt A. et al. Impaired monocyte IL-12 production before surgery as a predictive factor for the lethal outcome of postoperative sepsis // Ann. Surg. – 2002. – Vol. 235, N. 4.– P. 560–567.; Cavaillon J.M., Annane D. Compartmentalization of the inflammatory response in sepsis and SIRS // J. Endotoxin. Res. – 2006. – Vol. 12, N. 3. – P. 151–170.; Giamarellos-Bourboulis E.J., Tsaganos T., Spyridaki E. et al. Early changes of CD4-positive lymphocytes and NK cells in patients with severe Gram-negative sepsis // Crit. Care. – 2006. – Vol. 10, N. 6. – P. R166.; Gogos C., Kotsaki A., Pelekanou A. et al. Early alterations of the innate and adaptive immune statuses in sepsis according to the type of underlying infection // Crit. Care. – 2010. – Vol. 14, N. 3. – P. R96.; Pelekanou A., Tsangaris I., Kotsaki A. et al. Decrease of CD4-lymphocytes and apoptosis of CD14-monocytes are characteristic alterations in sepsis caused by ventilator-associated pneumonia: results from an observational study // Crit. Care. – 2009. – Vol. 13, N. 6. – P. R172.; Adib-Conquy M., Cavaillon J.M. Compensatory anti-inflammatory response syndrome // Thromb. Haemost. – 2009. – Vol. 101, N. 1.– P. 36–47.; Holub M, Kluckova Z, Helcl M. et al. Lymphocyte subset numbers depend on the bacterial origin of sepsis // Clin. Microbiol. Infect. – 2003. – Vol. 9, N. 3. - P. 202–211.; Roth G., Moser B., Krenn C. et al. Susceptibility to programmed cell death in T-lymphocytes from septic patients: a mechanism for lymphopenia and Th2 predominance // Biochem. Biophys. Res. Commun. – 2003. – Vol. 308, N. 4. - P. 840–846.; Venet F., Davin F., Guignant C. et al. Early assessment of leukocyte alterations at diagnosis of septic shock // Shock. – 2010. – Vol. 34, N. 4. – P. 358–363.; Monneret G., Debard A.L., Venet F. et al. Marked elevation of human circulating CD4+CD25+ regulatory T cells in sepsis-induced immunoparalysis // Crit. Care Med. – 2003. – Vol. 31, N. 7. – P. 2068–2071.; Tschaikowsky K., Hedwig-Geissing M., Schiele A. et al. Coincidence of pro- and anti-inflammatory responses in the early phase of severe sepsis: longitudinal study of mononuclear histocompatibility leukocyte antigen-DR expression, procalcitonin, C-reactive protein, and changes in T-cell subsets in septic and postoperative patients // Crit. Care Med. – 2002. – Vol. 30, N. 5. – P. 1015–1023.; Remick D.G. Pathophysiology of Sepsis // Am J. Pathol. – 2007. – Vol. 170, N. 5. – P. 1435–1444.; Shimaoka M., Park E.J. Advances in understanding sepsis // Eur. J. Аnaesthesiol. Suppl. – 2008. – Vol. 42. – P. 146–153.; Wesche-Soldato D.E., Lomas-Neira J.L., Perl M. et al. The role and regulation of apoptosis in sepsis // J. Endotoxin. Res. – 2005. – Vol. 11, N. 6. – P. 375–382.; Chung C.S., Chaudry I.H., Ayala A. The apoptotic response of the lymphoid immune system to trauma, shock and sepsis // Yearbook of Intensive Care and Emergency Medicine / J.L. Vincent. – Berlin: Springer-Verlag, 2000. – P. 27–40.; Hotchkiss R.S., Tinsley K.W., Swanson P.E. et al. Sepsis-induced apoptosis causes progressive profound depletion of B and CD4+ T lymphocytes in humans // J. Immunol. – 2001. – Vol. 166, N. 11. – P. 6952–6963.; Hotchkiss R.S., Osmon S.B., Chang K.C. et al. Accelerated lymphocyte death in sepsis occurs by both the death receptor and mitochondrial pathways // J. Immunol. – 2005. – 174, N. 8. – P. 5110–5118.; Le Tulzo Y., Pangault C., Gacouin A. et al. Early circulating lymphocyte apoptosis in human septic shock is associated with poor outcome // Shock. – 2002. – Vol. 18, N. 6. – P. 487–494.; De Freitas I., Fernandez-Somoza M., Essenfeld-Sekler E., Cardier J.E. Serum levels of the apoptosis-associated molecules, tumor necrosis factor-a/tumor necrosis factor type-I receptor and Fas/FasL, in sepsis // Chest. – 2004. – Vol. 125, N. 6. – P. 2238–2246.; Hotchkiss R.S., Swanson P.E., Knudson C.M. et al. Overexpression of Bcl-2 in transgenic mice decreases apoptosis and improves survival in sepsis // J. Immunol. – 1999. – Vol. 162, N. 7. – P. 4148–4156.; Lekkou A., Karakantza M., Mouzaki A. et al. Cytokine production and monocyte HLA-DR expression as predictors of outcome for patients with community-acquired severe infections // Clin. Diagn. Lab. Immunol. – 2004. – Vol. 11, N. 1. – P. 161–167.; Oczenski W., Krenn H., Jilch R. et al. HLA-DR as a marker for increased risk for systemic inflammation and septic complications after cardiac surgery // Intensive Care Med. – 2003. – Vol. 29, N. 8. – P. 1253–1257.; Kim O.Y., Monsel A., Bertrand M. et al. Differential down-regulation of HLA-DR on monocyte subpopulations during systemic inflammation // Crit. Care. – 2010. – Vol. 14, N. 2. – P. R61–73.; Saenz J.J., Izura J.J., Manrique A. et al. Early prognosis in severe sepsis via analyzing the monocyte immunophenotype // Intensive Care Med. – 2001. – Vol. 27, N. 9. – P. 970–977.; Monneret G., Voirin N., Krawice-Radanne I. et al. Soluble human leukocyte antigen-G5 in septic shock: marked and persisting elevation as a predictor of survival // Crit. Care Med. – 2007. – Vol. 35, N. 8. – P. 1942– 1947.; Cavaillon J.M., Adib-Conquy M. Immune status in sepsis: the bug, the site of infection and the severity can make the difference // Crit. Care. – 2010. – Vol. 14, N. 3. – P. 167.; Seidelin J.B., Nielsen C.H., Strøm J. Soluble L-selectin levels predict survival in sepsis // Intensive Care Med. – 2002. – Vol. 28, N. 11. – P. 1613– 1618.; Wunder C., Eichelbronner O., Roewer N. Are IL-6, IL-10 and PCT plasma concentrations reliable for prediction in severe sepsis? A comparison with APACHE II SAPS II // Inflamm. Res. – 2004. – Vol. 53, N. 3. – P. 158–163.; Arnalich F., Garcia-Palomero E., Lopez J. et al. Predictive value of nuclear factor kappaB activity and plasma cytokine levels in patients with sepsis // Infect. Immun. – 2000. – Vol. 68, N. 4. – P. 1942–1945.; Ikuta S., Ono S., Kinoshita M. et al. Interleukin-18 concentration in the peritoneal fluid correlates severity of peritonitis // Am J Surg. – 2003. – Vol. 185, N. 6. – P. 550–555.; Akira S. The role of IL-18 in innate immunity // Curr. Opin. Immunol. – 2000. – Vol. 12, N. 1. – P. 59–63.; Emmanuilidis K., Weighardt H., Matevossian E. et al. Differential regulation of systemic IL-18 and IL-12 release during postoperative sepsis: high serum IL-18 as an early predictive indicator of lethal outcome // Shock. – 2002. – Vol. 18, N. 4. – P. 301–305.; Dandona P., Nix D., Wilson M.F. et al. Procalcitonin increase after endotoxin injection in normal subjects // J. Clin. Endocrin. Metab. – 1994. – Vol. 79, N. 6. – P. 1605–1658.; Oberhoffer M., Stonans I., Russwurm S. et al. Procalcitonin expression in human periferial blood mononuclear cells and its modulation by lypopolysachrides and sepsis-related cytocines in vitro // J. Lab. Clin. Med. – 1999. – Vol. 134, N. 1. – P. 49–55.; Dornbusch H.J., Strenger V., Sovinz P. et al. Non-infectious causes of elevated procalcitonin and C-reactive protein serum levels in pediatric patients with hematologic and oncologic disorders // Support Care Cancer. – 2008. – Vol. 16, N. 9. – P. 1035–1040.; Sauerland S., Hensler Th., Bouillon B. et al. Plasma levels of procalcitonin and neopterinn in multiple trauma patients with or without brain injury // J. Neurotrauma. – 2003. – Vol. 20, N. 10. – P. 953–960.; Maier M., Wutzler S., Lehnert M. et al. Serum procalcitonin levels in patients with multiple injuries including visceral trauma // J. Trauma. – 2009. – Vol. 66, N. 1. – P. 243–249.; Resch B., Gusenleitner W., Muller W.D. Procalcitonin and interleukin-6 in the diagnosis of early-onset sepsis of the neonate // Acta. Paediatr. – 2003. – Vol. 92, N. 2. – P. 243–245.; Tschaikowsky K., Hedwig-Geissing M., Braun G.G., Radespiel-Troeger M. Predictive value of procalcitonin, interleukin-6,and C-reactive protein for survival in postoperative patients with severe sepsis // J. Crit. Care. – 2011. – Vol. 26, N. 1. – P. 54–64.; Tsirpanlis G. Inflammation in Atherosclerosis and Other Conditions: A Response to Danger // Kidney Blood Press. Res. – 2005. – Vol. 28, N. 4. – P. 211–217.; Charles R.E., Ladoire S., Aho S. et al. Serum procalcitonin elevation in critically ill patients at the onset of bacteremia caused by either Gram negative or Gram positive bacteria // BMC Infect Dis. – 2008. – Vol. 8.– P. 38.; Yukioka H., Yoshida G., Kurita S., Kato N. Plasma procalcitonin in sepsis and organ failure // Ann. Acad. Med. Singapore. – 2001. – Vol. 30, N. 5. – P. 528–531.; Luzzani A., Polati E., Dorizzi R. et al. Comparison of procalcitonin and Creactive protemas markers of sepsis // Crit. Care Med. – 2003. – Vol. 31, N. 6. – P. 1737–1741.; Claeys R., Vinken S., Spapen H. et al. Plasma procalcitonin and C-reactive protein in acuteseptic shock: clinical and biological correlates // Crit. Care Med. – 2002. – Vol. 30, N. 4. – P. 757–762.; Мeisner M., Adina H., Schmidt J. Correlation of procalcitonin and Creactive protein to inflammation, complications, and outcome during the intensive care unit course of multiple-trauma patients // Crit. Care. – 2006. – Vol. 10, N. 1. – P. Rl.; Uzzan В., Cohen R., Nicolas P. et al. Procalcitonin as a diagnostic test for sepsis in criticalrylll adults and after surgery or trauma: a systematic review and meta-analysis // Crit. Care Med. – 2006. – Vol. 34, N. 7. – P. 1996–2003.; Beer S.,Weighardt H., Emmanuilidis K. et al. Systemic neuropeptide levels as predictive indicators for lethal outcome in patients with postoperative sepsis // Crit. Care Med. – 2002. – Vol. 30, N. 8. – P. 1794–1798.; McNelis J., Marini C., Kalimi R. et al. A comparison of predictive outcomes of APACHE II and SAPS II in a surgical intensive care unit // Am. J. Med. Qual. – 2001. – Vol. 16, N. 5. – P. 161–165.; Bernhagen J., Calandra T., Mitchell R.A. et al. MIF is a pituitaryderived cytokine that potentiates lethal endotoxaemia // Nature. – 1993. – Vol. 365. – P. 756–759.; Calandra T., Bernhagen J., Mitchell R.A., Bucala R. The macrophage is an important and previously unrecognised source of macrophage migration inhibitory factor // J. Exp. Med. – 1994. – Vol. 179, N. 6. – P. 1895– 1902.; Calandra T., Echtenacher B., Roy D.L. et al. Protection from septic shock by neutralization of macrophage migration inhibitory factor // Nat Med. – 2000. – Vol. 6, N. 2. – P. 164–170.; Riedemann N.C., Guo R.F., Ward P.A. Novel strategies for the treatment of sepsis // Nat. Med. – 2003. – Vol. 9, N. 5. – P. 517–524.; Frink M., van Griensven M., Kobbe P. et al. IL-6 predicts organ dysfunction and mortality in patients with multiple injuries // Scand. J. Trauma. Resusc. Emerg. Med. – 2009. – Vol. 17. – P. 49.; Fiuza C., Bustin M., Talwar S. et al. Inflammation-promoting activity of HMGB1 on human microvascular endothelial cells // Blood. – 2003. – Vol. 101, N. 7. – P. 2652–2660.; Hubbard L.L., Moore B.B. IRAK-M regulation and function in host defense and immune homeostasis // Infect. Dis. Rep. – 2010. – Vol. 2, N. 1. – P. e9.; Muzio M., Bosisio D., Polentarutti N. et al. Differential expression and regulation of toll-like receptors (TLR) in human leukocytes: selective expression of TLR3 in dendritic cells // J. Immunol. – 2000. – Vol. 164, N. 1. – P. 5998–6004.; Wesche H., Gao X., Li X. et al. IRAK-M is a novel member of the Pelle/interleukin-1 receptor-associated kinase (IRAK) family // J. Biol. Chem. – 1999. – Vol. 274, N. 27. – P. 19403–19410.; Li S., Strelow A., Fontana E.J., Wesche H. IRAK-4: a novel member of the IRAK family with the properties of an IRAK-kinase // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 2002. – Vol. 99, N. 8. – P. 5567–5572.; Huber-Lang M., Sarma V.J., Lu K.T. et al. Role of C5a in multiorgan failure during sepsis // J. Immunol. – 2001. – Vol. 166, N. 2. – P. 1193–1199.; Riedemann N.C., Neff T.A., Guo R.F. et al. Protective effects of IL-6 blockade in sepsis are linked to reduced C5a receptor expression // J. Immunol. – 2003. – Vol. 170, N. 1. – P. 503–507.; Fang X.M., Schroder S., Hoeft A., Stuber F. Comparison of two polymorphisms of the interleukin-1 gene family: interleukin-1 receptor antagonist polymorphism contributes to susceptibility to severe sepsis // Crit. Care Med. – 1999. – Vol. 27, N. 7. – P. 1330–1334.; Moller H.J., Moestrup S.K., Weis N. et al. Macrophage serum markers in pneumococcal bacteremia: prediction of survival by soluble CD163 // Crit. Care Med. – 2006. – Vol. 34, N. 10. – P. 2561–2566.; Aalto H., Takala A., Kautiainen H., Repo H. Laboratory markers of systemic inflammation as predictors of bloodstream infection in acutely ill patients admitted to hospital in medical emergency // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. – 2004. – Vol. 23, N. 9. – P. 699–704.; Pilz G., Fraunberger P., Appel R. et al. Early prediction of outcome in score-identified, post-cardiac surgical patients at high risk for sepsis, using soluble tumor necrosis factor receptor-55 concentrations // Crit. Care Med. – 1996. – Vol. 24, N. 4. – P. 596–600.; Iglesias J., Marik P.E., Levine J.S. et al. Elevated serum levels of the type I and type II receptors for tumor necrosis factor-alpha as predictive factors for ARF in patients with septic shock // Am. J. Kidney Dis. – 2003. – Vol. 41, N. 1. – P. 62–75.; Brauner J.S., Rohde L.E., Clausell N. Circulating endothelin-1 and tumor necrosis factora: early predictors of mortality in patients with septic shock // Intensive Care Med. – 2000. – Vol. 26, N. 3. – P. 305–313.; Muller B., Peri G., Doni A. et al. Circulating levels of the long pentraxin PTX3 correlate with severity of infection in critically ill patients // Crit. Care Med. – 2001. – Vol. 29, N. 7. – P. 1404–1407.; Si-Tahar M., Touqui L., Chignard M. Innate immunity and inflammation - two facets of the same anti-infectious reaction // Clin. Exp. Immunol. – 2009. – Vol. 156, N. 2. – P. 194–198.; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/35; undefined

الاتاحة: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/35

المؤلفون: M. Khubutia Sh., P. Yartsev A., V. Gulyaev A., A. Grishin V., S. Tarasov A., N. Sheptak N., M. Drayer N., I. Aleksandrova V., V. Kiselev V., A. Ryk A., A. Vodiasov V., O. Rzhevskaya N., E. Korotkova A., N. Shavrina V., I. Selina E., A. Godkov M., G. Bulava V., E. Lazareva B., I. Galankina E., G. Titova P., М. Хубутия Ш., П. Ярцев А., В. Гуляев А., А. Гришин В., С. Тарасов А., Н. Шептак Н., М. Драйер Н., И. Александрова В., В. Киселев В., А. Рык А., А. Водясов В., О. Ржевская Н., Е. Короткова А., Н. Шаврина В., И. Селина Е., М. Годков А., Г. Булава В., Е. Лазарева Б., И. Галанкина Е., Г. Титова П.

المصدر: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; № 3 (2013); 12-22 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; № 3 (2013); 12-22 ; 2541-8017 ; 2223-9022 ; undefined

مصطلحات موضوعية: small bowel, transplantation, surgical procedure, postoperative period, immunosuppression, complications, enteral and parenteral nutrition, тонкая кишка, трансплантация, операция, послеоперационный период, иммуносупрессия, осложнения, энтеральное и парентеральное питание

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/146/147; Carrel A. The transplantation of organs. A preliminary communication // J. Am. Med. Assoc. – 1905. – Vol. 45. – P. 1645–1646.; Lillehei R., Goott B., Miller F. The physiological response of the small bowel of the dog to ischemia including prolonged in vitro preservation of the bowel with successful replacement and survival // Ann Surg. – 1959. – Vol. 150. – P. 543–560.; Lillehei R.C., Idezuki Y., Feemster J.A., et al. Transplantation of stomach, intestine, and pancreas: experimental and clinical observation // Surgery. – 1967. – Vol. 62, N. 5. – P. 721–741.; Pritchard T.J., Kirkman R.L. Small bowel transplantation // World J. Surg. – 1985. – Vol. 9, N. 6. – P. 860–867.; Fishbein T.M. Intestinal Transplantation // N. Engl. J. Med. – 2009. – Vol. 361, N. 10. – P. 998–1008.; Howard L., Ament M., Fleming C.R., et al. Current use and clinical outcome of home parenteral and enteral nutrition therapies in the United States // Gastroenterology. – 1995. – Vol. 109, N. 2. – P. 355–365.; Scolapio J.S., Fleming C.R., Kelly D.G., et al. Survival of home parenteral nutrition-treated patients: 20 years of experience at the Mayo Clinic // Mayo Clin. Proc. – 1999. – Vol. 74, N. 3. – P. 217–222.; Todo S., Tzakis A., Abu-Elmagd K., et al. Abdominal multivisceral transplantation // Transplantation. – 1995. – Vol. 59, N. 2. – P. 234–240.; Messing B., Crenn P., Beau P., et al. Long-term survival and parenteral nutrition dependence in adult patients with the short bowel syndrome // Gastroenterology. – 1999. – Vol. 117, N. 5. – P. 1043–1050.; Howard L., Malone M. Current status of home parenteral nutrition in the United States // Transplant. Proc. – 1996. – Vol. 28, N. 5. – P. 2691–2695.; Spada M., Alessiani M., Fabbi M., et al. Bacterial translocation is enhanced in pig intestinal transplantation when the colon is included in the graft // Transplant. Proc. – 1996. – Vol. 28, N. 5. – P. 2658–2659.; Tzakis A., Weppler D., Khan M., et al. Mycophenolate mofetil as primary and rescue therapy in intestinal transplantation // Transplant. Proc. – 1998. – Vol. 30, N. 6. – P. 2677–2679.; Grant D., Lamont D., Zhong R., et al. 51Cr-EDTA: a marker of early intestinal rejection in the rat // J. Surg. Res. – 1989. – Vol. 46, N. 5. – P. 507– 514.; D’Alessandro A.M., Kalayoglu M., Hammes R., et al. Diagnosis of intestinal transplant rejection using technetium-99m-DTPA // Transplantation. – 1994. – Vol. 58, N. 1. – P. 112–113.; Kusne S., Furukawa H., Abu-Elmagd K., et al. Infectious complications after small bowel transplantation in adults: and update // Transplant. Proc. – 1996. – Vol. 28, N. 5. – P. 2761–2762.; Farmer R.G., Whelan G., Fazio V.W. Long-term follow-up of patients with Crohn’s disease. Relationship between the clinical pattern and prognosis // Gastroenterology. – 1985. – Vol. 88, N. 6. – P. 1818–1825.; Casella J.F., Lewis J.H., Bontemps F.A. et al. Successful treatment for homozygous protein C deficiency by hepatic transplantation // Lancet. – 1988. – Vol. 1, N. 8583. – P. 435–438.; Reyes J., Selby R., Abu-Elmagd K., et al. Intestinal and multiple organ transplantation // Textbook of Critical Care. – 4nd. ed. – Orlando: WB Saunders Company, 1999. – P. 1678–1687.; Winter H.S. Intestinal polyps // Pediatric Gastrointestinal Disease: Pathophysiology, Diagnosis, Management / eds. W.A. Walker, P.R. Durie, J.R. Hamilton et al. – 2nd ed. – St. Louis: Mosby, 1996. – P. 891–906.; Stuart F.P., Abecassis M.M., Kaufman D.B. Organ Transplantation. – 2nd ed. – Georgetown: Landes Bioscience, 2003. – 618 p.; Hiroi K., Goto Y., Ishikawa J., Kida K. A case of beriberi accompanying short bowel // Acta Paediatr. Jpn. – 1995. – Vol. 37, N. 1. – P. 84–87.; Hove H., Mortensen P.B. Colonic lactate metabolism and D-lactic acidosis // Dig. Dis. Sci. – 1995. – Vol. 40, N. 2. – P. 320–330.; Ikeda S., Sera Y., Yamamoto H., Teracura H., et al. Malposition of a implantable venous access catheter in the azygous vein: report of a case // Surg. Today. – 1995. – Vol. 25, N. 7. – P. 649–650.; Jenkins R.C., Ross R.J. Growth hormone therapy for protein catabolism // Quart. J. Med. – 1996. – Vol. 89, N. 11. – P. 813–819.; Reyes J., Tzakis A.G., Todo S., et al. Small bowel and liver/small bowel transplantation in children // Semin. Pediatr. Surg. – 1993. – Vol. 2, N. 4. – P. 289–300.; Reyes J., Bueno J., Kocochis S., et al. Current status of intestine transplantation in children // J. Pediatr. Surg. – 1998. – Vol. 33, N. 2. – P. 243–254.; Starzl T.E., Todo S., Tzakis A., et al. The many faces of multivisceral transplantation // Surg. Gynecol. Obstet. – 1991. – Vol. 172, N. 5. – P. 335–344.; Furukawa H., Abu-Elmagd K., Reyes J., et al. Technical aspects of intestine transplantation. Surgical Technology International. Vol. 2. / M.H. Braverman, R.L. Tawes, eds. – San Francisco, California: University Medical Press. – 1994. – P. 165–170.; Abu-Elmagd K.M., Reyes J., Todo S., et al. Clinical intestine transplantation: new perspectives and immunologic considerations // J. Am. Coll. Surg. – 1998. – Vol. 186, N. 5. – P. 512–527.; Reyes J., Bueno J., Kocoshis S., et al. Current status of intestinal transplantation in children // J. Pediatr. Surg. – 1998. – Vol. 33, N. 2. – P. 243– 254.; Kusne S., Manez R., Bonet H., et al. Infectious complications after small bowel transplantation in adults // Transplant. Proc. – 1994. – Vol. 26, N. 3. – P. 1682–1683.; Abu-Elmagd K., Todo S., Tzakis A., et al. Three years clinical experience with intestinal transplantation // J. Am. Coll. Surg. – 1994. – Vol. 179, N. 4. – P. 385–400.; Wells C.L. Colonization and translocation of intestinal bacterial flora // Transplant. Proc. – 1996. – Vol. 28, N. 5. – P. 2653–2656.; Berg R.D. Promotion of the translocation of enteric bacteria from the gastrointestinal tract of mice by oral treatment with penicillin, clindamicyn or metronidazole // Infect. Immun. – 1981. – Vol. 33, – P. 854– 861.; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/146; undefined

الاتاحة: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/146

المؤلفون: M. Godkov A., G. Bulava V., М. Годков А., Г. Булава В.

المصدر: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; № 3 (2013); 71-76 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; № 3 (2013); 71-76 ; 2541-8017 ; 2223-9022 ; undefined

مصطلحات موضوعية: laboratory of Clinical Immunology, hospital of emergency medicine, organization, лаборатория клинической иммунологии, стационар скорой медицинской помощи, организация

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/155/156; Булава Г.В. Иммуноферментный метод для диагностики госпитальной инфекции синегнойной и протейной этиологии: дис. … канд. мед. наук: 14.00.37 – Аллергология и иммунология / НИИ СП им. Н.В. Склифосовского. – М., 1985. – 225 с.; Годков М.А. Хемилюминесцентный анализ нейтрофилов неразделенной крови в клинической практике: дис. … канд.мед. наук: 14.00.36 – Аллергология и иммунология / НИИ СП им. Н.В. Склифосовского. – М., 1998. – 140 с.; Пат. 2218567 Российская Федерация, МПК7 G01N33/52 С2 Способ диагностики функционального состояния нейтрофилов человека / Годков М.А., Зинкин В.Ю.; заявитель и патентообладатель Московский городской научно-исследовательский институт скорой помощи им. Н.В.Склифосовского; Годков Михаил Александрович; Зинкин Владимир Юрьевич. – № 2001132646/14: заявл. 05.12.2001; опубл. 10.12.2003, Бюл. №36.; Зинкин В.Ю. Фотометрический НСТ-тест с нейтрофилами крови человека и его клинико-иммунологическая значимость у больных с травмой опорно-двигательного аппарата: дис. … канд. мед. наук: 14.00.36 – Аллергология и иммунология / НИИ СП им. Н.В. Склифосовского. – М., 2004. – 129 с.; Булава Г.В., Абакумов М.М., Погодина А.Н., и др. Особенности реагирования иммунной системы при повреждениях пищевода, осложненных гнойным медиастинитом // Хирургия. – 2012. – № 5. – С.31- 36.; Булава Г.В. Иммунопрофилактика и иммунотерапия гнойно-септических осложнений у пострадавших с проникающими ранениями груди и живота: дис. … д-ра мед. наук: 14.00.27 – Хирургия; 14.00.36 – Аллергология и иммунология / НИИ СП им. Н.В. Склифосовского. – М., 2003. – 311 с.; Пат. 2314531 Российская Федерация, МПК51G01N 33/53 Способ оценки тяжести иммунных расстройств у больных с острыми хирургическими заболеваниями / Боровкова Н.В., Абакумов М.М., Булава Г.В., Хватов В.Б., Ермолов А.С.; заявитель и патентообладатель Московский городской НИИ СП им. Н.В. Склифосовского.- 2006124650/15; заявл. 11.07.06; опубл. 10.01.08, Бюл. №1. – 12 с.; Пат. 2314532 Российская Федерация, МПК51 G01N 33/53; G01N 33/48 Способ прогнозирования развития гнойно-септических осложнений у больных с повреждениями органов тканей / Булава Г.В., Абакумов М.М., Боровкова Н.В., Хватов В.Б., Годков М.А.; заявитель и патентообладатель Московский городской НИИ СП им. Н.В. Склифосовского. – 2006124649 /15; заявл. 11.07.06; опубл. 10.01.08, Бюл. № 1. – 15 с.; Ермолов А.С., Чжао А.В., Мусселиус С.Г. и др. Первый опыт транс- плантации печени в НИИ скорой помощи имени Н.В. Склифосовского // Рос. журн. гастоэнтерол., гепатол., колопроктологии. – 2002. – Т. 12. – № 1. – С. 38–46.; Никулина В.П., Годков М.А., Андрейцева О.И., Чжао А.В. Дифференциальная диагностика воспалительных процессов и острого криза отторжения после трансплантации печени с помощью иммунологических маркеров // Современные лабораторные технологии в диагностике неотложных состояний: материалы гор. семинара. – М.: НИИ СП им. Н.В. Склифосовского, 2010. – (Труды ин-та, Т. 215). – С. 29–31.; Никулина В.П., Годков М.А., Андрейцева О.И. и др. Особенности формирования иммунного ответа на инфекцию, вызванную вирусами семейства Herpesviridae или вирусами гепатитов В и С у пациентов после трансплантации печени // Трансплантология. – 2012. – № 3. – С. 33–41.; Баженов А.И. Совершенствование методов иммунодетекции НВsAg- мутантов вируса гепатита В: дис. … канд. мед. наук: 14.00.36 – Аллергология и иммунология; 14.00.46 – Клиническая лабораторная диагностика / НИИ СП им. Н.В. Склифосовского. – М., 2009. – 148 с.; Нетесова И.Г., Баженов А.И., Годков М.А. и др. Субтипы HbsAg в образцах крови доноров Центрального федерального округа (ЦФО) России // Вирусный гепатит В – диагностика, лечение и профилак- тика: тез. докл.Рос. науч.-практ. конф. с междунар. участием. – М., 2004. – С. 128–129.; Осипова Н.А., Годков М.А. Результаты тестирования маркеров инфекционных заболеваний в образцах крови органных доноров // Новые информационные технологии в медицине, биологии, фармакологии и экологии: материалы. докл. ХIV междунар. конф. и дискусс. клуба, г. Ялта-Гурзуф, 31 мая — 9 июня 2006 г. – Запорожье: ЗНУ, 2006. – С.158–159.; Годков М.А., Сидаков Б.О., Пасечникова О.Б., Стецюра И.С. Зоны риска распространения парентеральных вирусных гепатитов в стационарах скорой помощи» // Стратегия и тактика борьбы с внутрибольничными инфекциями на современном этапе развития медицины: материалы междунар. конгр., г.Москва, 10–12 окт. 2006 г. – М., 2006. – С. 55–56.; Смирнов С.В., Годков М.А., Шахламов М.В., Смирнов К.С. Медико-социальные характеристики пациентов с термической травмой, полученной на фоне гемоконтактных вирусных инфекций // Хирургия. – 2011. – № 4. – С. 32–35.; Годков М.А., Захарова Н.М., Брико Н.И., Сергиев В.П. Гемоконтактные вирусные инфекции (ВИЧ-инфекция, гепатиты В и С) у пациентов, совершивших аутоагрессивные действия // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. – 2012. – № 3. – С. 15–20.; Годков, М.А. Гемоконтактные вирусные инфекции (ВИЧ-инфекция, гепатиты В и С) в стационаре скорой медицинской помощи: дис. … д-ра мед. наук: 14.02.02 – Эпидемиология / НИИ СП им. Н.В. Склифосовского. – М., 2011. – 313 с.; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/155; undefined

الاتاحة: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/155

Additional Titles: РОЛЬ РАННЕЙ ИММУНОЗАМЕСТИТЕЛЬНОЙ ТЕРАПИИ В СНИЖЕНИИ ЧАСТОТЫ РАЗВИТИЯ НОЗОКОМИАЛЬНОЙ ПНЕВМОНИИ У ПОСТРАДАВШИХ С ТЯЖЕЛОЙ СОЧЕТАННОЙ ТРАВМОЙ

المؤلفون: A. Shabanov K.; N. V. Sklifosovsky Research Institute of Emergency Care, Moscow, Russia 3, B. Sukharevskaya Sq., Moscow 129010, G. Bulava V.; N. V. Sklifosovsky Research Institute of Emergency Care, Moscow, Russia 3, B. Sukharevskaya Sq., Moscow 129010, M. Androsova V.; N. V. Sklifosovsky Research Institute of Emergency Care, Moscow, Russia 3, B. Sukharevskaya Sq., Moscow 129010, A. Kuzovlev N.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Moscow, Russia 25, Petrovka, Build. 2, Moscow 107031, E. Kislukhina V.; N. V. Sklifosovsky Research Institute of Emergency Care, Moscow, Russia 3, B. Sukharevskaya Sq., Moscow 129010, M. Khubutia Sh.; N. V. Sklifosovsky Research Institute of Emergency Care, Moscow, Russia 3, B. Sukharevskaya Sq., Moscow 129010, А. Шабанов К.; НИИ скорой помощи им. Н. В. Склифосовского, Москва, Россия 129010 Москва, Б. Сухаревская пл., д. 3, Г. Булава В.; НИИ скорой помощи им. Н. В. Склифосовского, Москва, Россия 129010 Москва, Б. Сухаревская пл., д. 3, М. Андросова В.; НИИ скорой помощи им. Н. В. Склифосовского, Москва, Россия 129010 Москва, Б. Сухаревская пл., д. 3, А. Кузовлев Н.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Москва, Россия 107031 Москва, ул. Петровка, д. 25, стр. 2, Е. Кислухина В.; НИИ скорой помощи им. Н. В. Склифосовского, Москва, Россия 129010 Москва, Б. Сухаревская пл., д. 3, М. Хубутия Ш.; НИИ скорой помощи им. Н. В. Склифосовского, Москва, Россия 129010 Москва, Б. Сухаревская пл., д. 3

المصدر: General Reanimatology; Том 10, № 6 (2014); 15-23; Общая реаниматология; Том 10, № 6 (2014); 15-23; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2014-6

مصطلحات الفهرس: severe concomitant injury; nosocomial pneumonia; early immune replacement therapy; infectious complications; immune imbalance; procalci tonin; ISS; mechanical ventilation; mortality., тяжелая сочетанная травма; нозокомиальная пневмония; ранняя иммунозаместительная терапия; инфекционные осложнения; иммунный дисбаланс; прокальциотонин; ISS; ИВЛ; летальность., info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion, Рецензированная статья

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1428/875
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1428/876
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1428/875
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1428/876
Moroz V.V., Kuzovlev A.N., Polovnikov S.G., Stets V.V., Varvarin V.V. Ingalyatsionnyi tobramitsin v lechenii tyazhelykh nozokomialnykh pnevmonii. Obshchaya Reanimatologiya. [Inhaled tobramycin in the treatment of severe nosocomial pneumonias. General Reanimatology]. 2012; 8 (2): 5–10. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201225. [In Russ.]
Kuzovlev A.N., Moroz V.V., Golubev A.M., Polovnikov S.G. Ingalyatsionnye antibiotiki v lechenii nozokomialnoi pnevmonii. Obshchaya Reanimatologiya. [Inhaled antibiotics in the treatment of nosocomial pneumonia. General Reanimatology]. 2013; 9 (6): 61–70. http://dx.doi.org/10.15360/181397792013661. [In Russ.]
Yakovlev A.Yu., Gushchina N.N., Niyazmatov A.A., Zaitsev R.M., Golubtsova E.Yu., Ryabikova M.A. Rannyaya otsenka effektivnosti antibakterialnoi terapii nozokomialnoi pnevmonii putem kolichestvenno go opredeleniya lipopolisakharida. Obshchaya Reanimatologiya. [Early evaluation of the efficiency of antibiotic therapy for by quantifying lipopolysaccharide. General Reanimatology]. 2013; 9 (6): 45–52. http://dx.doi.org/10.15360/181397792013645. [In Russ.]
Kollef M.H. Prevention of hospitalassociated pneumonia and ventila torassociated pneumonia. Crit. Care Med. 2004; 32 (6): 1396–1405. http://dx.doi.org/10.1097/01.CCM.0000128569.09113.FB. PMID: 15187525
Ermolov A.S., Abakumov M.M., Sokolov V.A., Kartavenko V.I., Galankina I.E., Garaev D.A. Struktura gospitalnoi letalnosti pri sochetannoi travme i puti ee snizheniya. [Structure of hospital lethality in poly trauma and ways to reduce it]. Khirurgiya. Zhurnal Imeni N.I.Pirogova. 2006; 9: 16–20. PMID: 17047627. [In Russ.]
Khubutiya M.Sh., Shabanov A.K. Osnovnye prichiny letalnosti u postradavshikh s tyazheloi sochetannoi travmoi v otdelenii reanimat sii. [Main mortality reasons at patients with severe polytrauma in the intensive care unit]. Skoraya Meditsinskaya Pomoshch. 2010; 11 (3): 64–69. [In Russ.]
Egorova N.I., Vlasenko A.V., Moroz V.V., Yakovlev V.N., Alekseyev V.G. Ventilyatorassotsiirovannaya pnevmoniya: diagnostika, profilaktika, lechenie (sovremennoe sostoyanie voprosa). Obshchaya eanimatologiya. [Ventilatorassociated pneumonia; diagnosis, prevention, treatment (stateoftheart of the problem). General Reanimatology]. 2010; 6 (1): 79–88. http://dx.doi.org/10.15360/181397792010179. [In Russ.]
Gumanenko E.K., Ogarkov P.I., Lebedev V.F., Boyarintsev V.V., Kuzin A.A. Infektsionnye oslozhneniya politravm: mikrobiologicheskie i epidemiologicheskie aspekty. [Infectious complications of polytraumas: microbiological and epidemiological aspects]. Vestnik Khirurgii Imeni I.I.Grekova. 2006; 165 (5): 56–62. PMID: 17315690. [In Russ.]
Pivovarova L.P., Ariskina O.B., Kladukhina N.A. Immunologicheskie kriterii infektsionnykh oslozhnenii pri tyazheloi mekhanicheskoi travme. V kn.: Sochetannaya i mnozhestvennaya travma. Sbornik nauchnykh trudov. [Immunological criteria for infectious complications of severe mechanical injury. In: Concomitant and multiple mechanical injury. Collection of scientific papers]. Sankt Peterburg; 1997: 127–141. [In Russ.]
Abakumov M.M., Bulava G.V. Povrezhdeniya grudi, zhivota i immunnaya sistema. [Thoracic and abdominal injuries and the immune system]. Moscow: STROM; 2006: 171. [In Russ.]
Bulava G.V., Nikitina O.V., Dorfman A.G., Manykin I.E. Opyt primeneniya pentaglobina pri travme grudi i zhivota s massivnoi krovopoterei. [Experience with pentaglobin used in thoracic and abdominal injuries with massive blood loss]. Vestnik Intensivnoi Terapii. 2006; 4: 3–6. [In Russ.]
Chuchalin A.G. (red.). Nozokomialnaya pnevmoniya u vzroslykh. Natsionalnye rekomendatsii. [Adultonset pneumonia. National guide lines]. Moscow; 2009. [In Russ.]
Levy M.M., Fink M.P., Marshall J.C., Abraham E., Angus D., Cook D., Cohen J., Opal S.M., Vincent J.L., Ramsay G.; SCCM/ESICM/ACCP/ATS/SIS. 2001 SCCM/ESICM/ACCP/ATS/SIS International Sepsis Definitions Conference. Crit. Care Med. 2003; 31 (4): 1250–1256. http://dx.doi.org/10. 1097/01.CCM.0000050454.01978.3B. PMID: 12682500
Bulava G.V., Borovkova N.V., Khvatov V.B., Godkov M.A. Otsenka tyazhesti immunnykh rasstroistv i prognozirovanie razvitiya gnoinosepticheskikh oslozhnenii u patsientov s neotlozhnoi khirurgicheskoi patologiei. [Evaluation of severity of immune disorders and prognosis of the development of pyoseptic complications in patients with emergency surgery pathology]. Vestnik Khirurgii Imeni I.I.Grekova. 2009; 168 (3): 10–16. PMID: 19663272. [In Russ.]
Borovkova N.V., Bulava G.V., Ermolov A.S., Khvatov V.B., Abakumov M.M. Sposob otsenki stepeni tyazhesti immunnykh rasstroistv u bolnykh s khirurgicheskimi zabolevaniyami. Patent RF na izobretenie №2314531. [Procedure for estimating the degree of immune disorders in patients with surgical diseases. RF Patent for invention No. 2314531]. [In Russ.]
Afifi A., Eizen S. Statistichesky analiz: podkhod s ispolzovaniem EVM. [Statistical analysis: A computeraided approach]. Moscow: Mir; 1982: 488. [In Russ.]
Petri A., Sebin K. Naglyadnaya statistika v meditsine. [Visual statisticsin medicine]. Moscow: GEOTARMedia; 2003: 144. [In Russ.]
Murphy T.J., Paterson H.M., Mannick J.A., Lederer J.A. Injury, sepsis, and the regulation of Tolllike receptor responses. J. Leukoc. Biol. 2004; 75 (3): 400–407. http://dx.doi.org/10.1189/jlb.0503233. PMID: 14557385
Keel M., Trentz O. Pathophysiology of polytrauma. Injury. 2005; 36 (6):691–709. http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2004.12.037. PMID: 15910820
Mannick J.A., Rodrick M.L., Lederer J.A. The immunologic response to injury. J. Am. Coll. Surg. 2001; 193 (3): 237–244. http://dx.doi.org/10.1016/S10727515(01)010110. PMID: 11548792
Zellweger R., Ayala A., DeMaso C.M., Chaudry I.H. Traumahemor rhage causes prolonged depression in cellular immunity. Shock. 1995; 4 (2): 149–153. http://dx.doi.org/10.1097/00024382199508000 00012. PMID: 7496901
Abraham E., Freitas A.A. Hemorrhage produces abnormalities in lymphocyte function and lymphokine generation. J. Immunol. 1989; 142 (3): 899–906. PMID: 2492333
Swain S.D., Rohn T.T., Quinn M.T. Neutrophil priming in host defense: role of oxidants as priming agents. Antioxid. Redox Signal. 2002; 4 (1): 69–83. http://dx.doi.org/10.1089/152308602753625870. MID: 11970845
Brown G.E., Silver G.M., Reiff J., Allen R.C., Fink M.P. Polymorphonuclear neutrophil chemiluminescence in whole blood from blunt trauma patients with multiple injuries. J. Trauma. 1999; 46 (2): 297–305. http://dx.doi.org/10. 1097/0000537319990200000017. PMID: 10029037
Muehlstedt S.G., Richardson C.J., Lyte M., Rodriguez J.L. Systemic and pulmonary effector cell function after injury. Crit. Care Med. 2002; 30 (6): 1322–1326. http://dx.doi.org/10.1097/0000324620020600000029. PMID: 12072689

Additional Titles: Митохондриальная и ядерная ДНК у пострадавших с тяжелой сочетанной травмой

المؤلفون: M. Khubutia Sh, A. Shabanov K, M. Skulachev V, G. Bulava V, I. Savchenko M, O. Grebenchikov A., A. Sergeev A., D. Zorov B., R. Zinovkin A., М. Хубутия Ш., А. Шабанов К, М. Скулачев В., Г. Булава В., И. Савченко М, О. Гребенников А., А. Сергеев А., Д. Зоров Б., Р. Зиновкин А.

المصدر: General Reanimatology; Том 9, № 6 (2013); 24; Общая реаниматология; Том 9, № 6 (2013); 24; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2013-6

مصطلحات الفهرس: info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion, Рецензированная статья

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/88/24
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/88/24
Буржунова М.Г., Гусева О.Г., Рыбаков В.Ю., Кричевский Л.А., Козлов И.А.Общая реаниматология.
Мороз В.В., Перепелица СА., Голубев А.М., Голубев М.А.Цитокины -маркеры иммунореактивности у недоношенных новорожденных.Общая реаниматология.2011; 7 (5): 36—41.
Острова И.В., Аврущенко М.Ш., Волков А.В.Взаимосвязь уровня экспрессии белка GRP78 с выраженностью постишемического повреждения гиппокампа у крыс разного пола.Общая реаниматология.2011; 7 (6): 28—3
Смелая Т.В., Сальникова Л.Е., Мороз В.В., Голубев А.М., Заржец-кий Ю.В., Рубанович А.В.Генетический полиморфизм и частота развития осложнений при пневмонии различного генеза.Общая реаниматология.2011; 7 (2): 10—16.
Ермолов А.С., Абакумов М.М., Соколов В.А., Картавенко В.И., Галан-кина И.Е., Гараев Д.А.Структура госпитальной летальности при сочетанной травме и пути ее снижения.Хирургия. Журн. им. Н.И.Пи-рогова.2006; 9: 16—20.
Kollef M.H.Prevention of hospital-associated pneumonia and ventilator-associated pneumonia.Crit. Care Med.2004; 32 (6): 1396—1405.http://dx.doi.org/10.1097/01.CCM.0000128569.09113.FB. PMID: 15187525
Егорова Н.И., Власенко А.В., Мороз В.В., Яковлев В.Н., Алексеев В.Г.Вентилятор-ассоциированная пневмония: диагностика, профилактика, лечение (современное состояние вопроса).Общая реаниматология.2010; 6 (1): 79—88.
Хубутия М.Ш., Шабанов А.К., Черненькая Т.В., Годков М.А., Дорф-ман А.Г.Инфекционные легочные осложнения в реанимации и интенсивной терапии у пострадавших с сочетанной травмой.Общая реаниматология.2011; 7 (4): 24—27.
Гуманенко Е.К., Бояринцев В.В., Немченко Н.С., Рудь A.A., Никифо-ренко A.B., Павленко А.Н.С-реактивный белок при тяжелой соче-танной травме, не осложненной и осложненной сепсисом.Вестн. хирургии им. И.И.Грекова.2005; 164 (5): 55—5
Хубутия М.Ш., Шабанов А.К.Основные причины летальности у пострадавших с тяжелой сочетанной травмой в отделении реанимации.Скорая медицинская помощь.2010; 11 (3): 64—69.
Бодман К.-Ф., Лоренц Дж., Бауэр Т.Т., Эвиг С., Трауман М., Фогель Ф.Нозокомиальная пневмония: профилактика, диагностика, лечение.Клин. микробиол. иантимикроб. химиотерапия.2004; 6 (1): 92—102.
Moore F.A., Moore E.E., Poggetti R., McAnena OJ., Peterson V.M., Abernathy C.M., Parsons P.E.Gut bacterial translocation via the portal vein: a clinical perspective with major torso trauma.J. Trauma.1991; 31 (5): 629-638.http://dx.doi.org/10.1097/00005373-199105000-00006. PMID: 2030509
СеровВ.В., ПауковВ.С. (ред.).Воспаление. Руководство для врачей. М.: Медицина; 1995: 640.
Абакумов М.М., Булава Г.В.Повреждения груди, живота и иммунная система. М.: Фирма Стром; 2006: 176.
Castellheim A., Brekke O.L., Espevik T., Harboe M., Mollnes T.E.Innate immune responses to danger signals in systemic inflammatory response syndrome and sepsis.Scand. J. Immunol.2009; 69 (6): 479—491.http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-3083.2009.02255.x. PMID: 19439008
Ibrahim Z.A., Armour C.L., Phipps S., Sukkar M.B.RAGE and TLRs: relatives, friends or neighbours?Mol. Immunol.2013; 56 (4): 739—744.http://dx.doi.org/10.1016/j.molimm.2013.07.008. PMID: 23954397
Hauser CJ., Sursal T., Rodriguez E.K., Appleton P.T., Zhang Q., Itagaki K.Mitochondrial damage associated molecular patterns from femoral ream-ings activate neutrophils through formyl peptide receptors and P44/42 MAP kinase.J. Orthop. Trauma.2010; 24 (9): 534—538.http://dx.doi.org/10.1097/B0T.0b013e3181ec4991. PMID: 20736789
Zhang Q., Raoof M., Chen Y., Sumi Y., Sursal T., Junger W., Brohi K., Itagaki K., Hauser C.J.Circulating mitochondrial DAMPs cause inflammatory responses to injury.Nature.2010; 464 (7285): 104—107.http://dx.doi.org/10.1038/nature08780. PMID: 20203610
Raoof M., Zhang Q., Itagaki K., Hauser C.J.Mitochondrial peptides are potent immune activators that activate human neutrophils via FPR—1.J. Trauma.2010; 68 (6): 1328—1332.http://dx.doi.org/10.1097/TA.0b013e3181dcd28d. PMID: 20539176
Lewis W., Day BJ., Copeland W.C.Mitochondrial toxicity of NRTI antiviral drugs: an integrated cellular perspective.Nat. Rev. Drug Discov.2003; 2 (10): 812—822.http://dx.doi.org/10.1038/nrd1201. PMID: 14526384
Yu M.Circulating cell-free mitochondrial DNA as a novel cancer biomarker: opportunities and challenges.Mitochondrial DNA.2012; 23 (5): 329-332.http://dx.doi.org/10.3109/19401736.2012.696625. PMID: 22775429
Lam N.Y., Rainer T.H., Chiu R.W., Joynt G.M., Lo Y.M.Plasma mitochondrial DNA concentrations after trauma.Clin. Chem.2004; 50 (1): 213—216. PMID: 14709653
Lo Y.M., Rainer T.H., Chan L.Y., Hjelm N.M., Cocks R.A.Plasma DNA as a prognostic marker in trauma patients.Clin. Chem.2000; 46 (3): 319-3 PMID: 10702517
Myers M.B., Mittelsta-edt R.A., Heflich R.H.Using phiX174 DNA as an exogenous reference for measuring mitochondrial DNA copy number.Biotechniques.2009; 47 (4): 867—869.http://dx.doi.org/10.2144/000113222. PMID: 19852770
Baker S.P., O’Neill B., Haddon W., Long W.B.The injury severity score: a method for describing patients with multiple injuries and evaluating emergency care.J. Trauma.1974; 14 (3): 187—196. PMID: 4814394
Isenberg H.D. (ed.).Clinical Microbiology Procedures Handbook. Washington: American Society for Microbiology; 1992.
Афифи А., Эйзен С.Статистический анализ: подход с использованием ЭВМ. М.: Мир; 1982: 488.
Петри А., Сэбин К.Наглядная статистика в медицине. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2003: 143.
Yamanouchi S., Kudo D., Yamada M., Miyagawa N., Furukawa H., Kushimoto S.Plasma mitochondrial DNA levels in patients with trauma and severe sepsis: Time course and the association with clinical status.J. Crit. Care.2013; 28 (6): 1027—1031.http://dx.doi.org/10.1016/). jcrc.2013.05.006. PMID: 23787023
Bianchi M.E.DAMPs, PAMPs and alarmins: all we need to know about danger.J. Leukoc. Biol.2007; 81 (1): 1—5.http://dx.doi.org/10.1189/jlb.0306164. PMID: 17032697

Additional Titles: Динамика уровня прокальцитонина при развитии нозокомиальной пневмонии у пострадавших с тяжелой сочетанной травмой в отделении реанимации

المؤلفون: A. Shabanov K., M. Khubutia Sh., G. Bulava V., N. Beloborodova V., A. Kuzovlev N., O. Grebenchikov A., D. Kosolapov A., M. Shpitonkov I., А. Шабанов К, М. Хубутия Ш., Г. Булава В., Н. Белобородова В., А. Кузовлев Н, О. Гребенчиков А., Д. Косолапов А., М. Шпитонков И.

المصدر: General Reanimatology; Том IX № 5 2013 г.; 11; Общая реаниматология; Том IX № 5 2013 г.; 11; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2013-5

مصطلحات الفهرس: info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion, Рецензированная статья

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/94/103
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/94/103
Ермолов А.С., Абакумов M.M., Соколов В.А., Картавенко В.И., Галан-кина И.Е., Гараев Д.А.Хирургия. Журн. им. Н.И.Пи-рогова.
Каменева Е.А.Диагностика и интенсивное лечение острого респираторного дистресс-синдрома у больных с тяжелой сочетанной травмой: автореф. дис. . д-ра мед. наук. М., 2010: 46.
Kollef M.H.Prevention of hospital-associated pneumonia and ventilator-associated pneumonia.Crit. Care Med.2004; 32 (6): 1396—1405.
Егорова Н.И., Власенко А.В., Мороз В.В., Яковлев В.Н., Алексеев В.Г.Вентилятор-ассоциированная пневмония: диагностика, профилактика, лечение (современное состояние вопроса).Общая реаниматология.2010; 6 (1): 79—88.
Гельфанд Б.Р., Белоцерковский Б.З., Проценко Д.Н., Руднов В.А., Яковлев С.В., Еремин С.Р., Сидоренко С.В., Белобородов В.Б., Ефимен-ко Н.А., Романовский Ю.Я., Ярошецкий А.И.Нозокомиальная пневмония в хирургии. Методические рекомендации.Инфекции и антимикробная терапия.2003; 5/6: 124—129.
Епифанцева Н.Н., Борщикова Т.И., Чурляев Ю.А., Данцигер Д.Г., Никифорова Н.В., Херингсон Л.Г.Эндогенная интоксикация при легочных осложнениях у больных с тяжелой черепно-мозговой травмой.Общая реаниматология.2008; 4 (3): 36—43.
Мороз В.В., Голубев А.М., Кузовлев А.Н., Писарев В.М., Половников С.Г., Шабанов А.К., Голубев М.А.Сурфактантный протеин A (SP-A) — прогностический молекулярный биомаркер при остром респираторном дистресс-синдроме.Общая реаниматология.2013; 9 (3): 5—13.
Мороз В.В., Голубев А.М., Кузовлев А.Н., Писарев В.М., Шабанов А.К., Голубев М.А.Сурфактантный протеин D — биомаркер острого респираторного дистресс-синдрома.Общаяреаниматология.2013; 9 (4): 11 — 17.
Wanner GA., Keel M., Steckholzer U., Beier W., Stocker R., Ertel W.Relationship between procalcitonin plasma levels and severity of injury, sepsis, organ failure, and mortality in injured patients.Crit. Care Med.2000; 28 (4): 950—957.
Белобородова Н.В., Попов ДА.Тест на прокальцитонин: алгоритмы применения и новые возможности. Пособие для врачей. М.; 2008: 43—48.
Castelli G.P., Pognani C., Cita M., Paladini R.Procalcitonin as a prognostic and diagnostic tool for septic complications after major trauma.Crit. Care Med.2009; 37 (6): 1845—1849.
Mimoz O., Benoist J.F., Edouard A.R., Assicot M., Bohuon C., Samii K.Procalcitonin and C-reactive protein during the early posttraumatic systemic inflammatory respons syndrome.Intensive Care Med.1998; 24 (2): 185—188.
Jensen J.U., Lundgren J.Procalcitonin monitoring in trauma intensive care patients: how helpful is it?Crit. Care Med.2009; 37 (6): 2093—2094.
Ramirez P., Garcia M.A., Ferrer M., AznarJ., Valencia M., SahuquilloJ.M., Menendez R., Asenjo MA., Torres A.Sequential measurements of procal-citonin levels in diagnosing ventilator-associated pneumonia.Eur. Respir. J.2008; 31 (2): 356—362.
Baker S.P., O’Neill B., Haddon WJr., Long W.B.The injury severity score: a method for describing patients with multiple injuries and evaluating emergency care.J. Trauma.1974; 14 (3): 187—196.
Сепсис в начале XXI века: классификация, клинико-диагностическая концепция и лечение. Методические рекомендации. М.: РАСХИ; 2004: 130.
Афифи А.Статистический анализ: подход с использованием. М.: Мир; 1982: 488.
Петри А., Сэбин К.Наглядная статистика в медицине. М.: ГЭОТАР Медиа; 2003: 143.
Zweig M.H., Campbell G.Receiver-operating characteristic (ROC) plots: a fundamental evaluation tool in clinical medicine.Clin. Chem.1993; 39 (4): 561-577.