نتائج البحث - "В. Мороз В"

1

Academic Journal

ГОЛОВНІ АКЦЕНТИ У ЗМІСТІ ПІДГОТОВКИ МАЙБУТНЬОГО ВЧИТЕЛЯ МУЗИКИ ДО РОЗВИТКУ ТВОРЧОГО ПОТЕНЦІАЛУ УЧНІВ

المؤلفون: Люріна Т. І., Люріна Т. І., Мороз В. В., Мороз В. В.

المصدر: Actual problems of sociology, psychology, pedagogy; № 31 (2016): АКТУАЛЬНІ ПРОБЛЕМИ СОЦІОЛОГІЇ, ПСИХОЛОГІЇ, ПЕДАГОГІКИ ; АКТУАЛЬНІ ПРОБЛЕМИ СОЦІОЛОГІЇ, ПСИХОЛОГІЇ, ПЕДАГОГІКИ; № 31 (2016): АКТУАЛЬНІ ПРОБЛЕМИ СОЦІОЛОГІЇ, ПСИХОЛОГІЇ, ПЕДАГОГІКИ ; ISSN 2311-214X

وصف الملف: application/pdf

Relation: http://apspp.soc.univ.kiev.ua/index.php/home/article/view/793/674; http://apspp.soc.univ.kiev.ua/index.php/home/article/view/793

الاتاحة: http://apspp.soc.univ.kiev.ua/index.php/home/article/view/793

View record in BASE

2

Electronic Resource

Coronavirus SARS-CoV-2: Hypotheses of Impact on the Circulatory System, Prospects for the Use of Perfluorocarbon Emulsion, and Feasibility of Biophysical Research Methods

Additional Titles: Коронавирус SARS-CoV-2: гипотезы влияния на кровеносную систему, перспективы использования перфторуглеродной эмульсии, возможности биофизических методов исследования

المؤلفون: V. Moroz V.; V A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology, A. Chernysh M.; V A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology, Elena Kozlova K.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology; I. M. Sechenov First Moscow State Medical University, Ministry of Health of Russia, В. Мороз В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ РР, А. Черныш М.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ РР, Е. Козлова К.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ РР; Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова Минздрава России

المصدر: General Reanimatology; Том 16, № 3 (2020); 4-13; Общая реаниматология; Том 16, № 3 (2020); 4-13; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2020-3

مصطلحات الفهرس: erythrocyte; membranes; hemoglobin derivatives; perftoran; cytoprotective action, эритроцит; мембраны; производные гемоглобина; перфторан; цитопротекторное действие, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion, Рецензированная статья

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1900/1403
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1900/1404
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1900/1403
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1900/1404
Varga Z., Flammer A.J., Steiger P., Haberecker M., Andermatt R., Zin-kernagel A.S., Mehra M.R., Schuepbach R.A., Ruschitzka F, Moch H. Endothelial cell infection and endotheliitis in COVID-19. Lancet. 2020; 395 (10234): 1417-1418. DOI: 10.1016/S0140-6736 (20)30937-5. PMID: 32325026.
Cyranoski D. Profile of a killer: the complex biology powering the co-ronavirus pandemic. Nature. 2020; 581 (780б): 22-26. DOI: 10.1038/d41586-020-01315-7.
Liu W., Li H. COVID-19: Attacks the 1-Beta Chain of Hemoglobin and Captures the Porphyrin to Inhibit Human Heme Metabolism. Chem-Rxiv. 2020; preprint. DOI: 10.26434/chemrxiv.11938173.v8.
Ja.nz D.R., Ware, L.B. The role of red blood cells and cell-free hemoglobin in the pathogenesis of ARDS. JIntensive Care2015; 3 (20). DOI: 10.1186/s40560-015-0086-3
SchaerD.J.,BuehlerP.W. Cell-free hemoglobin and its scavenger proteins: new disease models leading the way to targeted therapies. Cold Spring Harb Perspect Med. 2013; 3 (6): a013433. PMID: 23645855 PMCID: PMC3662353 DOI: 10.1101/cshperspect.a013433.
Kloka F.A., Kruipb M.J.H.A., Meerc N.J.M., Arbousd M.S., Gommerse D.A.M.P.J., Ka.ntf K.M., Kapteina F.H.J., Paassend J., Stalsa M.A.M., Huisma.na M.V., Endemane H. Incidence of Thrombotic Complications in Critically Ill ICU Patients With COVID-19. Thromb. Res. 2020; S0049-3848 (20)30120-1. DOI: 10.1016/j.thromres.2020.04.013. PMID: 32291094.
Ulrich H, Pilla,t M.M.. CD147 as a Target for COVID-19 Treatment: Suggested Effects of Azithromycin and Stem Cell Engagement. Stem Cell Reviews and Reports, 2020 DOI: 10.1007/s12015-020-09976-7
Cohen F.S. How Viruses Invade Cells. Biophys J. 2016; 110 (5): 1028-1032. DOI: 10.1016/j.bpj.2016.02.006
Orlov Y.I. Intravascular Hemolysis of Red Blood Cells in the Development of Organ Dysfunctions in Critical Conditions. General Reanima-tology 2008; 4 (2): 88. [In Russ.] DOI: 10.15360/1813-9779-2008-2-88.
Conran N, Almeida C.B. Hemolytic vascular inflammation: an update. Rev. Bras. Hematol. Hemoter. 2016; 38 (1): 55-57. DOI: 10.1016/j.bjhh.2015.10.004. PMID: 26969775.
Kozlova E.K., Chernysh A.M., Matteys T.N. Modeling of blood flow as the result of filtration-reabsorption processes in capillaries. Adv. Physiol. Educ. 2000; 23 (1): 32-39. DOI: 10.1152/advances.2000.23.1.S32. PMID: 10902525.
Park M.S. Diffuse alveolar hemorrhage. Tuberc. Respir. Dis. (Seoul). 2013; 74 (4): 151-162. DOI: 10.4046/trd.2013.74.4.151. PMID: 23678356.
Mitra A., Dwyre D.M., Schivo M., Thompson G.R., Cohen S.H., Ku N. GraffJ.P. Leukoerythroblastic reaction in a patient with COVID-19 infection. American Journal of Hematology. 2020, Mar 25. DOI: 10.1002/ajh.25793. [Epub ahead of print]
ChengR. Hospital treatment of serious and critical COVID-19 infection with high-dose Vitamin C. Cheng Integrative Health Center Blog http: //www.drwlc.com/blog/2020/03/18/hospital-treatment-of-se-rious-and-critical-covid-19-infection-with-high-dose-vitamin-c/?fbclid=IwAR3qzrI-tjYloYMlqGQRWUfoionQPWNYjFrRyv-GQ18Rg3GSG9Sn-Z7Ln58
Kozlova E., Chernysh A., Sergunova V, Gudkova O., Manchenko E., Kozlov A. Atomic force microscopy study of red blood cell membrane nanostructure during oxidation-reduction processes. J. Mol. Recog-nit. 2018; 31 (10): e2724. DOI: 10.1002/jmr.2724. PMID: 29740886.
Jensen F.B. Nitric oxide formation from nitrite in zebrafish. J. Exp. Biol. 2007; 210 (19): 3387-3394. DOI: 10.1242/jeb.008748. PMID: 17872992
Mo roz V V, Kozlova E.K., Bogushevich M.S., Chernysh A.M., Bliznyuk U.A., KozlovA.P,AlekseyevaP.Y. Red Blood Cell Membranes in Donors of Different Age Groups. General Reanimatology. 2006; 2 (3): 9-11. [In Russ.] DOI: 10.15360/1813-9779-2006-3-9-11.
Maevsky E, Ivanitsky G., Bogdanova L., Axenova O., Karmen N., Zhi-burt E, Senina R., Pushkin S., Maslennikov I., Orlov A., Marinicheva I. Clinical results of perftoran application: present and future. Artif. Cells Blood Substit. Immobil. Biotechnol. 2005; 33 (1): 37-46. DOI: 10.1081/bio-200046654. PMID: 15768564
Rafikova O., Sokolova E., RafikovR., NudlerE. Control of plasma nitric oxide bioactivity by perfluorocarbons: physiological mechanisms and clinical implications. Circulation. 2004; 110 (23): 3573-3580. PMID: 15557364 DOI: 10.1161/01.CIR.0000148782.37563.F8

View record in OAIster

3

Electronic Resource

Prospects of the Use of New Carbon Sorbents with Antimicrobial Properties in the Intensive Care Medicine

Additional Titles: Перспективность новых углеродных сорбентов, обладающих антимикробными свойствами, для интенсивной терапии

المؤلفون: V. Dolgikh T.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology, V. Likholobov A.; Hydrocarbons Processing Institute, Siberian Branch RAS, V. Moroz V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology, L. P'yanova G.; Hydrocarbons Processing Institute, Siberian Branch RAS, T. Dolgikh I.; Omsk State Medical University, Ministry of Health of Russia, A. Ershov V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology; Omsk State Medical University, Ministry of Health of Russia, M. Drozdetskaya S.; Hydrocarbons Processing Institute, Siberian Branch RAS, В. Долгих Т.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ РР, В. Лихолобов А.; Институт проблем переработки углеводородов СО РАН, В. Мороз В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ РР, Л. Пьянова Г.; Институт проблем переработки углеводородов СО РАН, Т. Долгих И.; Омский государственный медицинский университет Минздрава России, А. Ершов В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ РР; Омский государственный медицинский университет Минздрава России, М. Дроздецкая С.; Институт проблем переработки углеводородов СО РАН

المصدر: General Reanimatology; Том 15, № 1 (2019); 54-69; Общая реаниматология; Том 15, № 1 (2019); 54-69; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2019-1

مصطلحات الفهرس: modification; carbon sorbents; antimicrobial resistance; antimycotic resistance, модификация; углеродные сорбенты; антимикробная резистентность; антимикотическая резистентность, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1736/1290
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1736/1290
Хорошилов С.Е., Карпун Н.А., Половников С.Г., Никулин А.В., Кузовлев А.Н. Селективная гемосорбция эндотоксина в лечении абдоминального сепсиса. Общая реаниматология. 2009; 5 (6): 83-87. DOI: 10.15360/1813-9779-2009-6-83
Маткевич В.А., Поцхверия М.М., Гольдфарб Ю.С., Симонова А.Ю. Нарушения параметров гемостаза при острых отравлениях и пути их коррекции. Токсикологический вестник. 2018; 3: 18-26.
Александрович Ю.С., Пшениснов К.В. Инфузионные антигипоксанты при критических состояниях у детей. Общая реаниматология. 2014; 10 (3): 59-73. DOI: 10.15360/1813-9779-2014-3-59-74
Гаврилин С.В., Петров А.Н., Мешаков Д.П., Недомолкин С.В., Суворов В.В., Смирнов С.А., Самохвалов И.М. Оптимизация инфузионнотрансфузионной терапии в остром периоде травматической болезни. Скорая мед. помощь. 2016; 17 (3): 15-19.
Neal M.D., Hoffman M.K., Cuschieri J., Minei J.P., Maier R.V., Harbrecht B.G., Billiar T.R., Peitzman A.B., Moore E.E., Cohen M.J., Sperry J.L. Crystalloid to packed red blood cell transfusion ratio in the massively transfused patient: when a little goes a longway. J. Trauma Acute Care Surg. 2012; 72 (4): 892-898. DOI: 10.1097/TA.0b013e31823d84a7. PMID: 22491601
Терехова Р.П., Митиш В.А., Пасхалова Ю.С., Складан Г.Е., Прудникова С.А., Блатун Л.А. Возбудители остеомиелита длинных костей и их резистентность. Раны и раневые инфекции. 2016; 3 (2): 24-30. DOI: 10.17650/2408-9613-2016-3-2-24-30.
Moultrie D., Hawker J., Cole S. Factors associated with multidrug-resistant Acinetobacter transmission: an integrative review of the literature. AORN J. 2011; 94 (1): 27-36. DOI: 10.1016/j.aorn.2010.12.026. PMID: 21722769
Сергиенко В.К., Якубцевич Р.Э. Применение гемосорбции при перитоните у детей: коррекция газового состава и кислотно-щелочного равновесия крови. Экстренная медицина. 2018; 1: 78-85.
Павлова Л.А., Пастухов А.В., Копицына М.Н., Морозов А.С., Бессонов И.В., Смирнова С.Е., Багнюкова Д.А., Даванков В.А. Повышение селективности извлечения билирубина сверхсшитыми полистирольными гемосорбентами. Изв. АН. Сер. хим. 2017; 10: 1891-1896.
Долгих В.Т., Долгих Т.И., Пьянова Л.Г., Лихолобов В.А., Баринов С.В., Баракина О.В., Гриценко Н.С., Толкач А.Б. Антимикробная активность гранулированных углеродных сорбентов. Рос. иммунол. журнал. 2014; 8 (3): 788-791.
Долгих В.Т., Пьянова Л.Г., Баринов С.В., Лихолобов В.А., Долгих Т.И., Рябчикова Е.И., Корнеев Д.В. Эффективность использования углеродного формованного сорбента ВНИИТУ-1 в акушерской практике. Общая реаниматология. 2015; 11 (4): 60-71. DOI: 10.15360/ 1813-9779-2015-4-60-71
Суровикин В.Ф., Полуэктов Л.В., Червяков П.И. Способ получения углеродного гемосорбента. Патент РФ на изобретение № 1319475.
Суровикин В.Ф., Цеханович М.С., Суровикин Ю.В., Пучков С.С. Способ получения гранулированного углеродного материала и реактор для его осуществления. Патент РФ на изобретение № 2106375.
Долгих Т.И., Пьянова Л.Г., Бакланова О.Н., Долгих В.Т., Лузянина Л.С., Филиппов С.И., Соколова Т.Ф., Саланов А.Н., Глущенко А.В., Ершов А.В., Рейс Б.А., Лихолобов В.А. Адсорбция цитокинов на поверхности модифицированного углеродного сорбента in vitro при перитоните. Общая реаниматология. 2009; 5 (6): 66-70. DOI: 10.15360/1813-9779-2009-6-66
Бакланова О.Н., Пьянова Л.Г., Талзи В.П., Княжева О.А., Седанова А.В., Долгих Т.И., Лихолобов В.А. Модифицирование поверхности углеродного сорбента поли-N-винилпирролидоном для аппликационной медицины. Физикохимия поверхности и защита материалов. 2012; 48 (4): 363-369.
Суровикин В.Ф., Пьянова Л.Г., Лузянина Л.С., Суровикин Ю.В. Способ модифицирования углеродного сорбента. Патент РФ на изобретение № 2211727.
Суровикин В.Ф., Пьянова Л.Г., Лузянина Л.С., Долгих В.Т. Углеродные гемо- и энтеросорбенты на основе нанодисперсных углерод-углеродных материалов и использование их в медицине при критических состояниях. Эфферентная терапия. 2008; 14 (1-2): 4-8.
Пьянова Л.Г., Бакланова О.Н., Лихолобов В.А., Дроздов В.А., Саланов А.Н., Талзи В.П., Седанова А.В., Княжева О.А. Исследование эффекта модифицирования поверхности углеродных сорбентов поли-N-винилпирролидоном комплексом физико-химических и микробиологических методов. Физикохимия поверхности и защита материалов. 2013; 49 (4): 408-417. DOI: 10.7868/S0044185613040116

View record in OAIster

4

Electronic Resource

Effects of Succinate-Based Antioxidant on in vitro Conversion of Methemoglobin in Oxyhemoglobin

Additional Titles: Влияние антиоксиданта на основе янтарной кислоты на превращение метгемоглобина в оксигемоглобин in vitro

المصدر: General Reanimatology; Том 14, № 2 (2018); 46-59; Общая реаниматология; Том 14, № 2 (2018); 46-59; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2018-2

مصطلحات الفهرس: red blood cells; methemoglobin; oxyhemoglobin; reduction; succinic acid; inosine; riboflavin; nicotinamide; cytoflavin, эритроциты; метгемоглобин; оксигемоглобин; восстановление; янтарная кислота; инозин; рибофлавин; никотинамид; цитофлавин, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1679/1211
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1679/1211
Bradberry S.M. Occupational methaemoglobinaemia. Mechanisms of production, features, diagnosis and management including the use of methylene blue. Toxicol. Rev. 2003; 22 (1): 13-27. DOI: 10.2165/00139709-200322010-00003. PMID: 14579544
Kohn M.C., Melnick R.L., Ye F., Portier C.J. Pharmacokinetics of sodium nitrite-induced methemoglobinemia in the rat. Drug. Metab. Dispos. 2002; 30 (6): 676–683. DOI: 10.1124/dmd.30.6.676. PMID: 12019195
Lee J., El-Abaddi N., Duke A., Cerussi A.E., Brenner M., Tromberg B.J. Noninvasive in vivo monitoring of methemoglobin formation and reduction with broadband diffuse optical spectroscopy. J. Appl. Physiol. 2006; 100 (2): 615–622. DOI: 10.1152/japplphysiol.00424.2004. PMID: 16223982
Minami M., Katsumata M., Tomoda A. Methemoglobinemia with oxidized hemoglobins and modified hemoglobins found in bloods of workers handling aromatic compounds and in those of a man who drank cresol solution. Biomed. Biochim. Acta. 1990; 49 (2-3): S327-S333. PMID: 2386523
Greenberg M.I. Methylene Blue: fast-acting antidote for methemoglobinemia. Emerg. Med. News. 2001; 23 (9): 26. DOI: 10.1097/01.EEM. 0000292322.94148.37
Skold A., Cosco D.L., Klein R. Methemoglobinemia: pathogenesis, diagnosis, and management. South Med. J. 2011; 104 (11): 757–761. DOI: 10.1097/SMJ.0b013e318232139f. PMID: 22024786
Kozlova Е., Chernysh А., Moroz V., Sergunova V., Zavialova А., Kuzovlev А. Nanoparticles of perfluorocarbon emulsion contribute to the reduction of methemoglobin to oxyhemoglobin. Int. J. Pharm. 2016; 497 (1): 88-95. DOI: 10.1016/j.ijpharm.2015.11.035. PMID: 26626224
CYTOFLAVIN solution for intravenous use. http://eng.polysan.ru/ cytoflavin_amp.htm
Tiuriaeva I.I., Kuranova M.L., Gonchar I.V., Rozanov Iu.M. The energycorrective and antioxidative effect of cytoflavin in the postischemical period of human dermal fibroblasts in vitro. Cell Tiss. Biol. 2012; 6 (4): 367–375. DOI: 10.1134/S1990519X1204013X
Rumyantseva S.A., Kovalenko A.L., Silina E.V., Stupin V.A., Kabaeva E.N., Chichanovskaya L.V., Nazarov M.V., Tsukurova L.A., Burenichev D.V., Golikov K.V., Sal’nikov M.V., Belova L.A., Mashin V.V., Mazina N.K., Zhilina E.A., Kolotik-Kameneva O.Yu., Sherman M.A. Efficacy of complex antioxidant energy correction of different durations in the treatment of cerebral infarction (results of a multicenter randomized study). Neurosci. Behav. Physi. 2017; 47 (3): 288–295. DOI: 10.1007/s11055-017-0395-1
Bellavia L., DuMond J.F., Perlegas A., Bruce King S., Kim-Shapiro D.B. Nitroxyl accelerates the oxidation of oxyhemoglobin by nitrite. Nitric Oxide. 2013; 31: 38–47. DOI: 10.1016/j.niox.2013.03.006. PMID: 23545404
Navati M.S., Friedman J.M. Reactivity of glass-embedded met hemoglobin derivatives toward external NO: implications for nitrite-mediated production of bioactive NO. J. Am. Chem. Soc. 2009; 131 (34): 12273– 12279. DOI: 10.1021/ja903364h. PMID: 19663497
Jensen F.B. Nitric oxide formation from nitrite in zebrafish. J. Exp. Biol. 2007; 210 (19): 3387–3394. DOI: 10.1242/jeb.008748. PMID: 17872992
Wang D., Piknova B., Solomon S.B., Cortes-Puch I., Kern S.J., Sun J., Kanias T., Gladwin M.T., Helms C., Kim-Shapiro D.B., Schechter A.N., Natanson C. In vivo reduction of cell-free methemoglobin to oxyhemoglobin results in vasoconstriction in canines. Transfusion. 2013; 53 (12): 3149–3163. DOI: 10.1111/trf.12162. PMID: 23488474
Katsumata M. An industrial toxicological study on workers who synthesize aminophenol and anisidine from chloronitrobenzene. Nihon. Ika. Daigaku Zasshi. 1994; 61 (6): 590–601. DOI: 10.1272/jnms1923.61.590. PMID: 7829653
Patel R.P., Hogg N., Kim-Shapiro D.B. The potential role of the red blood cell in nitrite-dependent regulation of blood flow. Cardiovasc. Res. 2011; 89 (3): 507–515. DOI: 10.1093/cvr/cvq323. PMID: 20952416
Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Sergunova V., Gudkova O., Kuzovlev A. Nanodefects of membranes cause destruction of packed red blood cells during long-term storage. Exp. Cell Res. 2015; 337 (2): 192–201. DOI: 10.1016/j.yexcr.2015.07.009. PMID: 26169694
Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Gudkova O., Sergunova V., Kuzovlev A. Transformation of membrane nanosurface of red blood cells under hemin action. Sci. Rep. 2014; 4: 6033. DOI: 10.1038/srep0603. PMID: 25112597
Kozlova E.K., Chernysh A.M., Moroz V.V., Kuzovlev A.N. Analysis of nanostructure of red blood cells membranes by space fourier transform of AFM images. Micron. 2013; 44: 218–227. DOI: 10.1016/j.micron. 2012.06.012. PMID: 22854216
Hopmann K.H., Cardey B., Gladwin M.T., Kim-Shapiro D.B., Ghosh A. Hemoglobin as a nitrite anhydrase: modeling methemoglobin-mediated N2O3 formation. Chemistry. 2011; 17 (23): 6348–6358. DOI: 10.1002/chem.201003578. PMID: 21590821
Бузунова С.А. Клинические и патогенетические подходы в терапии нейроинфекций. Вестн. Новгородского Гос. университета. 2011; 62: 101–104.
Гудкова А.Н., Осиновская Н.А., Полунина А.Г., Гехт А.Б. Исследование влияния цитофлавина на симптомы депрессии и вегетативные нарушения у пациентов с органическим депрессивным расстройством. Журн. неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2013; 113 (12-1); 50-55. PMID: 24430035
Ponomarev E.A., Maskin S.S., Strepetov N.N., Mochailo Yu.A., Pchelintsev K. E. Pharmacological neuroprotection of the brain during carotid artery surgery. Neurosci. Behav. Physi. 2013; 43 (1): 76–78. DOI: 10.1007/ s11055-012-9693-9
Kim H.M., Jung H.S., Shin H.Y., Jung K.Y. Inhibition of mast cell-dependent anaphylaxis by succinic acid. Pharmacol. Toxicol. 1999; 84 (4): 154-158. DOI: 10.1111/j.1600-0773.1999.tb00892.x. PMID: 10227065
Зарубина И.В., Лукк М.В., Шабанов П.Д. Антигипоксические и антиоксидантные эффекты экзогенной янтарной кислоты и аминотиоловых сукцинатсодержащих антигипоксантов. Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2012; 153 (3): 313-317. DOI: 10.1007/s10517-012-1709-5. PMID: 22866305
Ericson D., Thompson J. Arginine-containing compositions and methods for treating red blood cells. Patent № US 8,980,542 B2.
Livesey S., Burnett M., Connor J., Wagner C. Composition for cryopreservation comprising nicotinamide, glycerol and red blood cells. Patent № US 8,895,236 B2.
Vasilaki A., McMillan D., Kinsella J., Duncan A., O’Reilly D., Talwar D. Relation between riboflavin, flavin mononucleotide and flavin adenine dinucleotide concentrations in plasma and red cells in patients with critical illness. Clin. Chim. Acta. 2010; 411 (21-22): 1750–1755. DOI: 10.1016/j.cca.2010.07.024. PMID: 20667447
Orita A., Verde M., Sakai M., Meng Y.A biomimetic redox flow battery based on flavin mononucleotide. Nat. Commun. 2016; 7: 13230. DOI: 10.1038/ncomms13230. PMID: 27767026

View record in OAIster

5

Electronic Resource

Nonlinear Local Deformations of Red Blood Cell Membranes: Effects of Toxins and Pharmaceuticals (Part 2)

Additional Titles: Нелинейные локальные деформации мембран эритроцитов: действие токсинов и фармпрепаратов (Часть 2)

المصدر: General Reanimatology; Том 14, № 1 (2018); 29-39; Общая реаниматология; Том 14, № 1 (2018); 29-39; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2018-1

مصطلحات الفهرس: red blood cells membranes; nonlinear deformations; atomic force spectroscopy, мембраны эритроцитов; нелинейные деформации; атомно-силовая спектроскопия, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1636/1174
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1636/1174
Хромова В.С., Мышкин А.Е. Коагуляция цинк-модифицированного гемоглобина. Журнал общей химии. 2002; 72 (10): 1645–1649.
Gudkova O.Ye., Bushueva A.V., Kozlov A.P., Chernysh A.M. Nanostructure and local rigidity of red blood cells (RBC) under influence of membrane modificators and ionizing radiation. Conf. Proc. CLINAM. 2013; 6: 172-173.
Moroz V.V., Chernysh A.M., Kozlova E.K., Borshegovskaya P.Y., Bliznjuk U.A., Rysaeva R.M., Gudkova O.Y. Comparison of red blood cell membrane microstructure after different physicochemical influences: atomic force microscope research. J. Crit. Care. 2010; 25 (3): 539.e1-539.e12. DOI: 10.1016/j.jcrc.2010.02.007. PMID: 20381299
Перепелица С.А., Сергунова В.А., Гудкова О.Е.Влияние перинатальной гипоксии на морфологию эритроцитов у новорожденных. Общая реаниматология. 2017; 13 (2): 14-23. DOI: 10.15360/1813-9779-2017-2-14-23
Мороз В.В., Новодержкина И.С., Афанасьев А.В., Заржецкий Ю.В., Рыжков И.А., Козлова Е.К., Черныш А.М. Влияние перфторана на наноструктуру мембран дискоцита и стоматоцита после острой кровопотери. Общая реаниматология. 2017; 13 (2): 32-39. DOI: 10.15360/1813-9779-2017-2-32-39
Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Sergunova V., Gudkova O., Kuzovlev A. Nanodefects of membranes cause destruction of packed red blood cells during long-term storage. Exp. Cell. Res. 2015; 337 (2): 192-201. DOI: 10.1016/j.yexcr.2015.07.009. PMID: 26169694
Черныш А.М., Козлова Е.К., Мороз В.В., Сергунова В.А., Гудкова О.Е., Козлов А.П., Манченко Е.А. Нелинейные локальные деформации мембран эритроцитов: нормальные эритроциты (часть 1). Общая реаниматология. 2017; 13 (5): 58-68. DOI: 10.15360/1813-9779-2017-5-58-68
Roduit C., van der Goot F.G., De Los Rios P., Yersin A., Steiner P., Dietler G., Catsicas S., Lafont F., Kasas S. Elastic membrane heterogeneity of living cells revealed by stiff nanoscale membrane domains. Biophys. J. 2008; 94 (4): 1521-1532. DOI: 10.1529/biophysj.107.112862. PMID: 17981897
Voïtchovsky K., Antoranz Contera S., Kamihira M., Watts A., Ryan J.F. Differential stiffness and lipid mobility in the leaflets of purple membranes. Biophys. J. 2006; 90 (6): 2075-2085. DOI: 10.1529/biophysj.105.072405. PMID: 16387758
Buys A.V., Van Rooy M.J., Soma P., Van Papendorp D., Lipinski B., Pretorius E. Changes in red blood cell membrane structure in type 2 diabetes: a scanning electron and atomic force microscopy study. Сardiovasc. Diabetol. 2013; 12: 25. DOI: 10.1186/1475-2840-12-25. PMID: 23356738
Kuznetsova T.G., Starodubtseva M.N., Yegorenkov N. I., Chizhik S.A., Zhdanov R.I. Atomic force microscopy probing of cell elasticity. Micron. 2007; 38 (8): 824–833. DOI: 10.1016/j.micron.2007.06.011. PMID: 17709250
Li M., Liu L., Xi N., Wang Y., Dong Z., Xiao X., Zhang W. Atomic force microscopy imaging and mechanical properties measurement of red blood cells and aggressive cancer cells. Sci. China Life Sci. 2012; 55 (11): 968- 973. DOI: 10.1007/s11427-012-4399-3. PMID: 23160828
Yu M., Wang J., Wang H., Dong S. Calculation of the intracellular elastic modulus based on an atomic force microscope micro-cutting system. Chin. Sci. Bull. 2012; 57 (15): 1868-1872. DOI: 10.1007/s11434-012-5053-y
Sirghi L., Ponti J., Broggi F., Rossi F. Probing elasticity and adhesion of live cells by atomic force microscopy indentation. Eur. Biophys. J. 2008; 37 (6): 935-945. DOI: 10.1007/s00249-008-0311-2. PMID: 18365186
Lekka M., Fornal M., Pyka-Fos´ciak G., Lebed K., Wizner B., Grodzicki T., Styczen´ J. Erythrocyte stiffness probed using atomic force microscope. Biorheology. 2005; 42 (4): 307-317. PMID: 16227658
Сергунова В.А., Козлова Е.К., Мягкова Е.А., Черныш А.М. Измерение упругоэластичных свойств мембраны нативных эритроцитов in vitro. Общая реаниматология. 2015; 11 (3): 39-44. DOI: 10.15360/1813- 9779-2015-3-39-44
Shi X., Zhang X., Xia T., Fang X. Living cell study at the single-molecule and single-cell levels by atomic force microscopy. Nanomedicine (Lond.). 2012; 7 (10): 1625- 1637. DOI: 10.2217/nnm.12.130. PMID: 23148543
Bremmell K.E., Evans A., Prestidge C.A. Deformation and nano-rheology of red blood cells: an AFM investigation. Colloids Surf. B. Biointerfaces. 2006; 50 (1): 43-48. DOI: 10.1016/j.colsurfb.2006.03.002. PMID: 16701986
Fisseha D., Katiyar V.K. Analysis of mechanical behavior of red cell membrane in sickle cell disease. Appl. Mathematics. 2012; 2 (2): 40-46. DOI: 10.5923/j.am.20120202.08
Sen S., Subramanian S., Discher D.E. Indentation and adhesive probing of a cell membrane with AFM: theoretical model and experiments. Biophys. J. 2005; 89 (5): 3203–3213. DOI: 10.1529/biophysj.105.063826. PMID: 16113121
Dupres V., Verbelen C., Dufrêne Y.F. Probing molecular recognition sites on biosurfaces using AFM. Biomaterials. 2007; 28 (15): 2393-2402. DOI: 10.1016/j.biomaterials.2006.11.011. PMID: 17126394
Liu S.C., Zhai S., Lawler J., Palek J. Hemin-mediated dissociation of erythrocyte membrane skeletal proteins. J. Biol. Chem. 1985; 260 (22): 12234-12239. PMID: 4044594
Vadillo-Rodriguez V., Beveridge T.J., Dutcher J.R. Surface viscoelasticity of individual gram-negative bacterial cells measured using atomic force microscopy. J. Bacteriol. 2008; 190 (12): 4225-4232. DOI: 10.1128/JB.00132- 08. PMID: 18408030
Kozlova E.K., Chernysh A.M., Moroz V.V., Kuzovlev A.N. Analysis of nanostructure of red blood cells membranes by space Fourier transform of AFM images. Micron. 2013; 44: 218-227. DOI: 10.1016/j.micron.2012.06.012. PMID: 22854216
Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Gudkova O., Sergunova V., Kuzovlev A. Transformation of membrane nanosurface of red blood cells under hemin action. Sci. Rep. 2014; 4: 6033. DOI: 10.1038/srep06033. PMID: 25112597
Черныш А.М., Козлова Е.К., Мороз В.В, Сергунова В.А., Гудкова О.Е., Федорова М.С. Обратимые цинкиндуцируемые повреждения наноструктуры мембран красных клеток крови. Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2012; 154 (7): 95-99. PMID: 23330097
Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Sergunova V., Gudkova O., Fedorova M., Kuzovlev A. Opposite effects of electroporation of red blood cell membranes under the influence of zinc ions. Acta Bioeng. Biomech. 2012; 14 (1): 3-13. PMID: 22741531
Hekele O., Goesselsberger C.G., Gebeshuber I.C. Nanodiagnostics performed on human red blood cells with atomic force microscopy. Mater. Sci. Technol. 2008; 24 (9): 1162-1165. DOI: 10.1179/174328408X341834
Hartmann D. A multiscale model for red blood cell mechanics. Biomech. Model. Mechanobiol. 2010; 9 (1): 1-17. DOI: 10.1007/s10237-009-0154- 5. PMID: 19440743
Fedosov D.A., Lei H., Caswell B., Suresh S., Karniadakis G.E. Multiscale modeling of red blood cell mechanics and blood flow in malaria. PLoS Comput. Biol. 2011. 7 (12): e1002270. DOI: 10.1371/journal.pcbi.1002270. PMID: 22144878
Mirijanian D.T., Voth G.A. Unique elastic properties of the spectrin tetramer as revealed by multiscale coarse-grained modeling. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008; 105 (4): 1204-1208. DOI: 10.1073/pnas.0707500105. PMID: 18202182
Shaklai N., Avissar N., Rabizadeh E., Shaklai M. Disintegration of red cell membrane cytoskeleton by hemin. Biochem. Int. 1986; 13 (3): 467-477. PMID: 3790141
Nakamura M., Bessho S., Wada S. Spring-network-based model of a red blood cell for simulating mesoscopic blood flow. Int. J. Numer. Method Biomed. Eng. 2013; 29 (1): 114-128. DOI: 10.1002/cnm.2501. PMID: 23293072
Parshina E.Yu., Sarycheva A.S., Yusipovich A.I., Brazhe N.A., Goodilin E.A., Maksimov G.V. Combined Raman and atomic force microscopy study of hemoglobin distribution inside erythrocytes and nanoparticle localization on the erythrocyte surface. Laser Physics Letters. 2013; 10 (7): 1-6. DOI: 10.1088/1612-2011/10/7/075607
Kim Y., Kim K., Park Y.K. Blood cell - an overview of studies in hematology. In: Moschandreou T.E. (ed.). Measurement techniques for red blood cell deformability: recent advances. Rijeka, Croatia; 2012: 167-195. DOI: 10.5772/50698
Gov N., Cluitmans J., Sens P., Bosman G.J.C.G.M. Chapter 4. Cytoskeletal control of red blood cell shape: theory and practice of vesicle formation. In: Advances in planar lipid bilayers and liposomes. v.10: 95-119. DOI: 10.1016/S1554-4516(09)10004-2
Hosseini S.M., Feng J.J. How malaria parasites reduce the deformability of infected red blood cells. Biophys. J. 2012; 103 (1): 1-10. DOI: 10.1016/j.bpj.2012.05.026. PMID: 22828326

View record in OAIster

6

Electronic Resource

Nonlinear Local Deformations of Erythrocyte Membranes: Normal Erythrocytes (Part 1)

Additional Titles: Нелинейные локальные деформации мембран эритроцитов: нормальные эритроциты (Часть 1)

المصدر: General Reanimatology; Том 13, № 5 (2017); 58-68; Общая реаниматология; Том 13, № 5 (2017); 58-68; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2017-5

مصطلحات الفهرس: nonlinear deformation; erythrocyte membranes; atomic force spectroscopy; probe submergence kinetics, мембраны эритроцитов; нелинейная деформация; атомно-силовая спектроскопия; кинетика погружения зонда, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1625/1160
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1625/1161
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1625/1160
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1625/1161
Хромова В.С., Мышкин А.Е. Коагуляция цинк-модифицированного гемоглобина. Журнал общей химии. 2002; 72 (10): 1645–1649.
Gudkova O.Ye., Bushueva A.V., Kozlov A.P., Chernysh A.M. Nanostructure and local rigidity of red blood cells (RBC) under influence of membrane modificators and ionizing radiation. Conf. Proc. CLINAM. 2013; 6: 172-173.
Moroz V.V., Chernysh A.M., Kozlova E.K., Borshegovskaya P.Y., Bliznjuk U.A., Rysaeva R.M., Gudkova O.Y. Comparison of red blood cell membrane microstructure after different physicochemical influences: atomic force microscope research. J. Crit. Care. 2010; 25 (3): 539.e1-539.e12. DOI: 10.1016/j.jcrc.2010.02.007. PMID: 20381299
Roduit C., van der Goot F.G., De Los Rios P., Yersin A., Steiner P., Dietler G., Catsicas S., Lafont F., Kasas S. Elastic membrane heterogeneity of living cells revealed by stiff nanoscale membrane domains. Biophys. J. 2008; 94 (4): 1521-1532. DOI: 10.1529/biophysj.107.112862. PMID: 17981897
Voïtchovsky K., Antoranz Contera S., Kamihira M., Watts A., Ryan J.F. Differential stiffness and lipid mobility in the leaflets of purple membranes. Biophys. J. 2006; 90 (6): 2075-2085. DOI: 10.1529/biophysj.105.072405. PMID: 16387758
Kuznetsova T.G., Starodubtseva M.N., Yegorenkov N.I., Chizhik S.A., Zhdanov R.I. Atomic force microscopy probing of cell elasticity. Micron. 2007; 38 (8): 824–833. DOI: 10.1016/j.micron.2007.06.011. PMID: 17709250
Rabinovich Y.I., Daosukho S., Byer K.J., El-Shall H.E., Khan S.R. Direct AFM measurements of adhesion forces between calcium oxalate monohydrate and kidney epithelial cells in the presence of Ca2+ and Mg2+ ions. J. Colloid. Interface Sci. 2008; 325 (2): 594-601. DOI: 10.1016/j.jcis.2008.06.024. PMID: 18619606
Bálint Z., Krizbai I.A., Wilhelm I., Farkas A.E., Párducz A., Szegletes Z., Váró G. Changes induced by hyperosmotic mannitol in cerebral endothelial cells: an atomic force microscopic study. Eur. Biophys. J. 2007; 36 (2): 113-120. DOI: 10.1007/s00249-006-0112-4. PMID: 17115151
Kasas S., Dietler G. Probing nanomechanical properties from biomolecules to living cells. Pflugers. Arch. 2008; 456 (1): 13-27. DOI: 10.1007/s00424-008-0448-y. PMID: 18213477
Zhao C.X., Shao H.B., Chu L.Y. Aquaporin structure-function relationships: water flow through plant living cells. Colloids Surf. B. Biointerfaces. 2008; 62 (2): 163-172. DOI: 10.1016/j.colsurfb.2007.10.015. PMID: 18063350
Volle C.B., Ferguson M.A., Aidala K.E., Spain E.M., Núñez M.E. Quantitative changes in the elasticity and adhesive properties of Escherichia coli ZK1056 prey cells during predation by bdellovibrio bacteriovorus. Langmuir. 2008; 24 (15): 8102-8110. DOI: 10.1021/la8009354. PMID: 18572929
Vadillo-Rodriguez V., Beveridge T.J., Dutcher J.R. Surface viscoelasticity of individual gram-negative bacterial cells measured using atomic force microscopy. J. Bacteriol. 2008; 190 (12): 4225-4232. DOI: 10.1128/JB.00132-08. PMID: 18408030
Azeloglu E.U., Costa K.D. Dynamic AFM elastography reveals phase dependent mechanical heterogeneity of beating cardiac myocytes. Conf. Proc. IEEE Eng. Med. Biol. Soc. 2009; 2009: 7180-7183. DOI: 10.1109/IEMBS.2009.5335316. PMID: 19965272
Franze K. Atomic force microscopy and its contribution to understanding the development of the nervous system. Curr. Opin. Genet. Dev. 2011; 21 (5): 530-537. DOI: 10.1016/j.gde.2011.07.001. PMID: 21840706
Lekka M., Fornal M., Pyka-Fos´ciak G., Lebed K., Wizner B., Grodzicki T., Styczeñ J. Erythrocyte stiffness probed using atomic force microscope. Biorheology. 2005; 42 (4): 307-317. PMID: 16227
Picas L., Milhiet P.E., Hernández-Borrell J. Atomic force microscopy: a versatile tool to probe the physical and chemical properties of supported membranes at the nanoscale. Chem. Phys. Lipids. 2012; 165 (8): 845-860. DOI: 10.1016/j.chemphyslip.2012.10.005. PMID: 23194897
Hekele O., Goesselsberger C.G., Gebeshuber I.C. Nanodiagnostics performed on human red blood cells with atomic force microscopy. Mater. Sci. Technol. 2008; 24 (9): 1162-1165. DOI: 10.1179/174328408X341834
Sirghi L., Ponti J., Broggi F., Rossi F. Probing elasticity and adhesion of live cells by atomic force microscopy indentation. Eur. Biophys. J. 2008; 37 (6): 935-945. DOI: 10.1007/s00249-008-0311-2. PMID: 18365186
Zhang C.Y., Zhang Y.W. Extracting elastic properties and prestress of a cell using atomic force microscopy. J. Mater. Res. 2015; 24 (3): 1167-1171. DOI: 10.1557/jmr.2009.0121
Bremmell K.E., Evans A., Prestidge C.A. Deformation and nano-rheology of red blood cells: an AFM investigation. Colloids Surf. B. Biointerfaces. 2006; 50 (1): 43-48. DOI: 10.1016/j.colsurfb.2006.03.002. PMID: 16701986
McPhee G., Dalby M.J., Riehle M., Yin H. Can common adhesion molecules and microtopography affect cellular elasticity? A combined atomic force microscopy and optical study. Med. Biol. Eng. Comput. 2010; 48 (10): 1043-1053. DOI: 10.1007/s11517-010-0657-3. PMID: 20623199
Fisseha D., Katiyar V.K. Analysis of mechanical behavior of red cell membrane in sickle cell disease. Appl. Mathematics. 2012; 2 (2): 40-46. DOI: 10.5923/j.am.20120202.08
Kim Y., Kim K., Park Y.K. Blood cell — an overview of studies in hematology. In: Moschandreou T.E. (ed.). Measurement techniques for red blood cell deformability: recent advances. Rijeka, Croatia; 2012: 167-195. DOI: 10.5772/50698
Buys A.V., Van Rooy M.J., Soma P., Van Papendorp D., Lipinski B., Pretorius E. Changes in red blood cell membrane structure in type 2 diabetes: a scanning electron and atomic force microscopy study. Сardiovasc. Diabetol. 2013; 12: 25. DOI: 10.1186/1475-2840-12-25. PMID: 23356738
Li M., Liu L., Xi N., Wang Y., Dong Z., Xiao X., Zhang W. Atomic force microscopy imaging and mechanical properties measurement of red blood cells and aggressive cancer cells. Sci. China Life Sci. 2012; 55 (11): 968-973. DOI: 10.1007/s11427-012-4399-3. PMID: 23160828
Yu M., Wang J., Wang H., Dong S. Calculation of the intracellular elastic modulus based on an atomic force microscope micro-cutting system. Chin. Sci. Bull. 2012; 57 (15): 1868-1872. DOI: 10.1007/s11434-012-5053-y
Kasas S., Wang X., Hirling H., Marsault R., Huni B., Yersin A., Regazzi R., Grenningloh G., Riederer B., Forrò L., Dietler G., Catsicas S. Superficial and deep changes of cellular mechanical properties following cytoskeleton disassembly. Cell. Motil. Cytoskeleton. 2005; 62 (2): 124-132. DOI: 10.1002/cm.20086. PMID: 16145686
Sen S., Subramanian S., Discher D.E. Indentation and adhesive probing of a cell membrane with AFM: theoretical model and experiments. Biophys. J. 2005; 89 (5): 3203–3213. DOI: 10.1529/biophysj.105.063826. PMID: 16113121

View record in OAIster

7

Electronic Resource

Assessment of Aerosolized Colistin Efficacy for Nosocomial Pneumonia

Additional Titles: Оценка эффективности ингаляционного колистина при нозокомиальной пневмонии

المؤلفون: A. Kuzovlev N.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology., A. Shabanov K.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology; N.V. Sklifosovsky Research Institute of Emergency Medicine., A. Golubev M.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology., V. Moroz V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology., А. Кузовлев Н.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ реаниматологии и реабилитологии., А. Шабанов К.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ реаниматологии и реабилитологии; НИИ скорой помощи им. Н. В. Склифософского., А. Голубев М.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ реаниматологии и реабилитологии., В. Мороз В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ реаниматологии и реабилитологии.

المصدر: General Reanimatology; Том 13, № 6 (2017); 60-73; Общая реаниматология; Том 13, № 6 (2017); 60-73; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2017-6

مصطلحات الفهرس: nosocomial pneumonia; aerosolized colistin; aerosolized antibiotics; nebuliser, нозокомиальная пневмония; ингаляционный колистин; ингаляционные антибиотики; небулайзер, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1619/1148
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1619/1148
Гельфанд Б.Р. (ред.). Нозокомиальная пневмония у взрослых. Российские национальные рекомендации. М.: МИА; 2016: 176.
Bekaert M, Timsit J.F, Vansteelandt S., Depuydt P., Vesin A., Garrouste-Orgeas M., Decruyenaere J., Clec'h C., Azoulay E., Benoit D.; Outcomerea Study Group. Attributable mortality of ventilator-associated pneumonia: a reappraisal using causal analysis. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2011; 184:1133-1139. DOI: 10.1164/rccm.201105-0867OC. PMID: 21852541
Шабанов А.К., Хубутия М.Ш., Булава Г.В., Белобородова Н.В., Кузовлев А.Н., Гребенчиков О.А., Косолапов Д.А., Шпитонков М.И. Динамика уровня прокальцитонина при развитии нозокомиальной пневмонии у пострадавших с тяжелой сочетанной травмой в отделении реаниматологии. Общая реаниматология. 2013; 9 (5): 11-18. DOI: 10.15360/1813-9779-2013-5-11
Мороз В.В., Смелая Т.В., Голубев А.М., Сальникова Л.Е.Генетика и медицина критических состояний: от теории к практике. Общая реаниматология. 2012; 8 (4): 5-12. DOI: 10.15360/1813-9779-2012-4-5
Чучалин А.Г. (ред.). Респираторная медицина. Руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2007: 757.
Valencia M., Torres A. Ventilator-associated pneumonia. Curr. Opin. Crit. Care. 2009; 15 (1): 30-35. DOI: 10.1097/MCC.0b013e3283220e78. PMID: 19186407
Кецко Ю.Л., Лунина А.В., Петровская Е.В., Лямин А.В. Оценка эффективности антибактериальной терапии у пациентов с вирусно-бактериальной пневмонией в 2009/2011 годах. Общая реаниматология. 2015; 11 (4): 33-40. DOI: 10.15360/1813-9779-2015-4-33-40
Карпов О.Э., Гусаров В.Г., Лашенкова Н.Н., Петрова Н.В., Дементи-енко М.В., Шилкин Д.Н., Нестерова Е.Е., Замятин М.Н. Реестр микроорганизмов как инструмент автоматизированного планирования потребления антибиотиков и контроля антибиотикорезистентности в отделениях реаниматологии и профильных отделениях. Общая реаниматология. 2016; 12 (6): 39-48. DOI: 10.15360/1813-9779-2016-6-39-48
Spellberg В. The future of antibiotics. Crit. Care. 2014; 18 (3): 228. DOI: 10.1186/cc13948. PMID: 25043962
Zilberberg M., Shorr A. Prevalence of multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa and carbapenem-resistant Enterobacteriaceae among specimens from hospitalized patients with pneumonia and bloodstream infections in the United States from 2000 to 2009. J. Hosp. Med. 2013; 8 (10): 559-563. DOI: 10.1002/jhm.2080. PMID: 24022878
Sievert D., Ricks P., Edwards J., Schneider A., Patel J., Srinivasan A., Kallen A., Limbago B., Fridkin S.; National Healthcare Safety Network (NHSN) Team and Participating NHSN Facilities. Antimicrobial-resistant pathogens associated with healthcare-associated infections: summary of data reported to the National Healthcare Safety Network at the Centers for Disease Control and Prevention, 2009-2010. Infect. Control Hosp. Epidemiol.2013; 34 (1): 1-14. DOI: 10.1086/668770. PMID: 23221186
Кузовлев А.Н., Мороз В.В., Голубев А.М. Ингаляционные антибиотики в лечении нозокомиальной пневмонии. Анестезиология и реаниматология. 2015; 60 (4): 55-61. PMID: 26596034
Кузовлев А.Н., Мороз В.В., Голубев А.М., Половников С.Г. Ингаляционные антибиотики в лечении тяжелой нозокомиальной пневмонии. Общая реаниматология. 2013; 9 (6): 61-70. DOI: 10.15360/1813-9779-2013-6-61
Кузовлев А.Н., Мороз В.В., Голубев А.М., Половников С.Г. Ингаляционный тобрамицин в лечении ИВЛ-ассоциированной пневмонии. Клин. фармакология и терапия. 2014; 23 (4): 52-58.
Ehrmann S., Roche-Campo F., Sferrazza Papa G.F., Isabey D., Brochard L. , Apiou-Sbirlea G.; REVA research network. Aerosol therapy during mechanical ventilation: an international survey. Intensive Care Med. 2013; 39(6):1048-1056. DOI: 10.1007/s00134-013-2872-5. PMID: 23525741
Palmer L.B. Aerosolized antibiotics in the intensive care unit. Clin. Chest Med. 2011; 32 (3): 559-574. DOI: 10.1016/j.ccm.2011.05.012. PMID: 21867823
Tolker-Nielsen T., Heiby N. Extracellular DNA and F-actin as targets in antibiofilm cystic fibrosis therapy. Future Microbiol. 2009; 4 (6): 645-647. DOI: 10.2217/fmb.09.38. PMID: 19659420
Dhand R. The role of aerosolized antimicrobials in the treatment of ventilator-associated pneumonia. Respir. Care. 2007; 52 (7): 866-884. PMID: 17594731
Gurjar M. Colistin for lung infection: an update. J. Intensive Care. 2015; 3 (1): 3. DOI: 10.1186/s40560-015-0072-9. PMID: 25705428
Rello J., Sole-Lleonart C, Rouby J., Chastre J., Blot S., Poulakou G., Luyt C, Riera J., Palmer L, Pereira J., Felton T., Dhanani J., Bassetti M., Welte T., Roberts J. Use of nebulized antimicrobials for the treatment of respiratory infections in invasively mechanically ventilated adults: a position paper from the European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases. Clin. Microbiol. Infect. 2017; pii: S1198-743X(17)30219-7. DOI: 10.1016/j.cmi.2017.04.011. PMID: 28412382
Kalil A., Metersky M., Klompas M., Muscedere J., Sweeney D., Palmer L., Napolitano L., O’Grady N., BartlettJ., CarratalaJ., ElSolh A., Ewig S., Fey P., File T., Restrepo M., Roberts J., Waterer G., Cruse P., Knight S., Brozek J. Executive Summary: Management of Adults With Hospital-acquired and Ventilator-associated Pneumonia: 2016 Clinical Practice Guidelines by the Infectious Diseases Society of America and the American Thoracic Society. Clin. Infect. Dis. 2016; 63 (5): 575-582. DOI: 10.1093/cid/ciw504. PMID: 27521441
Doshi N., Cook C., Mount K., Stawicki S., Frazee E., Personett H., Schramm G., Arnold H., Murphy C. Adjunctive aerosolized colistin for multi-drug resistant gram-negative pneumonia in the critically ill: a retrospective study. BMC Anesthesiol. 2013; 13 (1): 45. DOI: 10.1186/1471-2253-13-45. PMID: 24274315
Tumbarello M., De Pascale G., Trecarichi E., De Martino S., Bello G., Mav-iglia R., Spanu T., Antonelli M. Effect of aerosolized colistin as adjunctive treatment on the outcomes of microbiologically documented ventilator-associated pneumonia caused by colistin-only susceptible gram-negative bacteria. Chest. 2013; 144 (6): 1768-1775. DOI: 10.1378/chest.13-1018. PMID: 23989805
Korbila I., Michalopoulos A., Rafailidis P.I., Nikita D., Samonis G., Falagas M. E. Inhaled colistin as adjunctive therapy to intravenous colistin for the treatment of microbiologically documented ventilator-associated pneumonia: a comparative cohort study. Clin. Microbiol. Infect. 2010; 16 (8): 1230-1236. DOI: 10.1111/j.1469-0691.2009.03040.x. PMID: 19732088
Liu D., Zhang J., Liu H., Zhu Y., Qu J. Intravenous combined with aerosolised polymyxin versus intravenous polymyxin alone in the treatment of pneumonia caused by multidrug-resistant pathogens: a systematic review and meta-analysis. Int. J. Antimicrob. Agents. 2015; 46 (6): 603-609. DOI: 10.1016/j.ijantimicag.2015.09.011. PMID: 26607337
Rattanaumpawan P., Lorsutthitham J., Ungprasert P., Angkasekwinai N., Thamlikitkul V. Randomized controlled trial of nebulized colistimethate sodium as adjunctive therapy of ventilator-associated pneumonia caused by Gram-negative bacteria. J. Antimicrob. Chemother. 2010; 65 (12): 2645-2649. DOI: 10.1093/jac/dkq360. PMID: 20876621
Valachis A., Samonis G., Kofteridis D. The role of aerosolized colistin in the treatment of ventilator-associated pneumonia: a systematic review and metaanalysis. Crit. Care Med. 2015; 43 (3): 527-533. DOI: 10.1097/CCM.0000000000000771. PMID: 25493971
Florescu D., Qiu F., McCartan M., Mindru C., Fey P., Kalil A. What is the efficacy and safety of colistin for the treatment of ventilator-associated pneumonia? A systematic review and meta-regression. Clin. Infect. Dis. 2012; 54 (5): 670-680. DOI: 10.1093/cid/cir934. PMID: 22322268
Kofteridis D., Alexopoulou C., Valachis A., Maraki S., Dimopoulou D., Geor-gopoulos D., Samonis G. Aerosolized plus intravenous colistin versus intravenous colistin alone for the treatment of ventilator-associated pneumonia: a matched case-control study. Clin. Infect. Dis. 2010; 51 (11): 1238-1244. DOI: 10.1086/657242. PMID: 20973727
Demirdal T., Sari U., Nemli S. Is inhaled colistin beneficial in ventilator associated pneumonia or nosocomial pneumonia caused by Acinetobacter baumannii? Ann. Clin. Microbiol. Antimicrob. 2016; 15: 11. DOI: 10.1186/s12941-016-0123-7. PMID: 26911714
Czosnowski Q.A., Wood G.C., Magnotti L.J., Croce M.A., Swanson J.M., Boucher B.A., Fabian T.C. Adjunctive aerosolized antibiotics for treatment of ventilator-associated pneumonia. Pharmacotherapy. 2009; 29 (9): 1054-1060. DOI: 10.1592/phco.29.9.1054. PMID: 19698010
Arnold H., Sawyer A., Kollef M. Use of Adjunctive aerosolized antimicrobial therapy in the treatment of Pseudomonas aeruginosa and Acineto-bacter baumannii ventilator-associated pneumonia. Respir. Care. 2012; 57 (8): 1226-1233. DOI: 10.4187/respcare.01556. PMID: 22349038
Niederman M.S, ChastreJ, Corkery K., Fink J.B., Luyt C.E., Garcna M.S. Bay41-6551 achieves bactericidal tracheal aspirate amikacin concentrations in mechanically ventilated patients with gram-negative pneumonia. Intensive Care Med. 2012; 38 (2): 263-271. DOI: 10.1007/s00134-011-2420-0. PMID: 22147112
Le Conte P., Potel G., Clementi E., Legras A., Villers D., Bironneau E., Cous-son J., Baron D. Administration of tobramycin aerosols in patients with nosocomial pneumonia: a preliminary study. Presse. Med. 2000; 29 (2): 76-78. PMID: 10682031
Lu Q., Yang J., Liu Z., Gutierrez C., Aymard G., Rouby J.J.; Nebulized Antibiotics Study Group. Nebulized ceftazidime and amikacin in ventilator-associated pneumonia caused by Pseudomonas aeruginosa. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2011; 184 (1): 106-115. DOI: 10.1164/rccm.201011-1894OC. PMID: 21474643
Lu Q., Luo R., Bodin L., Yang J., Zahr N., Aubry A., Golmard J.L., Rouby J. J.; Nebulized Antibiotics Study Group. Efficacy of high-dose nebulized colistin in ventilator-associated pneumonia caused by multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii. Anesthesiology. 2012; 117 (6): 1335-1347. DOI: 10.1097/ALN.0b013e31827515de. PMID: 23132092
Ghannam D.E., Rodriguez G.H., Raad I.I., Safdar A. Inhaled aminoglycosides in cancer patients with ventilator-associated Gram-negative bacterial pneumonia: safety and feasibility in the era of escalating drug resistance. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2009; 28 (3): 253-259. DOI: 10.1007/s10096-008-0620-5. PMID: 18752007
Le J., Ashley E.D., Neuhauser M.M., Brown J., Gentry C., Klepser M.E., Marr A.M., Schiller D., Schwiesow J.N., Tice S., VandenBussche H.L., Wood G.C.; Society of Infectious Diseases Pharmacists Aerosolized Antimicrobials Task Force. Consensus summary of aerosolized antimicrobial agents: application of guideline criteria. Insights from the Society of Infectious Diseases Pharmacists. Pharmacotherapy. 2010; 30 (6): 562-584. DOI: 10.1592/phco.30.6.562. PMID: 20500046
Riethmuller J., Herrmann G., Graepler-Mainka U., Hettwig D., Heuer H., Heyder S., Koster H., Kinder B., Kroger K., Paul K., Poplawska K. , Melichar V., Smaczny C., Mellies U. Sequential inhalational tobramycin-colistin-combination in CF-patients with chronic P. Aeruginosa colonization — an observational study. Cell Physiol. Biochem. 2016; 39 (3): 1141-1151. DOI: 10.1159/000447821. PMID: 27576543

View record in OAIster

8

Electronic Resource

Perioperative Predictors of Unfavorable Outcome of Vascular Surgery

Additional Titles: Периоперационные предикторы неблагоприятного исхода сосудистых вмешательств

المؤلفون: Viktor Moroz V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology, Denis Marchenko N.; V. V. Veresaev State Clinical Hospital, Moscow Healthcare Department, Yury Skripkin V.; M. F. Vladimirsky Moscow Regional Research Clinical Institute, Taniana Zabelina S.; M. F. Vladimirsky Moscow Regional Research Clinical Institute, Alexey Ovezov M.; M. F. Vladimirsky Moscow Regional Research Clinical Institute, Valery Likhvantsev V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology; M. F. Vladimirsky Moscow Regional Research Clinical Institute, В. Мороз В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, ФНКЦ реаниматологии и реабилитологии, Д. Марченко Н.; Городская клиническая больница им. В. В. Вересаева Департамента здравоохранения г. Москвы, Ю. Скрипкин В.; Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М. Ф. Владимирского, Т. Забелина С.; Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М. Ф. Владимирского, А. Овезов М.; Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М. Ф. Владимирского, В. Лихванцев В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, ФНКЦ реаниматологии и реабилитологии; Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М. Ф. Владимирского

المصدر: General Reanimatology; Том 13, № 3 (2017); 6-12; Общая реаниматология; Том 13, № 3 (2017); 6-12; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2017-3

مصطلحات الفهرس: vascular surgery; postoperative mortality; levosimendan; anesthetic cardioprotection; troponin, сосудистая хирургия; послеоперационная летальность; левосимендан; анестетическая кардиопротекция; тропонин, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1588/1090
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1588/1125
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1588/1090
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1588/1125
Devereaux P.J., Sessler D.I. Cardiac complications in patients undergoing major noncardiac surgery. N. Engl. J. Med. 2015; 373 (23): 2258–2269. https://doi.org/10.1056/NEJMra1502824. PMID: 26630144
Botto F., Alonso Coello P., Chan M.T., Villar J.C., Xavier D., Srinathan S., Guyatt G., Cruz P., Graham M., Wang C.Y., Berwanger O., Pearse R.M., Biccard B.M., Abraham V., Malaga G., Hillis G.S., Rodseth R.N., Cook D., Polanczyk C.A., Szczeklik W., Sessler D.I., Sheth T., Ackland G.L., Leuwer M., Garg A.X., Lemanach Y., Pettit S., Heels Ansdell D., Luratibuse G., Walsh M., Sapsford R., Schünemann H.J., Kurz A., Thomas S., Mrkobrada M., Thabane L., Gerstein H., Paniagua P., Nagele P., Raina P., Yusuf S., Devereaux P.J., Devereaux P.J., Sessler D.I., Walsh M., Guyatt G., McQueen M.J., Bhandari M., Cook D., Bosch J., Buckley N., Yusuf S., Chow C.K., Hillis G.S., Halliwell R., Li S., Lee V.W., Mooney J., Polanczyk C.A., Furtado M.V., Berwanger O., Suzumura E., Santucci E., Leite K., Santo J.A., Jardim C.A., Cavalcanti A.B., Guimaraes H.P., Jacka M.J., Graham M., McAlister F., McMurtry S., Townsend D., Pannu N., Bagshaw S., Bessissow A., Bhandari M., Duceppe E., Eikelboom J., Ganame J., Hankinson J., Hill S., Jolly S., Lamy A., Ling E., Magloire P., Pare G., Reddy D., Szalay D., Tittley J., Weitz J., Whitlock R., Darvish Kazim S., Debeer J., Kavsak P., Kearon C., Mizera R., O’Donnell M., McQueen M., Pinthus J., Ribas S., Simunovic M., Tandon V., Vanhelder T., Winemaker M., Gerstein H., McDonald S., O’Bryne P., Patel A., Paul J., Punthakee Z., Raymer K., Salehian O., Spencer F., Walter S., Worster A., Adili A., Clase C., Cook D., Crowther M., Douketis J., Gangji A., Jackson P., Lim W., Lovrics P., Mazzadi S., Orovan W., Rudkowski J., Soth M., Tiboni M., Acedillo R., Garg A., Hildebrand A., Lam N., Macneil D., Mrkobrada M., Roshanov P.S., Srinathan S.K., Ramsey C., John P.S., Thorlacius L., Siddiqui F.S., Grocott H.P., McKay A., Lee T.W., Amadeo R., Funk D., McDonald H., Zacharias J., Villar J.C., Cortés O.L., Chaparro M.S., Vásquez S., Castañeda A., Ferreira S., Coriat P., Monneret D., Goarin J.P., Esteve C.I., Royer C., Daas G., Chan M.T., Choi G.Y., Gin T., Lit L.C., Xa
Landesberg G., Beattie W.S., Mosseri M., Jaffe A.S., Alpert J.S. Perioperative myocardial infarction. Circulation. 2009; 119 (22): 2936–2944. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.108.828228. PMID: 19506125
Badner N.H., Knill R.L., Brown J.E., Novick T.V., Gelb A.W. Myocardial infarction after noncardiac surgery. Anesthesiology. 1998; 88 (3): 572–578. https://doi.org/10.1097/00000542- 199803000-00005. PMID: 9523798
Devereaux P.J., Xavier D., Pogue J., Guyatt G., Sigamani A., Garutti I., Leslie K., Rao Melacini P., Chrolavicius S., Yang H., Macdonald C., Avezum A., Lanthier L., Hu W., Yusuf S.; POISE (PeriOperative ISchemic Evaluation) Investigators. Characteristics and short-term prognosis of perioperative myocardial infarction in patients undergoing noncardiac surgery: a cohort study. Ann. Intern. Med. 2011; 154 (8): 523–528. https://doi.org/10.7326/0003-4819-154-8-201104190-00003.PMID: 21502650
Лихванцев В.В., Убасев Ю.В., Скрипкин Ю.В., Забелина Т.С., Сунгу ров В.А., Ломиворотов В.В., Марченко Д.Н. Предоперационная про- филактика сердечной недостаточности в некардиальной хирургии. Общая реаниматология. 2016; 12 (3): 48–61. https://doi.org/ 10.15360/1813-9779-2016-3-48-61
Hammill B.G., Curtis L.H., Bennett Guerrero E., O’Connor C.M., Jollis J.G., Schulman K.A., Hernandez A.F. Impact of heart failure on patients under- going major noncardiac surgery. Anesthesiology. 2008; 108 (4): 559–567. https://doi.org/10.1097/ALN.0b013e31816725ef. PMID: 18362586
van Diepen S., Bakal J.A., McAlister F.A., Ezekowitz J.A. Mortality and readmission of patients with heart failure, atrial fibrillation, or coro- nary artery disease undergoing noncardiac surgery: an analysis of 38 047 patients. Circulation. 2011; 124 (3): 289–296. https://doi.org/ 10.1161/CIRCULATIONAHA.110.011130.PMID: 21709059
Kristensen S.D., Knuuti J., Saraste A., Anker S., Bøtker H.E., Hert S.D., Ford I., Gonzalez Juanatey J.R., Gorenek B., Heyndrickx G.R., Hoeft A., Huber K., Iung B., Kjeldsen K.P., Longrois D., Lüscher T.F., Pierard L., Pocock S., Price S., Roffi M., Sirnes P.A., Sousa Uva M., Voudris V., Funck Brentano C.; Authors/Task Force Members. 2014 ESC/ESA guidelines on non-cardiac surgery: cardiovascular assessment and man- agement: The Joint Task Force on non-cardiac surgery: cardiovascular assessment and management of the European Society of Cardiology (ESC) and the European Society of Anaesthesiology (ESA). Eur. Heart J. 2014; 35 (35): 2383–2431. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ ehu282. PMID: 25086026
Лихванцев В.В., Марченко Д.Н., Гребенчиков О.А., Убасев Ю.В., Забелина Т.С., Тимошин С.С. Профилактика сердечной недостаточности в некардиальной хирургии у пациентов со сниженной фракцией изгнания левого желудочка: левосимендан или анестетическая кардиопротекция? (рандомизированное мультицентровое исследование). Вестн. анестезиологии и реаниматологии. 2016; 13 (3): 74–79. https://doi.org/ 10.21292/2075-1230-2016-13-3-74-80
Vascular Events In Noncardiac Surgery Patients Cohort Evaluation (VISION) Study Investigators, Devereaux P.J., Chan M.T., Alonso Coello P., Walsh M., Berwanger O., Villar J.C., Wang C.Y., Garutti R.I., Jacka M.J., Sigamani A., Srinathan S., Biccard B.M., Chow C.K., Abraham V., Tiboni M., Pettit S., Szczeklik W., LuratiBuse G., Botto F., Guyatt G., Heels Ansdell D., Sessler D.I., Thorlund K., Garg A.X., Mrkobrada M., Thomas S., Rodseth R.N., Pearse R.M., Thabane L., McQueen M.J., VanHelder T., Bhandari M., Bosch J., Kurz A., Polanczyk C., Malaga G., Nagele P., LeManach Y., Leuwer M., Yusuf S. Association between post- operative troponin levels and 30-day mortality among patients under- going noncardiac surgery. JAMA. 2012; 307 (21): 2296–2304. https://doi.org/10.1001/jama.2012.5502. PMID: 22706835
Корниенко А.Н., Добрушина О.Р., Зинина Е.П. Профилактика кардиальных осложнений внесердечных операций. Общая реаниматология. 2011; 7 (5): 57–66. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2011-5-57

View record in OAIster

9

Electronic Resource

Microcirculatory Disorders in Infant Respiratory Distress Syndrome (Morphological Study)

Additional Titles: Расстройства микроциркуляции при респираторном дистресссиндроме новорожденного (морфологическое исследование)

المؤلفون: S. Perepelitsa A.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology Imannuel Kant Baltic Federal University, A. Golubev M.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, V. Moroz V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, С. Перепелица А.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского Балтийский федеральный университет им. Иммануила Канта, А. Голубев М.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, В. Мороз В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского

المصدر: General Reanimatology; Том 12, № 6 (2016); 16-26; Общая реаниматология; Том 12, № 6 (2016); 16-26; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2016-6

مصطلحات الفهرس: vascular morphometry; lung microcirculation; preterm infants; respiratory distresssyndrome; exoge nous surfactants, морфометрия сосудов легких; микроциркуляция легких; недоношенные новорожденные; респираторный дистресссиндромом; экзогенные сурфактанты, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1559/1069
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1559/1069
Баранов А.А., НамазоваБаранова Л.С., Альбицкий В.Ю., Терлецкая Р.Н. Тенденции младенческой смертности в Российской Федерации в 1990—2012 г.г. Вестник РАМН. 2014; 11–12: 31–38. PMID: 25971124
Sweet D.G., Carnielli V., Greisen G., Hallman M., Ozek E., Plavka R., Saugstad O.D., Simeoni U., Speer C.P., Vento M., Halliday H.L.; European Association of Perinatal Medicine. European consensus guidelines on the management of neonatal respiratory distress syndrome in preterm infants – 2013 update. Neonatology. 2013; 103 (4): 353–368. http://dx.doi.org/10.1159/000349928. PMID: 23736015
Мороз В.В., Голубев А.М., Перепелица С.А. Респираторный дистресссиндром новорожденных. Патогенез, диагностика, клиника, лечение. Саарбрюкен: Palmarium Academic Publishing; 2014: 127.
Ковтун О.П., Цывьян П.Б. Преждевременное рождение и программирование заболеваний. Вклад интенсивной терапии. Вопр. совр. педиатрии. 2014; 13 (5): 26–30. http://dx.doi.org/10.15690/vsp.v13i5.1146
Лебедева О.В., Чикина Т.А. Факторы риска ранней неонатальной смертности у новорожденных с очень низкой и экстремально низкой массой тела при рождении. Вопр. совр. педиатрии. 2014; 13 (6): 35–39. http://dx.doi.org/10.15690/vsp.v13i6.1199
Ramanathan R. Surfactant therapy in preterm infants with respiratory distress syndrome and in nearterm of term newborns with acute RDS. J. Perinatol. 2006; 26 (Suppl 1): S51–S56. http://dx.doi.org/10.1038/sj.jp.7211474. PMID: 16625226
Fratto V.M., Ananth C.V., GyamfiBannerman C. Late preterm neonatal morbidity in hypertensive versus normotensive women. Hypertens Pregnancy. 2016; 35 (2): 241–249. http://dx.doi.org/10.3109/10641955.2016.1139720. PMID: 26930156
Рыжановский Б.Я., Лебедько О.А. Формирование гиалиновых мембран в легких белых крыс как результат воздействия блеомицина в неонатальном периоде. Бюл. экспер. биологии и медицины. 2015; 160 (9): 379–383.
Перепелица С.А. Заместительная терапия сурфактантом «Альвеофакт» респираторного дистресссиндрома у новорожденных (пилотное исследование). Общая реаниматология. 2014; 10 (4): 44–50. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201444450
Перепелица С.А., Лучина А.А. Ингаляционная сурфактанттерапия у новорожденных при искусственной вентиляции легких. Общая реаниматология. 2014; 10 (5): 44–51. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201454451
Reuter S., Moser C., Baack M. Respiratory distress in the newborn. Pediatr. Rev. 2014; 35 (10): 417–428. http://dx.doi.org/10.1542/pir.3510417. PMID: 252744969
Голубев А.М., Перепелица С.А., Смердова Е.Ф., Мороз В.В. Клинико-морфологические особенности дыхательных расстройств у недоношенных новорожденных. Общая реаниматология. 2008; 4 (3): 49–55. http://dx.doi.org/10.15360/181397792008349
Hermansen C.L., Mahajan A. Newborn respiratory distress. Am. Fam. Physician. 2015; 92 (11): 994–1002. PMID: 26760414
Давыдова И.В., Аникин А.В., Кустова О.В., Сиденко А.В., Басаргина Е.Ю., Павлюкова Е.В., Пожарищенская В.К. Бронхолегочная дисплазия в постсурфактантную эру: результаты объективной оценки течения заболевания. Вопр. совр. педиатрии. 2015; 14 (4): 514–518. http://dx.doi.org/10.15690/vsp.v14.i4.1392
Porzionato A., Guidolin D., Macchi V., Sarasin G., Grisafi D., Tortorella C., Dedja A., Zaramella P., De Caro R. Fractal analysis of alveolarization in hyperoxiainduced rat models of bronchopul monary dysplasia. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 2016; 310(7): L680– L688. http://dx.doi.org/10.1152/ajplung.00231.2015. PMID: 26851258
Whitsett J.A., Weaver T.E. Alveolar development and disease. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2015; 53 (1): 1–7. http://dx.doi.org/10.1165/rcmb.20150128PS. PMID: 25932959
Truog W.E., Xu D., Ekekezie I.I., Mabry S., Rezaiekhaligh M., Svojanovsky S., Soares M.J. Chronic hypoxia and rat lung development: analysis by morphometry and directed microarray. Pediatr. Res. 2008; 64 (1): 56–62. http://dx.doi.org/10.1203/PDR.0b013e31817289f2. PMID: 18344904
van Heijst A., Haasdijk R., Groenman F., van der Staak F., Hulsbergen van de Kaa C., de Krijger R., Tibboel D. Morphometric analysis of the lung vasculature after extracorporeal membrane oxygenation treatment for pulmonary hypertension in newborns. Virchows Arch. 2004; 445 (1): 36–44. http://dx.doi.org/10.1007/s004280041044y. PMID: 15175881
Iliodromiti Z., Zygouris D., Sifakis S., Pappa K.I., Tsikouras P., Salakos N., Daniilidis A., Siristatidis C., Vrachnis N. Acute lung injury in preterm fetuses and neonates: mechanisms and molecular pathways. J. Matern. Fetal. Neonatal. Med. 2013; 26 (17): 1696–1704. http://dx.doi.org/10.3109/14767058.2013.798284. PMID: 23611524
Brat R., Yousef N., Klifa R., Reynaud S., Shankar Aguilera S., De Luca D. Lung ultrasonography score to evaluate oxygenation and surfactant need in neonates treated with continuous positive airway pressure. JAMA Pediatr. 2015; 169 (8): e151797. http://dx.doi.org/10.1001/jamapediatrics.2015.1797. PMID: 26237465
Goldsmith L.S., Greenspan J.S., Rubenstein S.D., Wolfson M.R., Shaffer T.H. Immediate improvement in lung volume after exogenous surfactant: alveolar recruitment versus increased distention. J. Pediatr. 1991; 119 (3): 424–428. http://dx.doi.org/10.1016/S00223476(05)820578. PMID: 1880658
Sandberg K.L., Lindstrom D.P., Sjöqvist B.A., Parker R.A., Cotton R.B. Surfactant replacement therapy improves ventilation inhomogeneity in infants with respiratory distress syndrome. Pediatr. Pulmonol. 1997; 24 (5): 337–343. http://dx.doi.org/10.1002/(SICI)10990496(199711)24:5%3C337::AIDPPUL6%3E3.3.CO;2E. PMID: 9407567
Auten R.L., Notter R.H., Kendig J.W., Davis J.M., Shapiro D.L. Surfactant treatment of fullterm newborns with respiratory failure. Pediatrics. 1991; 87 (1): 101–107. PMID: 1984603
Clyman R.I., Jobe A., Heymann M., Ikegami M., Roman C., Payne B., Mauray F. Increased shunt through the patent ductus arteriosus after surfactant replacement therapy. J. Pediatr. 1982; 100 (1): 101–107.PMID: 6948942
Heldt G.P., Pesonen E., Merritt T.A., Elias W., Sahn D.J. Closure of the ductus arteriosus and mechanics of breathing in preterm infants after surfactant replacement therapy. Pediatr. Res. 1989; 25 (3): 305–310. http://dx.doi.org/10.1203/0000645019890300000020. PMID: 2649864

View record in OAIster

10

Electronic Resource

The 80th Anniversary of the V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology

Additional Titles: Научно-исследовательскому институту общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ РР — 80 лет

المؤلفون: V. Moroz V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology, A. Grechko V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology, В. Мороз В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ реаниматологии и реабилитологии, А. Гречко В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ реаниматологии и реабилитологии

المصدر: General Reanimatology; Том 13, № 5 (2017); 6-29; Общая реаниматология; Том 13, № 5 (2017); 6-29; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2017-5

مصطلحات الفهرس: info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1610/1155
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1610/1156
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1610/1155
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1610/1156

View record in OAIster

11

Electronic Resource

Effect of Perftoran on Membrane Nanostructure of Discocyte and Stomatocyte after Acute Blood Loss

Additional Titles: Влияние перфторана на наноструктуру мембран дискоцита и стоматоцита после острой кровопотери

المصدر: General Reanimatology; Том 13, № 2 (2017); 32-39; Общая реаниматология; Том 13, № 2 (2017); 32-39; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2017-2

مصطلحات الفهرس: hypovolemia; reperfusion period; perftoran; stomatocyte; discocyte; nanostructure of RBC membrane, гиповолемия; реперфузионный период; перфторан; стоматоцит; дискоцит; наноструктура мембран эртроцитов, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion, Рецензированная статья

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1583/1085
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1583/1121
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1583/1085
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1583/1121
Мороз В.В., Новодержкина И.С., Антошина Е.М., Афанасьев А.В., Рыжков И.А., Заржецкий Ю.В. Коррекция пойкилоцитоза и биохимических показателей крови при острой кровопотере. Общая реаниматология. 2015; 11 (3): 6–15. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2015-3-6-15
Сергунова В.А., Манченко Е.А., Гудкова О.Е. Гемоглобин: модификации, кристаллизация, полимеризация (обзор). Общая реаниматология. 2016; 12 (6): 49–63. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779- 2016-6-49-63
Лазаренко Д.Ю., Ханевич М.Д., Софронов Г.А., Андреева Н.Б., Поддубский Г.А. Влияние перфторана на микроциркуляцию и реологические свойства крови у больных с гастродоуденальными кровотечениями. В кн.: Перфторуглеродные соединения в медицине и биологии. Пущино; 2002: 30–35.
Кузнецова И.Н., Волкова С.Д., Рыбакова Л.П., Юрченко В.С., Кочеткова Г.А. Эмульсии перфторуглеводов влияют на морфо-функциональное состоянии клеток крови – эритроцитов и лейкоцитов in vitro. Вестн. службы крови России. 2009; 2: 23–26.
Терешина Е.В., Афонин H.H. Особенности взаимодействия частиц эмульсии перфторсоединений с липидами в процессе циркуляции в кровеносном русле. Хим.-фарм. журн. 1994; 28 (8): 12–15.
Bessis M. Atlas of red blood cell shapes. N."Y.: Springer"Verlag Berlin Heidelberg; 1974: 21—101.
Карташова Н.М., Кидалов В.Н., Наумова Э.М., Хадарцев А.А., Цогоев А.С. К вопросу о физиологической значимости изменений фор мы, ультраструктуры и флуоресценции эритроцитов периферической крови, трансформирующихся в стоматоциты. Вестн. новых мед. технологий. 2005; 12 (1): 8–11.
Kozlova E.K., Chernysh A.M., Moroz V.V., Kuzovlev A.N. Analysis of nanostructure of red blood cells membranes by space Fourier transform of AFM images. Micron. 2013; 44: 218–227. http://dx.doi.org/10.1016/ j.micron.2012.06.012. PMID: 22854216
Кононенко В.Л. Фликкер эритроцитов. 2. Результаты экспериментальных исследований. Биол. мембраны. 2009; 26 (6): 451–467.
Мороз В.В., Черныш А.М., Козлова Е.К., Кирсанова А.К., Новодержкина И.С., Александрин В.В., Борщеговская П.Ю., Близнюк У.А., Рысаева Р.М. Атомная силовая микроскопия структуры мембран эритроцитов при острой кровопотере и реинфузии. Общая реаниматология. 2009; 5 (5): 5–15. http://dx.doi.org/10.15360/ 1813-9779-2009-5-5
Takeuchi M., Miyamoto H., Sako Y., Komizu H., Kusumi A. Structure of the erythrocyte membrane skeleton as observed by atomic force microscopy. Biophys. J. 1998; 74 (5): 2171–2183. http://dx.doi.org/ 10.1016/S0006-3495(98)77926-3. PMID: 9591644
Rafikova O., Sokolova E., Rafikov R., Nudler E. Control of plasma nitric oxide bioactivity by perfluorocarbons: physiological mechanisms and clinical implications. Circulation. 2004; 110 (23): 3573–3580. http://dx.doi.org/10.1161/01.CIR.0000148782.37563.F8. PMID: 15557364
Стародубцева М.Н. Термохимические свойства мембран эритроцитов при окислительном стрессе. Журн. Гродненского ГМУ. 2009; 2: 66–67.
Pacher P., Beckman J.S., Ziander J. Nitric oxide and peroxynitrite in health and disease. Phisiol. Rev. 2007; 87 (1): 315–424. http://dx.doi.org/ 10.1152/physrev.00029.2006. PMID: 17237348
Kosaka H., Seiyama A. Physiological role of nitric oxide as an enhancer of oxygen transfer from erythrocytes to tissues. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1996; 218 (3): 749–752. http://dx.doi.org/10.1006/ bbrc.1996.0133. PMID: 8579585
Kozlova Е., Chernysh А., Moroz V., Sergunova V., Zavialova А., Kuzovlev А. Nanoparticles of perfluorocarbon emulsion contribute to the reduc" tion of methemoglobin to oxyhemoglobin. Int. J. Pharm. 2016; 497 (1–2): 88–95. http://dx.doi.org/10.1016/j.ijpharm.2015.11.035. PMID: 26626224
Зинчук В.В. Газотранспортная функция крови и NO. Журн. Гродненского ГМУ. 2009; 2: 34–37.
Мороз В.В., Новодержкина И.С., Антошина Е.М., Афанасьев А.В., Рыжков И.А., Заржецкий Ю.В. Коррекция пойкилоцитоза и биохимических показателей крови при острой кровопотере. Общая реаниматология. 2015; 11 (3): 6–15. http://dx.doi.org/10.15360/ 1813-9779-2015-3-6-15
Мороз В.В., Атауллаханов Ф.И., Радаев С.М., Остапченко Д.А., Лисовская И.Л., Розенберг Ю.М. Влияние перфторана на морфологию и реологические свойства эритроцитов у больных с тяжелой травмой и кровопотерей. Анестезиология и реаниматология. 2001; 6: 22–25. PMID: 11855054

View record in OAIster

12

Electronic Resource

Selective Polygraphy and Resonant Stimulation of Digestive Tract in Early Postoperative Period in Peritonitis

Additional Titles: СЕЛЕКТИВНАЯ ПОЛИГРАФИЯ И РЕЗОНАНСНАЯ СТИМУЛЯЦИЯ ЖЕЛУДОЧНОКИШЕЧНОГО ТРАКТА В РАННЕМ ПОСЛЕОПЕРАЦИОННОМ ПЕРИОДЕ ПРИ ПЕРИТОНИТЕ

المؤلفون: I. Bobrinskaya G.; A. I. Evdokimov Moscow State University of medicine and dentistry, Ministry of Health of Russia V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, V. Moroz V.; A. I. Evdokimov Moscow State University of medicine and dentistry, Ministry of Health of Russia V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, V. Yakovenko N.; A. A. Vishnevsky Institute of Surgery, O. Kudryakov N.; State clinical hospital № 5, E. Spiridonova A.; A. I. Evdokimov Moscow State University of medicine and dentistry, Ministry of Health of Russia, V. Soldatova Y.; A. I. Evdokimov Moscow State University of medicine and dentistry, Ministry of Health of Russia, И. Бобринская Г.; Московский государственный медико-стоматологический университет им. А. И. Евдокимова Минздрава России НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, В. Мороз В.; Московский государственный медико-стоматологический университет им. А. И. Евдокимова Минздрава России НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, В. Яковенко Н.; Институт хирургии им. А. В. Вишневского, О. Кудряков Н.; Городская клиническая больница №5, Е. Спиридонова А.; Московский государственный медико-стоматологический университет им. А. И. Евдокимова Минздрава России, В. Солдатова Ю.; Московский государственный медико-стоматологический университет им. А. И. Евдокимова Минздрава России

المصدر: General Reanimatology; Том 12, № 2 (2016); 90-99; Общая реаниматология; Том 12, № 2 (2016); 90-99; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2016-2

مصطلحات الفهرس: resonance stimulation; amplitude bioelectrical activity of excitable structures; gastrointestinal tract, резонансная стимуляция; амплитуда биоэлектрической активности возбудимых структур желудочнокишечного тракта, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1522/1014
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1522/1032
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1522/1014
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1522/1032
Комаров Ф.И., Гребенев А.П. (ред.). Руководство по гастроэнтерологии. М.: Медицина; 1996: 720.
Ивашкин В.Т., Трухманов А.С., Маев И.В. Физиологические основы моторноэвакуаторной функции пищеварительного тракта. Рос. журн. гастроэнтерол., гепатол., колопроктол. 2007; 17 (5): 1–11.
Малков И.С., Биряльцев В.Н., Филиппов В.А., Бердников А.В. Оценка электромиографической активности желудочнокишечного тракта у больных острым разлитым перитонитом. Анналы хир.2004; 6: 66—69.
Ступин В.А., Смирнова Г.О., Баглаенко М.В., Силуянов С.В., Закиров Д.Б. Периферическая электрогастроэнтерография в клинической практике. Лечащий врач. 2005; 2: 60—62.
Mythen M.G. Postoperative gastrointestinal tract dysfunction. Anesth. Analg. 2005; 100 (1): 196—204. http://dx.doi.org/10.1213/01.ANE.0000139376. 45591.17. PMID: 15616078
Worsøe J., Fynne L., Gregersen T., Schlageter V., Christensen L.A., Dahlerup I.F., Rijkhoff N.I., Laurberg S., Krogh K. Gastric transit and small intestinal transit time and motility assessed by a magnet tracking system. BMC Gastroenterol. 2011; 11: 145. http://dx.doi.org/10.1186/1471230X11145. PMID: 22206545
Fassov J., Lundby L., Wørsee J., Buntzcn S., Laurbergl S., Krogh K. A randomized controlled study of small intestinal motility in patients treated with sacral nerve stimulation for irritable bowel syndrome. BMC Gastroenterol. 2014; 14: 111. PMID: 24965754
Жерлов Г.К., Козлов С.В., Карась Р.С. Оценка эффективности автономной электростимуляции в лечении гастроэзофагельной рефлюксной болезни. Мед. наука и образование Урала. 2008; 9 (3): 62–64.
Жуковский В.Д. Медицинские электронные системы. М.: Медицина; 1976: 35.
Ступин В.А., Баглаенко М.В., Силуянов С.В., Закиров Д.Б., Смирнова Г.О. Периферическая электрогастроэнтерография в диагностике гастростаза после оперативного лечения язвенной болезни. Рос. мед. журнал. 2005; 3: 23–27.
Ногтев П.В., Чилингариди К., Яковенко В.Н. Новый метод в комплексном лечении спаечной кишечной непроходимости. Врач. 2010; 3: 73–76.
Смирнова В.И., Ковалева И.Г., Яковенко В.Н. Парез желудочно кишечного тракта в хирургии и методы его лечения. Анестезиология и реаниматология. 1995; 6: 71–73. PMID: 8713427
Бобринская И.Г., Ливанов А.С., Яковенко В.Н., Гутова Е.В., Максимцева Е.А. Роль селективных электрофизиологических методов диагностики и лечения нарушений моторной функции ЖКТ у больных с экзогенными отравлениями психотропными препаратами. Вестн. интенс. терапии. 2013; 4: 24–30.
Яковенко В.Н, Шульгина Н.М. Механизмы генерации медленных составляющих биоэлектрической активности в диагностике и коррекции функционального состояния органов ЖКТ. Междунар. мед. журнал. 2000; 9 (3): 228–233.

View record in OAIster

13

Electronic Resource

Effect of SkQ1 Antioxidant on Structural and Functional Conditions of The Brain in PostResuscitation Period

Additional Titles: ДЕЙСТВИЕ АНТИОКСИДАНТА SKQ1 НА СТРУКТУРНОФУНКЦИОНАЛЬНОЕ СОСТОЯНИЕ МОЗГА В ПОСТРЕАНИМАЦИОННОМ ПЕРИОДЕ

المؤلفون: M. Lovat L.; «Research Institute of Mitoengineering of M. V. Lomonosov Moscow State University» Ltd. M.V. Lomonosov Moscow State University, M. Avrushchenko Sh.; V. A. Negovsky Institute of General Reanimatology, O. Averina A.; «Research Institute of Mitoengineering of M. V. Lomonosov Moscow State University» Ltd., V. Pavshintsev V.; «Research Institute of Mitoengineering of M. V. Lomonosov Moscow State University» Ltd., I. Ostrova V.; V. A. Negovsky Institute of General Reanimatology, Y. Zarzhetsky V.; V. A. Negovsky Institute of General Reanimatology, V. Moroz V.; V. A. Negovsky Institute of General Reanimatology, M. Egorov V.; «Research Institute of Mitoengineering of M. V. Lomonosov Moscow State University» Ltd., М. Ловать Л.; ООО «НИИ Митоинженерии МГУ» Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, М. Аврущенко Ш.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, О. Аверина А.; ООО «НИИ Митоинженерии МГУ», В. Павшинцев В.; ООО «НИИ Митоинженерии МГУ», И. Острова В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Ю. Заржецкий В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, В. Мороз В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, М. Егоров В.; ООО «НИИ Митоинженерии МГУ»

المصدر: General Reanimatology; Том 12, № 2 (2016); 6-19; Общая реаниматология; Том 12, № 2 (2016); 6-19; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2016-2

مصطلحات الفهرس: SkQ1; cardiac arrest; resuscitation; locomotor activity; sensorimotoric disorders; neuronal loss; GDNF, SkQ1; остановка сердца; реанимация; двигательная активность; сенсомотор ные нарушения; гибель нейронов; GDNF, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1517/1009
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1517/1027
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1517/1009
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1517/1027
Skulachev V.P., Anisimov V.N., Antonenko Y.N., Bakeeva L.E., Chernyak B.V., Erichev V.P., Filenko O.F., Kalinina N.I., Kapelko V.I., Kolosova N.G., Kopnin B.P., Korshunova G.A., Lichinitser M.R., Obukhova L.A., Pasyukova E.G., Pisarenko O.I., Roginsky V.A., Ruuge E.K., Senin I.I., Severina I.I., Skulachev M.V., Spivak I.M., Tashlitsky V.N., Tkachuk V.A., Vyssokikh M.Y., YaguzhinskyL.S., Zorov D.B. An attempt to prevent senescence: a mitochondrial approach. Biochim. Biophys. Acta. 2009; 1787 (5): 437–461. http://dx.doi.org/ 10.1016/j.bbabio.2008.12.008.PMID: 19159610
Skulachev V.P. Mitochondriatargeted antioxidants as promising drugs for treatment of agerelated brain diseases. J. Alzheimers Disease. 2012; 28 (2): 283–289. http://dx.doi.org/10.3233/JAD2011111391. PMID: 21987592
Lukashev A.N., Skulachev M.V., Ostapenko V., Savchenko A.Y., Pavshintsev V.V., Skulachev V.P. Advances in development of recharge able mitochondrial antioxidants. Prog. Mol. Biol. Transl. Sci. 2014; 127: 251–265. http://dx.doi.org/10.1016/B9780123946256.000106. PMID: 25149221
Anisimov V.N., Bakeeva L.E., Egormin P.A., Filenko O.F., Isakova E.F., Manskikh V.N., Mikhelson V.M., Panteleeva A.A., Pasyukova E.G., Pilipenko D.I., Piskunova T.S., Popovich I.G., Roshchina N.V., Rybina O.Y., Saprunova V.B., Samoylova T.A., Semenchenko A.V., Skulachev M.V., Spivak I.M., Tsybul’ko E.A., Tyndyk M.L., Vyssokikh M.Y., Yurova M.N., Zabezhinsky M.A., Skulachev V.P. Mitochondriatargeted plasto quinone derivatives as tools to interrupt execution of the aging program. 5. SkQ1 prolongs lifespan and prevents development of traits of senescence. Biochemistry (Mosc.). 2008; 73 (12): 1329–1342. http://dx.doi.org/10.1134/S0006297908120055. PMID: 19120018
Antonenko Y.N., Avetisyan A.V., Bakeeva L.E., Chernyak B.V., Chertkov V.A., Domnina L.V., Ivanova O.Y., Izyumov D.S., Khailova L.S., Klishin S.S., Korshunova G.A., Lyamzaev K.G., Muntyan M.S., Nepryakhina O.K., Pashkovskaya A.A., Pletjushkina O.Y., Pustovidko A.V., Roginsky V.A., Rokitskaya T.I., Ruuge E.K., Saprunova V.B., Severina I.I., Simonyan R.A., Skulachev I.V., Skulachev M.V., Sumbatyan N.V., Sviryaeva I.V., Tashlitsky V.N., Vassiliev J.M., Vyssokikh M.Y., Yaguzhinsky L.S., Zamyatnin A.A.Jr., Skulachev V.P. Mitochondriatar geted plastoquinone derivatives as tools to interrupt execution of the aging program. 1. Cationic plastoquinone derivatives: synthesis and in vitro studies. Biochemistry (Mosc.). 2008; 73 (12): 1273–1287. http://dx.doi.org/10.1134/S0006297908120018. PMID: 19120014
Bakeeva L.E., Barskov I.V., Egorov M.V., Isaev N.K., Kapelko V.I., Kazachenko A.V., Kirpatovsky V.I., Kozlovsky S.V., Lakomkin V.L., Levina S.B., Pisarenko O.I., Plotnikov E.Y., Saprunova V.B., Serebryakova L.I., Skulachev M.V., Stelmashook E.V., Studneva I.M., Tskitishvili O.V., Vasilyeva A.K., Victorov I.V., Zorov D.B., Skulachev V.P. Mitochondria targeted plastoquinone derivatives as tools to interrupt execution of the aging program. 2. Treatment of some ROS and agerelated diseases (heart arrhythmia, heart infarctions, kidney ischemia, and stroke). Biochemistry (Mosc.). 2008; 73 (12): 1288–1299.http://dx.doi.org/10.1134/S000629790812002X. PMID: 19120015
Лакомкин В.Л., Капелько В.И. Защитный эффект митохондриального антиоксиданта SkQ1 при ишемии и реперфузии сердца. Кардиология. 2009; 49 (10): 55–60. PMID: 19845521
Plotnikov E.Y., Chupyrkina A.A., Jankauskas S.S., Pevzner I.B., Silachev D.N., Skulachev V.P., Zorov D.B. Mechanisms of nephroprotective effect of mitochondriatargeted antioxidants under rhabdomyolysis and ischemia/reperfusion. Biochim. Biophys. Acta. 2011; 1812 (1): 77–86. http://dx.doi.org/10.1016/j.bbadis.2010.09.008. PMID: 20884348
Kapay N.A., Popova O.V., Isaev N.K., Stelmashook E.V., Kondratenko R.V., Zorov D.B., Skrebitsky V.G., Skulachev V.P. Mitochondriatarget ed plastoquinone antioxidant SkQ1 prevents amyloidвinduced impairment of longterm potentiation in rat hippocampal slices. J. Alzheimers Dis. 2013; 36 (2): 377–383. http://dx.doi.org/10.3233/ JAD122428. PMID: 23735258
Stefanova N.A., Fursova A.Zh., Kolosova N.G. Behavioral effects induced by mitochondriatargeted antioxidant SkQ1 in Wistar and senescenceaccelerated OXYS rats. J. Alzheimers Dis. 2010; 21 (2): 479–491. http://dx.doi.org/10.3233/JAD2010091675. PMID: 20555140
Аврущенко М.Ш., Острова И.В., ВолковА.В. Постреанимационные изменения экспрессии глиального нейротрофического фактора (GDNF): взаимосвязь с повреждением клеток Пуркинье мозжечка (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2014; 10 (5): 59–68. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201455968
Cao J., Niu H., Wang H., Huang X., Gao D. NFкB p65/p52 plays a role in GDNF upregulating Bcl2 and Bclw expression in 6OHDA induced apoptosis of MN9D cell. J. Neurosci. 2013; 123 (10): 705–710. http://dx.doi.org/10.3109/00207454.2013.795149. PMID: 23590664
Li F., Wang M., Zhu S., Li L., Xiong Y., Gao D. The potential neuroprotection mechanism of GDNF in the 6OHDAinduced cellular models of Parkinson’s Disease. Cell Mol. Neurobiol. 2013; 33 (7): 907–919. http://dx.doi.org/10.1007/s1057101399570. PMID: 23846419
Li L., Chen H., Chen F., Li F., Wang M., Wang L., Li Y., Gao D. Effects of glia cell linederived neurotrophic factor on microRNA expression in a 6hydroxydopamineinjered dopaminergic cell line. J. Neural. Transm. (Vienna). 2013; 120 (11): 1511–1523. http://dx.doi.org/10.1007/s007020131031z. PMID: 23771700
Youdim M. Multi target neuroprotective and neurorestorative antiParkinson and antiAlzheimer drugs ladostigil and m30 derived from rasagiline. Exp. Neurobiol. 2013; 22 (1): 1–10. http://dx.doi.org/10.5607/en.2013.22.1.1. PMID: 23585716
Xu S., Bi C., Choi R., Zhu K., Miernisha A., Dong T., Tsim K. Flavonoids induce the synthesis and secretion of neurotrophic factors in cultured rat astrocytes: a signaling response mediated by estrogen receptor. Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2013; 2013: 127075.http://dx.doi.org/10.1155/2013/127075. PMID: 23878590
Kotyuk E., Nemeth N., Halmai Z., Faludi G., SasvariSzekely M., Szekely A. Association between mood characteristics and polymorphisms of glial cell linederived neurotrophic factor (GNDF) in patients with depression. Neuropsychopharmacol. Hung. 2013; 15 (2): 63–72. PMID: 23817357
Myazaki H., Nagashima K., Okuma Y., Nomura Y. Expression of glial cell linederived neurotrophic factor induced by transient forebrain ischemia in rats. Brain Res. 2001; 922 (2): 165–172. http://dx.doi.org/10.1016/S00068993(01)03013X. PMID: 11743946
Ikeda T., Xia X.Y., Xia Y.X., Ikenoue T., Han B., Choi B.H. Glial cell line derived neurotrophic factor protects against ischemia/hypoxiainduced brain injury in neonatal rats. Acta Neuropathol. 2000; 100 (2): 161–167. http://dx.doi.org/10.1007/s004019900162. PMID: 10963363
Korsak K., Dolatshad N.F., Silva A.T., Saffrey M.J. Ageing of enteric neurons: oxidative stress, neurotrophic factors and antioxidant enzymes. Chem. Cent. J. 2012; 2; 6 (1): 80. http://dx.doi.org/10.1186/1752153X680. PMID: 22857398
Thrasivoulou C., Soubeyre V., Ridha H., Giuliani D., Giaroni C., Michael G.J., Saffrey M.J., Cowen T. Reactive oxygen species, dietary restriction and neurotrophic factors in agerelated loss of myenteric neurons. Aging Cell. 2006; 5 (3): 247–257. http://dx.doi.org/10.1111/j.14749726.2006.00214.x. PMID: 16842497
Корпачев В.Г., Лысенков С.П., Тель Л.З. Моделирование клинической смерти и постреанимационной болезни у крыс. Патол. физиол. и эксперим. терапия. 1982; 3: 78–80. PMID: 7122145
Pellow S., Chopin P., File S.E., Briley M. Validation of open: closed arm entries in an elevated plusmaze as a measure of anxiety in the rat. J. Neurosci. Methods. 1985; 14 (3): 149–167. http://dx.doi.org/10.1016/01650270(85)900317. PMID: 2864480
Schallert T., Cenci M.A., Whishaw I.Q. Animal models of neurological deficits: how relevant is the rat? Nat. Rev. Neurosci. 2002; 3 (7): 574–579. PMID: 12094213
Ross D.A., Glick S.D. Lateralized effects of bilateral frontal cortex lesions in rats. Brain Res. 1981; 210 (1–2): 379–382. http://dx.doi.org/10.1016/00068993(81)909136. PMID: 7194718
Sanches E.F., Arteni N.S., Scherer E.B., Kolling J., Nicola F., Willborn S., Wyse A.T., Netto C.A. Are the consequences of neonatal hypoxiaischemia dependent on animals’ sex and brain lateralization? Brain Res. 2013; 1507: 105–114. http://dx.doi.org/10.1016/j.brainres.2013.02.040. PMID:23466455
Заржецкий Ю.В., Аврущенко М.Ш., Волков А.В. Нейрофизиологические механизмы постреанимационного повреждения мозга. Общая реаниматология. 2006; 2 (5–6): 101–110. http://dx.doi.org/10.15360/1813977920066101110
Аврущенко М.Ш., Волков А.В., Заржецкий Ю.В., Острова И.В. Постреанимационные изменения морфофункционального состояния нервных клеток: значение в патогенезе энцефалопатий. Общая реаниматология. 2006; 2 (5–6): 85–97. http://dx.doi.org/10.15360/18139779200668596
Аврущенко М.Ш., Мороз В.В., Острова И.В. Постреанимационные изменения мозга на уровне нейрональных популяций: закономерности и механизмы. Общая реаниматология. 2012; 8 (4): 69–78. http://dx.doi.org/10.15360/181397792012469
Kofler J., Hattori K., Sawada M., DeVries A.C., Martin L.J., Hurn P.D., Traystman R.J. Histopathological and behavioral characterization of a novel model of cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation in mice. J. Neurosci. Methods. 2004; 136 (1): 33–44. http://dx.doi.org/10.1016/j.jneumeth.2003.12.024. PMID: 15126043
Kosaka Y., Quillinan N., Bond C., Traystman R., Hurn P., Herson P. GPER1/GPR30 activation improves neuronal survival following global cerebral ischemia induced by cardiac arrest in mice. Transl. Stroke Res. 2012; 3 (4): 500–507. http://dx.doi.org/10.1007/s1297501202118. PMID: 23483801
Deng G., Yonchek J.C., Quillinan N., Strnad F.A., Exo J., Herson P.S., Traystman R.J. A novel mouse model of pediatric cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation reveals agedependent neuronal sensitivities to ischemic injury. J. Neurosci. Methods. 2014; 222: 34–41. http://dx.doi.org/ 10.1016/j.jneumeth.2013.10.015. PMID: 24192226
Nikonenko A.G., Radenovic L., Andjus P.R., Skibo G.G. Structural features of ischemic damage in the hippocampus. Anat. Rec. (Hoboken). 2009; 292 (12): 1914–1921. http://dx.doi.org/ 10.1002/ar.20969.PMID: 19943345
Quillinan N., Grewal H., Deng G., Shimizu K., Yonchek J.C., Strnad F., Traystman R.J., Herson P.S. Regionspecific role for GluN2Bcontaining NMDA receptors in injury to Purkinje cells and CA1 neurons following global cerebral ischemia. Neuroscience. 2015; 284: 555–565. http://dx.doi.org/ 10.1016/j.neuroscience.2014.10.033. PMID: 25450957
Ishibashi N., Iwata Y., Okamura T., Zurakowski D., Lidov H.G., Jonas R.A. Differential neuronal vulnerability varies according to specific cardiopulmonary bypass insult in a porcine survival model. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2010; 140 (6): 1408–1415. e13. http://dx.doi.org/10.1016/j.jtcvs.2010.03.008. PMID: 20434176
Ginsberg M.D. Neuroprotection for ischemic stroke: past, present and future. Neuropharmacology. 2008; 55 (3): 363–389. http://dx.doi.org/10.1016/j.neuropharm.2007.12.007. PMID: 18308347
Iadecola C., Anrather J. The immunology of stroke: from mechanisms to translation. Nat. Med. 2011; 17 (7): 796–808. http://dx.doi.org/10.1038/nm.2399. PMID: 21738161
Geocadin R.G., Koenig M.A., Jia X., Stevens R.D., Peberdy M.A. Management of brain injury after resuscitation from cardiac arrest. Neurol. Clin. 2008; 26 (2): 487–506. http://dx.doi.org/10.1016/j.ncl.2008.03.015. PMID: 18514823
Аврущенко М.Ш., Острова И.В., Заржецкий Ю.В., Волков А.В. Индивидуальнотипологические особенности постреанимационных изменений мозга: роль белков теплового шока HSP70. Общая реаниматология. 2008; 4 (6): 34–39. http://dx.doi.org/10.15360/181397792008634
Острова И.В., Мороз В.В., Аврущенко М.Ш. Значение иммуногистохимических исследований HSP70 в изучении постреанимационных изменений мозга. Общая реаниматология. 2007; 3 (5–6): 91–96. http://dx.doi.org/10.15360/18139779200769196
Острова И.В., Аврущенко М.Ш., Волков А.В. Взаимосвязь уровня экспрессии белка GRP78 с выраженностью постишемического повреждения гиппокампа у крыс разного пола. Общая реаниматология. 2011; 7 (6): 28–33. http://dx.doi.org/10.15360/181397792011628
Аврущенко М.Ш., Острова И.В., Заржецкий Ю.В., Мороз В.В., Гудашева Т.А., Середенин С.Б. Влияние миметика фактора роста нервов ГК2 на постреанимационную экспрессию нейротрофических факторов. Патол. физиол. и эксперим. терапия. 2015; 59 (2): 13–18. PMID: 26571801
Острова И.В., Аврущенко М.Ш. Экспрессия мозгового нейротрофического фактора (BDNF) повышает устойчивость нейронов к гибели в постреанимационном периоде. Общая реаниматология. 2015;11 (3): 45–53. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201534553
Yuan H.B., Huang Y., Zheng S., Zuo Z. Hypothermic preconditioning reduces Purkinje cell death possibly by preventing the overexpres sion of inducible nitric oxide synthase in rat cerebellar slices after an in vitro simulated ischemia. Neuroscience. 2006; 142 (2): 381–389. http://dx.doi.org/10.1016/j.neuroscience.2006.06.053. PMID: 16890370
Yuan H.B., Huang Y., Zheng S., Zuo Z. Hypothermic preconditioning increases survival of Purkinje neurons in rat cerebellar slices after an in vitro simulated ischemia. Anesthesiology. 2004; 100 (2): 331–337. http://dx.doi.org/10.1097/0000054220040200000023. PMID: 14739808
Wang L., Deng Q., Wu X., Yu J., Yang X., Zhong Y. Upregulation of glutamateaspartate transporter by glial cell linederived neurotrophic factor ameliorates cell apoptosis in neural retina in streptozotocin induced diabetic rats. CNS Neurosci. Ther. 2013; 19 (12): 945–953. http://dx.doi.org/ 10.1111/cns.12150. PMID: 23870489
Lau Y.S., Patki G., DasPanja K., Le W.D., Ahmad S.O. Neuroprotective effects and mechanisms of exercise in a chronic mouse model of Parkinson’s disease with moderate neurodegeneration. Eur. J. Neurosci.2011; 33 (7): 1264–1274. http: //dx.doi.org/10.1111/j.14609568.2011.07626.x. PMID: 21375602
Aguiar A.S.Jr., Stragier E., da Luz Scheffer D., Remor A.P., Oliveira P.A., Prediger R.D., Latini A., RaismanVozari R., Mongeau R., Lanfumey L. Effects of exercise on mitochondrial function, neuroplasticity and anxio depressive behavior of mice. Neuroscience. 2014; 271: 56–63. http: //dx.doi.org/10.1016/j.neuroscience.2014.04.027. PMID: 24780767

View record in OAIster

14

Electronic Resource

Phenylcarboxylic Acids in The Assessment of The Severity of Patient Condition and The Efficiency of Intensive Treatment in Critical Care Medicine

Additional Titles: ФЕНИЛКАРБОНОВЫЕ КИСЛОТЫ В ОЦЕНКЕ ТЯЖЕСТИ СОСТОЯНИЯ И ЭФФЕКТИВНОСТИ ЛЕЧЕНИЯ БОЛЬНЫХ В РЕАНИМАТОЛОГИИ

المؤلفون: V. Moroz V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, N. Beloborodova V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, A. Osipov A.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, D. Rogachev Federal scientific clinical centre of pediatric Hematology, Oncology and Immunology, Ministry of Health of Russia, A. Vlasenko V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, A. Bedova Yu.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, A. Pautova K.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, В. Мороз В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Н. Белобородова В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, А. Осипов А.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Федеральный научно#клинический центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Д. Рогачева Минздрава России, А. Власенко В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, А. Бедова Ю.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, А. Паутова К.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского

المصدر: General Reanimatology; Том 12, № 4 (2016); 37-48; Общая реаниматология; Том 12, № 4 (2016); 37-48; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2016-4

مصطلحات الفهرس: critical illness; abdominal surgery; critical illness assessment; APACHE II; phenylcarboxylic acids; phenyllactic acid; phydroxyphenyllactic acid; phydroxyphenylacetic acid; lactate; gas chromatography, критические состояния; абдоминальная хирургия; оценка тяжести состояния; APACHE II; фенилкарбоновые кислоты; фенилмолочная кислота; пгидроксифенилмолочная кислота; пгидро ксифенилуксусная кислота; лактат; газовая хроматография, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1538/1046
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1538/1047
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1538/1046
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1538/1047
Хорошилов С.Е., Белобородова Н.В., Никулин А.В., Бедова А.Ю. Влияние экстракорпоральной детоксикации на уровень ароматических микробных метаболитов в сыворотке крови при сепсисе. Общая реаниматология. 2015; 11 (5): 6#14. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2015-5-6-14
Авдейкин С.Н., Тюрин И.Н., Карпун Н.А., Саликов А.В. Центральная гемодинамика и индекс внесосудистой воды легких при внебольничной пневмонии различной тяжести течения. Общая реаниматология. 2015; 11 (4): 23-32. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2015-4-23-32
Кецко Ю.Л., Лунина А.В., Петровская Е.В., Лямин А.В. Оценка эффективности антибактериальной терапии у пациентов с вируснобактериальной пневмонией в 2009/2011 годах. Общая реаниматология. 2015; 11 (4): 33-40. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2015-4-33-40
Marshall J.C., Cook D.J., Christou N.V., Bernard G.R., Sprung C.L., Sibbald W.J. Multiple organ dysfunction score: a reliable descriptor of a complex clinical outcome. Crit. Care Med. 1995; 23 (10): 1638-1652. http://dx.doi.org/10.1097/00003246-199510000-00007. PMID:7587228
Брюсов П.Г., Назаренко Г.И., Жижин В.Н. Прогнозирование в медицине катастроф. Томск: изд#во Томского университета; 1995: 240.
Мороз В.В., Закс И.О., Мещеряков Г.Н. Шкалы оценки тяжести и прогноза в клинике интенсивной терапии. Вестн. интенс. терапии. 2004; 4: 3-6.
Гридчик И.Е., Закиров Д.Б., Пар В.И. К прогнозу течения абдоминального сепсиса. Вестн. интенс. терапии. 2004; 1: 1-5.
Vincent J.L., Beumier M. Diagnostic and prognostic markers in sepsis. Expert. Rev. Anti Infect. Ther. 2013; 11 (3): 265#275. http://dx.doi.org/10.1586/eri.13.9. PMID: 23458767
Moreno R., Morais P. Outcome prediction in intensive care: results of a prospective, multicentre, Portuguese study. Intensive Care Med. 1997; 23 (2): 177-186. http://dx.doi.org/10.1007/s001340050313. PMID: 9069003
Звягин А.А., Светухин А.М., Слепнев С.Ю., Курочкина А.И. Разработка системы объективной оценки тяжести состояния больных с хирургической инфекцией. Вестн. интенс. терапии. 2003; 2: 34-38.
Rogers A.J., McGeachie M., Baron R.M., Gazourian L., Haspel J.A., Nakahira K., Fredenburgh L.E., Hunninghake G.M., Raby B.A., Matthay M.A., Otero R.M., Fowler V.G., Rivers E.P., Woods C.W., Kingsmore S., Langley R.J., Choi A.M. Metabolomic derangements are associated with mortality in critically ill adult patients. PloS One. 2014; 9 (1): e87538. http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0087538. PMID: 24498130
Мороз В.В., Добрушина О.Р., Стрельникова Е.П., Корниенко А.Н., Зинина Е.П. Предикторы кардиальных осложнений операций на органах брюшной полости и малого таза у больных пожилого и старческого возраста. Общая реаниматология. 2011; 7 (5): 26-31. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2011-5-26
Козлов И.А., Харламова И.Е. Повышенный уровень натрийуретического пептида B#типа (NT#proBNP) как фактор риска у кардиохирургических больных. Общая реаниматология. 2010; 6 (1): 49-55. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2010-1-49
Кричевский Л.А., Рыбаков В.Ю., Гусева О.Г., Лямин А.Ю., Харламова И.Е., Магилевец А.И. Ранняя диагностика критических постперфузионных расстройств кровообращения. Общая реаниматология. 2012; 8 (3): 25-30. http://dx.doi.org/10.15360/18139779-2012-3-25
Белобородова Н.В., Бойко Н.Б., Мелько А.И., Архипова А.С., Белобородов Д.М., Оленин А.Ю. Хромато#масс#спектрометрическое определение низкомолекулярных ароматических соединений микробного происхождения в сыворотке крови больных сепсисом. Клин. лаб. диагностика. 2006; 2: 3-6. PMID: 16610621
Французов В.Н., Истратов В.Г., Зайцев С.В. Оценка эндогенной интоксикации у больных анаэробной неклостридиальной инфекцией методами хроматографии и масс-спектрометрии. Воен._мед. журнал. 2000; 321 (7): 17. PMID: 14631919
Истратов В.Г., Назаренко Н.А., Рузавин В.С., Демидова В.С., Вишневский В.А. Хроматография и хромато#масс#спектрометрия в диагностике острой пострезекционной печеночной недостаточности. Анналы хирургической гепатологии. 2009; 14 (4): 9-12.
Белобородова Н.В. Интеграция метаболизма человека и его микробиома при критических состояниях. Общая реаниматология. 2012; 8 (4): 42-54. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2012-4-42
Fedotcheva N.I., Kazakov R.E., Kondrashova M.N., Beloborodova N.V. Toxic effects of microbial phenolic acids on the functions of mitochondria. Toxicol. Lett. 2008; 180 (3): 182-188. http://dx.doi.org/10.1016/j.toxlet.2008.06.861. PMID: 18634861
Beloborodova N., Bairamov I., Olenin A., Shubina V., Teplova V., Fedotcheva N. Effect of phenolic acids of microbial origin on production of reactive oxygen species in mitochondria and neutrophils. J. Biomed. Sci. 2012; 19: 89. http://dx.doi.org/10.1186/1423-0127-19-89. PMID: 23061754
Мороз В.В., Белобородова Н.В., Осипов А.А., Власенко А.В., Бедова А.Ю., Паутова А.К. Фенилкарбоновые кислоты в оценке тяжести состояния и адекватности интенсивного лечения больных в реаниматологии. Анестезиология и реаниматология. 2016; 61 (3): 201-209.
Федотчева Н.И., Литвинова Е.Г., Оcипов А.А., Оленин А.Ю., Моpоз В.В., Белобоpодова Н.В. Влияние микpобныx метаболитов фенольной пpиpоды на активноcть митоxондpиальныx феpментов. Биофизика. 2015; 60 (6): 1118#1124. PMID: 26841505
Рябов Г.А. Критические состояния в хирургии. М.: Медицина; 1979: 320.
Савельев В.С., Гельфанд Б.Р., Филимонов М.И. (ред.). Перитонит. Практическое руководство. М.: Литтерра; 2006: 208.
Мороз В.В., Белобородова Н.В., Бедова А.Ю., Ревельский А.И., Гецина М.Л., Осипов А.А., Саршор Ю.Н., Бучинская А.А., Оленин А.Ю. Разработка и адаптация к условиям клинической лаборатории методик газохроматографического определения фенилкарбоновых кислот в сыворотке крови. Журн. аналит. химии. 2015; 70 (4): 418
http://dx.doi.org/10.1134/S1061934815040103
Beloborodova N., Moroz V., Osipov A., Bedova A., Sarshor Y., Pautova A., Sergeev A., Chernevskaya E. Disbalance of microbial metabolites of aromatic acids affects the severity in critically ill patients. Crit. Care. 2016; 20 (Suppl 2): 026. http://dx.doi.org/10.1186/s13054-016-1208-6

View record in OAIster

15

Electronic Resource

Acute Blood Loss: Regional Blood Flow and Microcirculation (Review, Part I)

Additional Titles: ОСТРАЯ КРОВОПОТЕРЯ: РЕГИОНАРНЫЙ КРОВОТОК И МИКРОЦИРКУЛЯЦИЯ (ОБЗОР, ЧАСТЬ I)

المؤلفون: V. Moroz V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, I. Ryzhkov A.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, В. Мороз В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, И. Рыжков А.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского

المصدر: General Reanimatology; Том 12, № 2 (2016); 66-89; Общая реаниматология; Том 12, № 2 (2016); 66-89; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2016-2

مصطلحات الفهرس: acute blood loss; hemorrhagic shock; pathophysiology; microcirculation; oxygen transport, острая кровопотеря; геморрагический шок; патофизиология; микроциркуляция; транспорт кислорода, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1521/1013
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1521/1031
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1521/1013
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1521/1031
Литвицкий П.Ф. Патофизиология. 4е изд. М.: ГЭОТАРМедиа; 2010: 496.
Dutton R.P. Current concepts in hemorrhagic shock. Anesthesiol. Clin. 2007; 25 (1): 23–34. http://dx.doi.org/10.1016/j.atc.2006.11.007.PMID: 17400153
Мороз В.В., Бобринская И.Г., Васильев В.Ю., Спиридонова Е.А., Тишков Е.А., Суряхин В.С. Шок. Учебнометодическое пособие для студентов, ординаторов, аспирантов и врачей. М.; 2011: 29.
Токмакова Т.О., Пермякова С.Ю., Киселева А.В., Шукевич Д.Л., Григорьев Е.В. Мониторинг микроциркуляции в критических состояниях: возможности и ограничения. Общая реаниматология. 2012; 8(2): 74–78. http://dx.doi.org/10.15360/181397792012274
Donati A., Domizi R., Damiani E., Adrario E., Pelaia P., Ince C. From macrohemodynamic to the microcirculation. Crit. Care Res. Pract. 2013; 2013: 892710. http://dx.doi.org/10.1155/2013/892710. PMID: 23509621
Козлов В.И. Система микроциркуляции крови: клиникоморфологические аспекты изучения. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2006; 5 (1): 84–101.
Крупаткин А.И., Сидоров В.В. Функциональная диагностика состояния микроциркуляторнотканевых систем: колебания, информация, нелинейность. М.: ЛИБРОКОМ; 2013: 496.
Вицлеб Э. Функции сосудистой системы. В кн.: Шмидт Р., Тевс Г. (ред.). Физиология человека. М.: Мир; 2004: 498–566.
Морман Д., Хеллер Л. Физиология сердечнососудистой системы. СПб.: Питер; 2000: 256.
Eroschenko V. Di Fiore’s atlas of histology with functional correlations. 11th ed. Baltimore: Lippincott Williams&Wilkins; 2008.
Фолков Б., Нил Э. Кровообращение. М.: Медицина; 1976: 463.
De Backer D., Donadello K., Taccone F.S., OspinaTascon G., Salgado D., Vincent J.L. Microcirculatory alterations: potential mechanisms and implications for therapy. Ann. Intensive Care. 2011; 1 (1): 27. http://dx.doi.org/10.1186/21105820127. PMID: 21906380
Bateman R.M., Sharpe M.D., Ellis C.G. Benchtobedside review: Microvascular dysfunction in sepsis –hemodynamics, oxygen transport, and nitric oxide. Crit. Care. 2003; 7 (5): 359–373. http://dx.doi.org/10.1186/cc2353. PMID: 12974969
Покровский В.И. (ред.). Энциклопедический словарь медицинских терминов. 2е изд. М.: Медицина; 2001: 960.
Furchgott R.F., Zawadski J.V. The obligatory role of endothelial cells in relaxation of arterial smooth muscle by acetylcholine. Nature. 1980; 2885789): 373–376. http://dx.doi.org/10.1038/288373a0. PMID: 6253831
Ignarro L.J., Buga G.M., Wood K.S., Byrns R.E., Chaudhuri G. Endothelium derived relaxing factor produced and released from artery and vein is nitricoxide. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1987; 84 (24): 9265–9269. http://dx.doi.org/10.1073/pnas.84.24.9265. PMID: 2827174
Barakat A.I. Responsiveness of vascular endothelium to shear stress: potential role of ion channels and cellular cytoskeleton (review). Int. J. Mol. Med. 1999; 4 (4): 323–332. http://dx.doi.org/10.3892/ijmm.4.4.323. PMID: 10493972
Secomb T.W. Theoretical models for regulation of blood flow. Microcirculation. 2008; 15 (8): 765–775. http://dx.doi.org/10.1080/10739680802350112. PMID: 18951240
Collins D.M., McCullough W.T., Ellsworth M.L. Conducted vascular responses: communication across the capillary bed. Microvasc. Res. 1998; 56 (1): 43–53. http://dx.doi.org/10.1006/mvre.1998.2076. PMID: 9683562
Мороз В.В., Остапченко Д.А., Мещеряков Г.Н., Радаев С.М. Острая кровопотеря. Взгляд на проблему. Анестезиология и реаниматология. 2002; 6: 4–9. PMID: 12611147
Gutierrez G., Reines H.D., WulfGutierrez M.E. Clinical review: hemor rhagic shock. Crit. Care. 2004; 8 (5): 373–381. PMID: 15469601
Воробьев А.И., Городецкий В.М., Шулутко Е.М., Васильев С.А. Острая массивная кровопотеря. М.: ГЭОТАРМЕД; 2001: 176.
Зильбер А.П. Кровопотеря и гемотрансфузия. Принципы и методы бескровной хирургии. Петрозаводск: издво Петрозаводского Государственного Университета; 1999: 114.
Новицкий В.В., Гольдберг Е.Д., Уразова О.И. (ред.). Патофизиология. 4е изд. М.: ГЭОТАРМедиа; 2009.
Кожура В.Л., Новодержкина И.С., Кирсанова А.К. Острая массивная кровопотеря: механизмы компенсации и повреждения. Анестезиология и реаниматология. 2002; 6: 9–13. PMID: 12611148
Moore F.D. The effects of hemorrhage on body composition. N. Engl. J. Med. 1965; 273: 567–577. PMID: 14329627
Gann D.S. Endocrine control of plasma protein and volume. Surg. Clin. North. Am. 1976; 56 (5): 1135–1145. PMID: 185730
Darlington D.N., Jones R.O., Marzella L., Gann D.S. Changes in regional vascular resistance and blood volume after hemorrhage in fed and fasted awake rats. J. Appl. Physiol. 1995; 78 (6): 2025–2032. PMID: 7665395
Rocha E., Silva M.Jr., Rosenberg M. The release of vasopressin in response to haemorrhage and its role in the mechanism of blood pressure regulation. J. Physiol. 1969; 202 (3): 535–557. PMID: 5789937
Мороз В.В., Черныш А.М., Козлова Е.К., Кирсанова А.К., Новодержкина И.С., Александрин В.В., Рысаева Р.М. Атомная силовая микроскопия структуры мембран эритроцитов при острой кровопотере и реинфузии. Общая реаниматология. 2009; 5 (5): 5–9. http://dx.doi.org/10.15360/18139779200955
Мороз В.В., Новодержкина И.С., Антошина Е.М., Афанасьев А.В., Рыжков И.А., Заржецкий Ю.В. Коррекция пойкилоцитоза и биохимических показателей крови при острой кровопотере. Общая реаниматология. 2015; 11 (3): 6–15. http://dx.doi.org/10.15360/1813977920153615
Мороз В.В., Мягкова Е.А., Сергунова В.А., Гудкова О.Е., Остапченко Д.А., Черныш А.М., Решетняк В.И. Морфологические особенности эритроцитов у больных с тяжелой сочетанной травмой. Общая реаниматология. 2013; 9 (3): 14–23. http://dx.doi.org/10.15360/181397792013314
Fitzsimons J.T. Angiotensin, thirst, and sodium appetite. Physiol. Rev. 1998; 78 (3): 583–686. PMID: 9674690
Prasad K., Lee P. Role of oxyradicals in the pathophysiology of hemor rhagic shock. Int. J. Angiol. 2002; 11 (3): 113–128. http://dx.doi.org/10.1007/s0054700209373
Волков А.В., Аврущенко М.Ш., Горенкова Н.А., Заржецкий Ю.В. Значение полового диморфизма и репродуктивных гормонов в патогенезе и исходе постреанимационной болезни. Общая реаниматология. 2006; 2 (5–6): 70–78. http://dx.doi.org/10.15360/18139779 200667078
Заржецкий Ю.В., Волков А.В. Некоторые вопросы патогенеза и терапии терминальных и постреанимационных состояний (экспери ментальные исследования). Общая реаниматология. 2012; 8 (4): 55–68. http://dx.doi.org/10.15360/181397792012455
Tsukada K., Hasegawa T., Tsutsumi S., Kuwano H. Roles of cyclooxygenase2 in tissue injury during hemorrhagic shock. Shock. 2000; 13 (5): 392–396. http://dx.doi.org/10.1097/0002438220000500000008. PMID: 10807015
Марино П.Л. Интенсивная терапия. М.: ГЭОТАРМедиа; 2010: 768.
Adachi H., Strauss W., Ochi H., Wagner H.N.Jr. The effect of hypoxia on the regional distribution of cardiac output in the dog. Circ. Res. 1976; 39 (3): 314–319. http://dx.doi.org/10.1161/01.RES.39.3.314. PMID: 954160
Gutierrez G., Marini C., Acero A.L., Lund N. Skeletal muscle PO2 during hypoxemia and isovolemic anemia. J. Appl. Physiol. 1990; 68 (5):2047–2053. PMID: 2361907
Schwartz S., Frantz R.A., Shoemaker W.C. Sequential hemodynamic and oxygen transport responses in hypovolemia, anemia, and hypoxia. Am. J. Physiol. 1981; 241 (6): H864–H871. PMID: 7325255
Nelson D.P., King C.E., Dodd S.L., Schumacker P.T., Cain S.M. Systemic and intestinal limits of O2 extraction in the dog. J. Appl. Physiol. 1987; 63 (1): 387–394. PMID: 3114223
Weiskopf R.B., Viele M.K., Feiner J., Kelley S., Lieberman J., Noorani M., Leung J.M., Fisher D.M., Murray W.R., Toy P., Moore M.A. Human cardiovascular and metabolic response to acute, severe isovolemic anemia. JAMA. 1998; 279 (3): 217–221. http://dx.doi.org/10.1001/jama.279.3.217. PMID: 9438742
Erecin´ska M., Silver I.A. Tissue oxygen tension and brain sensitivity to hypoxia. Respir. Physiol. 2001; 128 (3): 263–276. PMID: 11718758
Dubin A., Estenssoro E., Murias G., Canales H., Sottile P., Badie J., Bara´n M., Pa´lizas F., Laporte M., Rivas Díaz M. Effects of hemorrhage on gastroin testinal oxygenation. Intensive Care Med. 2001; 27 (12): 1931–1936. http://dx.doi.org/10.1007/s0013400111389. PMID: 11797030
Храмых Т.П., Долгих В.Т. Патогенез интоксикации при геморрагической гипотензии (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2008; 4 (5): 36–39. http://dx.doi.org/10.15360/1813 97792008536
Torres Filho I.P., Torres L.N., Pittman R.N. Early physiologic responses to hemorrhagic hypotension. Transl. Res. 2010; 155 (2): 78–88. http://dx.doi.org/10.1016/j.trsl.2009.09.001. PMID: 20129488
Долгих В.Т., Разгонов Ф.И., Шикунова Л.Г. Активация процессов липопероксидации при острой смертельной кровопотере и повреждение сердца. Общая реаниматология. 2006; 2 (5–6): 50–54. http://dx.doi.org/10.15360/18139779200665054
Орлов Ю.П., Иванов А.В., Долгих В.Т., Лукач В.Н., Чеснокова М.В., Притыкина Т.В., Петрова Ю.А., Вербицкая В.С., Синеоков С.А. Нарушения обмена железа в патогенезе критических состояний (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2011; 7 (5):15–19. http://dx.doi.org/10.15360/1813977920115152011515
Мороз В.В., Мягкова Е.А., Жанатаев А.К., Рябов Г.А., Остапченко Д.А., Дурнев А.Д., Решетняк В.И. Повреждения ДНК и процессы клеточной гибели лейкоцитов у пострадавших с тяжелой травмой. Общая реаниматология. 2014; 10 (4): 11–36. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201441136
Кожура В.Л., Кондакова Н.В., Заичкина С.И., Розанова О.М. Дестабилизация генома при действии ионизирующей радиации и острой кровопотери. Общая реаниматология. 2007; 3 (1): 5–11. http://dx.doi.org/10.15360/1813977920071511
Hoeft A., Wietasch J.K., Sonntag H., Kettler D. Theoretical limits of «permissive anemia». Zentralbl Chir. 1995; 120 (8): 604–613. PMID: 7571892
Mellander S., Lewis D.H. Effect of hemorrhagic shock on the reactivity of resistance and capacitance vessels and on capillary filtration transferin cat skeletal muscle. Circ. Res. 1963; 13: 105–118. http://dx.doi.org/10.1161/01.RES.13.2.105. PMID: 14054776
Герасимов Л.В., Мороз В.В., Исакова А.А. Микрореологические нарушения при критических состояниях. Общая реаниматология. 2010; 6 (1): 74–78. http://dx.doi.org/10.15360/181397792010174
Манцкава М.М., Момцелидзе Н.Г., Давлианидзе A.Ш. Реологические свойства крови при кровопотере (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2014; 10 (5): 27–32. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201452732
Мороз В.В., Голубев А.М., Афанасьев А.В., Кузовлев А.Н., Сергунова В.А., Гудкова О.Е., Черныш А.М. Строение и функция эритроцита в норме и при критических состояниях. Общая реаниматология. 2012; 8 (1): 52–60. http://dx.doi.org/10.15360/181397792012152
Мороз В.В., Сергунова В.А., Назаров Б.Ф., Козлова Е.К., Черныш А.М., Власов И.Б. Изменения наноструктуры мембран красных клеток крови при кровопотере на этапах хирургического лечения у больных при операциях на спинном мозге. Общая реаниматология. 2013; 9 (2): 5–11. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201325
Мороз В.В., Черныш А.М., Козлова Е.К., Сергунова В.А., Гудкова О.Е., Федорова М.С., Кирсанова А.К., Новодержкина И.С. Нарушения наноструктуры мембран эритроцитов при острой кровопотере и их коррекция перфторуглеродной эмульсией. Общая реаниматология. 2011; 7 (2): 5–9. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201125
Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Sergunova V., Zavialova A., Kuzovlev A. Nanoparticles of perfluorocarbon emulsion contribute to the reduction of methemoglobin to oxyhemoglobin. Int. J. Pharm. 2016; 497: 88–95. http://dx.doi.org/10.1016/j.ijpharm.2015.11.035. PMID: 26626224
Peitzman A.B., Billiar T.R., Harbrecht B.G., Kelly E., Udekwu A.O., Simmons R.L. Hemorrhagic shock. Curr. Probl. Surg. 1995; 32 (11): 925–1002. http://dx.doi.org/10.1016/S00113840(05)800085. PMID: 7587344
Косовских А.А., Чурляев Ю.А., Кан С.Л., Лызлов А.Н., Кирсанов Т.В., Вартанян А.Р. Центральная гемодинамика и микроциркуляция при критических состояниях. Общая реаниматология. 2013; 9 (1): 18–22. http://dx.doi.org/10.15360/181397792013118

View record in OAIster

16

Electronic Resource

A. I. Evdokimov Moscow State University of medicine and dentistry, Ministry of Health of Russia

Additional Titles: ОПТИМИЗАЦИЯ ЛЕЧЕНИЯ ОСТРОГО ПАНКРЕАТИТА, ОСЛОЖНЕННОГО АЛКОГОЛЬНЫМ ДЕЛИРИЕМ

المؤلفون: V. Moroz V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, A. I. Evdokimov Moscow State University of medicine and dentistry, Ministry of Health of Russia, V. Yarema I.; A. I. Evdokimov Moscow State University of medicine and dentistry, Ministry of Health of Russia, S. Malykhin V.; A. I. Evdokimov Moscow State University of medicine and dentistry, Ministry of Health of Russia, В. Мороз В.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, A. I. Evdokimov Moscow State University of medicine and dentistry, Ministry of Health of Russia, В. Ярема И.; A. I. Evdokimov Moscow State University of medicine and dentistry, Ministry of Health of Russia, С. Малыхин В.; A. I. Evdokimov Moscow State University of medicine and dentistry, Ministry of Health of Russia

المصدر: General Reanimatology; Том 12, № 4 (2016); 68-78; Общая реаниматология; Том 12, № 4 (2016); 68-78; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2016-4

مصطلحات الفهرس: acute pancreatitis;delirium tremens; treatment, острый панкреатит; алкогольный делирий; лечение, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1541/1052
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1541/1053
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1541/1052
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1541/1053
Барденштейн Л.М., Герасимов Н.П., Можгинский Ю.Б., Беглянкин Н.И. Алкоголизм, наркомании, токсикомании. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2007: 64.
Березкин А.С. Прогностические критерии развития алкогольного -делирия. Соц. и клин. психиатрия. 2009; 19 (1): 35-37.
Гельфанд Б.Р., Краснов В.Н. (ред.). Острые психические расстройства в интенсивной терапии. М.: МИА; 2014: 226.
Гофман А.Г., Орлова М.А., Меликсетян А.С. Алкогольные психозы:клиника, классификация. Соц. и клин. психиатрия. 2010; 20 (1): 5-12.
Кошкина Е.А., Киржанова В.В., Сидорюк О.В., Григорова Н.И., Ванисова Н.Г., Бобков Е.Н. Основные показатели деятельности наркологической службы в Российской Федерации в 2012#2013 годах. Национальный научный Центр наркологии Минздрава России. М.;2014: 173.
Ливанов Г.А., Лодягин А.Н., Батоцыренов Б.В., Лоладзе А.Т., Баранов Д.В., Неженцева И.В. Оптимизация интенсивной терапии алкогольного делирия. Общая реаниматология. 2015; 11 (5): 25–33. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2015-5-25-33
Мороз В.В., Голубев А.М. Сепсис: принципы диагностики. Общая реаниматология. 2013; 9 (6): 5–10. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2013-6-5
Мороз В.В., Кузовлев А.Н., Голубев А.М., Стец В.В., Половников С.Г. Респираторная поддержка в безопасном режиме при нозокомиальной пневмонии. Общая реаниматология. 2015; 11 (2): 6-17. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2015-2-6-17
Хорошилов С.Е., Белобородова Н.В., Никулин А.В., Бедова А.Ю. Влияние экстракорпоральной детоксикации на уровень ароматических микробных метаболитов в сыворотке крови при сепсисе. Общая реаниматология. 2015; 11 (5): 6#14. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2015-5-6-14
Иванец Н.Н. (ред.). Руководство по наркологии. М.: МИА; 2008:944.
Ярема И.В., Яковенко И.Ю. Острый панкреатит. М.: Медицина; 2003: 300.
Ярема И.В. Современные подходы к лечению острого панкреатита. Фарматека. 2004; 3/4: 45–51.
Amato L., Minozzi S., Davoli M. Efficacy and safety of pharmacological interventions for the treatment of the Alcohol Withdrawal Syndrome. Cochrane Database Syst. Rev. 2011; 6: CD008537. http://dx.doi.org/10.1002/14651858.CD008537.pub2. PMID: 21678378
Eyer F., Schuster T., Felgenhauer N., Pfab R., Strubel T., Saugel B., Zilker T. Risk assessment of moderate to severe alcohol withdrawal – predictors for seizures and delirium tremens in the course of withdrawal. Alcohol Alcohol. 2011; 46 (4): 427–433. http://dx.doi.org/10.1093/alcalc/agr053. PMID: 21593124

View record in OAIster

17

Electronic Resource

SAFETY-MODE RESPIRATORY SUPPORT IN NOSOCOMIAL PNEUMONIA

Additional Titles: РЕСПИРАТОРНАЯ ПОДДЕРЖКА В БЕЗОПАСНОМ РЕЖИМЕ ПРИ НОЗОКОМИАЛЬНОЙ ПНЕВМОНИИ

المؤلفون: V. Moroz V.; V.A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Moscow, Russia 25, Petrovka, Build. 2, Moscow 107031, A. Kuzovlev N.; V.A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Moscow, Russia 25, Petrovka, Build. 2, Moscow 107031 N. N. Burdenko Main Military Clinical Hospital, , Moscow, Russia 3, Hospitalnaia, Moscow 105229, A. Golubev M.; V.A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Moscow, Russia 25, Petrovka, Build. 2, Moscow 107031, V. Stets V.; N. N. Burdenko Main Military Clinical Hospital, , Moscow, Russia 3, Hospitalnaia, Moscow 105229, S. Polovnikov G.; N. N. Burdenko Main Military Clinical Hospital, , Moscow, Russia 3, Hospitalnaia, Moscow 105229, В. Мороз В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Москва, Россия 107031, Москва, ул. Петровка, д. 25, стр. 2, А. Кузовлев Н.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Москва, Россия 107031, Москва, ул. Петровка, д. 25, стр. 2 ФГКУ Главный Военный клинический госпиталь им. Н. Н. Бурденко 105229, Москва, Госпитальная пл., д. 3, Москва, Россия, А. Голубев М.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Москва, Россия 107031, Москва, ул. Петровка, д. 25, стр. 2, В. Стец В.; ФГКУ Главный Военный клинический госпиталь им. Н. Н. Бурденко 105229, Москва, Госпитальная пл., д. 3, Москва, Россия, С. Половников Г.; ФГКУ Главный Военный клинический госпиталь им. Н. Н. Бурденко 105229, Москва, Госпитальная пл., д. 3, Москва, Россия

المصدر: General Reanimatology; Том 11, № 2 (2015); 6-17; Общая реаниматология; Том 11, № 2 (2015); 6-17; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2015-2

مصطلحات الفهرس: nosocomial pneumonia; acute respiratory distress syndrome; mechanical ventilation; prevention, нозокомиальная пневмония; острый респираторный дистресс-синдром; искусственная вентиляция легких; профилактика, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion, Рецензированная статья

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1451/912
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1451/975
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1451/912
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1451/975
Мороз В.В., Рябов Г.А., Голубев А.М., Марченков Ю.В., Власенко А.В., Карпун Н.А., Яковлев В.Н., Алексеев В.Г., Бобринская И.Г., Кузов лев А.Н., Смелая Т.В. Острый респираторный дистресс-синдром. М.: НИИОР; 2013: 80.
Яковлев А.Ю., Гущина Н.Н, Ниязматов А.А., Зайцев Р.М., Голубцова Е.Ю., Рябикова М.А. Ранняя оценка эффективности антибактериальной терапии нозокомиальной пневмонии путем количественного определения липополисахарида. Общая реаниматология. 2013; 9 (6): 45—52. http://dx.doi.org/10.15360/1813 9779 2013 6 45
Кузовлев А.Н., Мороз В.В., Голубев А.М., Половников С.Г. Ингаляционный тобрамицин в лечении ИВЛ-ассоциированной пневмонии. Клин. фармакология и терапия. 2014; 23 (4): 52—58.
Шабанов А.К., Хубутия М.Ш., Булава Г.В., Белобородова Н.В., Кузовлев А.Н., Гребенчиков О.А., Косолапов Д.А., Шпитонков М.И. Динамика уровня прокальцетонина при развитии нозокомиальной пневмонии у пострадавших с тяжелой сочетанной травмой. Общая реаниматология. 2013; 9 (5): 11—17. http://dx.doi.org/10.15360/ 1813-9779-2013-5-11
Шабанов А.К., Булава Г.В., Андросова М.В., Кузовлев А.Н., Кислухи на Е.В., Хубутия М.Ш. Роль ранней иммунозаместительной терапии в снижении частоты развития нозокомиальной пневмонии у пострадавших с тяжелой сочетанной травмой. Общая реаниматология. 2014; 10 (6): 15—23. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2014-6-15-23
Кузовлев А.Н., Мороз В.В., Голубев А.М., Половников С.Г. Ингаляционные антибиотики в лечении тяжелой нозокомиальной пневмонии. Общая реаниматология. 2013; 9 (6): 61—70. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2013-6-61
Сабиров Д.М., МавлянХоджаев Р.Ш., Акалаев Р.Н., Атаханов Ш.Э., Росстальная А.Л., Хайдарова С.Э., Парпибаев Ф.О., Султанов Х.Д. ИВЛ-индуцированные повреждения легких (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2014; 10 (6): 24—31. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-02014-6-24-31
Мороз В.В., Голубев А.М., Кузовлев А.Н., Писарев В.М., Половников С.Г., Шабанов А.К., Голубев М.А. Сурфактантный протеин A (SP A) – прогностический молекулярный биомаркер при остром респираторном дистресс-синдроме. Общая реаниматология. 2013; 9 (3): 5—13. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2013-3-5
Мороз В.В., Голубев А.М., Кузовлев А.Н., Писарев В.М., Шабанов А.К., Голубев М.А. Сурфактантный протеин D – биомаркер острого респираторного дистресс-синдрома. Общая реаниматология. 2013; 9(4): 11—17. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2013-4-11
Чучалин А.Г. (ред.). Нозокомиальная пневмония у взрослых. Национальные рекомендации. М.: Российское респираторное общество; 2009: 43.
Lionetti V., Recchia F., Ranieri V. Overview of ventilator induced lung injury mechanisms. Curr. Opin. Crit. Care. 2005; 11 (1): 82—86. http://dx.doi.org/10.1097/00075198-200502000-00013. PMID: 15659950
Moriondo A., Marcozzi C., Bianchin F., Reguzzoni M., Severgnini P., Protasoni M., Raspanti M., Passi A., Pelosi P., Negrini D. Impact of mechanical ventilation and fluid load on pulmonary glycosaminoglycans. Respir. Physiol. Neurobiol. 2012; 181 (3): 308—320. http://dx.doi.org/10.1016/j.resp.2012.03.013. PMID: 22484819
Kobr J., Fremuth J., Pizingerová K., Fikrlová S., Jehlicka P., Honomichl P., Sasek L., Racek J., Topolcan O. Total body response to mechanical ventilation of healthy lungs: an experimental study in piglets. Physiol. Res. 2010; 59 (4): 545—552. PMID: 19929141
Wilson M., Patel B., Takata M. Ventilation with ‘clinically-relevant’ high tidal volumes does not promote stretch-induced injury in the lungs of healthy mice. Crit. Care Med. 2012; 40 (10): 2850—2857. PMID: 22890257
Brégeon F., Roch A., Delpierre S., Ghigo E., AutilloTouati A., Kajikawa O., Martin T., Pugin J., Portugal H., Auffray J., Jammes Y. Conventional mechanical ventilation of healthy lungs induced proinflammatory cytokine gene transcription. Respir. Physiol. Neurobiol. 2002; 132 (2): 191—203. PMID: 12161332
Wolthuis E., Choi G., Dessing M., Bresser P., Lutter R., Dzoljic M., van der Poll T., Vroom M., Hollmann M., Schultz M. Mechanical ventilation with lower tidal volumes and positive end-expiratory pressure prevents pulmonary inflammation in patients without preexisting lung injury. Anesthesiology. 2008; 108 (1): 46—54. http://dx.doi.org/10.1097/01.anes.0000296068.80921.10. PMID: 18156881
Ventilation with lower tidal volumes as compared with traditional tidal volumes for acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome. The Acute Respiratory Distress Syndrome Network. N. Engl. J. Med. 2000; 342 (18): 1301–1308. PMID: 10793162
Esteban A., FrutosVivar F., Muriel A., Ferguson N., Peñuelas O., Abraira
V., Raymondos K., Rios F., Nin N., Apezteguía C., Violi D., Thille A., Brochard L., González M., Villagomez A., Hurtado J., Davies A., Du B., Maggiore S., Pelosi P., Soto L., Tomicic V., D’Empaire G., Matamis D., Abroug F., Moreno R., Soares M., Arabi Y., Sandi F., Jibaja M., Amin P., Koh Y., Kuiper M., Bülow H., Zeggwagh A., Anzueto A. Evolution of mor tality over time in patients receiving mechanical ventilation. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2013; 188 (2): 220—230. http://dx.doi.org/10.1164/rccm.201212 2169OC. PMID: 23631814
Zupancich E., Paparella D., Turani F., Munch C., Rossi A., Massaccesi S., Ranieri V. Mechanical ventilation affects inflammatory mediators in patients undergoing cardiopulmonary bypass for cardiac surgery: a randomized clinical trial. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2005; 130 (2): 378—383. http://dx.doi.org/10.1016/j.jtcvs.2004.11.061. PMID: 16077402
Wrigge H., Uhlig U., Zinserling J., BehrendsCallsen E., Ottersbach G., Fischer M., Uhlig S., Putensen C. The effects of different ventilatory set tings on pulmonary and systemic inflammatory responses during major surgery. Anesth. Analg. 2004; 98 (3): 775—781. http://dx.doi.org/10.1213/01.ANE.0000100663.11852.BF. PMID: 14980936
Koner O., Celebi S., Balci H., Cetin G., Karaoglu K., Cakar N. Effects of protective and conventional mechanical ventilation on pulmonary function and systemic cytokine release after cardiopulmonary bypass. Intensive Care Med. 2004; 30 (4): 620—626. http://dx.doi.org/10.1007/s00134 003 2104 5. PMID: 14722635
Weingarten T., Whalen F., Warner D., Gajic O., Schears G., Snyder M., Schroeder D., Sprung J. Comparison of two ventilatory strategies in elderly patients undergoing major abdominal surgery. Br. J. Anaesth. 2010; 104 (1): 16—22. http://dx.doi.org/10.1093/bja/aep319. PMID: 19933173
Severgnini P., Selmo G., Lanza C., Chiesa A., Frigerio A., Bacuzzi A., Dionigi G., Novario R., Gregoretti C., de Abreu M., Schultz M., Jaber S., Futier E., Chiaranda M., Pelosi P. Protective mechanical ventilation during general anesthesia for open abdominal surgery improves postoperative pulmonary function. Anesthesiology. 2013; 118 (6): 1307—1321. http://dx.doi.org/10.1097/ALN.0b013e31829102de. PMID: 23542800
Futier E., Constantin J., PaugamBurtz C., Pascal J., Eurin M., Neuschwander A., Marret E., Beaussier M., Gutton C., Lefrant J., Allaouchiche B., Verzilli D., Leone M., De Jong A., Bazin J., Pereira B., Jaber S.; IMPROVE Study Group. A trial of intraoperative low tidal volume ventilation in abdominal surgery. N. Engl. J. Med. 2013; 369 (5): 428—437. http://dx.doi.org/10.1056/NEJMoa1301082. PMID: 23902482
Serpa Neto A., Simonis F., Barbas C., Biehl M., Determann R., Elmer J., Friedman G., Gajic O., Goldstein J., Horn J., Juffermans N., Linko R., de Oliveira R., Sundar S., Talmor D., Wolthuis E., de Abreu M., Pelosi P., Schultz M. Association between tidal volume size, duration of ventilation, and sedation needs in patients without acute respiratory distress syndrome: an individual patient data meta-analysis. Intensive Care Med. 2014; 40 (7): 950—957. http://dx.doi.org/10. 1007/s00134-014-3318-4. PMID: 24811940
Lee P., Helsmoortel C., Cohn S., Fink M. Are low tidal volumes safe? Chest. 1990; 97 (2): 430—434. PMID: 2288551
Pinheiro de Oliveira R., Hetzel M., dos Anjos Silva M., Dallegrave D., Friedman G. Mechanical ventilation with high tidal volume induces inflammation in patients without lung disease. Crit. Care. 2010; 14 (1): R1. http://dx.doi.org/10.1186/cc8919. PMID: 20236550
Determann R., Royakkers A., Wolthuis E., Vlaar A., Choi G., Paulus F., Hofstra J., de Graaff M., Korevaar J., Schultz M. Ventilation with lower tidal volumes as compared with conventional tidal volumes for patients without acute lung injury: a preventive randomized controlled trial. Respir. Physiol. Neurobiol. 2002; 132 (2): 191—203. http://dx.doi. org/10.1186/cc8230. PMID: 20055989
Yilmaz M., Keegan M., Iscimen R., Afessa B., Buck C., Hubmayr R., Gajic O. Toward the prevention of acute lung injury: protocol-guided limitation of large tidal volume ventilation and inappropriate transfusion. Crit. Care Med. 2007; 35 (7): 1660—1666. http://dx.doi.org/10.1097/01.CCM.0000269037.66955.F0. PMID: 17507824
Terragni P., Del Sorbo L., Mascia L., Urbino R., Martin E., Birocco A., Faggiano C., Quintel M., Gattinoni L., Ranieri V. Tidal volume lower than 6 ml/kg enhances lung protection: role of extracorporeal carbon dioxide removal. Anesthesiology. 2009; 111 (4): 826—835. http://dx.doi.org/10.1097/ALN.0b013e3181b764d2. PMID: 19741487
Nahum A., Hoyt J., Schmitz L., Moody J., Shapiro R., Marini J. Effect of mechanical ventilation strategy on dissemination of intratracheally instilled Escherichia coli in dogs. Crit. Care Med. 1997; 25 (10): 1733—1743. http://dx.doi.org/10.1097/00003246-199710000-00026. PMID: 9377891
Villar J., Cabrera N., Casula M., Flores C., Valladares F., Muros M., Blanch L., Slutsky A., Kacmarek R. Mechanical ventilation modulates Toll like receptor signaling pathway in a sepsis-induced lung injury model. Intensive Care Med. 2010; 36 (6): 1049—1057. http://dx.doi.org/10.1007/s00134-010-1799-3. PMID: 20397011
Savel R., Yao E., Gropper M. Protective effects of low tidal volume ventilation in a rabbit model of Pseudomonas aeruginosa-induced acute lung injury. Crit. Care Med. 2001; 29 (2): 392—398. http://dx.doi.org/10.1097/00003246-200102000-00032. PMID: 11246322
Kurahashi K., Ota S., Nakamura K., Nagashima Y., Yazawa T., Satoh M., Fujita A., Kamiya R., Fujita E., Baba Y., Uchida K., Morimura N., Andoh T., Yamada Y. Effect of lung-protective ventilation on severe Pseudomonas aeruginosa pneumonia and sepsis in rats. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 2004; 287 (2): L402—L410. http://dx.doi.org/10.1152/ ajplung.00435.2003. PMID: 15107296
Villar J., HerreraAbreu M., Valladares F., Muros M., PérezMéndez L., Flores C., Kacmarek R. Experimental ventilator-induced lung injury: exac erbation by positive end expiratory pressure. Anesthesiology. 2009; 110 (6): 1341—1347. http://dx.doi.org/10.1097/ALN.0b013e31819fcba9. PMID: 19417614
Smeding L., Kuiper J., Plötz F., Kneyber M., Groeneveld A. Aggravation of myocardial dysfunction by injurious mechanical ventilation in LPS induced pneumonia in rats. Respir. Res. 2013; 14: 92. http://dx.doi.org/10.1186/1465-9921-14-92. PMID: 24047433

View record in OAIster

18

Electronic Resource

O rabote Rossiiskogo Natsional'nogo soveta po reanimatsii v 2014 g.

Additional Titles: О работе Российского Национального совета по реанимации в 2014 г.

المؤلفون: V. Moroz V., A. Kuzovlev N., В. Мороз В., А. Кузовлев Н.

المصدر: General Reanimatology; Том 11, № 1 (2015); 77-79; Общая реаниматология; Том 11, № 1 (2015); 77-79; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2015-1

مصطلحات الفهرس: info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion, Рецензированная статья

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1450/911
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1450/911

View record in OAIster

19

Electronic Resource

Search for Common Molecular Genetic Markers of Nosocomial Pneumonia and Acute Respiratory Distress Syndrome

Additional Titles: МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ НОЗОКОМИАЛЬНОЙ ПНЕВМОНИИИ ОСТРОГО РЕСПИРАТОРНОГО ДИСТРЕСС-СИНДРОМА

المؤلفون: T. Smelaya V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Moscow, A. Kuzovlev N.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Moscow, V. Moroz V.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Moscow, A. Golubev M.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Moscow, O. Belopolskaya B.; V. N. Vavilov Institute of General Genetics, Moscow, L. Salnikova E.; V. A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Moscow V. N. Vavilov Institute of General Genetics, Moscow, Т. Смелая В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Москва, А. Кузовлев Н.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Москва, В. Мороз В.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Москва, А. Голубев М.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Москва, О. Белопольская Б.; Институт общей генетики им. Н. И. Вавилова, Москва, Л. Сальникова Е.; НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского, Москва Институт общей генетики им. Н. И. Вавилова, Москва

المصدر: General Reanimatology; Том 11, № 3 (2015); 24-38; Общая реаниматология; Том 11, № 3 (2015); 24-38; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2015-3

مصطلحات الفهرس: gene polymorphism; oxidative stress genes; xenobiotic detoxification genes; acute respiratory distress syndrome; nosocomial pneumonia, полиморфизм генов; гены оксидативного стресса; гены детоксикации ксенобиотиков; острый респираторный дистресс-синдром; нозокомиальная пневмония, info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion, Рецензированная статья

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1462/922
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1462/984
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1462/922
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1462/984
Yoon Y.S. Respiratory review of 2012: pneumonia. Tuberc. Respir. Dis. (Seoul). 2012; 73 (2): 77–83. http://dx.doi.org/10.4046/trd.2012.73.2.77. PMID: 23166539
Schuetz P., Batschwaroff M., Dusemund F., Albrich W., Bürgi U., Maurer M., Brutsche M., Huber A.R., Müller B. Effectiveness of a procalcitonin algorithm to guide antibiotic therapy in respiratory tract infections
outside of study conditions: a post-study survey. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2010; 29 (3): 269—277. http://dx.doi.org/10.1007/s10096-009-0851-0. PMID: 20039090
Мороз В.В., Смелая Т.В., Голубев А.М., Сальникова Л.Е. Генетика и медицина критических состояний: от теории к практике. Общая реаниматология. 2012; 8 (4): 5—12. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2012-4-5
Determann R.M., Royakkers A., Wolthuis E.K., Vlaar A.P., Choi G., Paulus F., Hofstra J.J., de Graaff M.J., Korevaar J.C., Schultz M.J. Ventilation with lower tidal volumes as compared with conventional tidal volumes for patients without acute lung injury: a preventive randomized controlled trial. Crit. Care. 2010; 14 (1): R1. http://dx.doi.org/ 10.1186/cc8230. PMID: 20055989
Copland I.B., Post M. Understanding the mechanisms of infant respiratory distress and chronic lung disease. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol.
26 (3): 261—265. http://dx.doi.org/10.1165/ajrcmb.26.3.f231.PMID: 11867331
Баранов В.С., Глотов О.С., Баранова Е.В. Геномика старения и предиктивная медицина. Успехи геронтологии. 2010; 23 (3): 329—338. PMID: 21137201
van de Vosse E., van Dissel J.T., Ottenhoff T.H. Genetic deficiencies of innate immune signalling in human infectious disease. Lancet Infect. Dis. 2009; 9 (11): 688—698. http://dx.doi.org/10.1016/S1473-3099(09)70255-5. PMID: 19850227
Brownson R.C., Dodson E.A., Stamatakis K.A., Casey C.M., Elliott M.B., Luke D.A., Wintrode C.G., Kreuter M.W. Communicating evidence-based information on cancer prevention to state-level policy makers. J. Natl. Cancer Inst. 2011; 103 (4): 306—316. http://dx.doi.org/10.1093/jnci/djq529. PMID: 21212381
Davies P.D., Yew W.W., Ganguly D., Davidow A.L., Reichman L.B., Dheda K., Rook G.A. Smoking and tuberculosis: the epidemiological association and immunopathogenesis. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 2006; 100 (4): 291—298. http://dx.doi.org/10.1016/j.trstmh.2005.06.034. PMID: 16325875
Angus D.C., Burgner D., Wunderink R., Mira J.P., Gerlach H., Wiedermann C.J., Vincent J.L. The PIRO concept: P is for predisposition. Crit. Care. 2003; 7 (3): 248—251. PMID: 12793879
Mandell L.A., Wunderink R.G., Anzueto A., Bartlett J.G., Campbell G.D., Dean N.C., Dowell S.F., File T.M.Jr., Musher D.M., Niederman M.S., Torres A., Whitney C.G.; Infectious Diseases Society of America; American Thoracic Society. Infectious Diseases Society of America/American Thoracic Society consensus guidelines on the management of community-acquired pneumonia in adults. Clin. Infect. Dis. 2007; 44 Suppl 2: S27—S72. http://dx.doi.org/10.1086/511159.PMID: 17278083
Назаренко Г.И., Клейменова Е.Б., Гущина Н.Н. Изучение генетических маркеров и традиционных факторов риска развития ишемической болезни сердца. Рос. мед. вести. 2009; 14 (1): 47—54.
Christie D., Shofer J., Millard S.P., Li E., Demichele-Sweet M.A., Weamer E.A., Kamboh M.I., Lopez O.L., Sweet R.A., Tsuang D. Genetic association between APOE*4 and neuropsychiatric symptoms in patients with probable Alzheimer’s disease is dependent on the psychosis phenotype. Behav. Brain Funct. 2012; 8: 62. http://dx.doi.org/0.1186/1744-9081-8-62. PMID: 23270420
Salnikova L.E., Smelaya T.V., Moroz V.V., Golubev A.M., Rubanovich A.V. Host genetic risk factors for community-acquired pneumonia. Gene. 2013; 518 (2): 449—456. http://dx.doi.org/ 10.1016/j.gene.2012.10.027. PMID: 23107763
Salnikova L.E., Smelaya T.V., Moroz V.V., Golubev A.M., Rubanovich A.V. Functional polymorphisms in the CYP1A1, ACE, and IL-6 genes contribute to susceptibility to community-acquired and nosocomial pneumonia. Int. J. Infect. Dis. 2013; 17 (6): e433—e442. http://dx.doi.org/10.1016/j.ijid.2013.01.005. PMID: 23411129
Мороз В.В., Голубев А.М. Принципы диагностики ранних проявлений острого повреждения легких. Общая реаниматология. 2006; 2 (4): 5—7. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2006-4
Rambaldi D., Pece S., Di Fiore P.P. Bioconductor package to estimate proliferation in cell-tracking dye studies. Bioinformatics. 2014; 30 (14): 2060—2065. http://dx.doi.org/10.1093/bioinformatics/btu127. PMID: 24681909
Hamajima N. PCR–CTPP: a new genotyping technique in the era of genetic epidemiology. Expert Rev. Mol. Diagn. 2001; 1 (1): 119—123. PMID: 11901796
winSTAT.com 2003.1
Sole X., Guino E., Valls J., Iniesta R., Moreno V. SNPStats: a web tool for the analysis of association studies. Bioinformatics. 2006; 22 (15): 1928—1929. http://dx.doi.org/10.1093/bioinformatics/btl268. PMID: 16720584
Benjamini Y., Yekutieli D. Quantitative trait Loci analysis using the false discovery rate. Genetics. 2005; 171 (2): 783—790. http://dx.doi.org/10.1534/genetics.104.036699. PMID: 15956674
Storey J.D., Tibshirani R. Statistical significance for genomewide studies. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2003; 100 (16): 9440—9445. PMID: http://dx.doi.org/10.1073/pnas.1530509100.12883005
Abramson J.H. WINPEPI updated: computer programs for epidemiologists, and their teaching potential. Epidemiol. Perspect. Innov. 2011; 8 (1): 1. http://dx.doi.org/10.1186/1742-5573-8-1. PMID: 21288353
Jiang W., Welty S.E., Couroucli X.I., Barrios R., Kondraganti S.R., Muthiah K., Yu L., Avery S.E., Moorthy B. Disruption of the Ah receptor gene alters the susceptibility of mice to oxygen-mediated regulation of pulmonary and hepatic cytochromes P4501A expression and exacerbates hyperoxic lung injury. J. Pharmacol. Exp. Ther. 2004; 310 (2): 512—519. http://dx.doi.org/10.1124/jpet.103.059766. PMID: 15123765
Jiang W., Couroucli X.I., Wang L., Barrios R., Moorthy B. Augmented oxygen-mediated transcriptional activation of cytochrome P450 (CYP)1A expression and increased susceptibilities to hyperoxic lung injury in transgenic mice carrying the human CYP1A1 or mouse 1A2 promoter in vivo. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2011; 407 (1): 79—85. http://dx.doi.org/10.1016/j.bbrc.2011.02.113. PMID: 21362406
Rotunno M., Yu K., Lubin J.H., Consonni D., Pesatori A.C., Goldstein A.M., Goldin L.R., Wacholder S., Welch R., Burdette L., Chanock S.J., Bertazzi P.A., Tucker M.A., Caporaso N.E., Chatterjee N., Bergen A.W., Landi M.T. Phase I metabolic genes and risk of lung cancer: multiple polymorphisms and mRNA expression. PLoS One. 2009; 4 (5): e5652. http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0005652. PMID: 19479063
Wang S., Chanock S., Tang D., Li Z., Jedrychowski W., Perera F.P. Assessment of interactions between PAH exposure and genetic polymorphisms on PAH- DNA adducts in African American, Dominican and Caucasian mothers and newborns. Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 2008; 17 (2): 405—413. http://dx.doi.org/10.1158/1055-9965. PMID: 18268125
Колесникова Л.И., Баирова Т.А., Первушина О.А. Гены ферментов антиоксидантной системы. Вестник РАМН. 2013; 12: 83—88. PMID: 24741948 29. Smart C.D., Mayton H., Mizubuti E.S., Willmann M.R., Fry W.E. Environmental and genetic factors influencing self-fertility in Phytophthora infestans. Phytopathology. 2000; 90 (9): 987—994. http://dx.doi.org/10.1094 /PHYTO.2000.90.9.987. PMID: 18944524
Zhang B., Beeghly-Fadiel A., Lu W., Cai Q., Xiang Y.B., Zheng Y., Long J., Ye C., Gu K., Shu X.O., Gao Y., Zheng W. Evaluation of functional genetic variants for breast cancer risk: results from the Shanghai breast cancer study. Am. J. Epidemiol. 2011; 173 (10): 1159—1170. http://dx.doi.org/10.1093/aje/kwr004. PMID: 21454829
Denison M.S., Nagy S.R. Activation of the aryl hydrocarbon receptor by structurally diverse exogenous and endogenous chemicals. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2003; 43: 309—334. PMID: 12540743
Busbee P.B., Rouse M., Nagarkatti M., Nagarkatti P.S. Use of natural AhR ligands as potential therapeutic modalities against inflammatory disorders. Nutr. Rev. 2013; 71 (6): 353—369. http://dx.doi.org/10. 1111/nure.12024. PMID: 23731446
Stockinger B. Beyond toxicity: aryl hydrocarbon receptormediated functions in the immune system. J. Biol. 2009; 8 (7): 61. http://dx.doi.org/10.1186/jbiol170. PMID: 19691822
Rohlman D., Pham D., Yu Z., Steppan L.B., Kerkvliet N.I. Aryl hydrocarbon receptor-mediated perturbations in gene expression during early stages of CD4(+) T-cell differentiation. Front. Immunol. 2012; 6 (3): 223. http://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2012.00223. PMID: 22888330
Esser C., Rannug A. The aryl hydrocarbon receptor in barrier organ physiology, immunology, and toxicology. Pharmacol. Rev. 2015; 67 (2): 259—279. http://dx.doi.org/10.1124/pr.114.009001. PMID: 25657351
Gradman E.H. Evolving understanding of the renin–angiotensin–aldosterone system: pathophysiology and targets for therapeutic intervention. Am. Heart J. 2009; 157: S1—S6.
Rajagopalan S., Kurz S., Munzel T., Tarpey M., Freeman B.A., Griendling K.K., Harrison D.G. Angiotensin II-mediated hypertension in the rat increases vascular superoxide production via membrane NADH/NADPH oxidase activation. Contribution to alterations of vasomotor tone. J. Clin. Invest. 1996; 97 (8): 1916—1923. PMID: 8621776
Manzanares W., Dhaliwal R., Jiang X., Murch L., Heyland D.K. Antioxidant micronutrients in the critically ill: a systematic review and meta-analysis. Crit. Care. 2012; 16 (2): R66. http://dx.doi.org/10.1186/cc11316. PMID: 22534505
Zhou M.S., Schulman I.H., Raij L. Nitric oxide, angiotensin II, and hypertension. Semin. Nephrol. 2004; 24 (4): 366—378. PMID: 15252776 40. Ho R.H., Kim R.B. Transporters and drug therapy: implications for drug disposition and disease. Clin. Pharmacol. Ther. 2005; 78 (3): 260—277. PMID: 16153397
Zhou S.F. Structure, function and regulation of P-glycoprotein and its clinical relevance in drug disposition. Xenobiotica. 2008; 38 (7—8): 802—832. http://dx.doi.org/10.1080/00498250701867889. PMID: 18668431
Weng L., Macciardi F., Subramanian A., Guffanti G., Potkin S.G., Yu Z., Xie X. SNP-based pathway enrichment analysis for genome-wide association studies. BMC Bioinformatics. 2011; 12: 99. http://dx.doi.org/10.1186/1471-2105-12-99. PMID: 21496265
Braun R., Buetow K. Pathways of distinction analysis: a new technique for multi-SNP analysis of GWAS data. PLoS Genet. 2011; 7 (6): e1002101. http://dx.doi.org/10.1371/journal.pgen.1002101. PMID: 21695280
Orfanos S.E., Armaganidis A., Glynos C., Psevdi E., Kaltsas P., Sarafidou P., Catravas J.D., Dafni U.G., Langleben D., Roussos C. Pulmonary capillary endothelium-bound angiotensin-converting enzyme activity in acute lung injury. Circulation. 2000; 102 (16): 2011—2018. http://dx.doi.org/10.1161/01.CIR.102.16.2011. PMID: 11034953
Мороз В.В., Голубев А.М., Кузовлев А.Н., Писарев В.М., Половников С.Г., Шабанов А.К., Голубев М.А. Сурфактантный протеин А (SP-A) — прогностический молекулярный биомаркер при остром респираторном дистресс-синдроме. Общая реаниматология. 2013; 9 (3): 5—13. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2013-3-5
Мороз В.В., Голубев А.М., Кузовлев А.Н., Писарев В.М. Новые диагностические кандидатные молекулярные биомаркеры острого респираторного дистресссиндрома. Общая реаниматология. 2014; 10 (4): 6—10. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2014-4-6-10
Мороз В.В., Голубев А.М., Кузовлев А.Н., Шабанов А.К., Писарев В.М. Белок клеток Клара (Club cell protein) — новый диагностический кандидатный молекулярный биомаркер при нозокомиальной пневмонии. Общая реаниматология. 2014; 10 (6): 6—14. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2014-6-6-14

View record in OAIster

20

Electronic Resource

General Anesthesia in the Surgical Treatment of Coronary Heart Disease

Additional Titles: Общая анестезия при хирургическом лечении ишемической болезни сердца

المؤلفون: N. Karpun A., V. Moroz V., Н. Карпун А., В. Мороз В.

المصدر: General Reanimatology; Том VIII № 4 2012 г.; 126; Общая реаниматология; Том VIII № 4 2012 г.; 126; 2411-7110; 1813-9779; 10.15360/1813-9779-2012-4

مصطلحات الفهرس: general anesthesia; surgical myocardial revascularization; inhalation anesthesia; epidural anesthesia; sevorane; hemodilution; perfluorane, общая анестезия; хирургическая реваскуляризация миокарда; ингаляционная анестезия; эпидуральная анестезия; севоран; гемодилюция; перфторан., info:eu-repo/semantics/article, info:eu-repo/semantics/publishedVersion, Рецензированная статья

URL: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1394/496
https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1394/496
Karpun N.A. General anesthesia in the surgical treatment of CHD. Doct. Med. Sci. Dissertation. Moscow, 1999. 49. [In Russ.].
Korniyenko A.N. Epidural anesthesia as an analgesic component of gen
Liem T.H., Booij L.H., Gielen M.J., Hasenbos M.A., van Egmond J. Coronary artery bypass using two different anesthetic techniques: Part 3: Adrenergic responses. J. Cardiothorac. Vasc. Anesth. 1992; 6 (2): 162—167.
Eremeyev A.V., Smetkin A.A., Kirov M.Yu. The efficiency of epidural anesthesia and postoperative analgesia during myocardial revascularization without extracorporeal circulation. Obshchaya Reanimatologiya. 2010; 6 (6): 45—52. [In Russ.].
Timerbayav V.Kh., Genov P.G., Lesnik V.Yu. The problems of anesthesia during thoracic surgery and ways of its solution. Obshchaya Reanimatologiya. 2010; 6 (5): 46—56. [In Russ.].
Kozlov I.A. Early activation of cardiosurgical patients: History and ter
Isayev A.O. Mixed general anesthesia in hypertensive patients during ACPS. Cand. Med. Sci. Dissertation. Moscow, 1989. 26. [In Russ.].
Reiz S., Bålfors E., Sørensen M. B., Ariola S. Jr., Friedman A., Truedsson H. Isoflurane: a powerful coronary vasodilatator in patients with coronary artery disease. Aneathesiology. 1983; 59 (2): 91—97.
Kaplan J. A., Reich D. L., Konstadt S. N. Cardiac anesthesia. New York; 1999: 1411. [In Russ.].

View record in OAIster

تنقيح النتائج