المؤلفون: В. В. Мороз, Н. М. Стасюк, Т. П. Федонюк

المصدر: Науковий вісник НЛТУ України, Vol 31, Iss 5 (2021)

مصطلحات موضوعية: вуглець, кисень, фітомаса, рівняння, вуглекислий газ, Forestry, SD1-669.5

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://nv.nltu.edu.ua/index.php/journal/article/view/2350; https://doaj.org/toc/1994-7836; https://doaj.org/toc/2519-2477

URL الوصول: https://doaj.org/article/98f86000070a4fcd9ba2251405a49b02

المؤلفون: Артем Николаевич Кузовлев, В. В. Мороз

المصدر: Вестник интенсивной терапии, Iss 2 (2019)

مصطلحات موضوعية: нозокомиальная пневмония, нозокомиальный трахеобронхит, биомаркеры, профилактика, сепсис, антибиотики, Medical emergencies. Critical care. Intensive care. First aid, RC86-88.9

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://intensive-care.ru/index.php/acc/article/view/78; https://doaj.org/toc/1726-9806; https://doaj.org/toc/1818-474X

URL الوصول: https://doaj.org/article/12aeed1668c74a4a96235613091c826a

المؤلفون: N. V. Ermokhina, A. N. Kuzovlev, D. V. Davydov, A. V. Grechko, P. A. Polyakov, P. V. Ryzhkov, T. S. Serkova, E. A. Lukyanova, D. V. Belokopytov, V. V. Moroz, Н. В. Ермохина, А. Н. Кузовлев, Д. В. Давыдов, А. В. Гречко, П. А. Поляков, П. В. Рыжков, Т. В. Серкова, Е. А. Лукьянова, Д. В. Белокопытов, В. В. Мороз

المساهمون: The study was funded within the framework of the state task «Multiple organ dysfunction and insufficiency in critical conditions – leading mechanisms of development, new methods of diagnosis and treatment» (№ FGWS-2022-0001)., Исследование финансировалось в рамках госзадания «Полиорганная дисфункция и недостаточность при критических состояниях – ведущие механизмы развития, новые методы диагностики и лечения» (№ FGWS-2022-0001).

المصدر: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 21, № 2 (2024); 27-38 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 21, № 2 (2024); 27-38 ; 2541-8653 ; 2078-5658

مصطلحات موضوعية: отсроченное когнитивное восстановление, emergence delirium, agitation, postoperative delirium, delayed neurocognitive recovery, делирий пробуждения, ажитация, послеоперационный делирий

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/962/701; Алиев В. А., Яворовский А. Г., Шапошников А. А. и др. Сравнительная оценка современных ингаляционных анестетиков при каротидной эндартерэктомии // Общая реаниматология. – 2019. – Т. 15, № 1. – С. 27–38. DOI:10.15360/1813-9779-2019-1-27-38.; Берикашвили Л. Б., Каданцева К. К., Ермохина Н. В. и др. Послеоперационные нейрокогнитивные расстройства: некоторые итоги почти 400-летней истории вопроса (обзор) // Общая реаниматология. – 2023. – Т. 19, № 4. – С. 29–42. DOI:10.15360/1813-9779-2023-4-29-42.; Бершадский Ф. Ф., Гребенчиков О. А., Ершов А. В. и др. Влияние седации дексмедетомидином на выраженность окислительного дистресса при делирии на фоне тяжелой сочетанной травмы // Общая реаниматология. – 2019. – Т. 15, № 4. – С. 11–20. DOI:10.15360/1813-9779-2019-4-11-20.; Душин И. Н., Камнев С. А., Акчулпанов Р. А. и др. Периоперационная динамика сывороточной концентрации глиального фибриллярного кислого протеина и замедленное когнитивное восстановление: экспериментальное обсервационное исследование // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2022. – Т. 19, № 5. – С. 14–18. DOI:10.21292/2078-5658-2022-19-5-14-18.; Жихарев В. А., Корячкин В. А., Бушуев А. С., Шолин И. Ю. Прогнозирование послеоперационного делирия у пациентов пожилого возраста // Медицина: теория и практика. – 2018. – Т. 3, № 4. – С. 53–58.; Заболотских И. Б., Горобец Е. С., Григорьев Е. В. и др. Периоперационное ведение пациентов пожилого и старческого возраста. Методические рекомендации // Вестник интенсивной терапии им. А. И. Салтанова. – 2022. – Т. 3. – С. 7–26. DOI:10.21320/1818-474X-2022-3-7-26.; Заболотских И. Б., Белкин А. А., Бутров А. В. и др. Периоперационное ведение пациентов с зависимостью от алкоголя. Методические рекомендации // Анестезиология и реаниматология. – 2022. – Т. 4. – С. 5–25. DOI:10.17116/anaesthesiology20220415.; Зозуля М. В., Ленькин А. И., Курапеев И. С., Лебединский К. М. Послеоперационные когнитивные расстройства: патогенез, методы профилактики и лечения // Анестезиология и реаниматология. – 2019. – Т. 3. – С. 25–33. DOI:10.17116/anaesthesiology201903125.; Ивкин А. А., Григорьев Е. В., Шукевич Д. Л. Диагностика когнитивной дисфункции у пациентов в отделениях реанимации и интенсивной терапии // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2018. – Т. 15, № 3. – С. 47–55. DOI:10.21292/2078-5658-2018-15-3-47-55.; Куклин В. Н., Матри Ю., Барлоу Н. П. и др. Современные направления в лечении периоперационной гипергликемии у хирургических больных с сахарным диабетом: обзор литературы // Вестник интенсивной терапии им. А. И. Салтанова. – 2021. – Т.4. – С. 33–47. DOI:10.21320/1818-474X-2021-4-33-47.; Левиков Д. И., Марченков Ю. В., Стрижков Н. А. и др. Седация и неинвазивная масочная вентиляция у пациентов с послеоперационным делирием и острой дыхательной недостаточностью // Общая реаниматология. – 2020. – Т. 16, № 2. – С. 4–11. DOI:10.15360/1813-9779-2020-2-4-11.; Левин Я. И., Корячкин В. А. Новая классификация оценки физического статуса пациента Американского общества анестезиологов (80 лет эволюции) // Анестезиология и реаниматология. – 2021. – Т. 6. – С. 107–109. DOI:10.17116/anaesthesiology2021061107.; Лисиченко И. А., Гусаров В. Г. Выбор метода анестезиологического обеспечения у пациентов пожилого и старческого возраста при ортопедических вмешательствах (обзор) // Общая реаниматология. – 2022. – Т. 18, № 3. – С. 45–58. DOI:10.15360/1813-9779-2022-3-45-58.; Лихванцев В. В., Ядгаров М. Я., Берикашвили Л. Б. и др. Определение объема выборки // Анестезиология и реаниматология. – 2020. – Т. 6. – С. 77–87. DOI:10.17116/anaesthesiology202006177.; Морозова М. А., Потанин С. С., Бениашвили А. Г. и др. Валидация русскоязычной версии Госпитальной шкалы тревоги и депрессии в общей популяции // Профилактическая медицина. – 2023. – Т. 26, № 4. – С. 7–14. DOI:10.17116/profmed2023260417.; Неймарк М. И., Шмелев В. В., Рахмонов А. А., Титова З. А. Этиология и патогенез послеоперационной когнитивной дисфункции (обзор) // Общая реаниматология. – 2023. – Т. 19, № 1. – С. 60–71. DOI:10.15360/1813-9779-2023-1-2202.; Полушин Ю. С., Полушин А. Ю., Юкина Г. Ю., Кожемякина М. В. Послеоперационная когнитивная дисфункция – что мы знаем и куда двигаться далее // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2019. – Т. 16, № 1. – С. 19–28. DOI:10.21292/2078-5658-2019-16-1-19-28.; Ткачева О. Н., Котовская Ю. В., Рунихина Н. К. и др. Клинические рекомендации «Старческая астения» // Российский журнал гериатрической медицины. – 2020. – Т. 1. – С. 11–46. DOI:10.37586/2686-8636-1-2020-11-46.; Aldecoa C., Bettelli G., Bilotta F. et al. European Society of Anaesthesiology evidence-based and consensus-based guideline on postoperative delirium // Eur J Anaesthesiol. – 2017. – Vol. 34, № 4. – Р. 192–214. DOI: 10. 1097/eja.0000000000000872; European Society of Cardiology. Position statement of the ESC council on Hypertension on ACE-inhibitors and angiotensin receptor blockers. ESC. 2020. URL: https://www.escardio.org/Councils/Council-on-Hypertension-(CHT)/News/position-statement-of-the-esc-council-on-hypertension-on-ace-inhibitors-and-ang/ (accessed: 05.10.2023).; Evered L., Silbert B., Knopman D. S. et al. The Nomenclature Consensus Working Group. Recommendations for the nomenclature of cognitive change associated with anaesthesia and surgery-2018 // Br J Anaesth. – 2018. – Vol. 121. – Р. 1005–1012. DOI:10.1213/ANE.0000000000003634.; Fields A., Huang J., Schroeder D. et al. Agitation in adults in the post-anaesthesia care unit after general anaesthesia // Br J Anaesth. – 2018. – Vol. 121. – Р. 1052–1058. DOI:10.1016/j.bja.2018.07.017.; Huang J., Qi H., Lv K. et al. Emergence delirium in elderly patients as a potential predictor of subsequent postoperative delirium: a descriptive correlational study // J Perianesth Nurs. – 2020. – Vol. 35, № 5. – Р. 478–483. DOI:10.1016/j.jopan.2019.11.009.; Khanna A. K., Maheshwari K., Mao G. et al. Association between mean arterial pressure and acute kidney injury and a composite of myocardial injury and mortality in postoperative critically ill patients: a retrospective cohort analysis // Crit Care Med. – 2019. – Vol. 47, № 7. – Р. 910–917. DOI:10.1097/CCM.0000000000003763.; Wu J., Yin Y., Jin M., Li B. The risk factors for postoperative delirium in adult patients after hip fracture surgery: a systematic review and meta-analysis // Int J Geriatr Psychiatry. – 2021. – Vol. 36, № 1. – Р. 3–14. DOI:10.1002/gps.5408.; Yang Y., Zhao X., Gao L. et al. Incidence and associated factors of delirium after orthopedic surgery in elderly patients: a systematic review and meta-analysis // Aging Clin Exp Res. – 2021. – Vol. 33, № 6. – Р. 1493–1506. DOI:10.1007/s40520-020-01674-1.; Zhang X. M., Jiao J., Xie X. H., Wu X. J. The association between frailty and delirium among hospitalized patients: an updated meta-analysis // J Am Med Dir Assoc. – 2021. – Vol. 22, № 3. – P. 527–534. DOI:10.1016/j.jamda.2021.01.065.; Zhang Y., He S. T., Nie B. et al. Emergence delirium is associated with increased postoperative delirium in elderly: a prospective observational study // J Anesth. – 2020. – Vol. 34, № 5. – Р. 675–687. DOI:10.1007/s00540-020-02805-8.; https://www.vair-journal.com/jour/article/view/962

الاتاحة: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/962
https://doi.org/10.24884/2078-5658-2024-21-2-27-38

المؤلفون: D. L. Fetlam, A. G. Chumachenko, M. D. Vyazmina, V. V. Moroz, A. N. Kuzovlev, V. M. Pisarev, Д. Л. Фетлам, А. Г. Чумаченко, М. Д. Вязьмина, В. В. Мороз, А. Н. Кузовлев, В. М. Писарев

المصدر: General Reanimatology; Том 20, № 2 (2024); 14-28 ; Общая реаниматология; Том 20, № 2 (2024); 14-28 ; 2411-7110 ; 1813-9779

مصطلحات موضوعية: NLR, COVID-19, pleural empyema, lung abscess, immune system cells, SIRI, SII, эмпиема плевры, абсцесс легких, клетки иммунной системы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2401/1811; https://www.reanimatology.com/rmt/article/downloadSuppFile/2401/933; Корымасов Е. А., Яблонский П. К., Жестков К. Г., Соколович Е. Г., Мотус, И.Я. Лишенко В. В., Скрябин С. А. Нагноительные заболевания легких: национальные клинические рекомендации Ассоциация Торакальных Хирургов России. URL: (дата обращения 28.05.2023).; Garvia V, Paul M. Empyema. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2024. PMID: 29083780.; Stüben B. O., Plitzko G. A., Reeh M. Melling N., Izbicki J. R., Bachmann K., Tachezy M. Intrathoracic vacuum therapy for the therapy of pleural empyema-a systematic review and analysis of the literature. J Thorac Dis. 2023; 15 (2): 780–790. DOI:10.21037/jtd-22-1188. PMID: 36910103.; Hassan M., Patel S., Sadaka A. S., Bedawi E. O., Corcoran J. P., Porcel J. M. Recent insights into the management of pleural infection. Int J Gen Med. 2021; 14: 3415–3429. DOI:10.2147/IJGM.S292705. PMID: 34290522.; Iguina M. M., Danckers M. Thoracic empyema. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; February 5, 2023.; Sabbula B. R., Rammohan G., Athavale A., Akella J. Lung abscess. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; February 12, 2023. PMID: 32310380.; Патент № 2799246 C1 Российская Федерация, МПК A61B 17/24, A61M 1/00, A61B 10/04. Способ хирургического лечения эмпиемы плевры, осложненной бронхоплевральным свищом: № 2022127937: заявл. 28.10.2022: опубл. 04.07.2023. Никулин А. В., Хоробрых Т. В., Дидуев Г. И., Романихин А. И., Сурков А. И., Фетлам Д. Л.; Киров М. Ю., Кузьков В. В., Проценко Д. Н., Щеголев А. В., Бабаев М. А., Белоцерковский Б. З., Быков А. О., и др. Септический шок у взрослых: клинические рекомендации Общероссийской общественной организации «Федерация анестезиологов и реаниматологов». Вестник интенсивной терапии имени А.И. Салтанова. 2023; (4): 7–42. DOI:10.21320/1818-474X-2023-4-7-42.; Чумаченко А. Г., Григорьев Е. К., Писарев В. М. Вклад полиморфизма промоторной области гена AGTR 1 в течение и исход сепсиса у пациентов с различной коморбидностью. Общая реаниматология. 2021; 17 (5): 35–51. DOI:10.15360/1813-9779-2021-5-35-51.; Selders G. S., Fetz A. E., Radic M. Z., Bowlin G. L. An overview of the role of neutrophils in innate immunity, inflammation and host-biomaterial integration. Regen Biomater. 2017; 4 (1): 55–68. DOI:10.1093/rb/rbw041. PMID: 28149530.; Hellebrekers P., Vrisekoop N., Koenderman L. Neutrophil phenotypes in health and disease. Eur J Clin Invest. 2018; 48 Suppl 2 (Suppl Suppl 2): e12943. DOI:10.1111/eci.12943. PMID: 29682724.; Mortaz E., Alipoor S. D., Adcock I. M., Mumby S., Koenderman L. Update on neutrophil function in severe inflammation. Front Immunol. 2018; 9: 2171. DOI:10.3389/fimmu.2018.02171. PMID: 30356867.; Li Y., Wang W., Yang F., Xu Y., Feng C., Zhao Y. The regulatory roles of neutrophils in adaptive immunity. Cell Commun Signal. 2019; 17 (1): 147. DOI:10.1186/s12964-019-0471-y. PMID: 31727175.; Chou C., Li M. O. Tissue-resident lymphocytes across innate and adaptive lineages. Front Immunol. 2018; 9: 2104. DOI:10.3389/fimmu.2018.02104. PMID: 30298068.; Чумаченко А. Г., Григорьев Е. К., Черпаков Р. А., Тюрин И. Н., Писарев В. М. Зависимость течения и исхода сепсиса от генетического варианта 3`-области гена аквапорина 4 (AQP4) и коморбидности. Общая реаниматология. 2023; 19 (5): 4–12. DOI:10.15360/1813-97792023-5-2291.; Zheng M., Gao Y., Wang G., Song G., Liu S., Sun D., Xu Y., et al. Functional exhaustion of antiviral lymphocytes in COVID-19 patients. Cell Mol Immunol. 2020; 17 (5): 533–535. DOI:10.1038/s41423-020-0402-2. PMID: 32203188.; Buonacera A., Stancanelli B., Colaci M., Malatino L. Neutrophil to lymphocyte ratio: an emerging marker of the relationships between the immune system and diseases. Int J Mol Sci. 2022; 23 (7): 3636. DOI:10.3390/ijms23073636. PMID: 35408994.; Coillard A., Segura E. In vivo differentiation of human monocytes. Front Immunol. 2019; 10: 1907. DOI:10.3389/fimmu.2019.01907. PMID: 31456804.; Amengual J., Barrett T. J. Monocytes and macrophages in atherogenesis. Curr Opin Lipidol. 2019; 30 (5): 401–408. DOI:10.1097/MOL.0000000000000634. PMID: 31361625.; Wang L., Song Q., Wang C., Wu S., Deng L., Li Y., Zheng L., et al. Neutrophil to lymphocyte ratio predicts poor outcomes after acute ischemic stroke: a cohort study and systematic review. J Neurol Sci. 2019; 406: 116445. DOI:10.1016/j.jns.2019.116445. PMID: 31521961.; Angkananard T., Anothaisintawee T., McEvoy M., Attia J., Thakkinstian A. Neutrophil lymphocyte ratio and cardiovascular disease risk: a systematic review and meta-analysis. Biomed Res Int. 2018: 2703518. DOI:10.1155/2018/2703518. PMID: 30534554.; Li X., Liu C., Mao Z., Xiao M., Wang L., Qi S., Zhou F. Predictive values of neutrophil-to-lymphocyte ratio on disease severity and mortality in COVID-19 patients: a systematic review and meta-analysis. Crit Care. 2020; 24 (1): 647. DOI:10.1186/s13054-020-03374-8. PMID: 33198786.; Liu C.-C., Ko H.-J., Liu W.-S., Hung C.-L., Hu K.-C., Yu L.-Y., Shih S.-C. Neutrophil-to-lymphocyte ratio as a predictive marker of metabolic syndrome. Medicine (Baltimore). 2019; 98 (43): e17537. DOI:10.1097/MD.0000000000017537. PMID: 31651856.; Erre G. L., Paliogiannis P., Castagna F., Mangoni A. A., Carru C., Passiu G., Zinellu A. Meta-analysis of neutrophilto-lymphocyte and platelet-to-lymphocyte ratio in rheumatoid arthritis. Eur J Clin Invest. 2019; 49 (1): e13037. DOI:10.1111/eci.13037. PMID: 30316204.; Yin X., Wu L., Yang H., Yang H. B. Prognostic significance of neutrophil-lymphocyte ratio (NLR) in patients with ovarian cancer: a systematic review and meta-analysis. Medicine (Baltimore). 2019; 98 (45): e17475. DOI:10.1097/MD.0000000000017475. PMID: 31702609.; Mellor K. L., Powell A. G.M.T., Lewis W. G. Systematic review and meta-analysis of the prognostic significance of neutrophil-lymphocyte ratio (NLR) after R0 gastrectomy for cancer. J Gastrointest Cancer. 2018; 49 (3): 237–244. DOI:10.1007/s12029-018-0127-y. PMID: 29949048.; Lunkov V. D., Maevskaya M. V., Tsvetaeva E. K., Mendez A. G., Zharkova M. S., Tkachenko P. E., Ivashkin V. T. Neutrophil to lymphocyte ratio as a predictor of adverse outcome in patients with decompensated liver cirrhosis. Russian Journal of Gastroenterology, Hepatology, Coloproctology. 2019; 29 (1): 47–61. (In Russ.). DOI:10.22416/1382-4376-2019-29-1-47-61.; Dilektasli E., Inaba K., Haltmeier T., Wong M. D., Clark D., Benjamin E. R., Lam L., et al. The prognostic value of neutrophil-to-lymphocyte ratio on mortality in critically ill trauma patients. J Trauma Acute Care Surg. 2016; 81 (5): 882–888. DOI:10.1097/TA.0000000000000980. PMID: 26825931.; Balta S., Celik T., Mikhailidis D. P., Ozturk C., Demirkol S., Aparci M., Iyisoy A. The relation between atherosclerosis and the neutrophil-lymphocyte ratio. Clin Appl Thromb Hemost. 2016; 22 (5): 405–411. DOI:10.1177/1076029615569568. PMID: 25667237.; Langley B. O., Guedry S. E., Goldenberg J. Z., Hanes D. A., Beardsley J. A., Ryan J. J. Inflammatory bowel disease and neutrophil-lymphocyte ratio: a systematic scoping review. J Clin Med. 2021; 10 (18): 4219. DOI:10.3390/jcm10184219. PMID: 34575330.; Song M., Graubard B. I., Rabkin C. S., Engels E. A. Neutrophil-to-lymphocyte ratio and mortality in the United States general population. Sci Rep. 2021; 11 (1): 464. DOI:10.1038/s41598-020-79431-7. PMID: 33431958.; Zhang Y., Xing Z, Zhou K., Jiang S. The predictive role of systemic inflammation response index (SIRI) in the prognosis of stroke patients. Clin Interv Aging. 2021; 16: 1997–2007. Published 2021 Dec 1. DOI:10.2147/CIA.S339221.PMID: 34880606.; Xia Y., Xia C., Wu L., Li Z., Li H., Zhang J. Systemic immune inflammation index (SII), system inflammation response index (SIRI) and risk of all-cause mortality and cardiovascular mortality: a 20-year follow-up cohort study of 42,875 US adults. J Clin Med. 2023; 12 (3): 1128. DOI:10.3390/jcm12031128. PMID: 36769776.; He Q., Li L., Ren Q. The prognostic value of preoperative systemic inflammatory response index (SIRI) in patients with high-grade glioma and the establishment of a nomogram. Front Oncol. 2021; 11: 671811. DOI:10.3389/fonc.2021.671811. PMID: 34055639.; Chen N., Zhou M., Dong X., Qu J., Gong F., Han Y., Qiu Y., et al. Epidemiological and clinical characteristics of 99 cases of 2019 novel coronavirus pneumonia in Wuhan, China: a descriptive study. Lancet. 2020; 395 (10223): 507–513. DOI:10.1016/S0140-6736 (20)30211-7. PMID: 32007143.; Магомедалиев М. О., Корабельников Д. И., Хорошилов С. Е. Прогностическое значение цистатина-С как предиктора развития острого повреждения почек при COVID-19. Общая реаниматология. 2023; 19 (2): 14–22. DOI:10.15360/1813-9779-2023-2-2243.; Корабельников Д. И., Магомедалиев М. О., Хорошилов С. Е. Прогностическое значение цистатина С как предиктора неблагоприятного исхода при пневмонии тяжелого течения, ассоциированного с COVID-19. Общая реаниматология. 2023; 19 (3): 4-11. DOI:10.15360/1813-9779-2023-3-4-11; Хаджиева М. Б., Грачева А. С., Ершов А. В., Чурсинова Ю. В., Степанов В. А., Авдейкина Л. С., Гребенчиков О. А., с соавт. Биомаркеры повреждения структур аэрогематического барьера при COVID-19. Общая реаниматология. 2021; 17 (3): 16–31. DOI:10.15360/1813-97792021-3-2-0.; Лейдерман И. Н., Лестева Н. А., Кашерининов И. Ю., Кузьмин А. С., Ахимов П. С., Баринова С. А., Каншаов Н. З. с соавт. Прогностическая ценность альбумина сыворотки крови и экскреции азота с мочой у пациентов отделения реанимации и интенсивной терапии с новой коронавирусной инфекцией (COVID-19): одноцентровое проспективное когортное исследование. Вестник интенсивной терапии имени А.И. Салтанова. 2021; (3): 61–68. DOI:10.21320/1818-474X-2021-3-61-68.; Shebl E., Paul M. Parapneumonic pleural effusions and empyema thoracis. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2024. PMID: 30485002.; Rahman N. M., Kahan B. C., Miller R. F., Gleeson F. V., Nunn A. J., Maskell N. A. A clinical score (RAPID) to identify those at risk for poor outcome at presentation in patients with pleural infection. Chest. 2014; 145 (4): 848–855. DOI:10.1378/chest.13-1558. PMID: 24264558.; Zhang H., Wang Y., Qu M., Li W., Wu D., Cata J. P., Miao C. Neutrophil, neutrophil extracellular traps and endothelial cell dysfunction in sepsis. Clin Transl Med. 2023; 13 (1): e1170. DOI:10.1002/ctm2.1170. PMID: 36629024.; Joffre J., Hellman J., Ince C., Ait-Oufella H. Endothelial responses in sepsis. Am J Respir Crit Care Med. 2020; 202 (3): 361–370. DOI:10.1164/rccm.201910-1911TR. PMID: 32101446.; Folco E. J., Mawson T. L., Vromman A., Bernardes-Souza B., Franck G., Persson O., Nakamura M., et al. Neutrophil extracellular traps induce endothelial cell activation and tissue factor production through interleukin-1 and cathepsin G. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2018; 38 (8): 1901– 1912. DOI:10.1161/ATVBAHA.118.311150. PMID: 29976772.; Cilloniz C,. Peroni H. J., Gabarrús A., García-Vidal C., Pericàs J. M., Bermejo-Martin J., Torres A. Lymphopenia is associated with poor outcomes of patients with community-acquired pneumonia and sepsis. Open Forum Infect Dis. 2021; 8 (6): ofab169. DOI:10.1093/ofid/ofab169. PMID: 34189165.; Ruiz LA, Serrano L, Pérez S, Castro S., Urrutia A., Uranga A., Artaraz A., et al. Impact of severe lymphopenia on the early prediction of clinical outcome in hospitalized patients with pneumococcal community-acquired pneumonia. Infection. 2023; 51 (5): 1311–1327. DOI:10.1007/s15010-02301984-2. PMID: 36694093.; Ponti G., Maccaferri M., Ruini C., Tomasi A., Ozben T. Biomarkers associated with COVID-19 disease progression. Crit Rev Clin Lab Sci. 2020; 57 (6): 389–399. DOI:10.1080/10408363.2020,1770685. PMID: 32503382.; Huang D., He D., Gong L., Wang W., Yang L., Zhang Z., Shi Y., Liang Z. Clinical characteristics and risk factors associated with mortality in patients with severe community-acquired pneumonia and type 2 diabetes mellitus. Crit Care. 2021; 25 (1): 419. DOI:10.1186/s13054-021-03841-w. PMID: 34876193.; Fois A. G., Paliogiannis P.,, Scano V., Cau S., Babudieri S., Perra R., Ruzzittu G., et al. The systemic inflammation index on admission predicts in-hospital mortality in COVID19 patients. Molecules. 2020; 25 (23): 5725. DOI:10.3390/molecules25235725. PMID: 33291581.; Tomar B., Anders H.-J., Desai J., Mulay S. R. Neutrophils and neutrophil extracellular traps drive necroinflammation in COVID-19. Cells. 2020; 9 (6): 1383. DOI:10.3390/cells9061383. PMID: 32498376.; Veglia F., Perego M., Gabrilovich D. Myeloid-derived suppressor cells coming of age. Nat Immunol. 2018; 19 (2): 108–119. DOI:10.1038/s41590-017-0022-x. PMID: 29348500.; Peng B., Luo Y., Zhuang Q., Li.J, Zhang P., Yang M., Zhang Y., et al. The expansion of myeloid-derived suppressor cells correlates with the severity of pneumonia in kidney transplant patients. Front Med (Lausanne). 2022; 9: 795392. DOI:10.3389/fmed.2022.795392. PMID: 35242775.; Perfilyeva Y. V., Ostapchuk Y. O., Tleulieva R., Kali A., Abdolla N., Krasnoshtanov V. K., Perfilyeva A. V., et al. Myeloid-derived suppressor cells in COVID-19: a review. Clin Immunol. 2022; 238: 109024. DOI:10.1016/j.clim.2022.109024.PMID: 35489643.; Wang X., Xu W., Hu G., Xia S., Sun Z., Liu Z., Xie Y.,et al. Retracted article. SARS-CoV-2 infects T lymphocytes through its spike protein-mediated membrane fusion. Cell Mol Immuno. 2020; 20 (5): 554. DOI:10.1038/s41423-020-0424-9. PMID: 32265513.; Chan A. S., Rout A. Use of neutrophil-to-lymphocyte and platelet-to-lymphocyte ratios in COVID-19. J Clin Med Res. 2020; 12 (7): 448–453. DOI:10.14740/jocmr4240. PMID: 32655740.; Wang R.-H., Wen W.-X., Jiang Z. P., Du Z.-P., Ma Z. H., Lu A.L., Li H.-P., et al. The clinical value of neutrophil-to-lymphocyte ratio (NLR), systemic immune-inflammation index (SII), platelet-to-lymphocyte ratio (PLR) and systemic inflammation response index (SIRI) for predicting the occurrence and severity of pneumonia in patients with intracerebral hemorrhage. Front Immunol. 2023; 14: 1115031. DOI:10.3389/fimmu.2023.1115031. PMID: 36860868.; Liu J., Fan G., Tao N., Sun T. Role of pyroptosis in respiratory diseases and its therapeutic potential. J Inflamm Res. 2022; 15: 2033–2050. DOI:10.2147/JIR.S352563. PMID: 35370413.; Jimeno S., Ventura P. S., Castellano J. M., García-Adasme S. I., Miranda M., Touza P., Lilana I., et al. Prognostic implications of neutrophil-lymphocyte ratio in COVID-19. Eur J Clin Invest. 2021; 51 (1): e13404. DOI:10.1111/eci.13404. PMID: 32918295.; Liu Y., Du X., Chen J., Yaley J,, Peng L., Wang H. H.X., Luo M., et al. Neutrophil-to-lymphocyte ratio as an independent risk factor for mortality in hospitalized patients with COVID-19. J Infect. 2020; 81 (1): e6-e12. DOI:10.1016/j.jinf.2020. 04.002. PMID: 32283162.; Darcy C. J., Minigo G., Piera K. A., Davis J.S, McNeil Y.R., Chen Y., Volkheimer A. D., et al. Neutrophils with myeloid derived suppressor function deplete arginine and constrain T cell function in septic shock patients. Crit Care. 2014; 18 (4): R163. DOI:10.1186/cc14003. PMID: 25084831.; Гапонов МА., Хайдуков С. В., Писарев В. М., Гребенщиков О. А., Гапонов А. М., Тутельян А. В. Субпопуляционная гетерогенность миелоидных иммуносупрессорных клеток у пациентов с септическими состояниями. Российский иммунологический журнал. 2015; 9 (18): 11–14.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2401

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2401
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2024-2-14-28

المؤلفون: E. A. Chernevskaya, M. L. Getsina, R. A. Cherpakov, E. A. Sorokina, A. K. Shabanov, V. V. Moroz, N. V. Beloborodova, Е. А. Черневская, М. Л. Гецина, Р. А. Черпаков, Е. А. Сорокина, А. К. Шабанов, В. В. Мороз, Н. В. Белобородова

المصدر: General Reanimatology; Том 19, № 6 (2023); 4-12 ; Общая реаниматология; Том 19, № 6 (2023); 4-12 ; 2411-7110 ; 1813-9779

مصطلحات موضوعية: биомаркеры, pathobiota, aromatic microbial metabolites, phenyllactic acid, 4-hydroxyphenyllactic acid, phenylpropionic acid, microbiota, biomarkers, патобиота, ароматические микробные метаболиты, фенилмолочная кислота, 4-гидроксифенилмолочная кислота, фенилпропионовая кислота, микробиота

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2403/1776; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2403/1784; Evans L., Rhodes A., Alhazzani W., Antonelli M., Coopersmith C.M., French C., Machado F.R., et al. Surviving sepsis campaign: international guidelines for management of sepsis and septic shock 2021. Intensive Care Med. 2021; 47 (11): 1181–1247. DOI:10.1007/s00134-021-06506-y. PMID: 34599691.; Zhang Y.-Y., Ning B.-T. Signaling pathways and intervention therapies in sepsis. Signal Transduct Target Ther. 2021; 6 (1): 407. DOI:10.1038/s41392-021-00816-9. PMID: 34824200.; Быкова К.М., Саввина И.А., Бодарева Н.В., Забродская Ю.М. Патофизиологические аспекты и комплексная диагностика сепсис-ассоциированной энцефалопатии. Перспективы этиопатогенетической терапии. Анестезиология и реаниматология. 2022; (4): 92–98. DOI:10.17116/anaesthesiology202204192.; Ковзель В.А., Давыдова Л.А., Карзин А.В., Царенко С.В., Батурова В.Ю., Полупан А.А., Гутников А.И. Методы экстракорпоральной гемокоррекции при сепсисе (обзор). Общая реаниматология. 2023; 19 (2): 68–82. DOI:10.15360/1813-9779-2023-2-2282.; Adelman M.W., Woodworth M.H., Langelier C., Busch L.M., Kempker J.A., Kraft C.S., Martin G.S. The gut microbiome’s role in the development, maintenance, and outcomes of sepsis. Crit Care. 2020; 24 (1): 278. DOI:10.1186/s13054-020-02989-1. PMID: 32487252.; Chernevskaya E., Beloborodova N., Klimenko N., Pautova A., Shilkin D., Gusarov V., Tyakht A. Serum and fecal profiles of aromatic microbial metabolites reflect gut microbiota disruption in critically ill patients: a prospective observational pilot study. Crit Care; 2020; 24 (1): 312. DOI:10.1186/s13054-020-03031-0. PMID: 32513224.; Xiao K., Sun Y., Song J., Li L., Mao W., Jiang C. Gut microbiota involved in myocardial dysfunction induced by sepsis. Microb Pathog. 2023; 175: 105984. DOI:10.1016/j.micpath.2023.105984. PMID: 36638851.; Wasyluk W., Zwolak A. Metabolic alterations in sepsis. J Clin Med. 2021; 10 (11): 2412. DOI:10.3390/jcm10112412. PMID: 34072402.; Sun S., Wang D., Dong D., Xu L., Xie M., Wang Y., Ni T., et al. Altered intestinal microbiome and metabolome correspond to the clinical outcome of sepsis. Crit Care. 2023; 27 (1): 127. DOI:10.1186/s13054-023-04412-x. PMID: 36978107.; Beloborodova N.V., Sarshor Yu.N., Bedova A.Yu., Chernevskaya E.A., Pautova A.K. Involvement of aromatic metabolites in the pathogenesis of septic shock. Shock. 2018; 50 (3): 273–279. DOI:10.1097/SHK.0000000000001064. PMID: 29189605.; Beloborodova N.V. Serum aromatic microbial metabolites as biological markers in intensive care. In: Rajendram, R., Preedy, V.R., Patel, V.B. (eds.). Biomarkers in trauma, injury and critical care. Biomarkers in disease: methods, discoveries and applications. Springer, Cham. 2023; 13: 245–268. DOI:10.1007/978-3-031-07395-3_64.; Белобородова Н.В., Байрамов И.Т., Оленин А.Ю., Федотчева Н.И. Экзометаболиты некоторых анаэробных микроорганизмов микрофлоры человека. Биомедицинская химия. 2011; 57 (1): 95–105. DOI:10.18097/pbmc20115701095. PMID: 21516781.; Jenner A.M., Rafter J., Halliwell B. Human fecal water content of phenolics: the extent of colonic exposure to aromatic compounds. Free Radic Biol Med. 2005; 38 (6): 763–772. DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2004.11.020. PMID: 15721987.; Russell W.R., Duncan S.H., Scobbie L., Duncan G., Cantlay L., Calder A,G,, Anderson S.E., et al. Major phenylpropanoidderived metabolites in the human gut can arise from microbial fermentation of protein. Mol Nutr Food Res. 2013; 57 (3): 523–535. DOI:10.1002/mnfr.201200594. PMID: 23349065.; Muñoz-González I., Jiménez-Girón A., Martín-Álvarez P.J., Bartolomé B., Moreno-Arribas M.V. Profiling of microbial-derived phenolic metabolites in human feces after moderate red wine intake. J Agric Food Chem. 2013; 61 (39): 9470–9. DOI:10.1021/jf4025135. PMID: 24010549.; Saito Y., Sato T., Nomoto K., Tsuji H. Identification of phenol- and p-cresol-producing intestinal bacteria by using media supplemented with tyrosine and its metabolites. FEMS Microbiol Ecol. 2018; 94 (9): fiy125. DOI:10.1093/fem-sec/fiy125. PMID: 29982420.; Gutiérrez-Díaz I., Fernández-Navarro T., Salazar N., Bartolomé B., Moreno-Arribas M.V., López P., Suárez A., et al. Could fecal phenylacetic and phenylpropionic acids be used as indicators of health status? J Agric Food Chem. 2018; 66 (40): 10438–10446. DOI:10.1021/acs.jafc.8b. PMID: 30227707.; Жиркова Е.А., Спиридонова Т.Г., Сачков А.В., Елисеенкова Е.А., Брыгин П.А., Никулина В.П., Кашолкина Е.А., с соавт. Биомаркеры воспаления при острой дыхательной недостаточности у пациентов с ингаляционной травмой. Анестезиология и реаниматология. 2022; (5): 23 29. DOI:10.17116/anaesthesiology202303145.; Козлов И.А., Соколов Д.А. Оценка биомаркера напряжения миокарда NT-proBNP в реальной клинической практике. Общая реаниматология. 2023; 19 (1): 4–12. DOI:10.15360/1813-9779-2023-1-2272.; Dwivedy A.K., Shah S.N. Effects of phenylalanine and its deaminated metabolites on Na+,K+-ATPase activity in synaptosomes from rat brain. Neurochem Res. 1982; 7 (6): 717-25. DOI:10.1007/BF00965524. PMID: 6289150.; Zhu L., Shao Y.D., Wang J.Y., Lin D.L., Gu C.L., Li Y.H., Gu J.G., et al. Effect of beta-phenyl lactic acid on platelet aggregation, thrombosis, and plasma cAMP content. Zhongguo Yao Li Xue Bao. 1988; 9 (3): 249–251. PMID: 2850712.; Вахитовa Т.Я., Чалисова Н.И., Ситкин С.И., Салль Т.С., Шалаева О.Н., Демьянова Е.В., Моругина А.С., с соавт. Низкомолекулярные компоненты метаболома крови регулируют пролиферативную активность в клеточных и бактериальных культурах. Доклады академии наук. 2017; 472 (4): 491–493. DOI:10.1134/S0012496617010069. PMID: 28429257.; Martiìn M., Gibello A., Fernaìndez J., Ferrer E. , Garrido-Pertierra A. Catabolism of 3- and 4-hydroxyphenylacetic acid by Klebsiella pneumoniae. J Gen Microbiol. 1991; 137 (3): 621–628. DOI:10.1099/00221287-137-3-621. PMID: 1851804.; Calder P.C. n-3 fatty acids, inflammation, and immunity — relevance to postsurgical and critically ill patients. Lipids. 2004; 39 (12): 1147–1161. DOI:10.1007/s11745-004-1342-z. PMID: 15736910.; Dodd D., Spitzer M.H., Van Treuren W., Merrill B.D., Hryckowian A.J., Higginbottom S.K., Le A., et al. A gut bacterial pathway metabolizes aromatic amino acids into nine circulating metabolites. Nature. 2017; 551 (7682): 648–652. DOI:10.1038/nature24661. PMID: 29168502.; Díaz E., Ferrández A., Prieto M.A., García J.L. Biodegradation of aromatic compounds by Escherichia coli. Microbiol Mol Biol Rev. 2001; 65 (4): 523–569. DOI:10.1128/MMBR.65.4.523-569.2001. PMID: 11729263.; Clarkson S.M., Giannone R.J., Kridelbaugh D.M., Elkins J.G., Guss A.M., Michener J.K. Construction and optimization of a heterologous pathway for protocatechuate catabolism in Escherichia coli enables bioconversion of model aromatic compounds. Appl Environ Microbiol. 2017; 83 (18): e01313–17. DOI:10.1128/AEM.01313-17. PMID: 28733280.; Smith E.A., Macfarlane G.T. Enumeration of human colonic bacteria producing phenolic and indolic compounds: effects of pH, carbohydrate availability and retention time on dissimilatory aromatic amino acid metabolism. J Appl Bacteriol. 1996; 81 (3): 288–302. DOI:10.1111/j.1365-2672.1996.tb04331.x. PMID: 8810056.; Liu Y., Guo Y., Hu S., Wang Y., Zhang L., Yu L., Geng F. Analysis of the dynamic changes in gut microbiota in patients with different severity in sepsis. BMC Infect Dis. 2023; 23 (1): 614. DOI:10.1186/s12879-023-08608-y. PMID: 37723420; Zhou Y., Luo Y., Wang X., Luan F., Peng Y., Li Y., Ma X., et al. Early gut microbiological changes and metabolomic changes in patients with sepsis: a preliminary study. Int Microbiol. 2023; 26 (4): 1131–1142. DOI:10.1007/s10123-023-00363-z. PMID: 37145385.; Evans T., Ali U., Anderton R., Raby E., Manning L., Litton E. Lower gut dysbiosis and mortality in acute critical illness: a systematic review and meta-analysis. Intensive Care Med Exp. 2023; 11 (1): 6. DOI:10.1186/s40635-022-00486-z. PMID: 36732439.; Chanderraj R., Baker J.M., Kay S.G., Brown C.A., Hinkle K.J., Fergle D.J., McDonald R.A., et al. In critically ill patients, anti-anaerobic antibiotics increase risk of adverse clinical outcomes. Eur Respir J. 2023; 61 (2): 2200910. DOI:10.1183/13993003.00910-2022. PMID: 36229047.; Zanza C., Romenskaya T., Thangathurai D., Ojetti V., Saviano A., Abenavoli L., Robba C., et al. Microbiome in critical care: an unconventional and unknown ally. Curr Med Chem. 2022; 29 (18): 3179–3188. DOI:10.2174/0929867328666210915115056. PMID: 34525908.; Zaborin A., Smith D., Garfield K., Quensen J., Shakhsheer B., Kade M., Tirrell M., et al. Membership and behavior of ultra-low-diversity pathogen communities present in the gut of humans during prolonged critical illness. mBio 2014; 5 (5): e01361-14. DOI:10.1128/mBio.01361-14. PMID: 25249279.; Ситкин С.И., Вахитов Т.Я., Демьянова Е.В. Микробиом, дисбиоз толстой кишки и воспалительные заболевания кишечника: когда функция важнее таксономии. Альманах клинической медицины. 2018; 46 (5): 396–425. DOI:10.18786/2072-0505-2018-46-5-396-425.; Zhang Z., Cheng L., Ning D. Gut microbiota and sepsis: bidirectional Mendelian study and mediation analysis. Front Immunol. 2023; 14: 1234924. DOI:10.3389/fimmu.2023. 1234924. PMID: 37662942.; Balaban N.Q., Merrin J., Chait R., Kowalik L., Leibler S. Bacterial persistence as a phenotypic switch. Science. 2004; 305 (5690): 1622–1625. DOI:10.1126/science.1099390. PMID: 15308767.; Андрюков Б.Г., Ляпун И.Н. Молекулярные механизмы персистенции бактерий. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2020; 97 (3): 271–279. DOI:10.36233/0372-9311-2020-97-3-10.; Orman M.A., Brynildsen M.P. Inhibition of stationary phase respiration impairs persister formation in E. coli. Nat Commun. 2015; 6: 7983. DOI:10.1038/ncomms8983. PMID: 26246187.; Маркелова Н.Н., Тутельян А.В., Писарев В.М., Гапонов А.М. Некоторые закономерности формирования персистирующих форм клинических изолятов грамотрицательных бактерий. Антибиотики и Химиотерапия. 2018; 63 (7–8): 41–46.; Zelezniak A., Andrejev S., Ponomarova O., Mende D.R., Bork P., Patil K.R. Metabolic dependencies drive species co-occurrence in diverse microbial communities. Proc Natl Acad Sci U S A. 2015; 112 (20): 6449–54. DOI:10.1073/pnas.1421834112. PMID: 25941371.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2403

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2403
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2023-6-4-12

المؤلفون: V. V. Moroz, V. T. Dolgikh, S. A. Karpitskaya, В. В. Мороз, В. Т. Долгих, С. А. Карпицкая

المصدر: General Reanimatology; Том 18, № 2 (2022); 4-11 ; Общая реаниматология; Том 18, № 2 (2022); 4-11 ; 2411-7110 ; 1813-9779

مصطلحات موضوعية: антиоксидантная терапия, cognitive disorders, free-radical oxidation, antioxidant therapy, когнитивные нарушения, свободно-радикальное окисление

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2208/1598; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2208/1607; Аннушкин В. А. Гетерогенность когнитивных нарушений в клинической практике / В. А. Аннушкин, О. В. Лагода, М. М. Танашян. – 2020. – 3: 26–31. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/geterogennost-kognitivnyh-narusheniy-v-klinicheskoy-praktike/viewer.; Остроумова О. Л. Лекарственно-индуцированные когнитивные нарушения / О. Л. Остроумова [и др.] // Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика. – 2020. – 12 (3): 11–18. https://doi.org/10.14412/2074-2711-2020-3-11-18.; Очилов У. У. Распространенность когнитивных нарушений у пациентов с алкоголизмом / У. У. Очилов, Б. Т. Тураев, Д. Х. Хушвактова // Вестник науки и образования. – 2020. – 17–2 (25): 104–106. – ID: 43963.308.; Кольцова О. В. Когнитивные нарушения и когнитивный резерв, их взаимосвязи с поведенческими особенностями у пациентов с вирусом иммунодефицита человека во время их госпитализации / О. В. Кольцова, Г. Ш. Мошкова // Обозрение психиатрии и медицинской психологии им. В. М. Бехтерева. – 2021. – 1: 53–59. DOI:10.31363/2313-7053-2021-1-53-59.; Екушева Е. В. Когнитивные нарушения у пациентов с хроническим болевым синдромом / Е. В. Екушева // Русский медицинский журнал. Медицинское обозрение. – 2020. – 4 (9): 573–577. DOI:10.32364/2587-6821-2020-4-9-573-577.; Ахапкин Р. В. Структура когнитивных нарушений у больных с непсихотическими депрессивными расстройствами / Р. В. Ахапкин, А. З. Файзуллоев // Кремлевская медицина. Клинический вестник. – 2020. – 2: 54–64. DOI:10.26269/333m-6094.; Касымжанова М. К. Влияние психогенных факторов на клинику и течение когнитивных нарушений у лиц пожилого возраста (обзор литературы) / М. К. Касымжанова, Н. И. Распопова // Вестник казахского национального медицинского университета. – 2019. – 2: 78–81. – ID: 43837208.; Хрулев А. Е. Когнитивный статус и факторы риска когнитивных нарушений у диализных пациентов / А. Е. Хрулев [и др.] // Общая реаниматология. – 2020/ – 16 (4): 21–31. DOI:10.15360/1813-9779-2020-4-21-31.; Камчатнов П. Р. Когнитивные нарушения у больных с церебро-васкулярными заболеваниями / П. Р. Камчатнов [и др.] // Нервные болезни. – 2019. – 3: 25–29. https://cyberleninka.ru/article/n/kognitivnye-narusheniya-u-bolnyh-s-tserebrovaskulyarnymi-zabolevaniyami.; Гусейнова С. Э. Когнитивные нарушения у лиц, страдающих шизофренией / С. Э. Гусейнова // Методология современной психологии. – 2019. – 2: 31–37. – ID: 39214038.; Старчина Ю. А. Когнитивные нарушения при артериальной гипертензии / Ю. А. Старчина, В. В. Захаров // Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика. – 2021. – 13 (1): 113–118. DOI:10.14412/2074-2711-2021-1-113-118; Остроумова О. Д. Антикоагулянтная терапия как инструмент профилактики когнитивных нарушений, ассоциированных с фибрилляцией предсердий / О. Д. Остроумова [и др.] // Рациональная фарvакотерапия в кардиологии. – 2019. – 15 (5): 713–724. https://cyberleninka.ru/article/n/antikoagulyantnaya-terapiya-kak-instrument-profilaktiki-kognitivnyh-narusheniy-assotsiirovannyh-s-fibrillyatsiey-predserdiy; Ураков Ш. Т. Послеоперационная когнитивная дисфункция / Ш. Т. Ураков, О. Ш. Эшонов, Э. Б. Болтаев // Новый день в медицине. – 2019. – 2 (26): 56–60. ID: 44647992.; Левиков Д. И. Седация и неинвазивная масочная вентиляция у пациентов с послеоперационным делирием и острой дыхательной недостаточностью / Д. И. Левиков [и др.] // Общая реаниматология. – 2020. – 16 (2): 4–11. DOI:10.15360/1813-9779-2020-2-4-11.; Пизова Н. В. Когнитивные нарушения у лиц, перенесших COVID-19 / Н. В. Пизова, Н. А. Пизов, А. В. Пизов // Медицинский совет. – 2021. – 3: 69–77. doi:10.21518/2079-701X-2021-4-69-77; Богданов А. С. Когнитивные и личностные нарушения у пациентов с туберкулезом легких / А. С. Богданов [и др.] // Современные проблемы здравоохранения и медицинской статистики. – 2019; 4: 37–50. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/kognitivnye-i-lichnostnye-narusheniya-u-patsientov-s-tuberkulyozom-legkih.; Евзельман М. А. Неврологические осложнения ВИЧ-инфекции / М. А. Евзельман [и др.] // Журнал неврологии и психиатрии им. С. С. Корсакова. – 2015. – 115 (3): 89–93. DOI:10.17116/jnevro20151153189-93.; Вовк В. А. Сочетание применения эндоскопических и лапароскопических методик при лечении больных острым холангитом / В. А. Вовк // Медицина неотложных состояний. – 2019. – 1 (96): 76–79. DOI:10.22141/2224-0586.1.96.2019.158749.; Решетняк В. И. Заболевания печени и гемостаз (обзор) Часть II. Холестатические заболевания печени и гемостаз / В. И. Решетняк [и др.] // Общая реаниматология. – 2019. – 15 (6): 80–93. DOI:10.15360/1813-9779-2019-6-80-93.; Оморов Р. А. Пути оптимизации лапароскопической холецистэктомии / Р. А. Оморов [и др.] // Вестник КГМА им. И. К. Ахунбаева. – 2017. – 2: 85–89. – eLIBRARY ID: 29855093.; Пережогин А. В. Эпидуральная анестезия при операциях лапороскопической холецистэктомии: оценка послеопрационной когнитивной дисфункции / А. В. Пережлгин // Образовательный вестник «Сознание» / Электронный научно-образовательный вестник здоровье и образование в XXI веке. – 2017. – 12 (19): 220–221.; Соколова М. М. Газообмен и нейрокогнитивные параметры при лапароскопической холецистэктомии / М. М. Соколова [и др.] // Анестезиология и реаниматология. – 2017. – 62 (2): 143–148. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/gazoobmen-i-neyrokognitivnye-parametry-pri-laparoskopicheskoy-holetsistektomii; Потиевская В. И. Седация пациентов в отделениях реанимации и интенсивной терапии / В. И. Потиевская [и др.] // Анестезиология и реаниматология. – 2018. – 63 (2): 165–175. eLIBRARY ID: 35160502.; Байжаркинова А. Б. Хирургические аспекты осложнений при ЛХЭ и ТХЭ / А. Б. Байжаркинова // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. –2014. – 12 (1): 89–92. – eLIBRARY ID: 22586903.; Овезов А. М. Послеоперационная когнитивная дисфункция и принципы церебропротекции в современной анестезиологии: учебное пособие для врачей / А. М. Овезов. – М.: Тактик-Студио; 2015: 5 (1).; Евдокимов Е. А. Ошибки, опасности, осложнения общей анестезии. В кн.: Анестезиология. Национальное руководство / Е. А. Евдокимов. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2011: С. 521–559.; Бершадский Ф. Ф. Влияние седации дексмедетомидином на выраженность окислительного дистресса при делирии на фоне тяжелой сочетанной травмы / Ф. Ф. Бершадский. – Общая реаниматология. – 2019. – 15 (4): 11–20. DOI:10.15360/1813-9779-2019-4-11-20.; Гулов М. К. Когнитивная дисфункция в отдаленном периоде у пациентов среднего, пожилого и старческого возраста после холецистэктомии / М. К. Гулов, А. М. Сафарзода // Вестник Авиценны. – 2019. – 21 (1): 60–65. DOI:10.25005/2074-0581-2019-21-1-60-65.; Александрович Ю. С. Послеоперационная когнитивная дисфункция — является ли она проблемой для анестезиолога-реаниматологи? / Ю. С. Александрович, Т. И. Акименко, К. В. Пшениснов // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2019. – 16 (4): 5–11. DOI:10.21292/2078-5658-2019-16-4-5-11.; Линев Д. В. Эффективность и безопасность дексмедетомидина, галоперидола и диазепама в лечении делирия: сравнительное исследование / Д. В. Линев [и др.] // Анестезиология и реаниматология. – 2017. – 62 (6): 442-448. https://cyberleninka.ru/article/n/effektivnost-i-bezopasnost-deksmedetomidina-galoperidola-i-diazepama-v-lechenii-deliriya-sravnitelnoe-issledovanie.; Гольдин Б. Г. Нейроиммунные механизмы когнитивной недостаточности при аффективных расстройствах / Б. Г. Гольдин // Медицинский академический журнал. – 2019. – 19 (S): 76–78. URL: https://journals.eco-vector.com/MAJ/article/view/19333/15601/ru_RU.; Васильев Ю. В. К вопросу современной диагностики когнитивных расстройств в геронтоневрологии / Ю. В. Васильев // Международный вестник медицины и права. – 2019. – 2 (1): 3–4. – eLIBRARY ID: 38231731.; Слива С. С. Стабилографическая экспресс-оценка психофизиологического состояния человека: методические рекомендации / С. С. Слива [и др.] – Таганрог, 2011: 29.; Кострова Е. М. Профилактика когнитивных расстройств цитофлавином у пациентов при лапароскопической холецистэктомии в условиях общей анестезии / Е. М. Кострова // Новости хирургии. – 2009. – 17 (3): 146–153.; Захаров В. Когнитивные расстройства без деменции: классификация, основные причины и лечение / В. Захаров // Эффективная фармакотерапия. – 2016. – 1 (1): 22–30.; Кетлинский С.А. Цитокины / С. А. Кетлинский, А. С. Симбирцев. – М.: ФОЛИАНТ. – 2008: 552.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2208

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2208
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2022-2-4-11

المؤلفون: S. A. Perepelitsa, V. V. Moroz, V. T. Dolgikh, E. A. Boeva, D. O. Starostin, M. A. Milovanova, V. V. Antonova, С. А. Перепелица, В. В. Мороз, В. Т. Долгих, Е. A. Боева, Д. О. Старостин, М. А. Милованова, В. В. Антонова

المساهمون: The authors would like to express their gratitude to A. Ershov, M. D., PhD, DSci, Senior Researcher, V.A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitation., Авторский коллектив выносит благодарность д. м. н., старшему научному сотруднику НИИ общей реаниматологии им. В.А. Неговского ФНКЦ РР Ершову А. В. за консультативную помощь.

المصدر: General Reanimatology; Том 17, № 5 (2021); 80-95 ; Общая реаниматология; Том 17, № 5 (2021); 80-95 ; 2411-7110 ; 1813-9779

مصطلحات موضوعية: симуляционное обучение, residency, innovative educational technologies, STEAM practice, mind map, simulation training, ординатура, инновационные образовательные технологии, STEAM-практика, интеллект-карта

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2137/1558; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2137/1561; Bosch J., Maaz A., Hitzblech T., Holzhausen Y., Peters H. Medical students' preparedness for professional activities in early clerkships. BMC Med Educ. 2017; 17 (1): 140. DOI:10.1186/s12909-017-0971-7. PMCID: PMC5568232.; Janczukowicz J., Rees C. E. Preclinical medical students' understandings of academic and medical professionalism: visual analysis of mind maps. BMJ Open. 2017; 7 (8): e015897. DOI:10.1136/bmjopen-2017-015897. PMCID: PMC5629743.; Stephenson A., Roff S. Mapping understanding of Academic Integrity of Medical students in a London medical school using the Dundee Polyprofessionalism Inventory I. MedEdPublish, 2015; 5: 15 DOI:10.15694/mep.2015.005.0015.; Кудрявая Н.В., Уколова Е.М., Смирнова Н.Б., Зорин К.В., Волошина Е.А. Педагогика для медицинских вузов. М.: КНОРУС. 2021. 352 с.; Henriksen D., Mishra P., Fisser P. Infusing Creativity and Technology in 21st Century Education: A Systemic View for Change. Educational Technology & Society. 2016; 19 (3): 27-37.; Jin J., Bridges S. M. Educational Technologies in Problem-Based Learning in Health Sciences Education: A Systematic Review. J Med Internet Res. 2014; 16 (12): e251. DOI:10.2196/jmir.3240. PMCID: PMC4275485.; Dankbaar M.E., Alsma J., Jansen E.E., van Merrienboer J.J., van Saase J.L., Schuit S.C. An experimental study on the effects of a simulation game on students' clinical cognitive skills and motivation. Adv Health Sci Educ Theory Pract. 2016; 21 (3): 505-521. DOI:10.1007/s10459-015-9641-x. PMID: 26433730.; Rostamnia L., Ghanbar V., Shabani F., Farahani A., Dehghan-Nayeri N. Evidence-Based Practice for Cardiac Intensive Care Unit Nurses: An Educational Intervention Study. The Journal of Continuing Education in Nursing. 2020; 51 (4): 167-173. DOI:10.3928/00220124-20200317-06.; Перепелица С.А. Оценка степени сформированности навыков и клинических у студентов. Мед. образование и проф. развитие. 2019; 10 (3): 16-26. DOI:10.24411/2220-8453-2019-13002.; Aguilar D., Turmo M. P. Promoting Social Creativity in Science Education With Digital Technology to Overcome Inequalities: A Scoping Review. Front Psychol. 2019; 10: 1474. DOI:10.3389/fpsyg.2019.01474. PMID: 31312154. PMCID: PMC6614193.; Baylor C., Burns M. I., Struijk J., Herron L, Mach H., Yorkston K. Assessing the Believability of Standardized Patients Trained to Portray Communication Disorders. Am J Speech Lang Pathol. 2017; 26 (3): 791-805. DOI:10.1044/2017_AJSLP-16-0068. PMCID: PMC5829793.; Herbstreit F., Merse S., Schnell R., Noack M., Dirkmann D. Besuch A., Peters J. Impact of standardized patients on the training of medical students to manage emergencies. Medicine (Baltimore). 2017; 96 (5): e5933. DOI:10.1097/MD.0000000000005933. PMCID: PMC5293440.; Перепелица С.А. Симуляционное обучение дисциплине «Лечение боли». Мед. образование и проф. развитие. 2018; 2: 54-66. DOI:10.24411/2220-8453-2018-12004.; Hadzigeorgiou Y., Fokialis P. M., Kabouropoulou M. Thinking about creativity in science education. Creat. Educ. 2012; 3: 603-611. DOI:10.4236/ce.2012.35089.; PedasteM., Mdeots M., Siiman L. A., Jong T., van Riesen S. A. N., Kamp E. T., Manoli C.C., Zacharia Z.C., Tsourlidaki E. Phases of inquirybased learning: definitions and the inquiry cycle. Educ. Res. Rev. 2015; 14: 47-61. DOI:10.1016/j.edurev.2015.02.003.; Segarra V.A., Natalizio B., Falkenberg C.V., Pulford S., Holmes R.M. STEAM: Using the Arts to Train Well-Rounded and Creative Scientists. J. Microbiol Biol Educ. 2018; 19 (1): 19.1.53. DOI:10.1128/jmbe.v19i1.1360. PMID: 29904562.; Yoder-Wise P. S. From STEM to STEAM. J Contin Educ Nurs. 2018; 49 (10): 443-444. DOI:10.3928/00220124-20180918-01.PMID: 30257024.; Oerther D.B. Nursing should be a STEM discipline! // Reflections on Nursing Leadership. — 2018. Retrieved from http: //www. reflection-sonnursingleadership.org/features/more-features/nursing-should-be-a-stem-discipline.; Мороз В.В., Долгих В.Т. Академик АМН СССР Владимир Александрович Неговский. Клиническая патофизиология. 2020; 26 (1): 83-94.; Мороз В.В., Гречко А.В. Научно-исследовательскому институту общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ РР — 80 лет. Общая реаниматология. 2017; 13 (5): 6-29. DOI:10.15360/18139779-2017-5-6-29.; Федеральный государственный образовательный стандарт высшего образования-специалитет по специальности 31.05.01 Лечебное дело. [Электронный ресурс] http: //www.fgosvo.ru (дата обращения 04.01.2021).; Федеральный государственный образовательный стандарт высшего образования по специальности 31.08.02 Анестезиология-реаниматология (уровень подготовки кадров высшей квалификации). http://fgosvo.ru/uploadfiles/fgosvoord/310802_Anestesiologia.pdf.; Клиническая патофизиология. Курс лекций под ред. В.А. Че-решнева, П.Ф. Литвицкого, В.Н. Цыгана. СПб.: СпецЛит; 2015: 472 с. ISBN 978-5-299-00684-1.; Долгих В.Т., Корпачева О.В., Ершов А.В. Патофизиология в 2 томах. Общая патофизиология. Том 1. Москва: изд-во «Маска»; 2020: 371. ISBN: 978-5-534-11896-4.; Долгих В.Т., Корпачева О.В., Ершов А.В. Патофизиология в 2 томах. Частная патофизиология. Том 2. Москва: изд-во «РусайнсМаска»; 2020: 371. ISBN: 978-5-534-13309-7.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2137

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2137
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2021-5-80-95

المؤلفون: V. V. Moroz, A. N. Kuzovlev, E. V. Luginina, A. V. Grechko, В. В. Мороз, А. Н. Кузовлев, Е. В. Лугинина, А. В. Гречко

المصدر: General Reanimatology; Том 17, № 5 (2021); 4-8 ; Общая реаниматология; Том 17, № 5 (2021); 4-8 ; 2411-7110 ; 1813-9779

مصطلحات موضوعية: критические состояния, science of resuscitation, Negovsky, Research Institute of General Reanimatology, critical illness, наука о реанимации, Неговский, институт общей реаниматологии

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2130/1543; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2130

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2130
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2021-5-4-8

المؤلفون: V. V. Moroz, E. A. Sherstyukova, E. K. Kozlova, V. A. Sergunova, В. В. Мороз, Е. А. Шерстюкова, Е. К. Козлова, В. А. Сергунова

المصدر: General Reanimatology; Том 17, № 1 (2021); 69-82 ; Общая реаниматология; Том 17, № 1 (2021); 69-82 ; 2411-7110 ; 1813-9779

مصطلحات موضوعية: посттрансфузионные осложнения, blood transfusion, post-transfusion complications, гемотрансфузия

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2015/1480; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2015/1487; Jiao C., Zheng L. Blood transfusion‐related immunomodulation in patients with major obstetric haemorrhage. Vox Sang. 2019; 114 (8): 861–868. PMID: 31587289. DOI:10.1111/vox.12845.; Culp-Hill R., Srinivasan A.J., Gehrke S., Kamyszek R., Ansari A., Shah N., Welsby I., D’Alessandro A. Effects of red blood cell (RBC) transfusion on sickle cell disease recipient plasma and RBC metabolism. Transfusion. 2018; 58 (12): 2797–2806. PMID: 30265764. DOI:10.1111/trf.14931.; Hood A.M., King A.A., Fields M.E., Ford A.L., Guilliams K.P., Hulbert M.L., Lee J.M., White D.A. Higher executive abilities following a blood transfusion in children and young adults with sickle cell disease. Pediatr. Blood Cancer. 2019; 66 (10): e27899. PMID: 31267645. DOI:10.1002/pbc.27899.; Thurn L., Wikman A., Westgren M., Lindqvist P.G. Massive blood transfusion in relation to delivery: incidence, trends and risk factors: a population‐based cohort study. BJOG. 2019; 126 (13): 1577–1586. PMID: 31483935. DOI:10.1111/1471-0528.15927.; Аксельрод Б.А., Балашова Е.Н., Баутин А.Е., Баховадинов Б.Б., Бирюкова Л.С., Буланов А.Ю., Быстрых О.А., Виноградова М.А., Галстян Г.М., Гапонова Т.В., Головкина Л.Л., Гороховский В.С., Еременко А.А., Жибурт Е.Б., Журавель С.В., Кохно А.В., Кузьмина Л.А., Кулабухов В.В., Купряшов А.А., Лубнин А.Ю., Мазурок В.А., Меньшугин И.Н., Минеева Н.В., Михайлова Е.А., Никитин Е.А., Оловникова Н.И., Ошоров А.В., Певцов Д.Э., Попцов В.Н., Рогачевский О.В., Салимов Э.Л., Титков К.В., Трахтман П.Е., Троицкая В.В., Федорова Т.А., Фидарова З.Т., Цветаева Н.В., Чжао А.В., Шестаков Е.Ф. Клиническое использование эритроцитсодержащих компонентов донорской крови. Гематология и трансфузиология. 2018; 63 (4): 372–435. DOI:10.25837/HAT.2019.62.39.006.; Wardrop K.J., Owen T.J., Meyers K.M. Evaluation of an additive solution for preservation of canine red blood cells. J. Vet. Intern. Med. 1994; 8 (4): 253–257. PMID: 7983619. DOI:10.1111/j.1939-1676.1994.tb03228.x.; Dumont L.J., AuBuchon J.P. Biomedical Excellence for Safer Transfusion (BEST) Collaborative. Evaluation of proposed FDA criteria for the evaluation of radiolabeled red cell recovery trials. Transfusion. 2008; 48 (6): 1053–1060. PMID: 18298603. DOI:10.1111/j.1537-2995.2008.01642.x.; EDQM (European Directorate for the Quality of Medicines & Health Care of the Council of Europe). Guide to the Preparation, Use and Quality Assurance of Blood Components. 2017.; Lacroix J., Hébert P.C., Fergusson D.A., Tinmouth A., Cook D.J., Marshall J.C., Clayton L., McIntyre L., Callum J., Turgeon A.F., Blajchman M.A., Walsh T.S., Stanworth S.J., Campbell H., Capellier G., Tiberghien P., Bardiaux L., van de Watering L., van der Meer N.J., Sabri E., Vo D.; ABLE Investigators; Canadian Critical Care Trials Group. Age of transfused blood in critically ill adults. N. Engl. J. Med. 2015; 372 (15): 1410– 1418. PMID: 25853745. DOI:10.1056/NEJMoa1500704.; Garraud O. Effect of «old» versus «fresh» transfused red blood cells on patients’ outcome: probably more complex than appears. J. Thorac. Dis. 2017; 9 (2): E146–E148. PMID: 28275500. DOI:10.21037/jtd.2017.02.03.; García-Roa M., Del Carmen Vicente-Ayuso M., Bobes A.M., Pedraza A.C., González-Fernández A., Martín M.P., Sáez I., Seghatchian J., Gutiérrez L. Red blood cell storage time and transfusion: current practice, concerns and future perspectives. Blood Transfus. 2017; 15 (3): 222–231. PMID: 28518049. DOI:10.2450/2017.0345-16.; Jones A.R., Patel R.P., Marques M.B., Donnelly J.P., Griffin R.L., Pittet J.F., Kerby J.D., Stephens S.W., DeSantis S.M., Hess J.R., Wang H.E. PROPPR Study Group. Older blood is associated with increased mortality and adverse events in massively transfused trauma patients: secondary analysis of the PROPPR Trial. Ann. Emerg. Med. 2019; 73 (6): 650–661. PMID: 30447946. DOI:10.1016/j.annemergmed.2018.09.033.; Hess J.R. An update on solutions for red cell storage. Vox Sang. 2006; 91: 13-19. PMID: 16756596. DOI:10.1111/j.1423-0410.2006.00778.x.; Cancelas J.A. Dumont L.J., Maes L.A., Rugg N., Herschel L., Whitley P.H., Z.M. Szczepiokowski, A.H. Siegel, J.R. Hess, M. Zia. Additive solution‐7 reduces the red blood cell cold storage lesion. Transfusion. 2015; 55 (3): 491–498. PMID: 25233911. DOI:10.1111/trf.12867.; D’Alessandro A., Reisz J.A., Culp-Hill R., Korsten H., van Bruggen R., de Korte D. Metabolic effect of alkaline additives and guanosine/gluconate in storage solutions for red blood cells. Transfusion. 2018; 58 (8): 1992–2002. PMID: 29624679. DOI:10.1111/trf.14620.; Lagerberg J. W., Korsten H., Van Der Meer P. F., De Korte D. Prevention of red cell storage lesion: a comparison of five different additive solutions. Blood Transfus. 2017. 15 (5): 456–462. PMID: 28488968. DOI:10.2450/2017.0371-16.; Hoehn R.S., Jernigan P.L., Chang A.L., Edwards M.J., Pritts T.A. Molecular mechanisms of erythrocyte aging. Biol Chem. 2015; 396 (6–7): 621–631. PMID: 25803075. DOI:10.1515/hsz-2014-0292.; Северин Е.С. Биохимия: учебник. M.: ГЭОТАР-МЕД; 2015: 768. ISBN 978-5-9704-2029-4.; Wongsari M.H., Rachmawati M., Mansyur A. Glucose level analysis on stored packed red cells. Indonesian journal of clinical pathology and medical laboratory. 2018. 24 (2): 117–121. DOI:10.24293.ijcpml.v24i2.1308.; Xiong Y., Xiong Y., Wang Y., Wang Z., Zhang A., Zhao N., Zhao D., Yu Z., Wang Z., Yi J., Luan X. Inhibition of Glutathione Synthesis via Decreased Glucose Metabolism in Stored RBCs. Cell Physiol. Biochem. 2018; 51 (5): 2172–2184. PMID: 30537727. DOI:10.1159/000495864.; Lagerberg J.W., Korsten H., Van Der Meer P.F., De Korte D. Prevention of red cell storage lesion: a comparison of five different additive solutions. Blood Transfus. 2017; 15 (5): 456–462. PMID: 28488968. DOI:10.2450/2017.0371-16.; Orlov D., Karkouti K. The pathophysiology and consequences of red blood cell storage. Anaesthesia. 2015; 70 (Suppl 1): 29–37. PMID: 25440392. DOI:10.1111/anae.12891.; Yoshida T., Prudent M., D’Alessandro A. Red blood cell storage lesion: causes and potential clinical consequences. Blood Transfus. 2019; 17 (1): 27–52. PMID: 30653459. DOI:10.2450/2019.0217-18.; AlMoshary M., Mussaed E.A., Arab-Din M. Biochemical profile changes in stored donor blood for transfusion. Pak. J. Med. Sci. 2019; 35 (6): 1697–1700. PMID: 31777518. DOI:10.12669/pjms.35.6.220.; Antwi-Baffour S., Adjei J.K., Tsyawo F., Kyeremeh R., Botchway F.A., Seidu M.A. A Study of the Change in Sodium and Potassium Ion Concentrations in Stored Donor Blood and Their Effect on Electrolyte Balance of Recipients. Biomed. Res. Int. 2019; 2019: 8162975. PMID: 31662997. DOI:10.1155/2019/8162975.; Черныш А. М., Козлова Е. К., Мороз В. В., Сергунова В. А., Гудкова О. Е., Манченко Е. А., Козлов А. П. Влияние антиоксиданта на основе янтарной кислоты на превращение метгемоглобина в оксигемоглобин in vitro. Общая реаниматология. 2018; 14 (2): 46– 59. DOI:10.15360/1813-9779-2018-2-46-59.; Baron-Stefaniak J., Leitner G.C., Küntzel N.K., Meyer E.L., Hiesmayr M.J., Ullrich R., Baron D.M. Transfusion of standard-issue packed red blood cells induces pulmonary vasoconstriction in critically ill patients after cardiac surgery — A randomized, double-blinded, clinical trial. PloS One. 2019; 14 (3): e0213000. PMID: 30856182. DOI:10.1371/journal.pone.0213000.; Берёзов Т.Т., Коровкин Б.Ф. Биологическая химия. М: Медицина; 1998: 704. ISBN 5-225-02709-1.; David S. R., Sawal N. S., Hamzah M. N. S. B., Rajabalaya R. The blood blues: A review on methemoglobinemia. J. Pharmacol. Pharmacother. 2018; 9 (1): 1–5. DOI:10.4103/jpp.JPP_79_17.; Antonelou M.H., Kriebardis A.G., Papassideri I.S. Aging and death signalling in mature red cells: from basic science to transfusion practice. Blood Transfus. 2010; 8 (Suppl 3): s39–s47. PMID: 20606748. DOI:10.2450/2010.007S.; Mittag D., Sran A., Chan K.S., Boland M.P., Bandala-Sanchez E., Huet O., Xu W., Sparrow R.L. Stored red blood cell susceptibility to in vitro transfusion-associated stress conditions is higher after longer storage and increased by storage in saline-adenine-glucose-mannitol compared to AS-1. Transfusion. 2015; 55 (9): 2197–2206. PMID: 25968419. DOI:10.1111/trf.13138.; Lux S.E. 4th. Anatomy of the red cell membrane skeleton: unanswered questions. Blood. 2016; 127 (2): 187–199. PMID: 26537302. DOI:10.1182/blood-2014-12-512772.; Xing F., Hu F., Yang J., Pan L., Xu J. Structural and functional studies of erythrocyte membrane-skeleton by single-cell and singlemolecule techniques. J. Innov. Opt. Health Sci. 2019; 12 (1): 1830004. DOI:10.1142/S1793545818300045.; Leal J., Adjobo-Hermans M., Bosman G. Red Blood Cell Homeostasis: Mechanisms and Effects of Microvesicle Generation in Health and Disease. Front. Physiol. 2018; 9: 703. PMID: 29937736. DOI:10.3389/fphys.2018.00703.; Kozlova E., Chernysh A., Sergunova V., Manchenko E., Moroz V., Kozlov A. Conformational distortions of the red blood cell spectrin matrix nanostructure in response to temperature changes in vitro. Scanning. 2019; 2019: 1–12. PMID: 31198487. DOI:10.1155/2019/8218912.; Azouzi S., Romana M., Arashiki N., Takakuwa Y., El Nemer W., Peyrard T., Colin Y., Amireault P., Le Van Kim C. Band 3 phosphorylation induces irreversible alterations of stored red blood cells. Am. J. Hematol. 2018; 93 (5): E110–E112. PMID: 29352741. DOI:10.1002/ajh.25044.; Pollet H., Conrard L., Cloos A.S., Tyteca D. Plasma Membrane Lipid Domains as Platforms for Vesicle Biogenesis and Shedding? Biomolecules. 2018; 8 (3): 94. PMID: 30223513. DOI:10.3390/biom8030094.; Welbourn E.M., Wilson M.T., Yusof A., Metodiev M.V., Cooper C.E. The mechanism of formation, structure and physiological relevance of covalent hemoglobin attachment to the erythrocyte membrane. Free Radic. Biol. Med. 2017; 103: 95–106. PMID: 28007575. DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2016.12.024.; Thielen A.J.F., Meulenbroek E.M., Baas I., Bruggen R., Zeerleder S.S., Wouters D. Complement Deposition and IgG Binding on Stored Red Blood Cells Are Independent of Storage Time. Transfus. Med. Hemother. 2018; 45 (6): 378–384. PMID: 30574054. DOI:10.1159/000486759.; Diebel L. N., Liberati D. M. Red blood cell storage and adhesion to vascular endothelium under normal or stress conditions: An in vitro microfluidic study. J. Trauma Acute Care Surg. 2019; 86 (6): 943–951. PMID: 30830050. DOI:10.1097/TA.0000000000002239.; Youssef L. A., Rebbaa A., Pampou S., Weisberg S. P., Stockwell B. R., Hod E. A., Spitalnik S. L. Increased erythrophagocytosis induces ferroptosis in red pulp macrophages in a mouse model of transfusion. Blood. 2018; 131 (23): 2581–2593. PMID: 29666112. DOI:10.1182/blood2017-12-822619.; Obrador R., Musulin S., Hansen B. Red blood cell storage lesion. J. Vet Emerg. Crit. Care (San Antonio). 2015; 25 (2): 187–199. PMID: 25428860. DOI:10.1111/vec.12252.; Roche E., Passmore M., Simonova G., Diab S., Dunster K., Bierman W., Fraser J., Tung J. P. A Histologic Approach to Qualify Lung Tissue Damage in a Sheep Model of Transfusion-Related Lung Injury: Role of Red Blood Cell Storage Duration and Heat Treatment. Am. J. Clin. Pathol. 2016; 146 (suppl_1): 49. DOI:10.1093/ajcp/aqw161.049.; Woźniak M.J., Qureshi S., Sullo N., Dott W., Cardigan R., Wiltshire M., Nath M., Patel N.N., Kumar T., Goodall A.H., Murphy G.J. A comparison of red cell rejuvenation versus mechanical washing for the prevention of transfusion-associated organ injury in swine. Anesthesiology. 2018; 128 (2): 375–385. PMID: 29120945. DOI:10.1097/ALN.0000000000001973.; Raat N.J., Verhoeven A.J., Mik E.G., Gouwerok C.W., Verhaar R., Goedhart P.T., de Korte D., Ince C. The effect of storage time of human red cells on intestinal microcirculatory oxygenation in a rat isovolemic exchange model. Crit. Care Med. 2005; 33 (1): 39–45. PMID: 15644646. DOI:10.1097/01.ccm.0000150655.75519.02.; Fitzgerald R.D, Martin C.M., Dietz G.E., Doig G.S., Potter R.F., Sibbald W.J. Transfusing red blood cells stored in citrate phosphate dextrose adenine-1 for 28 days fails to improve tissue oxygenation in rats. Crit. Care Med. 1997; 25 (5): 726–732. PMID: 9187588. DOI:10.1097/00003246-199705000-00004.; Gilson C.R., Kraus T.S., Hod E.A., Hendrickson J.E., Spitalnik S.L., Hillyer C.D., Shaz B.H., Zimring J.C. A novel mouse model of red blood cell storage and posttransfusion in vivo survival. Transfusion. 2009; 49 (8): 1546–1553. PMID: 19573176. DOI:10.1111/j.1537-2995.2009.02173.x.; Wang D., Cortés-Puch I., Sun J., Solomon S.B., Kanias T., Remy K.E., Feng J., Alimchandani M., Quezado M., Helms C., Perlegas A., Gladwin M.T., Kim-Shapiro D.B., Klein H.G., Natanson C. Transfusion of older stored blood worsens outcomes in canines depending on the presence and severity of pneumonia. Transfusion. 2014; 54 (7): 1712– 1724. PMID: 24588210. DOI:10.1111/trf.12607.; Marik P.E., Sibbald W.J. Effect of stored-blood transfusion on oxygen delivery in patients with sepsis. JAMA. 1993; 269 (23): 3024–3029. PMID: 8501845.; Kiraly L.N., Underwood S., Differding J.A., Schreiber M.A. Transfusion of aged packed red blood cells results in decreased tissue oxygenation in critically injured trauma patients. J. Trauma. 2009; 67 (1): 29– 32. PMID: 19590304. DOI:10.1097/TA.0b013e3181af6a8c.; Zallen G., Offner P.J., Moore E.E., Blackwell J., Ciesla D.J., Gabriel J., Denny C., Silliman C.C. Age of transfused blood is an independent risk factor for postinjury multiple organ failure. Am. J. Surg. 1999; 178 (6): 570–572. PMID: 10670874. DOI:10.1016/s0002-9610(99)00239-1.; Weinberg J.A., McGwin G.Jr., Vandromme M.J., Marques M.B., Melton S.M., Reiff D.A., Kerby J.D., Rue L.W. 3rd. Duration of red cell storage influences mortality after trauma. J. Trauma. 2010; 69 (6): 1427–1431. PMID: 21150522. DOI:10.1097/TA.0b013e3181fa0019.; Spinella P.C. Carroll C.L., Staff I., Gross R., Mc. Quay J., Keibel L., Wade C.E., Holcomb J.B. Duration of red blood cell storage is associated with increased incidence of deep vein thrombosis and in hospital mortality in patients with traumatic injuries. Crit. Care. 2009; 13 (5): R151. PMID: 19772604. DOI:10.1186/cc8050.; DeSantis S.M., Brown D.W., Jones A.R., Yamal J.M., Pittet J.F., Patel R.P., Wade C.E., Holcomb J.B., Wang H.; PROPPR Study Group. Characterizing red blood cell age exposure in massive transfusion therapy: the scalar age of blood index (SBI). Transfusion. 2019; 59 (8): 2699–2708. PMID: 31050809. DOI:10.1111/trf.15334.; Sparrow R. L. Red blood cell storage duration and trauma. Transfus. Med. Rev. 2015; 29 (2): 120–126. PMID: 25573415 DOI:10.1016/j.tmrv.2014.09.007.; Bishnoi A.K., Garg P., Patel K., Ananthanarayanan C., Shah R., Solanki A., Pandya H., Patel S. Effect of red blood cell storage duration on outcome after paediatric cardiac surgery: a prospective observational study. Heart Lung Circ. 2019; 28 (5): 784–791. PMID: 29706495. DOI:10.1016/j.hlc.2018.03.012.; Steiner M.E., Ness P.M., Assmann S.F., Triulzi D.J., Sloan S.R., Delaney M., Granger S., Bennett-Guerrero E., Blajchman M.A., Scavo V., Carson J.L., Levy J.H., Whitman G., D’Andrea P., Pulkrabek S., Ortel T.L., Bornikova L., Raife T., Puca K.E., Kaufman R.M., Nuttall G.A., Young P.P., Youssef S., Engelman R., Greilich P.E., Miles R., Josephson C.D., Bracey A., Cooke R., McCullough J., Hunsaker R., Uhl L., McFarland J.G., Park Y., Cushing M.M., Klodell C.T., Karanam R., Roberts P.R., Dyke C., Hod E.A., Stowell C.P. Effects of red-cell storage duration on patients undergoing cardiac surgery. N. Engl. J. Med. 2015; 372 (15): 1419–1429. PMID: 25853746. DOI:10.1056/NEJMoa1414219.; Sanders J., Patel S., Cooper J., Berryman J., Farrar D., Mythen M., Montgomery H.E. Red blood cell storage is associated with length of stay and renal complications after cardiac surgery. Transfusion. 2011; 51 (11): 2286–2294. PMID: 21564106. DOI:10.1111/j.1537-2995.2011.03170.x.; Baron-Stefaniak J., Leitner G.C., Küntzel N.K.I., Meyer E.L., Hiesmayr M.J., Ullrich R., Baron D.M. Transfusion of standard-issue packed red blood cells induces pulmonary vasoconstriction in critically ill patients after cardiac surgery—A randomized, double-blinded, clinical trial. PloS One. 2019; 14 (3): 1–14. PMID: 30856182. DOI:10.1371/journal.pone.0213000.; Wun T., Hassell K. Best practices for transfusion for patients with sickle cell disease. Hematology Reports. 2010; 1 (2): e22. DOI:10.4081/hr.2009.e22.; Shah N., Welsby I.J., Fielder M.A., Jacobsen W.K., Nielsen V.G. Sickle cell disease is associated with iron mediated hypercoagulability. J.Thromb. Thrombolysis. 2015; 40 (2): 182–185. PMID: 25986992. DOI:10.1007/s11239-015-1230-6.; Gu Y., Estcourt L.J., Doree C., Hopewell S., Vyas P. Comparison of a restrictive versus liberal red cell transfusion policy for patients with myelodysplasia, aplastic anaemia, and other congenital bone marrow failure disorders. Cochrane Database Syst. Rev. 2015; 10: CD011577. PMID: 26436602. DOI:10.1002/14651858.CD011577.pub2.; Chadebech P., de Menorval M.A., Bodivit G., Mekontso-Dessap A., Pakdaman S., Jouard A., Galactéros F., Bierling P., Habibi A., Pirenne F. Evidence of benefits from using fresh and cryopreserved blood to transfuse patients with acute sickle cell disease. Transfusion. 2016; 56 (7): 1730–1738. PMID: 27184475. DOI:10.1111/trf.13636.; Dupuis C., Sonneville R., Adrie C., Gros A., Darmon M., Bouadma L., Timsit J.F. Impact of transfusion on patients with sepsis admitted in intensive care unit: a systematic review and meta-analysis. Ann. Intensive Care. 2017; 7 (1): 5. PMID: 28050898. DOI:10.1186/s13613-016-0226-5.; Goel R., Johnson D.J., Scott A.V., Tobian A.A., Ness P.M., Nagababu E., Frank S.M. Red blood cells stored 35 days or more are associated with adverse outcomes in high-risk patients. Transfusion. 2016; 56 (7): 1690–1698. PMID: 27062463. DOI:10.1111/trf.13559.; Hod E.A., Brittenham G.M., Billote G.B., Francis R.O., Ginzburg Y.Z., Hendrickson J.E., Jhang J., Schwartz J., Sharma S., Sheth S., Sireci A.N., Stephens H.L., Stotler B.A., Wojczyk B.S., Zimring J.C., Spitalnik S.L. Transfusion of human volunteers with older, stored red blood cells produces extravascular hemolysis and circulating non-transferrinbound iron. Blood. 2011; 118 (25): 6675–6682. PMID: 22021369. DOI:10.1182/blood-2011-08-371849.; Cross J.H., Bradbury R.S., Fulford A.J., Jallow A.T., Wegmüller R., Prentice A.M., Cerami C. Oral iron acutely elevates bacterial growth in human serum. Sci. Rep. 2015; 5: 16670. PMID: 26593732. DOI:10.1038/srep16670.; Hinshaw L.B. Sepsis/septic shock: Participation of the microcirculation: an abbreviated review. Crit. Care Med. 1996; 24 (6): 1072–1078. PMID: 8681576. DOI:10.1097/00003246-199606000-00031.; Athar M.K., Puri N., Gerber D.R. Anemia and blood transfusions in critically ill patients. J. Blood Transfus. 2012; 2012: 1–7. PMID: 24066259. DOI:10.1155/2012/629204.; Cholette J.M., Pietropaoli A.P., Henrichs K.F., Alfieris G.M., Powers K.S., Phipps R., Spinelli S.L., Swartz M., Gensini F., Daugherty L.E., Nazarian E., Rubenstein J.S., Sweeney D., Eaton M., Blumberg N. Longer RBC storage duration is associated with increased postoperative infections in pediatric cardiac surgery. Pediatr. Crit. Care Med. 2015; 16 (3): 227–235. PMID: 25607740. DOI:10.1097/PCC.0000000000000320.; Manlhiot C., McCrindle B.W., Menjak I.B., Yoon H., Holtby H.M., Brandão L.R., Chan A.K., Schwartz S.M., Sivarajan V.B., CrawfordLean L., Foreman C., Caldarone C.A., Van Arsdell G.S., Gruenwald C.E. Longer blood storage is associated with suboptimal outcomes in high-risk pediatric cardiac surgery. Ann. Thorac. Surg. 2012; 93 (5): 1563–1569. PMID: 22137242. DOI:10.1016/j.athoracsur.2011.08.075.; L’Acqua C., Bandyopadhyay S., Francis R.O., McMahon D.J., Nellis M., Sheth S., Kernie S.G., Brittenham G.M., Spitalnik S.L., Hod E.A. Red blood cell transfusion is associated with increased hemolysis and an acute phase response in a subset of critically ill children. Am. J. Hematol. 2015; 90 (10): 915–920. PMID: 26183122. DOI:10.1002/ajh.24119.; Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Sergunova V., Gudkova O., Manchenko E. Morphology, membrane nanostructure and stiffness for quality assessment of packed red blood cells. Sci. Rep. 2017; 7 (1): 1–11. PMID: 28798476. DOI:10.1038/s41598-017-08255-9.; Мороз В.В., Голубев А.М., Черныш А.М., Козлова Е.К., Васильев В.Ю., Гудкова О.Е., Сергунова В.А., Фёдорова М.С. Изменения структуры поверхности мембран эритроцитов при длительном хранении донорской крови. Общая реаниматология. 2012; 8 (1): 5. DOI:10.15360/1813-9779-2012-1-5.; Kozlova E., Chernysh A., Sergunova V., Kozlov A., Sherstyukova E. Transformation of spectrin matrix of red blood cell membranes. In book: Advances in Single-Molecule Research for Biology & Nanoscience; 2020: 7–6.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2015

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2015
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2021-1-69-82

المؤلفون: V. V. Moroz, A. M. Chernysh, Elena K. Kozlova, В. В. Мороз, А. М. Черныш, Е. К. Козлова

المصدر: General Reanimatology; Том 16, № 3 (2020); 4-13 ; Общая реаниматология; Том 16, № 3 (2020); 4-13 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2020-3

مصطلحات موضوعية: цитопротекторное действие, membranes, hemoglobin derivatives, perftoran, cytoprotective action, мембраны, производные гемоглобина, перфторан

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1900/1403; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1900/1404; Varga Z., Flammer A.J., Steiger P., Haberecker M., Andermatt R., Zin-kernagel A.S., Mehra M.R., Schuepbach R.A., Ruschitzka F, Moch H. Endothelial cell infection and endotheliitis in COVID-19. Lancet. 2020; 395 (10234): 1417-1418. DOI:10.1016/S0140-6736 (20)30937-5. PMID: 32325026.; Cyranoski D. Profile of a killer: the complex biology powering the co-ronavirus pandemic. Nature. 2020; 581 (780б): 22-26. DOI:10.1038/d41586-020-01315-7.; Liu W., Li H. COVID-19: Attacks the 1-Beta Chain of Hemoglobin and Captures the Porphyrin to Inhibit Human Heme Metabolism. Chem-Rxiv. 2020; preprint. DOI:10.26434/chemrxiv.11938173.v8.; Ja.nz D.R., Ware, L.B. The role of red blood cells and cell-free hemoglobin in the pathogenesis of ARDS. JIntensive Care2015; 3 (20). DOI:10.1186/s40560-015-0086-3; SchaerD.J.,BuehlerP.W. Cell-free hemoglobin and its scavenger proteins: new disease models leading the way to targeted therapies. Cold Spring Harb Perspect Med. 2013; 3 (6): a013433. PMID: 23645855 PMCID: PMC3662353 DOI:10.1101/cshperspect.a013433.; Kloka F.A., Kruipb M.J.H.A., Meerc N.J.M., Arbousd M.S., Gommerse D.A.M.P.J., Ka.ntf K.M., Kapteina F.H.J., Paassend J., Stalsa M.A.M., Huisma.na M.V., Endemane H. Incidence of Thrombotic Complications in Critically Ill ICU Patients With COVID-19. Thromb. Res. 2020; S0049-3848 (20)30120-1. DOI:10.1016/j.thromres.2020.04.013. PMID: 32291094.; Ulrich H, Pilla,t M.M. CD147 as a Target for COVID-19 Treatment: Suggested Effects of Azithromycin and Stem Cell Engagement. Stem Cell Reviews and Reports, 2020 DOI:10.1007/s12015-020-09976-7; Cohen F.S. How Viruses Invade Cells. Biophys J. 2016; 110 (5): 1028-1032. DOI:10.1016/j.bpj.2016.02.006; Orlov Y.I. Intravascular Hemolysis of Red Blood Cells in the Development of Organ Dysfunctions in Critical Conditions. General Reanima-tology 2008; 4 (2): 88. [In Russ.] DOI:10.15360/1813-9779-2008-2-88.; Conran N, Almeida C.B. Hemolytic vascular inflammation: an update. Rev. Bras. Hematol. Hemoter. 2016; 38 (1): 55-57. DOI:10.1016/j.bjhh.2015.10.004. PMID: 26969775.; Kozlova E.K., Chernysh A.M., Matteys T.N. Modeling of blood flow as the result of filtration-reabsorption processes in capillaries. Adv. Physiol. Educ. 2000; 23 (1): 32-39. DOI:10.1152/advances.2000.23.1.S32. PMID: 10902525.; Park M.S. Diffuse alveolar hemorrhage. Tuberc. Respir. Dis. (Seoul). 2013; 74 (4): 151-162. DOI:10.4046/trd.2013.74.4.151. PMID: 23678356.; Mitra A., Dwyre D.M., Schivo M., Thompson G.R., Cohen S.H., Ku N. GraffJ.P. Leukoerythroblastic reaction in a patient with COVID-19 infection. American Journal of Hematology. 2020, Mar 25. DOI:10.1002/ajh.25793. [Epub ahead of print]; ChengR. Hospital treatment of serious and critical COVID-19 infection with high-dose Vitamin C. Cheng Integrative Health Center Blog http: //www.drwlc.com/blog/2020/03/18/hospital-treatment-of-se-rious-and-critical-covid-19-infection-with-high-dose-vitamin-c/?fbclid=IwAR3qzrI-tjYloYMlqGQRWUfoionQPWNYjFrRyv-GQ18Rg3GSG9Sn-Z7Ln58; Kozlova E., Chernysh A., Sergunova V, Gudkova O., Manchenko E., Kozlov A. Atomic force microscopy study of red blood cell membrane nanostructure during oxidation-reduction processes. J. Mol. Recog-nit. 2018; 31 (10): e2724. DOI:10.1002/jmr.2724. PMID: 29740886.; Jensen F.B. Nitric oxide formation from nitrite in zebrafish. J. Exp. Biol. 2007; 210 (19): 3387-3394. DOI:10.1242/jeb.008748. PMID: 17872992; Mo roz V V, Kozlova E.K., Bogushevich M.S., Chernysh A.M., Bliznyuk U.A., KozlovA.P,AlekseyevaP.Y. Red Blood Cell Membranes in Donors of Different Age Groups. General Reanimatology. 2006; 2 (3): 9-11. [In Russ.] DOI:10.15360/1813-9779-2006-3-9-11.; Maevsky E, Ivanitsky G., Bogdanova L., Axenova O., Karmen N., Zhi-burt E, Senina R., Pushkin S., Maslennikov I., Orlov A., Marinicheva I. Clinical results of perftoran application: present and future. Artif. Cells Blood Substit. Immobil. Biotechnol. 2005; 33 (1): 37-46. DOI:10.1081/bio-200046654. PMID: 15768564; Rafikova O., Sokolova E., RafikovR., NudlerE. Control of plasma nitric oxide bioactivity by perfluorocarbons: physiological mechanisms and clinical implications. Circulation. 2004; 110 (23): 3573-3580. PMID: 15557364 DOI:10.1161/01.CIR.0000148782.37563.F8; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1900

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1900
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2020-3-0-1

المؤلفون: Alexander M. Chernysh, Elena K. Kozlova, Viktor V. Moroz, Viktoria A. Sergunova, Olga E. Gudkova, Alexander P. Kozlov, Ekaterina A. Manchenko, А. М. Черныш, Е. К. Козлова, В. В. Мороз, В. А. Сергунова, О. Е. Гудкова, А. П. Козлов, Е. А. Манченко

المصدر: General Reanimatology; Том 14, № 1 (2018); 29-39 ; Общая реаниматология; Том 14, № 1 (2018); 29-39 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2018-1

مصطلحات موضوعية: атомно-силовая спектроскопия, nonlinear deformations, atomic force spectroscopy, нелинейные деформации

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1636/1174; Хромова В.С., Мышкин А.Е. Коагуляция цинк-модифицированного гемоглобина. Журнал общей химии. 2002; 72 (10): 1645–1649.; Gudkova O.Ye., Bushueva A.V., Kozlov A.P., Chernysh A.M. Nanostructure and local rigidity of red blood cells (RBC) under influence of membrane modificators and ionizing radiation. Conf. Proc. CLINAM. 2013; 6: 172-173.; Moroz V.V., Chernysh A.M., Kozlova E.K., Borshegovskaya P.Y., Bliznjuk U.A., Rysaeva R.M., Gudkova O.Y. Comparison of red blood cell membrane microstructure after different physicochemical influences: atomic force microscope research. J. Crit. Care. 2010; 25 (3): 539.e1-539.e12. DOI:10.1016/j.jcrc.2010.02.007. PMID: 20381299; Перепелица С.А., Сергунова В.А., Гудкова О.Е.Влияние перинатальной гипоксии на морфологию эритроцитов у новорожденных. Общая реаниматология. 2017; 13 (2): 14-23. DOI:10.15360/1813-9779-2017-2-14-23; Мороз В.В., Новодержкина И.С., Афанасьев А.В., Заржецкий Ю.В., Рыжков И.А., Козлова Е.К., Черныш А.М. Влияние перфторана на наноструктуру мембран дискоцита и стоматоцита после острой кровопотери. Общая реаниматология. 2017; 13 (2): 32-39. DOI:10.15360/1813-9779-2017-2-32-39; Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Sergunova V., Gudkova O., Kuzovlev A. Nanodefects of membranes cause destruction of packed red blood cells during long-term storage. Exp. Cell. Res. 2015; 337 (2): 192-201. DOI:10.1016/j.yexcr.2015.07.009. PMID: 26169694; Черныш А.М., Козлова Е.К., Мороз В.В., Сергунова В.А., Гудкова О.Е., Козлов А.П., Манченко Е.А. Нелинейные локальные деформации мембран эритроцитов: нормальные эритроциты (часть 1). Общая реаниматология. 2017; 13 (5): 58-68. DOI:10.15360/1813-9779-2017-5-58-68; Roduit C., van der Goot F.G., De Los Rios P., Yersin A., Steiner P., Dietler G., Catsicas S., Lafont F., Kasas S. Elastic membrane heterogeneity of living cells revealed by stiff nanoscale membrane domains. Biophys. J. 2008; 94 (4): 1521-1532. DOI:10.1529/biophysj.107.112862. PMID: 17981897; Voïtchovsky K., Antoranz Contera S., Kamihira M., Watts A., Ryan J.F. Differential stiffness and lipid mobility in the leaflets of purple membranes. Biophys. J. 2006; 90 (6): 2075-2085. DOI:10.1529/biophysj.105.072405. PMID: 16387758; Buys A.V., Van Rooy M.J., Soma P., Van Papendorp D., Lipinski B., Pretorius E. Changes in red blood cell membrane structure in type 2 diabetes: a scanning electron and atomic force microscopy study. Сardiovasc. Diabetol. 2013; 12: 25. DOI:10.1186/1475-2840-12-25. PMID: 23356738; Kuznetsova T.G., Starodubtseva M.N., Yegorenkov N. I., Chizhik S.A., Zhdanov R.I. Atomic force microscopy probing of cell elasticity. Micron. 2007; 38 (8): 824–833. DOI:10.1016/j.micron.2007.06.011. PMID: 17709250; Li M., Liu L., Xi N., Wang Y., Dong Z., Xiao X., Zhang W. Atomic force microscopy imaging and mechanical properties measurement of red blood cells and aggressive cancer cells. Sci. China Life Sci. 2012; 55 (11): 968- 973. DOI:10.1007/s11427-012-4399-3. PMID: 23160828; Yu M., Wang J., Wang H., Dong S. Calculation of the intracellular elastic modulus based on an atomic force microscope micro-cutting system. Chin. Sci. Bull. 2012; 57 (15): 1868-1872. DOI:10.1007/s11434-012-5053-y; Sirghi L., Ponti J., Broggi F., Rossi F. Probing elasticity and adhesion of live cells by atomic force microscopy indentation. Eur. Biophys. J. 2008; 37 (6): 935-945. DOI:10.1007/s00249-008-0311-2. PMID: 18365186; Lekka M., Fornal M., Pyka-Fos´ciak G., Lebed K., Wizner B., Grodzicki T., Styczen´ J. Erythrocyte stiffness probed using atomic force microscope. Biorheology. 2005; 42 (4): 307-317. PMID: 16227658; Сергунова В.А., Козлова Е.К., Мягкова Е.А., Черныш А.М. Измерение упругоэластичных свойств мембраны нативных эритроцитов in vitro. Общая реаниматология. 2015; 11 (3): 39-44. DOI:10.15360/1813- 9779-2015-3-39-44; Shi X., Zhang X., Xia T., Fang X. Living cell study at the single-molecule and single-cell levels by atomic force microscopy. Nanomedicine (Lond.). 2012; 7 (10): 1625- 1637. DOI:10.2217/nnm.12.130. PMID: 23148543; Bremmell K.E., Evans A., Prestidge C.A. Deformation and nano-rheology of red blood cells: an AFM investigation. Colloids Surf. B. Biointerfaces. 2006; 50 (1): 43-48. DOI:10.1016/j.colsurfb.2006.03.002. PMID: 16701986; Fisseha D., Katiyar V.K. Analysis of mechanical behavior of red cell membrane in sickle cell disease. Appl. Mathematics. 2012; 2 (2): 40-46. DOI:10.5923/j.am.20120202.08; Sen S., Subramanian S., Discher D.E. Indentation and adhesive probing of a cell membrane with AFM: theoretical model and experiments. Biophys. J. 2005; 89 (5): 3203–3213. DOI:10.1529/biophysj.105.063826. PMID: 16113121; Dupres V., Verbelen C., Dufrêne Y.F. Probing molecular recognition sites on biosurfaces using AFM. Biomaterials. 2007; 28 (15): 2393-2402. DOI:10.1016/j.biomaterials.2006.11.011. PMID: 17126394; Liu S.C., Zhai S., Lawler J., Palek J. Hemin-mediated dissociation of erythrocyte membrane skeletal proteins. J. Biol. Chem. 1985; 260 (22): 12234-12239. PMID: 4044594; Vadillo-Rodriguez V., Beveridge T.J., Dutcher J.R. Surface viscoelasticity of individual gram-negative bacterial cells measured using atomic force microscopy. J. Bacteriol. 2008; 190 (12): 4225-4232. DOI:10.1128/JB.00132- 08. PMID: 18408030; Kozlova E.K., Chernysh A.M., Moroz V.V., Kuzovlev A.N. Analysis of nanostructure of red blood cells membranes by space Fourier transform of AFM images. Micron. 2013; 44: 218-227. DOI:10.1016/j.micron.2012.06.012. PMID: 22854216; Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Gudkova O., Sergunova V., Kuzovlev A. Transformation of membrane nanosurface of red blood cells under hemin action. Sci. Rep. 2014; 4: 6033. DOI:10.1038/srep06033. PMID: 25112597; Черныш А.М., Козлова Е.К., Мороз В.В, Сергунова В.А., Гудкова О.Е., Федорова М.С. Обратимые цинкиндуцируемые повреждения наноструктуры мембран красных клеток крови. Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2012; 154 (7): 95-99. PMID: 23330097; Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Sergunova V., Gudkova O., Fedorova M., Kuzovlev A. Opposite effects of electroporation of red blood cell membranes under the influence of zinc ions. Acta Bioeng. Biomech. 2012; 14 (1): 3-13. PMID: 22741531; Hekele O., Goesselsberger C.G., Gebeshuber I.C. Nanodiagnostics performed on human red blood cells with atomic force microscopy. Mater. Sci. Technol. 2008; 24 (9): 1162-1165. DOI:10.1179/174328408X341834; Hartmann D. A multiscale model for red blood cell mechanics. Biomech. Model. Mechanobiol. 2010; 9 (1): 1-17. DOI:10.1007/s10237-009-0154- 5. PMID: 19440743; Fedosov D.A., Lei H., Caswell B., Suresh S., Karniadakis G.E. Multiscale modeling of red blood cell mechanics and blood flow in malaria. PLoS Comput. Biol. 2011. 7 (12): e1002270. DOI:10.1371/journal.pcbi.1002270. PMID: 22144878; Mirijanian D.T., Voth G.A. Unique elastic properties of the spectrin tetramer as revealed by multiscale coarse-grained modeling. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008; 105 (4): 1204-1208. DOI:10.1073/pnas.0707500105. PMID: 18202182; Shaklai N., Avissar N., Rabizadeh E., Shaklai M. Disintegration of red cell membrane cytoskeleton by hemin. Biochem. Int. 1986; 13 (3): 467-477. PMID: 3790141; Nakamura M., Bessho S., Wada S. Spring-network-based model of a red blood cell for simulating mesoscopic blood flow. Int. J. Numer. Method Biomed. Eng. 2013; 29 (1): 114-128. DOI:10.1002/cnm.2501. PMID: 23293072; Parshina E.Yu., Sarycheva A.S., Yusipovich A.I., Brazhe N.A., Goodilin E.A., Maksimov G.V. Combined Raman and atomic force microscopy study of hemoglobin distribution inside erythrocytes and nanoparticle localization on the erythrocyte surface. Laser Physics Letters. 2013; 10 (7): 1-6. DOI:10.1088/1612-2011/10/7/075607; Kim Y., Kim K., Park Y.K. Blood cell - an overview of studies in hematology. In: Moschandreou T.E. (ed.). Measurement techniques for red blood cell deformability: recent advances. Rijeka, Croatia; 2012: 167-195. DOI:10.5772/50698; Gov N., Cluitmans J., Sens P., Bosman G.J.C.G.M. Chapter 4. Cytoskeletal control of red blood cell shape: theory and practice of vesicle formation. In: Advances in planar lipid bilayers and liposomes. v.10: 95-119. DOI:10.1016/S1554-4516(09)10004-2; Hosseini S.M., Feng J.J. How malaria parasites reduce the deformability of infected red blood cells. Biophys. J. 2012; 103 (1): 1-10. DOI:10.1016/j.bpj.2012.05.026. PMID: 22828326; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1636

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1636
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2018-1-29-39

المؤلفون: A. M. Chernysh, E. K. Kozlova, V. V. Moroz, V. A. Sergunova, O. E. Gudkova, A. P. Kozlov, E. A. Manchenko, А. М. Черныш, Е. К. Козлова, В. В. Мороз, В. А. Сергунова, О. Е. Гудкова, А. П. Козлов, Е. А. Манченко

المصدر: General Reanimatology; Том 13, № 5 (2017); 58-68 ; Общая реаниматология; Том 13, № 5 (2017); 58-68 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2017-5

مصطلحات موضوعية: кинетика погружения зонда, erythrocyte membranes, atomic force spectroscopy, probe submergence kinetics, нелинейная деформация, атомно-силовая спектроскопия

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1625/1160; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1625/1161; Хромова В.С., Мышкин А.Е. Коагуляция цинк-модифицированного гемоглобина. Журнал общей химии. 2002; 72 (10): 1645–1649.; Gudkova O.Ye., Bushueva A.V., Kozlov A.P., Chernysh A.M. Nanostructure and local rigidity of red blood cells (RBC) under influence of membrane modificators and ionizing radiation. Conf. Proc. CLINAM. 2013; 6: 172-173.; Moroz V.V., Chernysh A.M., Kozlova E.K., Borshegovskaya P.Y., Bliznjuk U.A., Rysaeva R.M., Gudkova O.Y. Comparison of red blood cell membrane microstructure after different physicochemical influences: atomic force microscope research. J. Crit. Care. 2010; 25 (3): 539.e1-539.e12. DOI:10.1016/j.jcrc.2010.02.007. PMID: 20381299; Roduit C., van der Goot F.G., De Los Rios P., Yersin A., Steiner P., Dietler G., Catsicas S., Lafont F., Kasas S. Elastic membrane heterogeneity of living cells revealed by stiff nanoscale membrane domains. Biophys. J. 2008; 94 (4): 1521-1532. DOI:10.1529/biophysj.107.112862. PMID: 17981897; Voïtchovsky K., Antoranz Contera S., Kamihira M., Watts A., Ryan J.F. Differential stiffness and lipid mobility in the leaflets of purple membranes. Biophys. J. 2006; 90 (6): 2075-2085. DOI:10.1529/biophysj.105.072405. PMID: 16387758; Kuznetsova T.G., Starodubtseva M.N., Yegorenkov N.I., Chizhik S.A., Zhdanov R.I. Atomic force microscopy probing of cell elasticity. Micron. 2007; 38 (8): 824–833. DOI:10.1016/j.micron.2007.06.011. PMID: 17709250; Rabinovich Y.I., Daosukho S., Byer K.J., El-Shall H.E., Khan S.R. Direct AFM measurements of adhesion forces between calcium oxalate monohydrate and kidney epithelial cells in the presence of Ca2+ and Mg2+ ions. J. Colloid. Interface Sci. 2008; 325 (2): 594-601. DOI:10.1016/j.jcis.2008.06.024. PMID: 18619606; Bálint Z., Krizbai I.A., Wilhelm I., Farkas A.E., Párducz A., Szegletes Z., Váró G. Changes induced by hyperosmotic mannitol in cerebral endothelial cells: an atomic force microscopic study. Eur. Biophys. J. 2007; 36 (2): 113-120. DOI:10.1007/s00249-006-0112-4. PMID: 17115151; Kasas S., Dietler G. Probing nanomechanical properties from biomolecules to living cells. Pflugers. Arch. 2008; 456 (1): 13-27. DOI:10.1007/s00424-008-0448-y. PMID: 18213477; Zhao C.X., Shao H.B., Chu L.Y. Aquaporin structure-function relationships: water flow through plant living cells. Colloids Surf. B. Biointerfaces. 2008; 62 (2): 163-172. DOI:10.1016/j.colsurfb.2007.10.015. PMID: 18063350; Volle C.B., Ferguson M.A., Aidala K.E., Spain E.M., Núñez M.E. Quantitative changes in the elasticity and adhesive properties of Escherichia coli ZK1056 prey cells during predation by bdellovibrio bacteriovorus. Langmuir. 2008; 24 (15): 8102-8110. DOI:10.1021/la8009354. PMID: 18572929; Vadillo-Rodriguez V., Beveridge T.J., Dutcher J.R. Surface viscoelasticity of individual gram-negative bacterial cells measured using atomic force microscopy. J. Bacteriol. 2008; 190 (12): 4225-4232. DOI:10.1128/JB.00132-08. PMID: 18408030; Azeloglu E.U., Costa K.D. Dynamic AFM elastography reveals phase dependent mechanical heterogeneity of beating cardiac myocytes. Conf. Proc. IEEE Eng. Med. Biol. Soc. 2009; 2009: 7180-7183. DOI:10.1109/IEMBS.2009.5335316. PMID: 19965272; Franze K. Atomic force microscopy and its contribution to understanding the development of the nervous system. Curr. Opin. Genet. Dev. 2011; 21 (5): 530-537. DOI:10.1016/j.gde.2011.07.001. PMID: 21840706; Lekka M., Fornal M., Pyka-Fos´ciak G., Lebed K., Wizner B., Grodzicki T., Styczeñ J. Erythrocyte stiffness probed using atomic force microscope. Biorheology. 2005; 42 (4): 307-317. PMID: 16227; Picas L., Milhiet P.E., Hernández-Borrell J. Atomic force microscopy: a versatile tool to probe the physical and chemical properties of supported membranes at the nanoscale. Chem. Phys. Lipids. 2012; 165 (8): 845-860. DOI:10.1016/j.chemphyslip.2012.10.005. PMID: 23194897; Hekele O., Goesselsberger C.G., Gebeshuber I.C. Nanodiagnostics performed on human red blood cells with atomic force microscopy. Mater. Sci. Technol. 2008; 24 (9): 1162-1165. DOI:10.1179/174328408X341834; Sirghi L., Ponti J., Broggi F., Rossi F. Probing elasticity and adhesion of live cells by atomic force microscopy indentation. Eur. Biophys. J. 2008; 37 (6): 935-945. DOI:10.1007/s00249-008-0311-2. PMID: 18365186; Zhang C.Y., Zhang Y.W. Extracting elastic properties and prestress of a cell using atomic force microscopy. J. Mater. Res. 2015; 24 (3): 1167-1171. DOI:10.1557/jmr.2009.0121; Bremmell K.E., Evans A., Prestidge C.A. Deformation and nano-rheology of red blood cells: an AFM investigation. Colloids Surf. B. Biointerfaces. 2006; 50 (1): 43-48. DOI:10.1016/j.colsurfb.2006.03.002. PMID: 16701986; McPhee G., Dalby M.J., Riehle M., Yin H. Can common adhesion molecules and microtopography affect cellular elasticity? A combined atomic force microscopy and optical study. Med. Biol. Eng. Comput. 2010; 48 (10): 1043-1053. DOI:10.1007/s11517-010-0657-3. PMID: 20623199; Fisseha D., Katiyar V.K. Analysis of mechanical behavior of red cell membrane in sickle cell disease. Appl. Mathematics. 2012; 2 (2): 40-46. DOI:10.5923/j.am.20120202.08; Kim Y., Kim K., Park Y.K. Blood cell — an overview of studies in hematology. In: Moschandreou T.E. (ed.). Measurement techniques for red blood cell deformability: recent advances. Rijeka, Croatia; 2012: 167-195. DOI:10.5772/50698; Buys A.V., Van Rooy M.J., Soma P., Van Papendorp D., Lipinski B., Pretorius E. Changes in red blood cell membrane structure in type 2 diabetes: a scanning electron and atomic force microscopy study. Сardiovasc. Diabetol. 2013; 12: 25. DOI:10.1186/1475-2840-12-25. PMID: 23356738; Li M., Liu L., Xi N., Wang Y., Dong Z., Xiao X., Zhang W. Atomic force microscopy imaging and mechanical properties measurement of red blood cells and aggressive cancer cells. Sci. China Life Sci. 2012; 55 (11): 968-973. DOI:10.1007/s11427-012-4399-3. PMID: 23160828; Yu M., Wang J., Wang H., Dong S. Calculation of the intracellular elastic modulus based on an atomic force microscope micro-cutting system. Chin. Sci. Bull. 2012; 57 (15): 1868-1872. DOI:10.1007/s11434-012-5053-y; Kasas S., Wang X., Hirling H., Marsault R., Huni B., Yersin A., Regazzi R., Grenningloh G., Riederer B., Forrò L., Dietler G., Catsicas S. Superficial and deep changes of cellular mechanical properties following cytoskeleton disassembly. Cell. Motil. Cytoskeleton. 2005; 62 (2): 124-132. DOI:10.1002/cm.20086. PMID: 16145686; Sen S., Subramanian S., Discher D.E. Indentation and adhesive probing of a cell membrane with AFM: theoretical model and experiments. Biophys. J. 2005; 89 (5): 3203–3213. DOI:10.1529/biophysj.105.063826. PMID: 16113121; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1625

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1625
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2017-5-58-68

المؤلفون: A. M. Chernysh, E. K. Kozlova, V. V. Moroz, V. A. Sergunova, O. E. Gudkova, E. A. Manchenko, A. P. Kozlov, А. М. Черныш, Е. К. Козлова, В. В. Мороз, В. А. Сергунова, О. Е. Гудкова, Е. А. Манченко, А. П. Козлов

المصدر: General Reanimatology; Том 14, № 2 (2018); 46-59 ; Общая реаниматология; Том 14, № 2 (2018); 46-59 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2018-2

مصطلحات موضوعية: цитофлавин, methemoglobin, oxyhemoglobin, reduction, succinic acid, inosine, riboflavin, nicotinamide, cytoflavin, метгемоглобин, оксигемоглобин, восстановление, янтарная кислота, инозин, рибофлавин, никотинамид

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1679/1211; Bradberry S.M. Occupational methaemoglobinaemia. Mechanisms of production, features, diagnosis and management including the use of methylene blue. Toxicol. Rev. 2003; 22 (1): 13-27. DOI:10.2165/00139709-200322010-00003. PMID: 14579544; Kohn M.C., Melnick R.L., Ye F., Portier C.J. Pharmacokinetics of sodium nitrite-induced methemoglobinemia in the rat. Drug. Metab. Dispos. 2002; 30 (6): 676–683. DOI:10.1124/dmd.30.6.676. PMID: 12019195; Lee J., El-Abaddi N., Duke A., Cerussi A.E., Brenner M., Tromberg B.J. Noninvasive in vivo monitoring of methemoglobin formation and reduction with broadband diffuse optical spectroscopy. J. Appl. Physiol. 2006; 100 (2): 615–622. DOI:10.1152/japplphysiol.00424.2004. PMID: 16223982; Minami M., Katsumata M., Tomoda A. Methemoglobinemia with oxidized hemoglobins and modified hemoglobins found in bloods of workers handling aromatic compounds and in those of a man who drank cresol solution. Biomed. Biochim. Acta. 1990; 49 (2-3): S327-S333. PMID: 2386523; Greenberg M.I. Methylene Blue: fast-acting antidote for methemoglobinemia. Emerg. Med. News. 2001; 23 (9): 26. DOI:10.1097/01.EEM. 0000292322.94148.37; Skold A., Cosco D.L., Klein R. Methemoglobinemia: pathogenesis, diagnosis, and management. South Med. J. 2011; 104 (11): 757–761. DOI:10.1097/SMJ.0b013e318232139f. PMID: 22024786; Kozlova Е., Chernysh А., Moroz V., Sergunova V., Zavialova А., Kuzovlev А. Nanoparticles of perfluorocarbon emulsion contribute to the reduction of methemoglobin to oxyhemoglobin. Int. J. Pharm. 2016; 497 (1): 88-95. DOI:10.1016/j.ijpharm.2015.11.035. PMID: 26626224; CYTOFLAVIN solution for intravenous use. http://eng.polysan.ru/ cytoflavin_amp.htm; Tiuriaeva I.I., Kuranova M.L., Gonchar I.V., Rozanov Iu.M. The energycorrective and antioxidative effect of cytoflavin in the postischemical period of human dermal fibroblasts in vitro. Cell Tiss. Biol. 2012; 6 (4): 367–375. DOI:10.1134/S1990519X1204013X; Rumyantseva S.A., Kovalenko A.L., Silina E.V., Stupin V.A., Kabaeva E.N., Chichanovskaya L.V., Nazarov M.V., Tsukurova L.A., Burenichev D.V., Golikov K.V., Sal’nikov M.V., Belova L.A., Mashin V.V., Mazina N.K., Zhilina E.A., Kolotik-Kameneva O.Yu., Sherman M.A. Efficacy of complex antioxidant energy correction of different durations in the treatment of cerebral infarction (results of a multicenter randomized study). Neurosci. Behav. Physi. 2017; 47 (3): 288–295. DOI:10.1007/s11055-017-0395-1; Bellavia L., DuMond J.F., Perlegas A., Bruce King S., Kim-Shapiro D.B. Nitroxyl accelerates the oxidation of oxyhemoglobin by nitrite. Nitric Oxide. 2013; 31: 38–47. DOI:10.1016/j.niox.2013.03.006. PMID: 23545404; Navati M.S., Friedman J.M. Reactivity of glass-embedded met hemoglobin derivatives toward external NO: implications for nitrite-mediated production of bioactive NO. J. Am. Chem. Soc. 2009; 131 (34): 12273– 12279. DOI:10.1021/ja903364h. PMID: 19663497; Jensen F.B. Nitric oxide formation from nitrite in zebrafish. J. Exp. Biol. 2007; 210 (19): 3387–3394. DOI:10.1242/jeb.008748. PMID: 17872992; Wang D., Piknova B., Solomon S.B., Cortes-Puch I., Kern S.J., Sun J., Kanias T., Gladwin M.T., Helms C., Kim-Shapiro D.B., Schechter A.N., Natanson C. In vivo reduction of cell-free methemoglobin to oxyhemoglobin results in vasoconstriction in canines. Transfusion. 2013; 53 (12): 3149–3163. DOI:10.1111/trf.12162. PMID: 23488474; Katsumata M. An industrial toxicological study on workers who synthesize aminophenol and anisidine from chloronitrobenzene. Nihon. Ika. Daigaku Zasshi. 1994; 61 (6): 590–601. DOI:10.1272/jnms1923.61.590. PMID: 7829653; Patel R.P., Hogg N., Kim-Shapiro D.B. The potential role of the red blood cell in nitrite-dependent regulation of blood flow. Cardiovasc. Res. 2011; 89 (3): 507–515. DOI:10.1093/cvr/cvq323. PMID: 20952416; Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Sergunova V., Gudkova O., Kuzovlev A. Nanodefects of membranes cause destruction of packed red blood cells during long-term storage. Exp. Cell Res. 2015; 337 (2): 192–201. DOI:10.1016/j.yexcr.2015.07.009. PMID: 26169694; Kozlova E., Chernysh A., Moroz V., Gudkova O., Sergunova V., Kuzovlev A. Transformation of membrane nanosurface of red blood cells under hemin action. Sci. Rep. 2014; 4: 6033. DOI:10.1038/srep0603. PMID: 25112597; Kozlova E.K., Chernysh A.M., Moroz V.V., Kuzovlev A.N. Analysis of nanostructure of red blood cells membranes by space fourier transform of AFM images. Micron. 2013; 44: 218–227. DOI:10.1016/j.micron. 2012.06.012. PMID: 22854216; Hopmann K.H., Cardey B., Gladwin M.T., Kim-Shapiro D.B., Ghosh A. Hemoglobin as a nitrite anhydrase: modeling methemoglobin-mediated N2O3 formation. Chemistry. 2011; 17 (23): 6348–6358. DOI:10.1002/chem.201003578. PMID: 21590821; Бузунова С.А. Клинические и патогенетические подходы в терапии нейроинфекций. Вестн. Новгородского Гос. университета. 2011; 62: 101–104.; Гудкова А.Н., Осиновская Н.А., Полунина А.Г., Гехт А.Б. Исследование влияния цитофлавина на симптомы депрессии и вегетативные нарушения у пациентов с органическим депрессивным расстройством. Журн. неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2013; 113 (12-1); 50-55. PMID: 24430035; Ponomarev E.A., Maskin S.S., Strepetov N.N., Mochailo Yu.A., Pchelintsev K. E. Pharmacological neuroprotection of the brain during carotid artery surgery. Neurosci. Behav. Physi. 2013; 43 (1): 76–78. DOI:10.1007/ s11055-012-9693-9; Kim H.M., Jung H.S., Shin H.Y., Jung K.Y. Inhibition of mast cell-dependent anaphylaxis by succinic acid. Pharmacol. Toxicol. 1999; 84 (4): 154-158. DOI:10.1111/j.1600-0773.1999.tb00892.x. PMID: 10227065; Зарубина И.В., Лукк М.В., Шабанов П.Д. Антигипоксические и антиоксидантные эффекты экзогенной янтарной кислоты и аминотиоловых сукцинатсодержащих антигипоксантов. Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2012; 153 (3): 313-317. DOI:10.1007/s10517-012-1709-5. PMID: 22866305; Ericson D., Thompson J. Arginine-containing compositions and methods for treating red blood cells. Patent № US 8,980,542 B2.; Livesey S., Burnett M., Connor J., Wagner C. Composition for cryopreservation comprising nicotinamide, glycerol and red blood cells. Patent № US 8,895,236 B2.; Vasilaki A., McMillan D., Kinsella J., Duncan A., O’Reilly D., Talwar D. Relation between riboflavin, flavin mononucleotide and flavin adenine dinucleotide concentrations in plasma and red cells in patients with critical illness. Clin. Chim. Acta. 2010; 411 (21-22): 1750–1755. DOI:10.1016/j.cca.2010.07.024. PMID: 20667447; Orita A., Verde M., Sakai M., Meng Y.A biomimetic redox flow battery based on flavin mononucleotide. Nat. Commun. 2016; 7: 13230. DOI:10.1038/ncomms13230. PMID: 27767026; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1679

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1679
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2018-2-46-59

المؤلفون: Люріна Т. І., Люріна Т. І., Мороз В. В., Мороз В. В.

المصدر: Actual problems of sociology, psychology, pedagogy; № 31 (2016): АКТУАЛЬНІ ПРОБЛЕМИ СОЦІОЛОГІЇ, ПСИХОЛОГІЇ, ПЕДАГОГІКИ ; АКТУАЛЬНІ ПРОБЛЕМИ СОЦІОЛОГІЇ, ПСИХОЛОГІЇ, ПЕДАГОГІКИ; № 31 (2016): АКТУАЛЬНІ ПРОБЛЕМИ СОЦІОЛОГІЇ, ПСИХОЛОГІЇ, ПЕДАГОГІКИ ; ISSN 2311-214X

وصف الملف: application/pdf

Relation: http://apspp.soc.univ.kiev.ua/index.php/home/article/view/793/674; http://apspp.soc.univ.kiev.ua/index.php/home/article/view/793

الاتاحة: http://apspp.soc.univ.kiev.ua/index.php/home/article/view/793

المؤلفون: S. A. Perepelitsa, A. M. Golubev, V. V. Moroz, С. А. Перепелица, А. М. Голубев, В. В. Мороз

المصدر: General Reanimatology; Том 12, № 6 (2016); 16-26 ; Общая реаниматология; Том 12, № 6 (2016); 16-26 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2016-6

مصطلحات موضوعية: экзогенные сурфактанты, lung microcirculation, preterm infants, respiratory distresssyndrome, exoge nous surfactants, микроциркуляция легких, недоношенные новорожденные, респираторный дистресссиндромом

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1559/1069; Баранов А.А., НамазоваБаранова Л.С., Альбицкий В.Ю., Терлецкая Р.Н. Тенденции младенческой смертности в Российской Федерации в 1990—2012 г.г. Вестник РАМН. 2014; 11–12: 31–38. PMID: 25971124; Sweet D.G., Carnielli V., Greisen G., Hallman M., Ozek E., Plavka R., Saugstad O.D., Simeoni U., Speer C.P., Vento M., Halliday H.L.; European Association of Perinatal Medicine. European consensus guidelines on the management of neonatal respiratory distress syndrome in preterm infants – 2013 update. Neonatology. 2013; 103 (4): 353–368. http://dx.doi.org/10.1159/000349928. PMID: 23736015; Мороз В.В., Голубев А.М., Перепелица С.А. Респираторный дистресссиндром новорожденных. Патогенез, диагностика, клиника, лечение. Саарбрюкен: Palmarium Academic Publishing; 2014: 127.; Ковтун О.П., Цывьян П.Б. Преждевременное рождение и программирование заболеваний. Вклад интенсивной терапии. Вопр. совр. педиатрии. 2014; 13 (5): 26–30. http://dx.doi.org/10.15690/vsp.v13i5.1146; Лебедева О.В., Чикина Т.А. Факторы риска ранней неонатальной смертности у новорожденных с очень низкой и экстремально низкой массой тела при рождении. Вопр. совр. педиатрии. 2014; 13 (6): 35–39. http://dx.doi.org/10.15690/vsp.v13i6.1199; Ramanathan R. Surfactant therapy in preterm infants with respiratory distress syndrome and in nearterm of term newborns with acute RDS. J. Perinatol. 2006; 26 (Suppl 1): S51–S56. http://dx.doi.org/10.1038/sj.jp.7211474. PMID: 16625226; Fratto V.M., Ananth C.V., GyamfiBannerman C. Late preterm neonatal morbidity in hypertensive versus normotensive women. Hypertens Pregnancy. 2016; 35 (2): 241–249. http://dx.doi.org/10.3109/10641955.2016.1139720. PMID: 26930156; Рыжановский Б.Я., Лебедько О.А. Формирование гиалиновых мембран в легких белых крыс как результат воздействия блеомицина в неонатальном периоде. Бюл. экспер. биологии и медицины. 2015; 160 (9): 379–383.; Перепелица С.А. Заместительная терапия сурфактантом «Альвеофакт» респираторного дистресссиндрома у новорожденных (пилотное исследование). Общая реаниматология. 2014; 10 (4): 44–50. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201444450; Перепелица С.А., Лучина А.А. Ингаляционная сурфактанттерапия у новорожденных при искусственной вентиляции легких. Общая реаниматология. 2014; 10 (5): 44–51. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201454451; Reuter S., Moser C., Baack M. Respiratory distress in the newborn. Pediatr. Rev. 2014; 35 (10): 417–428. http://dx.doi.org/10.1542/pir.3510417. PMID: 252744969; Голубев А.М., Перепелица С.А., Смердова Е.Ф., Мороз В.В. Клинико-морфологические особенности дыхательных расстройств у недоношенных новорожденных. Общая реаниматология. 2008; 4 (3): 49–55. http://dx.doi.org/10.15360/181397792008349; Hermansen C.L., Mahajan A. Newborn respiratory distress. Am. Fam. Physician. 2015; 92 (11): 994–1002. PMID: 26760414; Давыдова И.В., Аникин А.В., Кустова О.В., Сиденко А.В., Басаргина Е.Ю., Павлюкова Е.В., Пожарищенская В.К. Бронхолегочная дисплазия в постсурфактантную эру: результаты объективной оценки течения заболевания. Вопр. совр. педиатрии. 2015; 14 (4): 514–518. http://dx.doi.org/10.15690/vsp.v14.i4.1392; Porzionato A., Guidolin D., Macchi V., Sarasin G., Grisafi D., Tortorella C., Dedja A., Zaramella P., De Caro R. Fractal analysis of alveolarization in hyperoxiainduced rat models of bronchopul monary dysplasia. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 2016; 310(7): L680– L688. http://dx.doi.org/10.1152/ajplung.00231.2015. PMID: 26851258; Whitsett J.A., Weaver T.E. Alveolar development and disease. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2015; 53 (1): 1–7. http://dx.doi.org/10.1165/rcmb.20150128PS. PMID: 25932959; Truog W.E., Xu D., Ekekezie I.I., Mabry S., Rezaiekhaligh M., Svojanovsky S., Soares M.J. Chronic hypoxia and rat lung development: analysis by morphometry and directed microarray. Pediatr. Res. 2008; 64 (1): 56–62. http://dx.doi.org/10.1203/PDR.0b013e31817289f2. PMID: 18344904; van Heijst A., Haasdijk R., Groenman F., van der Staak F., Hulsbergen van de Kaa C., de Krijger R., Tibboel D. Morphometric analysis of the lung vasculature after extracorporeal membrane oxygenation treatment for pulmonary hypertension in newborns. Virchows Arch. 2004; 445 (1): 36–44. http://dx.doi.org/10.1007/s004280041044y. PMID: 15175881; Iliodromiti Z., Zygouris D., Sifakis S., Pappa K.I., Tsikouras P., Salakos N., Daniilidis A., Siristatidis C., Vrachnis N. Acute lung injury in preterm fetuses and neonates: mechanisms and molecular pathways. J. Matern. Fetal. Neonatal. Med. 2013; 26 (17): 1696–1704. http://dx.doi.org/10.3109/14767058.2013.798284. PMID: 23611524; Brat R., Yousef N., Klifa R., Reynaud S., Shankar Aguilera S., De Luca D. Lung ultrasonography score to evaluate oxygenation and surfactant need in neonates treated with continuous positive airway pressure. JAMA Pediatr. 2015; 169 (8): e151797. http://dx.doi.org/10.1001/jamapediatrics.2015.1797. PMID: 26237465; Goldsmith L.S., Greenspan J.S., Rubenstein S.D., Wolfson M.R., Shaffer T.H. Immediate improvement in lung volume after exogenous surfactant: alveolar recruitment versus increased distention. J. Pediatr. 1991; 119 (3): 424–428. http://dx.doi.org/10.1016/S00223476(05)820578. PMID: 1880658; Sandberg K.L., Lindstrom D.P., Sjöqvist B.A., Parker R.A., Cotton R.B. Surfactant replacement therapy improves ventilation inhomogeneity in infants with respiratory distress syndrome. Pediatr. Pulmonol. 1997; 24 (5): 337–343. http://dx.doi.org/10.1002/(SICI)10990496(199711)24:5%3C337::AIDPPUL6%3E3.3.CO;2E. PMID: 9407567; Auten R.L., Notter R.H., Kendig J.W., Davis J.M., Shapiro D.L. Surfactant treatment of fullterm newborns with respiratory failure. Pediatrics. 1991; 87 (1): 101–107. PMID: 1984603; Clyman R.I., Jobe A., Heymann M., Ikegami M., Roman C., Payne B., Mauray F. Increased shunt through the patent ductus arteriosus after surfactant replacement therapy. J. Pediatr. 1982; 100 (1): 101–107.PMID: 6948942; Heldt G.P., Pesonen E., Merritt T.A., Elias W., Sahn D.J. Closure of the ductus arteriosus and mechanics of breathing in preterm infants after surfactant replacement therapy. Pediatr. Res. 1989; 25 (3): 305–310. http://dx.doi.org/10.1203/0000645019890300000020. PMID: 2649864; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1559

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1559
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2016-6-16-26

المؤلفون: A. M. Golubev, V. V. Moroz, E. K. Kozlova, V. A. Sergunova, O. E. Gudkova, M. A. Golubev, V. N. Kalinichenko, A. M. Chernysh, А. М. Голубев, В. В. Мороз, Е. К. Козлова, В. А. Сергунова, О. Е. Гудкова, М. А. Голубев, В. Н. Калиничеснко, А. М. Черныш

المصدر: General Reanimatology; Том 12, № 5 (2016); 8-15 ; Общая реаниматология; Том 12, № 5 (2016); 8-15 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2016-5

مصطلحات موضوعية: атомная силовая микроскопия, atherosclerotic plaques, nanostructure, atomicforce microscopy, атеросклеротические бляшки, ниодекс, наноструктура

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1549/1059; Dou Y., Guo J., Chen Y., Han S., Xu X., Shi Q., Jia Y., Liu Y., Deng Y., Wang R., Li X., Zhang J. Sustained delivery by a cyclodextrin material based nanocarrier potentiates antiatherosclerotic activity of rapamycin via selectively inhibiting mTORC1 in mice. J. Control. Release. 2016; 235: 48–62. http://dx.doi.org/10.1016/j.jconrel.2016.05.049. PMID: 27235978; Zimmer S., Grebe A., Bakke S.S., Bode N., Halvorsen B., Ulas T., Skjelland M., De Nardo D., Labzin L.I., Kerksiek A., Hempel C., Heneka M.T., Hawxhurst V., Fitzgerald M.L., Trebicka J., Björkhem I., Gustafsson J.Е., Westerterp M., Tall A.R., Wright S.D., Espevik T., Schultze J.L., Nickenig G., Lütjohann D., Latz E. Cyclodextrin promotes atherosclerosis regres sion via macrophage reprogramming. Sci. Transl. Med. 2016; 8 (333):333ra50. http://dx.doi.org/10.1126/scitranslmed.aad6100. PMID: 27053774; Wagner E.M., Jen K.L., Artiss J.D., Remaley A.T. Dietary alpha cyclodextrin lowers lowdensity lipoprotein cholesterol and alters plasma fatty acid profile in lowdensity lipoprotein receptor knockout mice on a highfat diet. Metabolism. 2008; 57 (8): 1046–1051. http://dx.doi.org/10.1016/j.metabol.2008.02.020. PMID: 18640380; Kilsdonk E.P., Yancey P.G., Stoudt G.W., Bangerter F.W., Johnson W.J., Phillips M.C., Rothblat G.H. Cellular cholesterol efflux mediated by cyclodextrins. J. Biol. Chem. 1995; 270 (29): 17250–17256. http://dx.doi.org/10.1074/jbc.270.29.17250. PMID:7615524; Генс А.П., Иванова А.Г., Чарчян Э.Р., Степаненко А.Б. Гистоморфологические особенности аорты и клапанов сердца при синдроме Марфана и болезни Эрдгейма. Клин. и эксперим. хирургия. Журн. им. акад. Б.В. Петровского. 2015; 2: 25–32.; Kozlova E.K., Chernysh A.M., Moroz V.V., Kuzovlev A.N. Analysis of nanostructure of red blood cells membranes by space Fourier transform of AFM images. Micron. 2013; 44: 218– 227. http://dx.doi.org/10.1016/j.micron.2012.06.012. PMID: 22854216; Moroz V.V., Chernysh A.M., Kozlova E.K., Borshegovskaya P.Y., Bliznjuk U.A., Rysaeva R.M., Gudkova O.E. Comparison of red blood cell mem brane microstructure after different physicochemical influences: atomic force microscope research. J. Crit. Care. 2010; 25 (3): 539.e1–539.e12.; Мороз В.В., Сергунова В.А., Назаров Б.Ф., Козлова Е.К., Черныш А.М., Власов И.Б. Изменения наноструктуры мембран красных клеток крови при кровопотере на этапах хирургического лечения у больных при операциях на спинном мозге. Общая реаниматология. 2013; 9 (2): 5–11. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201325; Мороз В.В., Черныш А.М., Козлова Е.К., Гудкова О.Е., Сергунова В.А., Мягкова Е.А., Кузовлев А.Н. Методика микроскопического анализа мембран эритроцитов. Общая реаниматология. 2013; 9 (5): 62–67. http://dx.doi.org/10.15360/181397792013562; Сергунова В.А., Козлова Е.К., Мягкова Е.А., Черныш А.М. Измерение упругоэластичных свойств мембраны нативных эритроцитов in vitro. Общая реаниматология. 2015; 11 (3): 39–44. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201533944; Сергунова В.А., Гудкова О.Е., Козлов А.П., Черныш А.М. Измерение локальной жесткости мембран эритроцитов с помощью атомносиловой спектроскопии. Общая реаниматология. 2013; 9 (1): 14–17. http://dx.doi.org/10.15360/181397792013114; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1549

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1549
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2016-5-8-15

المؤلفون: V. V. Moroz, I. S. Novoderzhkina, A. V. Afanasyev, Yu. V. Zarzhetsky, I. A. Ryzhkov, E. K. Kozlova, A. M. Chernysh, В. В. Мороз, И. С. Новодержкина, А. В. Афанасьев, Ю. В. Заржецкий, И. А. Рыжков, Е. К. Козлова, А. М. Черныш

المصدر: General Reanimatology; Том 13, № 2 (2017); 32-39 ; Общая реаниматология; Том 13, № 2 (2017); 32-39 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2017-2

مصطلحات موضوعية: наноструктура мембран эртроцитов, reperfusion period, perftoran, stomatocyte, discocyte, nanostructure of RBC membrane, реперфузионный период, перфторан, стоматоцит, дискоцит

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1583/1085; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1583/1121; Мороз В.В., Новодержкина И.С., Антошина Е.М., Афанасьев А.В., Рыжков И.А., Заржецкий Ю.В. Коррекция пойкилоцитоза и биохимических показателей крови при острой кровопотере. Общая реаниматология. 2015; 11 (3): 6–15. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2015-3-6-15; Сергунова В.А., Манченко Е.А., Гудкова О.Е. Гемоглобин: модификации, кристаллизация, полимеризация (обзор). Общая реаниматология. 2016; 12 (6): 49–63. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779- 2016-6-49-63; Лазаренко Д.Ю., Ханевич М.Д., Софронов Г.А., Андреева Н.Б., Поддубский Г.А. Влияние перфторана на микроциркуляцию и реологические свойства крови у больных с гастродоуденальными кровотечениями. В кн.: Перфторуглеродные соединения в медицине и биологии. Пущино; 2002: 30–35.; Кузнецова И.Н., Волкова С.Д., Рыбакова Л.П., Юрченко В.С., Кочеткова Г.А. Эмульсии перфторуглеводов влияют на морфо-функциональное состоянии клеток крови – эритроцитов и лейкоцитов in vitro. Вестн. службы крови России. 2009; 2: 23–26.; Терешина Е.В., Афонин H.H. Особенности взаимодействия частиц эмульсии перфторсоединений с липидами в процессе циркуляции в кровеносном русле. Хим.-фарм. журн. 1994; 28 (8): 12–15.; Bessis M. Atlas of red blood cell shapes. N."Y.: Springer"Verlag Berlin Heidelberg; 1974: 21—101.; Карташова Н.М., Кидалов В.Н., Наумова Э.М., Хадарцев А.А., Цогоев А.С. К вопросу о физиологической значимости изменений фор мы, ультраструктуры и флуоресценции эритроцитов периферической крови, трансформирующихся в стоматоциты. Вестн. новых мед. технологий. 2005; 12 (1): 8–11.; Kozlova E.K., Chernysh A.M., Moroz V.V., Kuzovlev A.N. Analysis of nanostructure of red blood cells membranes by space Fourier transform of AFM images. Micron. 2013; 44: 218–227. http://dx.doi.org/10.1016/ j.micron.2012.06.012. PMID: 22854216; Кононенко В.Л. Фликкер эритроцитов. 2. Результаты экспериментальных исследований. Биол. мембраны. 2009; 26 (6): 451–467.; Мороз В.В., Черныш А.М., Козлова Е.К., Кирсанова А.К., Новодержкина И.С., Александрин В.В., Борщеговская П.Ю., Близнюк У.А., Рысаева Р.М. Атомная силовая микроскопия структуры мембран эритроцитов при острой кровопотере и реинфузии. Общая реаниматология. 2009; 5 (5): 5–15. http://dx.doi.org/10.15360/ 1813-9779-2009-5-5; Takeuchi M., Miyamoto H., Sako Y., Komizu H., Kusumi A. Structure of the erythrocyte membrane skeleton as observed by atomic force microscopy. Biophys. J. 1998; 74 (5): 2171–2183. http://dx.doi.org/ 10.1016/S0006-3495(98)77926-3. PMID: 9591644; Rafikova O., Sokolova E., Rafikov R., Nudler E. Control of plasma nitric oxide bioactivity by perfluorocarbons: physiological mechanisms and clinical implications. Circulation. 2004; 110 (23): 3573–3580. http://dx.doi.org/10.1161/01.CIR.0000148782.37563.F8. PMID: 15557364; Стародубцева М.Н. Термохимические свойства мембран эритроцитов при окислительном стрессе. Журн. Гродненского ГМУ. 2009; 2: 66–67.; Pacher P., Beckman J.S., Ziander J. Nitric oxide and peroxynitrite in health and disease. Phisiol. Rev. 2007; 87 (1): 315–424. http://dx.doi.org/ 10.1152/physrev.00029.2006. PMID: 17237348; Kosaka H., Seiyama A. Physiological role of nitric oxide as an enhancer of oxygen transfer from erythrocytes to tissues. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1996; 218 (3): 749–752. http://dx.doi.org/10.1006/ bbrc.1996.0133. PMID: 8579585; Kozlova Е., Chernysh А., Moroz V., Sergunova V., Zavialova А., Kuzovlev А. Nanoparticles of perfluorocarbon emulsion contribute to the reduc" tion of methemoglobin to oxyhemoglobin. Int. J. Pharm. 2016; 497 (1–2): 88–95. http://dx.doi.org/10.1016/j.ijpharm.2015.11.035. PMID: 26626224; Зинчук В.В. Газотранспортная функция крови и NO. Журн. Гродненского ГМУ. 2009; 2: 34–37.; Мороз В.В., Новодержкина И.С., Антошина Е.М., Афанасьев А.В., Рыжков И.А., Заржецкий Ю.В. Коррекция пойкилоцитоза и биохимических показателей крови при острой кровопотере. Общая реаниматология. 2015; 11 (3): 6–15. http://dx.doi.org/10.15360/ 1813-9779-2015-3-6-15; Мороз В.В., Атауллаханов Ф.И., Радаев С.М., Остапченко Д.А., Лисовская И.Л., Розенберг Ю.М. Влияние перфторана на морфологию и реологические свойства эритроцитов у больных с тяжелой травмой и кровопотерей. Анестезиология и реаниматология. 2001; 6: 22–25. PMID: 11855054; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1583

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1583
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2017-2-32-39

المؤلفون: V. V. Moroz, I. A. Ryzhkov, В. В. Мороз, И. А. Рыжков

المصدر: General Reanimatology; Том 12, № 5 (2016); 65-94 ; Общая реаниматология; Том 12, № 5 (2016); 65-94 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2016-5

مصطلحات موضوعية: видеомикроскопия, reperfusion, microcirculation, vasomotion, fluxmotion, regional blood flow, LDF, videomicroscopy, реперфузия, микроциркуляция, вазомоции, флаксмоции, регио нарный кровоток, ЛДФ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1555/1065; Козлов В.И. Система микроциркуляции крови: клинико-морфологические аспекты изучения. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2006; 5 (1): 84–101.; Roustit M., Cracowski J.L. Noninvasive assessment of skin microvascu lar function in humans: an insight into methods. Microcirculation. 2012; 19 (1): 47–64. http://dx.doi.org/10.1111/j.15498719.2011.00129.x. PMID: 21883640; Kerger H., Tsai A.G., Saltzman D.J., Winslow R.M., Intaglietta M. Fluid resuscitation with O2 vs. nonO2 carriers after 2 h of hemorrhagic shock in conscious hamsters. Am. J. Physiol. 1997; 272 (1 Pt 2): H525–H537. PMID: 9038975; Токмакова Т.О., Пермякова С.Ю., Киселева А.В., Шукевич Д.Л., Григорьев Е.В. Мониторинг микроциркуляции в критических состояниях: возможности и ограничения. Общая реаниматология. 2012; 8 (2): 74–78. http://dx.doi.org/10.15360/181397792012274; De Backer D., OspinaTascon G., Salgado D., Favory R., Creteur J., Vincent J.L. Monitoring the microcirculation in the critically ill patient: current methods and future approaches. Intensive Care Med. 2010; 36 (11): 1813–1825. http://dx.doi.org/10.1007/s0013401020053. PMID: 20689916; Eriksson S., Nilsson J., Sturesson C. Noninvasive imaging of microcircu lation: a technology review. Med. Devices (Auckl). 2014; 7: 445–452. http://dx.doi.org/10.2147/MDER.S51426. PMID: 25525397; Groner W., Winkelman J.W., Harris A.G., Ince C., Bouma G.J., Messmer K., Nadeau R.G. Orthogonal polarization spectral imaging: a new method for study of the microcirculation. Nat. Med. 1999; 5 (10): 1209–1212. http://dx.doi.org/10.1038/13529. PMID: 10502828; Goedhart P., Khalilzada M., Bezemer R., Merza J., Ince C. Sidestream Dark Field (SDF) imaging: a novel stroboscopic LED ringbased imaging modality for clinical assessment of the microcirculation. Optics Express. 2007; 15 (23): 15101–15114. http://dx.doi.org/10.1364/OE.15.015101. PMID: 19550794; Mathura K.R., Vollebregt K.C., Boer K., De Graaff J.C., Ubbink D.T., Ince C. Comparison of OPS imaging and conventional capillary microscopy to study the human microcirculation. J. Appl. Physiol (1985). 2001; 91 (1): 74–78. PMID: 11408415; Harris A.G., Sinitsina I., Messmer K. Validation of OPS imaging for microvascular measurements during isovolumic hemodilution and low hematocrits. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2001; 282 (4): H1502–H1509. http://dx.doi.org/10.1152/ajpheart.00475.2001. PMID: 11893588; De Backer D., Hollenberg S., Boerma C., Goedhart P., Büchele G., OspinaTascon G., Dobbe I., Ince C. How to evaluate the microcircula tion: report of a round table conference. Crit. Care. 2007; 11 (5): 101. http://dx.doi.org/10.1186/cc6118. PMID: 17845716; Nilsson J., Eriksson S., Blind P.J., Rissler P., Sturesson C. Microcirculation changes during liver resection – a clinical study. Microvasc. Res. 2014; 94: 47–51. http://dx.doi.org/10.1016/j.mvr.2014.05.002. PMID: 24840670; Pennings F.A., Ince C., Bouma G.J. Continuous realtime visualization of the human cerebral microcirculation during arteriovenous malforma tion surgery using orthogonal polarization spectral imaging. Neurosurgery. 2006; 59 (1): 167–171. http://dx.doi.org/10.1227/01.NEU.0000219242.92669.3B. PMID: 16823313; Donati A., Domizi R., Damiani E., Adrario E., Pelaia P., Ince C. From macrohemodynamic to the microcirculation. Crit. Care Res. Pract. 2013; 2013: 1–8. http://dx.doi.org/10.1155/2013/892710. PMID: 23509621; Nilsson G.E., Tenland T., Oberg P.A. Evaluation of a laser Doppler flowmeter for measurement of tissue blood flow. IEEE Trans Biomed Eng. 1980; 27 (10): 597–604. http://dx.doi.org/10.1109/TBME.1980.326582. PMID: 6449469; Stefanovska A., Bracic M. Physics of the human cardiovascular system. Contemporary Physics. 1999; 40 (1): 31–35. http://dx.doi.org/10.1080/001075199181693; Крупаткин А.И., Сидоров В.В. Лазерная допплеровская флоуметрия микроциркуляции крови. Руководство для врачей. М.: Медицина; 2005: 256.; Козлов В.И., Азизов Г.А., Гурова О.А., Литвин Ф.Б. Лазерная допплеровская флоуметрия в оценке состояния и расстройств микроциркуляции крови. Методическое пособие для врачей. М.: РУДН; 2012: 32.; Borgström P., Schmidt J.A., Bruttig S.P., Intaglietta M., Arfors K.E. Slow wave flowmotion in rabbit skeletal muscle after acute fixedvolume hemorrhage. Circ. Shock. 1992; 36 (1): 57– 61. PMID: 1551185; Tonnesen J., Pryds A., Larsen E.H., Paulson O.B., Hauerberg J., Knudsen G.M. Laser Doppler flowmetry is valid for measurement of cerebral blood flow autoregulation lower limit in rats. Exp. Physiol. 2005; 90 (3): 349–355. http://dx.doi.org/10.1113/expphysiol.2004.029512. PMID:15653714; Рыжков И.А., Кирсанова А.К., Заржецкий Ю.В. Амплитудночастотный спектр колебаний мозгового кровотока при геморрагическом шоке. Общая реаниматология. 2014; 10 (2): 6–17. http://dx.doi.org/10.15360/1813977920142617; Forrester K.R., Tulip J., Leonard C., Stewart C., Bray R.C. A laser speck le imaging technique for measuring tissue perfusion. IEEE Trans Biomed Eng. 2004; 51 (11): 2074– 2084. http://dx.doi.org/10.1109/TBME.2004.834259. PMID: 15536909; Briers J.D. Laser Doppler, speckle and related techniques for blood per fusion mapping and imaging. Physiol. Meas. 2001; 22 (4): R35–R66. http://dx.doi.org/10.1088/09673334/22/4/201. PMID: 11761081; Крупаткин А.И. Колебания кровотока — новый диагностический язык в исследовании микроциркуляции. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2014; 13 (1): 83–99.; Aalkjær C., Boedtkjer D., Matchkov V. Vasomotion — what is currently thought? Acta Physiol. (Oxf). 2011; 202 (3): 253–269. http://dx. doi.org/10.1111/j.17481716.2011.02320.x. PMID: 21518271; Li Z., Tam E.W., Kwan M.P., Mak A.F., Lo S.C., Leung M.C. Effects of prolonged surface pressure on the skin blood flowmotions in anaes thetized rats—an assessment by spectral analysis of laser Doppler flowmetry signals. Phys. Med. Biol. 2006; 51 (10): 2681–94. http://dx.doi.org/10.1088/00319155/51/10/020. PMID: 16675876; Александрин В.В. Вейвлетанализ мозгового кровотока у крыс. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2010; 9 (4): 63–66.; Colantuoni A., Bertuglia S., Intaglietta M. Effects of anesthesia on the spontaneous activity of the microvasculature. Int. J. Microcirc. Clin. Exp. 1984; 3 (1): 13–28. PMID: 6480227; Schmidt J.A., Breit G.A., Borgström P., Intaglietta M. Induced periodic hemodynamics in skeletal muscle of anesthetized rabbits, studied with multiple laser Doppler flow probes. Int. J. Microcirc. Clin. Exp. 1995; 15 (1): 28–36. http://dx.doi.org/10.1159/000178946. PMID: 7558623; SchmidtLucke C., Borgström P., SchmidtLucke J.A. Low frequency flowmotion/(vasomotion) during pathophysiological conditions. Life Sci. 2002; 71 (23): 2713–2728. PMID: 12383879; Sakurai T., Terui N. Effects of sympathetically induced vasomotion on tissuecapillary fluid exchange. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 2006; 291 (4): H1761–H1767. http://dx.doi.org/10.1152/ajpheart.00280.2006. PMID: 16731646; Thorn C.T., Kyte H., Slaff D.W., Shore A.C. An association between vasomotion and oxygen extraction. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 2011; 301 (2): H442–H449. http://dx.doi.org/10.1152/ajpheart.01316.2010. PMID: 21602466; Intaglietta M. Vasomotion and flowmotion: physiological mechanisms and clinical evidence. Vasc. Med. 1990; 1 (2): 101–112. http://dx.doi.org/10.1177/1358836X9000100202; Knotzer H., Hasibeder W.R. Microcirculatory function monitoring at the bedside – a view from the intensive care. Physiol. Meas. 2007; 28 (9): R65–R86. http://dx.doi.org/10.1088/09673334/28/9/R01.PMID: 17827646; De Backer D., Donadello K., Cortes D.O. Monitoring the microcircula tion. J. Clin. Monit. Comput. 2012; 26 (5): 361–366. http://dx.doi.org/10.1007/s1087701293838. PMID: 22833180; Мороз В.В., Рыжков И.А. Острая кровопотеря: регионарный кровоток и микроциркуляция (обзор, часть I). Общая реаниматология. 2016; 12 (2): 66–89. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201626689; Морман Д., Хеллер Л. Физиология сердечнососудистой системы. СПб.: Питер; 2000: 256.; Schlichtig R., Kramer D.J., Pinsky M.R. Flow redistribution during progressive hemorrhage is a determinant of critical O2 delivery. J. Appl. Physiol (1985). 1991; 70 (1): 169–178. PMID: 2010373; Вицлеб Э. Функции сосудистой системы. В кн.: Шмидт Р., Тевс Г. (ред.). Физиология человека. М.: Мир; 2004: 498–566.; Braverman I.M., Keh A., Goldminz D. Correlation of laser Doppler wave patterns with underlying microvascular anatomy. J. Invest. Dermatol. 1990; 95 (3): 283–286. http://dx.doi.org/10.1111/15231747.ep12484917. PMID: 2143522; Bond R.F. A review of the skin and muscle hemodynamics during hem orrhagic hypotension and shock. Adv. Shock Res. 1982; 8: 53–70. PMID: 6753542; Colantuoni A., Bertuglia S., Intaglietta M. Microvessel diameter changes during hemorrhagic shock in unanesthetized hamsters. Microvasc. Res. 1985; 30 (2): 133–142. http://dx.doi.org/10.1016/00262862(85)900457. PMID: 4046867; Sakai H., Hara H., Tsai A.G., Tsuchida E., Johnson P.C., Intaglietta M. Changes in resistance vessels during hemorrhagic shock and resuscita tion in conscious hamster model. Am. J. Physiol. 1999; 276 (2 Pt 2):H563–H571. PMID: 9950858; Kerger H., Waschke K.F., Ackern K.V., Tsai A.G., Intaglietta M. Systemic and microcirculatory effects of autologous whole blood resuscitation in severe hemorrhagic shock. Am. J. Physiol. 1999; 276 (6 Pt 2): H2035–H2043. PMID: 10362685; Kaiser M.L., Kong A.P., Steward E., Whealon M., Patel M., Hoyt D.B., Cinat M.E. Laser Doppler imaging for early detection of hemorrhage. J. Trauma. 2011; 71 (2): 401–406. http://dx.doi.org/10.1097/TA.0b013e318225458c. PMID: 21825944; Pestel G.J., Fukui K., Kimberger O., Hager H., Kurz A., Hiltebrand L.B. Hemodynamic parameters change earlier than tissue oxygen tension in hemorrhage. J. Surg. Res. 2010; 160 (2): 288–293. http://dx.doi.org/10.1016/j.jss.2008.11.002. PMID: 19482294; Рыжков И.А., Новодержкина И.С., Заржецкий Ю.В. Амплитудночастотный спектр колебаний кожного кровотока при острой кровопотере (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2014; 10 (5): 6–17. http://dx.doi.org/10.15360/ 1813977920145617; Рыжков И.А., Новодержкина И.С., Заржецкий Ю.В. Влияние перфторана на регуляцию кожного кровотока при острой кровопотере (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2015; 11 (6): 19–27. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201561927; Косовских А.А., Чурляев Ю.А., Кан С.Л., Лызлов А.Н., Кирсанов Т.В., Вартанян А.Р. Центральная гемодинамика и микроциркуляция при критических состояниях. Общая реаниматология. 2013; 9 (1): 18–22. http://dx.doi.org/10.15360/181397792013118; Borgström P., Bruttig S.P., Lindbom L., Intaglietta M., Arfors K.E. Microvascular responses in rabbit skeletal muscle after fixed volume hemorrhage. Am. J. Physiol. 1990; 259 (1 Pt 2): H190–H196. PMID: 2375405; Zhao K.S., Junker D., Delano F.A., Zweifach B.W. Microvascular adjust ments during irreversible hemorrhagic shock in rat skeletal muscle. Microvasc. Res. 1985; 30 (2): 143–153. PMID: 2931578; Gutierrez G., Marini C., Acero A.L., Lund N. Skeletal muscle PO2 during hypoxemia and isovolemic anemia. J. Appl. Physiol. 1990; 68 (5): 2047–2053. PMID: 2361907; Parthasarathi K., Lipowsky H.H. Capillary recruitment in response to tissue hypoxia and its dependence on red blood cell deformability. Am. J. Physiol. 1999; 277 (6 Pt 2): H2145–H2157. PMID: 10600832; Meyer J.U., Borgström P., Lindbom L., Intaglietta M. Vasomotion pat terns in skeletal muscle arterioles during changes in arterial pressure. Microvasc. Res. 1988; 35 (2): 193–203. http://dx.doi.org/10.1016/00262862(88)900623. PMID: 3367792; Schmidt J.A., Borgström P., Intaglietta M. Neurogenic modulation of periodic hemodynamics in rabbit skeletal muscle. J. Appl. Physiol (1985). 1993; 75 (3): 1216–1221. PMID: 8226532; Rücker M., Strobel O., Vollmar B., Roesken F., Menger M.D. Vasomotion in critically perfused muscle protects adjacent tissues from capillary perfusion failure. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2000; 279 (2): H550–H558. PMID: 10924053; Wan Z., Sun S., Ristagno G., Weil M.H., Tang W. The cerebral microcir culation is protected during experimental hemorrhagic shock. Crit. Care Med. 2010; 38 (3): 928–932. http://dx.doi.org/10.1097/CCM.0b013e3181cd100c. PMID: 20068466; Dubin A., Pozo M.O., Ferrara G., Murias G., Martins E., Canullán C., Canales H.S., Kanoore Edul V.S., Estenssoro E., Ince C. Systemic and microcirculatory responses to progressive hemorrhage. Intensive Care Med. 2009; 35 (3): 556–564. http://dx.doi.org/10.1007/s0013400813850. PMID: 19127356; Torres Filho I.P., Contaifer Junior D., Garcia S., Neves L. da S. Vasomotion in rat mesentery during hemorrhagic hypotension. Life Sci. 2001; 68 (9): 1057–1065. PMID: 11212869; Fruchterman T.M., Spain D.A., Wilson M.A., Harris P.D., Garrison R.N. Complement inhibition prevents gut ischemia and endothelial cell dys function after hemorrhage/resuscitation. Surgery. 1998; 124 (4): 782–791. http://dx.doi.org/10.1067/msy.1998.91489. PMID: 9781002; Balogh Z., Wolfárd A., Szalay L., Orosz E., Simonka J.A., Boros M. Dalteparin sodium treatment during resuscitation inhibits hemorrhagic shockinduced leukocyte rolling and adhesion in the mesenteric micro circulation. J. Trauma. 2002; 52 (6): 1062–1069. http://dx.doi.org/10.1097/0000537320020600000007. PMID: 12045631; Nakajima Y., Baudry N., Duranteau J., Vicaut E. Microcirculation in intestinal villi: a comparison between hemorrhagic and endotoxin shock. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2001; 164 (8 Pt 1): 1526–1530. http://dx.doi.org/10.1164/ajrccm.164.8.2009065. PMID: 11704607; Vollmar B., Preissler G., Menger M.D. Hemorrhagic hypotension induces arteriolar vasomotion and intermittent capillary perfusion in rat pancreas. Am. J. Physiol. 1994; 267 (5 Pt 2): H1936–H1940. PMID:7977824; Bond R.F., Bond C.H., Johnson G. 3rd. Intrinsic versus extrinsic region al vascular control during hemorrhagic hypotension and shock. Circ. Shock. 1986; 18 (2): 115–129. PMID: 3948337; Chun K., Zhang J., Biewer J., Ferguson D., Clemens M.G. Microcirculatory failure determines lethal hepatocyte injury in ischemic/reperfused rat livers. Shock. 1994; 1 (1): 3– 9. http://dx.doi.org/10.1097/0002438219940100000002. PMID: 7743324; Legrand M., Mik E.G., Balestra G.M., Lutter R., Pirracchio R., Payen D., Ince C. Fluid resuscitation does not improve renal oxygenation during hemorrhagic shock in rats. Anesthesiology. 2010; 112 (1): 119–127. http://dx.doi.org/10.1097/ALN.0b013e3181c4a5e2. PMID: 19996951; Wu C.Y., Yeh Y.C., Chien C.T., Chao A., Sun W.Z., Cheng Y.J. Laser speckle contrast imaging forassessing microcirculatory changes in mul tiple splanchnic organs and the gracilismuscle during hemorrhagic shock and fluid resuscitation. Microvasc. Res. 2015; 101: 55–61. http://dx.doi.org/10.1016/j.mvr.2015.06.003. PMID: 26093177; Burnstock G. Integration of factors controlling vascular tone. Overview. Anesthesiology. 1993; 79 (6): 1368–1380. http://dx.doi.org/10.1097/0000054219931200000029. PMID: 8267212; Kuo L., Chilian W.M., Davis M.J. Interaction of pressure and flow induced responses in porcine coronary resistance vessels. Am. J. Physiol. 1991; 261 (6 Pt 2): H1706–H1715. PMID: 1750529; Vetterlein F., Schmidt G. Effects of propranolol and epinephrine on den sity of capillaries in rat heart. Am. J. Physiol. 1984; 246 (2 Pt 2): H189–H196. PMID: 6696131; Grover G.J., Weiss H.R. Coronary adjustments to graded hypotension in rabbits. Circ. Shock. 1987; 23 (1): 71–80. PMID: 3690816; Horton J.W. Hemorrhagic shock depresses myocardial contractile func tion in the guinea pig. Circ. Shock. 1989; 28 (1): 23–35. PMID: 2731319; Parker J.L., Shelton J.A., Defily D.V., Gute D., Laughlin M.H., Adams H.R. Coronary vascular function after hemorrhagic hypotension in dogs. Circ. Shock. 1993; 41 (2): 119–129. PMID: 8242880; Adachi T., Hori S., Miyazaki K., Nakagawa M., Inoue S., Ohnishi Y., Nakazawa H., Aikawa N., Ogawa S. Inhibition of nitric oxide synthesis aggravates myocardial ischemia in hemorrhagic shock in constant pressure model. Shock. 1998; 9 (3): 204–209. http://dx.doi.org/10.1097/0002438219980300000008. PMID: 9525328; Cabrales P., Tsai A.G., Intaglietta M. Exogenous nitric oxide induces protection during hemorrhagic shock. Resuscitation. 2009; 80 (6): 707–712. http://dx.doi.org/10.1016/j.resuscitation.2009.03.001. PMID: 19362408; Ремизова М.И., Гербут К.А. Роль оксида азота в развитии центра лизации кровообращения при геморрагическом шоке в эксперименте. Бюл. экспер. биологии и медицины. 2014; 157 (1): 27–29. http://dx.doi.org/10.1007/s1051701424824. PMID: 24906962; Horton J.W., Poehlmann D.S. Regional coronary blood flow in canine hemorrhagic shock. Circ. Shock. 1987; 23 (4): 271–283. PMID: 3690819; Kleen M., Habler O., Meisner F., Kemming G., Pape A., Messmer K. Effects of primary resuscitation from shock on distribution of myocar dial blood flow. J. Appl. Physiol. (1985). 2000; 88 (2): 373–385. PMID:10658001; Dolgikh V.T., Meerson P.Z., Merginsky E.M., Rusakov V.V., Korpacheva O.V. Functional metabolic heart impairment after acute lethal hemor rhage followed by resuscitation. Resuscitation. 1991; 21 (2–3): 181–190. http://dx.doi.org/10.1016/03009572(91)90045Z. PMID: 1650021; Kontos H.A., Wei E.P. Oxygendependent mechanisms in cerebral autoregulation. Ann. Biomed. Eng. 1985; 13 (34): 329–334. http://dx.doi.org/ 10.1007/BF02584251. PMID: 4037462; Paulson O.B., Strandgaard S., Edvinsson L. Cerebral autoregulation. Cerebrovasc. Brain Metab. Rev. 1990; 2 (2): 161–192. PMID: 2201348; Kovách A.G. Cerebral circulation in hypoxia and ischemia. Prog. Clin. Biol. Res. 1988; 264: 147–158. PMID: 3289019; Waschke K.F., Riedel M., Lenz C., Albrecht D.M., van Ackern K., Kuschinsky W. Regional heterogeneity of cerebral blood flow response to graded pressurecontrolled hemorrhage. J. Trauma. 2004; 56 (3): 591–603. http://dx.doi.org/10.1097/01.TA.0000075335.35705.E2. PMID: 15128131; Slater G., Vladeck B.C., Bassin R., Brown R.S., Shoemaker W.C. Sequential changes in cerebral blood flow and distribution of flow within the brain during hemorrhagic shock. Ann. Surg. 1975; 181 (1): 1–4. http://dx.doi.org/ 10.1097/0000065819750100000001. PMID: 1119856; Tuor U.I., Farrar J.K. Pial vessel caliber and cerebral blood flow dur ing hemorrhage and hypercapnia in the rabbit. Am. J. Physiol. 1984; 247 (1 Pt 2): H40–H51. PMID: 6742212; Werner C., Lu H., Engelhard K., Unbehaun N., Kochs E. Sevoflurane impairs cerebral blood flow autoregulation in rats: reversal by nonse lective nitric oxide synthase inhibition. Anesth. Analg. 2005; 101 (2): 509–516. http://dx.doi.org/10.1213/01.ANE.0000160586.71403.A4. PMID: 16037169; Jones S.C., Radinsky C.R., Furlan A.J., Chyatte D., PerezTrepichio A.D. Cortical NOS inhibition raises the lower limit of cerebral blood flow arterial pressure autoregulation. Am. J. Physiol. 1999; 276 (4 Pt 2): H1253–H1262. PMID: 10199850; Александрин В.В. Сохранение постоянства напряжения сосудистых стенок пиальных артериол при ауторегуляции мозгового кровотока. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2007; 6 (4): 56–59.; Preckel M.P., Leftheriotis G., Ferber C., Degoute C.S., Banssillon V., Saumet J.L. Effect of nitric oxide blockade on the lower limit of the cortical cerebral autoregulation in pentobarbitalanaesthetized rats. Int. J. Microcirc. Clin. Exp. 1996; 16 (6): 277–283. http://dx.doi.org/10.1159/000179186. PMID: 9049705; Faraci F.M., Baumbach G.L., Heistad D.D. Myogenic mechanisms in the cerebral circulation. J. Hypertens Suppl. 1989; 7 (4): S61–S64. PMID: 2681598; Morita Y., Hardebo J.E., Bouskela E. Influence of cerebrovascular sympathetic, parasympathetic, and sensory nerves on autoregulation and spontaneous vasomotion. Acta Physiol. Scand. 1995; 154 (2): 121–130. http://dx.doi.org/10.1111/j.17481716.1995.tb09894.x. PMID: 7572208; Sharma A.C., Singh G., Gulati A. Decompensation characterized by decreased perfusion of the heart and brain during hemorrhagic shock: role of endothelin1. J. Trauma. 2002; 53 (3): 531–536. http://dx.doi.org/10.1097/01.TA.0000019797.30036.3F. PMID: 12352492; Cavus E., Meybohm P., Doerges V., Hugo H.H., Steinfath M., Nordstroem J., Scholz J., Bein B. Cerebral effects of three resuscitation protocols in uncon trolled haemorrhagic shock: a randomised controlled experimental study. Resuscitation. 2009; 80 (5): 567–572. http://dx.doi.org/10.1016/j.resuscitation.2009.01.013. PMID: 19217706; Navarro L.H., Lima R.M., Khan M., Dominguez W.G., Voigt R.B., Kinsky M.P., Mileski W.J., Kramer G.C. Continuous measurement of cerebral oxygen saturation (rSO2) for assessment of cardiovascular status during hemorrhagic shock in a swine model. J. Trauma Acute Care Surg. 2012; 73 (2 Suppl 1): 140–146. http://dx.doi.org/10.1097/TA.0b013e3182606372. PMID: 22847085; Sun N., Luo W., Li L.Z., Luo Q. Monitoring hemodynamic and metabol ic alterations during severe hemorrhagic shock in rat brains. Acad. Radiol. 2014; 21 (2): 175–184. http://dx.doi.org/10.1016/j.acra.2013.11.017. PMID: 24439331; Александрин В.В. Динамика вейвлетспектра при ауторегуляции мозгового кровотока. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2013; 12 (3): 47–52.; MoritaTsuzuki Y., Bouskela E., Hardebo J.E. Vasomotion in the rat cerebral microcirculation recorded by laserDoppler flowmetry. Acta Physiol. Scand. 1992; 146 (4): 431–439. http://dx.doi.org/10.1111/j.17481716.1992.tb09444.x. PMID: 1492561; MoritaTsuzuki Y., Bouskela E., Hardebo J.E. Effects of nitric oxide synthesis blockade and angiotensin II on blood flow and spontaneous vasomotion in the rat cerebral microcirculation. Acta Physiol. Scand. 1993; 148 (4): 449–454. http://dx.doi.org/10.1111/j.17481716.1993.tb09581.x. PMID: 8213199; Рыжков И.А., Новодержкина И.С., Заржецкий Ю.В. Влияние перфторана на амплитудночастотный спектр колебаний мозгового кровотока при геморрагической гипотензии и в реперфузионном периоде. Общая реаниматология. 2015; 11 (4): 14–22. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201541422; Wan J.J., Cohen M.J., Rosenthal G., Haitsma I.K., Morabito D.J., Derugin N., Knudson M.M., Manley G.T. Refining resuscitation strategies using tissue oxygen and perfusion monitoring in critical organ beds. J. Trauma. 2009; 66 (2): 353–357. http://dx.doi.org/10.1097/TA.0b013e318195e222. PMID: 19204507; Фолков Б., Нил Э. Кровообращение. М.: Медицина; 1976: 463.; Darlington D.N., Jones R.O., Marzella L., Gann D.S. Changes in region al vascular resistance and blood volume after hemorrhage in fed and fasted awake rats. J. Appl. Physiol. (1985). 1995; 78 (6): 2025–2032. PMID: 7665395; Голубев А.М., Мороз В.В., Сундуков Д.В. Патогенез острого респираторного дистресссиндрома. Общая реаниматология. 2012; 8 (4): 13–21. http://dx.doi.org/10.15360/181397792012413; Dutton R.P. Current concepts in hemorrhagic shock. Anesthesiol. Clin. 2007; 25 (1): 23– 34. http://dx.doi.org/10.1016/j.atc.2006.11.007. PMID: 17400153; Conhaim R.L., Kluesner K.A., Watson K.E., MunozdelRio A., Heisey D.M., Harms B.A. Hemorrhage progressively disturbs interalveolar per fusion in the lungs of rats. Shock. 2008; 29 (3): 410–416. http://dx.doi.org/10. 1097/shk.0b013e318145a342. PMID: 17704732; Андреева С.А., Долгих В.Т. Структурнофункциональные изменения артерий малого круга кровообращения в отдаленном постгеморрагическом периоде. Общая реаниматология. 2008; 4 (6): 27–33. http://dx.doi.org/10.15360/181397792008627; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1555

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1555
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2016-5-65-94

المؤلفون: A. N. Kuzovlev, A. K. Shabanov, A. M. Golubev, V. V. Moroz, А. Н. Кузовлев, А. К. Шабанов, А. М. Голубев, В. В. Мороз

المصدر: General Reanimatology; Том 13, № 6 (2017); 60-73 ; Общая реаниматология; Том 13, № 6 (2017); 60-73 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2017-6

مصطلحات موضوعية: небулайзер, aerosolized colistin, aerosolized antibiotics, nebuliser, ингаляционный колистин, ингаляционные антибиотики

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1619/1148; Гельфанд Б.Р. (ред.). Нозокомиальная пневмония у взрослых. Российские национальные рекомендации. М.: МИА; 2016: 176.; Bekaert M, Timsit J.F, Vansteelandt S., Depuydt P., Vesin A., Garrouste-Orgeas M., Decruyenaere J., Clec'h C., Azoulay E., Benoit D.; Outcomerea Study Group. Attributable mortality of ventilator-associated pneumonia: a reappraisal using causal analysis. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2011; 184:1133-1139. DOI:10.1164/rccm.201105-0867OC. PMID: 21852541; Шабанов А.К., Хубутия М.Ш., Булава Г.В., Белобородова Н.В., Кузовлев А.Н., Гребенчиков О.А., Косолапов Д.А., Шпитонков М.И. Динамика уровня прокальцитонина при развитии нозокомиальной пневмонии у пострадавших с тяжелой сочетанной травмой в отделении реаниматологии. Общая реаниматология. 2013; 9 (5): 11-18. DOI:10.15360/1813-9779-2013-5-11; Мороз В.В., Смелая Т.В., Голубев А.М., Сальникова Л.Е.Генетика и медицина критических состояний: от теории к практике. Общая реаниматология. 2012; 8 (4): 5-12. DOI:10.15360/1813-9779-2012-4-5; Чучалин А.Г. (ред.). Респираторная медицина. Руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2007: 757.; Valencia M., Torres A. Ventilator-associated pneumonia. Curr. Opin. Crit. Care. 2009; 15 (1): 30-35. DOI:10.1097/MCC.0b013e3283220e78. PMID: 19186407; Кецко Ю.Л., Лунина А.В., Петровская Е.В., Лямин А.В. Оценка эффективности антибактериальной терапии у пациентов с вирусно-бактериальной пневмонией в 2009/2011 годах. Общая реаниматология. 2015; 11 (4): 33-40. DOI:10.15360/1813-9779-2015-4-33-40; Карпов О.Э., Гусаров В.Г., Лашенкова Н.Н., Петрова Н.В., Дементи-енко М.В., Шилкин Д.Н., Нестерова Е.Е., Замятин М.Н. Реестр микроорганизмов как инструмент автоматизированного планирования потребления антибиотиков и контроля антибиотикорезистентности в отделениях реаниматологии и профильных отделениях. Общая реаниматология. 2016; 12 (6): 39-48. DOI:10.15360/1813-9779-2016-6-39-48; Spellberg В. The future of antibiotics. Crit. Care. 2014; 18 (3): 228. DOI:10.1186/cc13948. PMID: 25043962; Zilberberg M., Shorr A. Prevalence of multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa and carbapenem-resistant Enterobacteriaceae among specimens from hospitalized patients with pneumonia and bloodstream infections in the United States from 2000 to 2009. J. Hosp. Med. 2013; 8 (10): 559-563. DOI:10.1002/jhm.2080. PMID: 24022878; Sievert D., Ricks P., Edwards J., Schneider A., Patel J., Srinivasan A., Kallen A., Limbago B., Fridkin S.; National Healthcare Safety Network (NHSN) Team and Participating NHSN Facilities. Antimicrobial-resistant pathogens associated with healthcare-associated infections: summary of data reported to the National Healthcare Safety Network at the Centers for Disease Control and Prevention, 2009-2010. Infect. Control Hosp. Epidemiol.2013; 34 (1): 1-14. DOI:10.1086/668770. PMID: 23221186; Кузовлев А.Н., Мороз В.В., Голубев А.М. Ингаляционные антибиотики в лечении нозокомиальной пневмонии. Анестезиология и реаниматология. 2015; 60 (4): 55-61. PMID: 26596034; Кузовлев А.Н., Мороз В.В., Голубев А.М., Половников С.Г. Ингаляционные антибиотики в лечении тяжелой нозокомиальной пневмонии. Общая реаниматология. 2013; 9 (6): 61-70. DOI:10.15360/1813-9779-2013-6-61; Кузовлев А.Н., Мороз В.В., Голубев А.М., Половников С.Г. Ингаляционный тобрамицин в лечении ИВЛ-ассоциированной пневмонии. Клин. фармакология и терапия. 2014; 23 (4): 52-58.; Ehrmann S., Roche-Campo F., Sferrazza Papa G.F., Isabey D., Brochard L. , Apiou-Sbirlea G.; REVA research network. Aerosol therapy during mechanical ventilation: an international survey. Intensive Care Med. 2013; 39(6):1048-1056. DOI:10.1007/s00134-013-2872-5. PMID: 23525741; Palmer L.B. Aerosolized antibiotics in the intensive care unit. Clin. Chest Med. 2011; 32 (3): 559-574. DOI:10.1016/j.ccm.2011.05.012. PMID: 21867823; Tolker-Nielsen T., Heiby N. Extracellular DNA and F-actin as targets in antibiofilm cystic fibrosis therapy. Future Microbiol. 2009; 4 (6): 645-647. DOI:10.2217/fmb.09.38. PMID: 19659420; Dhand R. The role of aerosolized antimicrobials in the treatment of ventilator-associated pneumonia. Respir. Care. 2007; 52 (7): 866-884. PMID: 17594731; Gurjar M. Colistin for lung infection: an update. J. Intensive Care. 2015; 3 (1): 3. DOI:10.1186/s40560-015-0072-9. PMID: 25705428; Rello J., Sole-Lleonart C, Rouby J., Chastre J., Blot S., Poulakou G., Luyt C, Riera J., Palmer L, Pereira J., Felton T., Dhanani J., Bassetti M., Welte T., Roberts J. Use of nebulized antimicrobials for the treatment of respiratory infections in invasively mechanically ventilated adults: a position paper from the European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases. Clin. Microbiol. Infect. 2017; pii: S1198-743X(17)30219-7. DOI:10.1016/j.cmi.2017.04.011. PMID: 28412382; Kalil A., Metersky M., Klompas M., Muscedere J., Sweeney D., Palmer L., Napolitano L., O’Grady N., BartlettJ., CarratalaJ., ElSolh A., Ewig S., Fey P., File T., Restrepo M., Roberts J., Waterer G., Cruse P., Knight S., Brozek J. Executive Summary: Management of Adults With Hospital-acquired and Ventilator-associated Pneumonia: 2016 Clinical Practice Guidelines by the Infectious Diseases Society of America and the American Thoracic Society. Clin. Infect. Dis. 2016; 63 (5): 575-582. DOI:10.1093/cid/ciw504. PMID: 27521441; Doshi N., Cook C., Mount K., Stawicki S., Frazee E., Personett H., Schramm G., Arnold H., Murphy C. Adjunctive aerosolized colistin for multi-drug resistant gram-negative pneumonia in the critically ill: a retrospective study. BMC Anesthesiol. 2013; 13 (1): 45. DOI:10.1186/1471-2253-13-45. PMID: 24274315; Tumbarello M., De Pascale G., Trecarichi E., De Martino S., Bello G., Mav-iglia R., Spanu T., Antonelli M. Effect of aerosolized colistin as adjunctive treatment on the outcomes of microbiologically documented ventilator-associated pneumonia caused by colistin-only susceptible gram-negative bacteria. Chest. 2013; 144 (6): 1768-1775. DOI:10.1378/chest.13-1018. PMID: 23989805; Korbila I., Michalopoulos A., Rafailidis P.I., Nikita D., Samonis G., Falagas M. E. Inhaled colistin as adjunctive therapy to intravenous colistin for the treatment of microbiologically documented ventilator-associated pneumonia: a comparative cohort study. Clin. Microbiol. Infect. 2010; 16 (8): 1230-1236. DOI:10.1111/j.1469-0691.2009.03040.x. PMID: 19732088; Liu D., Zhang J., Liu H., Zhu Y., Qu J. Intravenous combined with aerosolised polymyxin versus intravenous polymyxin alone in the treatment of pneumonia caused by multidrug-resistant pathogens: a systematic review and meta-analysis. Int. J. Antimicrob. Agents. 2015; 46 (6): 603-609. DOI:10.1016/j.ijantimicag.2015.09.011. PMID: 26607337; Rattanaumpawan P., Lorsutthitham J., Ungprasert P., Angkasekwinai N., Thamlikitkul V. Randomized controlled trial of nebulized colistimethate sodium as adjunctive therapy of ventilator-associated pneumonia caused by Gram-negative bacteria. J. Antimicrob. Chemother. 2010; 65 (12): 2645-2649. DOI:10.1093/jac/dkq360. PMID: 20876621; Valachis A., Samonis G., Kofteridis D. The role of aerosolized colistin in the treatment of ventilator-associated pneumonia: a systematic review and metaanalysis. Crit. Care Med. 2015; 43 (3): 527-533. DOI:10.1097/CCM.0000000000000771. PMID: 25493971; Florescu D., Qiu F., McCartan M., Mindru C., Fey P., Kalil A. What is the efficacy and safety of colistin for the treatment of ventilator-associated pneumonia? A systematic review and meta-regression. Clin. Infect. Dis. 2012; 54 (5): 670-680. DOI:10.1093/cid/cir934. PMID: 22322268; Kofteridis D., Alexopoulou C., Valachis A., Maraki S., Dimopoulou D., Geor-gopoulos D., Samonis G. Aerosolized plus intravenous colistin versus intravenous colistin alone for the treatment of ventilator-associated pneumonia: a matched case-control study. Clin. Infect. Dis. 2010; 51 (11): 1238-1244. DOI:10.1086/657242. PMID: 20973727; Demirdal T., Sari U., Nemli S. Is inhaled colistin beneficial in ventilator associated pneumonia or nosocomial pneumonia caused by Acinetobacter baumannii? Ann. Clin. Microbiol. Antimicrob. 2016; 15: 11. DOI:10.1186/s12941-016-0123-7. PMID: 26911714; Czosnowski Q.A., Wood G.C., Magnotti L.J., Croce M.A., Swanson J.M., Boucher B.A., Fabian T.C. Adjunctive aerosolized antibiotics for treatment of ventilator-associated pneumonia. Pharmacotherapy. 2009; 29 (9): 1054-1060. DOI:10.1592/phco.29.9.1054. PMID: 19698010; Arnold H., Sawyer A., Kollef M. Use of Adjunctive aerosolized antimicrobial therapy in the treatment of Pseudomonas aeruginosa and Acineto-bacter baumannii ventilator-associated pneumonia. Respir. Care. 2012; 57 (8): 1226-1233. DOI:10.4187/respcare.01556. PMID: 22349038; Niederman M.S, ChastreJ, Corkery K., Fink J.B., Luyt C.E., Garcna M.S. Bay41-6551 achieves bactericidal tracheal aspirate amikacin concentrations in mechanically ventilated patients with gram-negative pneumonia. Intensive Care Med. 2012; 38 (2): 263-271. DOI:10.1007/s00134-011-2420-0. PMID: 22147112; Le Conte P., Potel G., Clementi E., Legras A., Villers D., Bironneau E., Cous-son J., Baron D. Administration of tobramycin aerosols in patients with nosocomial pneumonia: a preliminary study. Presse. Med. 2000; 29 (2): 76-78. PMID: 10682031; Lu Q., Yang J., Liu Z., Gutierrez C., Aymard G., Rouby J.J.; Nebulized Antibiotics Study Group. Nebulized ceftazidime and amikacin in ventilator-associated pneumonia caused by Pseudomonas aeruginosa. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2011; 184 (1): 106-115. DOI:10.1164/rccm.201011-1894OC. PMID: 21474643; Lu Q., Luo R., Bodin L., Yang J., Zahr N., Aubry A., Golmard J.L., Rouby J. J.; Nebulized Antibiotics Study Group. Efficacy of high-dose nebulized colistin in ventilator-associated pneumonia caused by multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii. Anesthesiology. 2012; 117 (6): 1335-1347. DOI:10.1097/ALN.0b013e31827515de. PMID: 23132092; Ghannam D.E., Rodriguez G.H., Raad I.I., Safdar A. Inhaled aminoglycosides in cancer patients with ventilator-associated Gram-negative bacterial pneumonia: safety and feasibility in the era of escalating drug resistance. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2009; 28 (3): 253-259. DOI:10.1007/s10096-008-0620-5. PMID: 18752007; Le J., Ashley E.D., Neuhauser M.M., Brown J., Gentry C., Klepser M.E., Marr A.M., Schiller D., Schwiesow J.N., Tice S., VandenBussche H.L., Wood G.C.; Society of Infectious Diseases Pharmacists Aerosolized Antimicrobials Task Force. Consensus summary of aerosolized antimicrobial agents: application of guideline criteria. Insights from the Society of Infectious Diseases Pharmacists. Pharmacotherapy. 2010; 30 (6): 562-584. DOI:10.1592/phco.30.6.562. PMID: 20500046; Riethmuller J., Herrmann G., Graepler-Mainka U., Hettwig D., Heuer H., Heyder S., Koster H., Kinder B., Kroger K., Paul K., Poplawska K. , Melichar V., Smaczny C., Mellies U. Sequential inhalational tobramycin-colistin-combination in CF-patients with chronic P. Aeruginosa colonization — an observational study. Cell Physiol. Biochem. 2016; 39 (3): 1141-1151. DOI:10.1159/000447821. PMID: 27576543; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1619

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1619
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2017-6-60-73

المؤلفون: V. V. Moroz, A. V. Grechko, В. В. Мороз, А. В. Гречко

المصدر: General Reanimatology; Том 13, № 5 (2017); 6-29 ; Общая реаниматология; Том 13, № 5 (2017); 6-29 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2017-5

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1610/1155; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1610/1156; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1610; undefined

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1610