يعرض 1 - 20 نتائج من 600 نتيجة بحث عن '"ГИДРОКСИАПАТИТ"', وقت الاستعلام: 0.61s تنقيح النتائج
  1. 1
    Academic Journal

    المساهمون: Исследование выполнено за счет гранта Российского Научного Фонда (РНФ), No 19-72-10105, https://rscf.ru/project/19-72-10105/

    المصدر: Alternative Energy and Ecology (ISJAEE); № 6 (2024); 103-111 ; Альтернативная энергетика и экология (ISJAEE); № 6 (2024); 103-111 ; 1608-8298

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.isjaee.com/jour/article/view/2434/1980; Hench L. L. Bioceramics: From concept to clinic. J. Am. Ceram. Soc. 1991; 74:1487–1510. DOI:10.1111/j.1151-2916.1991. tb 07132.x.; Kravanja K. A., Xhanari K., Marevci M. K., Maver U., Finšgar M. Ketoprofen-loaded PLGA-based bioactive coating prepared by supercritical foaming on a TiAl6V4 substrate for local drug delivery in orthopedic applications. Prog. Org. Coat. 2024; 186:108026. DOI:10.1016/j.porgcoat.2023.108026.; Garrido B., Martin-Morata A., Dosta S., Cano I.G. Improving the bond strength of bioactive glass coatings obtained by atmospheric plasma spraying. Surf. Coat. Technol. 2023; 470:129837. DOI:10.1016/j.surfcoat.2023.129837; Hiromoto S. Self-healing property of hydroxyapatite and octacalcium phosphate coatings on pure magnesium and magnesium alloy. Corros. Sci. 2015; 100:284–294. DOI:10.1016/j.corsci.2015.08.001; Zhang Y., Roux C., Rouchaud A., Meddahi-Pellé A., Gueguen V., Mangeney C. et al. Recent advances in Fe-based bioresorbable stents: Materials design and biosafety. Bioact. Mater. 2024; 31:333–354. DOI:10.1016/j.bioactmat.2023.07.024.; Choi D. H., Kim H. T., Kim Y., Park K., Kim M. S., Lee J. H. et al. Nature-derived, biocompatible silibinin based bioresorbable neuromorphic device for implantable medical electronics. Appl. Surf. Sci. 2023; 621:156814. DOI:10.1016/j.apsusc.2023.156814.; Shtin V., Novikov V., Chekalkin T., Gunther V., Marchenko E., Choynzonov E. et al. Repair of Orbital Post-Traumatic Wall Defects by Custom-Made TiNi Mesh Endografts. J. Funct. Biomater. 2019 27;10(3):27. DOI:10.3390/jfb10030027.; Song D., Yu C., Zhang C., Kang G. Superelasticity degradation of NiTi shape memory alloy in wide ranges of temperature and loading level: Experimental observation and micromechanical constitutive model. Int. J. Plast. 2023; 161:103487. DOI:10.1016/j.ijplas.2022.103487; Zhang J., Wang S., Hu P., Zhang Y., Ding H., Huang Y. A novel strategy for fabricating phase transforming NiTi shape memory alloy via multiple processes of severe plastic deformation. Mater. Lett. 2023:135439. DOI:10.1016/j.matlet.2023.135439.; Ohtsu N., Yamasaki K., Taniho H., Konaka Y., Tate K. Pulsed anodization of NiTi alloy to form a biofunctional Ni-free oxide layer for corrosion protection and hydrophilicity. Surf. Coat. Technol. 2021; 412:127039. DOI:10.1016/j.surfcoat.2021.127039.; Gyunter V. E., Marchenko E. S., Gyunter S. V., Baigonakova G. A. The Influence of the Surface Layer on the Combination of Properties of Thin TiNi Alloy Wires. Tech. Phys. Lett. 2018; 44:811–813. DOI:10.1134/S1063785018090195.; Kazemi M., Ahangarani S., Esmailian M., Shanaghi A. Investigation on the corrosion behavior and biocompatibility of Ti-6Al-4V implant coated with HA/TiN dual layer for medical applications. Surf. Coat. Technol. 2020; 397:126044. DOI:10.1016/j.surfcoat.2020.126044.; Jin S., Zhang Y., Wang Q., Zhang D., Zhang S. Influence of TiN coating on the biocompatibility of medical NiTi alloy. Colloids Surf. B. 2013; 101:343–349. DOI:10.1016/j.colsurfb.2012.06.029.; Baigonakova G. A., Marchenko E. S., Yasenchuk Yu. F., Kokorev O. V., Vorozhtsov A. B., Kulbakin D. E. Microstructural characterization, wettability and cytocompatibility of gradient coatings synthesized by gas nitriding of three-layer Ti/Ni/Ti nanolaminates magnetron sputtered on the TiNi substrate. Surf. Coat. Technol. 2022; 436:128291. DOI:10.1016/j.surfcoat.2022.128291.; Jankowska E., Makowiecka M., Jurczyk M. Electrochemical performance of sealed Nisingle bondMH batteries using nanocrystalline TiNi-type hydride electrodes. Renew. Energy. 2008; 33(2):211–215. DOI:10.1016/j.renene.2007.05.026; Wang C. S., Lei Y. Q., Wang Q. D. Effects of Nb and Pd on the electrochemical properties of a Ti-Ni hydrogen-storage electrode. J. Power Sources. 1998;70(2):222– 227. DOI:10.1016/S0378-7753(97)02674-8; Liu J., Gao X., Song D., Yunshi Z., Shihai Y. The characteristics of the microencapsulated Ti–Ni alloys and their electrodes. J. Alloys Compd. 1995; 231(1– 2):852–855. DOI:10.1016/0925-8388(95)01771-2; Hosni B., Khaldi C., ElKedim O., Fenineche N., Lamloumi J. Electrochemical properties of Ti2Ni hydrogen storage alloy. Int. J. Hydrogen Energy. 2017; 42(2):1420–1428. DOI:10.1016/j.ijhydene.2016.04.032; Ribeiro R. M., Lemus L. F., dos Santos D. S. Hydrogen AbsorptionStudy of Ti-Base Alloys Performed by Melt-Spinning. Mater. Res. 2013; 16:679–682. DOI:10.1590/S1516-14392013005000049; Balcerzak M., Jurczyk M. Influence of Gaseous Activation on Hydrogen Sorption Properties of TiNi and Ti2Ni Alloys. J. Mater. Eng. Perform. 2015; 24(4):1710– 1717. DOI:10.1007/s11665-015-1445-x; Wu T., Lu T., Shi H., Wang J., Ye J. Enhanced osteogenesis, angiogenesis and inhibited osteoclastogenesis of a calcium phosphate cement incorporated with strontium doped calcium silicate bioceramic. Ceram. Int. 2023; 49(4):6630–6645. DOI:10.1016/j.ceramint.2022.10.142; Shirdar M. R., Sudin I., Taheri M. M., Keyvanfar A., Yusop M. Z. M., Kadir M. R. A. A novel hydroxyapatite composite reinforced with titanium nanotubes coated on Co-Cr-based alloy. Vacuum 2015; 122:82–89. DOI:10.1016/j.vacuum.2015.09.008.; Narayanan R., Seshadri S. K., Kwon T. Y., Kim K. H. Calcium Phosphate-Based Coatings on Titanium and Its Alloys. J. Biomed. Mater. Res. B Appl. Biomater. 2008;85(1):279-299. DOI:10.1002/jbm.b.30932.; https://www.isjaee.com/jour/article/view/2434

  2. 2
    Academic Journal
  3. 3
    Conference

    المساهمون: Хабас, Тамара Андреевна

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Химия и химическая технология в XXI веке : материалы XXIV Международной научно-практической конференции студентов и молодых ученых имени выдающихся химиков Л. П. Кулёва и Н. М. Кижнера, посвященной 85-летию со дня рождения профессора А. В. Кравцова, Томск, 15-19 мая 2023 г. Т. 1; Николаева, О. О. Влияние условий получения на свойства синтетического гидроксиапатита / О. О. Николаева, Н. М. Балтабаева; науч. рук. Т. А. Хабас // Химия и химическая технология в XXI веке : материалы XXIV Международной научно-практической конференции студентов и молодых ученых имени выдающихся химиков Л. П. Кулёва и Н. М. Кижнера, посвященной 85-летию со дня рождения профессора А. В. Кравцова, Томск, 15-19 мая 2023 г. : в 2 т. — Томск : Изд-во ТПУ, 2023. — Т. 1. — [С. 134-135].; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/76623

  4. 4
    Academic Journal

    المصدر: Сборник статей

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Актуальные вопросы современной медицинской науки и здравоохранения: сборник статей VIII Международной научно-практической конференции молодых учёных и студентов, Екатеринбург, 19-20 апреля 2023 г.; Новые возможности реминерализации эмали у детей в период сменного прикуса / К. Р. Сабирова, А. Я. Канторович, Е. В. Брусницына, И. В. Гаврилов. - Текст электронный. // Актуальные вопросы современной медицинской науки и здравоохранения: сборник статей VIII Международной научно-практической конференции молодых учёных и студентов, Екатеринбург, 19-20 апреля 2023 г. – Екатеринбург : УГМУ, 2023. – C. 2898-2903.; http://elib.usma.ru/handle/usma/14480

  5. 5
    Academic Journal

    المساهمون: This research was funded by the Complex Program of Basic Research under the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences within the Basic Research Topic No. 04192022-0001 of the Research Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases entitled "Molecular, cellular and biomechanical mechanisms of the pathogenesis of cardiovascular diseases in the development of new cardiovascular disease treatments based on personalized pharmacotherapy, the introduction of minimally invasive medical devices, biomaterials and, Работа выполнена при поддержке комплексной программы фундаментальных научных исследований СО РАН в рамках фундаментальной темы ФГБНУ «НИИ комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний» № 0419-2022-0001 «Молекулярные, клеточные и биомеханические механизмы патогенеза сердечно-сосудистых заболеваний в разработке новых методов лечения заболеваний сердечно-сосудистой системы на основе персонифицированной фармакотерапии, внедрения малоинвазивных медицинских изделий, биоматериалов и тканеинженерных имплантатов»

    المصدر: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 15, № 4 (2023); 515-528 ; Трансплантология; Том 15, № 4 (2023); 515-528 ; 2542-0909 ; 2074-0506

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/829/823; Otto CM, Nishimura RA, Bonow RO, Carabello BA, Erwin JP, Gentile F, et al. 2020 ACC/AHA guideline for the management of patients with valvular heart disease: a report of the American College of Cardiology/American Heart Association Joint Committee on clinical practice guidelines. Circulation. 2021;143(5):e72– e227. PMID: 33332149 https://doi.org/10.1161/CIR.0000000000000923; Pibarot P, Dumesnil JG. Prosthetic heart valves: selection of the optimal prosthesis and long-term management. Circulation. 2009;119(7):1034–1048. PMID: 19237674 https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.108.778886; Marro M, Kossar AP, Xue Y, Frasca A, Levy RJ, Ferrari G. Noncalcific mechanisms of bioprosthetic structural valve degeneration. J Am Heart Assoc. 2021;10(3):e018921. PMID: 33494616 https://doi.org/10.1161/JAHA.120.018921; Barbarash LS, Rogulina NV, Rutkovskaya NV, Ovcharenko EA. Mechanisms underlying bioprosthetic heart valve dysfunctions. Complex Issues of Cardiovascular Diseases. 2018;7(2):10–24. (In Russ.). https://doi.org/10.17802/2306-1278-2018-7-2-10-24; Резвова М.А., Кудрявцева Ю.А. Современные подходы к химической модификации белков в биологических тканях, последствия и применение. Биоорганическая химия. 2017;44(1):1–16. https://doi.org/10.7868/S0132342318010025; Carpentier A, Lemaigre G, Robert L, Carpentier S, Dubost C. Biological factors affecting long-term results of valvular heterografts. J Thorac Cardiovasc Surg. 1969;58(4):467–483. PMID: 5344189 https://doi.org/10.1016/S0022-5223(19)42561-0; Carpentier A, Deloche A, Relland J, Fabiani JN, Forman J, Camilleri JP, et al. Six-year follow-up of glutaraldehydepreserved heterografts. With particular reference to the treatment of congenital valve malformations. J Thorac Cardiovasc Surg. 1974;68(5):771–782. PMID: 4214526 https://doi.org/10.1016/S00225223(19)41639-5; Барбараш Л.С., Журавлева И.Ю. Эволюция биопротезов клапанов сердца: достижения и проблемы двух десятилетий. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2012;(1):4–11. https://doi.org/10.17802/2306-1278-2012-1-4-11; Tod TJ, Dove JS. The association of bound aldehyde content with bioprosthetic tissue calcification. J Mater Sci Mater Med. 2016;27(1):8. PMID: 26610931 https://doi.org/10.1007/s10856-0155623-z; Дедух Н.В. Организация и функционирование костной ткани. В кн: Корж Н.А., Поворознюк В.В., Дедух Н.В., Зупанц И.А. (ред.) Остеопороз: эпидемиология, клиника, диагностика, профилактика и лечение. Харьков: Золотые страницы; 2002. с. 10–29.; Bailey MT, Pillarisetti S, Xiao H, Vyavahare NR. Role of elastin in pathologic calcification of xenograft heart valves. J Biomed Mater Res A. 2003;66(1):93–102. PMID: 12833435 https://doi.org/10.1002/jbm.a.10543; Kim KM, Herrera GA, Battarbee HD. Role of glutaraldehyde in calcification of porcine aortic valve fibroblasts. Am J Pathol. 1999;154(3):843–852. PMID: 10079262 https://doi.org/10.1016/S0002-9440(10)65331-X; Kim KM. Cells, rather than extracellular matrix, nucleate apatite in glutaraldehyde-treated vascular tissue. J Biomed Mater Res. 2002;59(4):639–645. PMID: 11774325 https://doi.org/10.1002/jbm.10038; Барбараш Л.С., Караськов А.М., Семеновский М.Л., Журавлева И.Ю., Одаренко Ю.Н., Вавилов П.А. и др. Биопротезы клапанов сердца в России: опыт трех клиник. Патология кровообращения и кардиохирургия. 2011;2:21–26.; Levy RJ, Zenker JA, Bernhard WF. Porcine bioprosthetic valve calcification in bovine left ventricle-aorta shunts: studies of the deposition of vitamin K-dependent proteins. Ann Thorac Surg. 1983;36(2):187–192. PMID: 6603825 https://doi.org/10.1016/s0003-4975(10)60454-7; Shen M, Marie P, Farge D, Carpentier S, De Pollak C, Hott M, et al. Osteopontin is associated with bioprosthetic heart valve calcification in humans. C R Acad Sci III. 1997;320(1):49–57. PMID: 9099263 https://doi.org/10.1016/s07644469(99)80086-9; Srivatsa SS, Harrity PJ, Maercklein PB, Kleppe L, Veinot J, Edwards WD, et al. Increased cellular expression of matrix proteins that regulate mineralization is associated with calcification of native human and porcine xenograft bioprosthetic heart valves. J Clin Invest. 1997;99(5):996–1009. PMID: 9062358 https://doi.org/10.1172/JCI119265; Lu F, Wu H, Bai Y, Gong D, Xia C, Li Q, et al. Evidence of osteogenic regulation in calcific porcine aortic valves. Heart Surg Forum. 2018;21(5):E375– E381. PMID: 30311888 https://doi.org/10.1532/hsf.2033; Fujisawa R, Tamura M. Acidic bone matrix proteins and their roles in calcification. Front Biosci (Landmark Ed). 2012;17(5):1891–1903. PMID: 22201843 https://doi.org/10.2741/4026; Carvalho MS, Cabral JMS, da Silva CL, Vashishth D. Bone matrix non-collagenous proteins in tissue engineering: creating new bone by mimicking the extracellular matrix. Polymers (Basel). 2021;13(7):1095. PMID: 33808184 https://doi.org/10.3390/polym13071095; Kostyunin AE, Glushkova TV, Lobov AA, Ovcharenko EA, Zainullina BR, Bogdanov LA, et al. Proteolytic degradation is a major contributor to bioprosthetic heart valve failure. J Am Heart Assoc. 2023;12(1):e028215. PMID: 36565196 https://doi.org/10.1161/JAHA.122.028215; Мухамадияров Р.А., Рутковская Н.В., Кокорин С.Г., Одаренко Ю.Н., Мильто И.В., Барбараш Л.С. Типирование клеток биопротезов клапанов сердца, эксплантированных вследствие развития кальций-ассоциированных дисфункций. Бюллетень сибирской медицины. 2018;17(4):94–102. https://doi.org/10.20538/1682-03632018-4-94-102; Sakaue T, Nakaoka H, Shikata F, Aono J, Kurata M, Uetani, T, et al. Biochemical and histological evidence of deteriorated bioprosthetic valve leaflets: the accumulation of fibrinogen and plasminogen. Biol Open. 2018;7(8):pii:bio034009. PMID: 30089611 https://doi.org/10.1242/bio.034009; Shetty R, Pibarot P, Audet A, Janvier R, Dagenais F, Perron J, et al. Lipidmediated inflammation and degeneration of bioprosthetic heart valves. Eur J Clin Invest. 2009;39(6):471–480. PMID: 19490057 https://doi.org/10.1111/j.13652362.2009.02132.x; Andrault PM, Panwar P, Mackenzie NCW, Brömme D. Elastolytic activity of cysteine cathepsins K, S, and V promotes vascular calcification. Sci Rep. 2019;9(1):9682. PMID: 31273243 https://doi.org/10.1038/s41598-019-45918-1; Vyavahare N, Jones PL, Tallapragada S, Levy RJ. Inhibition of matrix metalloproteinase activity attenuates tenascin-C production and calcification of implanted purified elastin in rats. Am J Pathol. 2000;157(3):885–893. PMID: 10980128 https://doi.org/10.1016/S00029440(10)64602-0; Stein PD, Wang CH, Riddle JM, Magilligan DJ Jr. Leukocytes, platelets, and surface microstructure of spontaneously degenerated porcine bioprosthetic valves. J Card Surg. 1988;3(3):253–261. PMID: 2980025 https://doi.org/10.1111/j.1540-8191.1988.tb00246.x; Butany J, Collins MJ, Nair V, Leask RL, Scully HE, Williams WG, et al. Morphological findings in explanted Toronto stentless porcine valves. Cardiovasc Pathol. 2006;15(1):41–48. PMID: 16414456 https://doi.org/10.1016/j.carpath.2005.08.010; Курапеев Д.И., Лаврешин А.В., Анисимов С.В. Тканевая инженерия клапанов сердца: децеллюляризация аллои ксенографтов. Клеточная имплантология и тканевая инженерия. 2012;7(1):34–39.; Soares JS, Feaver KR, Zhang W, Kamensky D, Aggarwal A, Sacks MS. Biomechanical behavior of bioprosthetic heart valve heterograft tissues: characterization, simulation, and performance. Cardiovasc Eng Technol. 2016;7(4):309–351. PMID: 27507280 https://doi.org/10.1007/s13239-016-0276-8; Thubrikar MJ, Deck JD, Aouad J, Nolan SP. Role of mechanical stress in calcification of aortic bioprosthetic valves. J Thorac Cardiovasc Surg. 1983;86(1):115–125. PMID: 6865456; Sabbah HN, Hamid MS, Stein PD. Mechanical stresses on closed cusps of porcine bioprosthetic valves: correlation with sites of calcification. Ann Thorac Surg. 1986;42(1):93–96. PMID: 3729623 https://doi.org/10.1016/s00034975(10)61845-0; Kiesendahl N, Schmitz C, Menne M, Schmitz-Rode T, Steinseifer U. In vitro calcification of bioprosthetic heart valves: test fluid validation on prosthetic material samples. Ann Biomed Eng. 2021;49(2):885–899. PMID: 32989592 https://doi.org/10.1007/s10439-02002618-6; Nitsche C, Kammerlander AA, Knechtelsdorfer K, Kraiger JA, Goliasch G, Dona C, et al. Determinants of bioprosthetic aortic valve degeneration. JACC Cardiovasc Imaging. 2020;13(2Pt1):345–353. PMID: 30878425 https://doi.org/10.1016/j.jcmg.2019.01.027; Liao KK, Li X, John R, Amatya DM, Joyce LD, Park SJ, et al. Mechani cal stress: an independent determinant of early bioprosthetic calcification in humans. Ann Thorac Surg. 2008;86(2):491–495. PMID: 18640322 https://doi.org/10.1016/j.athoracsur.2008.03.061; Sellaro TL, Hildebrand D, Lu Q, Vyavahare N, Scott M, Sacks MS. Effects of collagen fiber orientation on the response of biologically derived soft tissue biomaterials to cyclic loading. J Biomed Mater Res A. 2007;80(1):194–205. PMID: 17041913 https://doi.org/10.1002/jbm.a.30871; Margueratt SD, Lee JM. Stress state during fixation determines susceptibility to fatigue-linked biodegradation in bioprosthetic heart valve materials. Biomed Sci Instrum. 2002;38:145–150. PMID: 12085592; Golomb G, Schoen FJ, Smith MS, Linden J, Dixon M, Levy RJ. The role of glutaraldehyde-induced cross-links in calcification of bovine pericardium used in cardiac valve bioprostheses. Am J Pathol. 1987;127(1):122–130. PMID:3105321; Everaerts F, Torrianni M, van Luyn M, van Wachem P, Feijen J, Hendriks M. Reduced calcification of bioprostheses, cross-linked via an improved carbodiimide based method. Biomaterials. 2004;25(24):5523–5530. PMID: 15142734 https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2003.12.054; Guo G, Jin L, Jin W, Chen L, Lei Y, Wang Y. Radical polymerization-crosslinking method for improving extracellular matrix stability in bioprosthetic heart valves with reduced potential for calcification and inflammatory response. Acta Biomater. 2018;82:44–55. PMID: 30326277 https://doi.org/10.1016/j.actbio.2018.10.017; Jin W, Guo G, Chen L, Lei Y, Wang Y. Elastin stabilization through polyphe nol and ferric chloride combined treatment for the enhancement of bioprosthetic heart valve anticalcification. Artif Organs. 2018;42(11):1062–1069. PMID: 30058211 https://doi.org/10.1111/aor.13151; Lim HG, Kim SH, Choi SY, Kim YJ. Anticalcification effects of decellularization, solvent, and detoxification treatment for genipin and glutaraldehyde fixation of bovine pericardium. Eur J Cardiothorac Surg. 2012;41(2):383–390. PMID: 21683607 https://doi.org/10.1016/j.ejcts.2011.05.016; Tam H, Zhang W, Infante D, Parchment N, Sacks M, Vyavahare N. Fixation of bovine pericardium-based tissue biomaterial with irreversible chemistry improves biochemical and biomechanical properties. J Cardiovasc Transl Res. 2017;10(2):194–205. PMID: 28213846 https://doi.org/10.1007/s12265-0179733-5; Барбараш Л.С., Борисов В.В., Рутковская Н.В., Бураго А.Ю., Одарен ко Ю.Н., Стасев А.Н. и др. Клинико-морфологическое исследование причин дисфункций эпоксиобработанных ксеноаортальных биопротезов в митральной позиции. Кардиология и сердечнососудистая хирургия. 2014;7(4):84–86.; Barbarash L, Rutkovskaya N, Barbarash O, Odarenko Y, Stasev A, Uchasova E. Prosthetic heart valve selection in women of childbearing age with acquired heart disease: a case report. J Med Case Rep. 2016;10:51. PMID: 26956734 https://doi.org/10.1186/s13256-016-0821-y; Karaskov A, Sharifulin R, Zheleznev S, Demin I, Lenko E, BogachevProkophiev A. Results of the Ross procedure in adults: a single-centre experience of 741 operations. Eur J Cardiothorac Surg. 2016;49(5):e97–e104. PMID: 27130952 https://doi.org/10.1093/ejcts/ezw047; Shang H, Claessens SM, Tian B, Wright GA. Aldehyde reduction in a novel pericardial tissue reduces calcification using rabbit intramuscular model. J Mater Sci Mater Med. 2017;28(1):16. PMID: 28000112 https://doi.org/10.1007/s10856-016-5829-8; Яблонский П.П., Чеботарь С., Тудорахе И., Хаверих А. Тканевые матрицы клапанов сердца: состояние проблемы и перспективы. Вестник Санкт-Петербургского университета. 2016;11(2):51– 61. https://doi.org/10.21638/11701/spbu11.2016.206; Collatusso C, Roderjan JG, de Noronha L, Klosowski A, Suss PH, Guarita-Souza LC, et al. Decellularization as a method to reduce calcification in bovine pericardium bioprosthetic valves. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 2019;29(2):302–311ivz041. PMID: 30848795 https://doi.org/10.1093/icvts/ivz041; Collatusso C, Roderjan JG, Vieira ED, Myague NI, de Noronha L, Costa FD. Decellularization as an anticalcification method in stentless bovine pericardium valve prosthesis: a study in sheep. Rev Bras Cir Cardiovasc. 2011;26(3):419–426. PMID: 22086579 https://doi.org/10.5935/1678-9741.20110017; Human P, Bezuidenhout D, Aikawa E, Zilla P. Residual bioprosthetic valve immunogenicity: forgotten, not lost. Front Cardiovasc Med. 2022;8:760635. PMID: 35059444 https://doi.org/10.3389/fcvm.2021.760635; Manji RA, Ekser B, Menkis AH, Cooper DKC. Bioprosthetic heart valves of the future. Xenotransplantation. 2014; 21(1):1–10. PMID: 24444036 https://doi.org/10.1111/xen.12080; Lee W, Long C, Ramsoondar J, Ayares D, Cooper DK, Manji RA, et al. Human antibody recognition of xenogeneic antigens (NeuGc and Gal) on porcine heart valves: could genetically modified pig heart valves reduce structural valve deterioration? Xenotransplantation. 2016;23(5):370–380. PMID: 27511593 https://doi.org/10.1111/xen.12254; Zhang R, Wang Y, Chen L, Wang R, Li C, Li X, et al. Reducing immunoreactivity of porcine bioprosthetic heart valves by genetically-deleting three major gly can antigens, GGTA1/β4GalNT2/CMAH. Acta Biomater. 2018;72:196–205. PMID: 29631050 https://doi.org/10.1016/j.actbio.2018.03.055; McGregor CG, Kogelberg H, Vlasin M, Byrne GW. Gal-knockout bioprostheses exhibit less immune stimulation compared to standard biological heart valves. J Heart Valve Dis. 2013;22(3):383– 390. PMID: 24151765; Kim MS, Lim HG, Kim YJ. Calcification of decellularized and alphagalactosidase-treated bovine pericardial tissue in an alpha-Gal knock-out mouse implantation model: comparison with primate pericardial tissue. Eur J Cardiothorac Surg. 2016;49(3):894–900. PMID: 25994817 https://doi.org/10.1093/ejcts/ezv189; Rahmani B, McGregor C, Byrne G, Burriesci G. A durable porcine pericardial surgical bioprosthetic heart valve: a proof of concept. J Cardiovasc Transl Res. 2019;12(4):331–337. PMID: 30756359 https://doi.org/10.1007/s12265-01909868-3; McGregor C, Salmonsmith J, Burriesci G, Byrne G. Biological equivalence of GGTA-1 glycosyltransferase knockout and standard porcine pericardial tissue using 90-day mitral valve implantation in adolescent sheep. Cardiovasc Eng Technol. 2022;13(3):363–372. PMID: 34820778 https://doi.org/10.1007/s13239-02100585-0; Ding K, Zheng C, Huang X, Zhang S, Li M, Lei Y, et al. A PEGylation method of fabricating bioprosthetic heart valves based on glutaraldehyde and 2-amino-4-pentenoic acid co-crosslinking with improved antithrombogenicity and cytocompatibility. Acta Biomater. 2022;144:279–291. PMID: 35365404 https://doi.org/10.1016/j.actbio.2022.03.026; Костюнин А., Резвова М.А., Глушкова Т.В., Шишкова Д.К., Кутихин А.Г., Акентьева Т.Н. и др. Модификация поливиниловым спиртом эпоксиобработанного ксеноперикарда повышает его резистентность к кальцификации in vitro. Трансплантология. 2023;15(1):34–45. https://doi.org/10.23873/2074-05062023-15-1-34-45; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/829

  6. 6
    Academic Journal

    المصدر: The Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 38, № 3 (2023); 209-215 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 38, № 3 (2023); 209-215 ; 2713-265X ; 2713-2927

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/1964/878; Sebaa S., Behnke J.M., Baroudi D., Hakem A., Abu-Madi M.A. Prevalence and risk factors of intestinal protozoan infection among symptomatic and asymptomatic populations in rural and urban areas of southern Algeria. BMC Infect. Dis. 2021;21(1):888. DOI:10.1186/s12879-021-06615-5.; Zhao D.Y., Jiang T.T., Chen W.Q., Zhang Y.L., Deng Y., Xu B.L. et al. Prevalence of intestinal protozoan infections among rural children in Henan Province from 2014 to 2015. Zhongguo Xue Xi Chong Bing Fang Zhi Za Zhi. 2021;33(3):287–292. DOI:10.16250/j.32.1374.2021074.; Bauhofer A.F.L., Cossa-Moiane I., Marques S., Guimarães E.L., Munlela B. Anapakala E. et al. Intestinal protozoan infections among children 0-168 months with diarrhea in Mozambique: June 2014 – January 2018. PLoS Negl. Trop. Dis. 2020;14(4):e0008195. DOI:10.1371/journal.pntd.0008195.; Toychiev A., Abdujapparov S., Imamov A., Navruzov B., Davis N., Badalova N. et al. Intestinal helminths and protozoan infections in patients with colorectal cancer: prevalence and possible association with cancer pathogenesis. Parasitology Research. 2018;117(12):3715–3723. DOI:10.1007/s00436-018-6070-9.; Никешина Т.В., Аракельян Р.С., Шендо Г.Л., Коваленео А.В., Киселева А.А., Аракелянц О.А. Контаминация водных объектов Астраханской области гельминтно-протозойными инвазиями. Пермский медицинский журнал. 2022;39(1):94–103. DOI:10.17816/pmj39194-103.; Olajide J.S., Qu Z., Yang S., Oyelade O.J., Cai J. Eimeria proteins: order amidst disorder. Parasites & Vectors. 2022;15(1):38. DOI:10.1186/s13071-022-05159-0.; Tenan M.R., Nicolle A., Moralli D., Verbouwe E., Jankowska J.D., Durin M.A. et al. Aluminum enters mammalian cells and destabilizes chromosome structure and number. Int. J. Mol. Sci. 2021;22(17):9515. DOI:10.3390/ijms22179515.; Mold M., Cottle J., Exley C. Aluminium in brain tissue in epilepsy: A case report from Camelford. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2019;16(12):2129. DOI:10.3390/ijerph16122129.; Niu Q. Overview of the relationship between aluminum exposure and health of human being. Advances in Experimental Medicine and Biology. 2018;1091:1–31. DOI:10.1007/978-981-13-1370-7_1.; Coulson J.M., Hughes B.W. Dose-response relationships in aluminium toxicity in humans. Clinical Toxicology (Philadelphia, Pa.). 2022;60(4):415–428. DOI:10.1080/15563650.2022.2029879.; Tian E., Watanabe F., Martin B., Zangari M. Innate biomineralization. Int. J. Mol. Sci. 2020;21(14):4820. DOI:10.3390/ijms21144820.; Cardoso G., Tondon A., Maia L., Cunha M.R., Zavaglia C., Kaunas R.R. In vivo approach of calcium deficient hydroxyapatite filler as bone induction factor. Mater. Sci. Eng. C. Mater. Biol. Appl. 2019;(99):999–1006. DOI:10.1016/j.msec.2019.02.060.; Способ переработки костей для получения гидроксиапатита. Патент RU 2642634 C1. Пивоваров А.В., Муктаров О.Д. Дата регистрации: 29.03.2017. URL: https://www.fips.ru/registers-doc-view/fips_servlet?DB=RUPAT&DocNumber=2642634&TypeFile=html (09.03.2023).; Способы получения кремнийзамещенного гидроксиапатита и биоактивного покрытия на его основе. Патент RU 2635189 С1. Лясникова А.В., Лясников В.Н., Дударева О.А., Маркелова О.А., Гришина И.П., Пичхидзе С.Я. Дата регистрации: 17.07.2016. URL: https://www.fips.ru/registers-docview/fips_servlet?DB=RUPAT&DocNumber=2635189&-TypeFile=html (09.03.2023).; Katsui K., Takami S., Ohashi K., Otsuka H., Uni S., Shibahara T. et al. Molecular identification of Eimeria species in liver and feces of naturally infected rabbits in Japan. Parasitology Research. 2022;121(9):2733–2738. DOI:10.1007/s00436-022-07580-x.; Burrell A., Tomley F.M., Vaughan S., Marugan-Hernandez V. Life cycle stages, specific organelles and invasion mechanisms of Eimeria species. Parasitology. 2020;147(3):263–278. DOI:10.1017/S0031182019001562.; Heo I., Dutta D., Schaefer D.A., Iakobachvili N., Artegiani B., Sachs N. et al. Modelling Cryptosporidium infection in human small intestinal and lung organoids. Nature Microbiology. 2018;3(7):814–823. DOI:10.1038/s41564-018-0177-8.; Laurent F., Lacroix-Lamandé S. Innate immune responses play a key role in controlling infection of the intestinal epithelium by Cryptosporidium. International Journal for Parasitology. 2017;47(12):711–721. DOI:10.1016/j.ijpara.2017.08.001.; Chai Y., Liu Z., Du Y., Wang L., Lu J., Zhang Q. et al. Hydroxyapatite reinforced inorganic-organic hybrid nanocomposite as high-performance adsorbents for bilirubin removal in vitro and in pig models. Bioactive Materials. 2021;6(12):4772–4785. DOI:10.1016/j.bioactmat.2021.05.017.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/1964

  7. 7
    Academic Journal

    المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 8, № 2 (2023); 203-213 ; 2587-9596 ; 2541-9420

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4088/2537; Кесян Г.А., Карапетян Г.С., Шуйский А.А., Уразгильдеев Р.З., Арсеньев И.Г., Кесян О.Г. Алгоритм выполнения реверсивного эндопротезирования плечевого сустава при дефиците костной массы лопатки. Современная наука: Актуальные проблемы теории и практики. Серия: Естественные и технические науки. 2021; 7: 190-193. doi:10.37882/2223-2966.2021.07.19; Кесян Г.А., Карапетян Г.С., Шуйский А.А., Уразгильдеев Р.З., Арсеньев И.Г., Кесян О.Г. Особенности выполнения реверсивной артропластики плечевого сустава в условиях дефектов и дефицита костной массы суставной впадины лопатки. Саратовский научно-медицинский журнал. 2021; 17(3): 449-452.; Кесян Г.А., Карапетян Г.С., Шуйский А.А., Уразгильдеев Р.З., Арсеньев И.Г., Кесян О.Г., и др. Реверсивное эндопротезирование плечевого сустава при дефектах гленоида с использованием первично-ревизионного метаглена. Вестник травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова. 2021; 28(2): 13-20. doi:10.17816/vto64589; Gates S, Sager B, Khazzam M. Preoperative glenoid considerations for shoulder arthroplasty: A review. EFORT Open Rev. 2020; 5(3): 126-137. doi:10.1302/2058-5241.5.190011; Gupta A, Thussbas C, Koch M, Seebauer L. Management of glenoid bone defects with reverse shoulder arthroplasty – Surgical technique and clinical outcomes. J Shoulder Elbow Surg. 2018; 27(5): 853-862. doi:10.1016/j.jse.2017.10.004; Malhas A, Rashid A, Copas D, Bale S, Trail I. Glenoid bone loss in primary and revision shoulder arthroplasty. Shoulder Elbow. 2016; 8(4): 1-12. doi:10.1177/1758573216648601; Seidl AJ, Williams GR, Boileau P. Challenges in reverse shoulder arthroplasty: Addressing glenoid bone loss. Orthopedics. 2016; 39(1): 14-23. doi:10.3928/01477447-20160111-01; Кесян Г.А., Карапетян Г.С., Шуйский А.А., Уразгильдеев Р.З., Арсеньев И.Г., Кесян О.Г. Диагностика и методы решения снижения минеральной плотности костной ткани и деформаций суставной впадины лопатки при реверсивной артропластике плечевого сустава. Acta biomedica scientifica. 2022; 7(1): 154-160. doi:10.29413/ABS.2022-7.1.18; Letissier H, Chaoui J, Bercik MJ, Boileau P, Le Nen D, Stindel E, et al. Glenoid subchondral bone density in osteoarthritis: a comparative study of asymmetric and symmetric erosion patterns. Orthop Traumatol Surg Res. 2020; 106(6): 1127-1134. doi:10.1016/j.otsr.2020.06.004; Mahaffy MD, Knowles NK, Berkmortel C, Abdic S, Walch G, Johnson JA, et al. Density distribution of the type E2 glenoid in cuff tear arthropathy. Shoulder Elbow Surg. 2020; 29(1): 167-174. doi:10.1016/j.jse.2019.05.046; DiStefano JG, Park AY, Nguyen TQD, Diederichs G, Buckley JM, Montgomery III WH. Optimal screw placement for base plate fixation in reverse total shoulder arthroplasty. J Shoulder Elbow Surg. 2011; 20: 467-476. doi:10.1016/j.jse.2010.06.001; Берченко Г.Н., Кесян Г.А., Уразгильдеев Р.З., Арсеньев И.Г., Микелаишвили Д.С., Болбут М.В. Сравнительное экспериментально-морфологическое исследование влияния некоторых используемых в травматолого-ортопедической практике кальций-фосфатных материалов на активизацию репаративного остеогенеза. Acta biomedica scientifica. 2006; 4(50): 327-332.; Берченко Г.Н., Кесян Г.А. Использование композиционного материала КоллапАн в травматологии и ортопедии для активизации репаративного остеогенеза. Гены и клетки. 2017; 12(3): 42-43.; Берченко Г.Н. Биология заживления переломов кости и влияние биокомпозиционного наноструктурированного материала КоллапАн на активизацию репаративного остеогенеза. Медицинский алфавит. 2011; 1(2): 14-19.; Raina DB, Markevičiūtė V, Stravinskas M, Kok J, Jacobson I, Liu Y, et al. A new augmentation method for improved screw fixation in fragile bone. Front Bioeng Biotechnol. 2022; 10: 816250. doi:10.3389/fbioe.2022.816250; Kanno H, Aizawa T, Hashimoto K, Itoi E. Novel augmentation technique of percutaneous pedicle screw fixation using hydroxyapatite granules in the osteoporotic lumbar spine: A cadaveric biomechanical analysis. Eur Spine J. 2021; 1(30): 71-78. doi:10.1007/s00586-020-06451-2; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4088

  8. 8
  9. 9
    Report

    المساهمون: Твердохлебов, Сергей Иванович

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Дубиненко Г. Е. Разработка композиционных материалов на основе линейных полиэфиров и фосфатов кальция для 3D печати остеостимулирующих имплантатов и исследование их свойств : научный доклад / Г. Е. Дубиненко; Национальный исследовательский Томский политехнический университет (ТПУ), Управление научной деятельности (УНД), Отделение экспериментальной физики (ОЭФ); науч. рук. С. И. Твердохлебов. — Томск, 2023.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/75188

  10. 10
    Report

    المساهمون: Хабас, Тамара Андреевна

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: Николаева О. О. Керамический материал на основе гидроксиапатита медицинского назначения : научный доклад / О. О. Николаева; Национальный исследовательский Томский политехнический университет (ТПУ), Управление научной деятельности (УНД), Научно-образовательный центр Н.М.Кижнера (НОЦ Н.М.Кижнера); науч. рук. Т. А. Хабас. — Томск, 2023.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/75119

  11. 11
    Academic Journal
  12. 12
    Academic Journal
  13. 13
    Academic Journal
  14. 14
    Academic Journal

    المساهمون: The work was financially supported by the SPSR “Chemical processes, reagents and technologies, bioregulators and bioorganic chemistry” under assignment 2.1.04.7 “Functionalization of nanocomposite materials based on calcium phosphates under conditions of interaction with synthetic polymers and biopolymers”, 2021-2025., Работа выполнена при финансовой поддержке ГПНИ «Химические процессы, реагенты и технологии, биорегуляторы и биооргхимия» по заданию 2.1.04.7 «Функционализация нанокомпозиционных материалов на основе кальцийфосфатов в условиях взаимодействия с синтетическими полимерами и биополимерами», 2021-2025 гг.

    المصدر: Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus, Chemical Series; Том 58, № 2 (2022); 158-168 ; Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия химических наук; Том 58, № 2 (2022); 158-168 ; 2524-2342 ; 1561-8331 ; 10.29235/1561-8331-2022-58-2

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vestichem.belnauka.by/jour/article/view/718/661; Wang, J. Nano-Hydroxyapatite Coating Promotes Porous Calcium Phosphate Ceramic-Induced Osteogenesis Via BMP/Smad Signaling Pathway / J. Wang, M. Wang, F. Chen // International Journal of Nanomedicine. - 2019. - Vol. 14. -P. 7987-8000. https://doi.org/10.2147/IJN.S216182; Сафронова, Т. В. Неорганические материалы для регенеративной медицины / Т. В. Сафронова // Неорганические материалы. - 2021. - Т. 57, № 5. - С. 467-499. https://doi.org/10.31857/S0002337X21050067; Daculsi, G. 20 years of biphasic calcium phosphate bioceramics development and applications / G. Daculsi, S. Baroth, R. Z. LeGeros // Advances in bioceramics and porous ceramics II. - Wiley: American Ceramic Society, 2010. - Р. 45-58. https://doi.org/10.1002/9780470584354.ch5; Баринов, С. М. Подходы к созданию пористых материалов на основе фосфатов кальция, предназначенных для регенерации костной ткани / С. М. Баринов, В. С. Комлев // Неорганические материалы. - 2016. - Т. 52, № 4. - С. 383-391. https://doi.org/10.7868/S0002337X16040023; Doremus, R. H. Review: Bioceramics / R. H. Doremus // J. Mater. Sci. - 1992. - Vol. 27. - P. 285-297. https://doi.org/10.1007/bf00543915; Bioactive Calcium Phosphate-Based Composites for Bone Regeneration / M. Tavoni [et al.] // Journal of Composites Science. - 2021. - Vol. 5. - P. 227-254. https://doi.org/10.3390/jcs5090227; Баринов, С. М. Биокерамика на основе фосфатов кальция / С. М. Баринов, В. С. Комлев. - М.: Наука, 2005. -204 с.; Role of hydroxyapatite nanoparticle size in bone cell proliferation / Y. Cai [et al.] // Journal of Materials Chemistry. -2007. - Vol. 17, N 36. - P. 3780-3787. https://doi.org/10.1039/B705129H; Calcium phosphate ceramic foam obtained by firing a hydroxyapatite - monocalcium phosphate monohydrate powder mixture / V. K. Krut'ko [et al.] // Glass and ceramics. - 2022. - Vol. 78, N 11-12. - Р. 476-480. https://doi.org/10.1007/s10717-022-00435-y; Dorozhkin, S. V. Calcium orthophosphate bioceramics / S. V. Dorozhkin // Ceramics International. - 2015. - N 41. -P. 13913-13966. https://doi.org/10.1016/j.ceramint.2015.08.004; Крутько, В. К. Термические превращения в композиционных материалах на основе гидроксиапатита и диоксида циркония / В. К. Крутько, А. И. Кулак, О. Н. Мусская // Неорганические материалы. - 2017. - Т. 53, № 4. - С. 427-434. https://doi.org/10.7868/S0002337X17040091; Effect of CaF2 on densification and properties of hydroxyapatite-zirconia composites for biomedical applications / H.-W. Kim [et al.] // Biomaterials. - 2002. - Vol. 23. - P. 4113-4121. https://doi.org/10.1016/s0142-9612(02)00150-3; Calcium Phosphate Foams: Potential Scaffolds for Bone Tissue Modeling in Three Dimension / E. B. Montufar [et al.] // 3D Cell Culture. Methods and Protocols / ed. Z. Koledova. - New York: Humana Press, 2017. - P. 79-94. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7021-6_6; Bone marrow stromal cells and their use in regenerating bone / R. Cancedda [et al.] // Tissue Engineering of Cartilage and Bone: Novartis Foundation Symposium. - Chichester, UK: John Wiley & Sons, 2003. - Vol. 249. - P. 133-147. https://doi.org/10.1002/0470867973.ch10; Les allongements progressifs de l'avant-bras chez l'enfant. A propos d'une serie de 14 cas / F. Launay [et al.] // Revue de Chirurgie Orthopedique et Reparatrice de l'Appareil Moteur. - 2001. - Vol. 87. - P. 786-795. https://doi.org/RCO-12-2001-87-8-0035-1040-101019-ART5; Bioinspired approaches to toughen calcium phosphate-based ceramics for bone repair / P. Dee [et al.] // Journal of the Mechanical Behavior of Biomedical Materials. - 2020. - N 112. - Article ID 104078. https://doi.org/10.1016/j.jmbbm.2020.104078; Hench, L. L. Bioceramics / L. L. Hench // Journal of the American Ceramic Society. - 1998. - Vol. 81, N 7. - P. 1705-1728. https://doi.org/10.1111/j.1151-2916.1998.tb02540.x; Solutions able to reproduce in vivo surface-structure change in bioactive glass-ceramic A-W / T. Kokubo [et al.] // Journal of Biomedical Materials Research. - 1990. - N 24. - P. 721-734. https://doi.org/10.1002/jbm.820240607; Термическая эволюция кальцийфосфатной пенокерамики, полученной на основе гидроксиапатита и монокальцийфосфата моногидрата / В. К. Крутько [и др.] // Физико-химические аспекты изучения кластеров, наноструктур и наноматериалов. - 2019. - № 11. - С. 615-623. https://doi.org/10.26456/pcascnn/2019.11.615; Синтетический гидроксиапатит - основа костнозамещающих биоматериалов / В. К. Крутько [и др.] // София. -2017. - № 1. - С. 50-57.; Kokubo, T. How useful is SBF in predicting in vivo bone bioactivity? / T. Kokubo, H. Takadama // Biomaterials. -2006. - N 27. - P. 2907-2915. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2006.01.017; Модифицирование кальцийфосфатной пенокерамики биоапатитом в среде SBF / В. К. Крутько [и др.] // Физико-химические аспекты изучения кластеров, наноструктур и наноматериалов. - 2021. - № 13. - С. 870-880. https://doi.org/10.26456/pcascnn/2021.13.870; Кальцийфосфатная пенокерамика с регулируемой биоактивностью / В. К. Крутько [и др.] // Физикохимические аспекты изучения кластеров, наноструктур и наноматериалов. - 2018. - № 10. - С. 374-382. https://doi.org/10.26456/pcascnn/2018.10.374; Clustering of calcium phosphate in SBF and in the system CaCl2-H3PO4-KCl-H2O / A. Oyane [et al.] // Bioceramics. -1999. - N 12. - P. 157-160. https://doi.org/10.1142/9789814291064_0038; Апатитные фосфаты кальция: жидкофазное формирование, термические превращения, терминология и идентификация / И. Е. Глазов [и др.] // Журнал неорганической химии. - 2022. - Т. 67, № 2. - С. 193-202. https://doi.org/10.31857/s0044457x22020040; Effect of platelet-poor plasma additive on the formation of biocompatible calcium phosphates / I. E. Glazov [et al.] // Materials Today Communications. - 2021. - Vol. 77. - P. 102224. https://doi.org/10.1016/j.mtcomm.2021.102224; Gernaey, K. V. 12th International Symposium on Process Systems Engineering and 25th European Symposium on Computer Aided Process Engineering: Parts A, B and C / K. V. Gernaey, J. K. Huusom, R. Gani. - Elsevier, 2015. - P. 1571-1575.; P-Tricalcium phosphate interferes with the assessment of crystallinity in burned skeletal remains / G. Piga [et al.] // Journal of Spectroscopy. - 2018. - Article 5954146. https://doi.org/10.1155/2018/5954146; Кальцийфосфатная пенокерамика на основе порошковой смеси гидроксиапатит-брушит / В. К. Крутько [и др.] // Стекло и керамика. - 2019. - № 7. - С. 38-44.; An improvement in sintering property of P-tricalcium phosphate by addition of calcium pyrophosphate / Ryu H.-S. [et al.] // Biomaterials. - 2002. - Vol. 23. - P. 909-914. https://doi.org/10.1016/s0142-9612(01)00201-0.; Thermal analysis and high-temperature X-ray diffraction of nano-tricalcium phosphate crystallization / A. I. Bucur [et al.] // Journal of Thermal Analysis and Calorimetry. - 2012. - N 107. - Р. 249-255. https://doi.org/10.1007/s10973-011-1753-9; Matrix macromolecules in hard tissues control the nucleation and hierarchical assembly of hydroxyapatite / S. Gajjera-man [et al.] // Journal of Biological Chemistry. - 2007. - Vol. 282. - P. 1193-1204. https://doi.org/10.1074/jbc.M604732200; https://vestichem.belnauka.by/jour/article/view/718

  15. 15
    Academic Journal

    المساهمون: The work was financially supported by the SPSR “Chemical processes, reagents and technologies, bioregulators and bioorganic chemistry” under assignment 2.1.04.7 for 2021–2025, Работа выполнена при финансовой поддержке ГПНИ «Химические процессы, реагенты и технологии, биорегуляторы и биооргхимия» по заданию 2.1.04.7 на 2021–2025 гг.

    المصدر: Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus, Chemical Series; Том 58, № 3 (2022); 263-272 ; Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия химических наук; Том 58, № 3 (2022); 263-272 ; 2524-2342 ; 1561-8331 ; 10.29235/1561-8331-2022-58-3

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://vestichem.belnauka.by/jour/article/view/736/672; Bucholz, R. Nonallograft osteoconductive bone graft substitutes / R. Bucholz // Clinical Orthopaedics and Related Research. – 2002. – Vol. 395, N 395. – P. 44–52. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00006; Bohner, M. β-Tricalcium Phosphate for Bone Substitution: Synthesis and Properties / M. Bohner, B. Le Gras Santorini, N. Dobelin // Acta Biomaterialia. – 2020. – Vol. 113. – P. 23–41. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2020.06.022; Bioceramics Composed of Octacalcium Phosphate Demonstrate Enhanced Biological Behavior / V. Komlev [et al.] // Applied Materials and Interfaces. – 2014. – Vol. 6. – P. 16610–16620. https://doi.org/10.1021/am502583p; Композиционные биоматериалы и покрытия на основе нанокристаллического гидроксиапатита / В. К. Крутько [и др.] // Вес. Нац. акад. навук Беларусi. Сер. хiм. навук. – 2008. – № 4. – С. 100–105.; Suchanek, W. Processing and properties of hydroxyapatite-based biomaterials for use as hard tissue replacement implants / W. Suchanek, M. Yoshimura // Journal of Materials Research and Technology. – 1998. – Vol. 13, N 1. – P. 94–117. https://doi.org/10.1557/JMR.1998.0015; Biomimetic hydroxyapatite-containing composite nanofibrous substrates for bone tissue engineering / J. Venugopal [et al.] // Philosophical Transactions of the Royal Society of London A: Math., Phys. Eng. Sci. – 2010. – Vol. 368, N 1917. – P. 2065–2081. https://doi.org/10.1098/rsta.2010.0012; Dosedependent osteogenic effect of octacalcium phosphate on mouse bone marrow stromal cells / T. Anada [et al.] // Tissue Engineering Part A. – 2008. – Vol. 14, N 6. – P. 965–978. https://doi.org/10.1089/tea.2007.0339; Osteoclast differentiation induced by synthetic octacalcium phosphate through receptor activator of NF-kappa β ligand expression in osteoblasts / M. Takami [et al.] // Tissue Engineering Part A. – 2009. – Vol. 15, N 12. – P. 3991–4000. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00006; Suzuki, O. Octacalcium phosphate (OCP)-based bone substitute materials / O. Suzuki // Japanese Dental Science Review. – 2013. – Vol. 49, N 2. – P. 58–71. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00006; Suzuki, O. Octacalcium phosphate bone substitute materials: Comparison between properties of biomaterials and other calcium phosphate materials / O. Suzuki, Y. Shiwaku, R. Hamai // Dental Materials Journal. – 2020. – Vol. 39, N 2. – P. 187–199. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00006; Momma, K. VESTA 3 for three-dimensional visualization of crystal, volumetric and morphology data / K. Momma, F. Izumi // Journal of Applied Crystallography. – 2011. – Vol. 44. – P. 1272–1276. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00006; Lu, X. Theoretical analysis of calcium phosphate precipitation in simulated body fluid / X. Lu, Y. Leng // Biomaterials. – 2005. – Vol. 26 – P. 1097–1108. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00006; Transformation of brushite to hydroxyapatite and effects of alginate additives / S. Uscar [et al.] // Journal of Crystal Growth. – 2017. – Vol. 468. – P. 774–780. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00006; Features of octacalcium phosphate thermolysis / V. I. Putlyaev [et al.] // Refractories and Industrial Ceramics. – 2014. – Vol. 54. – P. 420–424. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00006; Bone formation enhanced by implanted octacalcium phosphate involving conversion into Ca-deficient hydroxyapatite / O. Suzuki [et al.] // Biomaterials. – 2006. – Vol. 27, N 13. – P. 2671–2681. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00006; Arellano-Jimenez, M. J. Synthesis and hydrolysis of octacalciumphosphate and its characterization by electron microscopy and X-ray diffraction / M. J. Arellano-Jimenez, R. Garcia-Garcia, J. Reyes-Gasga // Journal of Physics and Chemistry of Solids. – 2009. – Vol. 70. – P. 390–395. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00006; Li, Y. Novel highly biodegradable biphasic tricalcium phosphates composed of α-tricalcium phosphate and β-tricalcium phosphate / Y. Li, W. Weng, K.C. Tam // Acta Biomaterialia. – 2007. – Vol. 3, N 2. – P. 251–254. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00006; In Vitro Transformation of OCP into Carbonate HA Under Physiological Conditions / R. Horvathova [et al.] // Materials Science and Engineering C. – 2008. – Vol. 28, N 8. – P. 1414–1419. https://doi.org/10.1016/j.msec.2008.03.010; Liu, Y. Homogeneous octacalcium phosphate precipitation: effect of temperature and pH / Y. Liu, R. M. Shelton, J. E. Barralet // Key Engineering Materials. – 2004. – Vol. 254–256. – P. 79–82. https://doi.org/10.4028/www.scientific.net/KEM.254-256.79; Collapsed octacalcium phosphate stabilized by ionic substitutions / E. Boanini [et al.] // Crystal Growth & Design. – 2010. – Vol. 10. – P. 3612–3617. https://doi.org/10.1021/cg100494f; Fluoride analysis of apatite crystals with a central planar OCP inclusion: concerning the role of F-ions on apatite/OCP/apatite structure formation / M. Ijima [et al.] // Calcified Tissue International. – 1996. – Vol. 59. – P. 377–384. https://doi.org/10.1007/s002239900143; LeGeros, R. Properties of osteoconductive biomaterials: calcium phosphates / R. LeGros // Clinical Orthopaedics and Related Research. – 2002. – Vol. 395. – P. 81–98. https://doi.org/10.1097/00003086-200202000-00009; Osteoconduction at porous hydroxyapatite with various pore configurations / B. Chang // Biomaterials. – 2000. – Vol. 21. – P. 1291–1298. https://doi.org/10.1016/S0142-9612(00)00030-2; Calcium phosphate-based osteoinductive materials / R. LeGros [et al.] // Chemical Reviews. – 2008. – Vol. 108. – P. 4742–4753. https://doi.org/10.1021/cr800427g; Hydroxyapatite Formation from Octacalcium Phosphate and Its Related Compounds: A Discussion of the Transformation Mechanism / T. Yokoi [et al.] // Bulletin of the Chemical Society of Japan. – 2020. – Vol. 93, N 5. – P. 2671–2681. https://doi.org/10.1246/bcsj.20200031; A facile hydrothermal method for synthesis of submillimeter-long octacalcium phosphate and hydroxyapatite as drug carriers with sustained release behaviors / C. Li [et al.] // Advanced Powder Technology. – 2014. – Vol. 25. – P. 1661–1666. https://doi.org/10.1016/j.apt.2014.06.001; Ginebra, M. P. Calcium phosphate cements as drug delivery materials / M. P. Ginebra, T. Traykova, J. A. Planell // Advanced Drug Delivery Reviews. – 2012. – Vol. 64. – P. 1090–1110. https://doi.org/10.1016/j.addr.2012.01.008; Iijima, M. Roles of fluoride on octacalcium phosphate and apatite formation on amorphous calcium phosphate substrate / M. Iijima, K. Onuma // Crystal Growth & Design. – 2018. – Vol. 18. – P. 2279–2288. https://doi.org/10.1021/acs.cgd.7b01717; Zeng, S. Enhanced hydrated properties of α-tricalcium phosphate bone cement mediated by loading magnesium substituted octacalcium phosphate / S. Zeng, H. Shi, T. Yu, C. Zhou // Advanced Powder Technology. – 2017. – Vol. 28. – P. 3288–3295. https://doi.org/10.1016/j.apt.2017.10.006; Powder Diffraction File JCPDS-ICDD PDF-2 (Set 1-47) [Electronic Resource]. – 2016. – Mode of access: https://www.icdd.com/pdf-2. – Date of access: 15.06.2022.; Kovrlija, L. Octacalcium phosphate: Innovative vehicle for the local biologically active substance delivery in bone regeneration / L. Kovrlija, J. Locs, D. Loca // Acta Biomaterialia. – 2021. – Vol. 135. – P. 27–47. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2021.08.021; https://vestichem.belnauka.by/jour/article/view/736

  16. 16
    Academic Journal

    المساهمون: The work was partially supported by a grant of Russian Science Foundation No. 19-72-10007 and a state task of Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation No. FZGU-2020-0036., Работа частично выполнена при финансовой поддержке гранта РНФ № 19-72-10007 и в рамках государственного задания Минобрнауки России № FZGU-2020-0036, реализуемых в Воронежском государственном университете.

    المصدر: Journal of the Russian Universities. Radioelectronics; Том 25, № 1 (2022); 47-53 ; Известия высших учебных заведений России. Радиоэлектроника; Том 25, № 1 (2022); 47-53 ; 2658-4794 ; 1993-8985

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://re.eltech.ru/jour/article/view/605/601; https://re.eltech.ru/jour/article/view/605/602; Магнитные и плазмонные композиционные наноструктуры для реализации оптических филь-тров в системах контроля и диагностики веществ и материалов / Р. С. Смердов, Ю. М. Спивак, В. А. Мош-ников, А. С. Мустафаев // Изв. вузов России. Радио-электроника. 2021. Т. 24, № 3. С. 81–97. doi:10.32603/1993-8985-2021-24-3-81-97; Hiromoto S., Yamamoto A. High corrosion re-sistance of magnesium coated with hydroxyapatite di-rectly synthesized in an aqueous solution // Electro-chimica Acta. 2009. Vol. 54, no. 27. P. 7085–7093. doi:10.1016/j.electacta.2009.07.033; Porous Silicon as a Nanomaterial for Disperse Transport Systems of Targeted Drug Delivery to the In-ner Ear / Yu. M. Spivak, A. O. Belorus, A. A. Panevin, S. Zhuravskii, V. A. Moshnikov, K. Bespalova, P. A. So-mov, Yu. Zhukov, A. S. Kolomov, L. V. Chistykova, N. Grigoryeva // Technical Physics. 2018. Vol. 63. P. 1352–1360. doi:10.1134/S1063784218090207; Porous silicon as efficient surface enhanced Ra-man scattering (SERS) substrate / F. Giorgis, E. Descrovi, A. Chiodoni, E. Froner, M. Scarpa, A. Venturello, F. Geo-baldo // Applied Surface Science. 2008. Vol. 254, no. 22. P. 7494–7497. doi:10.1016/j.apsusc.2008.06.029; Low-frequency dielectric relaxation in structures based on macroporous silicon with meso-macroporous skin-layer / R. Castro, Yu. Spivak, S. Shevchenko, V. Moshnikov // Materials. 2021. Vol. 16, no. 10. P. 2473. doi:10.3390/ma14102471; Experimental study of structural and optical properties of integrated MOCVD GaAs/Si(001) hetero-structures / P. V. Seredin, A. S. Lenshin, D. S. Zolotukhin, I. N. Arsentyev, D. N. Nikolaev, A. V. Zhabotinskiy // Phys-ica B: Condensed Matter. 2018. Vol. 530. P. 30–37. doi:10.1016/j.physb.2017.11.028; Lenshin A. S., Polkovnikova Y. A., Seredin P. V. Study of the deposition process of vinpocetine on the surface of porous silicon // Results in Physics. 2016. Vol. 6. P. 337–338. doi:10.1016/j.rinp.2016.06.008; Saxena V., Hasan A., Pandey L. M. Effect of inte-gration with hydroxyapatite: a review // Materials tech-nology. 2018. Vol. 33, no. 2. P. 79–92. doi:10.1080/10667857.2017.1377972; Maraeva E. V., Khalugarova K. Size analysis based on sorption study data for hydroxyapatite nanoparticles // Materials science forum. 2021. Vol. 1031. P. 172–177. doi:10.4028/www.scientific.net/MSF.1031.172; Dou L. B., Zhang Y. C., Sun H. W. Advances in Synthesis and Functional Modification of Nanohydroxy-apatite // J. of Nanomaterials. 2018. Vol. 2018. P. 1–8. doi:10.1155/2018/3106214; Evaluation of hemocompatibility and in vitro immersion on microwave-assisted hydroxyapatite–alumina nanocomposites / G. Radha, S. Balakumar, B. Venkatesan, E. Vellaichamy // Materials Science and Engineering: C. 2015. Vol. 50. P. 143–150. doi:10.1016/j.msec.2015.01.054; 3D printing of ceramics: a review / Z. W. Chen, Z. Y. Li, J. J. Li, Ch. Liu, Ch. Lao, Yu. Fu, Ch. Liu, Ya. Li, P. Wang, Y. He // J. of the European Ceramic Society. 2019. Vol. 39, no. 4. P. 661–687. doi:10.1016/j.jeurceramsoc.2018.11.013; Galindo T. G. P., Chai Y. D., Tagaya M. Hydroxyap-atite Nanoparticle Coating on Polymer for Constructing Effective Biointeractive Interfaces // J. of Nanomaterials. 2019. Vol. 2019. P. 1–24. doi:10.1155/2019/6495239; Zelenka T. Adsorption and desorption of nitro-gen at 77 K on micro- and mesoporous materials: Study of transport kinetics // J. of Microporous and Mesopo-rous Materials. 2016. Vol. 227. P. 202–209. doi:10.1016/j.micromeso.2016.03.009; Wang G, Wang K, Ren T. Improved analytic meth-ods for coal surface area and pore size distribution de-termination using 77K nitrogen adsorption experiment // Intern. J. of Mining Science and Technology. 2014. Vol. 24, no. 3. P. 329–334. doi:10.1016/j.ijmst.2014.03.007; https://re.eltech.ru/jour/article/view/605

  17. 17
    Academic Journal

    المصدر: Doklady of the National Academy of Sciences of Belarus; Том 66, № 5 (2022); 501-508 ; Доклады Национальной академии наук Беларуси; Том 66, № 5 (2022); 501-508 ; 2524-2431 ; 1561-8323 ; 10.29235/1561-8323-2022-66-5

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1089/1087; Uskoković, V. Disordering the disorder as the route to a higher order: incoherent crystallization of calcium phosphate through amorphous precursors / V. Uskoković // Cryst. Gr. Des. – 2019. – Vol. 19, N 8. – P. 4340–4357. https://doi.org/10.1021/ acs.cgd.9b00061; Introducing the crystalline phase of dicalcium phosphate monohydrate / B. Q. Lu [et al.] // Nature Comm. – 2020. – Vol. 11, N 1. – P. 1–8. https://doi.org/10.1038/s41467-020-15333-6; Additives control the stability of amorphous calcium carbonate via two different mechanisms: Surface adsorption versus bulk incorporation / Z. Zou [et al.] // Adv. Funct. Mater. – 2020. – Vol. 30, N 23. – Art. 2000003. https://doi.org/10.1002/ adfm.202000003; Use of amorphous calcium carbonate for the design of new materials / B. Cantaert [et al.] // ChemPlusChem. – 2017. – Vol. 82, N 1. – P. 107–120. https://doi.org/10.1002/cplu.201600457; Combes, C. Amorphous calcium phosphates: synthesis, properties and uses in biomaterials / C. Combes, C. Rey // Acta Biomater. – 2010. – Vol. 6, N 9. – P. 3362–3378. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2010.02.017; Ibsen, C. J. S. Apatite formation from amorphous calcium phosphate and mixed amorphous calcium phosphate/amorphous calcium carbonate / C. J. S. Ibsen, D. Chernyshov, H. Birkedal // Chem. Europ. J. – 2016. – Vol. 22, N 35. – P. 12347–12357. https://doi.org/10.1002/chem.201601280; Sakae, T. Historical review of biological apatite crystallography / T. Sakae, H. Nakada, J. P. LeGeros // J. Hard Tiss. Biol. – 2015. – Vol. 24, N 2. – P. 111–122. https://doi.org/10.2485/jhtb.24.111; Dorozhkin, S. V. Multiphasic calcium orthophosphate (CaPO4) bioceramics and their biomedical applications / S. V. Dorozhkin // Ceram. Intern. – 2016. – Vol. 42, N 6. – P. 6529–6554. https://doi.org/10.1016/j.ceramint.2016.01.062; Низкотемпературное формирование и идентификация двухфазных карбонат-фосфатов кальция / И. Е. Глазов [и др.] // Журн. неорган. химии. – 2022. – Т. 67, № 11. – С. 1–13. https://doi.org/ 10.31857/S0044457X22600876; Жидкофазный синтез карбонат-гидроксиапатита / И. Е. Глазов [и др.] // Вес. Нац. акад. навук Беларусi. Сер. хiм. навук. – 2019. – Т. 55, № 4. – С. 391–399. https://doi.org/10.29235/1561-8331-2019-55-4-391-399; Structural role and spatial distribution of carbonate ions in amorphous calcium phosphate / O. F. Yasar [et al.] // J. Phys. Chem. – 2021. – Vol. 125, N 8. – P. 4675–4693. https://doi.org/10.1021/acs.jpcc.0c10355; Апатитные фосфаты кальция: жидкофазное формирование, термические превращения, терминология и идентификация / И.Е. Глазов [и др.] // Журн. неорган. химии. – 2022. – Т. 67, № 2. – С. 193–202. https://doi.org/10.31857/s0044457x22020040; Nanoscale Ion Dynamics Control on Amorphous Calcium Carbonate Crystallization: Precise Control of Calcite Crystal Sizes / M. P. Asta [et al.] // J. Phys. Chem. C. – 2020. – Vol. 124, N 46. – P. 25645–25656. https://doi.org/10.1021/acs.jpcc.0c08670; Koga, N. Thermally induced transformations of calcium carbonate polymorphs precipitated selectively in ethanol/water solutions / N. Koga, Y. Yamane, T. Kimura // Thermochim. Acta. – 2011. – Vol. 512, N 1–2. – P. 13–21. https://doi.org/10.1016/j. tca.2010.08.016; High surface area calcite / L. N. Schultz [et al.] // J. Cryst. Gr. – 2013. – Vol. 371. – P. 34–38. https://doi.org/10.1016/j. jcrysgro.2013.01.049; https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1089

  18. 18
    Academic Journal

    المساهمون: Работа выполнена в рамках программы НИР Государственного задания на 2021–2023 гг. «Биоактивный остеосинтез повреждений длинных трубчатых костей», а также в рамках программы развития ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Томский политехнический университет».

    المصدر: Acta Biomedica Scientifica; Том 7, № 4 (2022); 201-211 ; 2587-9596 ; 2541-9420

    وصف الملف: application/pdf

    Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3661/2395; Губочкин Н.Г., Микитюк С.И., Иванов В.С. Пересадка кровоснабжаемых костных трансплантатов для лечения ложных суставов и дефектов костей. Гений ортопедии. 2014; (4): 5-10.; Тихилов Р.М., Кочиш А.Ю., Лушников С.П. Новый способ одномоментной несвободной пластики двумя кровоснабжаемыми костными аутотрансплантатами при ложных суставах обеих костей предплечья. Травматология иортопедия России. 2010; (1): 89-93. doi:10.21823/2311-2905-2010-0-1-89-93; Нагиева С.Э., Исмаилова Ф.Э., Нагиев Э.Р. Перспективы трансплантации костной ткани при замещении дефектов нижней челюсти (обзор литературы). Научное обозрение. Медицинские науки. 2016; (4): 69-77.; Анастасиева Е.А., Садовой М.А., Воропаева А.А., Кирилова И.А. Использование аутои аллотрансплантатов для замещения костных дефектов при резекциях опухолей костей. Травматология и ортопедия России. 2017; 23(3): 148-155. doi:10.21823/2311-2905-2017-23-3-148-155; Janicki P, Schmidmaier G. What should be the characteristics of the ideal bone graft substitute? Combining scaffolds with growth factors and/or stem cell. Injury. 2011; 42(2): 77-81. doi:10.1016/j.injury.2011.06.014; Власова Т.И., Арсентьева Е.В., Худайберенова Г.Д., Полякова Д.И. Современный взгляд на использование костных заменителей и возможность усиления их остеогенности клеточными технологиями. Медицинский вестник Башкортостана. 2020; 15(2): 53-58.; Тарасов А.Н. Костно-пластические вмешательства при лечении доброкачественных опухолей костей. Практическая медицина. 2019; 17(1): 59-63.; Хмелевская С.А. Регенеративная медицина и проблема бессмертия. Социально-политические науки. 2018; (3): 192-193.; Нурмухаметов М.Р., Макаров М.А., Бялик Е.И., Хренников Я.Б., Бялик В.Е., Нестеренкo В.А. Применение техники аутологичного индуцированного матрицей хондрогенеза в лечении пациентов с остеоартритом первого плюснефалангового сустава. Гений ортопедии. 2021; 27(2): 220-226. doi:10.18019/1028-4427-2021-27-2220-226; Ларионов П.М., Садовой М.А., Самохин А.Г., Рожнова О.М., Гусев А.Ф., Принц В.Я. и др. Создание тканеинженерного эквивалента костной ткани и перспективы его использования в травматологии и ортопедии. Хирургия позвоночника. 2014; (3): 77-85.; Ribeiro C, Pärssinen J, Sencadas V, Correia V, Miettinen S, Hytönen VP, et al. Dynamic piezoelectric stimulation enhances osteogenic differentiation of human adipose stem cells. J Biomed Mater Res. 2015; 103(6): 2172-5217. doi:10.1002/jbm.a.35368; Bolbasov EN, Lapin IN, Svetlichnyi VA, Lenivtseva YD, Malashicheva A, Malashichev Y, et al. The formation of calcium phosphate coatings by pulse laser deposition on the surface of polymeric ferroelectric. Applied Surface Science. 2015; 349: 420429. doi:10.1016/j.apsusc.2015.05.025; Thone M, Reychler H. Auto-transplantation of an impacted or retained maxillary canine. Rev Stomatol Chir Maxillofac. 2002; 103(5): 288-293. (In French).; Митрофанов А.И., Чевардин А.Ю. Технология комбинированного остеосинтеза при лечении больных с последствиями травм длинных трубчатых костей (технология остеосинтеза). Гений ортопедии. 2014; (3): 13-15.; Popkov AV, Popkov DA, Gorbach EN, Kononovich NA, Kulbakin DE, Choynzonov EL, et al. Solution blow spinning of PLLA/hydroxyapatite composite scaffolds for bone tissue engineering. Biomedical Materials (Bristol): Materials for tissue engineering and regenerative medicine. 2021; 16(5): 055005. doi:10.1088/1748605X/ac11ca; Рогожина А.С. Сравнительный анализ биосовместимости матриц на основе поликапролактона, содержащих гидроксиапатит и фатерит. Бюллетень медицинских интернетконференций. 2018; 8(9): 458.; Козадаев М.Н. Исследование биосовместимости скаффолда на основе поликапролактона в условиях in vivо. Бюллетень медицинских интернет-конференций. 2016; 6(8): 1423-1424.; Иванов А.Н., Куртукова М.О., Чибрикова Ю.А., Кустодов С.В.; Тяпкина Д.А., Бугаева И.О. и др. Сравнительная характеристика микроциркуляторных изменений у белых крыс при подкожных имплантационных тептах матриц из поликапролактона, содержащих ватерит и гидроксиапатит. Саратовский научно-медицинский журнал. 2019; 15(1): 98-103.; Арутюнян И.В., Тенчурин Т.Х., Кананыхина Е.Ю., Черников В.П., Васюкова О.А., Ельчанинов А.В и др. Нетканые материалы на основе поликапролактона для тканевой инженерии: выбор структуры и способа заселения. Гены и клетки. 2017; 12(1): 62-71. doi:10.23868/201703009; Севостьянова В.В., Миронов А.В., Глушкова Т.В., Бураго А.Ю., Матвеева В.Г., Антонова Л.В. Регенерация кровеносного сосуда на основе графта из поликапролактона в экспериментальном исследовании. Сибирский медицинский журнал. 2016; 31(1): 53-57.; Захарова И.С., Смирнова А.М., Живень М.К., Саая Ш.Б., Шевченко А.И., Закиян С.М. и др. Разработка тканеинженерных конструкций на основе смеси хитозана и поликапролактона для сосудистой хирургии. Гены и клетки. 2016; 11(4): 50-56.; Jeong GJ, Ahn GR, Park SJ, Hong JY, Kim BJ. A randomized, patient/evaluator-blinded, split-face study to compare the efficacy and safety of polycaprolactone and polynucleotide fillers in the correction of crow’s feet: The latest biostimulatory dermal filler for crow’s feet. J Cosmet Dermatol. 2020; 19(7): 1593-1599. doi:10.1111/jocd.13199; Попков А.В., Попков Д.А., Кобызев А.Е., Горбач Е.Н., Кононович Н.А., Горбач Е.С. Положительный опыт полнослойного замещения дефекта суставного хряща при использовании деградируемого имплантата с биоактивной поверхностью в сочетании с обогащённой тромбоцитами плазмой крови (экспериментальное исследование). Гений ортопедии. 2020; 26(3): 392-397. doi:10.18019/1028-4427-2020-26-3-392; Jia Z, Li H, Cao R, Xiao K, Lu J, Zhao D, et al. Electrospun nanofibrous membrane of fish collagen/polycaprolactone for cartilage regeneration. J Transl Res. 2020; 12(7): 3754-3766.; Liu Y, Tian K, Hao J, Yang T, Geng X, Zhang W. Biomimetic polyglycerol sebacate/polycaprolactone blend scaffolds for cartilage tissue engineering. J Mater Sci Mater Med. 2019; 30(5): 53. doi:10.1007/s10856-019-6257-3; Teoh SH, Goh BT, Lim J. Three-dimensional printed polycaprolactone scaffolds for bone regeneration success and future perspective. Tissue Eng Part A. 2019; 25(13-14): 931-935. doi:10.1089/ten.TEA.2019.0102; Liu Y, Wang R, Chen S, Xu Z, Wang Q, Yuan P, et al. Heparan sulfate loaded polycaprolactone-hydroxyapatite scaffolds with 3D printing for bone defect repair. Int J Biol Macromol. 2020; 148: 153162. doi:10.1016/j.ijbiomac.2020.01.109; Zhang B, Liwei G, Hongyi C, Vetnikos Y, Huang J, Narayan R, et al. Finite element evaluations of the mechanical properties of polycaprolactone/hydroxyapatite scaffolds by direct ink writing: Effects of pore geometry. J Mech Behav Biomed Mater. 2020; 104: 103665. doi:10.1016/j.jmbbm.2020.103665; Kosik-Kozioł A, Heljak M, Święszkowski W. Mechanical properties of hybrid triphasic scaffolds for osteochondral tissue engineering. Materials Letters. 2020; 261: 126893. doi:10.1016/j.matlet.2019.126893; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3661

  19. 19
    Academic Journal
  20. 20
    Academic Journal