المؤلفون: E. A. Safronova, L. V. Ryabova, A. V. Zurochka, M. A. Dobrynina, E. V. Zadorina, Э. А. Сафронова, Л. В. Рябова, А. В. Зурочка, М. А. Добрынина, Е. В. Задорина

المصدر: Medical Herald of the South of Russia; Том 15, № 1 (2024); 148-158 ; Медицинский вестник Юга России; Том 15, № 1 (2024); 148-158 ; 2618-7876 ; 2219-8075 ; 10.21886/2219-8075-2024-15-1

مصطلحات موضوعية: гуморальный иммунитет, acute coronary syndrome, coronary artery stenting, T lymphocytes, humoral immunity, острый коронарный синдром, стентирование коронарных артерий, Т-лимфоциты

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1874/1018; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/871; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/872; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/873; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/874; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/875; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/876; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/877; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/878; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/894; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/895; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/896; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/897; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/1874/898; Li D, Gao S. The interplay between T lymphocytes and macrophages in myocardial ischemia/reperfusion injury. Mol Cell Biochem. 2023. Epub ahead of print. PMID: 37540399. https://doi.org/10.1007/s11010-023-04822-z.; Добрынина М.А., Зурочка А.В., Комелькова М.В., Ло Ш., Зурочка В.А. и др. Исследование экспрессии CD45+ и CD46+ на субпопуляциях лимфоцитов периферической крови постковидных пациентов. Российский иммунологический журнал. 2022;25(4):431-436.; Добрынина М.А., Ибрагимов Р.В., Крицкий И.С., Верховская М.Д., Мосунов А.А., и др. Постковидный синдром иммунопатологии. Характеристика фенотипических изменений иммунной системы у постковидных пациентов. Медицинская иммунология. 2023;25(4):791-796.; Del Prete A, Conway F, Della Rocca DG, Biondi-Zoccai G, De Felice F, et al. COVID-19, Acute Myocardial Injury, and Infarction. Card Electrophysiol Clin. 2022;14(1):29-39. https://doi.org/10.1016/j.ccep.2021.10.004; Tajbakhsh A, Gheibi Hayat SM, Taghizadeh H, Akbari A, et al. COVID-19 and cardiac injury: clinical manifestations, biomarkers, mechanisms, diagnosis, treatment, and follow up. Expert Rev Anti Infect Ther. 2021;19(3):345-357. https://doi.org/10.1080/14787210.2020.1822737.; Raman B, Bluemke DA, Lüscher TF, Neubauer S. Long COVID: post-acute sequelae of COVID-19 with a cardiovascular focus. Eur Heart J. 2022;43(11):1157-1172. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehac031; Zuin M, Rigatelli G, Battisti V, Costola G, Roncon L, Bilato C. Increased risk of acute myocardial infarction after COVID-19 recovery: A systematic review and meta-analysis. Int J Cardiol. 2023;372:138-143. https://doi.org/10.1016/j.ijcard.2022.12.032; Azevedo RB, Botelho BG, Hollanda JVG, Ferreira LVL, Junqueira de Andrade LZ, et al. Covid-19 and the cardiovascular system: a comprehensive review. J Hum Hypertens. 2021;35(1):4-11. https://doi.org/10.1038/s41371-020-0387-4; Савчук К.С. Особенности Т-клеточного звена иммунитета и уровень натуральных киллеров у больных, перенесших COVID-19 с нарушениями углеводного обмена. Медицинская иммунология. 2023;25(4):797-802.; Савчук К.С., Рябова Л.В. Состояние функциональной активности нейтрофилов у больных с различными вариантами нарушений углеводного обмена, перенесших SARSCoV-2. Вестник Уральской медицинской академической науки. 2022;3:315-321.; Zhang L, Wang Z, Wang D, Zhu J, Wang Y. CD8+CD28+ T cells might mediate injury of cardiomyocytes in acute myocardial infarction. Mol Immunol. 2018;101:74-79. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2018.05.015; Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в биомедицинских исследованиях. Екатеринбург: РИО УрО РАН; 2018.; Хайдуков С.В., Байдун Л.А., Зурочка А.В., Тотолян А.А. Стандартизованная технология «Исследование субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови с применением проточных цитофлюориметров-анализаторов» (проект). Медицинская иммунология. 2012;14(3):255-268.; Маянский А.Н., Пазюк Е.А., Макарова Т. П., Паршакова Р.А., Пикуза О.И. Механизм и диагностические возможности реакции восстановления нитросинего тетразолия нейтрофилами человека. Казанский медицинский журнал. 1981;62(4):64-68.; Маянский, А.Н., Пикуза О.И. Клинические аспекты фагоцитоза. Казань: Магариф; 1993.; Фрейдлин И. С. Методы изучения фагоцитирующих клеток при оценке иммунного статуса человека: Учеб. пособие. Л.; 1986.; Маркина Н. В., Степнова О. А., Шамаева Т. Н. Учебное пособие по статистической обработке медико-биологических данных. Челябинск; 2014.; Casarotti ACA, Teixeira D, Longo-Maugeri IM, Ishimura ME, Coste MER, et al. Role of B lymphocytes in the infarcted mass in patients with acute myocardial infarction. Biosci Rep. 2021;41(2):BSR20203413. https://doi.org/10.1042/BSR20203413; Santos-Zas I, Lemarié J, Zlatanova I, Cachanado M, Seghezzi JC, et al. Cytotoxic CD8+ T cells promote granzyme B-dependent adverse post-ischemic cardiac remodeling. Nat Commun. 2021;12(1):1483. https://doi.org/10.1038/s41467-021-21737-9; https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1874

الاتاحة: https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1874
https://doi.org/10.21886/2219-8075-2024-15-1-148-158

المؤلفون: E. V. Lyubimova, E. L. Savlevich, A. V. Zurochka, E. S. Mitrofanova, O. M. Kurbacheva, Е. В. Любимова, Е. Л. Савлевич, А. В. Зурочка, Е. С. Митрофанова, О. М. Курбачева

المصدر: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 9 (2024); 168-176 ; Медицинский Совет; № 9 (2024); 168-176 ; 2658-5790 ; 2079-701X

مصطلحات موضوعية: алгоритм лечения, coronavirus disease (COVID-19), medical control level, vaccination, intranasal glucocorticosteroids, hyposmia, treatment algorithm, коронавирусная инфекция (COVID-19), степень медикаментозного контроля, вакцинация, интраназальные глюкокортикостероиды (инГКС), гипосмия

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8339/7359; Серова НС, Пшеничникова ЕС, Шебунина АБ. Сравнительный анализ применения методов лучевой диагностики в тактике ведения пациентов с новой коронавирусной инфекцией COVID-19 в разных странах мира. Российский электронный журнал лучевой диагностики. 2020;10(4):8–20. https://doi.org/10.21569/2222-7415-2020-10-4-8-20.; Акимкин ВГ, Попова АЮ, Плоскирева АА, Углева СВ, Семененко ТА, Пшеничная НЮ и др. COVID-19: эволюция пандемии в России. Сообщение I: проявления эпидемического процесса COVID-19. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2022;99(3):269–286. https://doi.org/10.36233/0372-9311-276.; Перхов ВИ, Корхмазов ВТ, Ходакова ОВ. Влияние пандемии COVID-19 на показатели заболеваемости населения. Современные проблемы здраво­ охранения и медицинской статистики. 2022;(4):588–609. https://doi.org/10.24412/2312-2935-2022-4-588-609.; Васенев СЛ. Влияние социально-экономических факторов на распространение пандемии COVID в регионах РФ. Фундаментальные исследования. 2021;(4):17–23. https://doi.org/10.17513/fr.42994.; Коркмазов МЮ, Ленгина МА, Коркмазов АМ, Кравченко АЮ. Влияние постковидного синдрома на качество жизни пациентов с аллергическим ринитом и эозинофильным фенотипом хронического полипозного риносинусита. Российский медицинский журнал. 2023;29(4):277–290. https://doi.org/10.17816/medjrf472079.; Добрынина МА, Зурочка АВ, Комелькова МВ, Ло Ш, Зурочка ВА, Ху Д и др. Исследование экспрессии CD45+ И CD46+ на субпопуляциях лимфоцитов периферической крови постковидных пациентов. Российский иммунологический журнал. 2022;25(4):431–436. https://doi.org/10.46235/1028-7221-1160-SOC.; Добрынина МА, Ибрагимов РВ, Крицкий ИС, Верховская МД, Мосунов АА, Сарапульцев ГП и др. Постковидный синдром иммунопатологии. Характеристика фенотипических изменений иммунной системы у постковидных пациентов. Медицинская иммунология. 2023;25(4):791–796. https://doi.org/10.15789/1563-0625-PCI-2707.; Рязанцев СВ, Будковая МА. Современный взгляд на лечение хронического полипозного риносинусита. Российская ринология. 2017;25(1):54–59. https://doi.org/10.17116/rosrino201725154-59.; Савлевич ЕЛ, Егоров ВИ, Савушкина ЕЮ, Зурочка АВ, Герасимов АН, Митрофанова ЕС, Любимова ЕВ. Изучение микробных факторов при обострении полипозного риносинусита. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2022;99(4):445–452. https://doi.org/10.36233/0372-9311-201.; Егоров ВИ, Савлевич ЕЛ. Место врожденного иммунитета в развитии хронического риносинусита и перспективы тактики консервативного лечения. Альманах клинической медицины. 2016;44(7):850–856. https://doi.org/10.18786/2072-0505-2016-44-7-850-856.; Yeo NK, Jang YJ. Rhinovirus infection-induced alteration of tight junction and adherens junction components in human nasal epithelial cells. Laryngoscope. 2010;120(2):346–352. https://doi.org/10.1002/lary.20764.; Papadopoulos NG, Papi A, Meyer J, Stanciu LA, Salvi S, Holgate ST, Johnston SL. Rhinovirus infection up-regulates eotaxin and eotaxin-2 expression in bronchial epithelial cells. Clin Exp Allergy. 2001;31(7):1060–1066. https://doi.org/10.1046/j.1365-2222.2001.01112.x.; Chua RL, Lukassen S, Trump S, Hennig BP, Wendisch D, Pott F et al. COVID-19 severity correlates with airway epithelium-immune cell interactions identified by single-cell analysis. Nat Biotechnol. 2020;38(8):970–979. https://doi.org/10.1038/s41587-020-0602-4.; Савлевич EЛ, Гаганов ЛЕ, Герасимов АН, Курбачева ОМ, Егоров ВИ, Зурочка АВ. Анализ клинического течения полипозного риносинусита и патоморфологического состава ткани носовых полипов у пациентов, проживающих в различных регионах Российской Федерации. Голова и шея. 2021;9(3):15–24. Режим доступа: https://hnj.science/analiz-klinicheskogo-techeniya-polipoznogo-rinosinusita-i-patomorfologicheskogo-sostava-tkani-nosovyx-polipov-u-pacientov-prozhivayushhix-v-razlichnyx-regionax-rossijskoj-federacii.; Lipworth BJ, Chan R, Carr T. Corticosteroid protection against COVID-19: Begin with the Nose. J Allergy Clin Immunol Pract. 2021;9(11):3941–3943. https://doi.org/10.1016/j.jaip.2021.08.025.; Strauss R, Jawhari N, Attaway AH, Hu B, Jehi L, Milinovich A et al. Intranasal Corticosteroids Are Associated with Better Outcomes in Coronavirus Disease 2019. J Allergy Clin Immunol Pract. 2021;9(11):3934–3940. https://doi.org/10.1016/j.jaip.2021.08.007.; Савлевич ЕЛ, Дынева МЕ, Гаганов ЛЕ, Егоров ВИ, Герасимов АН, Курбачева ОМ. Лечебно-диагностический алгоритм при разных фенотипах полипозного риносинусита. Российский аллергологический журнал. 2019;16(2):50–60. https://doi.org/10.36691/RJA1198.; Huynh T, Wang H, Luan B. In Silico Exploration of the Molecular Mechanism of Clinically Oriented Drugs for Possibly Inhibiting SARS-CoV-2’s Main Protease. J Phys Chem Lett. 2020;11(11):4413–4420. https://doi.org/10.1021/acs.jpclett.0c00994.; Zhang Y, Derycke L, Holtappels G, Wang XD, Zhang L, Bachert C, Zhang N. Th2 cytokines orchestrate the secretion of MUC5AC and MUC5B in IL-5-positive chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Allergy. 2019;74(1):131–140. https://doi.org/10.1111/all.13489.; Blanco-Melo D, Nilsson-Payant BE, Liu WC, Uhl S, Hoagland D, Møller R et al. Imbalanced Host Response to SARS-CoV-2 Drives Development of COVID-19. Cell. 2020;181(5):1036–1045. https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.04.026.; Lee S, Na HG, Choi YS, Bae CH, Song SY, Kim YD. SARS-CoV-2 Induces Expression of Cytokine and MUC5AC/5B in Human Nasal Epithelial Cell through ACE 2 Receptor. Biomed Res Int. 2022;2022:2743046. https://doi.org/10.1155/2022/2743046.; Shimizu S, Gabazza EC, Ogawa T, Tojima I, Hoshi E, Kouzaki H, Shimizu T. Role of thrombin in chronic rhinosinusitis-associated tissue remodeling. Am J Rhinol Allergy. 2011;25(1):7–11. https://doi.org/10.2500/ajra.2011.25.3535.; Cao PP, Wang ZC, Schleimer RP, Liu Z. Pathophysiologic mechanisms of chronic rhinosinusitis and their roles in emerging disease endotypes. Ann Allergy Asthma Immunol. 2019;122(1):33–40. https://doi.org/10.1016/j.anai.2018.10.014.; Wang BF, Cao PP, Wang ZC, Li ZY, Wang ZZ, Ma J et al. Interferon-γ-induced insufficient autophagy contributes to p62-dependent apoptosis of epithelial cells in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Allergy. 2017;72(9):1384–1397. https://doi.org/10.1111/all.13153.; Chen W. A potential treatment of COVID-19 with TGF-β blockade. Int J Biol Sci. 2020;16(11):1954–1955. https://doi.org/10.7150/ijbs.46891.; Савлевич ЕЛ, Зурочка АВ, Курбачева ОМ, Егоров ВИ, Шиловский ИП, Митрофанова ЕС, Любимова ЕВ. Плейоморфизм цитокинового профиля в ткани полипов в зависимости от фенотипа полипозного риносинусита. Вестник оториноларингологии. 2023;88(1):50–56. https://doi.org/10.17116/otorino20228801150.; Vaz de Paula CB, Nagashima S, Liberalesso V, Collete M, da Silva FPG, Oricil AGG et al. COVID-19: Immunohistochemical Analysis of TGF-β Signaling Pathways in Pulmonary Fibrosis. Int J Mol Sci. 2021;23(1):168. https://doi.org/10.3390/ijms23010168.; Носуля ЕВ. Острая респираторно-вирусная инфекция – сложности диагностики и лечения. Медицинский совет. 2013;(3):20–26. Режим доступа: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/959.; Савлевич ЕЛ, Симбирцев АС, Чистякова ГН, Терехина КГ, Бацкалевич НА. Состояние системного и местного иммунитета при острых назофарингитах на фоне ОРВИ. Терапия. 2021;(4):57–63. https://doi.org/10.18565/therapy.2021.4.57-63.; Pierce CA, Sy S, Galen B, Goldstein DY, Orner E, Keller MJ et al. Natural mucosal barriers and COVID-19 in children. JCI Insight. 2021;6(9):e148694. https://doi.org/10.1172/jci.insight.148694.; Loske J, Röhmel J, Lukassen S, Stricker S, Magalhães VG, Liebig et al. Preactivated antiviral innate immunity in the upper airways controls early SARS-CoV-2 infection in children. Nat Biotechnol. 2022;40(3):319–324. https://doi.org/10.1038/s41587-021-01037-9.; Yonker LM, Boucau J, Regan J, Choudhary MC, Burns MD, Young N et al. Virologic Features of Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 Infection in Children. J Infect Dis. 2021;224(11):1821–1829. https://doi.org/10.1093/infdis/jiab509.; Baggio S, L’Huillier AG, Yerly S, Bellon M, Wagner N, Rohr M et al. Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 (SARS-CoV-2) Viral Load in the Upper Respiratory Tract of Children and Adults With Early Acute Coronavirus Disease 2019 (COVID-19). Clin Infect Dis. 2021;73(1):148–150. https://doi.org/10.1093/cid/ciaa1157.; Chung E, Chow EJ, Wilcox NC, Burstein R, Brandstetter E, Han PD et al. Comparison of Symptoms and RNA Levels in Children and Adults With SARS-CoV-2 Infection in the Community Setting. JAMA Pediatr. 2021;175(10):e212025. https://doi.org/10.1001/jamapediatrics.2021.2025.; Koch CM, Prigge AD, Anekalla KR, Shukla A, Do Umehara HC, Setar L et al. Age-related Differences in the Nasal Mucosal Immune Response to SARS- CoV-2. Am J Respir Cell Mol Biol. 2022;66(2):206–222. https://doi.org/10.1165/rcmb.2021-0292OC.; Коркмазов МЮ, Казачков ЕЛ, Ленгина МА, Дубинец ИД, Коркмазов АМ. Причинно-следственные факторы развития полипозного риносинусита. Российская ринология. 2023;31(2):124-130. https://doi.org/10.17116/rosrino202331021124.; Савлевич ЕЛ, Курбачева ОМ. Особенности течения полипозного риносинусита в сочетании с аллергическим ринитом. Медицинский совет. 2019;(20):38–43. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2019-20-38-43.; Yang JM, Koh HY, Moon SY, Yoo IK, Ha EK, You S et al. Allergic disorders and susceptibility to and severity of COVID-19: A nationwide cohort study. J Allergy Clin Immunol. 2020;146(4):790–798. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2020.08.008.; Wang M, Wang C, Zhang L. Inflammatory endotypes of CRSwNP and responses to COVID-19. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2021;21(1):8–15. https://doi.org/10.1097/ACI.0000000000000700.; Klimek L, Jutel M, Bousquet J, Agache I, Akdis CA, Hox V et al. Management of patients with chronic rhinosinusitis during the COVID-19 pandemic-An EAACI position paper. Allergy. 2021;76(3):677–688. https://doi.org/10.1111/all.14629.; Akhlaghi A, Darabi A, Mahmoodi M, Movahed A, Kaboodkhani R, Mohammadi Z et al. The Frequency and Clinical Assessment of COVID-19 in Patients with Chronic Rhinosinusitis. Ear Nose Throat J. 2021:1455613211038070. https://doi.org/10.1177/01455613211038070.; Добрынина МА, Зурочка АВ, Комелькова МВ, Зурочка ВА, Сарапульцев АП и др. Нарушение B-клеточного звена иммунной системы и связанных с ним нарушений иммунитета у постковидных пациентов. Российский иммунологический журнал. 2023;26(3):241–250. https://doi.org/10.46235/1028-7221-9636-DIT.; Савлевич ЕЛ, Курбачева ОМ, Шачнев КН. Целесообразность применения иммунотропных препаратов в лечении хронического полипозного риносинусита. Российская ринология. 2018;26(3):41–46. https://doi.org/10.17116/rosrino20182603141.; https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8339

الاتاحة: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8339
https://doi.org/10.21518/ms2024-094

المؤلفون: E. A. Safronova, L. V. Ryabova, A. V. Zurochka, Э. А. Сафронова, Л. В. Рябова, А. В. Зурочка

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 25, № 4 (2023); 785-790 ; Медицинская иммунология; Том 25, № 4 (2023); 785-790 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: комплемент, СOVID-19, acute coronary syndrome, lymphocytes, immune system, complement, острый коронарный синдром, лимфоциты, иммунная система

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2834/1702; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2834/11984; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2834/11986; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2834/11987; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2834/11988; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2834/11989; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2834/11990; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2834/12237; Bansal M. Cardiovascular disease and COVID-19. Diabetes Syndr., 2020, Vol. 14, no. 3, pp. 247-250.; Freidlin I.S. Methods for studying phagocytic cells in the evaluation human immune status: Proc. allowance. Leningrad, 1986. 37 p.; Gang H., Peng D., Hu Y., Tang S., Li S., Huang Q. Interleukin-9-secreting CD4+ T cells regulate CD8+ T cells cytotoxicity in patients with acute coronary syndromes. APMIS, 2021, Vol. 129, no. 2, pp. 91-102.; Khusainova L.N., Smakaeva E.R., Sadikova R.I., Mingazetdinova L.N. Cellular markers of apoptosis in acute coronary syndrome. Medical Bulletin of Bashkortostan, 2013, Vol. 8, no. 3, pp. 78-81. (In Russ.); Lebedeva O.K., Ermakov A.I., Gaykovaya L.B., Kukharchik G.A. Features of monocytic and lymphocytic response in myocardial infarction with symptoms of acute heart failure in patients with type 2 diabetes mellitus. Translational Medicine, 2021, Vol. 8, no. 4, pp. 5-17. (In Russ.); Liu P.P., Blet A., Smyth D., Li H. The Science Underlying COVID-19: Implications for the Cardiovascular System. Circulation, 2020, Vol. 142, no. 1, pp. 68-78.; Liu Y., Zhao X., Zhong Y., Meng K., Yu K., Shi H., Wu B., Tony H., Zhu J., Zhu R., Peng Y., Mao Y., Cheng P., Mao X., Zeng Q. Heme oxygenase-1 restores impaired GARPCD4+CD25+ regulatory T cells from patients with acute coronary syndrome by upregulating LAP and GARP expression on activated T lymphocytes. Cell. Physiol. Biochem., 2015, Vol. 35, no. 2, pp. 553-570.; Safronova E.A., Ryabova L.V. Evaluation of the population and subpopulation spectrum of lymphocytes in patients with acute coronary syndrome. Russian Journal of Immunology, 2022, Vol. 25, no. 3, pp. 313-320. (In Russ.); Shafeghat M., Aminorroaya A., Rezaei N. How stable ischemic heart disease leads to acute coronary syndrome in COVID-19? Acta Biomed., 2021, Vol. 92, no. 5, e2021512. doi:10.23750/abm.v92i5.12013.; Sheth A.R., Grewal U.S., Patel H.P., Thakkar S., Garikipati S., Gaddam J., Bawa D. Possible mechanisms responsible for acute coronary events in COVID-19. Med. Hypotheses, 2020, Vol. 143, 110125. doi:10.1016/j.mehy.2020.110125.; Smirnova I.N., Antipova I.I., Titskaya E.V., Zaitsev A.A., Barabash L.V., Tonkoshkurova A.V., Zaripova T.N., Korshunov D.V. Analysis of the clinical and functional state of patients with acute coronary syndrome after endovascular interventions at the stationary stage of rehabilitation. Physiotherapy, Balneology and Rehabilitation, 2018, Vol. 17, no. 6, pp. 324-331. (In Russ.); Tian X., Guo R., Zhang Y., Xu L., Liu X., Hou Y. Effects of the sympathetic nervous system on regulatory T Cell and T helper 1 chemokine expression in patients with acute coronary syndrome. Neuroimmunomodulation, 2016б, Vol. 23, no. 3, pp. 168-178.; Zidar D.A., Mudd J.C., Juchnowski S., Lopes J.P., Sparks S., Park S.S., Ishikawa M., Osborne R., Washam J.B., Chan C., Funderburg N.T., Owoyele A., Alaiti M.A., Mayuga M., Orringer C., Costa M.A., Simon D.I., Tatsuoka C., Califf R.M., Newby L.K., Lederman M.M., Weinhold K.J. Altered maturation status and possible immune exhaustion of CD8 T lymphocytes in the peripheral blood of patients presenting with acute coronary syndromes. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 2016, Vol. 36, no. 2, pp. 389-397.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2834

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2834
https://doi.org/10.15789/1563-0625-FOT-2834

المؤلفون: M. A. Dobrynina, R. V. Ibragimov, I. S. Kritsky, M. D. Verkhovskaya, A. A. Mosunov, G. P. Sarapultsev, A. V. Zurochka, V. A. Zurochka, A. P. Sarapultsev, M. V. Komelkova, L. V. Ryabova, E. A. Praskurnichiy, М. А. Добрынина, Р. В. Ибрагимов, И. С. Крицкий, М. Д. Верховская, А. А. Мосунов, Г. П. Сарапульцев, А. В. Зурочка, В. А. Зурочка, А. П. Сарапульцев, М. В. Комелькова, Л. В. Рябова, Е. А. Праскурничий

المساهمون: The study was carried out under the state assignment “Immunophysiological and pathophysiological mechanisms of regulation and correction of body functions” (122020900136-4) and was supported by the RFBR and NSFC grant 20-515-55003.

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 25, № 4 (2023); 791-796 ; Медицинская иммунология; Том 25, № 4 (2023); 791-796 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: фагоциты, post-COVID patients, CD typing, immune system, immunoglobulins, complement, phagocytes, постковидные пациенты, CD-типирование, иммунная система, иммуноглобулины, комплемент

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2707/1722; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2707/11088; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2707/11089; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2707/11090; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2707/11091; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2707/11092; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2707/11093; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2707/11100; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2707/11298; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2707/12205; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2707/12215; Dobrynina M.A., Zurochka A.V., Komelkova M.V., Luo S., Zurochka V.A., Hu D., Ryabova L.V., Sarapultsev A.P. Study of CD45+ and CD46+ expression on subpopulations of peripheral blood lymphocytes in post-COVID patients. Russian Journal of Immunology, 2022, Vol. 25, no. 4, pp. 431-436. (In Russ.); Govender M., Hopkins F.R., Göransson R., Svanberg C., Shankar E.M., Hjorth M., Nilsdotter-Augustinsson Å., Sjöwall J., Nyström S., Larsson M. T cell perturbations persist for at least 6 months following hospitalization for COVID-19. Front. Immunol., 2022, Vol. 13, 931039. doi:10.3389/fimmu.2022.931039.; Guo L., Wang G., Wang Y., Zhang Q., Ren L., Gu X., Huang T., Zhong J., Wang Y., Wang X., Huang L., Xu L., Wang C., Chen L., Xiao X., Peng Y., Knight J.C., Dong T., Cao B., Wang J. SARS-CoV-2-specific antibody and T-cell responses 1 year after infection in people recovered from COVID-19: a longitudinal cohort study. Lancet Microbe, 2022, Vol. 3, no. 5, pp. e348-e356.; Khaydukov S.V., Baidun L.A., Zurochka A.V., Totolyan A.A. Standardized technology “Study of the subpopulation composition of peripheral blood lymphocytes using flow cytofluorometer-analyzers”. Russian Journal of Immunology, 2014, Vol. 8 (17), no. 4, pp. 974-992. (In Russ.); Kritsky I.S., Zurochka V.A., Hu D., Sarapultsev A.P. Evaluation of the dynamics of changes in the seroprevalence of COVID-19 in various social groups during the SARS-Cov-2 pandemic. Bulletin of the Ural Medical Academic Science, 2022, Vol. 19, no. 3, pp. 304-314. (In Russ.); Kunz N., Kemper C. Complement has brains-do intracellular complement and immunometabolism cooperate in tissue homeostasis and behavior. Front. Immunol., 2021, Vol. 12, 629986. doi:10.3389/fimmu.2021.629986.; Kuri-Cervantes L., Pampena M.B., Meng W., Rosenfeld A.M., Ittner C.A.G., Weisman A.R., Agyekum R.S., Mathew D., Baxter A.E., Vella L.A., Kuthuru O., Apostolidis S.A., Bershaw L., Dougherty J., Greenplate A.R., Pattekar A., Kim J., Han N., Gouma S., Weirick M.E., Arevalo C.P., Bolton M.J., Goodwin E.C., Anderson E.M., Hensley S.E., Jones T.K., Mangalmurti N.S., Luning Prak E.T., Wherry E.J., Meyer N.J., Betts M.R. Comprehensive mapping of immune perturbations associated with severe COVID-19. Sci. Immunol., 2020 Vol. 5, no. 49, eabd7114. doi:10.1126/sciimmunol.abd7114; Lucas C., Wong P., Klein J., Castro T.BR, Silva J., Sundaram M., Ellingson M.K., Mao T., Oh J.E., Israelow B., Takahashi T., Tokuyama M., Lu P., Venkataraman A., Park A., Mohanty S., Wang H., Wyllie A.L., Vogels C.B.F., Earnest R., Lapidus S., Ott I.M., Moore A.J., Muenker M.C., Fournier J.B., Campbell M., Odio C.D., Casanovas-Massana A.; Yale IMPACT Team; Herbst R., Shaw A.C., Medzhitov R., Schulz W.L., Grubaugh N.D., Dela Cruz C., Farhadian S., Ko A.I., Omer S.B., Iwasaki A. Longitudinal analyses reveal immunological misfiring in severe COVID-19. Nature, 2020, Vol. 584, no. 7821, pp. 463-469.; Mehandru S., Merad M. Pathological sequelae of long-haul COVID. Nat. Immunol., 2022, Vol. 23, no. 2, pp. 194-202.; Neidleman J., Luo X., Frouard J., Xie G., Gill G., Stein E.S., McGregor M., Ma T., George A.F., Kosters A., Greene W.C., Vasquez J., Ghosn E., Lee S., Roan N.R. SARS-CoV-2-Specific T cells exhibit phenotypic features of helper function, lack of terminal differentiation, and high proliferation potential. Cell Rep. Med., 2020, Vol. 1, no. 6, 100081. doi:10.1016/j.xcrm.2020.100081.; Shuwa H.A., Shaw T.N., Knight S.B., Wemyss K., McClure F.A., Pearmain L, Prise I., Jagger C., Morgan D.J., Khan S., Brand O., Mann E.R., Ustianowski A., Bakerly N.D., Dark P., Brightling C.E., Brij S.; CIRCO; Felton T., Simpson A., Grainger J.R., Hussell T., Konkel J.E., Menon M. Alterations in T and B cell function persist in convalescent COVID-19 patients. Med (N. Y.), 2021, Vol. 2, no. 6, pp. 720-735.e4.; Zurochka A., Dobrinina M., Zurochka V., Hu D., Solovyev A., Ryabova L., Kritsky I,, Ibragimov R., Sarapultsev A. Seroprevalence of SARS-CoV-2 antibodies in symptomatic individuals is higher than in persons who are at increased risk exposure: the results of the single-center, prospective, cross-sectional study. Vaccines (Basel), 2021, Vol. 9, no. 6, 627. doi:10.3390/vaccines9060627.; Zurochka A.V., Khaidukov S.V., Kudryavtsev I.V., Chereshnev V.A. Flow cytometry in biomedical research. Ekaterinburg: RIO Ural Branch of the Russian Academy of Sciences, 2018. 720 p.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2707

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2707
https://doi.org/10.15789/1563-0625-PCI-2707

المؤلفون: E. L. Savlevich, O. M. Kurbacheva, A. V. Zurochka, E. S. Mitrofanova, Yu. S. Smolkin, E. V. Lyubimova, Е. Л. Савлевич, О. М. Курбачева, А. В. Зурочка, Е. С. Митрофанова, Ю. С. Смолкин, Е. В. Любимова

المصدر: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 8 (2022); 111-116 ; Медицинский Совет; № 8 (2022); 111-116 ; 2658-5790 ; 2079-701X

مصطلحات موضوعية: интраназальные глюкокортикостероиды, chronic rhinosinusitis with nasal polyps, leukotriene receptor blocker, montelukast, phenotypes, intranasal corticosteroids, полипозный риносинусит, блокатор лейкотриеновых рецепторов, монтелукаст, фенотипы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/6877/6202; Papadopoulos N.G., Bernstein J.A., Demoly P., Dykewicz M., Fokkens W., Hellings P.W. et al. Phenotypes and endotypes of rhinitis and their impact on management: a PRACTALL report. Allergy. 2015;70(5):474–494. https://doi.org/10.1111/all.12573.; Klimek L., Bachert C., Pfaar O., Becker S., Bieber T., Brehler R. et al. ARIA guideline 2019: treatment of allergic rhinitis in the German health system. Allergologie Select. 2019;3(1):22–50. https://doi.org/10.5414/alx02120e.; Brożek J.L., Bousquet J., Agache I., Agarwal A., Bachert C., Bosnic-A nticevich S. et al. Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma (ARIA) guidelines – 2016 revision. J Aller and Clin Immunol. 2017;140(4):950–958. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2017.03.050.; Pezato R., Lobato Gregório L., Pérez-N ovo C., Ferreira T., Bezerra P., Kosugi E.M. Montelukast Has no Impact on the Systemic Production of TGFβ-1 in Patients with Nasal Polyposis Associated with Aspirin Intolerance. Int Arch Otorhinolaryngol. 2021;25(1):88–91. https://doi.org/10.1055/s-0040-1702972.; Okamura T., Sumitomo S., Morita K., Iwasaki Y., Inoue M., Nakachi S. et al. TGFβ3-expressing CD4+CD25(-)LAG3+ regulatory T cells control humoral immune responses. Nat Commun. 2015;6:6329. https://doi.org/10.1038/ncomms7329.; Kountakis S.E., Arango P., Bradley D., Wade Z.K., Borish L. Molecular and cellular staging for the severity of chronic rhinosinusitis. Laryngoscope. 2004;114(11):1895–1905. https://doi.org/10.1097/01.mlg.0000147917.43615.c0.; London N.R., Ramanathan M. The Role of the Sinonasal Epithelium in Allergic Rhinitis. Otolaryngol Clin North Amer. 2017;50(6):1043–1050. https://doi.org/10.1016/j.otc.2017.08.002.; Peters-Golden M., Gleason M., Togias A. Cysteinyl leukotrienes: multi-functional mediators in allergic rhinitis. Clin and Exp Aller. 2006;36(6):689. https://doi.org/10.1111/J.1365-2222.2006.02498.X.; Cingi C., Muluk N.B., Ipci K., Şahin E. Antileukotrienes in Upper Airway Inflammatory Diseases. Cur Aller and Ast Rep. 2015;15(11):64. https://doi.org/10.1007/s11882-015-0564-7.; Rasp G. Is there a role for leukotriene antagonists in the prevention of recurrent nasal polyps? Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2010;10(3):200–205. https://doi.org/10.1097/ACI.0b013e328339117f.; Машкова Т.А., Мальцев А.Б. Клинико-лабораторная оценка назальной обструк ции у больных полипозным риносинуситом. Российская оториноларингология. 2015;6(79):43–46. https://doi.org/10.18692/1810-48002015-6-43-46.; Du J., Ba L., Zhou J., Yu L., Liu R., Zhang J. et al. The role of cysteinyl leukotrienes and their receptors in refractory nasal polyps. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 2017;126:39–48. https://doi.org/10.1016/j.plefa.2017.09.009.; Bousquet J., Khaltaev N., Cruz A.A., Denburg J., Fokkens W.J., Togias A. et al. Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma (ARIA) 2008 update (in collaboration with the World Health Organization, GA(2) LEN and AllerGen). Allergy. 2008;(86):8–160. https://doi.org/10.1111/j.1398-9995.2007.01620.x.; Машкова Т.А., Мальцев А.Б., Неровный А.И., Бакулина Л.С. Роль блокатора лейкотриеновых рецепторов в восстановлении носового дыхания у больных полипозным риносинуситом. Вестник оториноларингологии. 2017;82(5):32–35. https://doi.org/10.17116/otorino201782532-35.; Wentzel J.L., Soler Z.M., DeYoung K., Nguyen S.A., Lohia S., Schlosser R.J. Leukotriene antagonists in nasal polyposis: a meta-analysis and systematic review. Am J Rhinol Allergy. 2013;27(6):482–489. https://doi.org/10.2500/ajra.2013.27.3976.; Савлевич Е.Л., Зурочка А.В., Курбачева О.М., Егоров В.И., Гаганов Л.В., Любимова Е.В. Трансформирующие факторы роста TGF-β1, TGF-β2 и TGF-β3 в ткани носовых полипов при разных фенотипах полипозного риносинусита. Медицинская иммунология. 2022;24(1):1417–1426. https://doi.org/10.15789/1563-0625-TGF-2365.; Савлевич Е.Л., Курбачева О.М. Особенности течения полипозного риносинусита в сочетании с аллергическим ринитом. Медицинский совет. 2019;(20):38–43. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2019-20-38-43.; Савлевич Е.Л., Дынева М.Е., Гаганов Л.Е., Егоров В.И., Герасимов А.Н., Курбачева О.М. Лечебно-диагностический алгоритм при разных фенотипах полипозного риносинусита. Российский аллергологический журнал. 2019;16(2):50–60. https://doi.org/10.36691/RJA1198.; Савлевич Е.Л., Черенкова В.А., Молодницкая А.Ю. Принципы базисной терапии полипозного риносинусита. Медицинский совет. 2020;(16):73–78. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2020-16-73-78.; Fokkens W.J., Lund V.J., Mullol J., Bachert C., Alobid I., Baroody F. et al. European position paper on rhinosinusitis and nasal polyps 2012. Rhinol Suppl. 2012;50(23):1–298. https://doi:10.4193/Rhino50E2.; Чучуева Н.Д., Савлевич Е.Л., Козлов В.С., Доронина В.А. Оценка эффективности препарата Олифрин в лечении атрофического ринита с использованием русскоязычной версии опросника SNOT-25 в модификации HOUSER. Российская оториноларингология. 2020;19(4):102–112. https://doi.org/10.18692/1810-4800-2020-4-102-112.; Hulse K.E., Stevens W.W., Tan B.K., Schleimer R.P. Pathogenesis of nasal polyposis. Clin Exp Allergy. 2015;45(2):328–346. https://doi.org/10.1111/cea.12472.; Holgate S.T., Peters-Golden M., Panettieri R.A., Henderson W.R. Jr. Roles of cysteinyl leukotrienes in airway inflammation, smooth muscle function, and remodeling. J Allergy Clin Immunol. 2003;111(1 Suppl.):18–34. https://doi.org/10.1067/mai.2003.25.; Vuralkan E., Saka C., Akin I., Hucumenoglu S., Unal B.U., Kuran G., Ocal B. Comparison of montelukast and mometasone furoate in the prevention of recurrent nasal polyps. Ther Adv Respir Dis. 2012;6(1):5–10. https://doi.org/10.1177/1753465811427577.; Савлевич Е.Л., Егоров В.И., Шачнев К.Н., Татаренко Н.Г. Анализ схем лечения полипозного риносинусита в Российской Федерации. Российская оториноларингология. 2019;18;(1):124–134. https://doi.org/10.18692/1810-4800-2019-1-124-134.; Van Gerven L., Langdon C., Cordero A., Cardelús S., Mullol J., Alobid I. Lack of long-term add-on effect by montelukast in postoperative chronic rhinosinusitis patients with nasal polyps. Laryngoscope. 2018;128(8):1743–1751. https://doi.org/10.1002/lary.26989.; https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/6877

الاتاحة: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/6877
https://doi.org/10.21518/2079-701X-2022-16-8-111-116

المؤلفون: E. L. Savlevich, A. V. Zurochka, O. M. Kurbacheva, V. I. Egorov, L. E. Gaganov, E. V. Lyubimova, Е. Л. Савлевич, А. В. Зурочка, О. М. Курбачева, В. И. Егоров, Л. Е. Гаганов, Е. В. Любимова

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 24, № 1 (2022); 147-156 ; Медицинская иммунология; Том 24, № 1 (2022); 147-156 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: ремоделирование слизистой оболочки верхних дыхательных путей, transforming growth factors TGF- β1, transforming growth factors TGF- β2, transforming growth factors TGF- β3, chronic rhinosinusitis, phenotypes, multiplex analysis, cytokines, asthma, allergic rhinitis, upper airway remodeling, трансформирующие факторы роста TGF- β1, трансформирующие факторы роста TGF- β2, трансформирующие факторы роста TGF- β3, фенотипы, мультиплексный анализ, цитокины, бронхиальная астма, аллергический ринит

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2365/1509; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8392; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8393; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8394; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8395; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8396; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2365/8397; Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в биомедицинских исследованиях. Екатеринбург: РИО УрО РАН, 2018. 720 с.; Камышова Е.С., Бобкова И.Н., Кутырина И.М. Современные представления о роли микроРНК при диабетической нефропатии: потенциальные биомаркеры и мишени таргетной терапии // Сахарный диабет, 2017. Т. 20, № 1. С. 42-50.; Савлевич Е.Л., Дынева М.Е., Гаганов Л.Е., Егоров В.И., Герасимов А.Н., Курбачева О.М. Лечебно-диагностический алгоритм при разных фенотипах полипозного риносинусита // Российский аллергологический журнал, 2019. Т. 16, № 2. С. 50-60.; Савлевич E.Л., Курбачева О.М., Егоров В.И., Дынева М.Е., Шиловский И.П., Хаитов М.Р. Уровень экспрессии генов цитокинов при разных фенотипах полипозного риносинусита // Вестник оториноларингологии, 2019. Т. 84, № 6. С. 42-47.; Савлевич Е.Л., Курбачева О.М. Особенности течения полипозного риносинусита в сочетании с аллергическим ринитом // Медицинский Совет, 2019. №. 20. С. 38-43.; Савлевич Е.Л., Черенкова В.А., Молодницкая А.Ю. Принципы базисной терапии полипозного риносинусита // Медицинский Совет, 2020. № 16. С. 73-78.; Dropmann A., Dediulia T., Breitkopf-Heinlein K., Korhonen H., Janicot M., Weber S.N., Thomas M., Piiper A., Bertran E., Fabregat I., Abshagen K., Hess J., Angel P., Coulouarn C., Dooley S., Meindl-Beinker N.M. TGF-1 and TGF-2 abundance in liver diseases of mice and men. Oncotarget, 2016, Vol. 7, no. 15, pp. 19499-19518.; Hupin C., Gohy S., Bouzin C., Lecocq M., Polette M., Pilette C. Features of mesenchymal transition in the airway epithelium from chronic rhinosinusitis. Allergy, 2014, Vol. 69, no. 11, pp. 1540-1549.; Huriyati E., Darwin E., Yanwirasti Y., Wahid I. Association of Inflammation Mediator in Mucosal and Tissue of Chronic Rhinosinusitis with Recurrent Nasal Polyp. Open Access Maced. J. Med. Sci., 2019, Vol. 7, no. 10, pp. 1635-1640.; Komai T., Okamura T., Inoue M., Yamamoto K., Fujio K. Reevaluation of Pluripotent Cytokine TGF-3 in Immunity. Int. J. Mol. Sci., 2018, Vol. 19, no. 8, 2261. doi:10.3390/ijms19082261.; Li X., Li C., Zhu G., Yuan W., Xiao ZA. TGF-1 Induces Epithelial-Mesenchymal Transition of Chronic Sinusitis with Nasal Polyps through MicroRNA-21. Int. Arch. Allergy Immunol., 2019, Vol. 179, no. 4, pp. 304-319.; Li Y.C., An Y.S., Wang T., Zang H.R. Analysis of transforming growth factor  signaling in chronic rhinosinusitis. Chin. Med. J. (Engl.), 2013, Vol. 126, no. 17, pp. 3340-3343.; Little S.C., Early S.B., Woodard C.R., Shonka D.C. Jr, Han J.K., Borish L., Steinke J.W. Dual action of TGF-beta1 on nasal-polyp derived fibroblasts. Laryngoscope, 2008, Vol. 118, no. 2, pp. 320-324.; Okamura T., Sumitomo S., Morita K., Iwasaki Y., Inoue M., Nakachi S., Komai T., Shoda H., Miyazaki J., Fujio K., Yamamoto K. TGF-3-expressing CD4+CD25(-)LAG3+ regulatory T cells control humoral immune responses. Nat. Commun., 2015, Vol. 6, 6329. doi:10.1038/ncomms7329.; Schleimer R.P. Immunopathogenesis of Chronic Rhinosinusitis and Nasal Polyposis. Annu. Rev. Pathol., 2017, Vol. 12, pp. 331-357.; Serpero L., Petecchia L., Sabatini F., Giuliani M., Silvestri M., Di Blasi P., Rossi GA. The effect of transforming growth factor (TGF)-beta1 and (TGF)-beta2 on nasal polyp fibroblast activities involved upper airway remodeling: modulation by fluticasone propionate. Immunol. Lett., 2006, Vol. 105, no. 1, pp. 61-67.; Shi L.L., Xiong P., Zhang L., Cao P.P., Liao B., Lu X., Cui Y.H., Liu Z. Features of airway remodeling in different types of Chinese chronic rhinosinusitis are associated with inflammation patterns. Allergy, 2013, Vol. 68, no. 1, pp. 101-109.; Sidhu S.S., Yuan S., Innes A.L., Kerr S., Woodruff P.G., Hou L., Muller S.J., Fahy J.V. Roles of epithelial cell-derived periostin in TGF-beta activation, collagen production, and collagen gel elasticity in asthma. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 2010, Vol. 107, no. 32, pp. 14170-14175.; Teranishi Y., Jin D., Takano S., Sunami K., Takai S. Decrease in number of mast cells in resected nasal polyps as an indicator for postoperative recurrence of chronic rhinosinusitis. Immun. Inflamm. Dis., 2019, Vol. 7, no. 3, pp. 191-200.; Travis M.A., Sheppard D. TGF- activation and function in immunity. Annu. Rev. Immunol., 2014, Vol. 32, pp. 51-82.; Tsuchida Y., Sumitomo S., Ishigaki K., Suzuki A., Kochi Y., Tsuchiya H., Ota M., Komai T., Inoue M., Morita K., Okamura T., Yamamoto K., Fujio K. TGF-3 Inhibits Antibody Production by Human B Cells. PLoS One, 2017, Vol. 12, no. 1, e0169646. doi:10.1371/journal.pone.0169646.; van Bruaene N., Derycke L., Perez-Novo C.A., Gevaert P., Holtappels G., De Ruyck N., Cuvelier C., van Cauwenberge P., Bachert C. TGF-beta signaling and collagen deposition in chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol., 2009, Vol. 124, no. 2, pp. 253-259.; van Zele T., Claeys S., Gevaert P., van Maele G., Holtappels G., van Cauwenberge P., Bachert C. Differentiation of chronic sinus diseases by measurement of inflammatory mediators. Allergy, 2006, Vol. 61, no. 11, pp. 1280-1289.; Yamin M., Holbrook E.H., Gray S.T., Busaba N.Y., Lovett B., Hamilos D.L. Profibrotic transforming growth factor beta 1 and activin A are increased in nasal polyp tissue and induced in nasal polyp epithelium by cigarette smoke and Toll-like receptor 3 ligation. Int. Forum Allergy Rhinol., 2015, Vol. 5, no. 7, pp. 573-582.; Yang Y., Zhang N., Lan F., van Crombruggen K., Fang L., Hu G., Hong S., Bachert C. Transforming growth factor-beta 1 pathways in inflammatory airway diseases. Allergy, 2014, Vol. 69, no. 6, pp. 699-707.; Yarmohammadi M.E., Saderi H., Izadi P., Afshin MS., Hashemi M. The role of transforming growth factor beta 1 (TGF1) in nasal and paranasal sinuses polyposis. Iran J. Pathol., 2010, Vol. 5, no. 2, pp. 72-76.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2365

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2365
https://doi.org/10.15789/1563-0625-TGF-2365

المؤلفون: E. V. Davydova, A. V. Zurochka, V. A. Zurochka, D. S. Altman, Е. В. Давыдова, А. В. Зурочка, В. А. Зурочка, Д. Ш. Альтман

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 21, № 6 (2019); 1043-1054 ; Медицинская иммунология; Том 21, № 6 (2019); 1043-1054 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2019-6

مصطلحات موضوعية: эндотелиальная дисфункция, early insufficiency, hyperlipidemia, monocytes, endothelial dysfunction, гиперлипидемия, моноциты

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1747/1219; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1747/4796; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1747/4797; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1747/4798; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1747/4799; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1747/4800; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1747/4801; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1747/4802; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1747/4803; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1747/4804; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1747/4805; Альтман Д.Ш., Давыдова Е.В. К вопросу о роли аутоиммунных механизмов в прогрессии ранних форм хронической ишемии мозга // Российский иммунологический журнал, 2013. Т. 7 (16), № 2-3 (1). С. 18-20.; Гринштейн А.Б., Шнайдер Н.А. Цереброваскулярные осложнения артериальной гипертонии. Красноярск: КГМА, 2002. 160 с.; Диагностика и лечение артериальной гипертензии. Российские рекомендации (четвертый пересмотр) // Системные гипертензии, 2010. № 3. С. 5-26.; Емченко Н.Л., Цыганенко О.И., Ковалевская Т.В. Универсальный метод определения нитратов в биосредах организма // Клиническая лабораторная диагностика, 1994. № 6. С. 19-20.; Коваль С.Н., Милославский Д.К., Снегурская И.А. Терапевтический ангиогенез при заболеваниях внутренних органов - возможности и перспективы // Вюник проблем бюлогп i медицини, 2013. Т. 1 (104), вип. 4. С. 20-27.; Коробейникова Э.Н. Показатели липидного обмена в сыворотке практически здорового населения, проживающего в Южно-Уральском регионе в условиях адаптации к климатическим и техногенным воздействиям: методические рекомендации. Челябинск, 2002. С. 40-43.; Шмидт Е.В. Классификация сосудистых поражений головного и спинного мозга // Журнал невропатологии и психиатрии, 1985. № 9. С. 1281-1288.; Berridge M.V., Herst P.M., Tan A.S. Tetrazolium dyes as tools in cell biology: new insights into their cellular reduction. Biotechnol. Annu. Rev., 2005, Vol. 11, pp. 127-152.; Felten D., Maida M.E. Psychoneuroimmunology // in book: Encylopedia of the human brain. Ed.-in-cnief V.S. Ramachandran. Academic Press, 2002, Vol. 4, pp. 103-127.; Gorelick P.B. Lipoprotein-associated phospholipase A2 and risk of stroke. Am. J. Cardiol., 2008, Vol. 101, no. 12A, pp. 34F-40F.; Hladovec J., Prerovsky I., Stanek V. Circulating endothelial cells in acute myocardial infarction and angina pectoris. Klin. Wochenschr., 1978, Vol. 56, pp. 1033-1036.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1747

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1747
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-6-1043-1054

المؤلفون: E. L. Savlevich, A. V. Zurochka, S. V. Khaidukov, Е. Л. Савлевич, А. В. Зурочка, С. В. Хайдуков

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 21, № 4 (2019); 715-724 ; Медицинская иммунология; Том 21, № 4 (2019); 715-724 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2019-4

مصطلحات موضوعية: CD-маркеры, standard drug therapy, lymphocytes, systemic immunity, flow cytometry, CD cellular markers, стандартная консервативная терапия, лимфоциты, системный иммунитет, проточная цитометрия

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1744/1168; Артюшкин С.А. Сравнительная оценка влияния хронического полипозного риносинусита и злокачественных новообразований на реактивность системного кровообращения. Российская оториноларингология. 2010;46 (3):205-210.; Зурочка А.В., Семенов М.В., Зурочка В.А., Хайдуков С.В. Изучение параметров иммунной системы и уровней Т-регуляторных клеток у пациентов, страдающих полипозным риносинуситом. Российский иммунологический журнал. 2011;5(14): 280-285.; Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в биомедицинских исследованиях. Екатеринбург: РИО УрО РАН, 2018. 720 с.; Савлевич Е.Л., Козлов В.С., Курбачева О.М. Современные тенденции диагностического поиска и терапии полипозного риносинусита. Российская ринология. 2018;26(2),3-4:41-47.; Савлевич Е.Л., Курбачева О.М., Хайдуков С.В., Герасимов А.Н., Амантурлиева М.Е., Симбирцев А.С. К вопросу о диагностической значимости иммунологических показателей при хроническом полипозном риносинусите. Российский аллергологический журнал. Российский аллергологический журнал. 2017;4/5:40-45.; Савлевич Е.Л., Курбачева О.М., Шачнев К.Н. Целесообразность применения иммунотропных препаратов в лечении хронического полипозного риносинусита. Российская ринология. 2018;26(3): 41-46.; Савлевич Е.Л., Хайдуков С.В., Курбачева О.М., Бондарева Г.П., Шачнев К.Н., Симбирцев А.С. Показатели клеточного иммунитета пациентов с хроническим полипозным риносинуситом. Медицинская иммунология. 2017;19(6):731-738.; Семенов М.В., Зурочка А.В., Зурочка В.А. Изменение количества Т-регуляторных клеток у пациентов, страдающих полипозным риносинуситом на фоне лечения назальными топическими глюкокортикостероидами. Медицинская иммунология. 2012;14(3):233-238.; Хайдуков С.В., Зурочка А.В., Тотолян Арег А., Черешнев В.А. Основные и малые популяции лимфоцитов периферической крови человека и их нормативные значения (методом многоцветного цитометрического анализа). Медицинская Иммунология. 2009;11(2-3):227-238.; Bachert C, Zhang N, Hellings PW, Bousquet J. Endotype-driven care pathways in patients with chronic rhinosinusitis. J Allergy Clin Immunol. 2018;141(5):1543-1551.; DeConde AS, Mace JC, Levy JM, Rudmik L, Alt JA, Smith TL. Prevalence of polyp recurrence after endoscopic sinus surgery for chronic rhinosinusitis with nasal polyposis. Laryngoscope. 2017;127(3):550-555.; Dennis S.K, Lam K, Luong A. A review of classification schemes for chronic rhinosinusitis with nasal polyposis endotypes. Laryngoscope Investig Otolaryngol. 2016;1(5):130-134.; Fokkens WJ, Lund VJ, Mullol J, Bachert C, Alobid I, Baroody F, Cohen N, Cervin A, Douglas R, Gevaert P, Georgalas C, Goossens H, Harvey R, Hellings P, Hopkins C, Jones N, Joos G, Kalogjera L, Kern B, Kowalski M, Price D, Riechelmann H, Schlosser R, Senior B, Thomas M, Toskala E, Voegels R, Wang de Y, Wormald PJ. European position paper on rhinosinusitis and nasal polyps 2012. Rhinol Suppl. 2012;50(23):1-298.; Gurrola J, Borish L. Chronic rhinosinusitis: Endotypes, biomarkers, and treatment response. 2017;140(6):1499-1508.; Hellings PW, Fokkens WJ, Bachert C, Akdis CA, Bieber T, Agache I, Bernal-Sprekelsen M, Canonica GW, Gevaert P, Joos G, Lund V, Muraro A, Onerci M, Zuberbier T, Pugin B, Seys SF, Bousquet J; ARIA and EPOS working groups. Positioning the principles of precision medicine in care pathways for allergic rhinitis and chronic rhinosinusitis - A EUFOREA-ARIA-EPOS-AIRWAYS ICP statement. Allergy. 2017 Sep;72(9):1297-1305.; Rudmik L, Soler ZM, Mace JC, Schlosser RJ, Smith TL. Economic evaluation of endoscopic sinus surgery versus continued medical therapy for refractory chronic rhinosinusitis. Laryngoscope. 2015; 125(1): 25–32.; Senior BA, Glaze C, Benninger MS. Use of the Rhinosinusitis Disability Index (RSDI) in rhinologic disease. Senior BA1, Glaze C, Benninger MS. Am J Rhinol. 2001;15(1):15-20.; Stevens WW, Peters AT, Hirsch AG, Nordberg CM, Schwartz BS, Mercer DG, Mahdavinia M, Grammer LC, Hulse KE, Kern RC, Avila P, Schleimer RP Clinical Characteristics of patients with chronic rhinosinusitis with nasal polyps, asthma, and aspirin-exacerbated respiratory disease. J Allergy Clin Immunol Pract. 2017;5(4):1061-1070.; Tosun F, Arslan HH, Karslioglu Y, Deveci MS, Durmaz A. Relationship between postoperative recurrence rate and eosinophil density of nasal polyps. Ann Otol Rhinol Laryngol. 2010;119(7):455–459.; Van Zele T, Holtappels G, Gevaert P, Bachert C. Differences in initial immunoprofiles between recurrent and nonrecurrent chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Am J Rhinol Allergy. 2014;28(3):192-198.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1744

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1744
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-4-715-724

المؤلفون: E. V. Davydova, A. V. Zurochka, Е. В. Давыдова, А. В. Зурочка

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 19, № 4 (2017); 441-452 ; Медицинская иммунология; Том 19, № 4 (2017); 441-452 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2017-4

مصطلحات موضوعية: иммунотропное действие, asthenic syndrome, Ladasten, immunotropic action, астенический синдром, Ладастен

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1315/958; Аведисова А.С. Антиастенические препараты как терапия первого выбора при астенических расстройствах // Русский медицинский журнал, 2004. Т. 12, № 22. С. 1290. [Avedisova A.S. Anti-asthenic drugs as a first-line therapy in asthenic disorders. Russkiy meditsinskiy zhurnal = Russian Medical Journal, 2004, Vol. 12, no. 22, p. 1290. (In Russ.)]; Булатова Г.Р., Новикова Л.Б., Науширванов О.Р., Нигматуллин Р.Х. Характеристика психовегетативного синдрома и его медикаментозная коррекция у сотрудников правоохранительных органов // Вестник современной клинической медицины, 2015. Т. 8. № 6. С. 9-14. [Bulatova G.R., Novikova L.B., Naushirvanov O.R., Nigmatullin R.Kh. Characteristics of psycho-vegetative syndrome and drug correction of law enforcement officers. Vestnik sovremennoy klinicheskoy meditsiny = Journal of Modern Clinical Medicine, 2015, Vol. 8, no. 6, pp. 9-14. (In Russ.)]; Вахитова Ю.В., Садовников C.B., Ямиданов P.C., Середенин С.Б. Деметилирование остатков цитозина в промоторной области гена тирозингидроксилазы в клетках головного мозга крыс под действием производного аминоадамантана – ладастена // Генетика, 2006. Т. 42, № 7. С. 968-975. [Vakhitova Yu.V., Sadovnikov S.V., Yamidanov R.S., Seredenin S.B. De-methylation of cytosine residues in the tyrosine hydroxylase promoter region of the gene in brain cells of rats under the action of aminoadamantane derivative – Ladasten. Genetika = Genetics, 2006, Vol. 42, no. 7, pp. 968-975. (In Russ.)]; Вахитова Ю.В., Ямиданов Р.С., Середенин С.Б. Ладастен индуцирует экспрессию генов, регулирующих биосинтез дофамина в различныз структурах мозга крыс // Экспериментальная и клиническая фармакология, 2004. Т. 67, № 4. C. 7-11. [Vakhitova Yu.V., Yamidanov R.S., Seredenin S.B. Ladasten induces the expression of genes governing the biosynthesis of dopamine in various structures of rat brain. Eksperimentalnaya i klinicheskaya farmakologiya = Experimental and Clinical Pharmacology, 2004, Vol. 67, no. 4, pp. 7-11. (In Russ.)]; Незнамов Г.Г., Сюняков С.А., Гришин С.А., Телешова Е.С., Бочкарев В.К., Ларкова М.А, Середенин С.Б. Ладастен – перспективное средство коррекции астенических нарушений, развивающихся в экстремальных условиях // Симпозиум, посвященный 75-летию ГосНИИИ ВМ «Боевой стресс: механизмы стресса в экстремальных условиях». М., 2005. С. 142-144. [Neznamov G.G., Syunyakov S.A., Grishin S.A., Teleshova E.S., Bochkarev V.K., Larkova M.A., Seredenin S.B. Ladasten – a promising means of correction of asthenic disorders developing in extreme conditions. Symposium dedicated to the 75th anniversary of the Research Institute of the VM «Combat stress: mechanisms of stress in extreme conditions.»]. Moscow, 2005, pp. 142-144.; Сибиряк C.B., Курчатова H.H., Юсупова Р.Ш., Сибиряк Д.С., Ахматова Н.К., Бикмаева А.Р., Вахитова Ю.В. Оценка индуцированного анти-СDЗмАт митогенеза и активности каспазы С, как способ характеристики реактивности Т-лимфоцитов в клинических и экспериментальных исследованиях // Россий иммунологический журнал, 2002. Т. 7, № 3. С. 265-267. [Sibiryak S.V., Kurchatova N.N., Yusupova R.Sh., Sibiryak D.S., Akhmatova N.K., Bikmaeva A.R., Vakhitova Yu.V. Evaluation of induced anti-SDZmAt mitogenesis and caspase C as a means of characterizing the reactivity of T lymphocytes in clinical and experimental studies. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal = Russian Immunological Journal, 2002, Vol. 7, no. 3, pp. 265-267. (In Russ.)]; Шмидт Е.В. Классификация сосудистых поражений головного и спинного мозга // Журнал невропатологии и психиатрии, 1985. № 9. С. 1281-1288. [Schmidt E.V. Classification of vascular lesions of the brain and spinal cord. Zhurnal nevropatologii i psikhiatrii = Journal of Neuropathology and Psychiatry, 1985, no. 9, pp. 1281-1288. (In Russ.)]; Naoki Otani, Hiroshi Nawashiro, Kimihiro Nagatani, Satoru Takeuchi, Hiroaki Kobayashi, Katsuji Shima. Mitogen-Activated Protein Kinase Pathways Following Traumatic Brain Injury. Neuroscience and Medicine, 2001, Vol. 2, no. 3, pp. 208-216.; Zaunders J.J., Dyer W.B., Munier M.L., Ip S., Liu J., Amyes E., Rawlinson W., De Rose R., Kent S.J., Sullivan J.S., Cooper D.A., Kelleher A.D. CD127+CCR5+CD38+++CD4+ Th1 effector cells are an early component of the primary immune response to vaccinia virus and precede development of interleukin-2+ memory CD4+ T cells. J. Virol., 2006, Vol. 80, no. 20, pp. 10151-10161.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1315

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1315
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2017-4-441-452

المؤلفون: Yu. N. Emelina, A. V. Zurochka, Ю. Н. Емелина, А. В. Зурочка

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 18, № 5 (2016); 443-450 ; Медицинская иммунология; Том 18, № 5 (2016); 443-450 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2016-5

مصطلحات موضوعية: поллиноз, cytokines ratio indexes, allergen-specific immunotherapy, hay fever, индексы соотношения цитокинов, аллергенспецифическая иммунотерапия

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1068/879; Гайдук И.М., Коростовцев Д.С., Шапорова Н.Л., Брейкин Д.В., Трусова О.В., Камаева И.А. Изменения иммунологических показателей при проведении сублингвальной аллерген-специфической иммунотерапии у детей с поллинозом // Медицинская иммунология, 2013, Т. 15, № 1. С. 51-54. [Gaiduk I.M., Korostovtsev D.S., Shaporova N.L., Breykin D.V., Trusov O.V., Kamaeva I.A. Changes in immunological parameters during sublingual allergen-specific immunotherapy in children with hay fever. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2013. Vol. 15, no. 1, pp. 51-54. (In Russ.)] http://dx.doi.org/10.15789/1563-0625-2013-1-51-54; Гущин И.С. Аллергическое воспаление и его фармакологический контроль. М.: Фармарус Принт, 1998. 252 с. [Gushin I.S. Allergic inflammation and pharmacological control]. Moscow: Farmarus Print, 1998. 252 p.; Зурочка А.В., Шестакова Е.В., Квятковская С.В., Дворчик Е.Е. Оценка иммунного статуса и продукции цитокинов у больных атопической и смешанной бронхиальной астмой // Медицинская иммунология, 2009. № 2-3. С. 279-286. [Zurochka A.V., Shestakova E.V., Kvyatkovskaya S.V., Dvorchik E.E. Evaluation of the immune status and cytokine production in patients with atopic and mixed asthma. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2009, no. 2-3, pp. 279-286. (In Russ.)] http://dx.doi.org/10.15789/1563-0625-2009-2-3-279-286; Зурочка А.В., Долгушин И.И., Квятковская С.В., Рябова Л.В. Латентная сенсибилизация. Челябинск: Челябинская государственная медицинская академия, 2005. 181 с. [Zurochka A.V., Dolgushin I.I., Kvyatkovskaya S.V., Ryabova L.V. Latent sensitization]. Chelyabinsk: Chelyabinsk State Medical Academy, 2005. 181 p.; Иванова Ю.В., Просекова Е.В., Шестовская Т.Н., Деркач В.В., Нетесова С.Ю. Аллергические заболевания у детей: особенности цитокинового и иммунного статуса // Иммунология. 2007. № 3. С. 157-161. Ivanova Yu.V., Prosekova E.V., Shestovskaya T.N., Derkach V.V., Netesova S.Yu. Allergic diseases in children: cytokine and immune status. Immunologiya = Immunology, 2007, no. 3, pp. 157-161. (In Russ.)]; Иванова Ю.В., Рожа К.Ш., Просекова Е.В., Шестовская Т.Н., Деркач В.В., Нетесова С.Ю., Щеголева О.В. Цитокиновый профиль и динамика синтеза IGE при аллергических заболеваниях у детей // Иммунология, 2010. № 3. С. 140-143. [Ivanova Yu.V., Rozsa K.S., Prosekova E.V., Shestovskaya T.N., Derkach V.V., Netesova S.Yu., Shchegolev O.V. Cytokine profile and dynamics of IGE synthesis in allergic diseases in children. Immunologiya = Immunology, 2010, no. 3, pp. 140-143. (In Russ.)]; Кетлинский С.А., Симбирцев А.С. Цитокины. СПб.: Фолиант. 2008. 552 с. [Ketlinsky S.A., Simbirtsev A.S. Cytokines]. St. Petersburg: Foliant, 2008. 552 p.; Просекова Е.В., Деркач В.В., Сабыныч В.А., Шестовская Т.Н., Иванова Ю.В., Нетесова С. Ю. Состояние иммунных и цитокиновых механизмов при аллергических заболеваниях у детей // Тихоокеанский медицинский журнал, 2007. № 2. С. 57-60. [Prosekova E.V., Derkach V.V., Sabynych V.A., Shestovskaya T.N., Ivanova Yu.V., Netesova S.Yu. Condition of immune and cytokine mechanisms at allergic diseases in children. Tikhookeanskiy meditsinskiy zhurnal = Pacific Medical Journal, 2007, no. 2, pp. 57-60. (In Russ.)]; Просекова Е.В., Деркач В.В., Шестовская Т.Н., Нетесова С.Ю., Иванова Ю.В. Особенности цитокинового профиля и иммунного статуса при аллергических заболеваниях у детей // Тихоокеанский медицинский журнал, 2005. № 3. С. 44-48. [Prosekova E.V., Derkach V.V., Shestovskaya T.N., Netesova S.Yu., Ivanova Yu.V. Features cytokine profile and immune status in allergic diseases in children. Tikhookeanskiy meditsinskiy zhurnal = Pacific Medical Journal, 2005, no. 3, pp. 44-48. (In Russ.)]; Просекова Е.В., Нетесова С.Ю., Сабыныч В.А., Забелина Н.Р., Щеголева О.В. Клинико-лабораторный алгоритм диагностики аллергического ринита у детей // Дальневосточный медицинский журнал, 2012. № 3. С. 76-79. [Prosekova E.V., Netesova S.Yu., Sabynych V.A., Zabelina N.R., Shchegoleva O.V. Clinical and laboratory diagnosis of allergic rhinitis in children algorithm. Dalnevostochnyy meditsinskiy zhurnal = Far East Medical Journal, 2012, no. 3, pp. 76-79. (In Russ.)]; Просекова Е.В., Деркач В.В., Шестовская Т.Н., Нетесова С.Ю., Иванова Ю.В. Аллергические заболевания у детей: особенности цитокинового и иммунного статуса // Иммунология, 2007. Т. 28, № 3. С. 157-161. [Prosekova E.V., Derkach V.V., Shestovskaya T.N., Netesova S.Yu., Ivanova Yu.V. Allergic diseases in children: features of cytokine and immune status. Immunologiya = Immunology, 2007, Vol. 28, no. 3, pp. 157-161. (In Russ.)]; Рябова Л.В., Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Черешнев В.А. Особенности иммунологических показателей в зависимости от фазы аллергического ринита // Аллергология и иммунология., 2009. Т. 10, № 4. С. 469-473. [Ryabova L.V., Zurochka A.V., Khaidukov S.V., Chereshnev V.A. Features immunological parameters depending on the phase of allergic rhinitis. Allergologiya i immunologiya = Allergology and Immunology, 2009, Vol. 10, no. 4, pp. 469-473. (In Russ.)]; Рябова Л.В., Зурочка А.В. Различия каскада цитокинов у больных бронхиальной астмой в зависимости от стадии течения заболевания // Медицинская иммунология, 2007. Т. 9, № 4-5. С. 493-498. [Ryabova L.V., Zurochka A.V. Differences cascade of cytokines in patients with bronchial asthma depending on the stage of the disease. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2007, Vol. 9, no. 4-5, pp. 493-498. (In Russ.)] http://dx.doi.org/10.15789/1563-0625-2007-4-5-493-498; Рябова Л.В., Зурочка А.В., Хайдуков С.В. Местные и системные механизмы хронического воспаления у больных бронхиальной астмой легкой степени тяжести // Медицинская иммунология, 2009. Т. 11, № 2-3. С. 169-176. [Ryabova L.V., Zurochka A.V., Khaidukov S.V. Local and systemic mechanisms of chronic inflammation in patients with bronchial asthma mild. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2009, Vol. 11, no. 2-3. pp. 169-176. (In Russ.)] http://dx.doi.org/10.15789/1563-0625-2009-2-3-169-176; Хаитов Р.М., Пинегин Б.В., Ярилин А.А. Руководство по клинической иммунологии. Диагностика заболеваний иммунной системы. Руководство для врачей. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. 352 с. [Khaitov R.M., Pinegin B.V., Yarilin A.A. Manual of clinical immunology. Diagnosis of diseases of the immune system. Guidelines for doctors]. Moscow: GEOTAR-Media, 2009. 352 p.; Canonica G.W., Compalati E. Minimal persistent inflammation in allergic rhinitis: implications for current treatment strategies. Clin. Exp. Immunol., 2009, Vol. 158, no. 3, pp. 260-271.; Novak N., Bieber T., J.-P. Allam. Immunological mechanisms of sublingual allergen-specific immunotherapy. Allergy, 2011, Vol. 66, no. 6, pp. 733-739.; Okamoto T., Iwata S., Ohnuma K., Dang N.H., Morimoto C. Histamine H1-receptor antagonists with immunomodulating activities: potential use for modulating T helper type 1 (Th1)/Th2 cytokine imbalance and inflammatory responses in allergic diseases. Clin. Exp. Immunol., 2009, Vol. 157, no. 1, pp. 27-34.; Shamji M.H., Durham S.R. Mechanisms of immunotherapy to aeroallergens. Clin. Exp. Allergy, 2011, Vol. 41, no. 9, pp. 1235-1246.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1068

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1068
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2016-5-443-450

المؤلفون: M. V. Semenov, A. V. Zurochka, V. A. Zurochka, М. В. Семенов, А. В. Зурочка, В. А. Зурочка

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 14, № 3 (2012); 233-238 ; Медицинская иммунология; Том 14, № 3 (2012); 233-238 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2012-3

مصطلحات موضوعية: топические глюкокортикостероиды, flow cytometry, T-regulatory cells, topical glucocorticoids, проточная цитометрия, Т-регуляторные клетки

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/360/363; Козлов В.С. Роль и значение интраназальных кортикостероидов в лечении риносинуситов // Рос. Ринология. – 2003. – 3. – С. 20-24.; Ланцов А.А., Рязанцев С.В и соавт. Эпидемиология полипозных риносинуситов. – СПб.: РИА-АМИ, 1999. – 96 с.; Маянский, А.Н. Виксман М.К. Способ оценки функциональной активности нейтрофилов человека по реакции восстановления нитросинего тетразоля: метод. рек. – Казань, 1979. – 11 с.; Медицинские лабораторные технологии и диагностика: справочник / под ред. А.М. Карпищенко. – СПб.: Интермедика, 1999. – 656 с.; Новиков Д.К. Иммунология и аллерголоия для ЛОР-врачей. – М.: ООО ≪Медицинское информационное агенство≫, 2006. – 512 с.; Трофименко С.Л. Патогенез и клиника полипозного риносинусита // Вестн. Оториноларингологиии. – 2010. – 4. – С 94-97.; Ali M.S., Wilson J.A., Bennett M., Pearson J.P. Mucin gene expression in nasal polyps // Biol. Trace Elem. Res. – 2005; 106: 117 – Р. 139.; Bachert C., Geavert P. Effect of intranasal corticosteroids on release of cytokines and inflammatory mediators // Allergy. – 1999. – Vol. 54. – P. 116-123.; Brannan M.D., Seiberling M., Culter M.D., Cuss F.M., Affrime M.B. Lack of systemic activity with intranasal mometasone furoate. // J. Allergy Clin. Immunol. – 1996. – Vol. 97. – P. 198.; Chatila T.A. Role of regulatory T cells in human diseases // J. Allergy Clin. Immunol. – 2005; 116: 949-59.; Coste A. Brugel L., Maitre B., Boussat S., Papon J.F., Wingerstmann L., Peyn gre R., Escudier E. Inflammatory cells as well as epithelial cells in nasal polyps express vascular endothelial growth factor // Eur. Respir J. – 2000; 15: 367-72.; Davidsson A. Hellquist H.B. The so-called ‘allergic’ nasal polyp // Otorhinolaryngol Relat Spec. – 1993. – 55: 30-35.; Gosepath J., Brieger J., Gletsou E., Mann W.J. Expression and localization of cyclooxygenases (Cox-1 and Cox-2) in nasal respiratory mucosa. Does Cox-2 play a key role in the immunologyof nasal polyps? // J. Investig. Allergol. Clin. Immunol. – 2004. – 14 (2). – P. 114-8.; Liu W., Putnam A.L., Xu-Yu Z. CD127 expression inversely correlates with FoxP3 and suppressive function of human CD4+ T reg cells // J. Exp. Med. – 2006. – Vol. 203, N 7. – P. 1701-1711.; Ponikau J.U., Sherris D.A., Kern E.B., Homburger H.A. The diagnosis and incidence of allergic fungal sinusitis // Mayo Clin. Proc. – 1999; 74: 877-884.; Sacaguchi S., Sacaguchi N., Asano M. Immunologic self-tolerance maintained by activated T-cells expressing IL-2 receptor a-chains (CD25) // J. Immunol. – 1995. – Vol. 155. – P. 1151-1164.; Sasaci Y., Sakai M., Miyazaki S., Higuma S., Shiozaki A., Saito S. Decidual and peripheral blood CD4+CD25+ regulatory T cells in early pregnancy subjects and spontaneous abortion cases // Mol. Hum. Reprod. – 2004 – P. 347-353.; Schenkel E.J., Skonner D.R., Bronsky E.A., David Miller S., Pearlman David S., Rooklin A., Rosen J.P., Ruff M.E.,Vandewalker M.L., Wanderer A., Damaraju C.V., Nolop K.B., and Mesarina-Wicki B. Absence of growth retardation in children with perennial allergic rhinitis after one year of treatment with mometasone furoate aqueos nasal spray // Pediatrics. – 2000. – Vol. 105. – P. 22.; Schubert L.A., Jeffery E., Zhang Y., Ramsdell F., Ziegler S.F. Scurfin (FOXP3) acts as a repressor of transcription and regulates T cell activation // J. Biol. Chem. – 2001; 276: 37672-37679.; Settipane G.A., Chafee F.H. Nasal polyps in asthma and rhinitis // J. Allergy Clin. Immunol. – 1977; 59: 17-21.; Shi H.Z., Li S., Xie X. F. Qin X.J., Qin X., Zhong X.N. Regulatory CD4+CD25+ T lymphocytes in peripheral blood from patients with atopic asthma // Clin. Immunol. – 2004. – Vol. 113. – P. 172-178.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/360

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/360
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2012-3-233-238

المؤلفون: S. V. Khaidukov, A. V. Zurochka, С. В. Хайдуков, А. В. Зурочка

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 13, № 1 (2011); 7-16 ; Медицинская иммунология; Том 13, № 1 (2011); 7-16 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2011-1

مصطلحات موضوعية: Th17, T-helper cells, Th1, Th2, Treg, Т-клетки

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/428/431; Хайдуков С.В., Холоденко И.В., Литвинов И.С. Иономицин-резистентная субпопуляция CD4+Т-лимфоцитов периферической крови человека. Фенотипическая характеристика // Цитология – 2003. – 45 (3). – С. 249-254.; Хайдуков С.В. Подходы к стандартизации метода проточной цитометрии для иммунофе нотипирования. Настройка цитометров и подготовка протоколов для анализа // Медицинская Иммунология. – 2007. – Т. 9 (6). – С. 569-574.; Хайдуков С.В., Зурочка А.В. Проточная цитометрия как современный метод анализа в биологии и медицине // Медицинская Иммунология. – 2007. – Т. 9 (4-5). – С. 373-378.; Хайдуков С.В., Зурочка А.В. Расширение возможностей метода проточной цитометрии для клинико-иммунологической практики // Медицинская Иммунология. – 2008. – Т. 10 (1). – С. 5-12.; Хайдуков С.В., Зурочка А.В., Черешнев В.А. Многоцветный цитометрический анализ. Идентификация Т-клеток и их субпопуляций по экспрессии αβ-ТCR и γδ-ТCR // Медицинская Иммунология. – 2008. – Т. 10 (2-3). – С. 115-124.; Хайдуков С.В., Зурочка А.В., Тотолян Арег А., Черешнев В.А. Основные и малые популяции лимфоцитов переферической крови человека и их нормативные значения (методом многоцветного цитометрического анализа) // Медицинская Иммунология. – 2009. – Т. 11 (2-3). – С. 227-238.; Ahmed R., Gray D. Immunological memory and protective immunity: understanding their relation // Science. – 1996. – Vol. 272 (5258). – P. 54-60.; Assenmacher M., Schmitz J., Radbruch A. Flow cytometric determination of cytokines in activated murine T helper lymphocytes: expression of interleukin-I0 in interferon-gamma and in interleukin-4-expressing cells // Eur. J. Immunol. – 1994. – Vol. 24. – P. 1097-1101.; Baecher-Allan C., Brown J.A., Freeman G.J., Hafler D.A. CD4+CD25high regulatory cells in human peripheral blood // J. Immunol. – 2001. – Vol. 167 (3). – P. 1245-1253.; Bettelli E., Carrier Y., Gao W., Korn T., Strom T.B., Oukka M., Weiner H.L., Kuchroo V.K. Reciprocal developmental pathways for the generation of pathogenic effector TH17 and regulatory T cells // Nature. – 2006. – 441. – P. 235-238.; Borsellino G., Kleinewietfeld M., Di Mitri D., Sternjak A., Diamantini A., Giometto R., Hцpner S., Centonze D., Bernardi G., Dell’Acqua M.L., Rossini P.M., Battistini L., Rцtzschke O., Falk K. Expression of ectonucleotidase CD39 by Foxp3+ Treg cells: hydrolysis of extracellular ATP and immune suppression // Blood. – 2007. – Vol. 110 (4). – P. 1225-1232.; Boumiza R., Debard A.-L., Monneret G. The basophil activation test by flow cytometry: recent developments in clinical studies, standardization and emerging perspectives // Clin. and Mol. Allergy. – 2005. – Vol. 3 (9). – P. 1-8.; Bours M.J., Swennen E.L.R., Di Virgilio F., Cronstein B.N., Dagnelie P.C. Adenosine 5’-triphosphate and adenosine as endogenous signaling molecules in immunity and inflammation // Pharmacology. Therapeutics. – 2006. – Vol. 112 (2). – P. 358-404.; Collison L.W., Workman C.J., Kuo T.T., Boyd K., Wang Y., Vignali K.M., Cross R., Sehy D., Blumberg R.S., Vignali D.A. The inhibitory cytokine IL-35 contributes to regulatory T-cell function // Nature. – 2007. – Vol. 450 (7169). – P. 566-569.; Crucian B., Dunne P., Friedman H., Ragsdale R., Pross S., Widen R. Detection of altered T helper 1 and T helper 2 cytokine production by peripheral blood mononuclear cells in patients with multiple sclerosis utilizing intracellular cytokine detection by flow cytometry and surface marker analysis // Clin. Diagn. Lab. Immunol. – 1996. – Vol. 3 (4). – P. 411-416.; Di Cesare A., Di Meglio P., Nestle F.O. A role for Th17 cells in the immunopathogenesis of atopic dermatitis? // J. Investigat Dermatology. – 2008. – 128. – P. 2569-2571.; Gerosa F., Tommasi M., Scardoni M., Accolla R.S., Pozzan T., Libonati M., Tridente G., Carra G. Structural analysis of the CD69 early activation antigen by two monoclonal antibodies directed to different epitopes. // Mol. Immunol. – 1991. – Vol. 28 (1-2). – P. 159-168.; Giovannetti A., Pierdominici M., Di Iorio A., Cianci R., Murdaca G., Puppo F., Pandolfi F., Paganelli R. Apoptosis in the homeostasis of the immune system and in human immune mediated diseases // Current. Pharmaceutical. Design. – 2008. – Vol. 14 (3). – P. 253-268.; Grossman W.J., Verbsky J.W., Barchet W., Colonna M., Atkinson J.P., Ley T.J. Human T regulatory cells can use the perforin pathway to cause autologous target cell death // Immunity. – 2004. – Vol. 21 (4). – P. 589-601.; Hsu S.C., Chen L.C., Kuo M.L., Huang J.L., Huang S.K. Novel SNPs in a candidate gene, CRTH2, for allergic diseases // Genes. Immun. – 2002. – Vol. 3 (2). – P. 114-116. 21. Hu-Li J., Huang H., Ryan J., Paul W. In differentiated CD4+ T cells, interleukin 4 production is cytokine-autonomous, whereas interferon gamma production is cytokinedependent // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 1997. – Vol. 94. – P. 3189-3194.; Ivanov I.I., McKenzie B.S., Zhou L., Tadokoro C.E., Lepelley A., Lafaille J.J., Cua D.J., Littman D.R. The orphan nuclear receptor RORgammat directs the differentiation program of proinflammatory IL-17+ T helper cells // Cell. – 2006. – 126. – P. 1121-1133.; Iwasaki M., Nagata K., Takano S., Takahashi K., Ishii N., Ikezawa Z. Association of a new-type prostaglandin D2 receptor CRTH2 with circulating T helper 2 cells in patients with atopic dermatitis // J. Invest. Dermatol. – 2002. – Vol. 119 (3). – P. 609-616.; Jonuleit H., Schmitt E., Stassen M., Tuettenberg A., Knop J., Enk A.H. Identification and functional characterization of human CD4(+)CD25(+) T cells with regulatory properties isolated from peripheral blood // J. Exp. Med. – 2001. – Vol. 193 (11) – P. 1285-1294.; Koenen H.J., Smeets R.L., Vink P.M., van Rijssen E., Boots A.M., Joosten I. Human CD25highFoxp3pos regulatory T cells differentiate into IL-17-producing cells // Blood. – 2008. – 112. – P. 2340-2352.; Koga C., Kabashima K., Shiraishi N., Kobayashi M., Tokura Y. Possible pathogenic role of th17 cells for atopic dermatitis // J. Investigat Dermatology. – 2008. – 128. – P. 2625-2630.; Korn T., Bettelli E., Oukka M., Kuchroo V.K. IL-17 and Th17 Cells // Annu. Rev. Immunol. – 2009. – Vol. 27. – P. 485-517.; Liu W., Putnam A.L., Xu-Yu Z., Szot G.L., Lee M.R., Zhu S., Gottlieb P.A., Kapranov P., Gingeras T.R., Fazekas de St Groth B., Clayberger C., Soper D.M., Ziegler S.F., Bluestone J.A. CD127 expression inversely correlates with FoxP3 and suppressive function of human CD4+ T-reg cells // J. Exp. Med. – 2006. – Vol. 203 (7). – P. 1701-1711.; Lubberts E. IL-17/Th17 targeting: on the road to prevent chronic destructive arthritis? // Cytokine. – 2008. – Vol. 41. – P. 84-91.; Lubberts E., Koenders M.I., van den Berg W.B. The role of T-cell interleukin-17 in conducting destructive arthritis: lessons from animal models // Arthritis. Res. Ther. – 2005. – Vol. 7. – P. 29-37.; Mangan P.R., Harrington L.E., O’Quinn D.B., Helms W.S., Bullard D.C., Elson C.O., Hatton R.D., Wahl S.M., Schoeb T.R., Weaver C.T. Transforming growth factor-beta induces development of the T(H)17 lineage // Nature. – 2006. – Vol. 441. – P. 231-234.; Miyara M., Sakaguchi S. Natural regulatory T cells: mechanisms of suppression // Trends. Molecular. Medicine. – 2007. – Vol. 13 (3). – P. 108-116.; Mosmann T., Cherwinski H., Bond M., Giedlin M., Coffman R. Two types of murine helper T ceil clone. 1. Definition according to profiles of lymphokine activities and secreted proteins // J. Immunol. – 1986. – Vol. 136. – P. 2348-2357.; Mucida D., Kutchukhidze N., Erazo A., Russo M., Lafaille J.J., Curotto de Lafaille M.A. Oral tolerance in the absence of naturally occurring Tregs // J. Clin. Invest. – 2005. – Vol. 115. – P. 1923-1933.; Murphy E., Shibuya K., Hosken N., Openshaw P., Maino V., Davis K., Murphy K., O’Garra A. Reversibility of T helper 1 and 2 populations is lost after long-term stimulation // J. Exp. Med. – 1996. – Vol. 183 (3). – P. 901-913.; Nagata K., Tanaka K., Ogawa K., Kemmotsu K., Imai T., Yoshie O., Abe H., Tada K., Nakamura M., Sugamura K., Takano S. Selective expression of a novel surface molecule by human Th2 cells in vivo // J. Immunol. – 1999. – Vol. 162. – P. 1278-1286; Pandiyan P., Zheng L., Ishihara S., Reed J., Lenardo M.J, CD4+CD25+FoxP3+ regulatory T cells induce cytokine deprivation-mediated apoptosis of effector CD4+ T cells // Nature. Immunology. – 2007. – Vol. 8 (12). – P. 1353-1362.; Pandolfi F., Pierdominici M., Marziali M., Livia Bernardi M., Antonelli G., Galati V., D’Offizi G., Aiuti F. Low-dose IL-2 reduces lymphocyte apoptosis and increases naпve CD4 cells in HIV-1 patients treated with HAART // Clinical. Immunology. – 2000. – Vol. 94 (3). – P. 153-159.; Picker L.J., Singh M.K., Zdraveski Z., Treer J.R., Waldrop S.L., Bergstresser P.R., Maino V.C.Direct demonstration of cytokine synthesis heterogeneity among human memory/effector T cells by flow cytometry // Blood. – 1995. – Vol. 86 (4). – P. 1408-1419.; Quint D.J., Bolton E.J., McNamee L.A., Solari R., Hissey P.H., Champion B.R., MacKenzie A.R., Zanders E.D. Functional and phenotypic analysis of human T-cell clones which stimulate IgE production in vitro // Immunology. – 1989. – Vol. 67 (1). – P. 68-74.; Radhakrishnan S., Cabrera R., Schenk E.L., Nava-Parada P., Bell M.P., Van Keulen V.P., Marler R.J., Felts S.J., Pease L.R. Reprogrammed FoxP3+ T regulatory cells become IL-17+ antigen-specific autoimmune effectors in vitro and in vivo // J. Immunol. – 2008. – Vol. 181. – P. 3137-3147.; Read S., Malmstrom V., Powrie F. Cytotoxic T lymphocyte-associated antigen 4 plays an essential role in the function of CD25+CD4+ regulatory cells that control intestinal inflammation // J. Exp. Med. – 2000. – Vol. 192 (2). – P. 295-302.; Ryan D.H., Nuccie B.L., Ritterman I., Liesveld J.L., Abboud C.N., Insel R.A. Expression of interleukin-7 receptor by lineage-negative human bone marrow progenitors with enhanced lymphoid proliferative potential and B-lineage differentiation capacity // Blood. – 1997. – Vol. 89 (3). – P. 929-940.; Schubert L.A., Jeffery E., Zhang Y., Ramsdell F., Ziegler S.F. Scurfin (FOXP3) acts as a repressor of transcription and regulates T cell activation. // J. Biol. Chem. – 2001. – 276 (40). – P. 37672-37679.; Shevach E.M. CD4+CD25+ suppressor T cells: more questions than answers // Nat. Rev. Immunol. – 2002. – Vol. 2 (6). – P. 389-400.; Shevach E.M. Immunology: regulating suppression // Science. – 2008. – Vol. 322 (5899). – P. 202-203.; Shevach E.M. Mechanisms of FoxP3+ T regulatory cellmediated suppression // Immunity. – 2009. – Vol. 30 (5). – P. 636-645.; Van Hamburg J.P., de Bruijn M.J., de Almeida C.R., van Zwam M., van Meurs M., de Haas E., Boon L., Samsom J.N., Hendriks R.W. Enforced expression of GATA3 allows differentiation of IL-17-producing cells, but constrains Th17-mediated pathology // Eur. J. Immunol. – 2008. – Vol. 38. – P. 2573-2586.; Veldhoen M., Hocking R.J., Atkins C.J., Locksley R.M., Stockinger B. TGFbeta in the context of an inflammatory cytokine milieu supports de novo differentiation of IL-17-producing T cells // Immunity. – 2006. – Vol. 24. – P. 179-189.; Wahl S.M., Wen J., Moutsopoulos N. TGF-beta: A mobile purveyor of immune privilege // Immunol. Rev. – 2006. – Vol. 213. – P. 213-227.; Wing K., Onishi Y., Prieto-Martin P., Yamaguchi T., Miyara M., Fehervari Z., Nomura T., Sakaguchi S. CTLA-4 control over FoxP3+ regulatory T cell function // Science. – 2008. – Vol. 322 (5899). – P. 271-275.; Xu L., Kitani A., Fuss I., Strober W. Cutting edge: regulatory T cells induce CD4+CD25-Foxp3- T cells or are self-induced to become Th17 cells in the absence of exogenous TGF-beta // J. Immunol. – 2007. – Vol. 178. – P. 6725-6729.; Yang X.O., Pappu B.P., Nurieva R., Akimzhanov A., Kang H.S., Chung Y., Ma L., Shah B., Panopoulos A.D., Schluns K.S., Watowich S.S., Tian Q., Jetten A.M., Dong C. T helper 17 lineage differentiation is programmed by orphan nuclear receptors ROR alpha and ROR gamma // Immunity. – 2008. – Vol. 28. – P. 29-39.; Zaunders J.J., Dyer W.B., Munier M.L., Ip S., Liu J., Amyes E., Rawlinson W., De Rose R., Kent S.J., Sullivan J.S., Cooper D.A., Kelleher A.D. CD127+CCR5+CD38+++ CD4+ Th1 effector cells are an early component of the primary immune response to vaccinia virus and precede development of interleukin-2+ memory CD4+ T cells // J. Virol. – 2006. – Vol. 80 (20). – P. 10151-10161.; Ziegler S.F. FOXP3: of mice and men // Annual. Review. Immunology. – 2006. – Vol. 24. – P. 209-226.; Zola H., Swart B., Nicholson I., Aasted B., Bensussan A., Boumsell L., Buckley C., Clark G., Drbal K., Engel P., Hart D., Horejsi V., Isacke C., Macardle P., Malavasi F., Mason D., Olive D., Saalmueller A., Schlossman S.F., Schwartz-Albiez R., Simmons P., Tedder T.F., Uguccioni M., Warren H. CD molecules 2005: human cell differentiation molecules // Blood. – 2005. – Vol. 106 (9). – P. 3123-3126.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/428

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/428
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2011-1-7-16

المؤلفون: L. V. Ryabova, A. V. Zurochka, Л. В. Рябова, А. В. Зурочка

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 9, № 4-5 (2007); 493-498 ; Медицинская иммунология; Том 9, № 4-5 (2007); 493-498 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2007-4-5

مصطلحات موضوعية: IFN, cytokines, IL-4, IL-1, IL-10, цитокины

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/222/224; Детская аллергология / Под ред. А.А. Баранова, И.И. Балаболкина. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2006. – 687 с.; Дранник Г.Н. Клиническая иммунология и аллергология. – М.: МИА, 2003. – 603 с.; Пальцев М.А., Иванов А.А., Северин С.Е. Межклеточные взаимодействия. – М.: Медицина, 2003. – 287 с.; Паттерсон Р., Грэммер Л.К., Гринбергер П. Аллергические болезни. Диагностика и лечение.: Пер. с англ. – М.: Гэотар Медицина, 2000. – 734 с.; Федосеев Г.Б. Аллергология. – СПб.: Нордмедиздат, 2001. – Т. 1, 2. – 815 с.; Чучалин А.Г. Бронхиальная астма. – М.: Агар, 1997. – Т. 1, 2. – 805 с.; Ярилин А.А. Основы иммунологии. – М.: Медицина, 1999. – 607 с.; Chung F., Fabbri L.M. Asthma // Eur. Respir. Monogr. – 2003. – Vol. 8, N 1. – P. 458.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/222

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/222
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2007-4-5-493-498

المؤلفون: A. V. Zurochka, A. N. Kotlyarov, M. V. Kuvaytsev, S. V. Kvyatkovskaya, V. A. Zurochka, L. V. Ryabova, S. V. Khaidukov, А. В. Зурочка, А. Н. Котляров, М. В. Кувайцев, С. В. Квятковская, В. А. Зурочка, Л. В. Рябова, С. В. Хайдуков

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 10, № 4-5 (2008); 379-388 ; Медицинская иммунология; Том 10, № 4-5 (2008); 379-388 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2008-4-5

مصطلحات موضوعية: сепсис, HLA-DR antigens, multiparametric analysis, sepsis, HLA-DR антигены, многопараметровый анализ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/195/197; Маянский А.Н., Виксман М.К. Способ оценки функциональной активности нейтрофилов человека по реакции восстановления нитросинего тетразолия: Метод. рекомендации. – Казань, 1979. – 11 с.; Фрейдлин И.С. Система мононуклеарных фагоцитов. – М., 1984. – 271 с.; Хайдуков С.В., Зурочка А.В. Избранные вопросы современной проточной цитометрии. – Челябинск: «Челябинская государственная медицинская академия», 2007. – 84 c.; Asadullah K., Woiciechowsky C., Docke W.D., Egerer K., Kox W., Volgel S., Sterry W., Volk H.D. Very low monocytic HLA-DR expression indicates high risk of infection – immunomonitoring for patients after neurosurgery and patients during high dose steroid therapy // Eur. J. Emerg. Med. – 1995. – Vol. 2. – P. 184-190.; Boelens P.G., Houdijk A.P., Fonk J.C., Ni-jveldt R.J., Ferwerda C.C., Von Blomberg-Van Der Flier B.M., Thijs L.G., Haarman H.J., Puyana J.C., Van Leeuwen P.A. Glutamine-enriched enteral nutrition increases HLA-DR expression on monocytes of trauma patients // J. Nutr. – 2002. – Vol. 132, N 9. – P. 2580-2586.; Ditschkowski M., Kreuzfelder E., Rebmann V., Ferencik S., Majetschak M., Schmid E.N., Obertacke U., Hirche H., Schade U.F., Grosse-Wilde H. HLA-DR expression and soluble HLA-DR levels in septic patients after trauma // Ann. Surg. – 1999. – Vol. 229, N 2. – P. 246-254.; Docke W.D., Hoflich C., Davis K.A., Rottgers K., Meisel C., Kiefer P., Weber S.U., Hedwig-Geissing M., Kreuzfelder E., Tschentscher P., Nebe T., Engel A., Monneret G., Spittler A., Schmolke K., Reinke P., Volk H.D., Kunz D. Monitoring temporary immunodepression by flow cytometric measurement of monocytic HLA-DR expression: a multicenter standardized study // Clin. Chem. – 2005. – Vol. 51, N 12. – P. 2341-2347.; Fumeaux T., Pugin J. Role of interleukin-10 in the intracellular sequestration of human leukocyte antigen-DR in monocytes during septic shock // Am. J. Respir. Crit. Care. Med. – 2002. – Vol. 166, N 11. – P. 1475-1482.; Guillou P.J. Biological variation in the development of sepsis after surgery or trauma // Lancet. – 1993. – Vol. 342. – P. 217-220.; Haveman J.W., van den Berg A.P., van den Berk J.M., Mesander G., Slooff M.J., de Leij L.H., The T.H. Low HLA-DR expression on peripheral blood monocytes predicts bacterial sepsis after liver transplantation: relation with prednisolone intake // Transpl. Infect. Dis. – 1999. – Vol. 1, N 3. – P. 146-152.; Hershman M.J., Cheadle W.G., Wellhausen S.R., Davidson P.F., Polk S.C. Monocyte HLA-DR antigen expression characterizes clinical outcome in the trauma patient // Br. J. Surg. – 1990. – Vol. 77. – P. 204-207.; Hoffman J.A., Weinberg K.I., Azen C.G., Horn M.V., Dukes L., Starnes V.A., Woo M.S. Human leukocyte antigen-DR expression on peripheral blood monocytes and the risk of pneumonia in pediatric lung transplant recipients // Transpl. Infect. Dis. – 2004. – Vol. 6. – P. 147-155.; Kawasaki T., Ogata M., Kawasaki C., Tomihisa T., Okamoto K., Shigematsu A. Surgical stress induces endotoxin hyporesponsiveness and an early decrease of monocyte mCD14 and HLA-DR expression during surgery // Anesth. Analg. – 2001. – Vol. 92, N 5. – P. 1322-1326.; Khaidukov S.V., Komaleva R.L., Nesmeyanov V.A. N-acetylglucosamine-containing muramyl peptides directly affect macrophages // Int. J. Immunopharmacol. – 1995. – Vol. 17, N 11. – P. 903-911.; Kox W.J., Volk T., Kox S.N., Volk H.D. Immunomodulatory therapies in sepsis // Int. Care. Med. – 2000. – Vol. 26. – P. 124-128.; Kunz D., Pross M., Lippert H., Konig W., Manger T. Diagnostic relevance of procalcitonin, IL-6 and cellular immune status in the early phase after liver transplantation // Transplant. Proc. – 1998. – Vol. 30. – P. 23-24.; Le Tulzo Y., Pangault C., Amiot L., Guilloux V., Tribut O., Arvieux C., Camus C., Fauchet R., Thomas R., Drénou B. Monocyte human leukocyte antigen-DR transcriptional downregulation by cortisol during septic shock // Am. J. Respir. Crit. Care. Med. – 2004. – Vol. 169, N 10. – P. 1144-1151.; Lin R.Y., Astiz M.E., Saxon J.C., Rackow E.C. Altered leukocyte immunophenotypes in septic shock. Studies of HLA-DR, CD11b, CD14, and IL-2R expression // Chest. – 1993. – Vol. 104, N 3. – P. 847-853.; Monneret G., Elmenkouri N., Bohe J., Debard A.L., Gutowski M.C., Bienvenu J., Lepape A. Analytical requirements for measuring monocytic human lymphocyte antigen DR by flow cytometry: application to the monitoring of patients with septic shock // Clin. Chem. – 2002. – Vol. 48, N 9. – P. 1589-1592.; Monneret G., Venet F., Pachot A., Lepape A. Monitoring immune dysfunctions in the septic patient: a new skin for the old ceremony // Mol. Med. – 2008. – Vol. 14, N 1-2. – P. 64-78.; Pitton C., Fitting C., van Deuren M., van der Meer J.W., Cavaillon J.M. Different regulation of TNFα and IL-1ra synthesis in LPS-tolerant human monocytes // Prog. Clin. Biol. Res. – 1995. – Vol. 392. – P. 523-528.; Richter A., Nebe T., Wendl K., Schuster K., Klaebisch G., Quintel M., Lorenz D., Post S., Trede M. HLA-DR Expression in acute pancreatitis // Eur. J. Surg. – 1999. – Vol. 165. – P. 947-951.; Sachse C., Prigge M., Cramer G., Pallua N., Henkel E. Association between reduced human leukocyte antigen (HLA-DR) expression on blood monocytes and increased plasma level of interleukin-10 in patients with severe burns // Clin. Chem. Lab. Med. – 1999. – Vol. 37. – P. 193-198.; Spittler A., Winkler S., Gotzinger P., Oehler R., Willheim M., Tempfer C., Weigel G., Fugger R., Boltz-Nitulescu G., Roth E. Influence of glutamine on the phenotype and function of human monocytes // Blood. – 1995. – Vol. 86, N 4. – P. 1564-1569.; Strohmeyer J.C., Blume C., Meisel C., Doecke W.D., Hummel M., Hoeflich C., Thiele K., Unbehaun A., Hetzer R., Volk H.D. Standardized immune monitoring for the prediction of infections after cardiopulmonary bypass surgery in risk patients // Cytometry. – 2003. – Vol. 53. – P. 54-62.; Tschaikowsky K., Hedwig-Geissing M., Schiele A., Bremer F., Schywalsky M., Schuttler J. Coincidence of pro- and anti-inflammatory responses in the early phase of severe sepsis: longitudinal study of mononuclear histocompatibility leukocyte antigen DR expression, procalcitonin, C-reactive protein, and changes in T-cell subsets in septic and postoperative patients // Crit. Care. Med. – 2002. – Vol. 30 – P. 1015-1023.; Wolk K., Docke W.D., von Baehr R., Volk H.D., Sabat R. Comparison of monocyte functions after LPS- or IL-10-induced reorientation: importance in clinical immunoparalysis // Pathobiology. – 1999. – Vol. 67. – P. 253-256.; Wright S.D., Ramos R.A., Tobias P.S., Ulevitch R.J., Mathison J.C. CD14, a receptor for complexes of lipopolysaccharide (LPS) and LPS binding protein // Science. – 1990. – Vol. 249, N 4975. – P. 1431-1433.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/195

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/195
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2008-4-5-379-388

المؤلفون: E. D. Altman, A. V. Zurochka, S. N. Teplova, E. V. Davydova, D. Sh. Altman, Э. Д. Альтман, А. В. Зурочка, С. Н. Теплова, Е. В. Давыдова, Д. Ш. Альтман

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 13, № 2-3 (2011); 167-174 ; Медицинская иммунология; Том 13, № 2-3 (2011); 167-174 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2011-2-3

مصطلحات موضوعية: муцин, oral mucosa, immunocytes, immunoglobulins, complement, mucine, слизистая оболочка полости рта, иммуноциты, иммуноглобулины, комплемент

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/440/443; Банченко Г.В. Проблемы заболеваний СОП // Зубоврачебный вестник. – 1993. – № 1 (2). – С. 13-18.; Михайлов В.В., Русанова А.Г. К механизму трофических влияний слюнных желез на слизистую полости рта // Бюлл. экспер.биолог. – 1993. – № 2. – С. 139-140; Санникова Т.Е., Марчук Г.И., Романюха А.А., Яшин А.И. Старение системы иммунитета и динамика смертности. Анализ роли антиген-ной нагрузки // Успехи геронтологии. – 2003. – Т. 12. – С. 91-98.; Теплова С.Н., Коченгина С.А., Масленникова Н.П., Рахматулина Э.Х. Способ анализа популяционного состава иммунных клеток слюны с помощью метода проточной цитофлю ориметрии // Патент на изобретение № 2377568 от 23.05.2008.; Ткаченко Т.Б., Бобров А.П., Рыжак Г.А. Возрастные особенности слизистой оболочки полости рта // Успехи геронтологии. – 2007. – Т. 20, № 1. – С. 118-120.; Gavazzi G., Krause K.H. Ageing and infection // Lancet Infect Dis. – 2002. – Vol. 2 (11). – Р. 655.; Lamblin G., Roussel P. Airway mucincs and their role in defence against microorganisms // Resp. Med. – 1993. – Vol. 87. – P. 421-426.; Sonis S.T. A biological approach to mucositis // J. Support. Oncol. 2004. – 2 (1). – P. 21-32; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/440

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/440
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2011-2-3-167-174

المؤلفون: S. V. Khaidukov, A. V. Zurochka, С. В. Хайдуков, А. В. Зурочка

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 10, № 1 (2008); 5-12 ; Медицинская иммунология; Том 10, № 1 (2008); 5-12 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2008-1

مصطلحات موضوعية: мультиплексный анализ, tetramer technology, basophils, cytokines, multiparametric analysis, тетрамеры, базофилы, цитокины

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/70/68; Зуева Е.Е. Иммунофенотипирование в диагностике острых лейкозов // Российский Биомедицинский Журнал – 2003. – Том 4, СТ. 132 – С. 471-478.; Зурочка А.В., Биргер О.В., Бастрон А.С. Состояние иммунной системы у больных с комбинированными и сочетанными поражениями иммунной системы // Современные проблемы аллергологии, иммунологии и иммунофармакологии: Сб. тр. 5-го Конгресса РААКИ. – М., 2002. – С. 2-57.; Луговская С.А., Почтарь М.Е., Тупицын Н.Н. Иммунофенотипирование в диагностике гемобластозов. – М.-Тверь: ООО «Издательство Триада», 2005. – 168 с.; Хайдуков С.В., Литвинов И.С. Изменение гомеостаза ионов кальция в CD4+ Т-лимфоцитах периферической крови человека в процессе дифференцировки in vivo // Биохимия. – 2005. – Т. 70, № 6. – С. 838-849.; Altman J.D., Moss P.A., Goulder P.J., Barouch D.H., McHeyzer-Williams M.G., Bell J.I., McMichael A.J., Davis M.M. Phenotypic analysis of antigen-specific T lymphocytes // Science. – 1996. – Vol. 274. – P. 94-96.; Bishop J.E., Davis K.A. A flow cytometric immunoassay for b2-microglobulin in whole blood // J. Immunol. Meth. – 1997. – Vol. 210. – P. 79-87.; Boumiza R., Debard A.-L., Monneret G. The basophil activation test by flow cytometry: recent developments in clinical studies, standardization and emerging perspectives // Clin. Mol. Allergy. – 2005.– Vol. 3, N 9. – P. 1-8.; Buhring H.-J., Simmons P.J., Pudney M., Muller R., Jarrossay D., van Agthoven A., Willheim M., Brugger W., Valent P., Kanz L. The monoclonal antibody 97A6 defines a novel surface antigen expressed on human basophils and their multipotent and unipotent progenitors // Blood. – 1999. – Vol. 94, N 7. – P. 2343-2356.; Camilla C., Mely L., Magnan A., Casano B., Prato S., Debono S., Montero F., Defoort J.P., Martin M., Fert V. Flow cytometric microsphere-based immunoassay: analysis of secreted cytokines in whole-blood samples from asthmatics // Clin. Diagn. Lab. Immunol. – 2001. – Vol. 8, N 4. – P. 776-784.; Comans-Bitter W.M., de Groot R., van den Beemd R., Neijens H.J., Hop W.C., Groeneveld K., Hooijkaas H., van Dongen J.J. Immunophenotyping of blood lymphocytes in childhood. Reference values for lymphocyte subpopulations // J. Pediatr. – 1997. – Vol. 130, N 3. – P. 388-393.; Crucian B., Dunne P., Friedman H., Ragsdale R., Pross S., Widen R. Detection of altered T helper 1 and T helper 2 cytokine production by peripheral blood mononuclear cells in patients with multiple sclerosis utilizing intracellular cytokine detection by flow cytometry and surface marker analysis // Clin. Diagn. Lab. Immunol. – 1996. – Vol. 3, N 4. – P. 411-416.; Duramad P., McMahon C.W., Hubbard A., Eskenazi B., Holland N.T. Flow cytometric detection of intracellular Th1/Th2 cytokines using whole blood: validation of immunologic biomarker for use in epidemiologic studies // Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. – 2004. – Vol. 13, N 9. – P. 1452-1458.; Fritzsching B., Oberle N., Eberhardt N., Quick S., Haas J., Wildemann B., Krammer P.H., Suri-Payer E. In contrast to effector T cells, CD4+CD25+FoxP3+ regulatory T cells are highly susceptible to CD95 ligand – but not to TCR-mediated cell death // Immunology. – 2005. – Vol. 175, N 1. – P. 32-36.; Fulton R.J., McDade R.L., Smith P.L., Kienker L.J., Kettman J.R. Advanced multiplexed analysis with the FlowMetrics system // Clin. Chem. – 1997. – Vol. 43. – P. 1749-1756.; Harty J.T., Tvinnereim A.R., White D.W. CD8+ T cell effector mechanisms in resistance to infection // Annu Rev. Immunol. – 2000. – Vol. 18 – P. 275-230.; He X.H., Xu L.H., Liu Y. Procedure for preparing peptide-major histocompatibility complex tetramers for direct quantification of antigen-specific cytotoxic T lymphocytes // World J. Gastroenterol. – 2005. – Vol. 11. – P. 4180-4187.; He X.H., Zha Q.B., Liu Y., Xu L.H., Chi X.Y. High frequencies cytomegalovirus pp65(495-503)-specific CD8+ T cells in healthy young and elderly chinese donors: characterization of their phenotypes and TCRVβ usage // J. Clin. Immunol. – 2006. – Vol. 26. – P. 417-429.; Hsu S.C., Chen L.C., Kuo M.L., Huang J.L., Huang S.K. Novel SNPs in a candidate gene, CRTH2, for allergic diseases // Genes Immun. – 2002. – Vol. 3, N 2. – P. 114-116.; Ikinciogullari A., Kendirli T., Dogu F., Egin Y., Reisli I., Cin S., Babacan E. Peripheral blood lymphocyte subsets in healthy Turkish children // Turk. J. Pediatr. – 2004. – Vol. 46, N 2. – P. 125-130.; Iwasaki M., Nagata K., Takano S., Takahashi K., Ishii N., Ikezawa Z. Association of a new-type prostaglandin D2 receptor CRTH2 with circulating T helper 2 cells in patients with atopic dermatitis // J. Invest. Dermatol. – 2002. – Vol. 119, N 3. – P. 609-616.; Jaleco S., Swainson L., Dardalhon V., Burjanadze M., Kinet S., Taylor N. Homeostasis of naive and memory CD4+ T cells: IL-2 and IL-7 differentially regulate the balance between prolifera tion and Fasmediated apoptosis // J. Immunol. – 2003.– Vol. 171, N 1. – P. 61-68.; Kettman J.R., Davies T., Chandler D., Oliver K.G., Fulton R.J. Classification and properties of 64 multiplexed microsphere sets // Cytometry. – 1998. – Vol. 33. – P. 234-243.; Klebanoff C.A., Gattinoni L., Restifo N.P. CD8+ T-cell memory in tumor immunology and immunotherapy // Immunol. Rev. – 2006. – Vol. 211. – P. 214-224.; Lefranзois L., Marzo A. The descent of memory T-cell subsets // Annu Rev. Immunol. – 2006. – Vol. 6. – P. 618-623.; Lindmo T., Bormer O., Ungelstad J., Nustad K. Immunometric assay by flow cytometry using mixtures of two particle types of different affinity // J. Immunol. Methods. – 1990. – Vol. 126. – P. 183-189.; Lisi P.J., Huang C.W., Hoffman R.A., Teipel J.W. A fluorescence immunoassay for soluble antigens employing flow cytometric detection // Clin. Chem. Acta. – 1982. – Vol. 120. – P. 171-179.; Liu W., Putnam A.L., Xu-Yu Z., Szot G.L., Lee M.R., Zhu S., Gottlieb P.A., Kapranov P., Gingeras T.R., Fazekas de St. Groth B., Clayberger C., Soper D.M., Ziegler S.F., Bluestone J.A. CD127 expression inversely correlates with FoxP3 and suppressive function of human CD4+ T reg cells // J. Exp. Med. – 2006.– Vol. 203, N 7. – P. 1701-1711.; Luider J., Cyfra M., Johnson P., Auer I. Impact of the new Beckman Coulter Cytomics FC 500 5-color flow cytometer on a regional flow Cytometry clinical laboratory servise // Laboratory Hematology. – 2004. – Vol. 10. – P. 102-108.; Maier R., Weger M., Haller-Schober E.M., ElShabrawi Y., Theisl A., Barth A., Aigner R., Haas A. Application of multiplex cytometric bead array technology for the measurement of angiogenic factors in the vitreous // Molecular Vision. – 2006. – Vol. 12. – P. 1143-1147.; Mason D.Y., Andre P., Bensussan A., Buckley C., Civin C., Clark E., de Haas M., Goyert S., Hadam M., Hart D., Horejsi V., Meuer S., Morissey J., SchwartzAlbiez R., Shaw S., Simmons D., Uguccioni M., van der Schoot E., Viver E., Zola H. CD antigens 2001 // Tissue Antigens. – 2001. – Vol. 58, N 6. – P. 425-430.; Meidenbauer N., Hoffmann T.K., Donnenbergc A.D. Direct visualization of antigen-specific T cells using peptide-MHC class I tetrameric complexes // Methods. – 2003. – Vol. 31. – P. 160-171.; Monneret G., Benoit Y., Debard A.-L., Gutowski M.C., Topenot I., Bienvenu J. Monitoring of basophil activation using CD63 and CCR3 in allergy to muscle relaxant drugs // Clin. Immunol. – 2002. – Vol. 102, N 2. – P. 192-199.; Murphy E., Shibuya K., Hosken N., Openshaw P., Maino V., Davis K., Murphy K., O'Garra A. Reversibility of T helper 1 and 2 populations is lost after long-term stimulation // J. Exp. Med. – 1996. – Vol. 183, N 3. – P. 901-913.; Nagata K., Tanaka K., Ogawa K., Kemmotsu K., Imai T., Yoshie O., Abe H., Tada K., Nakamura M., Sugamura K., Takano S. Selective expression of a novel surface molecule by human Th2 cells in vivo // J. Immunol. – 1999. – Vol. 162. – P. 1278-1286.; Ooi K.G., Galatowicz G., Towler H.M., Lightman S.L., Calder V.L. Multiplex cytokine detection versus ELISA for aqueous humor: IL-5, IL-10, and IFNgamma profiles in uveitis // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2006. – Vol. 47, N 1. – P. 272-277.; Perniola R., Lobreglio G., Rosatelli M.C., Pitotti E., Accogli E., De Rinaldis C. Immunophenotypic characterisation of peripheral blood lymphocytes in autoimmune polyglandular syndrome type 1: clinical study and review of the literature // J. Pediatr. Endocrinol. Metab. – 2005. – Vol. 18, N 2. – P. 155-164.; Picker L.J., Singh M.K., Zdraveski Z., Treer J.R., Waldrop S.L., Bergstresser P.R., Maino V.C. Direct demonstration of cytokine synthesis heterogeneity among human memory/effector T cells by flow cytometry // Blood. – 1995. – Vol. 86, N 4. – P. 1408-1419.; Quint D.J., Bolton E.J., McNamee L.A., Solari R., Hissey P.H., Champion B.R., MacKenzie A.R., Zanders E.D. Functional and phenotypic analysis of human T-cell clones which stimulate IgE production in vitro // Immunology. – 1989. – Vol. 67, N 1. – P. 68-74.; Read S., Powrie F. CD4 (+) regulatory T cells // Curr. Opin. Immunol. – 2001. – Vol. 13. – P. 644-649.; Ryan D.H., Nuccie B.L., Ritterman I., Liesveld J.L., Abboud C.N., Insel R.A. Expression of interleukin-7 receptor by lineage-negative human bone marrow progenitors with enhanced lymphoid proliferative potential and B-lineage differentiation capacity // Blood. – 1997. – Vol. 89, N 3. – P. 929-940.; Schubert L.A., Jeffery E., Zhang Y., Ramsdell F., Ziegler S.F. Scurfin (FOXP3) acts as a repressor of transcription and regulates T cell activation // J. Biol. Chem. – 2001. – Vol. 276, N 40. – P. 37672-37679.; Seddiki N., Santner-Nanan B., Martinson J., Zaunders J., Sasson S., Landay A., Solomon M., Selby W., Alexander S.I., Nanan R., Kelleher A., Fazekas de St Groth B. Expression of interleukin (IL)-2 and IL-7 receptors discriminates between human regulatory and activated T cells // J. Exp. Med. – 2006. – Vol. 203, N 7. – P. 1693-1700.; Shevach E.M. CD4+CD25+ suppressor T cells: more questions than answers // Nature Reviews Immunology. – 2002. – Vol. 2 – P. 389-400.; Takahashi T., Sakaguchi S. The role of regulatory T cells in controlling immunologic self-tolerance // Int. Rev. Cytol. – 2003. – Vol. 225 – P. 1-32.; Waldmann H., Graca L., Cobbold S., Adams E., Tone M., Tone Y. Regulatory T cells and organ transplantation // Semin. Immunol. – 2004. – Vol. 16, N 2. – P. 119-126.; Wherry E.J., Ahmed R. Memory CD8 T-cell differentiation during viral infection // J. Virol. – 2004. – Vol. 78. – P. 5535-5545.; Xu L., Zha Q., Sun1 H., Jia Q., Li F., He X. Preparation and Characterization of HLA-A*0201 Tetramer Loaded with IE-1316-324 Antigenic Peptide of Human Cytomegalovirus // Cell. Mol. Immunol. – 2006. – Vol. 3, N 5. – P. 367-371.; Yagi H., Nomura T., Nakamura K., Yamazaki S., Kitawaki T., Hori S., Maeda M., Onodera M., Uchiyama T., Fujii S., Sakaguchi S. Crucial role of FOXP3 in the development and function of human CD25+CD4+ regulatory T cells // Int. Immunol. – 2004. – Vol. 16, N 11. – P. 1643-1656.; Yuan J., Latouche J.B., Hodges J., Houghton A.N., Heller G., Sadelain M., Riviere I., Young J.W. Langerhans-type dendritic cells genetically modified to express full-length antigen optimally stimulate CTLs in a CD4-dependent manner // J. Immunol. – 2006. – Vol. 176, N 4. – P. 2357-2365.; Zaunders J.J., Dyer W.B., Munier M.L., Ip S., Liu J., Amyes E., Rawlinson W., De Rose R., Kent S.J., Sullivan J.S., Cooper D.A., Kelleher A.D. CD127+CCR5+CD38+++ CD4+ Th1 effector cells are an early component of the primary immune response to vaccinia virus and precede development of interleukin-2+ memory CD4+ T cells // J. Virol. – 2006. – Vol. 80, N 20. – P. 10151-10161.; Zola H., Swart B., Nicholson I., Aasted B., Bensussan A., Boumsell L., Buckley C., Clark G., Drbal K., Engel P., Hart D., Horejsi V., Isacke C., Macardle P., Malavasi F., Mason D., Olive D., Saalmueller A., Schlossman S.F., Schwartz-Albiez R., Simmons P., Tedder T.F., Uguccioni M., Warren H. CD molecules 2005: human cell differentiation molecules // Blood. – 2005. – Vol. 106, N 9. – P. 3123-3126.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/70

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/70
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2008-1-5-12

المؤلفون: S.V. Khaydukov, L.A. Baidun, A.B. Zurochka, A. Totolyan, С. В. Хайдуков, Л. А. Байдун, А. В. Зурочка, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 14, № 3 (2012); 255-268 ; Медицинская иммунология; Том 14, № 3 (2012); 255-268 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2012-3

مصطلحات موضوعية: медицинская лаборатория, технология, исследования субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови, проточные цитофлюориметры-анализаторы, системы менеджмента качества

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/368/371; ГОСТ Р ИСО 15189 – 2009 Лаборатории медицинские. Частные требования к качеству и компетентности.; ГОСТ Р 52905 – 2007 (ИСО 15190:2003) Лаборатории медицинские. Требования безопасности.; Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений. СанПиН 2.1.1.728-99., Москва, 1999 г.; ГОСТ Р 53133.1 – 2008 Технологии лабораторные клинические. Контроль качества клинических лабораторных исследований. Часть 1. Пределы допускаемых погрешностей результатов измерения аналитов в клинико-диагностических лабораториях.; ГОСТ Р 53133.2 – 2008 Технологии лабораторные клинические. Контроль качества клинических лабораторных исследований. Часть 2. Правила проведения внутрилабораторного котроля качества количественных методов клинических лабораторных исследований с использованием контрольных материалов.; ГОСТ Р 53079.4 – 2008 Технологии лабораторные клинические. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований. Часть 4 Правила ведения преаналитического этапа.; Guidelines for the performance of CD4+T-cell determinations in persons with human immunodeficiency virus infection. // MMWR Recomm. Rep. – 1992. – Vol. 41 (RR-8). – P. 1-17.; 994 revised guidelines for the performance of CD4+ T-cell determinations in persons with human immunodeficiency virus (HIV) infections. Centers for Disease Control and Prevention. // MMWR Recomm. Rep. – 1994. – 43 (RR-3), – P. 1-21.; Mandy F.F., Nicholson J.K., McDougal J.S. CDC. Guidelines for performing single-platform absolute CD4+ T-cell determinations with CD45 gating for persons infected with human immunodeficiency virus. // Centers for Disease Control and Prevention. MMWR Recomm. Rep. – 2003. – Vol. 52 (RR-2). – P. 1-13.; Хайдуков С.В. Подходы к стандартизации метода проточной цитометрии для иммунофенотипирования. Настройка цитометров и подготовка протоколов для анализа. // Медицинская иммунология. – 2007. – 9 (6). – С. 569-574.; Хайдуков С.В., Зурочка А.В., Тотолян Арег А., Черешнев В.А. Основные и малые популяции лимфоцитов периферической крови человека и их нормативные значения (методом многоцветного цитометрического анализа). // Медицинская иммунология. – 2009. – 11 (2-3). – С. 227-238.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/368

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/368
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2012-3-255-268

المؤلفون: S. V. Khaidukov, A. V. Zurochka, V. A. Chereshnev, С. В. Хайдуков, А. В. Зурочка, В. А. Черешнев

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 10, № 2-3 (2008); 115-124 ; Медицинская иммунология; Том 10, № 2-3 (2008); 115-124 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2008-2-3

مصطلحات موضوعية: γδ-ТcR, T-lymphocytes, T-cellular receptor, αβ-ТcR, Т-клетки, Т-клеточный рецептор

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/105/106; Робсон А., Ройт А., Делвз П. Основы медицинской иммунологии // М.: Мир, 2006. – 320 c.; 1994 revised guidelines for the performance of CD4+ T-cell determinations in persons with human immunodeficiency virus (HIV) infections // MMWR Recomm. Rep. – 1994. – Vol. 43, N RR-3. – P. 1-21.; Autran B., Triebel F., Katlama C., Rozenbaum W., Hercend T., Debre P. T cell receptor gamma/delta+ lymphocyte subsets during HIV infection // Clin. Exp. Immunol. – 1989. – Vol. 75, N 2. – P. 206-210.; Bagriacik E.U., Okabe M., Klein J.R. Origins of intestinal intraepithelial lymphocytes: direct evidence for a thymus-derived gamma delta T cell component // Immunol. Lett. – 2000. – Vol. 75. – P. 77-83.; Battistini L., Borsellino G., Sawicki G., Poccia F., Salvetti M., Ristori G., Brosnan C.F. Phenotypic and cytokine analysis of human peripheral blood gamma delta T cells expressing NK cell receptors // J. Immunol. – 1997. – Vol. 159, N 8. – P. 3723-3730.; Beagley K.W., Husband A.J. Intraepithelial lymphocytes: origins, distribution, and function // Crit. Rev. Immunol. – 1998. – Vol. 18. – P. 237-254.; Born W.K., Lahn M., Takeda K., Kanehiro A., O'Brien R.L., Gelfand E.W. Role of gammadelta T cells in protecting normal airway function // Respir. Res. – 2000. – Vol. 1. – P. 151-158.; Caccamo N., Dieli F., Wesch D., Jomaa H., Eberl M. Sex-specific phenotypical and functional differences in peripheral human Vgamma9/Vdelta2 T cells // J. Leukoc. Biol. – 2006. – Vol. 79, N 4. – P. 663-666.; Chen J., Niu H., He W., Ba D. Antitumor activity of expanded human tumor-infiltrating gammadelta T lymphocytes // Int. Arch. Allergy. Immunol. – 2001. – Vol. 125. – P. 256-263.; Chen Z.W., Letvin N.L. Adaptive immune response of Vgamma2Vdelta2 T cells: a new paradigm // Trends. Immunol. – 2003. – Vol. 24. – P. 213-219.; Davis M.M. T cell receptor gene diversity and selection // Annu. Rev. Biochem. – 1990. – Vol. 59. – P. 475-496.; Davis M.M., Bjorkman P.J. T-cell antigen receptor genes and T-cell recognition // Nature. – 1988. – Vol. 334, N 6181. – P. 395-402.; Davis M.M., Boniface J.J., Reich Z., Lyons D., Hampl J., Arden B., Chien Y. Ligand recognition by αβ T cell receptors // Annu. Rev. Immunol. – 1998. – Vol. 16. – P. 523-544.; Dieli F., Troye-Blomberg M., Ivanyi J., Fourniй J.J., Krensky A.M., Bonneville M., Peyrat M.A., Caccamo N., Sireci G., Salerno A. Granulysindependent killing of intracellular and extracellular Mycobacterium tuberculosis by gamma9/Vdelta2 T lymphocytes // J. Infect. Dis. – 2001. – Vol. 184. – P. 1082-1085.; Ferrarini M., Ferrero E., Dagna L., Poggi A., Zocch M.R. Human gammadelta T cells: a nonredundant system in the immune-surveillance against cancer // Trends. Immunol. – 2002. – Vol. 23. – P. 14-18.; Ferrick D.A., King D.P., Jackson K.A., Braun R.K., Tam S., Hyde D.M., Beaman B.L. Intraepithelial gamma delta T lymphocytes: sentinel cells at mucosal barriers // Springer. Semin. Immunopathol. – 2000. – Vol. 22. – P. 283-296.; Fujimiya Y., Suzuki Y., Katakura R., Miyagi T., Yamaguchi T., Yoshimoto T., Ebina T. In vitro interleukin 12 activation of peripheral blood CD3(+)CD56(+) and CD3(+)CD56(–) gammadelta T cells from glioblastoma patients // Clin. Cancer. Res. – 1997. – Vol. 3, N 4. – P. 633-643.; Girardi M., Oppenheim D.E., Steele C.R., Lewis J.M., Glusac E., Filler R., Hobby P., Sutton B., Tigelaar R.E., Hayday A.C. Regulation of cutaneous malignancy by gammadelta T cells // Science. – 2001. – Vol. 294. – P. 605-609.; Gudelj L., Deniz G., Rukavina D., Johnson P.M., Christmas S.E. Expression of functional molecules by human CD3– decidual granular leucocyte clones // Immunology. – 1996. – Vol. 87, N 4. – P. 609-615.; Gui delines for the performance of CD4+ T-cell determinations in persons with human immunodeficiency virus infection // MMWR Recomm. Rep. – 1992. – Vol. 41 (RR-8). – P. 1-17.; Hayball J.D., Lake R.A. Altered superantigenic ligands demonstrate the quantitative nature of T-cell activation // Immunol. Cell Biol. – 2000. – Vol. 78, N 6. – P. 623-632.; Hayball J.D., Lake R.A. Partial T cell activation with an altered superantigenic ligand // Immunol. Cell Biol. – 2000. – Vol. 78, N 1. – P. 13-19.; Haynes B.F., Heinly C.S. Early human T cell development: analysis of the human thymus at the time of initial entry of hematopoietic stem cells into the fetal thymic microenvironment // J. Exp. Med. – 1995. – Vol. 181, N 4. – P. 1445-1458.; Helgeland L., Brandtzaeg P., Rolstad B., Vaage J.T. Sequential development of intraepithelial gamma delta and alpha beta T lymphocytes expressing CD8 alpha beta in neonatal rat intestine: requirement for the thymus // Immunology. – 1997. – Vol. 92. – P. 447-455.; Hummel S., Wilms D., Vitacolonna M., Zöller M. Donor T cell and host NK depletion improve the therapeutic efficacy of allogeneic bone marrow cell reconstitution in the nonmyeloablatively conditioned tumor-bearing host // Leukoc. Biol. – 2002. – Vol. 72, N 5. – P. 898-912.; Ichikawa Y., Shimizu H., Yoshida M., Takaya M., Arimori S. T cells bearing gamma/delta T cell receptor and their expression of activation antigen in peripheral blood from patients with Sjogren’s syndrome // Clin. Exp. Rheumatol. – 1991. – Vol. 9. – P. 603-609.; Jarry A., Cerf-Bensussan N., Brousse N., Selz F., Guy-Grand D. Subsets of CD3+ (T cell receptor alpha/beta or gamma/delta) and CD3– lymphocytes isolated from normal human gut epithelium display phenotypical features different from their counterparts in peripheral blood // Eur. J. Immunol. – 1990. – Vol. 20, N 5. – P. 1097-1103.; Kabelitz D., Wesch D. Role of gamma delta T-lymphocytes in HIV infection // Eur. J. Med. Res. – 2001. – Vol. 6. – P. 169-174.; Kato Y., Tanaka Y., Miyagawa F., Yamashita S., Minato N. Targeting of tumor cells for human gammadelta T cells by nonpeptide antigens // J. Immunol. – 2001. – Vol. 167, N 9. – P. 5092-5098.; Kawashima T., Norose Y, Watanabe Y, Enomoto Y., Narazaki H., Watari E., Tanaka S., Takahashi H., Yano I., Brenner M.B., Sugita M. Major CD8 T cell response to live bacillus Calmette-Gueґrin is mediated by CD1 molecules // J. Immunol. – 2003. – Vol. 170. – P. 5345-5348.; Kelsen J., Agnholt J., Hoffmann H.J., Kaltoft K., Dahlerup J.F. Increased expression of TCR Vbeta5.1 and 8 in mucosal T-cell lines cultured from patients with Crohn disease // Scand. J. Gastroenterol. – 2004. – Vol. 39, N 3. – P. 238-245.; Kobayashi H., Tanaka Y., Yagi J., Toma H., Uchyama T. Gamma/delta T cells provide innate immunity against renal cell carcinoma // Cancer. Immunol. Immunother. – 2001. – Vol. 50. – P. 115-124.; Komano H., Fujiurat Y., Kawaguch M., Matsumoto S., Hashimoto Y., Obana S., Mombaerts P., Tonegawa S., Yamamoto H., Itohara S., Nanno M., Ishikawa H. Homeostatic regulation of intestinal epithelia by intraepithelial gamma delta T cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 1995. – Vol. 92. – P. 6147-6151.; Kretowski A., Mysliwiec J., Szelachowska M., Turowski D., Wysocka J., Kowalska I., Kinalska I. Gammadelta T-cells alterations in the peripheral blood of high risk diabetes type 1 subjects with subclinical pancreatic B-cells impairment // Immunol. Lett. – 1999. – Vol. 68. – P. 289-293.; Lafarge X., Merville P., Cazin M.C., Bergй F., Potaux L., Moreau J.F., Déchanet-Merville J. Cytomegalovirus infection in transplant recipients resolves when circulating gammadelta T lymphocytes expand, suggesting a protective antiviral role // J. Infect. Dis. – 2001. – Vol. 184. – P. 533-541.; Lahn M., Kanehiro A., Takeda K., Joetham A., Schwarze J., Köhler G., O'Brien R., Gelfand E.W., Born W. Negative regulation of airway responsiveness that is dependent on gammadelta T cells and independent of alphabeta T cells // Nat. Med. – 1999. – Vol. 5. – P. 1150-1156.; Lambert C., Genin C. CD3 bright lymphocyte population reveal gammadelta T cells // Cytometry B Clin. Cytom. – 2004. – Vol. 61, N 1. – P. 45-53.; Lehner T., Mitchell E., Bergmeier L., Singh M., Spallek R., Cranage M., Hall G., Dennis M., Villinger F., Wang Y. The role of gammadelta T cells in generating antiviral factors and beta-chemokines in protection against mucosal simian immunodeficiency virus infection // Eur. J. Immunol. – 2000. – Vol. 30. – P. 2245-2255.; Lesterhuis W.J., de Vries I.J., Schuurhuis D.H., Boullart A.C., Jacobs J.F., de Boer A.J., Scharenborg N.M., Brouwer H.M., van de Rakt M.W., Fig dor C.G., Ruers T.J., Adema G.J., Punt C.J. Vaccination of colorectal cancer patients with CEA-loaded dendritic cells: antigen-specific T cell responses in DTH skin tests // Ann. Oncol. – 2006. – Vol. 17, N 6. – P. 974-980.; Malissen M., Gillet A., Rocha B., Trucy J., Vivier E., Boyer C., Köntgen F., Brun N., Mazza G., Spanopoulou E., Guy-Grand D., Malissen B. T cell development in mice lacking the CD3-zeta/eta gene // EMBO J. – 1993. – Vol. 12, N 11. – P. 4347-4355.; Mandy F.F., Nicholson J.K., McDougal J.S. Guidelines for performing single-platform absolute CD4+ T-cell determinations with CD45 gating for persons infected with human immunodeficiency virus // MMWR Recomm. Rep. – 2003. – Vol. 52, N RR-2. – P. 1-13.; McClanahan J., Fukushima P.I., Stetler-Stevenson M. Increased peripheral blood gamma delta T-cells in patients with lymphoid neoplasia: a diagnostic dilemma in flow cytometry // Cytometry. – 1999. – Vol. 38. – P. 280-285.; McMahan R.H., Slansky J.E. Mobilizing the low-avidity T cell repertoire to kill tumors // Semin. Cancer. Biol. – 2007. – Vol. 17, N 4. – P. 317-329.; Meth M.J., Sperber K.E. Phenotypic diversity in delayed drug hypersensitivity: an immunologic explanation // Mt. Sinai. J. Med. – 2006. – Vol. 73, N 5. – P. 769-776.; Milasiene V., Stratilatovas E., Norkiene V. The importance of T-lymphocyte subsets on overall survival of colorectal and gastric cancer patients // Medicina (Kaunas). – 2007. – Vol. 43, N 7. – P. 548-554.; Mogues T., Goodrich M.E, Ryan L., LaCourse R., North R.J. The relative importance of T cell subsets in immunity and immunopathology of airborne Mycobacterium tuberculosis infection in mice // J. Exp. Med. – 2001. – Vol. 193. – P. 271-280.; Moore T.A., Moore B.B., Newstead M.W., Standiford T.J. Gamma delta-T cells are critical for survival and early proinflammatory cytokine gene expression during murine Klebsiella pneumonia // J. Immunol. – 2000. – Vol. 165. – P. 2643-2650.; Morita C.T., Beckman E.M., Bukowski J.F., Tanaka Y., Band H., Bloom B.R., Golan D.E., Brenner M.B. Direct presentation of nonpeptide prenyl pyrophosphate antigens to human γδ-T cells // Immunity. – 1995. – Vol. 3. – P. 495-507.; Morita C.T., Lee H.K., Leslie D.S., Tanaka Y., Bukowski J.F., Märker-Hermann E. Recognition of nonpeptide prenyl pyrophosphate antigens by human γδ-T cells // Microbes. Infect. – 1999. – Vol. 1. – P. 175-186.; Morita C.T., Mariuzza R.A., Brenner M.B. Antigen recognition by human γδ-T cells: pattern recognition by the adaptive immune system // Springer. Semin. Immunopathol. – 2000. – Vol. 22. – P. 191-217.; Morita C.T., Tanaka Y., Bloom B.R., Brenner M.B. Direct presentation of non-peptide prenyl pyrophosphate antigens to human γδ-T cells // Res. Immunol. – 1996. – Vol. 147. – P. 347-353.; Paz Morante M., Briones J., Canto E., Sabzevari H., Martino R., Sierra J., Rodriguez-Sanchez J.L., Vidal S. Activation-associated phenotype of CD3 T cells in acute graft-versus-host disease // Clin. Exp. Immunol. – 2006. – Vol. 145, N 1. – P. 36-43.; Pellegrin J.L., Taupin J.L., Dupon M., Ragnaud J.M., Maugein J., Bonneville M., Moreau J.F. Gammadelta T cells increase with Mycobacterium avium complex infection but not with tuberculosis in AIDS patients // Int. Immunol. – 1999. – Vol. 11. – P. 1475-1478.; Ramos A., López-Hoyos M., Labrador M., González M., Rodríguez-Sánchez J.L., Merino J. Host H-2 haplotype modulates the induction of host-versus-graft disease after the induction of neonatal tolerance to H-2 alloantigens // Int. J. Mol. Med. – 1998. – Vol. 1, N 2. – P. 431-437.; Reimann K.A., O’Gorman M.R., Spritzler J., Wilkening C.L., Sabath D.E., Helm K., Campbell D.E. Multisite comparison of CD4 and CD8 T-lymphocyte counting by single-versus multiple-platform methodologies: evaluation of Beckman Coulter flow-count fluorospheres and the tetraONE system. The NIAID DAIDS New Technologies Evaluation Group // Clin. Diagn. Lab. Immunol. – 2000. – Vol. 7. – P. 344-351.; Robak E., Blonski J.Z., Bartkowiak J., Niewiadomska H., Sysa-Jedrzejowska A., Robak T. Circulating TCR gammadelta cells in the patients with systemic lupus erythematosus // Mediators. Inflamm. – 1999. – Vol. 8. – P. 305-312.; Schramm C.M., Puddington L., Yiamouyiannis C.A., Lingenheld E.G., Whiteley H.E., Woly niec W.W., Noonan T.C., Thrall R.S. Proinflammatory roles of T-cell receptor (TCR) gammadelta and TCRalphabeta lymphocytes in a murine model of asthma // Am. J. Respir. Cell. Mol. Biol. – 2000. – Vol. 22. – P. 218-225.; Selin L.K., Santolucito P.A., Pinto A.K., Szomolanyi-Tsuda E., Welsh R.M. Innate immunity to viruses: control of vaccinia virus infection by gamma delta T cells // J. Immunol. – 2001. – Vol. 166. – P. 6784-6794.; Sindhu S.T., Ahmad R., Morisset R., Ahmad A., Menezes J. Peripheral blood cytotoxic gammadelta T lymphocytes from patients with human immunodeficiency virus type 1 infection and AIDS lyse uninfected CD4+ T cells, and their cytocidal potential correlates with viral load // J. Virol. – 2003. – Vol. 77. – P. 1848-1855.; Sun C.F., Hsieh Y.Y., Ngan K.W., Wang W.T. Search for immunomodulatory effects of blood transfusion in gastric cancer patients: flow cytometry of Th1/Th2 cells in peripheral blood // Ann. Clin. Lab. Sci. – 2001. – Vol. 31, N 2. – P. 171-178.; Trejdosiewicz L.K., Smart C.J., Oakes D.J., Howdle P.D., Malizia G., Campana D., Boylston A.W. Expression of T-cell receptors TcR1 (gamma/delta) and TcR2 (alpha/beta) in the human intestinal mucosa // Immunology. – 1989. – Vol. 68, N 1. – P. 7-12.; Van den Beemd R., Boor P.P., van Lochem E.G., Hop W.C., Langerak A.W., Wolvers-Tettero I.L., Hooijkaas H., van Dongen J.J. Flow cytometric analysis of the Vbeta repertoire in healthy controls // Cytometry. – 2000. – Vol. 40, N 4. – P. 336-345.; Wada T., Kurokawa T., Toma T., Shibata F., Tone Y., Hashida Y., Kaya H., Yoshida T., Yachie A. Immunophenotypic analysis of Epstein–Barr virus (EBV)-infected CD8(+) T cells in a patient with EBV-associated hemophagocytic lymphohistiocytosis // Eur. J. Haematol. – 2007. – Vol. 79, N 1. – P. 72-75.; Yamashita N., Kaneoka H., Kaneko S., Takeno M., Oneda K., Koizumi H., Kogure M., Inaba G., Sakane T. Role of gammadelta T lymphocytes in the development of Beh et's disease // Clin. Exp. Immunol. – 1997. – Vol. 107, N 2. – P. 241-247.; Yin Z., Craft J. Gamma delta T cells in autoimmunity // Springer Semin. Immunopathol. – 2000. – Vol. 22. – P. 311-320.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/105

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/105
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2008-2-3-115-124

المؤلفون: A. V. Zurochka, E. V. Davydova, D. A. Altman, А. В. Зурочка, Е. В. Давыдова, Д. А. Альтман

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 16, № 1 (2014); 27-34 ; Медицинская иммунология; Том 16, № 1 (2014); 27-34 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2014-1

مصطلحات موضوعية: пролиферация, dyslipidemia, apoptosis, cell proliferation, дислипидемия, апоптоз

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/19/18; Виленский Б.С., Семенова Г.М., Широков Е.А. Патокинез сосудистых поражений мозга // Журнал неврологии и психиатрии им. Корсакова. – 2000. – Т. 100, № 3. – С. 14-18. Vilenskiy B.S., Semenova G.M., Shirokov E.A. Patokinez sosudistykh porazheniy mozga [Patokinez vascular lesions of the brain]. Zhurnal nevrologii i psikhiatrii im. Korsakova – Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry, 2000, vol. 100, no. 3, pp. 14-18.; Доборджгинидзе Л.М., Грацианский Н.А. Дислипидемии: липиды и липопротеины, метаболизм и участие в атерогенезе // Российский медицинский журнал. – 2000. – Т. 8, № 7. – C. 269-275. Dobordzhginidze L.M., Gratsianskiy N.A. Dislipidemii: lipidy i lipoproteiny, metabolizm i uchastie v aterogeneze [Dyslipidemia: lipids and lipoproteins, metabolism and participate in atherogenesis]. Rossiyskiy meditsinskiy zhurnal – Russian Medical Journal, 2000, vol. 8, no. 7, pp. 269-275.; Барышников А.Ю., Шишкин Ю.В. Иммунологические проблемы апоптоза. – М.: Эдиториал УРСС, 2002. – 320 с. Baryshnikov A.YU., Shishkin YU.V. Immunologicheskie problemy apoptoza [Immunological problems apoptosis]. Moscow, Editorial URSS, 2002. 320 p.; Рисберг В.Ю. Особенности иммунного статуса и апоптоз лимфоцитов при опийной наркомании: автореферат дис. канд. мед. наук. – Челябинск, 2002. – 250 с. Risberg V.Yu. Osobennosti immunnogo statusa i apoptoz limfotsitov pri opiynoy narkomanii. Avtoreferat dis. kand. med. nauk [Features of the immune status and apoptosis of lymphocytes in opioid addiction. Cand. med. sci. diss.]. Chelyabinsk, 2002. 250 p.; Шмидт Е.В. Классификация сосудистых поражений головного и спинного мозга // Журнал невропатологии и психиатрии. – 1985. – № 9. – С. 1281-1288. Shmidt E.V. Klassifikatsiya sosudistykh porazheniy golovnogo i spinnogo mozga [Classification of vascular lesions of the brain and spinal cord]. Zhurnal nevropatologii i psikhiatrii – J. of Neurology and Psychiatry, 1985, no. 9, pp. 1281-1288.; Tricot O., Mallat Z., Heymes C. Relation between endothelial cell apoptosis and blood flow direction in human atherosclerotic plaques. Circulation, 2000, vol. 101, no. 21, pp. 2450-2453.; Chang M.K., Bergmark C., Laurila A. Monoclonal antibodies against oxidized low-density lipoprotein bind to apoptotic cells and inhibit their phagocytosis by elicited macrophages: evidence that oxidation-specific epitopes mediate macrophage recognition. Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 1999, vol. 96, no. 11, pp. 6353-6358.; Carmelet P., Lampugnani M.G., Moons L. Targeted deficiency or cytosolic truncation of the VE-cadherin gene in mice impairs VEGF-mediated endothelial survival and angiogenesis. Cell, 1999, vol. 98, no. 2, pp. 147-157.; Candipan R.C., Wang B., Buitrago R. Regression or progression: dependency on vascular nitric oxide. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 1996, vol. 16, no. 1, pp. 44-50.; Xu Q. Role of Heat Shock Proteins in Atherosclerosis. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 2002, vol. 22, no. 10, pp. 1547-1559.; Krammer P. CD95’s deadly mission in the immune system. Nature, 2000, vol. 407, no. 6805, pp. 789-800.; Sibiryak S., Risberg V., Yusupova R. The immune status and lymphocyte apoptosis in the opioid addicts. Rus. J. Immunol., 2001, vol. 6, no. 3, pp. 282-290.; Sponne I., Fifre A., Kriem B. Membrane cholesterol interferes with neuronal apoptosis induced by soluble oligomers but not fibrils of the amyloid-Ab peptide. FASEB J., 2004, vol. 18, no. 7, pp. 836-838.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/19

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/19
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2014-1-27-34

المؤلفون: E. V. Shestakova, A. V. Zurochka, S. V. Kviatkovskaya, S. G. Betskov, V. V. Dukardt, S. V. Haidukov, Е. В. Шестакова, А. В. Зурочка, С. В. Квятковская, С. Г. Бецков, В. В. Дукардт, С. В. Хайдуков

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 10, № 4-5 (2008); 463-466 ; Медицинская иммунология; Том 10, № 4-5 (2008); 463-466 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2008-4-5

مصطلحات موضوعية: ВИЧ, T-lymphocytes, HIV, T-клетки

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/219/221; ВИЧ-инфекция // Информационный бюллетень № 28. – М., 2006. – 24 с.; Canadian Guidelines for Flow Cytometric Immunophenotyping. 2001. Edition.; De Paoli P., Gennari D., Martelli P., Basaglia G., Crovatto M., Battistin S., Santini G. A subset of gamma delta lymphocytes is increased during HIV-1 infection // Clin. Exp. Immunol. – 1991. – Vol. 83. – P. 187-191.; Dechanet J., Merville P., Lim A., Retiere C., Pitard V., Lafarge X., Michelson S., Meric C., Hallet M.M., Kourilsky P., Bonneville M., Moreau J.F. Implication of γδT cells in the human immune response to cytomegalovirus // J. Clin. Invest. – 1999. – Vol. 103. – P. 1437-1449.; Lambert C., Genin C. CD3 bright lymphocyte population revel gamma delta T cells // Cytometry B. Clin. Cytom. – 2004. – Vol. 61, N 1. – P. 45-53.; Margolick J.B., Scott E.R., Odaka N., Saah A.J. Flow Cytometric analysis of gamma delta T cells and natural killer cells in HIV-1 infection // Clin. Immunol. Immunopathol. – 1991. – Vol. 58. – P. 126-138.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/219

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/219
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2008-4-5-463-466