المؤلفون: Алиев , Ахмаджон, Абдуллаев , Дониёр, Камалов , Зайнитдин

المصدر: International Journal of Scientific Pediatrics; Vol. 3 No. 4 (2024): April; 557-561 ; Международный журнал научной педиатрии; Том 3 № 4 (2024): Апрел; 557-561 ; Xalqaro ilmiy pediatriya jurnali; Nashr soni. 3 No. 4 (2024): Aprel; 557-561 ; 2181-2926

مصطلحات موضوعية: дети раннего возраста, пневмония, стоматит, вирус простого герпеса, цитокины, иммунитет, young children, pneumonia, stomatitis, herpes simplex virus, cytokines, immunity, yosh bolalar, pnevmoniya, stomatit, gerpes simplex virusi, sitokinlar, immunitet

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://ijsp.uz/index.php/journal/article/view/240/195; https://ijsp.uz/index.php/journal/article/view/240

الاتاحة: https://ijsp.uz/index.php/journal/article/view/240
https://doi.org/10.56121/2181-2926-2024-3-4-557-561

المؤلفون: Prozherin S.V., Podymova A.S.

المساهمون: Sverdlovsk Regional Center for Prevention and Control of AIDS, Свердловский областной центр профилактики и борьбы со СПИД

المصدر: Vestnik dermatologii i venerologii; Vol 99, No 4 (2023); 84-95 ; Вестник дерматологии и венерологии; Vol 99, No 4 (2023); 84-95 ; 2313-6294 ; 0042-4609 ; 10.25208/vdv.994

مصطلحات موضوعية: genital herpes, HIV infection, herpes simplex virus type 2, HSV-2, аногенитальная герпетическая вирусная инфекция, генитальный герпес, ВИЧ-инфекция, вирус простого герпеса 2 типа, ВПГ-2

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://vestnikdv.ru/jour/article/view/7753/pdf_2; https://vestnikdv.ru/jour/article/view/7753/pdf_1; https://vestnikdv.ru/jour/article/view/7753/pdf; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/7753/72618; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/7753/72619; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/7753/72620; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/7753/72622; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/7753/72626; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/7753/72624; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/7753/72621; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/7753/72623; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/7753/72625; https://vestnikdv.ru/jour/article/view/7753

الاتاحة: https://vestnikdv.ru/jour/article/view/7753
https://doi.org/10.25208/vdv7753

المؤلفون: E. V. Kulchavenya, S. Yu. Shevchenko, A. A. Baranchukova, Е. В. Кульчавеня, С. Ю. Шевченко, А. А. Баранчукова

المصدر: Urology Herald; Том 11, № 1 (2023); 42-51 ; Вестник урологии; Том 11, № 1 (2023); 42-51 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2023-11-1

مصطلحات موضوعية: хронический абактериальный простатит, abacterial, herpes simplex virus, treatment, antimicrobial peptides, superlymph, вирус простого герпеса, лечение, суперлимф, антимикробные пептиды

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/668/444; Wald A. Genital HSV-1 infections. Sex Transm Infect. 2006;82(3):189-90. DOI:10.1136/sti.2006.019935; Roberts CM, Pfister JR, Spear SJ. Increasing proportion of herpes simplex virus type 1 as a cause of genital herpes infection in college students. Sex Transm Dis. 2003;30(10):797-800. DOI:10.1097/01.OLQ.0000092387.58746.C7; Johnston C. Diagnosis and Management of Genital Herpes: Key Questions and Review of the Evidence for the 2021 Centers for Disease Control and Prevention Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines. Clin Infect Dis. 2022;74(Suppl_2):S134-S143. DOI:10.1093/cid/ciab1056; Freeman EE, Weiss HA, Glynn JR, Cross PL, Whitworth JA, Hayes RJ. Herpes simplex virus 2 infection increases HIV acquisition in men and women: systematic review and meta-analysis of longitudinal studies. AIDS. 2006;20(1):73- 83. DOI:10.1097/01.aids.0000198081.09337.a7; WHO report on 10 March 2022. Herpes simplex virus. Accessed on Feb. 20, 2023. https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/herpes-simplex-virus; Wald A, Zeh J, Selke S, Ashley RL, Corey L. Virologic characteristics of subclinical and symptomatic genital herpes infections. N Engl J Med. 1995;333(12):770-5. DOI:10.1056/NEJM199509213331205; Gupta R, Wald A, Krantz E, Selke S, Warren T, VargasCortes M, Miller G, Corey L. Valacyclovir and acyclovir for suppression of shedding of herpes simplex virus in the genital tract. J Infect Dis. 2004;190(8):1374-81. DOI:10.1086/424519; Карахалис Л.Ю., Стебло Е.И., Пономарева Ю.С., Кононенко Т.С., Петренко В.С., Петренко С.И. Повышение эффективности лечения заболеваний, вызванных вирусом простого герпеса. Проблемы репродукции. 2020;26(2):79-86. DOI:10.17116/repro20202602179; Крупин В.Н., Белова А.Н., Крупин А.В. Лечение больных хроническим бактериальным простатитом. Вестник урологии. 2019;7(1):26-37. DOI:10.21886/2308-6424-2019-7-1-26-37; Khattak AS, Raison N, Hawazie A, Khan A, Brunckhorst O, Ahmed K. Contemporary Management of Chronic Prostatitis. Cureus. 2021;13(12):e20243. DOI:10.7759/cureus.20243; Miyake M, Tatsumi Y, Ohnishi K, Fujii T, Nakai Y, Tanaka N, Fujimoto K. Prostate diseases and microbiome in the prostate, gut, and urine. Prostate Int. 2022;10(2):96-107. DOI:10.1016/j.prnil.2022.03.004; Евдокимов В.В., Ковалык В.П., Малиновская В.В., Шувалов А.Н., Кущ А.А. Диагностика и лечение абактериального ХП/СХТБ III, ассоциированного с герпесвирусами. Урология. 2019;3:23-30. DOI:10.18565/urology.2019.3.23-30; Строцкий А.В., Гаврусев А.А., Рубаник Л.В., Полещук Н.Н. Является ли абактериальный простатит абактериальным? Урология. 2015;(4):102-106. eLIBRARY ID: 24344580; Ковалык В.П., Юрлов К.И., Гомберг М.А., Шувалов А.Н., Малиновская В.В., Кущ А.А. Ассоциация вируса герпеса человека 6 типа с синдромом хронической тазовой боли: клиническое наблюдение. РМЖ. 2021;29(6):53-55. eLIBRARY ID: 46433903; Xiao J, Ren L, Lv H, Ding Q, Lou S, Zhang W, Dong Z. Atypical microorganisms in expressed prostatic secretion from patients with chronic prostatitis/chronic pelvic pain syndrome: microbiological results from a case-control study. Urol Int. 2013;91(4):410-6. DOI:10.1159/000350934; Naumenko V, Tyulenev Y, Kurilo L, Shileiko L, Sorokina T, Evdokimov V, Yakovleva V, Kovalyk V, Malolina E, Kulibin A, Gomberg M, Kushch A. Detection and quantification of human herpes viruses types 4-6 in sperm samples of patients with fertility disorders and chronic inflammatory urogenital tract diseases. Andrology. 2014;2(5):687-94. DOI:10.1111/j.2047-2927.2014.00232.x; Zhu S, Viejo-Borbolla A. Pathogenesis and virulence of herpes simplex virus. Virulence. 2021;12(1):2670-2702. DOI:10.1080/21505594.2021.1982373; Sadowski LA, Upadhyay R, Greeley ZW, Margulies BJ. Current Drugs to Treat Infections with Herpes Simplex Viruses-1 and -2. Viruses. 2021;13(7):1228. DOI:10.3390/v13071228; Rocha MP, Amorim JM, Lima WG, Brito JCM, da Cruz Nizer WS. Effect of honey and propolis, compared to acyclovir, against Herpes Simplex Virus (HSV)-induced lesions: A systematic review and meta-analysis. J Ethnopharmacol. 2022;287:114939. DOI:10.1016/j.jep.2021.114939; Баркевич О.А. Противовирусные эффекты комплекса природных цитокинов (препарат Суперлимф) на модели герпесвирусной инфекции in vitro: Дис. …канд. мед. наук. Москва; 2005. https://www.dissercat.com/content/protivovirusnye-effekty-kompleksa-prirodnykh-tsitokinov-preparat-superlimfna-modeli-gerpes; https://www.urovest.ru/jour/article/view/668

الاتاحة: https://www.urovest.ru/jour/article/view/668
https://doi.org/10.21886/2308-6424-2023-11-1-42-51

المؤلفون: M. A. Levkovich, L. V. Kravchenko, I. I. Кrukier, N. V. Ermolova, V. V. Avrutskaya, L. V. Kaushanskaya, A. Yu. Levkovich, М. А. Левкович, Л. В. Кравченко, И. И. Крукиер, Н. В. Ермолова, В. В. Авруцкая, Л. В. Каушанская, А. Ю. Левкович

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 68, № 2 (2023); 47-52 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 68, № 2 (2023); 47-52 ; 2500-2228 ; 1027-4065

مصطلحات موضوعية: вирус простого герпеса, immunity, TLR receptors, congenital infection, herpes simplex virus, иммунитет, TLR-рецепторы, врожденная инфекция

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1800/1360; Дегтярев Д.Н., Заплатников А.Л., Рюмина И.М. Врожденные иперинатальные инфекции. Неонатология: Национальное руководство. Под ред. Н.Н. Володина. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2020: 566–597.; Иванова Р.А., Васильев В.В., Рогозина Н.В., Гринева А.А., Ушакова Г.М. Врожденная герпетическая инфекция: современные подходы к профилактике, диагностике, лечению. Детские инфекции 2021; 20(4): 47–52. DOI:10.22627/2072–8107–2021–20–4–47–52; Neuberger I., Garcia J., Meyers M.L., Feygin T., Bulas D.I., Mirsky D.M. Imaging of congenital central nervous system infections. Pediatr Radiol 2018; 48(4): 513–523. DOI:10.1007/s00247–018–4092–1; Poole C.L., Kimberlin D.W. Antiviral Drugs in Newborn and Children. Pediatr Clin North Am 2017; 64(6): 14031415. DOI:10.1016/j.pcl.2017.08.014; Исаков Д.В., Исаков В.А. Простой и опоясывающий герпес (клиника, лечение и профилактика): руководство для врачей. Под ред. В.А. Исакова. Санкт-Петербург: СпецЛит, 2021; 539.; James S.H., Kimberlin D.W. Neonatal Herpes Simplex Virus Infection. Infect Dis Clin North Am 2015; 29(3): 391–400. DOI:10.1016/j.idc.2015.05.001; Drumm C.M., Caufield M.C., DeKlotz C.M., Pasieka H.B., Abubakar K.M. Intrauterine Herpes Simplex Virus Infection Presenting as a Zosteriform Eruption in a Newborn. AJP Rep 2018; 8(1): e33–e36. DOI:10.1055/s-0038–1635100; Voekt C.A., Rinderknecht T., Hirsch H.H., Blaich A., Hösli I.M. Ultrasound indications for maternal STORCH testing in pregnancy. Swiss Med Wkly 2017; 147: w14534. DOI:10.4414/smw.2017.14534; Кравченко Л.В., Левкович М.А. Механизмы иммуносупрессии при частых ОРВИ у детей раннего возраста после неонатальной цитомегаловирусной инфекции. ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии 2017; 2(9): 34–38. DOI:10.22328/2077–9828–2017–9–3–34–38; Кравченко Л.В., Левкович М.А., Пятикова М.В. Роль полиморфизма гена интерферон-γ и интерферонопродукции в патогенезе инфекции, вызванной вирусом герпеса 6-го типа у детей раннего возраста. Клиническая лабораторная диагностика 2018; 63(6): 357–361. DOI:10.18821/0869–2084–2018–63–6–357–361; Иванова О.Н. Особенности иммунитета у детей с герпетической инфекцией. Современные проблемы науки и образования 2018; 5. https://science-education.ru/ru/article/view?id=27910 / Ссылка активна на 24.08.2022.; Левкович М.А., Кравченко Л.В., Левкович А.Ю., Пятикова М.В. Цитокиновый профиль новорожденных детей с генерализованной герпетической инфекцией. Российский иммунологический журнал 2019; 22(2–1): 368–370. DOI:10.31857/S102872210006630–8; Чурюкина Э.В. Роль и место интраназальных кортикостероидов в лечении аллергического ринита на современном этапе. РМЖ 2019; 27(3): 51–56.; Senat M.V., Anselem O., Picone O., Renesme L., Sananes N., Vauloup-Fellous C. et al. Prevention andmanagement of genital herpes simplex infection during pregnancyand delivery: Guidelines from the French College of Gynaecologists and Obstetricians (CNGOF). Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2018; 224: 93–101. DOI:10.1016/j.ejogrb.2018.03.011; Клинические рекомендации [проект] по диагностике, лечению и профилактике врожденной инфекции, вызванной вирусами простого герпеса. http://www.raspm.ru/files/gerpes.pdf / Ссылка активна на 14.02.2023.; Sen J., Liu X., Roller R. Herpes simplex virus US3 tegument protein inhibits Toll-like receptor 2 signaling at or before TRAF6 ubiquitination. Virology 2013; 439(2): 65–73. DOI:10.1016/j.virol.2013.01.026; Giraldo D., Wilcox D.R., Longnecker R. The Innate Immune Response to Herpes Simplex Virus 1 Infection Is Dampened in the Newborn Brain and Can Be Modulated by Exogenous Interferon Beta To Improve Survival. mBio 2020; 11(3): e00921–20. DOI:10.1128/mBio.00921–20; Samies N.L., James S.H. Prevention and treatment of neonatal herpessimplex virus infection. Antiviral Res 2020; 176: 104721. DOI:10.31857/S102872210006630–8; Zhu S.,Viejo-Borbolla A. Pathogenesis and virulence of herpes simplex virus. Virulence 2021; 12(1): 2670–2702. DOI:10.1080/21505594.2021.1982373; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1800

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1800
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2023-68-2-47-52

المؤلفون: E. V. Venev, D. A. Lioznov, A. B. Komissarov, A. V. Fadeev, K. S. Komissarova, N. D. Yolshin, D. A. Gusev, Е. В. Венев, Д. А. Лиознов, А. Б. Комиссаров, А. В. Фадеев, К. С. Комиссарова, Н. Д. Ёлшин, Д. А. Гусев

المصدر: Journal Infectology; Том 15, № 2 (2023); 162-164 ; Журнал инфектологии; Том 15, № 2 (2023); 162-164 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2023-15-2

مصطلحات موضوعية: секвенирование, herpes simplex virus type 1, co-infection, sequencing, вирус простого герпеса 1-го типа, ко-инфекция

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1516/1071; Farahat, R. A., Sah, R., El-Sakka, A. A. et al. Human monkeypox disease (MPX) // Le Infezioni in Medicina.–2022.–Vol. 30, No. 3.–P. 372–391.; Bonilla-Aldana, D. K., Rodriguez-Morales, A. J. (б. д.). Is monkeypox another reemerging viral zoonosis with many animal hosts yet to be defined? // The Veterinary Quarterly.–2022.–Vol. 42, No. 1.–P. 148–150.; Magnus, P. von, Andersen, E. K., Petersen, K. B., Birch-Andersen, A. A Pox-Like Disease in Cynomolgus Monkeys // Acta Pathologica Microbiologica Scandinavica.–1959.–Vol. 46, No. 2.–P. 156–176.; Ladnyj, I. D., Ziegler, P., & Kima, E. (1972). A human infection caused by monkeypox virus in Basankusu Territory, Democratic Republic of the Congo // Bulletin of the World Health Organization.–1972.–Vol. 46, No. 5.–P. 593–597.; Bunge, E. M., Hoet, B., Chen, L. et al. The changing epidemiology of human monkeypox-A potential threat? // A systematic review. PLoS Neglected Tropical Diseases.–2022.–Vol. 16, No. 2.–P. 1/20-20/20.; Nolasco, S., Vitale, F., Geremia, A. et al. First case of monkeypox virus, SARS-CoV-2 and HIV co-infection // The Journal of Infection.–2022.; Ramoni, S., Maronese, C. A., Morini, N. et al. Syphilis and monkeypox co-infection: Coincidence, synergy or asymptomatic carriage? // Travel Medicine and Infectious Disease.–2022.–No. 50.; Zlámal, M., Bartovská, Z., Burantová, A. et al. Monkeypox and Herpes Simplex Virus Type 2 Coinfection: Case Report of Perianal Lesions in HIV-Positive Patient // Sexually Transmitted Diseases.–2022.–Vol. 49, No. 11.–P. 769–770.; URL:https://www.cdc.gov/poxvirus/monkeypox/response/2022/world-map.html (дата обращения: 23.04.2023).; URL:https://www.protocols.io/view/monkeypox-virus-qpcr-assay-ce96th9e (дата обращения: 10.12.2022).; URL:https://www.protocols.io/private/974ACB78F83911EC998C0A58A9FEAC02?step=5 (дата обращения: 10.04.2022).; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1516

الاتاحة: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1516
https://doi.org/10.22625/2072-6732-2023-15-2-162-165

المؤلفون: M. Yu. Leshcheva, E. F. Astapenko, N. V. Gabbasova

المصدر: Опухоли женской репродуктивной системы, Vol 18, Iss 1, Pp 97-102 (2022)

مصطلحات موضوعية: рак шейки матки, вирус папилломы человека, вирус простого герпеса, цитомегаловирус, вакцинация, репродуктивная система, Gynecology and obstetrics, RG1-991

Relation: https://ojrs.abvpress.ru/ojrs/article/view/938; https://doaj.org/toc/1994-4098; https://doaj.org/toc/1999-8627; https://doaj.org/article/ace4fc51af9b489e9300822d5f15a2ca

الاتاحة: https://doi.org/10.17650/1994-4098-2022-18-1-97-102
https://doaj.org/article/ace4fc51af9b489e9300822d5f15a2ca

المؤلفون: Vasilev V.V., Rogozina N.V., Grineva A.A.

المساهمون: The reported study was funded by Russian Foundation for Basic Research within research project No. 20-115-50439 “Expansion”., Статья подготовлена при финансовой поддержке гранта РФФИ по реализации научного проекта № 20-115-50439 «Экспансия».

المصدر: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 11, No 4 (2021); 635-648 ; Инфекция и иммунитет; Vol 11, No 4 (2021); 635-648 ; 2313-7398 ; 2220-7619

مصطلحات موضوعية: congenital infections, intrauterine infections, pregnancy, children, newborns, antenatal mortality, neonatal mortality, herpes simplex virus 1, herpes simplex virus 2, human herpes virus 6, cytomegalovirus, parvovirus B19, врожденные инфекции, внутриутробные инфекции, беременность, дети, новорожденные, антенатальная смертность, неонатальная смертность, вирус простого герпеса 1 типа, вирус простого герпеса 2 типа, вирус герпеса человека 6 типа, цитомегаловирус, парвовирус В19

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1729/1288; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1729/6648; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1729/6649; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1729/6650; https://iimmun.ru/iimm/article/view/1729

الاتاحة: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1729
https://doi.org/10.15789/2220-7619-MGA-1729

المؤلفون: E. E. Bragina, Е. Е. Брагина

المصدر: Andrology and Genital Surgery; Том 21, № 4 (2020); 20-30 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 21, № 4 (2020); 20-30 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2020-21-4

مصطلحات موضوعية: интрагаметное инфицирование, human immunodeficiency virus, hepatitis C viruses, herpes simplex virus, cytomegalovirus, Zika virus, intragametal infection, обнаружены вирус иммунодефицита человека, вирус гепатита С, вирус простого герпеса, цитомегаловирус, вирус Зика

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/454/383; Centifanto Y.M., Drylie D.M. Deardourff S.L. et al. Herpesvirus type 2 in the male genitourinary tract. Science 1972;178(4058):318–9. DOI:10.1126/science.178.4058.318.; Deture F.A., Drylie D.M., Kaufman H.E. et al. Herpesvirus type 2: study of semen in male subjects with recurrent infections. J Urol 1978;120(4):449–51. DOI:10.1016/s0022-5347(17)57225-0.; Csata S., Kulcsar G. Virus-host studies in human seminal and mouse testicular cells. Acta Chir Hung 1991;32(1):83–90.; Moore D.E., Ashley R.L., Zarutskie P.W. et al. Transmission of genital herpes by donor insemination. JAMA 1989;261(23):3441–3.; El Borai N., Inoue M., Lefevre C. et al. Detection of herpes simplex DNA in semen and menstrual blood of individuals attending an infertility clinic. J Obstet Gynaecol Res 1997;23(1):17–24. DOI:10.1111/j.1447-0756.1997.tb00799.x.; Kapranos N., Petrakou E., Anastasiadou C., Kotronias D. Detection of herpes simplex virus, cytomegalovirus, and Epstein–Barr virus in the semen of men attending an infertility clinic. Fertil Steril 2003;79 Suppl 3:1566–70. DOI:10.1016/s0015-0282(03)00370-4.; Neofytou E., Sourvinos G., Asmarianaki M. et al. Prevalence of human herpes virus types 1–7 in the semen of men attending an infertility clinic and correlation with semen parameters. Fertil Steril 2009;91(6):2487–94. DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.03.074.; Абдулмеджидова А.Г., Торганова И.Г., Витязева И.И. и др. Влияние бессимптомной формы герпесвирусной инфекции на результаты лечения бесплодия методами вспомогательных репродуктивных технологий. Акушерство и гинекология 2009;(1):45–8.; Chen M., Cai L.Y., Kanno N. et al. Detection of human herpesviruses (HHVs) in semen of human male infertile patients. J Reprod Dev 2013;59(5):457–62. DOI:10.1262/jrd.2013-023.; Кущ А.А., Науменко В.А., Климова P.P. и др. Герпесвирусная инфекция мужских гамет и бесплодие: от экспериментальных моделей к разработке клинических рекомендаций. Вопросы вирусологии 2013;(S1):132–44.; Климова Р.Р., Чичев Е.В., Науменко В.А. и др. Вирус простого герпеса и цитомегаловирус в эякуляте мужчин: вирус простого герпеса чаще встречается при идиопатическом бесплодии и коррелирует со снижением показателей спермы. Вопросы вирусологии 2010;55(1):27–31.; Бочарова Е.Н., Шилейко Л.В., Брагина Е.Е. и др. Нарушение сперматогенеза человека: количественное исследование состава незрелых половых клеток при инфицировании сперматозоидов вирусом простого герпеса. Проблемы репродукции 2006;12(6):75–80.; Monavari S.H., Vaziri M.S., Khalili M. et al. Asymptomatic seminal infection of herpes simplex virus: impact on male infertility. J Biomed Res 2013;27(1):56–61. DOI:10.7555/JBR.27.20110139.; Kurscheidt F.A., Damke E., Bento J.C. et al. Effects of herpes simplex virus infections on seminal parameters in male partners of infertile couples. Urology 2018;113:52–8. DOI:10.1016/j.urology.2017.11.050.; Malolina E.A., Kulibin A.Y., Naumenko V.A. et al. Herpes simplex virus inoculation in murine rete testis results in irreversible testicular damage. Int J Exp Pathol 2014;95(2):120–30. DOI:10.1111/iep.12071.; Шушакова Е.К., Рублева О.В. Вирус простого герпеса как причина мужского бесплодия (клинический случай). Здоровье и образование в XXI веке 2017;19(10):146–48.; Cai L.Y., Kato T., Nakayama M. et al. HSV type 1 thymidine kinase protein accumulation in round spermatids induces male infertility by spermato-genesis disruption and apoptotic loss of germ cells. Reprod Toxicol 2009;27(1):14–21. DOI:10.1016/j.reprotox.2008.11.052.; Kulcsar G., Csata S., Nasz I. Investigations into virus carriership in human semen and mouse testicular cells. Acta Microbiol Hung 1991;38(2):127–32.; Kotronias D., Kapranos N. Detection of herpes simplex virus DNA in human spermatozoa by in situ hybridization technique. In Vivo 1998;12(4):391–4.; Науменко В.А., Климова Р.Р., Курило Л.Ф. Выявление вируса простого герпеса в мужских половых клетках при экспериментальной инфекции органной культуры семенника и в эякуляте мужчин с нарушениями фертильности. Акушерство и гинекология 2010;(3):42–6.; Брагина Е.Е., Абдумаликов Р.А., Бочарова Е.Н. и др. Внутриклеточное инфицирование сперматозоидов человека вирусами группы герпеса. Андрология и генитальная хирургия 2002;(3):81–2.; Бочарова Е.Н., Абдумаликов Р.А., Брагина Е.Е. и др. Обнаружение белков и капсидов вируса простого герпеса в сперматозоидах человека. Доклады академии наук 2003;391(6):836–41.; Бочарова Е.Н. Завалишина Л.Э., Брагина Е.Е. и др. Выявление геномной ДНК вируса простого герпеса методом гибридизации in situ в сперматозоидах человека при нарушении фертильности. Доклады академии наук 2007;412(3):417–21.; Pallier С., Tebourbi L., Chopineau-Proust S. et al. Herpesvirus, cytomegalovirus, human sperm and assisted fertilization. Hum Reprod 2002;17(5):1281–87. DOI:10.1093/humrep/17.5.1281.; Грибенча С.В., Брагина Е.Е., Абдумаликов Р.А. и др. Выявление антигена вируса простого герпеса второго типа в клетках сперматогенного эпителия инфицированных тестикул морских свинок. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины 2007;144(7):79–83.; Бочарова Е.Н., Брагина Е.Е., Гусак Ю.К. и др. Герпетическое инфицирование сперматозоидов при неудачах использования репродуктивных технологий и спонтанном прерывании беременности. Урология 2007;(3):59–63.; Брагина Е.Е., Виноградов И.В, Сухомлинова М.Ю. и др. Улучшение результатов ИКСИ у пациентов с внутригаметным герпетическим инфицированием сперматозоидов. Андрология и генитальная хирургия 2012;(1): 65–9.; Eggert-Kruse W., Reuland M., Johannsen W. et al. Cytomegalovirus (CMV) infection-related to male and/or female infertility factors? Fertil Steril 2009;91(1):67–82. DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.11.014.; Bresson J.L., Clavequin M.C, Mazeron M.C. et al. Risk of cytomegalovirus transmission by cryopreserved semen: a study of 635 semen samples from 231donors. Hum Reprod 2003;18(9):1881–86. DOI:10.1093/humrep/deg362.; Lang D.J., Kummer J.F., Hartley D.P. Cytomegalovirus in semen. Persistence and demonstration in extracellular fluids. N Engl J Med 1974;291(3):121–3. DOI:10.1056/NEJM197407182910303.; Wu K.H., Zhou Q.K., Huang J.H. et al. [Infection of cytomegalovirus and herpes simplex virus and morphology of the infected spermatogenic cells in infertile men (In Chinese)]. Zhonghua Nan Ke Xue 2007;13(12):1075–9.; Naumenko V., Tyulenev Y., Kurilo L. et al. Detection and quantification of human herpes viruses types 4–6 in sperm samples of patients with fertility disorders and chronic inflammatory urogenital tract diseases. Andrology 2014;2(5):687–94. DOI:10.1111/j.2047-2927.2014.00232.x.; Neighbour P.A., Fraser L.R. Murine cytomegalovirus and fertility: potential sexual transmission and the effect of this virus on fertilization in vitro. Fertil Steril 1978;30(2):216–22. DOI:10.1016/s0015-0282(16)43463-1.; Heggie A.D., Gaddis L. Effects of viral exposure of the two-cell mouse embryo on cleavage and blastocyst formation in vitro. Pediatr Res 1979;13(8):937–41. DOI:10.1203/00006450-197908000-00013.; Naumenko V.A., Tyulenev Y.A., Yakovenko S.A. et al. Detection of human cytomegalovirus in motile spermatozoa and spermatogenic cells in testis organo-typic culture. Herpesviridae 2011;2(1):7. DOI:10.1186/2042-4280-2-7.; Евдокимов В.В., Науменко В.А., Тюленев Ю.А. и др. Количественная оценка ДНК вирусов папилломы человека высокого канцерогенного риска и герпесвирусов человека у мужчин при нарушении фертильности. Вопросы вирусологии 2016;61(2):63–8.; Benova L., Mohamoud Y.A., Calvert C. et al. Vertical transmission of hepatitis C virus: systematic review and meta-analysis. Clin Infect Dis 2014;59(6):765–73. DOI:10.1093/cid/ciu447.; Debono E., Halfon P., Bourliere M. et al. Absence of hepatitis C genome in semen of infected men by polymerase chain reaction, branched DNA and in situ hybridization. Liver 2000;20(3):257–61. DOI:10.1034/j.1600-0676.2000.020003257.x.; Levy R., Bourlet T., Maertens A. et al. Pregnancy after safe IVF with hepatitis C virus RNA-positive sperm. Hum Reprod 2002;17(10):2650–53. DOI:10.1093/humrep/17.10.2650.; Bourlet T., Levy R., Maertens A. et al. Detection and characterization of hepatitis C virus RNA in seminal plasma and spermatozoon fractions of semen from patients attempting medically assisted conception. J Clin Microbiol 2002;40(9):3252–55. DOI:10.1128/jcm.40.9.3252-3255.2002.; Durazzo M., Premoli A., Di Bisceglie C. et al. Alterations of seminal and hormonal parameters: an extrahepatic manifestation of HCV infection? World J Gastroenterol 2006;12(19):3073–76. DOI:10.3748/wjg.v12.i19.3073.; Karamolahi S., Yazdi R.S., Zangeneh M. et al. Impact of hepatitis B virus and hepatitis C virus infection on sperm parameters of infertile men. Int J Reprod Biomed (Yazd) 2019;17(8):551–56. DOI:10.18502/ijrm.v17i8.4820.; Moretti E., Federico M.G., Giannerini V. et al. Sperm ultrastructure and meiotic segregation in a group of patients with chronic hepatitis B and C. Andrologia 2008;40(3):173–8. DOI:10.1111/j.1439-0272.2007.00818.x.; La Vignera S., Condorelli R.A., Vicari E. et al. Sperm DNA damage in patients with chronic viral C hepatitis. Eur J Intern Med 2012;23(1):e19–24. DOI:10.1016/j.ejim.2011.08.011.; Meseguer M., Garrido N., Gimeno C. et al. Comparison of polymerase chain reaction-dependent methods for determining the presence of human immunodeficiency virus and hepatitis C virus in washed sperm. Fertil Steril 2002;78(6):1199–202. DOI:10.1016/s0015-0282(02)04275-9.; Pasquier C., Daudin M., Righi L. et al. Sperm washing and virus nucleic acid detection to reduce HIVand hepatitis C virus transmission in serodiscordant couples wishing to have children. AIDS 2000;14(14):2093–99. DOI:10.1097/00002030-200009290-00004.; Ma M., Zhu Y., Wang D. et al. Research on the vertical transmission of hepatitis C gene from father-to-child via human sperm. Clin Lab 2016;62(1–2):1–6. DOI:10.7754/clin.lab.2015.150706.; Zhu Y., Ma M., Huang J. et al. Effects of hepatitis C virus infection on human sperm chromosomes. Clin Lab 2016;62(3):373–79. DOI:10.7754/clin.lab.2015.150705.; Foster G.R. Past, present, and future of hepatitis C treatments. Semin Liver Dis 2004;24(Suppl 2):97–104. DOI:10.7754/clin.lab.2015.150705.; Levy J.A. HIV pathogenesis: 25 years of progress and persistent challenges. AIDS 2009;23(2):147–60. DOI: 0.1097/QAD.0b013e3283217f9f.; Galvin S.R., Cohen M.S. The role of sexually transmitted diseases in HIV transmission. Nat Rev Microbiol 2004;2(1):33–42. DOI:10.1038/nrmicro794.; Ho D.D., Schooley R.T., Rota T.R. et al. HTLV-III in the semen and blood of a healthy homosexual man. Science 1984;226(4673):451–53. DOI:10.1126/science.6208608.; Ceballos A., Remes Lenicov F., Sabatté J. et al. Spermatozoa capture HIV-1 through heparansulfate and efficiently transmit the virus to dendritic cells. J Exp Med 2009;206(12):2717–33. DOI:10.1084/jem.20091579.; Muller C.H., Coombs R.W., Krieger J.N. Effects of clinical stage and immunological status on semen analysis results in human immunodeficiency virus type 1-seropositive men. Andrologia 1998;30(Suppl 1):15–22. DOI:10.1111/j.1439-0272.1998.tb02821.x.; Cito G., Coccia M.E., Fucci R. et al. Influence of male human immunodeficiency virus (HIV) and hepatitis C virus (HCV) infection on the reproductive outcomes in serodiscordant couples: a case-control study. Andrology 2019;7(6):852–58. DOI:10.1111/andr.12623.; Kehl S., Weigel M., Müller D. et al. HIV-infection and modern antiretroviral therapy impair sperm quality. Arch Gynecol Obstet 2011;284(1):229–33. DOI:10.1007/s00404-011-1898-6.; Young C.D., Tatieng S., Kongmanas K. et al. Sperm can act as vectors for HIV-1 transmission into vaginal and cervical epithelial cells. Am J Reprod Immunol 2019;82(1):e13129. DOI:10.1111/aji.13129.; Muciaccia B., Corallini S., Vicini E. et al. HIV-1 viral DNA is present in ejaculated abnormal spermatozoa of seropositive subjects. Hum Reprod 2007;22(11):2868–78. DOI:10.1093/humrep/dem288.; Zafer M., Horvath H., Mmeje O. et al. Effectiveness of semen washing to prevent human immunodeficiency virus(HIV) transmission and assist pregnancy in HIV-discordant couples: a systematic review and meta-analysis. Fertil Steril 2016;105(3):645–55.e2. DOI:10.1016/j.fertnstert.2015.11.028.; Cardona-Maya W., Velilla P., Montoya C.J. et al. Presence of HIV-1 DNA in sper matozoa from HIV-positive patients: changes in the semen parameters. Curr HIV Res 2009;7(4):418–24. DOI:10.2174/157016209788680570.; Dussaix E., Guetard D., Dauguet C. et al. Spermatozoa as potential carriers of HIV. Res Virol 1993;144(6):487–95. DOI:10.1016/s0923-2516(06)80064-6.; Baccetti B., Benedetto A., Burrini A.G. et al. HIV-particles in spermatozoa of patients with AIDS and their transfer into the oocyte. J Cell Biol 1994;127(4):903–14. DOI:10.1083/jcb.127.4.903.; Piomboni P., Baccetti B. Spermatozoon as a vehicle for HIV-1 and other viruses: a review. Mol Reprod Dev 2000;56(2 Suppl):238–42.; Wang D., Kang X.J., Li L.B. et al. In vitro study on vertical transmission of the HIV-1 gag gene by human sperm. J Med Virol 2011;83(1):16–23. DOI:10.1002/jmv.21767.; Wang D., Li L.B., Hou Z.W. et al. The integrated HIV-1 provirus in patient sperm chromosome and its transfer into the early embryo by fertilization. PLoS One 2011;6(12):e28586. DOI:10.1371/journal.pone.0028586.; Li F., Li L., Zhong Y. et al. Relationship between LTR methylation and gag expression of HIV-1 in human spermatozoa and sperm-derived embryos. PLoS One 2013;8(1):e54801. DOI:10.1371/journal.pone.0054801.; Gao Y.S., Huang T.H., Wang D. et al. In vivo study on vertical transmission of the HIV-1 gag gene via mouse oocytes. Curr HIV Res 2009;7(5):562–8. DOI:10.2174/157016209789346237.; Carvalho W.A., Catafesta E., Rodart I.F. et al. Prevention of HIV transmission with sperm washing within fertile serodiscordant couples undergoing non-stimulated intrauterine insemination. AIDS Care 2020;16:1–8. DOI:10.1080/09540121.2020.1739201.; Ezeonwumelu I., Bártolo I., Martin F. et al. Accidental father-to-son HIV-1 transmission during the seroconversion period. AIDS Res Hum Retroviruses 2018;34(10):857–62. DOI:10.1089/AID.2018.0060.; Murugan S., Anburajan R. Father to child transmission of human immunodeficiency virus disease while sero-discordant status of the mother is maintained. Indian J Sex Transm Dis AIDS 2013;34(1):60–1. DOI:10.4103/0253-7184.112945.; Cardona Maya W.D., Rugeles M.T. Father-to-child HIV transmission: do not forget sperm cells as vectors. AIDS Res Hum Retroviruses 2019;35(9):785. DOI:10.1089/AID.2019.0055.; Mlakar J., Korva M., Tul N. et al. Zika virus associated with microcephaly. N Engl J Med 2016;374(10):951–8. DOI:10.1056/NEJMoa1600651.; Halabi J., Jagger B.W., Salazar V. et al. Zika Virus causes acute and chronic prostatitis in mice and macaques. J Infect Dis 2020;221(9):1506–17. DOI:10.1093/infdis/jiz533.; Siemann D.N., Strange D.P., Maharaj P.N. et al. Zika virus infects human sertoli cells and modulates the integrity of the in vitro blood-testis barrier model. J Virol 2017;91(22): e00623-17. DOI:10.1128/JVI.00623-17.; Peregrine J., Gurung S., Lindgren M.C. et al. Zika virus infection, reproductive organ targeting, and semen transmission in the male olive baboon. J Virol 2019;94(1):e01434-19. DOI:10.1128/JVI.01434-19.; Mansuy J.M., Suberbielle E., Chapuy-Regaud S. et al. Zika virus in semen and spermatozoa. Lancet Infect Dis 2016;16(10):1106–7. DOI:10.1016/S1473-3099(16)30336-X.; Oliveira D.B., Durigon G.S., Mendes É.A. et al. Persistence and intra-host genetic evolution of Zika virus infection in symptomatic adults: a special view in the male reproductive system. Viruses 2018;10(11):E615. DOI:10.3390/v10110615.; Atkinson B., Hearn P., Afrough B. et al. Detection of Zika virus in semen. Emerg Infect Dis 2016;22(5):940. DOI:10.3201/eid2205.160107.; Cohen J. Where has all the Zika gone? Science 2017;357(6352):631–2. DOI:10.1126/science.357.6352.631.; Borges E.D., Vireque A.A., Berteli T.S. et al. An update on the aspects of Zika virus infection on male reproductive system. J Assist Reprod Genet 2019;36(7):1339–49. DOI:10.1007/s10815-019-01493-y.; Hoffmann M., Kleine-Weber H., Schroeder S. et al. SARS-CoV-2 cell entry depends on ACE2 and TMPRSS2 and is blocked by a clinically proven protease inhibitor. Cell 2020;181(2):271–80. DOI:10.1016/j.cell.2020.02.052.; Pan F., Xiao X., Guo J. et al. No evidence of SARS-CoV-2 in semen of males recovering from COVID-19. Fertil Steril 2020;113(6):1135–9. DOI:10.1016/j.fertnstert.2020.04.024.; Yang M., Chen S., Huang B. et al. Pathological findings in the testes of COVID-19 patients: clinical implications. Eur Urol Focus 2020;6:1124–29. DOI:10.1016/j.euf.2020.05.009.; Bian X.W. Autopsy of COVID-19 patients in China. Natl Sci Rev 2020;7:1414–8. DOI:10.1093/nsr/nwaa123.; Achua J.K., Chu K.Y., Ibrahim E. et al. Histopathology and ultrastructural finding of fatal COVID-19 infection on testis. World J Mens Health 2021;39(1):65–74. DOI:10.5534/wjmh.200170.; Li D., Jin M., Bao P. et al. Clinical characteristics and results of semen tests among men with coronavirus disease 2019. JAMA Netw Open 2020;3:e208292.; Zafar M.I., Li H. COVID-19 and impairment of spermatogenesis: Implications drawn from pathological alterations in testicles and seminal parameters. EClinicalMedicine 2020;29:100671. DOI:10.1016/j.eclinm.2020.100671.; Selvaraj K., Ravichandran S., Krishnan S. et al. Testicular atrophy and hypothalamic pathology in COVID-19: possibility of the incidence of male infertility and HPG axis abnormalities. Reprod Sci 2021 Jan 7;1-8. DOI:10.1007/s43032-020-00441-x.; Cardona Maya W.D., Du Plessis S.S., Velilla P.A. SARS-CoV-2 and the testis: similarity to other viruses and routes of infection. Reprod Biomed Online 2020;40(6):763–4. DOI:10.1016/j.rbmo.2020.04.009.; Ali B.A., Huang T.H., Xie Q.D. Detection and expression of hepatitis B virus X gene in one and two-cell embryos from golden hamster oocytes in vitro fertilized with human spermatozoa carrying HBV DNA. Mol Reprod Dev 2005;70(1):30–6. DOI:10.1002/mrd.20185.; Foresta C., Patassini C., Bertoldo A. et al. Mechanism of human papillomavirus binding to human spermatozoa and fertilizing ability of infected spermatozoa. PLoS One 2011;6(3):e15036. DOI:10.1371/journal.pone.0015036.; Garolla A., Engl B., Pizzol D. et al. Spontaneous fertility and in vitro fertilization outcome: new evidence of human papillomavirus sperm infection. Fertil Steril 2016;105(1):65–72.e1. DOI:10.1016/j.fertnstert.2015.09.018.; Kong Y., Liu Y., Liu. X. et al. Relationship between the mechanism of hepatitis B virus father-infant transmission and pregnancy outcome. Arch Gynecol Obstet 2017;295(1):253–57. DOI:10.1007/s00404-016-4231-6.; Hao S.L., Ni F.D., Yang W.X. The dynamics and regulation of chromatin remodeling during spermiogenesis. Gene 2019;706:201–10. DOI:10.1016/j.gene.2019.05.027.; Colaco S., Sakkas D. Paternal factors contributing to embryo quality. J Assist Reprod Genet 2018;35(11):1953–68. DOI:10.1007/s10815-018-1304-4.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/454

الاتاحة: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/454
https://doi.org/10.17650/2070-9781-2020-21-4-20-30

المؤلفون: V. V. Neroev, O. S. Slepova, L. A. Kovaleva, G. I. Krichevskaya

المصدر: Российский офтальмологический журнал, Vol 10, Iss 3, Pp 56-61 (2018)

مصطلحات موضوعية: бактериальные язвы роговицы, вирус простого герпеса, вирус эпштейна-барр, вирус герпеса человека 6 типа, вирус герпеса человека 7 типа, пцр, corneal bacterial ulcers, herpes simplex virus, human herpes virus type 6, human herpes virus type 7, pcr, epstein-barr virus, Ophthalmology, RE1-994

وصف الملف: electronic resource

Relation: https://roj.igb.ru/jour/article/view/109; https://doaj.org/toc/2072-0076; https://doaj.org/toc/2587-5760

URL الوصول: https://doaj.org/article/51fcd854f80f4657a0d22836c7c5eab7

المؤلفون: Kovalenko, K. E., Policarpova, I. I., Коваленко, К. Е., Поликарпова, И. И.

مصطلحات موضوعية: HERPES SIMPLEX VIRUS, HERPES-VIRAL INFECTION, CONGENITAL HERPETIC INFECTION, HERPETIC MENINGOENCEPHALITIS, ВИРУС ПРОСТОГО ГЕРПЕСА, ГЕРПЕС-ВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ, ВРОЖДЕННАЯ ГЕРПЕТИЧЕСКАЯ ИНФЕКЦИЯ, ГЕРПЕТИЧЕСКИЙ МЕНИНГОЭНЦЕФАЛИТ

وصف الملف: application/pdf

Relation: Уральский медицинский журнал. 2020. № 4(187).; Коваленко, К. Е. Клинический случай врожденного герпетического менингоэнцефалита / К. Е. Коваленко, И. И. Поликарпова. – Текст: электронный // Уральский медицинский журнал. - 2020. – № 4(187). – С. 140-145.; http://elib.usma.ru/handle/usma/18982

الاتاحة: http://elib.usma.ru/handle/usma/18982

المؤلفون: Khudobyak, V. О.

المصدر: Actual Problems of Pediatry, Obstetrics and Gynecology; No. 2 (2015) ; Актуальные вопросы педиатрии, акушерства и гинекологии; № 2 (2015) ; Актуальні питання педіатрії, акушерства та гінекології; № 2 (2015) ; 2415-301X ; 2411-4944 ; 10.11603/24116-4944.2015.2

مصطلحات موضوعية: treatmant of cervix pathology, human papillomavirus, herpes simplex virus, cytomegalovirus, Epstein- Barr virus, лечение патологии шейки матки, вирус папилломы человека, цитомегаловирус, вирус простого герпеса 1/2 типов, вирус Эпштейн-Барр, лікування патології шийки матки, вірус папіломи людини, цитомегаловірус, вірус простого герпесу 1/2 типів, вірус Епштейн-Барр

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/act-pit-pediatr/article/view/4818/4455; https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/act-pit-pediatr/article/view/4818; https://repository.tdmu.edu.ua//handle/123456789/14452

الاتاحة: https://repository.tdmu.edu.ua//handle/123456789/14452
https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/act-pit-pediatr/article/view/4818
https://doi.org/10.11603/24116-4944.2015.2.4818

المؤلفون: Chushenko, V., Yarnykh, T., Levachkova, Yu., Litvinova, O.

المصدر: Ukrainian biopharmaceutical journal; No. 1(62) (2020); 12-17 ; Украинский биофармацевтический журнал; № 1(62) (2020); 12-17 ; Український біофармацевтичний журнал; № 1(62) (2020); 12-17 ; 2519-8750 ; 2311-715X

مصطلحات موضوعية: ацикловір, ефірна олія чайного дерева, ефірна олія чебрецю, генітальний герпес, вірус простого герпесу, вагінальні супозиторії, стабільність, УДК 615.014.4, 615.454.2, 547.913, 615.281.8, acyclovir, Tea tree and Thyme essential oils, vaginal suppositories, genital herpes, virus of simple herpes, stability, UDC 615.014.4, ацикловир, эфирное масло чайного дерева, эфирное масло чабреца, вагинальные суппозитории, генитальный герпес, вирус простого герпеса, стабильность

وصف الملف: application/pdf

Relation: http://ubphj.nuph.edu.ua/article/view/ubphj.20.251/197947; http://ubphj.nuph.edu.ua/article/view/ubphj.20.251

الاتاحة: http://ubphj.nuph.edu.ua/article/view/ubphj.20.251
https://doi.org/10.24959/ubphj.20.251

المؤلفون: S. Borzenok A., T. Kerimov Z., N. Gavrilova A., Yu. Kalinnikov Yu., M. Khubetsova Kh., A. Zheltonozhko A., С. Борзенок А., Т. Керимов З., Н. Гаврилова А., Ю. Калинников Ю., М. Хубецова Х., А. Желтоножко А.

المصدر: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 12, № 2 (2020); 112-125 ; Трансплантология; Том 12, № 2 (2020); 112-125 ; 2542-0909 ; 2074-0506 ; 10.23873/2074-0506-2020-12-2

مصطلحات موضوعية: herpes simplex virus, herpes simplex keratitis, keratoplasty, cornea preservation, viral decontamination, вирус простого герпеса, герпетический кератит, трансплантация роговицы, консервация роговицы, вирусная деконтаминация

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/498/561; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/498/567; Pascolini D, Mariotti SP. Global estimates of visual impairment: 2010. Br J Ophthalmol. 2012;96(5):614–618. PMID: 22133988 http://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2011-300539; Resnikoff S, Pascolini D, Etya'ale D, Kocur I, Pararajasegaram R, Pokharel GP, et al. Global data on visual impairment in the year 2002. Bull World Health Organ. 2004;82(11):844–851. PMID: 15640920 http://doi.org/S004296862004001100009; Flaxman SR, Bourne RRA, Resnikoff S, Ackland P, Braithwaite T, Cicinelli MV, et al. Global causes of blindness and distance vision impairment 1990–2020: a systematic review and meta-analysis. Lancet Glob Health. 2017;5(12):e1221– e1234. PMID: 29032195 http://doi. org/10.1016/S2214-109X(17)30393-5; Oliva MS, Schottman T, Gulati M. Turnin g the tide of corneal blindness. Indian J Ophthalmol. 2012;60(5):423– 7. PMID: 22944753 http://doi. org/10.4103/0301-4738.100540; Wilson SL, El Haj AJ, Yang Y. Control of scar tissue formation in the cornea: strategies in clinical and corneal tissue engineering. J Funct Biomater. 2012;3(3):642–687. PMID: 24955637 http://doi.org/10.3390/jfb3030642.; Wong KH, Kam KW, Chen LJ, Young AL. Corneal blindness and current major treatment concern-graft scarcity. Int J Ophthalmol. 2017;10(7):1154– 1162. PMID: 28730122 http://doi. org/10.18240/ijo.2017.07.21; Gupta N, Tandon R, Gupta SK, Sreenivas V, Vashist P. Burden of corneal blindness in India. Indian J Community Med. 2013;38(4):198–206. PMID: 24302819 http://doi.org/10.4103/09700218.120153; Майчук Ю.Ф. Оптимизация фармакотерапии воспалительных болезней глазной поверхности. Российский офтальмологический журнал. 2008;(3):18–25.; Каспаров А.А. Современные аспекты лечения герпес-вирусного кератита. Клиническая Офтальмология. 2000;(2):59–61.; Marchi S, Trombetta CM, Gasparini R, Temperton N, Montomoli E. Epidemiology of herpes simplex virus type 1 and 2 in Italy: a seroprevalence study from 2000 to 2014. J Prev Med Hyg. 2017;58(1):E27–E33.PMID: 28515628; Gruffat H, Marchione R, Manet E. Herpesvirus late gene expression: a viral-specific pre-initiation complex is key. Front Microbiol. 2016;7:869. PMID: 27375590 http://doi.org/10.3389/fmicb.2016.00869; Kaneko H, Higaki S, Fukuda M, Shimomura Y, Ishioka K, Fukushima E., et al. The quantitative detection of herpes simplex virus, varicella zoster virus, and cytomegalovirus DNAs in recipient corneal buttons. Cornea. 2010;29:1436–1439. PMID: 20847665 http://doi.org/10.1097/ICO.0b013e3181d3d69d; Grüter W. Experimental and clinical studies on so-called corneal herpes. Berichte über die Versammlung der Deutschen Ophthalmologischen Gesellschaft. 1920;42:162–167.; Baron S. Medical Microbiology: 4th edition. Galveston (TX): University of Texas Medical Branch at Galveston; 1996.; Каспаров А.А. Офтальмогерпес. Москва: Медицина; 1994.; Brown JC, Newcomb WW. Herpesvirus capsid assembly: insights from structural analysis. Curr Opin Virol. 2011;1(2):142–9. PMID: 21927635 http:// doi.org/10.1016/j.coviro.2011.06.003; Чернакова Г.М., Майчук Д.Ю., Клещева Е.А., Слонимский Ю.Б., Семенова Т.Б. Микст-инфекции и воспалительная офтальмопатология: клинико-лабораторные наблюдения. Вестник офтальмологии. 2017;133(4):74–82.; Rowe AM, St Leger AJ, Jeon S, Dhaliwal DK, Knickelbein JE, Hendricks RL. Herpes keratitis. Prog Retin Eye Res. 2013;32:88–101. PMID: 22944008 http:// doi.org/10.1016/j.preteyeres.2012.08.002; Деев Л.А., Ярцева Н.С. Заболевания роговой оболочки глазного яблока: учебно-методическое пособие. Смоленск: Изд-во СГМА; 2006.; Akanda ZZ, Naeem A, Russell E, Belrose J, Si FF, Hodge WG. Graft rejection rate and graft failure rate of penetrating keratoplasty (PKP) vs lamellar procedures: a systematic review. PLoS One. 2015;10(3):e0119934. PMID: 25781319 http://doi.org/10.1371/journal. pone.0119934; Lawlor M, Kerridge I. Anything but the eyes: culture, identity, and the selective refusal of corneal donation. Transplantation. 2011;92(11):1188–1190. PMID: 22011764 http://doi.org/10.1097/ TP.0b013e318235c817; Armitage WJ, Tullo AB, Larkin DF. The first successful full-thickness corneal transplant: a commentary on Eduard Zirm's landmark paper of 1906. Br J Ophthalmol. 2006;90(10):1222–1223. PMID: 16980643 http://doi.org/10.1136/ bjo.2006.101527; Filatov VP, Olga Sitchevska. Transplantation of the cornea. Arch Ophthalmol. 1935;13(3):321– 347 http://doi.org/10.1001/ archopht.1935.00840030011001; Хубутия М.Ш., Солонин С.А., Годков М.А. Проблемы обеспечения инфекционной безопасности органного и тканевого донорства при лабораторной диагностике гемоконтактных вирусных инфекций. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2016;18(1):83–90.; Майчук Д.Ю., Майчук Ю.Ф. Офтальмоферон – 15 лет широкого применения в лечении и профилактике инфекционных заболеваний глаз. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение: журнал для непрерывного образования врачей. 2017;1(18):82–100.; Kaye SB, Madan N, Dowd TC, Hart CA, McCarthy K, Patterson A. Ocular shedding of herpes simplex virus. Br J Ophthalmol. 1990;74(2):114–116. PMID: 2155653http://doi.org/0.1136/ bjo.74.2.114; Kaye SB, Lynas C, Patterson A, Risk JM, McCarthy K, Hart CA. Evidence for herpes simplex viral latency in the human cornea. Br J Ophthalmol. 1991;75(4):195–200. PMID: 1850616http://doi.org/10.1136/ bjo.75.4.195; Cantin EM, Chen J, McNeill J, Willey DE, Openshaw H. Detection of herpes simplex virus DNA sequences in cornea l transplant recipients by polymerase chain reaction assays. Curr Eye Res. 1991;10S:15–21. PMID: 1650662 http:// doi.org/10.3109/02713689109020353; Cook SD, Hill JH. Herpes simplex virus: molecular biology and the possibility of corneal latency. Surv Ophthalmol. 1991;36(2):140–8. PMID: 1659745 http:// doi.org/10.1016/0039-6257(91)90127-2; Cleator GM, Klapper PE, Dennett C, Sullivan AL, Bonshek RE, Marcyniuk B, et al. Corneal donor infection by herpes simplex virus: herpes simplex virus DNA in donor corneas. Cornea. 1994;13(4):294– 304. PMID: 7924328 http://doi. org/10.1097/00003226-199407000-00003; Garweg J, Böhnke M. Slow viral replication of HSV-1 is responsible for early recurrence of herpetic keratitis after corneal grafting. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 1996;234(S1):133–138. PMID: 8871164 http://doi.org/10.1007/ bf02343062; Remeijer L, Doornenbal P, Geerards AJ, Rijneveld WA, Beekhuis WH. Newly acquired herpes simplex virus keratitis after penetrating keratoplasty. Ophthalmology. 1997;104(4):648–652. PMID: 9111258http://doi.org/10.1016/ s0161-6420(97)30257-7; Cockerham GC, Krafft AE, McLean IW. Herpes simplex virus in primary graft failure. Arch Ophthalmol. 1997;115(5):586–589. PMID: 9152124 http://doi.org/10.1001/ archopht.1997.01100150588001; Holbach LM, Asano N, Naumann GO. Infection of the corneal endothelium in herpes simplex keratitis. Am J Ophthalmol. 1998;126(4):592–594. PMID: 9780108http://doi.org/10.1016/s00029394(98)00121-4; Neufeld MV, Steinemann TL, Merin LM, Stroop WG, Brown MF. Identification of a herpes simplex virus-induced dendrite in an eye-bank donor cornea. Cornea. 1999;18(4):489– 492. PMID: 10422864 http://doi. org/10.1097/00003226-199907000-00016; Biswas S, Suresh P, Bonshek RE, Corbitt G, Tullo AB, Ridgway AE. Graft failure in human donor corneas due to transmission of herpes simplex virus. Br J Ophthalmol. 2000;84(7):701-5. PMID: 10873977http://doi.org/10.1136/ bjo.84.7.701; Remeijer L, Maertzdorf J, Doornenbal P, Verjans GM, Osterhaus AD. Herpes simplex virus 1 transmission through corneal transplantation. Lancet. 2001;357(9254):442. PMID: 11273067 http://doi.org/10.1016/S01406736(00)04011-3; De Kesel RJ, Koppen C, Ieven M, Zeyen T. Primary graft failure caused by herpes simplex virus type 1. Cornea. 2001;20(2):187– 190. PMID: 11248827http://doi. org/10.1097/00003226-200103000-00016; Zheng X. Reactivation and donorhost transmission of herpes simplex virus after corneal transplantation. Cornea. 2002;21(7S):90–3. PMID: 12484706 http://doi.org/10.1097/01. ico.0000263126.76392.cf.; Tullo A. Pathogenesis and management of herpes simplex virus keratitis. Eye (Lond). 2003;17(8):919–922. PMID: 14631397 http://doi.org/10.1038/sj.eye.6700564; Rezende RA, Uchoa UB, Raber IM, Rapuano CJ, Laibson PR, Cohen EJ. New onset of herpes simplex virus epithelial keratitis after penetrating keratoplasty. Am J Ophthalmol. 2004;137(3):415– 419. PMID: 15013862 http://doi. org/10.1016/j.ajo.2003.09.057; Borderie VM, Méritet JF, Chaumeil C, Rozenberg F, Baudrimont M, Touzeau O, et al. Culture-proven herpetic keratitis after penetrating keratoplasty in patients with no previous history of herpes disease. Cornea. 2004;23(2):118– 24. PMID: 15075879 http://doi. org/10.1097/00003226-200403000-00003; Robert PY, Adenis JP, Pleyer U. How "safe" is corneal transplantation? A contribution on the risk of HSV-transmission due to corneal transplantation. Klin Monbl Augenheilkd. 2005;222(11):870– 873. PMID: 16308818 http://doi. org/10.1055/s-2005-858849; Robert PY, Adenis JP, Denis F, Droue t M, Ranger-Rogez S. Herpesviruses serologic survey of corneal allograft recipients. J Fr Ophtalmol. 2006;29(3):59– 263. PMID: 16557169 http://doi.org/10.1016/s0181-5512(06)73781-0; Builles N, Kodjikian L, Burillon C, Damour O. Major endothelial loss from corneas in organ culture: importance of second endothelial count. Cornea. 2006;25(7):815–820. PMID: 17068459 http://doi.org/10.1097/01. ico.0000230253.62730.85; Aydemir O, Türkçüoğlu P, Bulut Y, Kalkan A. The relationship of graft survival and herpes simplex virus latency in recipient corneal buttons. Clin Ophthalmol. 2007;1(2):127–131. PMID: 19668501; Gatzioufas Z, Oldak M, Schnaidt A, Smola S, Seitz B. Graft-to-host transmission of herpes simplex virus - myth or reality? Acta Ophthalmol. 2011;89(5):e473–4; author reply e474–5. PMID: 21756291 http://doi.org/10.1111/ j.1755-3768.2011.02192.x; Кугушева А.Э., Слепова О.С., Гундорова Р.А., Демкин В.В., Макаров П.В., Миронкова Е.А. и др. О влиянии герпесвирусных инфекций на результаты приживления роговичного трансплантата при кератопластике высокого риска. В кн. Актуальные проблемы офтальмологии. Москва; 2012. с. 116–117.; Gatzioufas Z, Hasenfus A, Gyongyossy B, Stavridis E, Sauter M, Smola S, et al. Repeat corneal graft failure due to graft-to-host herpetic infection. J Ophthalmic Inflamm Infect. 2013;3(1):24. PMID: 23514192 http://doi. org/10.1186/1869-5760-3-24; Kuffova L, Knickelbein JE, Yu T, Medina C, Amescua G, Rowe AM, et al. High-risk corneal graft rejection in the setting of previous corneal herpes simplex virus (HSV)-1 infection. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2016;57(4):1578–87. PMID: 27050878 http://doi.org/10.1167/iovs.15-17894; Agelidis AM, Shukla D. Cell entry mechanisms of HSV: what we have learned in recent years. Future Virol. 2015;10(10):1145–1154. PMID: 27066105 http://doi.org/10.2217/fvl.15.85; Akhtar J, Shukla D. Viral entry mechanisms: cellular and viral mediators of herpes simplex virus entry. FEBS J. 2009;276(24):7228–36. PMID: 19878306 http://doi.org/10.1111/j.17424658.2009.07402.x; Yu X, He S. The interplay between human herpes simplex virus infection and the apoptosis and necroptosis cell death pathways. Virol J. 2016;13:77. PMID: 27154074 http://doi.org/10.1186/ s12985-016-0528-0; Kerr JF, Wyllie AH, Currie AR. Apoptosis: a basic biological phenomenon with wide-ranging implications in tissue kinetics. Br J Cancer. 1972;26(4):239–257. PMID: 4561027 http://doi.org/10.1038/bjc.1972.33; Wyllie AH. Glucocorticoid-induced thymocyte apoptosis is associated with endogenous endonuclease activation. Nature. 1980;284(5756):555–556. PMID: 6245367 http://doi.org/10.1038/284555a0; Thornberry NA, Lazebnik Y. Caspases: enemies within. Science. 1998;281(5381):1312–1316. PMID: 9721091 http://doi.org/10.1126/science.281.5381.1312; Guo H, Kaiser WJ, Mocarski ES. Manipulation of apoptosis and necroptosis signaling by herpesviruses. Med Microbiol Immunol. 2015;204(3):439–448. PMID: 25828583 http://doi.org/10.1007/s00430-015-0410-5; Holler N, Zaru R, Micheau O, Thome M, Attinger A, Valitutti S, et al. Fas triggers an alternative, caspase8-independent cell death pathway using the kinase RIP as effector molecule. Nat Immunol. 2000;1(6):489–495. PMID: 11101870 http://doi.org/10.1038/82732; Chawla-Sarkar M, Lindner DJ, Liu YF, Williams BR, Sen GC, Silverman RH, et al. Apoptosis and interferons: role of interferon-stimulated genes as mediators of apoptosis. Apoptosis. 2003;8(3):237–249. PMID: 12766484 http://doi.org/10.1023/a:1023668705040; Robinson N, McComb S, Mulligan R, Dudani R, Krishnan L, Sad S. Type I interferon induces necroptosis in macrophages during infection with Salmonella enterica serovar Typhimurium. Nat Immunol. 2012;13(10):954–962. PMID: 22922364 http://doi.org/10.1038/ni.2397; Haller O. A tribute to Jean Lindenmann, co-discoverer of interferon (1924-2015). Cytokine. 2015;76(1):113– 115. PMID: 25937629 http://doi. org/10.1016/j.cyto.2015.02.029; Nallar SC, Kalvakolanu DV. Interferons, Signal Transduction Pathways, and the Central Nervous System. J of Interferon Cytokine Res. 2014;34(8):559–576. PMID: 25084173 http://doi.org/10.1089/jir.2014.0021; Gonzalez-Navajas JM, Lee J, David M, Raz E. Immunomodulatory functions of type I interferons. Nat Rev Immunol. 2012;12(2):125–135. PMID: 22222875 http://doi.org/10.1038/nri3133; Ivashkiv LB, Donlin LT. Regulation of type I interferon responses. Nat Rev Immunol. 2014;14(1):36–49. PMID: 24362405http://doi.org/10.1038/nri3581; Abrams ME, Balish MJ, Brandt CR. IFN-alpha induces MxA gene expression in cultured human corneal fibroblasts. Exp Eye Res. 1995;60(2):137–42. PMID: 7540146 http://doi.org/10.1016/S00144835(95)80003-4; Калюжин О.В. Тилорон как средство выбора для профилактики и лечения острых респираторных вирусных инфекций. Лечащий врач. 2013;(10):43– 48.; Карсонова А.В. Система интерферонов I типа и NK-клеток при часто рецидивирующем простом герпесе: автореферат дис. . канд. мед. наук: 14.03.09. Москва: Первый моск. гос. мед. ун-т. им. И.М. Сеченова; 2014. 26 c.; Lin FC, Young HA. Interferons: Success in anti-viral immunotherapy. Cytokine Growth Factor Rev. 2014;25(4):369– 76. PMID: 25156421 http://doi. org/10.1016/j.cytogfr.2014.07.015; Boasso A. Type I interferon at the interface of antiviral immunity and immune regulation: the curious case of HIV-1. Scientifica. 2013;2013:580968. PMID: 24455433 http://doi. org/10.1155/2013/580968; Stetson DB, Medzhitov R. Type I interferons in host defense. Immunity. 2006;25(3):373–381. PMID: 16979569 http://doi.org/10.1016/j.immuni.2006.08.007; Kimberlin DW, Whitley RJ. Antiviral therapy of HSV-1 and -2. Cambridge University Press; 2007: 1153–1174. http:// doi.org/10.1017/CBO9780511545313.065; Sainz B, Halford WP. Alpha/Beta interferon and gamma interferon synergize to inhibit the replication of herpes simplex virus type 1. J Virol. 2002;76(22):11541–50. PMID: 12388715 http://doi.org/10.1128/JVI.76.22.1154111550.2002; Choong K, Walker NJ, Apel AJ, Whitby M. Aciclovir-resistant herpes keratitis. Clin Exp Ophthalmol. 2010;38(3):309– 313. PMID: 20447128 http://doi. org/10.1111/j.1442-9071.2010.02209.x; Toriyama K, Inoue T, Suzuki T, Kobayashi T, Ohashi Y. Necrotizing keratitis caused by acyclovir-resist ant herpes simplex virus. Case Rep Ophthalmol. 2014;5(3):325–328. PMID: 25473399 http://doi.org/10.1159/000368297; Taylor JL, Casey MS, O'Brien WJ. Synergistic antiherpes virus activity of acyclovir and interferon in human corneal stromal cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1989Mar;30(3):365–70. PMID: 2466806; Wilhelmus KR. The treatment of herpes simplex virus epithelial keratitis. Trans Am Ophthalmol Soc. 2000;98:505532. PMID: 11190039; Wilhelmus KR. Antiviral treatment and other therapeutic interventions for herpes simplex virus epithelial keratitis. Cochrane Database Syst Rev. 2010;12:CD002898. PMID: 21154352 http://doi.org/10.1002/14651858. CD002898.pub5; Sainz B Jr, Halford WP. Alpha/ Beta interferon and gamma interferon synergize to inhibit the replication of herpes simplex virus type 1. J Virol. 2002;76(22):11541–11550. PMID: 12388715 http://doi.org/10.1128/ JVI.76.22.11541-11550.2002; Nguyen NX, Seitz B, Martus P, Langenbucher A, Cursiefen C. Long-term topical steroid treatment improves graft survival following normal-risk penetrating keratoplasty. Am J Ophthalmol. 2007;144(2):318–9. PMID: 17659972 http://doi.org/10.1016/j.ajo.2007.03.028; Борзенок С.А., Керимов Т.З. Антивирусная деконтаминация трансплантатов донорских роговиц на этапе консервации. Третий российский национальный конгресс с международным участием «Трансплантация и донорство органов», 2–4 октября 2017 г. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2017;19(3):221.; Керимов Т.З., Борзенок С.А., Гаврилова Н.А., Тонаева Х.Д. Герпесвирусная инфекция трансплантата роговицы: подходы к вирусной деконтаминации на этапе консервации. Практическая медицина. 2018;3(114):89–92.; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/498

الاتاحة: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/498
https://doi.org/10.23873/2074-0506-2020-12-2-112-125

المؤلفون: Michal Drobný, Dušan Krkoška, Gabriela Sobolová, Martin Babušík, Silvia Učňová, Beata Drobná Sániová, Lenka Tulejová, Daniel Priadka, М. Дробни, Д. Кркошка, Г. Соболова, М. Бабушик, С. Учнова, Б. Дробна Саниова, Л. Тулейова, Д. Прядка

المصدر: General Reanimatology; Том 16, № 2 (2020); 41-51 ; Общая реаниматология; Том 16, № 2 (2020); 41-51 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2020-2

مصطلحات موضوعية: вирус простого герпеса, encephalitis, power spectral analysis, brain mapping, HSV1, HSV2, Herpes Simplex Encephalitis, энцефалит, спектральный анализ мощности, картирование мозга

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1883/1392; Mayer V., Drobný M., Mittrová E. Pomalé vírusové neuroinfekcie. Edition, Osveta, Martin, 1983, 407p.; Xu F., Sternburg M., Kottiri B., McQuilan G., Lee F., Nahmias A. Berman S., Markowitz L. Trends in Herpes Simplex Virus Type1 and Type 2 Seroprevalence in the United States. AMA. 2006; 8. 296 (8): 964–973. PMID: 16926356 DOI:10.1001/jama.296.8.964; Whitley R.J. Herpes simplex encephalitis: adolescents and adults. Antiviral Res. 2006; 71 (2–3): 141–148. PMID: 16675036 DOI:10.1016/j.antiviral.2006.04.002; Whitley R.J., Gnann J.W. Viral encephalitis: familiar infections and emerging pathogens. Lancet. 2002; 359 (9305): 507–513. PMID: 11853816 DOI:10.1016/S0140-6736(02)07681-X; Pandian J.D., Thomas S.V., Santoshkumar B., Radhakrishnan K., Sarma P.S., Joseph S., Kesavadas C. Epilepsia partialis continua-a clinical and electroencephalography study. Seizure. 2002; 11 (7): 437–441.; Varatharaj A., Nicoll James A.R., Pelosi E., Pinto A.A. Corticosteroid-responsive focal granulomatous herpes simplex type-1 encephalitis in adults. Practical Neurology. 2017; 17 (2): 140–144. PMID: 28153849 DOI:10.1136/practneurol-2016-001474; Sániová B., — Drobný M., Lehotský J., Šulaj M., Schudichová J: Biochemical and clinical improvement of cytotoxic state by amantadine sulphate In: Cellular and Molecular Neurobiology. 2006; 26 (7–8): 1473–1480. PMID: 16710757 DOI:10.1007/s10571-006-9033-0; Saniova B., Drobny M., Kneslova L., Minarik M. The outcome of patients with severe head injuries treated with amantadine sulphate. J Neural Transm. 2004; 111 (4): 511–514. PMID: 15057520 DOI:10.1007/s00702-004-0112-4; Wang Y., Qin Z.H. Molecular and cellular mechanisms of excitotoxic neuronal death. Apoptosis. 2010; 15: 1382–1402. DOI:10.1007/s10495-010-0481-0; Bien C.G., Bauer J., Deckwerth T.L., Wiendl H., Deckert M., Wiestler O.D., Schramm J., Elger C.E., Lassmann H. Destruction of neurons by cytotoxic T cells: a new pathogenic mechanism in Rasmussen’s encephalitis. Ann Neurol. 2002; 51 (3): 11–18. DOI:10.1002/ana.10100; O’Rourke D.J., Bergin A., Rotenberg A., Peters J., Gorman M., Poduri A., Cryan J., Lidov H., Madsen J., Harini C. Rasmussen’s encephalitis presenting as focal cortical dysplasia. Epilepsy Behav Case Rep 2014; 2, 86–89. PMID: 25667877 PMCID: PMC4307873 DOI:10.1016/j.ebcr.2014.01.009; Frigeri T., Hemb M., Paglioli E., Hoefel J.R., Silva V., Vinters H., Palmini A. Bilateral Rasmussen’s encephalitis associated with type II focal cortical dysplasia: dormant ‘second’ epileptogenic zone in contralateral disease. Epilepsy Behav Case Rep. 2013; 1: 66–68. PMID: 21216675 DOI:10.1016/j.yebeh.2010.12.004; Prayson R.A. Dual pathology in Rasmussen’s encephalitis: a report of coexistent focal cortical dysplasia and review of the literature. Case Rep Pathol. 2012; 2012: 1–4. PMID: 23056977 PMCID: PMC3465884 DOI:10.1155/2012/569170; Palmer C.A., Geyer J.D., Keating J.M., Gilliam F., Kuzniecky R.I., Morawetz R.B., Bebin E.M. Rasmussen’s encephalitis with concomitant cortical dysplasia: the role of GluR3. Epilepsia. 1999; 40: 242–247. PMID: 9952274 DOI:10.1111/j.1528-1157.1999.tb02082.x; Buzsáki G., Wang X. J. Mechanisms of Gamma Oscillations. Annu. Rev. Neurosci. 2012; 35: 203–225. PMID: 22443509 PMCID: PMC4049541 DOI:10.1146/annurev-neuro-062111-150444; Mukamel E. A., Pirondini Elvira., Babadi B.W., Kin F. K., Pierce E. T. P., Harrell P.G., Walsh J. L., Salazar-Gomez A. F., Cash S. S., Eskandar E. N., Weiner V. S., Brown E. N., Purdon. P.L. A Transition in Brain State during Propofol-Induced Unconsciousness. Journal of Neuroscience. 2014, 34 (3) 839–845. DOI:10.1523/JNEUROSCI.5813-12.2014; Cannon J., McCarthy M.M., Lee S., Lee J., Börgers Ch., Whittington M., Kopell N. Review Neurosystems; brain rhythms and cognitive processing. Eur J Neurosci. 2014; 39 (5): 705–719. PMID: 24329933 PMCID: PMC4916881 DOI:10.1111/ejn.12453; Fischer M., Drobny M., Saniova B., Bakosova E., Hamzik J., Schnierer M.,Osinova D. Electrical changes in deeper cortical structures during balanced general anesthesia with the aim on inhalation anesthetics effects. Acta Medica Martiniana. 2015; 15 (3): 21–29. DOI:10.1515/acm-2015-0014; Press C., Wallace A., Chapman K.E. The Janus-faced nature of Rasmussen’s encephalitis. Semin Pediatr Neurol. 2014; 21, 129–136. PMID: 25149947 DOI:10.1016/j.spen.2014.04.018; Castellano J.F., Meyer J.A., Lado F.A. A Case Series of Adult-Onset Rasmussen’s Encephalitis: Diagnostic and Therapeutic Challenges, Front Neurol. 2017; 8, 564. PMID: 29118737 PMCID: PMC5660978 DOI:10.3389/fneur.2017.00564; Bien C.G., Widman G., Urbach H., Sassen R., Kuczaty S., Wiestler O.D., Schramm J., Elger C.E. The natural history of Rasmussen’s encephalitis. Brain. 2002; 125 (8): 1751–1759. DOI:10.1093/brain/awf176; Eggers C., Burghaus L., Fink G.R., Dohmen C. Epilepsia partialis continua responsive to intravenous levetiracetam. Seizure. 2009; 18 (10): 716–718. PMID: 19836263 DOI:10.1016/j.seizure.2009.09.005; Pardo C.A., Vining E.P., Guo L., Skolasky R.L., Carson B.S., Freeman J.M. The pathology of Rasmussen syndrome: stages of cortical involvement and neuropathological studies in 45 hemispherectomies. Epilepsia. 2004; 45 (5): 516–526. DOI:10.1111/j.0013-9580.2004.33103.x; Bien C.G., Granata T., Antozzi C., Cross J.H., Dulac O., Kurthen M., Lassmann H., Mantegazza R., Villemure J.-G., Spreafico R., Elger C.E. Pathogenesis, diagnosis and treatment of Rasmussen encephalitis: a European consensus statement. Brain. 2005; 128 (3): 454-471. PMID: 15689357; Takei H., Wilfong A., Malphrus A., Yoshor D., Hunter J.V., Armstrong D.L., Bhattacharjee M.B. Dual pathology in Rasmussen’s encephalitis: a study of seven cases and review of the literature. Neuropathology. 2009; 30: 381–391. PMID: 20051019 DOI:10.1111/j.1440-1789.2009.01079.x; Cheong J.Y., Wong C., Bleasel A., Varikatt W., Ng T., Dexter M.A. Late onset Rasmussen’s encephalitis with triple pathology. J Clin Neurosci. 2009; 16: 1677–1681. PMID: 19800797 DOI:10.1016/j.jocn.2009.02.042; Yacubian E.M., Rosemberg S., Marie S.K., Valério R.M., Jorge C.L., Cukiert A. Double pathology in Rasmussen’s encephalitis: etiologic considerations. Epilepsia. 1996; 37 (5): 495–500. PMID: 8617180 DOI:10.1111/j.1528-1157.1996.tb00597.x; Robitaille Y. Neuropathologic aspects of chronic encephalitis. In: Andermann F., editor. Chronic encephalitis and epilepsy Rasmussen’s syndrome. Boston: Butterworth-Heinemann; 1991: 79–110.; Varadkar S., Bien C.G., Kruse C.A., Jensen F.E., Pardo C.A., Vincent A., Mathern G.W., Cross J.H. Rasmussen’s encephalitis: clinical features, pathobiology, and treatment advances. Lancet Neurol. 2014; 13 (2): 195–205. DOI:10.1016/S1474-4422(13)70260-6; Eggers C., Burghaus L., Fink G.R., Dohmen Ch. Epilepsia partialis continua responsive to intravenous levetiracetam. Seizure. 2009; 18 (10): 716–718. PMID: 19836263 DOI:10.1016/j.seizure.2009.09.005; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1883

الاتاحة: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1883
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2020-2-41-51

المؤلفون: С. В. Винокурова, О. А. Халмурзаев, В. Б. Матвеев

المصدر: Cancer Urology; Том 14, № 2 (2018); 154-155 ; Онкоурология; Том 14, № 2 (2018); 154-155 ; 1996-1812 ; 1726-9776 ; 10.17650/1726-9776-2018-14-2

مصطلحات موضوعية: иммуногистохимический анализ, вирусная инфекция, вирус простого герпеса 1, вирус простого герпеса 2, цитомегаловирус, вирус папилломы человека

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/841/774; Panagiotakis, G.I., et al., Association of human herpes, papilloma and polyoma virus families with bladder cancer. Tumour Biol, 2013. 34(1): p. 71-9.; Shigehara, K., et al., Etiologic role of human papillomavirus infection in bladder carcinoma. Cancer, 2011. 117(10): p. 2067-76.; Polesel, J., et al., Urinary human polyomavirus and papillomavirus infection and bladder cancer risk. Br J Cancer, 2012. 106(1): p. 222-6.; Li, N., et al., Human papillomavirus infection and bladder cancer risk: a meta-analysis. J Infect Dis, 2011. 204(2): p. 217-23.; Abe, T., et al., Infiltration of Epstein-Barr virus-harboring lymphocytes occurs in a large subset of bladder cancers. Int J Urol, 2008. 15(5): p. 429-34.; Chuang, C.K. and S.K. Liao, Epstein-Barr virus infection in urothelial transitional cell carcinoma tissues. BJU Int, 2004. 93(4): p. 495-8.; Robles, C., et al., Bladder cancer and seroreactivity to BK, JC and Merkel cell polyomaviruses: the Spanish bladder cancer study. Int J Cancer, 2013. 133(3): p. 597-603.; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/841; undefined

الاتاحة: https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/841

المصدر: Onkourologiâ, Vol 14, Iss 2, Pp 154-155 (2018)

مصطلحات موضوعية: рак мочевого пузыря, вирусная инфекция, вирус простого герпеса 1, вирус простого герпеса 2, цитомегаловирус, вирус папилломы человека, иммуногистохимический анализ, Medicine

Relation: https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/841; https://doaj.org/toc/1726-9776; https://doaj.org/toc/1996-1812; https://doaj.org/article/7abfd1d0c1364e48987e0cd6d48c669c

الاتاحة: https://doaj.org/article/7abfd1d0c1364e48987e0cd6d48c669c

المؤلفون: Фесенко, Марія Євгенівна, Мелащенко, Олена Іванівна, Пєший, Микола Миколайович, Похилько, Валерій Іванович, Цвіренко, Світлана Миколаївна, Фесенко, Мария Евгеньевна, Мелащенко, Елена Ивановна, Пеший, Николай Николаевич, Похилько, Валерий Иванович, Цвиренко, Светлана Николаевна, Fesenko, M. Ye., Melashchenko, O. I., Pyeshyi, M. M., Pokhylko, V. I., Tsvirenko, S. M.

مصطلحات موضوعية: діти, цитомегаловірус, вірус простого герпесу І типу, захворюваність, дети, цитомегаловирус, вирус простого герпеса I типа, заболеваемость, children, Cytomegalovirus (CMV), Herpes simplex virus type I (HSV>1, morbidity

Relation: Катамнестичні спостереження протягом 10 років за дітьми, які народилися від серопозитивних матерів (інфікованих цитомегаловірусом та вірусом простого герпесу І типу) / М. Є. Фесенко, О. І. Мелащенко, М. М. Пєший [та ін.] // Сучасна педіатрія. Україна. – 2019. – № 6 (102). – С. 49–54.; 2706-6134 (Online); 2663-7553 (Print); УДК 616-053.2:618.4:616.97; http://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/11679

الاتاحة: http://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/11679

المؤلفون: G. R. Fatkullina, V. A. Anokhin, Г. Р. Фаткуллина, В. А. Анохин

المصدر: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 64, № 5 (2019); 235-240 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 64, № 5 (2019); 235-240 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2019-64-5

مصطلحات موضوعية: вирус простого герпеса 1-го и 2-го типов, herpes viruses, unilateral laterothoracic exanthema, Epstein–Barr virus, human herpes virus type 6, cytomegalovirus, varicella zoster virus, human herpes virus type 7, simple herpes types 1 and 2, герпесвирусы, односторонняя латероторакальная экзантема, Эпштейна–Барр вирус, вирус герпеса человека 6-го типа, цитомегаловирус, вирус varicella zoster, вирус герпеса человека 7-го типа

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/999/856; Brunner M.J., Rubin L., Dunlap F. A new papular erythema of childhood. Arch Dermatol 1962; 85: 539–540.; Bodemer C., de Prost Y. Unilateral laterothoracicexanthem in children: a new disease? J Am Acad Dermatol 1992; 27(5 Pt 1): 693–696.; Taieb A., Megraud F., Legrain V., Mortureux P, Maleville J. Asymmetric perifl exuralexanthem of childhood. J Am Acad Dermatol 1993; 29(3): 391–393.; Gragasin F.S., Metelitsa A.L. Unilateral laterothoracic exanthem. CMAJ. 2012; 184(3): 322. DOI:10.1503 / cmaj.110315; Coustou D., Leaute-Labreze C., Bioulac-Sage P., Labbe L., Taieb A. Asymmetric periflexural exanthem of childhood: a clinical, pathologic, and epidemiologic prospective study. Arch Dermatol 1999; 135: 799–803.; McCuaig C.C., Russo P., Powell J., Pedneault L., Lebel P., Marcoux D. Unilateral laterothoracic exanthem. A clinicopathologic study of forty-eight patients. J Am Acad Dermatol 1996; 34: 979–984.; Harangi F., Várszegi D., Szücs G. Asymmetric periflexural exanthem of childhood and viral examinati ons. Pediatr Dermatol 1995; 12: 112–115.; Laur W.E. Unilateral laterothoracic exanthema in children. J Am Acad Dermatol 1993; 29: 799–780.; Pauluzzi P., Festi ni G., Gelmetti C. Asymmetric perifl exural exanthem of childhood in an adult pati ent with parvovirus B19. J Eur Acad Dermatol Venereol 2001; 15: 372–374.; Al Yousef Ali A., Farhi D., De Maricourt S., Dupin N. Asymmetric perifl exural exanthema associated with HHV7 infection. Eur J Dermatol 2010; 20: 230–231. DOI:10.1684/ejd.2010.0854.; Duarte A.F., Cruz M.J., Baudrier T., Mota A, Azevedo F. Unilateral laterothoracic exanthem and primary Epstein–Barr virus infection: case report. Pediatr Infect Dis J 2009; 28(6): 549–550. DOI:10.1097/INF.0b013e318193eca7; Niedermeier A., Pfützner W., Ruzicka T., Thomas P., Happle R. Superimposed lateralized exanthem of childhood: report of a case related to adenovirus infection. Clin Exp Dermatol 2014; 39(3): 351–353. DOI:10.1111/ced.12311; Овсянников Д.Ю., Халед М., Дегтярева Е.А. Односторонняя латероторакальная экзантема. Земский Врач 2013; 1(18): 42–44. [Ovsyannikov D.Yu., Haled M., Degtyaryova Е.A. Unilateral laterothoracic exanthema. Zemskii Vrach 2013; 1(18): 42–44 (in Russ.)]; Овсянников Д.Ю., Халед М., Бидаси В., Дегтярева Е.А. Асимметричная перифлексуральная экзантема. Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Сперанского 2013; 92(1): 62–64. [Ovsyannikov D.Yu., Haled M., Bidasi V., Degtyareva Е.A. Asymmetric Periflexural Exanthema. Pediatriya. Zhurnal im. G.N. Speranskogo (Pediatria. Journal named after G.N. Speransky) 2013; 92(1): 62–64 (in Russ.)]; Овсянников Д.Ю., Тимаков Е.Ю., Колтунов И.Е. Дифференциальная диагностика экзантем у детей. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение 2017; 5: 12–21. [Ovsyannikov D.Yu., Timakov Е.Yu., Koltunov I.Е. Differential diagnosis of exanthema in children. Infektsionnye bolezni: novosti, mneniya, obuchenie 2017; 5: 12–21 (in Russ.)]; Хегер П.Г. Детская дерматология. М.: Изд. Панфилова; БИНОМ, Лаборатория знаний, 2013; 648. [Heger P.G. Pediatric Dermatology. Moscow: Izd. Panfilova; BINOM, Laboratoriya znanii, 2013; 648 (in Russ.)]; Agut H., Bonnafous P., Gautheret-Deiean A. Laboratory and clinical aspects of human herpesvirus 6 infections. Clin Microbiol Rev 2015; 28(2): 313–335.; Фаткуллина Г. Р., Анохин В. А., Джафарова А. Н. Диссеминированные герпетические инфекции у детей на современном этапе. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2015; 60(5): 174–178. [Fatkullina G.R., Anokhin V.A., Jafarova A.N. Disseminated herpes infections in children at the present stage. Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics) 2015; 60(5): 174–178 (in Russ.)]; Ben mʹrad M., Leclerc-Mercier S., Blanche P., Franck N., Rozenbera F., Fulla Y. et al. Drug-Induced Hypersensitivity Syndrome Clinical and Biologic Disease Patterns in 24 Patients. Medicine 2009; 88(3): 131–140.; Shiohara T., KanoY., Takahashi R. Current Concepts on the Diagnosis and Pathegenesis of Drug-induced Hypersensitivity Syndrome. JMJA 2009; 52: 5: 347–352.; Зайков С.В., Богомолов А.Е. Бондарчук О.Б. Синдром хронической усталости: клиника, диагностика, лечение. Новости медицины и фармации 2013; 16: 467. [Zajkov S.V., Bogomolov A.E., Bondarchuk O.B. Chronic fatigue Syndrome: clinical features, diagnosis, treatment. Novosti meditsiny i farmatsii 2013; 16: 467 (in Russ.)]; Fernandez-Ayala M., Carrascosa M.F, Salcines-Caviedes J.R., Gonzalez-Gay M.A. Idiopathic chronic polyserositis with massive ascites responding to colchicines in adult: A case report. Internal Medicine 2015; 2(1): 44–51. DOI:10.5430/crim.v2n1p44; https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/999

الاتاحة: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/999
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2019-64-5-235-240

المؤلفون: N. Mazurkova A., T. Kukushkina A., G. Vysochina I., Z. Ibragimova B., I. Lobanova E., E. Filippova I., O. Mazurkov Yu., E. Makarevich V., L. Shishkina N., A. Agafonov P., Н. Мазуркова А., Т. Кукушкина А., Г. Высочина И., Ж. Ибрагимова Б., И. Лобанова Е., Е. Филиппова И., О. Мазурков Ю., Е. Макаревич В., Л. Шишкина Н., А. Агафонов П.

المصدر: Drug development & registration; № 1 (2016); 118-127 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; № 1 (2016); 118-127 ; 2658-5049 ; 2305-2066

مصطلحات موضوعية: extracts of lady's mantle (Alchemilla vulgaris L.), antiviral activity, herpes simplex virus, экстракты манжетки обыкновенной (Alchemilla vulgaris L.), противовирусная активность, вирус простого герпеса

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/230/227; K.J. Looker, A.S. Mag, M.T. May, K.M.E. Turner, P. Vickerman, S.L. Gottlieb, L.M. Newman. Global and Regional Estimates of Prevalent and Incident Herpes Simplex Virus Type 1 Infections in 2012 // PLOS ONE. 2015. DOI:10.1371/journal.pone. 0140765.; K.J. Looker, A.S. Mag, M.T. May, K.M.E. Turner, P. Vickerman, S.L. Gottlieb, L.M. Newman. Global Estimates of Prevalent and Incident Herpes Simplex Virus Type 2 Infections in 2012 // PLOS ONE. Published: January 21, 2015. DOI:10.1371/journal.pone.0114989.; Вирус простого герпеса // ВОЗ. Информационный бюллетень. 2015. № 400.; В.А. Исаков, Е.И. Архипова, Д.В. Исаков. Герпесвирусные инфекции человека. - СПб. 2006. С. 12-150.; А.Е. Шульженко, И.Н. Зуйкова. Подходы к иммунотерапии рецидивирующего простого герпеса // Эффективная фармакотерапия в акушерстве и гинекологии. 2010. № 3. С. 10-15.; Л.В. Крепкова, В.В. Бортникова, А.А. Шкаренков, Ю.Б. Кузнецов. Токсикологическая оценка нового противовирусного препарата гипорамина // Разработка и внедрение новых методов и средств традиционной медицины. Науч. тр. Т. 2. - М. 2001. С. 191-192.; Панавир в лечении вирусных инфекций: монография / Под ред. акад. РАМН проф. В.И. Сергиенко. - М. 2005. 172 с.; С.А. Вичканова. Эффективность алпизарина при герпесвирусных заболеваниях у детей и взрослых // Практическая фитотерапия. 2000. № 1. С. 34-39.; Н.И. Барам, А.И. Исмаилов, Х.Л. Зияев, К.Ж. Режепов. Биологическая активность госсипола и его производных // Химия природн. соедин. 2004. № 3. С. 171-176.; С.А. Вичканова. Клинические исследования хелепина - противовирусного средства из травы Lespedeza hedysaroides (Pall.) Kitag. // Химия, технология, медицина: Сб. науч. трудов, посвящ. 75-летию Всерос. н.-и. института лекар. и аром. растений. - М. 2006. С. 480-484.; В.В. Бортникова. Сравнительная токсикологическая характеристика и новые фармакологические свойства антимикробных и противовирусных препаратов растительного происхождения: автореф. дисс. . к.биол.н. - Купава. 1988. 23 с.; В.М. Баева. Фармакогностическое изучение лекарственных растений с использованием молекулярно-биологических методов: автореф. дисс. . д.фарм.н. - М. 2009. 48 с.; К.П. Глазунова. Апомиксис у восточноевропейских представителей рода Alchemilla L.: автореф. дисс. . к.биол.н. - М. 1983. 24 с.; C.K. Черепанов. Сосудистые растения России и сопредельных государств (в пределах бывшего СССР). Русское издание. - СПб.: Мир и семья, 1995. 992 с.; Флора Центральной Сибири. II Розоцветные - Астровые / Под ред. Л.И. Малышева и Г.А. Пешковой. - Новосибирск: Изд-во «Наука» Сибирское отделение, 1979. 1047 с.; И.А. Губанов, К.В. Киселева, В.С. Новиков, В.Н. Тихомиров. Иллюстрированный определитель растений Средней России. Т. 2. - М. 2003. 665 с.; О.В. Жукова. Популяционное исследование микровидов манжетки Alchemilla vulgaris L.s.I., Rosaceae: автореф. дис. . к.биол.н. - Йошкар-Ола. 2008. 24 с.; Е.В. Зорина. Фармакогностическое изучение видов рода Alchemilla L. Пермского края: автореф. дис. . к.биол.н. - Пермь. 2009. 24 с.; Флора Восточной Европы. Т.Х. Покрытосеменные. Двудольные / Под ред. Цвелева Н.Н. - СПб.: Изд-во Санкт-Петербургской государственной химико-фармацевтической академии, 2001. 670 с.; Биология. Большой энциклопедический словарь / Гл. ред. М. Гиляров - М.: Большая Российская энциклопедия, 2001. 864 с.; М.Г. Попов. Флора Средней Сибири. Т. 1. - М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1957. 554 с.; Определитель растений Алтайского края / Отв. ред. д.б.н., проф. Красноборов И.М. - Н-ск. 2003. 634 с.; Растительные ресурсы СССР. Цветковые растения, их химический состав, использование. Т. 3. Семейства Hydrangeaceae-Haloragaceae. - Л.: Наука, 1987. 326 с.; М.А. Носаль, И.М. Носаль. Лекарственные растения и способы их применения в народе. - Киев. 1959. 256 с.; Д. Йорданов, П. Николов, Асп. Бойчинов. Фитотерапия. 1970. - София. С. 91.; А. Брем. Жизнь растений. - М.: ЭКСМО, 2007.; Т.А. Кукушкина, А.А. Зыков, Л.А. Обухова. Манжетка обыкновенная (Alchemilla vulgaris L.) как источник лекарственных средств // Актуальные проблемы создания новых лекарственных препаратов природного происхождения: материалы IIY Межд.съезда. Фитофарм. С-Петербург. 2003. С. 64-69.; Ж.С. Лесовая, Д.М. Писарев, О.О. Новиков, Т.А. Романова. Разработка методики количественного определения флавоноидов в траве манжетки обыкновенной Alchemilla vulgaris L.s.l. // Научные ведомости Белгородского университета. Сер. Медицина. Фармация. 2010. № 22 (93). Вып. 12/2. С. 145-149.; K. Fuchs. Zur Kenntnis der Inhaltsstoffe von Prunus spinosa L. und einiger Rosaceenarten. Dissertation. - Munchen. 1959.; M. D”Agostino, L. Dini, E. Ramundo and F. Senatore. Flavonoid glycosides of Alchemilla vulgaris L. // Phytother. Res. 1998. № 12. P. 162-163.; В.А. Бандюкова. Распространение флавоноидов в некоторых семействах высших растений // Растит. рес. 1969. Т. 5. Вып. 4. С. 490-600.; D. Fraisse, A. Heitz, A. Carnat, A.P. Carnat, J.L. Lamaison. Quercetin 3-arabinipyranoside, a major flavonoid compound from Alchemilla xanthochlora // Fitoterapia. 2000. V. 71. № 4. P. 463-464.; В.М. Баева, С.А. Сасов. Современные аспекты изучения лекарственных растений // Научные труды. Т. XXXIV. - М. 1995. С. 242-244.; C.В. Теслов, Л.С. Макарова. О катехинах некоторых розоцветных Пермской области // Научные труды Пермск. фармац. ин-та. 1969. С. 217-223.; L. Tuka, H. Popesku. Determination of tannins in the plants of Alchemilla mollis (Buser) Rothm. аnd A. vulgaris L. // Clujul med. 1979. Vol. 52. № 1. P. 78-83.; В.Ю. Андреева, Г.И. Калинкина. Исследование химического состава надземной части манжетки обыкновенной Alchemilla vulgaris L.s.l.// Химия растит. сырья. 2000. № 2. С. 79-85.; В.Ю. Андреева. Влияние экстракта манжетки обыкновенной на морфофункциональные свойства эритроцитов при сердечно-сосудистой патологии: автореф. дис. . к.биол.н. - Томск. 2001. 24 с.; И.И. Мурин. Фитохимическое и фармакологическое изучение травы манжетки: автореф. дис. . к.фарм.н. - М. 2011. 24 с.; Pharmacopee Francaise. IX Edition. 5-e suppl. -Juillet. 1979.; F.Ch. Czgan, D. Frohne, Ch. Holtzel. Teedrogen und Phytopharmaka - Stuttgart. 1997. 668 p.; European Pharmacopeia. 2008. Monograph S. 1387.; М.Б. Плотников, A.A. Колтунов, О.И. Алиев, Г.И. Калинкина, Т.П. Березовская. Действие экстракта Alchemilla vulgaris L. на реологические свойства крови при экспериментальном инфаркте миокарда // Тр. 1-ой Всерос. конф. по ботаническому ресурсоведению. - СПб. 1996. С. 221.; Патент RU 2429852. A61P35 - Противоопухолевые средства; A61K31/70 - Углеводы; сахара; их производные (сорбит A61K 31/047) / С.А. Сасов, В.М. Баева, И.И. 2011.; Авт. свид. № 1073966. Способ получения Р-витаминного препарата / Г.Р. Азовцев, Е.Г. Изюмов, А.А. Зыков. 1983.; Патент РФ № 2128516. Способ получения Р-витаминного средства / Т.А. Кукушкина, Т.А. Жанаева, А.А Зыков, Л.А. Обухова, В.Г. Селятитская. 1999.; Ю.И. Бородин, В.Г. Селятитская, Л.А. Обухова, Н.А. Пальчикова, С.В. Одинцов, Т.А. Кукушкина. Влияние полифенольных соединений манжетки обыкновенной на морфофункциональное состояние щитовидной железы крыс при действии низких температур // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1999. Т. 127. № 6. С. 697-699.; Ю.И. Бородин, В.А. Головнев, А.Б. Гончаров, А.А. Зыков, А.Д. Тюлюбаев. Сравнительная характеристика клеточного состава регионарных лимфатических узлов сердца при повторном экспериментальном метаболическом инфаркте миокарда в условиях его коррекции биофлавоноидами манжетки обыкновенной // Бюллетень СО РАМН. 2003. № 2 (108). С. 73-80.; A.A. Зыков, В.А. Головнев, О.М. Белкина. Изменение жирнокислотного состава крови и лимфы на фоне действия биофлавоноидами манжетки обыкновенной при инфаркте миокарда // Бюллетень Сибирского отделения АМН СССР. 2000. № 1. С. 63-64.; А.Р. Шевцов. Морфологические преобразования в селезенке крысы при синдроме длительного сдавления и в условиях коррекции биофлавоноидами манжетки обыкновенной: автореф. дис. . к.мед.н. - Новосибирск. 2008. 24 с.; А.Б. Гончаров. Патоморфологические изменения в регионарных лимфатических узлах сердца при повторном метаболическом инфаркте миокарда и при его коррекции биофлавоноидами в эксперименте: автореф. дис. . к.мед.н. - Новосибирск. 2002. 24 с.; С.Я. Жанаева. Изменения лизосом печени крыс при интоксикации гербицидом 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислотой и коррекции полифенольным комплексом из листьев манжетки обыкновенной (Alchemilla vulgaris L.): автореф. дис. . к.биол.н. - Новосибирск. 2000. 24 с.; О.И. Алиев. Фармакологическая коррекция синдрома повышенной вязкости крови при сердечно-сосудистой патологии:автореф. дис. . к.мед.н. -Томск. 2004. 48 с.; O. Oktyabrsky, G. Vysochina, N. Muzyka, Z. Samoilova, Т. Kukushkina, G. Smirnova. Assesment of antioxidant acrivity of plant extracts using microbial test systems // Journal of Applied Microbiology. 2009. V. 106. P. 1175-1183.; Е.С. Лукьянова. Морфофункциональные изменения печени и почек в различные периоды синдрома длительного сдавления и на фоне применения ксенобиотиков: автореф. дисс. . д.мед.н. - Новосибирск. 2006. 48 с.; Л. Закс. Статистическое оценивание. - М.: Статистика, 1976. 598 с.; Virology Methods Manual / Ed. by: Brian W.J. Mahyand Hillar O. - Kangro: Academic Press, 1996. 374 р.; Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / Под ред. Хабриева Р.У. - М.: ОАО «Издательство «Медицина», 2005. 832 с.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/230

الاتاحة: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/230

المؤلفون: V. V. Neroev, L. A. Katargina, L. A. Kovaleva, G. I. Krichevskaya, N. V. Balatskaya, В. В. Нероев, Л. А. Катаргина, Л. А. Ковалева, Г. И. Кричевская, Н. В. Балацкая

المصدر: Ophthalmology in Russia; Том 16, № 1S (2019); 40-44 ; Офтальмология; Том 16, № 1S (2019); 40-44 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2017-6

مصطلحات موضوعية: вирус герпеса человека 6-го типа, central bacterial corneal ulcer of the prolonged course, PCR, Herpes simplex virus, Epstein- Barr virus, Human herpesvirus type 6, бактериальная язва роговицы затяжного течения, ПЦР, вирус простого герпеса, вирус Эпштейна — Барр

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/895/579; Майчук Ю.Ф., Кононенко Л.А. Синегнойная язва роговицы: эффективность глазных капель ломефлоксацина — Лофокс. Офтальмология. Восточная Европа. 2012;1(12):100–106.; Каспарова Е.А. Гнойные язвы роговицы: клиника, диагностика, консервативное лечение. Вестник офтальмологии. 2015;131(6):106–119. DOI:10.17116/oftalma20151316106-119; Zapp D., Loos D., Feucht N., Khoramnia R., Tandogan T., Reznicek L., Mayer C. Microbial keratitis-induced endophthalmitis: incidence, symptoms, therapy, visual prognosis and outcomes. BMC Ophthalmology. 2018;18(1):112. DOI:10.1186/s12886-018-0777-3; Henry C.R., Flynn H.W., Jr, Miller D., Forster R.K., Alfonso E.C. Infectious keratitis progressing to endophthalmitis: a 15-year study of microbiology, associated factors, and clinical outcomes. Ophthalmology. 2012;119(12):2443–2449. DOI:10.1016/j.ophtha.2012.06.030; Ковалева Л.А., Вахова Е.С. Алгоритмы фармакотерапии бактериальных язв роговицы. Эффективная фармакотерапия. 2013;(23):46–48.; Обрубов А.С., Слонимский А.Ю. Кератиты и гнойные язвы роговицы при контактной коррекции. Вестник офтальмологии. 2018;134(4):17–24. DOI:10.17116/oftalma201813404117; Зайцев А.В., Каспарова Е.А. Нетрансплантационные методы лечения язв роговицы. Вестник офтальмологии. 2012;128(5):65–67.; Каспарова Е.А. Современные методы лечения гнойных язв роговицы. Вестник офтальмологии. 2016;132(5):125–135. DOI:10.17116/oftalma20161325125-135; Миронкова Е.А., Демкин В.В., Слепова О.С., Садохина Т.С., Макаров П.В., Кугушева А.Э. Диагностика и роль ВГЧ-6-инфекции при кератопластике высокого риска. Российский офтальмологический журнал. 2012;5(3):30–33.; Слепова О.С., Светлова Е.В., Ковалева Л.А., Макаров П.В., Кугушева А.Э., Денисова Е.В., Вахова Е.С., Захарова Г.Ю., Кондратьева Ю.А., Андрюшин А.Е., Дёмкин В.В. Исследования вируса герпеса человека 6-го типа и других герпес-вирусов, вызывающих заболевания глаз, методом полимеразной цепной реакции. Вопросы вирусологии. 2015;60(6):45–48.; Светлова Е.В., Слепова О.С., Денисова Е.В., Ковалева Л.А., Еремеева Е.А., Макаров П.В., Кугушева А.Э., Вахова Е.С., Андрюшин А.Е., Дёмкин В.В. Результаты лабораторной диагностики ВГЧ-6-инфекции при разных формах заболеваний глаз. Российский офтальмологический журнал. 2016;9(1):73–77.; Ковалева Л.А., Кричевская Г.И., Балацкая Н.В. Бактериальная язва роговицы: причины затяжного течения, тактика лечения. Точка зрения. Восток-Запад. 2018;4:51–53. DOI:10.25276/2410-; 2018-4-51-53; Нероев В.В., Слепова О.С., Ковалева Л.А., Кричевская Г.И. Оптимизация этиологической диагностики и повышение эффективности лечения инфекционных язв роговицы центральной локализации. Российский офтальмологический журнал. 2017;10(3):56–61. DOI:10.21516/2072-0076-2017-10-3-56-61; Нероев В.В., Ковалева Л.А., Кричевская Г.И. Способ определения показаний к проведению противогерпетической терапии при центральных бактериальных язвах роговицы с затяжным течением. Патент на изобретение RU 2623069. 21.06.2017. Доступно: http://www.findpatent.ru/patent/262/2623069.html; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/895

الاتاحة: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/895
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2019-1S-40-44