المؤلفون: L. A. Chipiga, S. A. Ryzhov, A. V. Vodovatov, I. A. Zvonova, A. V. Petryakova, A. A. Stanzhevsky, K. D. Kiselev, I. V. Glotova, Л. А. Чипига, С. А. Рыжов, А. В. Водоватов, И. A. Звонова, А. В. Петрякова, А. А. Станжевский, К. Д. Киселев, И. В. Глотова

المساهمون: The work was performed as a part of the program of Federal Service for Surveillance on Consumer Rights Protection and Human Well-Being «Development and scientific justification of a set of measures to ensure radiation protection in nuclear medicine» and within the framework of the research works «Scientific development of medical technological and organizational aspects of radiation safety in the provision of medical care» (No. EGISU: №123031500006-9) and «Development of personalized methods of radionuclide diagnostics and therapy of children and radiological control including using artificial intelligence technologies» (No. EGISU: 124021200036-9)., Работа выполнена в рамках отраслевой программы Роспотребнадзора «Разработка и научное обоснование комплекса мер по обеспечению радиационной защиты в ядер-ной медицине», а также в рамках двух НИР: «Научное развитие медико-технологических и организационных аспектов обеспечения радиационной безопасности при оказании медицинской помощи» (№ ЕГИСУ: №123031500006-9) и «Разработка персонализированных методов радионуклидной диагностики и терапии у детей, а также радиологического контроля, в том числе с использованием технологии" искусственного интеллекта» (№ ЕГИСУ: №124021200036-9).

المصدر: Radiatsionnaya Gygiena = Radiation Hygiene; Том 17, № 3 (2024); 29-38 ; Радиационная гигиена; Том 17, № 3 (2024); 29-38 ; 2409-9082 ; 1998-426X

مصطلحات موضوعية: радиационная безопасность, patient, biological waste, public exposure, clearance level, radiation safety, биологические отходы пациентов, облучение населения, критерии отнесения к жидким радиоактивным отходам

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/1059/906; IAEA-TECDOC-1183. Management of radioactive waste from the use of radionuclides in medicine. IAEA: Vienna, 2000. 83 p.; Чипига Л.А., Водоватов A.B., Звонова И.А. и др. Обращение с биологическими отходами пациентов после проведения радионуклидной терапии // Радиационная гигиена. 2022. Т. 15, № 2. С. 19-30. DOI:10.21514/1998-426Х-2022-15-2-19-30.; Чипига Л.А., Водоватов А.В., Петрякова А.В. и др. Обоснование дифференцированного подхода к обращению с биологическими отходами пациентов в подразделениях ядерной медицины // Радиационная гигиена. 2022. Т. 15, №4. С. 34-44. DOI:10.21514/1998-426Х-2022-15-4-34-44.; Официальный сайт Международного Медицинского Центра «УРО-ПРО» Сочи. URL: https://sochi.upclinic.ru/information/urologiya-seksologiya/rasstroystva-mocheispuskaniya-/ (Дата обращения: 11.06.2024).; International Commission on Radiological Protection. Radiation dose to patients from radiopharmaceuticals: a compendium of current information related to frequently used substances. ICRP Publication 128. Ann. ICRP, 2015. 44(2S).; International Commission on Radiological Protection. Nuclear Decay Data for Dosimetric Calculations. ICRP Publication 107. Ann. ICRP, 2008. 38 (3).; Dowd M.T., Chen C.T., Wendel M.J., et al. Radiation dose to the bladder wall from 2-[18F] fluoro-2-deoxy-D-glucose in adult humans 11 Journal of Nuclear Medicine. 1991. Vol. 32, No 4. P. 707-712.; Chen C.T., Harper P.V., Lathrop K.A. A simple dynamic model for calculating radiation absorbed dose to the bladder wall I 4th International Radiopharmaceutical Dosimetry Symposium. 1985. P. 5-8.; Kurth J., Krause B.J., Schwarzenbo"ck S.M., et al. External radiation exposure, excretion, and effective half-life in 177Lu-PSMA-targeted therapies // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging research. 2018. Vol. 8, No 1. P.1-11. DOI:10.1186/sl3550-018-0386-4.; Петрякова A.B., Чипига Л.А., Звонова И.А. и др. Проблемы радиационной безопасности при передвижении в общественном транспорте пациента после радионуклидной терапии с 1311 // Радиационная гигиена. 2024. Т. 17, №2. С. 97-108. DOI:10.21514/1998-426Х-2023-17-2-97-108.; https://www.radhyg.ru/jour/article/view/1059

الاتاحة: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/1059
https://doi.org/10.21514/1998-426X-2024-17-3-29-38

المؤلفون: A. V. Petryakova, L. A. Chipiga, I. A. Zvonova, A. V. Vodovatov, G. A. Gorsky, A. A. Stanzhevsky, А. В. Петрякова, Л. А. Чипига, И. А. Звонова, А. В. Водоватов, Г. А. Горский, А. А. Станжевский

المساهمون: The work was performed as a part of the program of Federal Service for Surveillance on Consumer Rights Protection and Human Well-Being “Development and scientific justification of a set of measures to ensure radiation protection in nuclear medicine”., Работа выполнена в рамках отраслевой программы Роспотребнадзора «Разработка и научное обоснование комплекса мер по обеспечению радиационной защиты в ядерной медицине».

المصدر: Radiatsionnaya Gygiena = Radiation Hygiene; Том 17, № 2 (2024); 97-108 ; Радиационная гигиена; Том 17, № 2 (2024); 97-108 ; 2409-9082 ; 1998-426X

مصطلحات موضوعية: Na131I, radiopharmaceutical therapy, liquid radioactive waste, radiation safety, 131I-mIBG, радионуклидная терапия, жидкие радиоактивные отходы, радиационная безопасность, 131I-МИБГ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/1043/894; Evaluation of Medical Exposure to Ionizing Radiation. United Nations Scientific Committee on the Effects of Atomic Radiation (UNSCEAR) 2020/2021 Report Volume I. Annex A.; Звонова И.А., Лихтаpев И.А., Николаева А.А. Облучение щитовидной железы, сопpовождающее pадиойодное обследование пациентов с тиpеоидными заболеваниями // Медицинская радиология. 1984. Т. 4. C. 42-44.; Carrasquillo J.A., Chen C.C. Neuroendocrine Tumors: Therapy with 131I-MIBG. In: Strauss H., Mariani G., Volterrani D., Larson S. (eds). Nuclear Oncology. Springer, Cham. 2016. P. 1-38. https://doi.org/10.1007/978-3-319-26067-9_26-1.; Чипига Л.А., Ладанова Е.Р., Водоватов А.В. и др. Тенденции развития ядерной медицины в Российской Федерации за 2015–2020 гг. // Радиационная гигиена. 2022. T. 15, № 4. С. 122-133. DOI:10.21514/1998-426X-2022-15-4-122-133.; Чипига Л.А., Звонова Н.А., Водоватов A.B. и др. Совершенствование подхода к определению радиологических критериев выписки пациентов после радионуклидной терапии // Радиационная гигиена. 2023. Т. 16, № 2. С. 19-31. https://doi.org/10.21514/1998-426X-2023-16-2-19-31.; Балонов М.И., Голиков В.Ю., Звонова И.А. Радиологические критерии выписки пациента из клиники после радионуклидной терапии или брахитерапии с имплантацией закрытых источников // Радиационная гигиена. 2009. Т. 2, № 4. С. 5-9.; Zvonova I., Balonov M., Golikov V. Release criteria for patients having undergone radionuclide therapy and criteria for their crossing the state border of the Russian Federation // Radiation Protection Dosimetry. 2011. Vol. 147, № 1-2. P. 254-257. doi:10.1093/rpd/ncr308.; International Atomic Energy Agency, Release of Patients After Radionuclide Therapy, Safety Reports Series No. 63. IAEA: Vienna, 2009.; International Atomic Energy Agency. Radiation protection and safety of radiation sources: international basic safety standards. Interim edition. Safety Standards Series No. GSR Part 3 (interim). IAEA: Vienna, 2011.; International Commission on Radiological Protection. Release of patients after therapy with unsealed radionuclides. ICRP Publication 94 // Annual ICRP. 2004. Vol. 34, No 2.; Jacobsson L., Mattsson S., Johansson L. et al. Biokinetics and dosimetry of ‘3’I-metaiodobenzylguanidine (MIBG). Proc. Fourth ht. Rndiophnrmuceutical Dosimetry Symposium. Oak Ridge 1985, Oak Ridge Assoc. Universities CONF-851113, Oak Ridge National Laboratories, Oak Ridge, Tennessee. 1986. P. 389-398.; Радионуклидная диагностика для практических врачей / Под ред. Ю.Б. Лишманова, В.И. Чернова. Томск: STT, 2004. С. 317-319.; Willegaignon J., Crema K.P., Oliveira N.C. et al. Pediatric 131I-MIBG Therapy for Neuroblastoma: Whole-Body 131I-MIBG Clearance, Radiation Doses to Patients, Family Caregivers, Medical Staff, and Radiation Safety Measures // Clinical Nuclear Medicine. 2018.Vol. 43, No 8. P. 572-578. doi:10.1097/RLU.0000000000002158.; O’Doherty M.J., Kettle A.G., Eustance C.N. et al. Radiation dose rates from adult patients receiving 131I therapy for thyrotoxicosis // Nuclear Medicine Community. 1993. Vol. 14, No 3. P. 160-8. doi:10.1097/00006231-199303000-00003.; Barrington S.F., Kettle A.G., O’Doherty M.J. et al. Radiation dose rates from patients receiving iodine-131 therapy for carcinoma of the thyroid // European Journal of Nuclear Medicine. 1996. No 23. P. 123–130 doi:10.1007/BF01731834.; International Commission on Radiological Protection. Conversion Coefficients for Radiological Protection Quantities for External Radiation Exposures. ICRP Publication 116 // Annual ICRP. 2010. Vol. 40, No 2-5.; ICRP. Radiation Dose to Patients from Radiopharmaceuticals. ICRP Publication 53 // Annals of the ICRP. 1988. Vol. 18, No 1-4.; Чипига Л.А., Водоватов А.В., Звонова И.А. и др. Обращение с биологическими отходами пациентов после проведения радионуклидной терапии // Радиационная гигиена. 2022. Т. 15, № 2. С. 19-30. https://doi.org/10.21514/1998-426X-2022-15-2-19-30.; Громов А.В., Ахматдинов Р.Р., Библин A.М., Тутельян О.Е. Сравнительный анализ информации о радиационных авариях в Российской Федерации в 2010–2022 гг. // Радиационная гигиена. 2023. Т. 16, №4. С. 122-133. https://doi.org/10.21514/1998-426X-2023-16-4-122-133 .; https://www.radhyg.ru/jour/article/view/1043

الاتاحة: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/1043
https://doi.org/10.21514/1998-426X-2023-17-2-97-108

المؤلفون: A. V. Vodovatov, L. A. Chipiga, A. V. Petryakova, A. A. Stanzhevskii, D. N. Maistrenko, D. A. Vazhenina, D. S. Sysoev, S. A. Ryzhov, А. В. Водоватов, Л. А. Чипига, А. В. Петрякова, А. А. Станжевский, Д. Н. Майстренко, Д. А. Важенина, Д. С. Сысоев, С. А. Рыжов

المصدر: Diagnostic radiology and radiotherapy; Том 13, № 4 (2022); 9-15 ; Лучевая диагностика и терапия; Том 13, № 4 (2022); 9-15 ; 2079-5343

مصطلحات موضوعية: критические органы, radiopharmaceutical, absorbed dose, tumors, region at risk, радиофармпрепарат, поглощенная доза, новообразования

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/799/569; Чипига Л.А., Водоватов А.В., Звонова И.А., Станжевский А.А., Петрякова А.В., Анокина Е.Е., Величкина К.С., Рыжов С.А. Обращение с биологическими отходами пациентов после проведения радионуклидной терапии // Радиационная гигиена. 2022. T. 15, № 2. С. 19–30. https://doi.org/10.21514/1998-426X-2022-15-2-19-30.; Hörsch D., Ezziddin S., Haug A., et al. Effectiveness and side-effects of peptide receptor radionuclide therapy for neuroendocrine neoplasms in Germany: A multi- institutional registry study with prospective follow-up // Eur. J. Cancer. 2016. Vol. 58. P. 41–51. doi:10.1016/j.ejca.2016.01.009. PMID: 26943056.; Vallathol D.H., Digumart R. An Update on Toxicity of Therapeutic Radionuclides // Medical Research Archives. 2021, Vol. 9, Nо. 4. https://doi.org/10.18103/mra.v9i4.2388.; Kassis A.I., Adelstein S.J. Radiobiologic principles in radionuclide therapy // J. Nucl. Med. 2005. Vol. 46, Nо. 1. P. 4–12. PMID: 15653646.; Sathekge M. Targeted radionuclide therapy has the potential to selectively deliver radiation to diseased cells with minimal toxicity to surrounding tissues // CME. 2013, Vol. 31, Nо. 8. P. 289–294.; Sgouros G., Bolch W.E., Chiti A., et al. ICRU REPORT 96, Dosimetry-Guided Radiopharmaceutical Therapy // Journal of the ICRU. 2021. Vol. 21. Nо. 1. P. 1– 212. doi:10.1177/14736691211060117.; Wheat J.M., Currie G.M., Davidson R., Kiat H. Radionuclide therapy // The radiographer. 2011. Vol. 58, Nо. 3. P. 53–59.; Brans B., Bodei L., Giammarile F. et al. Clinical radionuclide therapy dosimetry: the quest for the «Holy Gray» // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2007. Vol. 34. P. 772–786. https://doi.org/10.1007/s00259-006-0338-5.; ICRU REPORT 58, Dose and Volume Specification for Reporting Interstitial Therapy // Journal of the ICRU. 1998. Vol. os-30, Nо. 1.; Carrasco N., Chimeno J., Adrià-Mora M. et al. Inter-observer and intra-observer variability in reporting vaginal dose points for cervical cancer in high-dose-rate brachytherapy // J. Contemp. Brachytherapy. 2020. Vol. 12, Nо. 2. P. 139–146. doi:10.5114/jcb.2020.94494. PMID: 32395138. PMCID: PMC7207226.; https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/799

الاتاحة: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/799
https://doi.org/10.22328/2079-5343-2022-13-4-9-15

المؤلفون: A. A. Stanzhevskii, D. N. Maistrenko, D. A. Vazhenina, D. S. Sysoev, A. V. Vodovatov, L. A. Chipiga, S. A. Ryzhov, A. V. Petryakova, А. А. Станжевский, Д. Н. Майстренко, Д. А. Важенина, Д. С. Сысоев, А. В. Водоватов, Л. А. Чипига, С. А. Рыжов, А. В. Петрякова

المصدر: Diagnostic radiology and radiotherapy; Том 13, № 4 (2022); 16-26 ; Лучевая диагностика и терапия; Том 13, № 4 (2022); 16-26 ; 2079-5343

مصطلحات موضوعية: планирование терапии, radiopharmaceutical, absorbed dose, treatment planning, радиофармпрепарат, поглощенная доза

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/800/570; Sgouros G., Bolch W.E., Chiti A. et al. ICRU REPORT 96, Dosimetry-Guided Radiopharmaceutical Therapy // Journal of the ICRU. 2021. Vol. 21, Nо. 1. P. 1–212. doi:10.1177/14736691211060117.; Fisher D.R., Fahey F.H. Appropriate use of effective dose in radiation protection and risk assessment // Health Physics. 2017. Vol. 113, Nо. 2. P. 102–109.; Martin C.J. Effective dose in medicine // Annals of the ICRP. 2020. Vol. 49, Nо. 1. P. 126–140. doi:10.1177/0146645320927849.; Vano E., Frija G., Loose R. et al. Dosimetric quantities and effective dose in medical imaging: a summary for medical doctors // Insights Imaging. 2021. Vol. 12, Nо. 1. P. 99–108. doi: 1186/s13244-021-01041-2.; ICRP, 2021. Use of dose quantities in radiological protection. ICRP Publication 147 // Ann. ICRP. Vol. 50, No. 1. doi:10.1088/1361-6498/abe548.; Gear J.I., Cox M.G., Gustafsson J. et al. EANM practical guidance on uncertainty analysis for molecular radiotherapy absorbed dose calculations // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2018. Vol. 45. P. 2456–2474. doi:10.1007/s00259-018-4136-7.; Gear J., Chiesa C., Lassmann M. et al. EANM Dosimetry Committee series on standard operational procedures for internal dosimetry for 131I mIBG treatment of neuroendocrine tumours // EJNMMI Phys. 2020. Vol. 7, Nо. 15. doi:10.1186/s40658-020-0282-7.; Handkiewicz-Junak D., Poeppel T.D., Bodei,L. et al. EANM guidelines for radionuclide therapy of bone metastases with beta-emitting radionuclides // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2018. Vol. 45. P. 846–859. doi:10.1007/s00259-018-3947-x.; Hänscheid H., Canzi C., Eschner W. et al. EANM Dosimetry Committee Series on Standard Operational Procedures for Pre-Therapeutic Dosimetry II. Dosimetry prior to radioiodine therapy of benign thyroid diseases // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2013. Vol. 40. P. 1126–1134. doi:10.1007/s00259–013-2387-x.; Hindorf C., Glatting G., Chiesa,C., Linden O., and Flux G. EANM Dosimetry Committee guidelines for bone marrow and whole-body dosimetry // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2013. Vol. 37. P. 1238–1250. doi:10.1007/s00259-010-1422-4.; Lassmann M., Chiesa C., Flux G., Bardies M. EANM Dosimetry Committee guidance document: Good practice of clinical dosimetry reporting // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imag. 2011. Vol. 38. P. 192–200. doi:10.1007/s00259-010-1549-3.; Hobbs R.F., McNutt T., Baechler S. et al. A treatment planning method for sequentially combining radiopharmaceutical therapy and external radiation therapy // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 2011. Vol. 80. P. 1256–1262.; ICRU REPORT 83, Prescribing, Recording, and Reporting Photon-Beam Intensity-Modulated Radiation Therapy (IMRT) // Journal of the ICRU. 2010. Vol. 10, Nо. 1. P. 1–2.; ICRU REPORT 72, Dosimetry of Beta Rays and Low-Energy Photons for Brachytherapy with Sealed Sources // Journal of the ICRU. 2004. Vol. 4, Nо. 3. P. 1–2.; Wilke L., Andratschke N., Blanck O. et al. ICRU REPORT 91, On prescribing, recording, and reporting of stereotactic treatments with small photon beams: Statement from the DEGRO/DGMP working group stereotactic radiotherapy and radiosurgery // Strahl. Onkol. 2019. Vol. 195. P. 193–198. doi:10.1007/s00066-018-1416-x.; ICRU REPORT 67, Absorbed-dose specification in nuclear medicine // J. ICRU. 2002. Vol. 2. P. 1–110.; Gear J., Chiesa C., Lassmann M. et al. EANM Dosimetry Committee. EANM Dosimetry Committee series on standard operational procedures for internal dosimetry for 131 I mIBG treatment of neuroendocrine tumours // EJNMMI Phys. 2020. Vol. 7, Nо. 1. Р. 15. doi:10.1186/s40658-020-0282-7.; https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/800

الاتاحة: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/800
https://doi.org/10.22328/2079-5343-2022-13-4-16-26

المؤلفون: N. A. Nosov, S. A. Popov, E. V. Rozengauz, A. A. Stanzhevskii, D. A. Granov, D. N. Maystrenko, Н. А. Носов, С. А. Попов, Е. В. Розенгауз, А. А. Станжевский, Д. А. Гранов, Д. Н. Майстренко

المصدر: Diagnostic radiology and radiotherapy; Том 13, № 4 (2022); 38-45 ; Лучевая диагностика и терапия; Том 13, № 4 (2022); 38-45 ; 2079-5343

مصطلحات موضوعية: ROC-анализ, pancreas, PET/CT, 68 Ga-DOTATATE, serotonin, chromogranin-A, ROC-analysis, поджелудочная железа, ПЭТ/КТ, серотонин, хромогранин-А

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/802/572; Gordon-Dseagu V.L., Devesa S.S., Goggins M., Stolzenberg-Solomon R. Pancreatic cancer incidence trends: evidence from the Surveillance, Epidemiology and End Results (SEER) population-based data // Int. J. Epidemiol. 2018. Vol. 47, No. 2. Р. 427–439. doi:10.1093/ije/dyx232.; Scott A.T., Howe J.R. Evaluation and Management of Neuroendocrine Tumors of the Pancreas // Surg. Clin. North Am. 2019. Vol. 99, No. 4. Р. 793–814. doi:10.1016/j.suc.2019.04.014.; Anderson R.C., Velez E.M., Desai B., Jadvar H. Management Impact of 68Ga-DOTATATE PET/CT in Neuroendocrine Tumors // Nucl. Med. Mol. Imaging. 2021. Vol. 55, No. 1. Р. 31–37. doi:10.1007/s13139-020-00677-0.; Делекторская В.В. Нейроэндокринные новообразования поджелудочной железы: новые аспекты морфологической классификации (Всемирная организация здравоохранения, 2017) // Успехи молекулярной онкологии. 2017. Т. 4, № 3. С. 104–108. Available from: http://dx.doi.org/10.17650/2313-805x-2017-4-3-104-108.; Pavel M., O’Toole D., Costa F. et al. ENETS Consensus Guidelines Update for the Management of Distant Metastatic Disease of Intestinal, PancreaticBronchial Neuroendocrine Neoplasms (NEN) and NEN of Unknown Primary Site // Neuroendocrinology. 2016. Vol. 103, No. 2. Р. 172–185. doi:10.1159/000443167.; Lawrence B., Gustafsson B.I., Chan A., Svejda B., Kidd M., Modlin I.M. The epidemiology of gastroenteropancreatic neuroendocrine tumors // Endocrinol. Metab. Clin. North Am. 2011. Vol. 40, No. 1. Р. 1–vii. doi:10.1016/j.ecl.2010.12.005.; Frilling A., Modlin I.M., Kidd M. et al. Recommendations for management of patients with neuroendocrine liver metastases // Lancet Oncol. 2014. Vol. 15, No. 1. Р. e8-e21. doi:10.1016/S1470-2045(13)70362-0.; Falconi M., Eriksson B., Kaltsas G. et al. ENETS Consensus Guidelines Update for the Management of Patients with Functional Pancreatic Neuroendocrine Tumors and Non-Functional Pancreatic Neuroendocrine Tumors // Neuroendocrinology. 2016.103, No. 2. Р. 153–171. doi:10.1159/000443171.; Niederle B., Pape U.F., Costa F. et al. ENETS Consensus Guidelines Update for Neuroendocrine Neoplasms of the Jejunum and Ileum // Neuroendocrinology. 2016. Vol. 103, No. 2. Р. 125–138. doi:10.1159/000443170.; Arnold R., Chen Y.J., Costa F. et al. ENETS Consensus Guidelines for the Standards of Care in Neuroendocrine Tumors: follow-up and documentation // Neuroendocrinology. 2009. Vol. 90, No. 2. Р. 227–233. doi:10.1159/000225952.; Oberg K., Modlin I.M., De Herder W. et al. Consensus on biomarkers for neuroendocrine tumour disease // Lancet Oncol. 2015. Vol. 16, No. 9. Р. e435-e446. doi:10.1016/S1470-2045(15)00186-2.; Tirosh A., Papadakis G.Z., Millo C. et al. Association between neuroendocrine tumors biomarkers and primary tumor site and disease type based on total 68 Ga-DOTATATE-Avid tumor volume measurements // Eur. J. Endocrinol. 2017. Vol. 176, No. 5. Р. 575–582. doi:10.1530/EJE-16-1079.; Deroose C.M., Hindié E., Kebebew E. et al. Molecular Imaging of Gastroenteropancreatic Neuroendocrine Tumors: Current Status and Future Directions // J. Nucl. Med. 2016. Vol. 57, No. 12. Р. 1949–1956. doi:10.2967/jnumed.116.179234.; Bozkurt M.F., Virgolini I., Balogova S. et al. Guideline for PET/CT imaging of neuroendocrine neoplasms with 68Ga-DOTA-conjugated somatostatin receptor targeting peptides and 18F-DOPA [published correction appears in Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2017 Aug 30] // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2017. Vol. 44, No. 9. Р. 1588–1601. doi:10.1007/s00259-017-3728-y.; Jackson T., Darwish M., Cho E., Nagatomo K., Osman H., Jeyarajah D.R. 68Ga-DOTATATE PET/CT compared to standard imaging in metastatic neuroendocrine tumors: a more sensitive test to detect liver metastasis? // Abdom. Radiol (NY). 2021. Vol. 46, No. 7. Р. 3179–3183. doi:10.1007/s00261-021-02990-4.; Sundin A., Arnold R., Baudin E. et al. ENETS Consensus Guidelines for the Standards of Care in Neuroendocrine Tumors: Radiological, Nuclear Medicine & Hybrid Imaging // Neuroendocrinology. 2017. Vol. 105, No. 3. Р. 212–244. doi:10.1159/000471879.; Skoura E., Michopoulou S., Mohmaduvesh M. et al. The Impact of 68Ga-DOTATATE PET/CT Imaging on Management of Patients with Neuroendocrine Tumors: Experience from a National Referral Center in the United Kingdom // J. Nucl. Med. 2016. Vol. 57, No. 1. Р. 34–40. doi:10.2967/jnumed.115.166017.; Yang J., Kan Y., Ge B.H., Yuan L., Li C., Zhao W. Diagnostic role of Gallium-68 DOTATOC and Gallium-68 DOTATATE PET in patients with neuroendocrine tumors: a meta-analysis // Acta Radiol. 2014. Vol. 55, No. 4. Р. 389–398. doi:10.1177/0284185113496679.; Doroudinia A., Emami H., Hosseini M.S. 68Ga-DOTATATE Radioisotope scan to detect neuroendocrine tumors; A Cross-Sectional Study // Asia Ocean J. Nucl. Med Biol. 2022. Vol. 10, No. 1. Р. 14–19. doi:10.22038/AOJNMB.2021.56971.1397.; Yu J., Li N., Li J. et al. The Correlation Between [68Ga]DOTATATE PET/CT and Cell Proliferation in Patients With GEP-NENs // Mol. Imaging Biol. 2019. Vol. 21, No. 5. Р. 984–990. doi:10.1007/s11307-019-01328-3.; https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/802

الاتاحة: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/802
https://doi.org/10.22328/2079-5343-2022-13-4-38-45

المؤلفون: D. N. Maystrenko, A. A. Stanzhevskii, D. A. Vazhenina, M. V. Odintsova, S. A. Popov, V. B. Nomokonova, L. A. Chipiga, K. A. Saprykin, A. V. Gromov, S. K. Vasiliev, Д. Н. Майстренко, А. А. Станжевский, Д. А. Важенина, М. В. Одинцова, С. А. Попов, В. Б. Номоконова, Л. А. Чипига, К. А. Сапрыкин, А. В. Громов, С. К. Васильев

المصدر: Diagnostic radiology and radiotherapy; Том 13, № 4 (2022); 86-94 ; Лучевая диагностика и терапия; Том 13, № 4 (2022); 86-94 ; 2079-5343

مصطلحات موضوعية: нейроэндокринные опухоли, oncology, theranostics, prostate cancer, neuroendocrine tumors, онкология, тераностика, рак предстательной железы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/807/577; Morgenstern A. An Overview of Targeted Alpha Therapy with 225 Actinium and 213 Bismuth // Current Radiopharmaceuticals. 2018. Vol. 11, No. 3, pp. 200–208. doi:10.2174/1874471011666180502104524.; Kratochwil C. Targeted a-Therapy of Metastatic Castration-Resistant Prostate Cancer with 225 Ac-PSMA-617: Dosimetry Estimate and Empiric Dose Finding // The Journal of Nuclear Medicine. 2017. Vol. 58, No. 10, pp. 1624–1631. doi:10.2967/jnumed.117.191395.; Özgüven S. Physiological Biodistribution of 68 Ga-DOTA-TATE in Normal Subjects // Molecular Imaging And Radionuclide Therapy. 2021. Vol. 30, No. 1, pp. 39–46. doi:10.4274/mirt.galenos.2021.37268.; Hooijman E. Development of [ 225 Ac]Ac-PSMA-I&T for Targeted Alpha Therapy According to GMP Guidelines for Treatment of mCRPC // Pharmaceutic. 2021. Vol. 13, No. 5. Р. 715. doi:10.3390/pharmaceutics13050715.; Birindelli G. In silico study on radiobiological efficacy of Ac-225 and Lu-177 for PSMA-guided radiotherapy // 43 rd Annual International Conference of the IEEE Engineering in Medicine and Biology Society (USA, New York, 01–05 November 2021 year). New York, 2021. Р. 4497–4500. doi:10.1109/EMBC46164.2021.9630297.; Lunger L. Narrative review: prostate-specific membrane antigen-radioligand therapy in metastatic castration-resistant prostate cancer // Translational Andrology and Urology. 2021. Vol. 10, No. 10. Р. 3963–3971. doi:10.21037/tau-20-1135.4.; Stefe M. Intra-therapeutic dosimetry of [ 177 Lu] Lu-PSMA-617 in low-volume hormone-sensitive metastatic prostate cancer patients and correlation with treatment outcome // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2022. Vol. 49, No. 2. Р. 460–469. doi:10.1007/s00259-021-05471-4.; Шкала ECOG. https://onconet.online/lib/4/diagn/207 (дата обращения 18.11.2022).; Критерии PERCIST. https://recist.eortc.org/recist-1–1-2 (дата обращения 18.11.2022).; Радионуклидная диагностика для практических врачей / под ред. Ю.Б.Лишманова, В.И.Чернова, Новосибирск: STT, 2004. 387 с. ISBN 5-93629-166-9.; Афанасьев В.В. Слюнные железы. Болезни и травмы: руководство для врачей. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2012. 296 с. ISBN 978-5-9704-2066-9.; https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/807

الاتاحة: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/807
https://doi.org/10.22328/2079-5343-2022-13-4-86-94

المؤلفون: A. L. Dolbov, A. A. Stanzhevskii, D. N. Maistrenko, M. I. Shkolnik, E. V. Rozengauz, O. A. Bogomolov, D. S. Sysoev, V. F. Mus, А. Л. Долбов, А. А. Станжевский, Д. Н. Майстренко, М. И. Школьник, Е. В. Розенгауз, О. А. Богомолов, Д. С. Сысоев, В. Ф. Мус

المصدر: Diagnostic radiology and radiotherapy; Том 13, № 4 (2022); 46-56 ; Лучевая диагностика и терапия; Том 13, № 4 (2022); 46-56 ; 2079-5343

مصطلحات موضوعية: ПЭТ-визуализация, prostate cancer, lymph nodes, PET imaging, рак предстательной железы, лимфатические узлы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/803/573; Torre L.A., Siegel R.L., Ward E.M. et al. Global Cancer Incidence and Mortality Rates and Trends-An Update // Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2016. Vol. 25, No. 1. P. 16–27. doi:10.1158/1055–9965.EPI-15-0578.; Hövels A.M., Heesakkers R.A., Adang E.M. et al. The diagnostic accuracy of CT and MRI in the staging of pelvic lymph nodes in patients with prostate cancer: a meta-analysis // Clin. Radiol. 2008. Vol. 63, No. 4. P. 387–395. doi:10.1016/j.crad.2007.05.022.; Szigeti F., Schweighofer-Zwink G., Meissnitzer M. et al. Incremental Impact of [ 68 Ga]Ga-PSMA-11 PET/CT in Primary N and M Staging of Prostate Cancer Prior to Curative-Intent Surgery: a Prospective Clinical Trial in Comparison with mpMRI // Mol. Imaging. Biol. 2022. Vol. 24, No. 1. P. 50–59. doi:10.1007/s11307-021-01650-9.; Scheltema M.J., Chang J.I., Stricker P.D. et al. Diagnostic accuracy of 68 Ga-prostate-specific membrane antigen (PSMA) positron-emission tomography (PET) and multiparametric (mp)MRI to detect intermediate-grade intra-prostatic prostate cancer using whole-mount pathology: impact of the addition of 68 Ga-PSMA PET to mpMRI // BJU Int. 2019. Vol. 124, No. 1. P. 42–49. doi:10.1111/bju.14794.; Chen M., Zhang Q., Zhang C. et al. Comparison of 68 Ga-prostate-specific membrane antigen (PSMA) positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) and multi-parametric magnetic resonance imaging (MRI) in the evaluation of tumor extension of primary prostate cancer // Transl. Androl. Urol. 2020. Vol. 9, No. 2. P. 382–390. doi:10.21037/tau.2020.03.06.; Koseoglu E., Kordan Y., Kilic M. et al. Diagnostic ability of Ga-68 PSMA PET to detect dominant and non-dominant tumors, upgrading and adverse pathology in patients with PIRADS 4–5 index lesions undergoing radical prostatectomy // Prostate Cancer Prostatic Dis. 2021. Vol. 24, No. 1. P. 202–209. doi:10.1038/s41391-020-00270-8.; Sachpekidis C., Kopka K., Eder M. et al. 68 Ga-PSMA-11 Dynamic PET/CT Imaging in Primary Prostate Cancer // Clin. Nucl. Med. 2016. Vol. 41, No. 11. P. e473-e479. doi:10.1097/RLU.0000000000001349.; Uprimny C., Kroiss A.S., Decristoforo C. et al. 68 Ga-PSMA-11 PET/CT in primary staging of prostate cancer: PSA and Gleason score predict the intensity of tracer accumulation in the primary tumour // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2017. Vol. 44, No. 6. P. 941–949. doi:10.1007/s00259-017-3631-6.; Onal C., Torun N., Oymak E. et al. Retrospective correlation of 68 Ga-PSMA uptake with clinical parameters in prostate cancer patients undergoing definitive radiotherapy // Ann. Nucl. Med. 2020. Vol. 34, No. 6. P. 388–396. doi:10.1007/s12149-020-01462-x.; Zhou C., Tang Y., Deng Z. et al. Comparison of 68 Ga-PSMA PET/CT and multiparametric MRI for the detection of low- and intermediate-risk prostate cancer // EJNMMI Res. 2022. Vol. 12, No. 1. P. 10. Published 2022 Feb 11. doi:10.1186/s13550-022-00881-3.; https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/803

الاتاحة: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/803
https://doi.org/10.22328/2079-5343-2022-13-4-46-56

المؤلفون: A. A. Ivanova, A. A. Stanzhevskii, D. N. Maystrenko, S. V. Shatik, D. S. Sysoev, Yu. O. Antuganova, M. A. Nadporojskii, D. O. Antuganov, А. А. Иванова, А. А. Станжевский, Д. Н. Майстренко, С. В. Шатик, Д. С. Сысоев, Ю. О. Антуганова, М. А. Надпорожский, Д. О. Антуганов

المصدر: Diagnostic radiology and radiotherapy; Том 13, № 4 (2022); 27-37 ; Лучевая диагностика и терапия; Том 13, № 4 (2022); 27-37 ; 2079-5343

مصطلحات موضوعية: 68 Ga-ФАПИ-04, 68 Ga-FAPI-04, PET/CT, ПЭТ/КТ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/801/571; Lopci E., Fanti S. Non-FDG PET/CT // Recent Results Cancer Res. 2020. Vol. 216. P. 669–718. https://doi.org/10.1007/978-3-030-42618-7_20.; Hanahan D., Coussens L.M. Accessories to the crime: functions of cells recruited to the tumor microenvironment // Cancer Cell. 2012. Vol. 21. P. 309–322. https://doi.org/10.1016/j.ccr.2012.02.022.; Hamson E.J., Keane F.M., Tholen S. et al. Understanding fibroblast activation protein (FAP): substrates, activities, expression and targeting for cancer therapy // Proteomics Clin. Appl. 2014. Vol. 8. P. 454–463. https://doi.org/10.1002/prca.201300095.; Плешкан В.В., Алексеенко И.В., Тюлькина Д.В. и др. Белок активации фибробластов FAP как возможная мишень в противоопухолевой стратегии // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2016. № 3. С. 90–97. https://doi.org/10.18821/0208-0613-2016-34–3-90-97.; Kalluri R. The biology and function of fibroblasts in cancer. Nature Reviews // Cancer. 2016. Vol. 16. P. 582–598. https://doi.org/10.1038/nrc.2016.73.; Kratochwil C., Flechsig P., Lindner T., Abderrahim L. et al. 68 Ga-FAPI PET/CT: tracer uptake in 28 different kinds of cancer // Journal of Nuclear Medicine. 2019. Vol. 60. P. 801–805. https://doi.org/10.2967/jnumed.119.227967.; Farulla L.S.A., Demirci E., Castellucci P. et al. Radiolabeled FAP inhibitors as new pantumoral radiopharmaceuticals for PET imaging: a pictorial essay // Clin. Transl. Imaging. 2022. https://doi.org/10.1007/s40336-022-00506-8.; Lindner T., Loktev A., Altmann A. et al. Development of Quinoline-Based Theranostic Ligands for the Targeting of Fibroblast Activation Protein // J. Nucl. Med. 2018. Vol. 59, No. 9. P. 1415–1422. https://doi.org/10.2967/jnumed.118.210443.; Treglia G., Muoio B., Roustaei H., Kiamanesh Z. et al. Head-to-Head Comparison of Fibroblast Activation Protein Inhibitors (FAPI) Radiotracers versus [ 18 F]F-FDG in Oncology: A Systematic Review // Int. J. Mol. Sci. 2021. Vol. 22, No. 20. P. 1–13. https://doi.org/10.3390/ijms222011192.; Giesel F.L., Kratochwil C., Lindner T., Marschalek M.M. et al. 68 Ga-FAPI PET/CT: biodistribution and preliminary dosimetry estimate of 2 DOTA-containing FAP-targeting agents in patients with various cancers // Journal of Nuclear Medicine. 2019. Vol. 60, No. 3. P. 386–392. https://doi.org/10.2967/jnumed.118.215913.; Giesel F.L., Kratochwil C., Schlittenhardt J., Dendl K. et al. Head-to-head intra-individual comparison of biodistribution and tumor uptake of 68 Ga-FAPI and 18 F-FDG PET/CT in cancer patients // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2021. Vol. 48. P. 4377–4385. https://doi.org/10.1007/s00259-021-05307-1.; Siveke J.T. Fibroblast-Activating Protein: Targeting the Roots of the Tumor Microenvironment // Journal of Nuclear Medicine. 2018. Vol. 59, No. 9. P. 1412–1414. https://doi.org/10.2967/jnumed.118.214361.; Loktev A., Lindner T., Mier W. et al. A tumor-imaging method targeting cancer-associated fibroblasts // Journal of Nuclear Medicine. 2018. Vol. 59, No. 9. P. 1423–1429. https://doi.org/10.2967/jnumed.118.210435.; Gundogan C., Guzel Y., Can C., Kaplan I. FAPI-04 Uptake in Healthy Tissues of Cancer Patients in 68Ga-FAPI-04 PET/CT Imaging // Contrast Media & Molecular Imaging. 2021. Article ID 9750080. https://doi.org/10.1155/2021/9750080.; Wang S., Zhou X., Xu X. et al. Dynamic PET/CT imaging of 68 Ga-FAPI-04 in Chinese subjects // Frontiers in Oncology. 2021. Vol. 11. P. 1–11. https://doi.org/10.3389/fonc.2021.651005.; Meyer C., Dahlbom M., Lindner T. et al. Radiation dosimetry and biodistribution of 68 Ga-FAPI-46 PET imaging in cancer patients // Journal of Nuclear Medicine. 2020. Vol. 61, No. 8. Р. 1171–1177. https://doi.org/10.2967/jnumed.119.236786.; Chen H., Pang Y., Wu J., Zhao L. et al. Comparison of [ 68 Ga]Ga-DOTA-FAPI-04 and [ 18 F] FDG PET/CT for the diagnosis of primary and metastatic lesions in patients with various types of cancer // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2020. Vol. 47. P. 1820–1832. https://doi.org/10.1007/s00259-020-04769-z.; Ristau J., Giesel F.L., Haefner M.F., Staudinger F. et al. Impact of Primary Staging with Fibroblast Activation Protein Specific Enzyme Inhibitor (FAPI)-PET/CT on Radio-Oncologic Treatment Planning of Patients with Esophageal Cancer // Mol. Imaging Biol. 2020. Vol. 22, No. 6. P. 1495–1500. https://doi.org/10.1007/s11307-020-01548-y.; Pang Y., Zhao L., Luo Z. et al. Comparison of 68 Ga-FAPI and 18 F-FDG Uptake in Gastric, Duodenal, and Colorectal Cancers // Radiology. 2021. Vol. 298. P. 393–402. https://doi.org/10.1148/radiol.2020203275; Calais J. FAP: The Next Billion Dollar Nuclear Theranostics Target? // Journal of Nuclear Medicine. 2020. Vol. 61, No. 2. Р. 163–165. https://doi.org/10.2967/jnumed.119.241232.; Wu J., Wang Y., Liao T. Comparison of the Relative Diagnostic Performance of [ 68 Ga]Ga-DOTA-FAPI-04 and [ 18 F]FDG PET/CT for the Detection of Bone Metastasis in Patients With Different Cancers // Frontiers in Oncology. 2021. Vol. 11. P. 1–11. https://doi.org/10.3389/fonc.2021.737827.; https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/801

الاتاحة: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/801
https://doi.org/10.22328/2079-5343-2022-13-4-27-37

المؤلفون: L. A. Chipiga, A. V. Vodovatov, A. A. Mosunov, K. A. Saprykin, A. V. Gromov, S. K. Vasiliev, A. V. Petryakova, D. A. Vazhenina, M. V. Odintsova, V. B. Nomokonova, A. A. Stanzhevsky, D. N. Maystrenko, Л. А. Чипига, А. В. Водоватов, А. А. Мосунов, К. А. Сапрыкин, А. В. Громов, С. К. Васильев, А. В. Петрякова, Д. А. Важенина, М. В. Одинцова, В. Б. Номоконова, А. А. Станжевский, Д. Н. Майстренко

المصدر: Radiatsionnaya Gygiena = Radiation Hygiene; Том 16, № 3 (2023); 46-55 ; Радиационная гигиена; Том 16, № 3 (2023); 46-55 ; 2409-9082 ; 1998-426X

مصطلحات موضوعية: биологическое выведен, radionuclide therapy, 225 Ac-DOTA-TATE, biological breedingAc-DOTA-TATE, biological breeding

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/974/851; Wambersie A. ICRU report 62, prescribing, recording and reporting photon beam therapy (supplement to ICRU Report 50) // Icru News. 1999.; Майстренко Д.Н., Станжевский А.А., Важенина Д.А., и др. Радиолигандная терапия препаратами на основе радионуклида 225Ас: опыт Российского научного центра радиологии и хирургических технологий имени академика А.М. Гранова // Лучевая диагностика и терапия. 2022. Т. 13, № 4. С. 86-94. https://doi.org/10.22328/2079-5343-2022-13-4-86-94.; Rubira L, Deshayes E, Santoro L, Kotzki PO. 225AcLabeled Somatostatin Analogs in the Management of Neuroendocrine Tumors: From Radiochemistry to Clinic // Pharmaceutics. 2023. Vol. 15, № 4. P. 1051.; Occupational intakes of radionuclides: Part 4. ICRP Publication 141. Ann ICRP/ 2019. 48(2-3). 5. Occupational intakes of radionuclides: part 3. ICRP publication 137. Ann ICRP/ 2017. 46(3-4). 6. Чипига Л.А., Водоватов А.В., Петрякова А.В., и др. Обоснование дифференцированного подхода к обращению с биологическими отходами пациентов в подразделениях ядерной медицины // Радиационная гигиена. 2022. T. 15, № 4. C. 34-44. https://doi.org/10.21514/1998-426X-2022-15-4-34-44.; Чипига Л.А., Водоватов А.В., Звонова И.А., и др. Обращение с биологическими отходами пациентов после проведения радионуклидной терапии // Радиационная гигиена. 2022. Т. 15, № 2. С. 19-30. https://doi.org/10.21514/1998-426X-2022-15-2-19-30.; Петрова А.Е., Чипига Л.А., Водоватов А.В., и др. Оценка поглощенных доз в органах пациентов от высвобожденного радионуклида-метки при проведении радионуклидной терапии с 225Ас // Радиационная гигиена. 2022. Т. 15 №1. C. 120-131. https://doi.org/10.21514/1998-426X-2022-15-1-120-131.; Benabdallah N, Scheve W, Dunn N, Silvestros D, Schelker P, Abou D, et al. Practical considerations for quantitative clinical SPECT/CT imaging of alpha particle emitting radioisotopes // Theranostics. 2021. Vol. 11 №20. P. 9721.; Лопаткин Н.А. Урология: Национальное руководство. Краткое издание. Под ред. Н.А. Лопаткина. М.: ГЭОТАРМедиа, 2013. 608 с.; Kurth J, Krause BJ, Schwarzenböck SM, Stegger L. External radiation exposure, excretion, and effective half-life in 177LuPSMA-targeted therapies // EJNMMI research. 2018. Vol. 8. C. 1-11.; Чипига Л.А., Звонова Н.А., Водоватов A.B., и др. Совершенствование подхода к определению радиологических критериев выписки пациентов после радионуклидной терапии // Радиационная гигиена. 2023. Т. 16, № 2. С. 19-31. https://doi.org/10.21514/1998-426X-2023-16-2-19-31.; Wehrmann C, Stefan S, Zachert C, Müller D. Results of individual patient dosimetry in peptide receptor radionuclide therapy with 177Lu DOTA-TATE and 177Lu DOTA-NOC // Cancer biotherapy & radiopharmaceuticals. 2007. Vol. 22 №3. P. 406-416.; Levart D, Kalogianni E, Corcoran B, Mulholland N. Radiation precautions for inpatient and outpatient 177Lu-DOTATATE peptide receptor radionuclide therapy of neuroendocrine tumours // EJNMMI physics. 2019. Vol. 6 №1. P. 1-12.; https://www.radhyg.ru/jour/article/view/974

الاتاحة: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/974
https://doi.org/10.21514/1998-426X-2023-16-3-46-55

المؤلفون: L. A. Chipiga, A. V. Vodovatov, A. V. Petryakova, I. A. Zvonova, A. A. Stanzhevsky, D. N. Maistrenko, D. A. Vazhenina, D. S. Sysoev, Л. А. Чипига, А. В. Водоватов, А. В. Петрякова, И. А. Звонова, А. А. Станжевский, Д. Н. Майстренко, Д. А. Важенина, Д. С. Сысоев

المساهمون: The work was performed as a part of the program of Federal Service for Surveillance on Consumer Rights Protection and Human Well-Being “Development and scientific justification of a set of measures to ensure radiation protection in nuclear medicine”., Работа выполнена в рамках отраслевой программы Роспотребнадзора «Разработка и научное обоснование комплекса мер по обеспечению радиационной защиты в ядерной медицине».

المصدر: Radiatsionnaya Gygiena = Radiation Hygiene; Том 15, № 4 (2022); 34-44 ; Радиационная гигиена; Том 15, № 4 (2022); 34-44 ; 2409-9082 ; 1998-426X ; 10.21514/1998-426X-2022-15-4

مصطلحات موضوعية: жидкие радиоактивные отходы, radionuclide therapy, radiopharmaceutical, liquid radioactive waste, радионуклидная терапия, ядерная медицина, радиофармпрепарат

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/909/809; Результаты радиационно-гигиенической паспортизации в субъектах Российской Федерации за 2015-2021 гг.: Радиационно-гигиенический паспорт Российской Федерации. – М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2016-2022 гг.; Онищенко Г.Г., Попова А.Ю., Романович И.К. и др. Радиационно-гигиеническая паспортизация и ЕСКИД – информационная основа принятия управленческих решений по обеспечению радиационной безопасности населения Российской Федерации. Сообщение 1. Основные достижения и задачи по совершенствованию // Радиационная гигиена. 2017. Т. 10, №3. С. 7-17.; Dewulf J., Adhikari K., Vangestel C. et al. Development of Antibody Immuno-PET/SPECT Radiopharmaceuticals for Imaging of Oncological Disorders—An Update // Cancers. 2020. Vol 12, No 7. 1868 p. https://doi.org/10.3390/ cancers12071868.; Чипига Л.А., Петрова А.Е., Мосунов А.А. и др. Предварительная оценка доз облучения пациентов при проведении диагностических радионуклидных исследований с моноклональными антителами, меченными 89Zr // Формулы Фармации. 2021. Т. 3, № 3. C. 48-61. doi:10.17816/phf81118.; Жуковский М.В., Онищенко А.Д. Радиофармпрепараты на основе моноклональных антител для ПЭТ и ОФЭКТвизуализации: биокинетические модели и дозиметрические оценки // Траектория исследований – человек, природа, технологии. 2022. Т. 2, № 2. С. 80-155. DOI:10.56564/27825264_2022_2_80.; Gear J., Chiesa C., Lassmann M. et al. EANM Dosimetry Committee series on standard operational procedures for internal dosimetry for 131I-mIBG treatment of neuroendocrine tumours // EJNMMI Physics. 2020. Vol. 7, № 1. P. 15. https:// doi.org/10.1186/s40658-020-0282-7; Наркевич Б.Я. Анализ проблем обеспечения радиационной безопасности в ядерной медицине // Онкологический журнал: лучевая диагностика, лучевая терапия. 2018. Т. 1, № 1. С. 89-85.; Наркевич Б.Я. Радиационная безопасность в ядерной медицине: сообщение I. Актуальные проблемы // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2021. Т. 66, № 1. С. 29-36. https://doi. org/10.12737/1024-6177-2021-66-1-29-36.; Романович И.К., Барковский А.Н. О новых критериях отнесения отходов к радиоактивным и об изменениях, внесенных в ОСПОРБ-99/2010 и СПОРО-2002 // Радиационная гигиена. 2014. Т. 7, № 1. С. 30-35.; Чипига Л.А., Водоватов А.В., Звонова И.А. и др. Обращение с биологическими отходами пациентов после проведения радионуклидной терапии // Радиационная гигиена. 2022. Т. 15, № 2. P. 19-30. https:// doi.org/10.21514/1998-426X-2022-15-2-19-30.; Song H., Mosci C., Akatsu H. et al. Diagnostic 123I Whole Body Scan Prior to Ablation of Thyroid Remnant in Patients with Papillary Thyroid Cancer // Clinical Nuclear Medicine. 2018. Vol. 43, No.10. P. 705-709. https://doi.org/10.1097/ RLU.0000000000002246.; Ott R.J., Tait D., Flower M.A. et al. Treatment planning for 131I-mIBG radiotherapy of neural crest tumours using 124I-mIBG positron emission tomography // The British journal of radiology. 1992. Vol. 65, No. 777. P. 787-791. https:// doi.org/10.1259/0007-1285-65-777-787.; Dijkers E.C., Oude Munnink T.H., Kosterink J.G. et al. Biodistribution of 89Zr-trastuzumab and PET imaging of HER2-positive lesions in patients with metastatic breast cancer // Clinical Pharmacology and Therapeutics. 2010. Vol. 87, No 5. P. 586-92. https://doi.org/10.1038/clpt.2010.12.; Anderson C.J., Ferdani R. Copper-64 radiopharmaceuticals for PET imaging of cancer: advances in preclinical and clinical research // Cancer Biotherapy and Radiopharmaceuticals. 2009. Vol. 24, No. 4. P, 379-93. https://doi.org 10.1089/ cbr.2009.0674.; Parlak Y., Gumuser G., Sayit E. Samarium-153 therapy for prostate cancer: the evaluation of urine activity, staff exposure and dose rate from patients // Radiation Protection Dosimetry. 2015. Vol. 163, No. 4. P. 468-472. doi:10.1093/ rpd/ncu237.; ICRP. Radiation Dose to Patients from Radiopharmaceuticals: A Compendium of Current Information Related to Frequently Used Substances. ICRP Publication 128. Ann. ICRP. 2015, 44(2S).; ICRP. Radiation Dose to Patients from Radiopharmaceuticals. ICRP Publication 53. Ann. ICRP. 1988; 18 (1-4).; Dowd M.T., Chen C.T., Wendel M.J. et al. Radiation dose to the bladder wall from 2-[18F] fluoro-2-deoxy-D-glucose in adult humans // Journal of Nuclear Medicine. 1991. Т. 32, №. 4. С. 707-712.; Chen C.T., Harper P.V., Lathrop K.A. A simple dynamic model for calculating radiation absorbed dose to the bladder wall // 4th International Radiopharmaceutical Dosimetry Symposium. 1985. P. 5-8.; Kurth J., Krause B.J., Schwarzenböck S.M. et al. External radiation exposure, excretion, and ef-fective half-life in 177Lu-PSMA-targeted therapies // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging research. 2018. Vol. 8, No 1. P. 1-11. https://doi.org/10.1186/ s13550-018-0386-4.; Shielded WC for disposal of organic radioactive waste. URL: https://www.comecer.com/wdl-series-shielded-wcdisposal-organic-radioactive-waste/ (Дата обращения: 20.10.2022).; https://www.radhyg.ru/jour/article/view/909

الاتاحة: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/909
https://doi.org/10.21514/1998-426X-2022-15-4-34-44

المؤلفون: L. A. Chipiga, I. A. Zvonova, A. V. Vodovatov, A. V. Petryakova, A. A. Stanzhevsky, D. A. Vazhenina, M. A. Smoliarchuk, S. A. Ryzhov, Л. А. Чипига, Н. А. Звонова, A. B. Водоватов, А. В. Петрякова, А. А. Станжевский, Д. А. Важенина, М. Я. Смолярчук, С. А. Рыжов

المساهمون: Работа выполнена в рамках отраслевой программы Роспотребнадзора «Разработка и научное обоснование комплекса мер по обеспечению радиационной защиты в ядерной медицине».

المصدر: Radiatsionnaya Gygiena = Radiation Hygiene; Том 16, № 2 (2023); 19-31 ; Радиационная гигиена; Том 16, № 2 (2023); 19-31 ; 2409-9082 ; 1998-426X ; 10.21514/1998-426X-2023-16-2

مصطلحات موضوعية: эффективный период полувыведения, radionuclide therapy, radiopharmaceutical, patient release criteria, radiation safety, effective half-life, радионуклидная терапия, радиофармацевтический лекарственный препарат, радиологические критерии выписки, радиационная безопасность

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/949/837; Балонов М.И., Голиков В.Ю., Звонова И.А. Радиологические критерии выписки пациента из клиники после радионуклидной терапии или брахитерапии с имплантацией закрытых источников // Радиационная гигиена. 2009. Т. 2, №4. С. 5-9.; Zvonova I., Balonov M., Golikov V. Release criteria for patients having undergone radionuclide therapy and criteria for their crossing the state border of the Russian Federation // Radiation Protection Dosimetry. 2011. Vol. 147, № 1-2. P. 254-257. doi:10.1093/rpd/ncr308.; International Atomic Energy Agency, Release of Patients After Radionuclide Therapy, Safety Reports Series No. 63, IAEA, Vienna (2009).; International Atomic Energy Agency. Radiation protection and safety of radiation sources: international basic safety standards. Interim edition. Safety Standards Series No. GSR Part 3 (interim). IAEA, Vienna (2011).; International Commission on Radiological Protection. Release of patients after therapy with unsealed radionuclides. ICRP Publication 94. Ann ICRP/ 2004. 34(2).; European Commission. Radiation protection following 131I-therapy. Exposures due to out-patients or discharged in-patients. Radiation Protection 97. Directorate General for Environment Nuclear Safety and Civil Protection, Brussels (1998).; U.S. Nuclear regulatory commission. Draft regulatory guide DG-8057. “Release of patients administered radioactive material”, Washington, DC, 2019.; Наркевич Б.Я., Лысак Ю.В. Обеспечение радиационной безопасности при амбулаторном режиме применения терапевтических радиофармпрепаратов // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2015. Т. 60, № 4. С. 27-35.; Воронцова М.С., Кармакова Т.А., Панкратов А.А., и др. Современные тенденции развития таргетной радионуклидной терапии // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2021. Т. 66, № 6. С. 63–70. https://doi.org/10.12737/1024-6177-2021-66-6-63-70.; Чернов В.И., Брагина О.Д., Синилкин И.Г., и др. Радиоиммунотерапия в лечении злокачественных образований // Сибирский онкологический журнал. 2016. Т. 15, № 2. С. 101-106. https://doi.org/10.21294/1814-4861-2016-15-2-101-106.; International Commission on Radiological Protection. Nuclear Decay Data for Dosimetric Calculations. ICRP Publication 107. Ann. ICRP. 2008. 38 (3).; Kurth J., Krause B.J., Schwarzenböck S.M., et al. External radiation exposure, excretion, and effective half-life in 177LuPSMA-targeted therapies // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging research. 2018. Vol. 8, №. 1. P. 1-11. https://doi.org/10.1186/s13550-018-0386-4.; Demir M., Abuqbeitah M., Uslu-Beşli L., et al. Evaluation of radiation safety in 177Lu-PSMA therapy and development of outpatient treatment protocol // Journal of Radiological Protection. 2016. Vol. 36, No. 2. P. 269–278. doi:10.1088/0952-4746/36/2/269.; Schuchardt C., Zhang J., Kulkarni H.R., et al. ProstateSpecific Membrane Antigen Radioligand Therapy Using 177LuPSMA I&T and 177Lu-PSMA-617 in Patients with Metastatic Castration-Resistant Prostate Cancer: Comparison of Safety, Biodistribution, and Dosimetry // Journal of Nuclear Medicine. 2022. Vol. 63, P. 1199–1207. DOI: 0.2967/jnumed.121.262713.; Крылов В.В., Легкодимова Н.С., Кочетова Т.Ю., и др. Радиолигандная терапия 177Lu-ДОТА-ПСМА при метастатическом кастрационно-резистентном раке предстательной железы. Фармакокинетика, безопасность, противоопухолевая эффективность // Лучевая диагностика и терапия. 2022. Т. 13, № 4. С. 75–85, DOI: http://dx.doi.org/10.22328/2079-5343-2022-13-4-75-85.; Wehrmann C., Senftleben S., Zachert C., et al. Results of individual patient dosimetry in peptide receptor radionuclide therapy with 177Lu DOTA-TATE and 177Lu DOTANOC // Cancer Biother Radiopharm. 2007. Vol. 22, № 3. Р. 406–16.; Levart, D., Kalogianni, E., Corcoran, B. et al. Radiation precautions for inpatient and outpatient 177Lu-DOTATATE peptide receptor radionuclide therapy of neuroendocrine tumours // EJNMMI Physics. 2019. Vol. 6, P. 7. https://doi.org/10.1186/s40658-019-0243-1 .; Jacobsson L., Mattsson S., Johansson L., et al. Biokinetics and dosimetry of ‘3’I-metaiodobenzylguanidine (MIBG) // Proc. Fourth ht. Rndiophnrmuceutical Dosimetry Symposium. Oak Ridge 1985, Oak Ridge Assoc. Universities CONF-851113, Oak Ridge National Laboratories, Oak Ridge, Tennessee. 1986. P. 389-398.; International Commission on Radiological Protection. Radiation Dose to Patients from Radiopharmaceuticals. ICRP Publication 53. Annals of the ICRP. 1988. 18 (1-4).; Gear J., Chiesa C., Lassmann M., et al. EANM Dosimetry Committee. EANM Dosimetry Committee series on standard operational procedures for internal dosimetry for 131I mIBG treatment of neuroendocrine tumours // EJNMMI Physics. 2020. Vol. 7, Nо. 1. Р. 15. doi:10.1186/s40658-020-0282-7.; Звонова И.А., Лихтаpев И.А., Николаева А.А. Облучение щитовидной железы, сопpовождающее pадиойодное обследование пациентов с тиpеоидными заболеваниями // Медицинская радиология. 1982. Т. 4, C. 42-44.; Трухин А.А. Методы и средства повышения эффективности лечебно-диагностических процессов в аппаратно-программном комплексе радиойодтерапии тиреотоксикоза человека: автореф. дисс. на соискание степени канд. техн. наук. Москва, 2022. 19 с.; IAEA-TECDOC-1608. Nuclear Medicine In Thyroid Cancer Management: A Practical Approach IAEA, Vienna, 2009, 141 p.; Радионуклидная диагностика для практических врачей / Под ред. Ю.Б. Лишманова, В.И. Чернова. Томск: STT, 2004. С.317-319.; Чипига Л.А., Водоватов А.В., Звонова И.А., и др. Обращение с биологическими отходами пациентов после проведения радионуклидной терапии // Радиационная гигиена. 2022. Т. 15, № 2. С. 19-30. DOI:10.21514/1998-426X-2022-15-2-19-30.; Чипига Л.А., Водоватов А.В., Петрякова А.В., и др. Обоснование дифференцированного подхода к обращению с биологическими отходами пациентов в подразделениях ядерной медицины // Радиационная гигиена. 2022. T. 15, № 4. С. 34-44. DOI: https://doi. org/10.21514/1998-426X-2022-15-4-34-44.; Gleisner K.S., Chouin N., Gabina P.M., et al. EANM dosimetry committee recommendations for dosimetry of 177Lu-labelled somatostatin-receptorand PSMA-targeting ligands // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2022. Vol. 49, No. 6. P. 1778-1809. doi:10.1007/s00259-022-05727-7.; Станжевский А.А., Майстренко Д.Н., Важенина Д.А., и др. Методы дозиметрического планирования в радионуклидной терапии. Часть 2: уровни планирования // Лучевая диагностика и терапия. 2022. Т. 13, № 4. С. 1626. https://doi.org/10.22328/2079-5343-2022-13-4-16-26.; Sgouros G., Bolch WE, Chiti A., et al. ICRU REPORT 96, Dosimetry-Guided Radiopharmaceutical Therapy // Journal of the ICRU. 2021. Vol. 21, Nо. 1. P. 1–212. doi:10.1177/14736691211060117.; International Atomic Energy Agency, Pan American Health Organization, World Health Organization, Radiological Protection for Medical Exposure to Ionizing Radiation, IAEA Safety Standards Series No. RS-G-1.5, IAEA, Vienna (2002).; International Atomic Energy Agency. Nuclear Medicine Resources Manual 2020 Edition, IAEA Human Health Series No. 37, IAEA, Vienna (2020).; Saha GB. Radiation Safety in Nuclear Medicine. A Practical, Concise Guide. Springer Nature Switzerland AG, 2019, 192 p. https://doi.org/10.1007/978-3-030-16406-5.; Turner J.H. Outpatient therapeutic nuclear oncology. Annals of Nuclear Medicine. 2012. No 26. P. 289–97.; Mattsson S., Hoeschen C. Radiation Protection in Nuclear Medicine. Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 2013, 159 p.; https://www.radhyg.ru/jour/article/view/949

الاتاحة: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/949
https://doi.org/10.21514/1998-426X-2023-16-2-19-31

المؤلفون: L. A. Chipiga, A. V. Vodovatov, I. A. Zvonova, A. A. Stanzhevsky, A. V. Petryakova, E. E. Anokina, K. S. Velichkina, S. A. Ryzhov, Л. А. Чипига, А. В. Водоватов, И. А. Звонова, А. А. Станжевский, А. В. Петрякова, Е. Е. Анокина, К. С. Величкина, С. А. Рыжов

المساهمون: Работа выполнена в рамках отраслевой программы Роспотребнадзора «Разработка и научное обоснование комплекса мер по обеспечению радиационной защиты в ядерной медицине».

المصدر: Radiatsionnaya Gygiena = Radiation Hygiene; Том 15, № 2 (2022); 19-30 ; Радиационная гигиена; Том 15, № 2 (2022); 19-30 ; 1998-426X ; 10.21514/1998-426X-2022-15-2

مصطلحات موضوعية: жидкие радиоактивные отходы, radionuclide therapy, biological excretion of radiopharmaceuticals, liquid radioactive waste, радионуклидная терапия, биовыведение радиофармпрепаратов

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/869/784; Хмелев А.В. Ядерная медицина: физика, оборудование, технологии: учебное пособие для образовательных учреждений, реализующих дополнительные профессиональные программы повышения квалификации врачей и профессиональной переподготовки по соответствующим специальностям. Министерство науки и высшего образования Российской Федерации, Научноисследовательский институт – Республиканский исследовательский научно-консультационный центр экспертизы. Москва: НИЯУ «МИФИ», 2018. 439 с.; Румянцев П.О., Коренев С.В. История появления терапии радиоактивным йодом // Клиническая и экспериментальная тиреоидология. 2015. Т. 11, №. 4. С. 51–55. https://doi.org/10.14341/ket2015451-55; Воронцова М.С., Кармакова Т.А., Панкратов А.А., и др. Современные тенденции развития таргетной радионуклидной терапии // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2021. T. 66, № 6. С. 63–70. https://doi.org/10.12737/1024-6177-2021-66-6-63-70; Балонов М.И., Голиков В.Ю., Звонова И.А. Радиологические критерии выписки пациента из клиники после радионуклидной терапии или брахитерапии с имплантацией закрытых источников // Радиационная гигиена. 2016. Т. 2, №. 4. С. 5-9.; IAEA, Radiation Protection and Safety in Medical Uses of Ionizing Radiation, IAEA Safety Standards Series No. SSG-46, IAEA, Vienna. 2018.; Наркевич Б.Я. Актуальные вопросы обращения с радиоактивными отходами в ядерной медицине // Радиоактивные отходы. 2022. № 1 (18). С. 28—37. DOI:10.25283/2587-9707-2022-1-28-37.; ICRP. Release of Patients after Therapy with Unsealed Radionuclides. ICRP Publication 94. Ann. ICRP. 2004. 34 (2).; ICRP. Nuclear Decay Data for Dosimetric Calculations. ICRP Publication 107. Ann. ICRP. 2008. 38 (3). https://doi.org/10.1016/j.icrp.2008.10.004; ICRP. Radiation Dose to Patients from Radiopharmaceuticals. ICRP Publication 53. Ann. ICRP. 1988. 18 (1-4).; ICRP. Occupational Intakes of Radionuclides: Part 2. ICRP Publication 134 Ann. ICRP. 2016. 45(3/4), 1–352.; Yoshida K., Kaneta T., Takano S., et al. Pharmacokinetics of single dose radium-223 dichloride (BAY 88-8223) in Japanese patients with castration-resistant prostate cancer and bone metastases // Annals of nuclear medicine. 2016. Vol. 30, №. 7. P. 453-460. https://doi.org/10.1007/s12149-016-1093-8; Höllriegl V., Petoussi-Henss N., Hürkamp K., et al. Radiopharmacokinetic modelling and radiation dose assessment of 223Ra used for treatment of metastatic castrationresistant prostate cancer // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging physics. 2021. Vol. 8, №. 1. P. 1-18. https://doi.org/10.1186/s40658-021-00388-1; Kurth J., Krause B.J., Schwarzenböck S.M., et al. External radiation exposure, excretion, and effective half-life in 177LuPSMA-targeted therapies // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging research. 2018. Vol. 8, №. 1. P. 1-11. https://doi.org/10.1186/s13550-018-0386-4; ICRP. Radiation Dose to Patients from Radiopharmaceuticals: A Compendium of Current Information Related to Frequently Used Substances. ICRP Publication 128. Ann. ICRP. 2015. 44(2S).; ICRP. Radiation Dose to Patients from Radiopharmaceuticals (Addendum to ICRP Publication 53). ICRP Publication 80. Ann. ICRP. 1998. 28 (3).; ICRP. Radiation Dose to Patients from Radiopharmaceuticals – Addendum 3 to ICRP Publication 53. ICRP Publication 106. Ann. ICRP. 2008. 38 (1-2).; Ott R.J., Tait D., Flower M.A., et al. Treatment planning for 131I-mIBG radiotherapy of neural crest tumours using 124I-mIBG positron emission tomography // The British journal of radiology. 1992. Vol . 65, №. 777. С. 787-791. https://doi.org/10.1259/0007-1285-65-777-787; Справочник лекарств по ГРЛС МинЗдрава РФ. Инструкция по медицинскому применению лекарственного препарата Стронция хлорид, 89Sr. URL: https://medi.ru (дата обращения: 06.04.2022); Poeppel T.D., Handkiewicz-Junak D., Andreeff M., et al. EANM guideline for radionuclide therapy with radium-223 of metastatic castration-resistant prostate cancer // European journal of nuclear medicine and molecular imaging. 2018. Vol. 45, №. 5. P. 824-845. https://doi.org/10.1007/s00259-017-3900-4; Zacherl M.J., Gildehaus F.J., Mittlmeier L., et al. First clinical results for PSMA-targetedα-therapy using 225Ac-PSMA-I&T in advanced-mCRPC patients // Journal of Nuclear Medicine. 2021. Vol. 62, №. 5. P. 669-674. https://doi.org/10.2967/jnumed.120.251017; Романович И.К., Барковский А.Н. О новых критериях отнесения отходов к радиоактивным и об изменениях, внесенных в ОСПОРБ-99/2010 и СПОРО-2002 // Радиационная гигиена. 2015. Т. 7, №. 1. С. 30-35.; https://www.radhyg.ru/jour/article/view/869

الاتاحة: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/869
https://doi.org/10.21514/1998-426X-2022-15-2-19-30

المؤلفون: O. E. Molchanov, D. N. Maystrenko, A. A. Stanzhevskiy, О. Е. Молчанов, Д. Н. Майстренко, А. А. Станжевский

المساهمون: The work was carried out with the financial support of the Ministry of Health of the Russian Federation (State assignment Э.03-2021, 121040200136-0)., Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства здравоохранения РФ (Государственное задание Э.03-2021

المصدر: The Bulletin of the Scientific Centre for Expert Evaluation of Medicinal Products. Regulatory Research and Medicine Evaluation; Том 12, № 4 (2022); 425-443 ; Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств; Том 12, № 4 (2022); 425-443 ; 2619-1172 ; 1991-2919

مصطلحات موضوعية: предварительный таргетинг, theranostics, immunooncology, radiopharmaceuticals, pre-targeting, тераностика, иммуноонкология, радиофармпрепараты

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/520/892; https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/downloadSuppFile/520/306; https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/downloadSuppFile/520/316; Sung H, Ferlay J, Siegel RL, Laversanne M, Soerjomataram I, Jemal A, Bray F. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2021;71(3):209–49. https://doi.org/10.3322/caac.21660; Каприн АД, Старинский ВВ, Шахзадова АО, ред. Состояние онкологической помощи населению России в 2019 году. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России; 2020.; Hanahan D, Weinberg RA. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 2011;144(5):646–74. https://doi.org/10.1016/j.cell.2011.02.013; Yang L, Lin PS. Mechanisms that drive inflammatory tumor microenvironment, tumor heterogeneity, and metastatic progression. Semin Cancer Biol. 2017;47:185–95. https://doi.org/10.1016/j.semcancer.2017.08.001; Dunn GP, Old LJ, Schreiber RD. The three Es of cancer immunoediting. Annu Rev Immunol. 2004;22:329–60. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.22.012703.104803; Deshmukh A, Deshpande K, Arfuso F, Newsholme P, Dharmarajan A. Cancer stem cell metabolism: a potential target for cancer therapy. Mol Cancer. 2016;15(1):69. https://doi.org/10.1186/s12943-016-0555-x; Buoncervello M, Gabriele L, Toschi E. The Janus face of tumor microenvironment targeted by immunotherapy. Int J Mol Science. 2019;20(17):4320. https://doi.org/10.3390/ijms20174320; Jarosz-Biej M, Smolarczyk R, Cihon T, Kulach N. Tumor microenvironment as a «Game Changer» in cancer radiotherapy. Int J Mol Science. 2019;20(13):3212. https://doi.org/10.3390/ijms20133212; Schaefer N, Prior JO, Schottelius M. From theranostics to immunotheranostics: the concept. Nucl Med Mol Imag. 2020;54(2):81–5. https://doi.org/10.1007/s13139-020-00639-6; Talukdar S, Bhoopathi P, Emdad L, Das S, Sarkar D, Fisher PB. Dormancy and cancer stem cells: an enigma for cancer therapeutic targeting. Adv Cancer Res. 2019; 141:43–84. https://doi.org/10.1016/bs.acr.2018.12.002; Masuko K, Masaru K. Precision medicine for human cancers with Notch signaling dysregulation (Review). Int J Mol Med. 2020;45(2):279-97. https://doi.org/10.3892/ijmm.2019.4418; Zhang Y, Wang X. Targeting the Wnt/β-catenin signaling pathway in cancer. J Hematol Oncol. 2020;13(1):165. https://doi.org/10.1186/s13045-020-00990-3; Garbalo GB, Honorato JR, Farias de Lopes GP, de Sampaio e Spohr TCL. A highlight on Sonic hedgehog pathway. Cell Commun Signal. 2018;16(1):11. https://doi.org/10.1186/s12964-018-0220-7; Battle E, Massaque J. Transforming grown factor-β signaling in immunity and cancer. Immunity. 2019;50(4): 924–40. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2019.03.024; Owen KL, Brockwel NK, Parker BS. JAK-STAT signaling: a double-edged sword of immune regulation and cancer progression. Cancers (Basel). 2019;11(12):2002. https://doi.org/10.3390/cancers11122002; Locati M, Curtale G, Mantovani A. Diversity, mechanisms and significance of macrophage plasticity. Annu Rev Pathol. 2020;15:123–47. https://doi.org/10.1146/annurev-pathmechdis-012418-012718; Wculek SK, Cueto FJ, Mujal AM, Melero I, Krummel MF, Sancho D. Dendritic cells in cancer immunology and immunotherapy. Nat Rev Immunol. 2020;20(1):7–24. https://doi.org/10.1038/s41577-019-0210-z; Lorenzo-Sanz L, Munoz P. Tumor-infiltrating immunosuppressive cells in cancer-cell plasticity, tumor progression and therapy response. Cancer Microenviron. 2019;12(2–3):119–32. https://doi.org/10.1007/s12307-019-00232-2; Chiossone L, Dumas PY, Vienne M. Natural killer cells and other innate lymphoid cells in cancer. Nat Rev Immunol. 2018;18(11):671–88. https://doi.org/10.1038/s41577-018-0061-z; Ostroumov D, Fekete-Drimusz N, Saborowski M, Kuhnel F, Woller N. CD4 and CD8 T lymphocyte interplay in controlling tumor growth. Cell Mol Life Sci. 2018;75(4):689–713. https://doi.org/10.1007/s00018-017-2686-7; Michaud D, Steward CR, Mirlekar B, Pylayeva-Gupta Y. Regulatory B cells in cancer. Immunol Rev. 2021;299(1):74–92. https://doi.org/10.1111/imr.12939; Vivier E, Artis D, Colonna M, Diefenbach A, Di Santo JP, Eberl G, et al. Innate lymphoid cells: 10 years on. Cell. 2018;174(5):1054–66. https://doi.org/10.1016/j.cell.2018.07.017; Bruchard M, Ghiringhelli F. Deciphering the roles of innate lymphoid cells in cancer. Front Immunol. 2019;10:656. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.00656; Tavare R, Escuin-Ordinas H, Mok S, McCracken MN, Zettlitz KA, Salazar FB. An effective immuno-PET imaging method to monitor CD8-dependent responses to immunotherapy. Cancer Res. 2016;76(1):73–82. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-15-1707; Bensch F, van der Veen EL, Lub-de Hooge MN, Jorritisma-Smit A, Boellaard R, Kok IC, et al. 89 Zr-atezolizumab imaging as a noninvasive approach to assess clinical response to PDL1 blockade in cancer. Nat Med. 2018;24(12):1852–8. https://doi.org/10.1038/s41591-018-0255-8; Niemeijer AN, Leung D, Huisman MC, Bahce I, Hoekstra OS, van Dongen GAMS, et al. Whole body PD-1 and PD-L1 positron emission tomography in patients with non-small-cell lung cancer. Nat Commun. 2018;9(1):4664. https://doi.org/10.1038/s41467-018-07131-y; Zhang C, Yu X, Gao L, Zhao Y, Lai J, Lu D, et al. Noninvasive imaging of CD206-positive M2 macrophages as an early biomarker for post-chemotherapy tumor relapse and lymph node metastasis. Theranostics. 2017;7(17):4276–88. https://doi.org/10.7150/thno.20999; Klug F, Prakash H, Huber PE, Seibel T, Bender N, Halama N, et al. Low-dose irradiation programs macrophage differentiation to an iNOS+/M1 phenotype that orchestrates effective T cell immunotherapy. Cancer Cell. 2013;24(5):589–602. https://doi.org/10.1016/j.ccr.2013.09.014; Giesel FL, Kratochwil C, Lindner T, Marschalek MM, Loktev A, Lehnert W, et al. 68 Ga-FAPI PET/CT: biodistribution and preliminary dosimetry estimate of 2 DOTA-containing FAP-targeting agents in patients with various cancers. J Nucl Med. 2019;60(3):386–92. https://doi.org/10.2967/jnumed.118.215913; Calais J. FAP: the next billion dollar nuclear theranostics target? J Nucl Med. 2020;61(2):163–5. https://doi.org/10.2967/jnumed.119241232; Yu X, Zhang Z, Wang Z, Wu P, Qiu F, Huang J. Prognostic and predictive value of tumor-infiltrating lymphocytes in breast cancer: a systematic review and meta-analysis. Clin Transl Oncol. 2016;18(5):497–506. https://doi.org/10.1007/s12094-015-1391-y; Galon J, Mlecnik B, Bindea G, Angell HK, Berger A, Lagorce C, et al. Towards the introduction of the «immunoscore» in the classification of malignant tumors. J Pathol. 2014;232(2):199–209. https://doi.org/10.1002/path.4287; Galon J, Bruni D. Approaches to treat immune hot, altered and cold tumors with combination immunotherapies. Nat Rev Drug Disov. 2019;18(3):197–218. https://doi.org/10.1038/s41573-018-0007-y; Sgouros G, Bodei L, McDevit MR, Nedrow JR. Radiopharmaceutical therapy in cancer: clinical advances and challenges. Nat Rev Drug Discov. 2020;19(9):589–608. https://doi.org/10.1038/s41573-020-0073-9; Fu R, Carrol L, Yahioglu G, Aboagye EO, Miller PW. Antibody fragment and affibody immunoPET imaging agents: radiolabeling strategies and applications. ChemMedChem. 2018;13(23):2466–78. https://doi.org/10.1002/cmdc.201800624; Freise AS, Wu AM. In vivo imaging with antibodies and engineered fragments. Mol Immunol. 2015;67(2 Pt A):142–52. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2015.04.001; Ogasawara A, Tinianow JN, Vanderbilt AN, Gill HS, Yee S, Flores JE, et al. ImmunoPET imaging of phosphatidylserine in pro-apoptotic therapy treated tumor models. Nucl Med Biol. 2013;40(1):15–22. https://doi.org/10.1016/j.nucmedbio.2012.09.001; Lütje S, Franssen GM, Sharkey RM, Laverman P, Rossi EA, Goldenberg DM, et al. Anti-CEA antibody fragments labeled with [18 F]AlF for PET imaging of CEA-expressing tumors. Bioconjug Chem. 2014; 25(2):335–41. https://doi.org/10.1021/bc4004926; Tavare R, McCracken MN, Zettlitz KA, Knowles SM, Salazar FB, Olafsen T, et al. Engineered antibody fragments for immuno-PET imaging of endogenous CD8+ T cells in vivo. Proc Natl Acad Sci USA. 2014;111(3):1108–13. https://doi.org/10.1073/pnas.1316922111; Chakravarty R, Goel S, Valdovinos HF, Hernandez R, Hong H, Nickles RJ, Cai W. Matching the decay half-life with the biological half-life: immunoPET imaging with Sc-labeled Cetuximab Fab fragment. Bioconjug Chem. 2014;25(12):2197–204. https://doi.org/10.1021/bc500415x; Tavaré R, Wu WH, Zettlitz KA, Salazar FB, McCabe KE, Marks JD, Wu AM. Enhanced immunoPET of ALCAM-positive colorectal carcinoma using site-specific Cu-DOTA conjugation. Protein Eng Des Sel. 2014;27(10):317–24. https://doi.org/10.1093/protein/gzu030; Kim HY, Wang X, Wahlberg B, Edwards WB. Discovery of hapten-specific scFv from a phage display library and applications for HER2-positive tumor imaging. Bioconjug Chem. 2014;25(7):1311–22. https://doi.org/10.1021/bc500173f; Bannas P, Well L, Lenz A, Rissiek B, Haag F, Schmid J, et al. In vivo near-infrared fluorescence targeting of T cells: comparison of nanobodies and conventional monoclonal antibodies. Contrast Media Mol Imaging. 2014;9(2):135–42. https://doi.org/10.1002/cmmi.1548; Strand J, Varasteh Z, Eriksson O, Abrahmsen L, Orlova A, Tolmachev V, et al. Gallium-68-labeled affibody molecule for PET imaging of PDGFRβ expression in vivo. Mol Pharm. 2014;11(11):3957–64. https://doi.org/10.1021/mp500284t; Брагина ОД, Чернов ВИ, Зельчан РВ, Синилкин ИГ, Медведева АА, Ларькина МС. Альтернативные каркасные белки в радионуклидной диагностике злокачественных новообразований. Бюллетень сибирской медицины. 2019;18(3):125–33. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-3-125-133; Luo R, Liu H, Cheng Z. Protein scaffolds: antibody alternatives for cancer diagnosis and therapy. RSC Chem Biol. 2022;3(7):830–47. https://doi.org/10.1039/D2CB00094F; Gille H, Hulsmeyer M, Trentmann S, Matschiner G, Christian HJ, Meyer T, et al. Functional characterization of a VEGF-A-targeting Anticalin, prototype of a novel therapeutic human protein class. Angiogenesis. 2016;19(1): 79–94. https://doi.org/10.1007/s10456-015-9490-5; Williams GS, Mistry B, Guillard S, Ulrichsen JC, Sandercock AM, Wang J, et al. Phenotypic screening reveals TNFR2 as a promising target for cancer immunotherapy. Oncotarget. 2016;7(422):68278–91. https://doi.org/10.18632/oncotarget.11943; Sirois AR, Deny DA, Li Y, Fall YD, Moore SJ. Engineered Fn3 protein has targeted therapeutic effect on mesothelin-expressing cancer cells and increases tumor cell sensitivity to chemotherapy. Biotechnol Bioeng. 2020;117(2):330–41. https://doi.org/10.1002/bit.27204; Kohnehrouz BB, Talischian A, Dehnad A, Nayeri S. Novel recombinant traceable c-Met antagonist-avimer antibody mimetic obtained by bacterial expression analysis. Avicenna J Med Biotech. 2018;10(1):9–14. PMID:29296261; Gosmann D, Russelli L, Weber WA, Schwager M, Krackhardt AM, D’Alessandria C. Promise and challenges of clinical non-invasive T-cell tracking in the era of cancer immunotherapy. EJNMMI Res. 2022;12:5. https://doi.org/10.1186/s13550-022-00877-z; Shao F, Long Y, Ji H, Jiang D, Lei P, Lan X. Radionuclide-based molecular imaging allows CAR-T cellular visualization and therapeutic monitoring. Theranostics. 2021; 11(14):6800–17. https://doi.org/10.7150/thno.56989; Turner JH. Recent advances in theranostics and challenges for the future. Br J Radiol. 2018;91(1091): 20170893. https://doi.org/10.1259/bjr.20170893; Slebe M, Pouw JEE, Hashemi SMS, Menke-van der Houven van Oordt C, Yaqub MM, Bahce I. Current state and upcoming opportunities for immunoPET biomarkers in lung cancer. Lung Cancer. 2022;169:84–93. https://doi.org/10.1016/j.lungcan.2022.05.017; Lecocq Q, Zeven K, Vlaeminck YD, Martens S, Massa S, Goyvaerts C, et al. Noninvasive imagine of the immune checkpoint LAG-3 using nanobodies, from development tope-clinical use. Biomolecules. 2019;9(10):548. https://doi.org/10.3390/biom9100548; Eckerman K, Endo A. ICRP publication 107. Nuclear decay data for dosimetric calculations. Ann ICRP. 2008;38(3):7–96. https://doi.org/10.1016/j.icrp.2008.10.004; Papadimitroulas P, Loudos G, Nikiforidis GC, Kagadis GC. A dose point kernel database using GATE Monte Carlo simulation toolkit for nuclear medicine applications: comparison with other Monte Carlo codes. Med Phys. 2012;39(8):5238–47. https://doi.org/10.1118/1.4737096; Sgouros J, Bolch WE, Chiti A, Dewaraja YK, Emfietzoglou D, Hobbs RF, et al. ICRU report 96, dosimetry-guided radiopharmaceutical therapy. J Int Comm Rad Units Meas. 2021;21:1–212. https://doi.org/10.1177/14736691211060117; Blykers A, Schoonooghe S, Xavier C, D’hoe K, Laoui D, D’Huyvetter M, et al. PET imaging of macrophage mannose receptor-expressing macrophages in tumor stroma using 18 F-radiolabeled camelid single-domain antibody fragments. J Nucl Med. 2015;56(8):1265–71. https://doi.org/10.2967/jnumed.115.156828; Goodwin DA, Meares CF, Osen M. Biological properties of biotin-chelate conjugates for pretargeted diagnosis and therapy with the avidin/biotin system. J Nucl Med. 1998;39(10):1813–8. PMID:9776294; Boerman OC, van Schaijk FG, Oyen WJG, Corstens FHM. Pretargeted radioimmunotherapy of cancer: progress step by step. J Nucl Med. 2003;44(3):400–11. PMID:12621007; Verhoeven M, Seimbille Y, Dalm SU. Therapeutic applications of pretargeting. Pharmaceutcs. 2019;11(9): 434. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics11090434; Knight JC, Cornelissen B. Bioorthogonal chemistry: implications for pretargeted nuclear (PET/SPECT) imaging and therapy. Am J Nucl Med Mol Imaging. 2014;4(2):96–113. https://doi.org/10.3390/biom9100548; Wong CH, Siah KW, Lo AW. Estimation of clinical trial success rates and related parameters. Biostatistics. 2018;20(2):273–86. https://doi.org/10.1093/biostatistics/kxx069; Lin A, Giuliano CJ, Palladino A, John KM, Abramowicz C, Yuan ML, et al. Off-target toxicity is a common mechanism of action of cancer drugs undergoing clinical trials. Sci Transl Med. 2019;11(509):eaaw8412. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.aaw8412; Jagodinsky JC, Morris ZS. Priming and propagating anti-tumor immunity: Focal hypofractionated radiation for in situ vaccination and systemic targeted radionuclide theranostics for immunomodulation of tumor microenvironments. Semin Radiat Oncol. 2020;30(2):181–6. https://doi.org/10.1016/j.semradonc.2019.12.008; https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/520

الاتاحة: https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/520
https://doi.org/10.30895/1991-2919-2022-12-4-425-443

المؤلفون: S. V. Shatik, D. N. Maystrenko, A. A. Stanzhevskiy, С. В. Шатик, Д. Н. Майстренко, А. А. Станжевский

المصدر: The Bulletin of the Scientific Centre for Expert Evaluation of Medicinal Products. Regulatory Research and Medicine Evaluation; Том 12, № 4 (2022); 389-394 ; Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств; Том 12, № 4 (2022); 389-394 ; 2619-1172 ; 1991-2919

مصطلحات موضوعية: регуляторные требования, pharmaceutical industry, medical organisations, production, compounding, regulatory requirements, фармацевтическая промышленность, медицинские организации, производство, изготовление

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/509/872; https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/downloadSuppFile/509/293; https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/downloadSuppFile/509/309; Trends in radiation sterilization of health care products. Vienna: International Atomic Energy Agency; 2008.; Чудаков ВМ, Жуйков БЛ, Ермолаев СВ, Коханюк ВМ, Мостова МИ, Зайцев ВВ и др. Исследование характеристик генератора 82 Rb для позитронно-эмиссионной томографии. Радиохимия. 2014;56(5):455–61. https://doi.org/10.1134/S1066362214050142; Chudakov VM, Zhuikov BL, Ermolaev SV, Kokhanyuk VM, Mostova MI, Zaitsev VV, et al. Characterization of a 82 Rb generator for positron emission tomography. Radiochemistry. 2014;56(5):535–43 https://doi.org/10.1134/S1066362214050142; Pijarowska-Kruszyna J, Garnuszek P, Decristoforo C, Mikołajczak R. Radiopharmaceutical precursors for theranostics. In: Eppard E, ed. Theranostics: an old concept in new clothing. IntechOpen; 2021. P. 3–22.; https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/509

الاتاحة: https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/509
https://doi.org/10.30895/1991-2919-2022-12-4-389-394

المؤلفون: L. A. Chipiga, A. E. Petrova, A. V. Vodovatov, A. A. Stanzhevsky, A. A. Lumpov, D. D. Lavreshov, L. E. Naurzbaeva, S. M. Kushnarenko, A. A. Mosunov, Л. А. Чипига, А. Е. Петрова, А. В. Водоватов, А. А. Станжевский, А. А. Лумпов, Д. Д. Лаврешов, Л. Е. Наурзбаева, С. М. Кушнаренко, А. А. Мосунов

المساهمون: Авторы выражают свою благодарность сотрудникам группы медицинской радиационной физики Лундского университета (Мальме, Швеция) за предоставленное программное обеспечение SAAM II v2.3 для оценки биораспределения 223 Ra - дихлорида в органах и тканях пациентов с мКРРПЖ в рамках данной работы и помощь в проведении расчетов

المصدر: Radiatsionnaya Gygiena = Radiation Hygiene; Том 13, № 4 (2020); 6-16 ; Радиационная гигиена; Том 13, № 4 (2020); 6-16 ; 2409-9082 ; 1998-426X ; 10.21514/1998-426X-2020-13-4

مصطلحات موضوعية: эквивалентная доза, 223Ra-dichloride, prostate cancer, radiopharmaceuticals, internal dose, absorbed doses in organs, equivalent dose, effective dose, 223Ra -дихлорид, рак предстательной железы, радиофармпрепараты, доза внутреннего облучения, поглощенные дозы в органах

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/747/705; Каприн А.Д., Старинский В.В., Петров Г.В. Злокачественные новообразования в России в 2018 году (заболеваемость и смертность). М.: МНИОИ им. П.А. Герцена - филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России. 2019. 250 с.; Scher H., Morris M., Stadler W., et al. Trial design and objectives for castration-resistant prostate cancer: updated recommendations from the prostate cancer clinical trials working group 3 // J Clin Oncol. 2016. Vol. 34, No 12. P.1402-18.; Чипига Л.А., Водоватов А.В., Петрова А.Е., Станжевский А.А. Анализ моделей биораспределения 22'^а-дихлорида для оценки доз внутреннего облучения // Формулы фармации. 2020. Т. 2, №1. С. 54-69.; Taprogge J., Murray I., Gear J., Chittenden S.J. Compartmental model for 223Ra-Dichloride in patients with metastatic bone disease from castration-resistant prostate cancer // International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 2019. P.1-9.; Lassmann M., Lassmann M., Nosske D. Dosimetry of 223Ra-chloride: dose to normal organs and tissues // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2012. Vol. 40, No 2. P. 207-212.; ICRP, 1973. Alkaline Earth Metabolism in Adult Man. ICRP Publication 20. Pergamon Press, Oxford. 423 p.; ICRP Publication 67. Age-dependent doses to members of the public from intake of radionuclides. Part 2. Ingestion dose coefficients. Annals of the ICRP. 1993. 23(3-4); ICRP, 2018. Occupational Intakes of Radionuclides: Part 3. ICRP Publication 137. Annals of the ICRP. 46(3-4).; Barrett P.H., Bell B.M., Cobelli C. SAAM II: simulation. analysis. and modeling software for tracer and pharmacokinetic studies // Metabolism. 1998. Vol. 47, No. 4. P. 484-492.; Программное обеспечение для анализа данных OriginLab: https://www.originlab.com/demodownload.aspx (Дата обращения: 16.08.2020); Andersson M., Johansson L., Minarik D. An internal radiation dosimetry computer program. IDAC 2.0. for estimation of patient dose for radiopharmaceuticals // Radiation Protection Dosimetry. 2014. No. 162. P. 299-305.; ICRP Publication 107. Nuclear Decay Data for Dosimetric Calculations. Ann. ICRP. 2008. Vol. 38, No 3. P. 96.; Dauer L.T., Williamson M.J., Humm J., et. al. Radiation Safety Considerations for the Use of 223RaCl2 DE in Men with Castration-resistant Prostate Cancer // Health Physics. 2014. No. 106. P. 494-504.; Snyder W.S., Ford M.R., Warner G.G. Estimates of Specific Absorbed Fractions for Photon Sources Uniformly Distributed in Various Organs of a Heterogeneous Phantom. Medical Internal Radiation Dose Committee (NM/MIRD) Pamphlet No. 5, revised. Society of Nuclear Medicine. New York, NY. 1978. 52 p.; Bruland 0., Nilsson S.S., Fisher D.R., Larsen R.H. High-linear energy transfer irradiation targeted to skeletal me tastases by the alphaemitter 223Ra: adjuvant or alternative to conventional modalities? // Clin Cancer Res. 2006. P. 6250-6257.; Sgouros G., Roeske J.C., McDevitt M.R., et al. MIRD Pamphlet No. 22 (abridged): radiobiology and dosimetry of alphaparticle emitters for targeted radionuclide therapy // J Nucl Med. 2010. No. 51. P. 311-328.; Howell R.W., Goddu S.M., Narra V.R., et al. Radiotoxicity of gadolinium-148 and radium-223 in mouse testes: relative biological effectiveness of alpha-particle emitters in vivo // Radiat Res. 1997. No.147. P. 342-348.; Публикация 103 МКРЗ. Рекомендации Международной Комиссии по Радиационной Защите от 2007 г.: пер. с англ. / под общ. ред. М.Ф. Киселева, Н.К. Шандалы. М.: Изд. ООО ПКФ «Алана». 2009. 312 c.; Публикация 60 МКРЗ. Рекомендации Международной Комиссии по Радиационной Защите от 1990г.: пер. с англ. / под общ. ред. Т.Д. Кузьминой, И.Б. Кеирим-Маркуса. М.: Изд. Энергоатомиздат. 1994. 208 c.; Poeppel T.D., Handkiewicz-Junak D., Andreeff M., et al. EANM guideline for radionuclide therapy with radium-223 of metastatic castration-resistant prostate cancer // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2017. Vol. 45, No 5. P. 824-845.; Chittenden S.J., Hindorf C., Parker C.C., et al. A Phase 1. Open-Label Study of the Biodistribution Pharmacokinetics and Dosimetry of 223Ra-Dichloride in Patients with Hormone-Refractory Prostate Cancer and Skeletal Metastases // Journal of Nuclear Medicine. 2015. No. 56. P. 1304-1309.; Hobbs R.F., Song H., Watchman C.J., et al. A bone marrow toxicity model for Ra-223 emitter radiopharmaceutical therapy // Physics in Medicine and Biology. 2012. No. 57. P. 3207-3222.; Министерство здравоохранения Российской Федерации «Инструкция по медицинскому применению лекарственного препарата Ксофиго/Xofigo». 17 с.; Uselmann A.J., Thomadsen B.R. On effective dose for radiotherapy based on doses to nontarget organs and tissues // Medical Physics. 2015. Vol. 42, No 2. P. 977-982.; Радиационная защита и безопасность источников излучения: Международные основные нормы безопасности GSR Part 3. МАГАТЭ, Вена. 2015. 518 с.; International Commission on Radiological Protection. Radiological Protection in Ion Beam Radiotherapy. ICRP Publication 127. Annals of the ICRP. 2014. Vol. 43, No. 4. P. 5-113.; International Commission on Radiological Protection. Preventing Accidental Exposures from New External Beam Radiation Therapy Technologies. ICRP Publication 112. Annals of the ICRP. 2009. Vol. 39, No. 4. P. 1-2.; Loreti G., Delis H., Healy B., et. al. IAEA education and training activities in medical physics // Medical physics international Journal. 2015. Vol. 3, No. 2. P. 81-86.; https://www.radhyg.ru/jour/article/view/747

الاتاحة: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/747
https://doi.org/10.21514/1998-426X-2020-13-4-6-16

المؤلفون: M. D. Semenova, V. P. Sokurenko, A. A. Stanzhevskiy, V. F. Mus, М. Д. Семенова, В. П. Сокуренко, А. А. Станжевский, В. Ф. Мус

المساهمون: Нет

المصدر: Translational Medicine; Том 6, № 1 (2019); 17-26 ; Трансляционная медицина; Том 6, № 1 (2019); 17-26 ; 2410-5155 ; 2311-4495 ; 10.18705/2311-4495-2019-6-1

مصطلحات موضوعية: химиолучевое лечение, magnetic resonance imaging, diffusion-weighted MRI, proton magnetic resonance spectroscopy, chemoradiation treatment, магнитно-резонансная томография, диффузионно-взвешенная МРТ, протонная магнитно-резонансная спектроскопия

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/448/327; Kaprin AD, Starinskiy VV, Petrova GV. The State of Oncological Care to Population in Russia in 2017. M-: Gertcen MNIOI. 2018. p.236. In Russian. [Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В., Состояние онкологической помощи населению России в 2017 году. М.:МНИОИ им П. А. Герцена — филиала ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 2018. с. 236].; Braunschweig T, Lewandrowski A, Smeets D et al. Squamous Cell Carcinoma of the Head and Neck: New Avenues of Treatment? Head and Neck Tumors. 2013;3:4– 10. In Russian [Брауншвейг Т., Левандровски А., Смеетс Д. и др. Плоскоклеточный рак головы и шеи: новые перспективы лечения? Опухоли головы и шеи. 2013;3:4–10].; Brennan JA, Boyle JO, Koch WM et al. Association Between Cigarette Smoking and Mutation of the p53 Gene in Squamous-cell Carcinoma of the Head and Neck. N Engl J Med. 1995;332(11):712–717; Denaro N, Merlano MC, Russi EG. Follow-up in Head and Neck Cancer: Do More Does It Mean Do Better? A Systematic Review and Our Proposal Based on Our Experience. Clin Exp Otorhinolaryngol. 2016;9(4):287–297.; Quintero K, Giraldo GA, Uribe ML et al. Human Papillomavirus Types in Cases of Squamous Cell Carcinoma of Head and Neck in Colombia. Braz J Otorhinolaryngol. 2013;79(3):375–381.; Curado MP, Boyle P. Epidemiology of Head and Neck Squamous Cell Carcinoma Not Related to Tobacco or Alcohol. Curr Opin Oncol. 2013;25(3):229–234.; Van Monsjou HS, van Velthuysen ML, van den Brekel MW et al. Human Papillomavirus Status in Young Patients with Head and Neck Squamous Cell Carcinoma. Int J Cancer. 2012;130(8):1806–1812.; Smeets D, Ertmer K, Braunschweig T et al. HPV in Squamous Epithelial Lesions of the Head and Neck: Different Affection of Different Tumors. Tumors of the Head and Neck. 2011;1:61–65. In Russian [Смеетс Д., Эртмер К., Брауншвейг Т. и др. Роль вируса папилломы человека (ВПЧ) при различных локализациях плоскоклеточного рака головы и шеи. Опухоли головы и шеи. 2011;1:61–65].; Thomas J, Primeaux T. Is p16 Immunohistochemistry a More Cost-effective Method for Identification of Human Papilloma Virus-associated Head and Neck Squamous Cell Carcinoma? Ann Diagn Pathol. 2012;16(2):91–99.; Dai YL, King AD. State of the Art MRI in Head and Neck Cancer. Clin Radiol. 2018;73(1):45–59.; Korostyshevskaya AM, Savelov AA, Tsydenova DV et al. Quantitative Analysis of Perinatal Brain Maturation Using Deffusion-weighted MRI. Bulletin of Novosib State Univ. Series: Biology, Clinical Medicine= Vestn. Novosib. gos. un-ta. Serija: Biologija, klinicheskaja medicina. 2015;13(4):27–32. In Russian [Коростышевская А. М., Савелов А. А., Цыденова Д. В. и др. Количественный анализ структурной зрелости головного мозга плода, по данным диффузионно-взвешенной МРТ. Вестн. Новосиб. гос. ун-та. Серия: Биология, клиническая медицина. 2015;13(4):27–32].; Ahn SJ, Choi SH, Kim YJ et al. Histogram Analysis of Apparent Diffusion Coefficient Map of Standard and High B-value Diffusion MR Imaging in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma: a Correlation Study with Histological Grade. Acad Radiol. 2012;19(10):1233–1240.; Hwang I, Choi SH, Kim YJ et al. Differentiation of Recurrent Tumor and Posttreatment Canges in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma: Application of High B-value Diffusion-weighted Imaging. AJNR Am J Neuroradiol. 2013;34(12):2343–2348.; Yun TJ, Kim JH, Kim KH et al. Head and Neck Squamous Cell Carcinoma: Differentiation of Histologic Grade with Standard- and High-b-value Diffusion-weighted MRI. Head Neck. 2013;35(5):626–631.; Ryoo I, Kim JH, Choi SH et al. Squamous Cell Carcinoma of the Head and Neck: Comparison of Diffusionweighted MRI at B-values of 1,000 and 2,000 s/mm(2) to Predict Response to Induction Chemotherapy. Magn Reson Med Sci. 2015;14(4):337–345.; Acampora A, Manzo G, Fenza G et al. High B-value Diffusion MRI to Differentiate Recurrent Tumors from Posttreatment Changes in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma: a Single Center Prospective Study. Biomed Res Int. 2016;2016:2865169.; Wang J, Takashima S, Takayama F et al. Head and Neck Lesions: Characterization with Diffusion-weighted Echo-planar MR Imaging. Radiology. 2001;220(3):621–630.; Thoeny HC, De Keyzer F, King AD. Diffusionweighted MR Imaging in the Head and Neck. Radiology. 2012;263(1):19–32.; Abdel Razek AA, Nada N. Role of Diffusionweighted MRI in Differentiation of Masticator Space Malignancy from Infection. Dentomaxillofac Radiol. 2013;42(4):20120183.; Koc O, Paksoy Y, Erayman I et al. Role of Diffusion Weighted MR in the Discrimination Diagnosis of the Cystic and/or Necrotic Head and Neck Lesions. Eur J Radiol. 2007;62(2):205–213.; Kato H, Kanematsu M, Kato Z et al. Necrotic Cervical Nodes: Usefulness of Diffusion-weighted MR Imaging in the Differentiation of Suppurative Lymphadenitis from Malignancy. Eur J Radiol. 2013;82(1):e28–35.; Zhang Y, Chen J, Shen J et al. Apparent Diffusion Coefficient Values of Necrotic and Solid Portion of Lymph Nodes: Differential Diagnostic Value in Cervical Lymphadenopathy. Clin Radiol. 2013;68(3):224–231.; King AD, Yeung DK, Ahuja AT et al. Salivary Gland Tumors at In Vivo Proton MR Spectroscopy. Radiology. 2005;237(2):563–569.; Salama AA, El-Barbary AH, Mlees MA et al. Value of Apparent Diffusion Coefficient and Magnetic Resonance Spectroscopy in the Identification of Various Pathological Subtypes of Parotid Gland Tumors. Egypt J Radiol Nucl Med. 2015;46(1):45–52.; Chen L, Xu J, Bao J et al. Diffusion-weighted MRI in Differentiating Malignant from Benign Thyroid Nodules: a Meta-analysis. BMJ Open. 2016;6(1):e008413.; Holzapfel K, Duetsch S, Fauser C et al. Value of Diffusion-weighted MR Imaging in the Differentiation Between Benign and Malignant Cervical Lymph Nodes. Eur J Radiol. 2009;72(3):381–387.; Maeda M, Kato H, Sakuma H et al. Usefulness of the Apparent Diffusion Coefficient in Line Scan Diffusionweighted Imaging for Distinguishing Between Squamous Cell Carcinomas and Malignant Lymphomas of the Head and Neck. AJNR Am J Neuroradiol. 2005;26(5):1186–1192.; King AD, Ahuja AT, Yeung DK et al. Malignant Cervical Lymphadenopathy: Diagnostic Accuracy of Diffusion-weighted MR Imaging. Radiology. 2007;245(3):806–813.; Ichikawa Y, Sumi M, Sasaki M et al. Efficacy of Diffusion-weighted Imaging for the Differentiation Between Lymphomas and Carcinomas of the Nasopharynx and Oropharynx: Correlations of Apparent Diffusion Coefficients and Histologic Features. AJNR Am J Neuroradiol. 2012;33(4):761–766.; Sumi M, Nakamura T. Head and Neck Tumours: Combined MRI Assessment Based on IVIM and TIC Analyses for the Differentiation of Tumors of Different Histological Types. Eur Radiol. 2014;24(1):223–231.; Vandecaveye V, De Keyzer F, Vander Poorten V et al. Head and Neck Squamous Cell Carcinoma: Value of Diffusion-weighted MR Imaging for Nodal Staging. Radiology. 2009;251(1):134–146.; Abdel Razek AA, Soliman NY, Elkhamary S et al. Role of Diffusion-weighted MR Imaging in Cervical Lymphadenopathy. Eur Radiol. 2006;16(7):1468–1477.; de Bondt RB, Hoeberigs MC, Nelemans PJ et al. Diagnostic Accuracy and Additional Value of Diffusionweighted Imaging for Discrimination of Malignant Cervical Lymph Nodes in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma. Neuroradiology. 2009;51(3):183–192.; Lee MC, Tsai HY, Chuang KS et al. Prediction of Nodal Metastasis in Head and Neck Cancer Using a 3T MRI ADC Map. AJNR Am J Neuroradiol. 2013;34(4):864–869.; Barchetti F, Pranno N, Giraldi G et al. The Role of 3 Tesla Diffusion-weighted Imaging in the Differential Diagnosis of Benign Versus Malignant Cervical Lymph Nodes in Patients with Head and Neck Squamous Cell Carcinoma. Biomed Res Int. 2014;2014:532095.; Zhong J, Lu Z, Xu L et al. The Diagnostic Value of Cervical Lymph Node Metastasis in Head and Neck Squamous Carcinoma by Using Diffusion-weighted Magnetic Resonance Imaging and Computed Tomography Perfusion. Biomed Res Int. 2014;2014:260859.; De Felice F, Musio D, Bulzonetti N et al. Target Volume Delineation Based on Diffusion-weighted Magnetic Resonance Imaging for Locally Advanced Head and Neck Cancer. Anticancer Res. 2016;36(8):4181–4185.; Baba Y, Furusawa M, Murakami R et al. Role of Dynamic MRI in the Evaluation of Head and Neck Cancers Treated with Radiation Therapy. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 1997;37(4):783–787.; Korostishevskaya AM. Proton MR Spectroscopy Diagnostic Value (Review of Perspective Fields). Medical imaging. 2007;3:130–143. In Russian [Коростышевская А. М. Диагностические возможности магнитно-резонансной спектроскопии (обзор перспективных направлений) Медицинская визуализация. 2007;3:130–143].; Sinson G, Bagley LJ, Cecil KM et al. Magnetization Transfer Imaging and Proton MR Spectroscopy in the Evaluation of Axonal Injury: Correlation with Clinical Outcome after Traumatic Brain Injury. AJNR Am J Neuroradiol. 2001;22(1):143–151.; Mascalchi M, Cosottini M, Lolli F et al. Proton MR Spectroscopy of the Cerebellum and Pons in Patients with Degenerative Ataxia. Radiology. 2002;223(2):371– 378.; Bogdanov AV. Proton MR Spectroscopy (Review). Bulletin of KRSU. 2016;16(3):151–156. In Russian [Богданов А. В. Магнитно-резонансная спектроскопия (обзор литературы). Вестник КРСУ. 2016;16(3):151–156].; Abdel Razek AA, Poptani H. MR Spectroscopy of Head and Neck Cancer. Eur J Radiol. 2013;82(6):982–989.; Yeung DK, Fong KY, Chan QC et al. Chemical Shift Imaging in the Head and Neck at 3T: Initial Results. J Magn Reson Imaging. 2010;32(5):1248–1254.; Yuan J, Chen S, King AD et al. Amide Proton Transfer-weighted Imaging of the Head and Neck at 3 T: a Feasibility Study on Healthy Human Subjects and Patients with Head and Neck Cancer. NMR Biomed. 2014;27(10):1239–1247.; Wang J, Hwang K, Fuller C et al. SU-E-J-225: CEST Imaging in Head and Neck Cancer Patients. Med Phys. 2015;42(6):3317.; King AD, Yeung DK, Ahuja AT et al. Human Cervical Lymphadenopathy: Evaluation with In Vivo 1 H-MRS at 1.5 T. Clin Radiol. 2005;60(5):592–598.; Bisdas S, Fetscher S, Feller AC et al. Primary B Cell Lymphoma of the Sphenoid Sinus: CT and MRI Characteristics with Correlation to Perfusion and Spectroscopic Imaging Features. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2007;264(10):1207–1213.; Yu Q, Yang J, Wang P et al. Preliminary Assessment of Benign Maxillofacial and Neck Lesions with In Vivo Single-voxel 1H Magnetic Resonance Spectroscopy. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 2007;104(2):264–270.; Brandao LA, Castillo M. Adult Brain Tumors: Clinical Applications of Magnetic Resonance Spectroscopy. Neuroimaging Clin N Am. 2013;23(3):527–555.; Galban CJ, Mukherji SK, Chenevert TL et al. A Feasibility Study of Parametric Response Map Analysis of Diffusion-weighted Magnetic Resonance Imaging Scans of Head and Neck Cancer Patients for Providing Early Detection of Therapeutic Efficacy. Transl Oncol. 2009;2(3):184–190.; Vandecaveye V, Dirix P, De Keyzer F et al. Predictive Value of Diffusion-weighted Magnetic Resonance Imaging During Chemoradiotherapy for Head and Neck Squamous Cell Carcinoma. Eur Radiol. 2010;20(7):1703–1714.; Chen Y, Liu X, Zheng D et al. Diffusionweighted Magnetic Resonance Imaging for Early Response Assessment of Chemoradiotherapy in Patients with Nasopharyngeal Carcinoma. Magn Reson Imaging. 2014;32(6):630–637.; Martins EB, Chojniak R, Kowalski LP et al. Diffusion-weighted MRI in the Assessment of Early Reatment Response in Patients with Squamous-cell Carcinoma of the Head and Neck: Comparison with Morphological and PET/CT Findings. PLoS One. 2015;10(11):e0140009.; Wong KH, Panek R, Welsh L et al. The Predictive Value of Early Assessment after 1 Cycle of Induction Chemotherapy with 18F-FDG PET/CT and Diffusionweighted MRI for Response to Radical Chemoradiotherapy in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma. J Nucl Med. 2016;57(12):1843–1850.; King AD, Chow KK, Yu KH et al. Head and Neck Squamous Cell Carcinoma: Diagnostic Performance of Diffusion-weighted MR Imaging for the Prediction of Treatment Response. Radiology. 2013;266(2):531–538.; King AD, Mo FK, Yu KH et al. Squamous Cell Carcinoma of the Head and Neck: Diffusion-weighted MR Imaging for Prediction and Monitoring of Treatment Response. Eur Radiol. 2010;20(9):2213–2220.; Abdel Razek AA, Kandeel AY, Soliman N et al. Role of Diffusion-weighted Echo-planar MR Imaging in Differentiation of Residual or Recurrent Head and Neck Tumors and Posttreatment Changes. AJNR Am J Neuroradiol. 2007;28(6):1146–1152.; Vandecaveye V, De Keyzer F, Nuyts S et al. Detection of Head and Neck Squamous Cell Carcinoma with Diffusion Weighted MRI after (chemo) Radiotherapy: Correlation Between Radiologic and Histopathologic Findings. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2007;67(4):960–971.; Gouhar GK, El-Hariri MA. Feasibility of Diffusion Weighted MR Imaging in Differentiating Recurrent Laryngeal Carcinoma from Radionecrosis. Egypt J Radiol Nucl Med. 2011;42(2):169–175.; Vandecaveye V, Dirix P, De Keyzer F et al. Diffusion-weighted Magnetic Resonance Imaging Early after Chemoradiotherapy to Monitor Treatment Response in Head-and-neck Squamous Cell Carcinoma. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2012;82(3):1098–1107.; Tshering Vogel DW, Zbaeren P, Geretschlaeger A et al. Diffusion-weighted MR Imaging Including Biexponential Fitting for the Detection of Recurrent or Residual Tumour after (Chemo)radiotherapy for Laryngeal and Hypopharyngeal Cancers. Eur Radiol. 2013;23(2):562–569.; Ravanelli M, Farina D, Rizzardi P et al. MR with Surface Coils in the Follow-up after Endoscopic Laser Resection for Glottic Squamous Cell Carcinoma: Feasibility and Diagnostic Accuracy. Neuroradiology. 2013;55(2):225– 232.; King AD, Keung CK, Yu KH et al. T2-weighted MR Imaging Early after Chemoradiotherapy to Evaluate Treatment Response in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma. AJNR Am J Neuroradiol. 2013;34(6):1237– 1241.; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/448

الاتاحة: https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/448
https://doi.org/10.18705/2311-4495-2019-6-1-17-26

المؤلفون: M. Sh. Shikhzadaev, M. I. Shkolnik, A. A. Stanjevskiy, O. A. Bogomolov, A. L. Dolbov, М. Ш. Шихзадаев, М. И. Школьник, А. А. Станжевский, О. А. Богомолов, А. Л. Долбов

المصدر: Malignant tumours; Том 9, № 1 (2019); 38-41 ; Злокачественные опухоли; Том 9, № 1 (2019); 38-41 ; 2587-6813 ; 2224-5057

مصطلحات موضوعية: позитронно-эмиссионная томография, prostate specific antigen, positron emission tomography, простатический специфический антиген

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/614/422; Шихзадаев М. Ш, Школьник М. И, Жаринов Г. М, Богомолов О. А, Прохоров Д. Г. Современные подходы в лечении местно распространенного рака предстательной железы // Вопросы онкологии, 2018. Том 64, № 4.; Al Monajjed R. Prostate cancer screening: controversies and suggested solutions/R. Al Monajjed, C. Arsov, P. Albers // Bundesgesundheitsblatt Gesundheitsforschung Gesundheitsschutz. — 2018. — doi:10.1007/s00103-018-2840-x.; Sensitivity, Specificity, and Predictors of Positive 68 Ga Prostate specific Membrane Antigen Positron Emission Tomography in Advanced Prostate Cancer: A Systematic Review and Meta analysis/M. Perera, N. Papa, D. Christidis [et al.] // Eur Urol. — 2016. — Vol. 70, No. 6. — P. 926–937. — doi:10.1016/j.eururo.2016.06.021.; Diagnostic Efficacy of (68) Gallium PSMA Positron Emission Tomography Compared to Conventional Imaging for Lymph Node Staging of 130 Consecutive Patients with Intermediate to High Risk Prostate Cancer/T. Maurer, J. E. Gschwend, I. Rauscher [et al.] // J Urol. — 2016. — Vol. 195, No. 5. — P. 1436–1443. — doi:10.1016/j.juro.2015.12.025.; Jadvar H. Positron emission tomography in imaging evaluation of staging, restaging, treatment response, and prognosis in prostate cancer/H. Jadvar // Abdom Radiol (NY). — 2016. — Vol. 41, No. 5. — P. 889–898. — doi:10.1007/s00261-015-0563-0.; 68 Ga PSMA Positron Emission Tomography/Computed Tomography Provides Accurate Staging of Lymph Node Regions Prior to Lymph Node Dissection in Patients with Prostate Cancer/A. Herlemann, V. Wenter, A. Kretschmer [et al.] // Eur Urol. — 2016. — Vol. 70, No. 4. — P. 553–557. — doi:10.1016/j.eururo.2015.12.051.; Clinical impact of 68 Ga prostate specific membrane antigen (PSMA) positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) in patients with prostate cancer with rising prostate specific antigen after treatment with curative intent: preliminary analysis of a multidisciplinary approach/S. Albisinni, C. Artigas, F. Aoun [et al.] // BJU Int. — 2017. — Vol. 120, No. 2. — P. 197–203. — doi:10.1111/bju.13739.; The Role of Positron Emission Tomography With (68) Gallium (Ga) — Labeled Prostate specific Membrane Antigen (PSMA) in the Management of Patients With Organ confined and Locally Advanced Prostate Cancer Prior to Radical Treatment and After Radical Prostatectomy/B. P. Rai, R. P. Baum, A. Patel [et al.] // Urology. — 2016. — Vol. 95. — P. 11–15. — doi:10.1016/urology.2015.12.048.; Prospective evaluation of 68 Gallium prostate specific membrane antigen positron emission tomography/computed tomography for preoperative lymph node staging in prostate cancer/P. J. van Leeuwen, L. Emmett, B. Ho [et al.] // BJU Int. — 2017. — Vol. 119, No. 2. — P. 209–215. — doi:10.1111/bju.13 540.; Nonspecific Uptake of 68 Ga Prostate Specific Membrane Antigen in Diseases other than Prostate Malignancy on Positron Emission Tomography/Computed Tomography Imaging: A Pictorial Assay and Review of Literature/D. Malik, A. Sood, B. R. Mittal [et al.] // Indian J Nucl Med. — 2018. — Vol. 33, No. 4. — P. 317–325. — doi:10.4103/ijnm.IJNM_81_18.; Assessment of 68 Ga PSMA 11 PET positivity predictive factors in prostate cancer/A. L. Gutiérrez Cardo, A. Pérez Duarte, S. F. García Argüello [et al.] // Rev Esp Med Nucl Imagen Mol. — 2018. — doi:10.1016/j.remn.2018.09.006.; Prostate imaging features that indicate benign or malignant pathology on biopsy/C. E. Lovegrove, M. Matanhelia, J. Randeva [et al.] // Transl Androl Urol. — 2018. — No. 7, Suppl. 4. — P. S420 S435. — doi:10.21037/tau.2018.07.06.; Ланг Т. А. Как описывать статистику в медицине/Т. А. Ланг, М. Сесик; пер. с англ. под ред. В. П. Леонова. — М.: Практическая медицина, 2011. — 480 с.; Jansson K. F. et al. Concordance of tumor differentiation among brothers with prostate cancer // European urology. –2012. — T.62. №. 4. — C. 656–661.; Ferlay J. et al. Cancer incidence and mortality worldwide: sources, methods and major patterns in GLOBOCAN 2012 // International journal of cancer. — 2015. — T. 136. — №. 5.; https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/614

الاتاحة: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/614
https://doi.org/10.18027/2224-5057-2019-9-1-38-41

المؤلفون: N. A. Kostenikov, L. A. Tyutin, B. L. Zhujkov, V. M. Chudakov, S. V. Šatik, V. V. Zaitsev, D. S. Sysoev, A. F. Panfilenko, Yu. R. Iliuschenko, A. A. Stanzevskii, Н. А. Костеников, Л. А. Тютин, Б. Л. Жуйков, В. М. Чудаков, С. В. Шатик, В. В. Зайцев, Д. С. Сысоев, А. Ф. Панфиленко, Ю. Р. Илющенко, А. А. Станжевский

المصدر: Diagnostic radiology and radiotherapy; № 3 (2017); 5-13 ; Лучевая диагностика и терапия; № 3 (2017); 5-13 ; 2079-5343 ; 10.22328/2079-5343-2017-3

مصطلحات موضوعية: радиофармпрепараты, ПЭТ, 82 Rb-хлорид, опухоли ГМ

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/231/215; Yano Y., Roth E.P. An Alumina Column 82Rb Generator. Int. J. Appl. Radiat. and Isot., 1979, Vol. 30, рр. 382–385.; Kulprathipanja S., Hnatowich D.J., Ben R. The Use of Inorganic Exchangers to Improve the 82Sr-82Rb Generator, Int. J. Appl. Radiat. and Isot., 1979, Vol. 30, рр. 447–449.; Bracco Diagnostics 43-8200. CardioGen-82 Rubidium Rb 82 Generator. 2000. [http://www.auntminnie.com/index.aspx?sec=ser&sub=def&pag =dis&ItemID=115276].; Waters S.L., Horlock P.L., Kensett N.J. The Application of Hydrous Tin (IV) Oxide in Radiochemical Separation and, in Particular, for 68Ge/68Ga and 82Sr/82Rb Generator Systems. Int. J. Appl. Radiat. Isot., 1983, Vol. 34, рр. 1023.; Beyer G.J., Rӧsch F., Ravn H.L. A High-Purity 82Sr/82Rb Generator, CERN-EP/90-91. 1990.; Cackette M.R., Ruth T.J., Vincent J.S. 82Sr production from metallic Rb targets and development of 82Rb generator system. Appl. Radiat. and Isot., 1993, Vol. 44, No. 6, рр. 917–922.; Kodina G.T., Kurenkov N.V., Kurchatova L.N. et al. Production of strontium-82 and preparation of the rubidium-82 generator. Targetry 91. Proc. Of IV Int. Workshop on Targetry and Target Chemistry. PSI, Villigen, Switzerland. 1991. PSI-Proceedings 92–01, рр. 66–67.; Литвинов М.М., Прохорович И.С., Бочкова И.И. и др. Оценка жизнеспособности миокарда с помощью позитронной эмиссион- ной томографии с рубидием-82. Медицинская радиология и радиационная безопасность. 1997. Т. 42, № 3. С. 13–17. [Litvinov M.M., Prohorovich I.S., Bochkova I.I. et al. Ocenka zhiznesposobnosti miokarda s pomoshch’yu pozitronnoj ehmissionnoj tomografii s rubidiem-82. Medicinskaya radiologiya i radiacionnaya bezopasnost’, 1997, Vol. 42, No. 3, рр. 13–17 (In Russ.)].; Jeong J.M., Chung J.K., Lee D.S. et al. Preparation of 82Sr/82Rb Generator and Positron Emission Tomographic Image of Normal Volunteer. Korean J. Med., 1994, Vol. 28, No. 3, рр. 326–330.; Chudakov V., Zhuikov B., Erilov P. et al. Russian Sr/Rb-82 generator for PET investigations. 5th International Conference on Isotopes, Brussels, Belgium, 25–29 April, 2005. р. 9.; Чудаков В.М., Жуйков Б.Л., Коханюк В.М. Генератор рубидия-82 и способ его применения. Патент РФ № 2546731. Дата регистрации 04.03.2015 г. Приоритет от 23.12.2013 г. [Chudakov V.M., Zhujkov B.L., Kohanyuk V.M. Generator rubidiya-82 i sposob ego primeneniya. Patent RF № 2546731. Data registracii 04.03.2015 g. Prioritet ot 23.12.2013 g. (In Russ.)].; Чудаков В.М., Жуйков Б.Л., Ермолаев С.В. и др. Исследование характеристик генератора рубидия-82 для ПЭТ-исследований // Радиохимия. 2014. Т. 56, № 5. С. 455–461. [Chudakov V.M., Zhujkov B.L., Ermolaev S.V. i dr. Issledovanie harakteristik generatora rubidiya-82 dlya PEHT-issledovanij. Radiohimiya, 2014, Vol. 56, No 5, рр. 455–461. (In Russ.)].; Chudakov V.M., Zhuikov B.L. et al. Characterization of a 82Rb Generator for Positron Emission Tomography. Radiochemistry, 2014, Vol. 56, No 5, рр. 535–543.; Гранов А.М., Тютин Л.А., Тлостанова М.С. и др. Эффективность применения позитронной эмиссионной томографии с рубиди- ем-82, Медицинская радиология и радиационная безопасность. 1997. Т. 42, № 3. С. 13–17. [Granov A.M., Tyutin L.A., Tlostanova M.S. i dr. Effektivnost’ primeneniya pozitronnoj ehmissionnoj tomografii s rubidiem-82, Medicinskaya radiologiya i radiacionnaya bezopasnost’, 1997, Vol. 42, Nо. 3, рр. 13–17. (In Russ.)].; Гранов А., Матвеев В., Жуйков Б., Костеников Н., Рыжкова Д. Отечественный радиофармацевтический препарат генераторного производства для ПЭТ Современные медицинские технологии. 2011. № 8. С. 17–19. [Granov A., Matveev V., Zhujkov B., Kostenikov N., Ryzhkova D. Otechestvennyj radiofarmacevticheskij preparat generatornogo proizvodstva dlya PEHT. Sovremennye medicinskie tekhnologii, 2011, Nо. 8, рр. 17–19. (In Russ.)].; Регистрационное удостоверение на медицинское изделие: № РЗН 2014/1669 от 01.07.2014 г. Генератор рубидия-82 ГР-01 (ГР-02) по ТУ 9452-025-05627150-2012. [Registracionnoe udostoverenie na medicinskoe izdelie: No. RZN 2014/1669 ot 01.07.2014 g. Generator rubidiya-82 GR-01 (GR-02) po TU 9452- 025-05627150-2012 (In Russ.)].; Brooks D.J., Beaney R., Lammertsma A.A. et al. Quantitative measurement of blood-brain barrier permeability using Rubidium-82 and positron emission tomography, J. Cereb. Blood Flow Metab., 1984, Vol. 4, рр. 535–555.; Yen C.K., Yano Y., Budinger T.F. et al. Brain tumor evaluation using Rb-82 and positron emission tomography, J. Nucl. Med., 1982, Vol. 23, рр. 532–537.; Roelcke U., Radii E., Ametamey S. et al. Association of 82Rubidium and 11C-methionine uptake in brain tumors measured by positron emission tomography. J. Neuro-Oncol., 1996. Vol. 27. pp. 163–172.; Cherry S.R., Carnochan P., Babich J.W. et al. Quantitative In Vivo Measurements of Tumor Perfusion Using Rubidium-82 and Positron Emission Tomography. J. Nucl. Med., 1990, Vol. 31, Nо. 8, рр. 1307–1315.; Khandani A., Sheikh A., Beavers G., Ivanovic M. Extra-cardiac findings on PET portion of Rubidium-82 (Rb-82) cardiac PET-CT, J. Nucl. Med., 2010, Vol. 51 (Suppl. 2), рр. 1018.; Mirpour S., Khandani A. Extracardiac abnormalities on rubidium-82 cardiac positron emission tomography/computed tomography, Nucl. Med. Commun., 2011, Vol. 32(4), рр. 260–264.; Yang Lu. FDG and 82Rb PET/MRI Features of Brain Metastasis of Breast Cancer. Clinical Nucl. Med., 2015, Vol. 40, No. 6, рр. 494–495.; Гранов А.М., Тютин Л.А., Костеников Н.А., Рыжкова Д.В., Жуйков Б.Л., Мостова М.И., Чудаков В.М., Ходжибекова М.М., Илющенко Ю.Р. Первый опыт использования 82SR/82RB-генератора в онкологической клинике, Лучевая диагностика и терапия, 2012. Т. 3, № 4. С 31–39. [Granov A.M., Tyutin L.A., Kostenikov N.A., Ryjkova D.V., Zhujkov B.L., Mostova M.I., Chudakov V.M., Khodjibekova M.M., Iliuschenko Yu.R. First experience with using 82SR/82RB-generator in oncological clinic, Lucevaa diagnostika i terapia, 2012, Vol. 3, Nо. 4, рр. 31–39. (In Russ.)].; https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/231

الاتاحة: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/231
https://doi.org/10.22328/2079-5343-2017-3-5-13

المؤلفون: V. V. Belenky, A. A. Stanzhevsky, O. A. Klitsenko, A. A. Skoromets, В. В. Беленький, А. А. Станжевский, О. А. Клиценко, А. А. Скоромец

المصدر: Medical Visualization; № 2 (2017); 7-15 ; Медицинская визуализация; № 2 (2017); 7-15 ; 2408-9516 ; 1607-0763

مصطلحات موضوعية: Z-счет, dystonia, essential tremor, Z-score, дистония, эссенциальный тремор

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/388/373; Беленький В.В., Станжевский А.А., Тютин Л.А., Чупрасова Т.В. Позитронно-эмиссионная томография при дистонии и эссенциальном треморе. Медицинская визуализация. 2010; 5: 77–82. Belenky V.V., Stanzhevsky A.A., Tutin L.A., Chuprasova T.V. PET in dystonia and essential tremor. Medical Visualization. 2010; 5: 77–82. (In Russian); Song I., Park J., Chung S., Chung Y. Brain SPECT can differentiate between essential tremor and early-stage tremor-dominant Parkinson's disease. Clin. Neurosci. 2014; 21(9):1533–1537. DOI:10.1016/j.jocn.2013.11.035.; Akdemir Ö., Tokçaer B., Karakus A., Kapucu LÖ., Kapucu L. Brain F-FDG PET imaging in the diferential diagnosis of parkinsonism. Clin. Nucl. Med. 2014; 39: 220–226. DOI:10.1097/RLU.0000000000000315.; Brajkovic L., Kostic V., Sobic-Saranovic D., Stefanova E., Jecmenica-Lukic M., Jesic A., Stojiljkovic M., Odalovic S., Gallivanone F., Castiglioni I., Radovic B., Trajkovic G., Artiko V. The utility of FDG-PET in the differential diagnosis of Parkinsonism. Neurol. Res. 2017; 5: 1–10. DOI:10.1080/01616412.2017.1312211.; Minoshima S., Frey K., Koeppe R., Foster N., Kuhl D. Diagnostic Approach in Alzheimer's Disease Using ThreeDimensional Stereotactic Surface Projections of Fluorine- 18-FDG PET. J. Nucl. Med. 1995; 36: 1238–1248.; Talairach J., Tournoux P. Co-planar stereotaxic atlas of the human brain: 3-dimensional proportional system – an approach to cerebral imaging. New York: Thieme Medical Publishers, 1988. 122 p.; Chase T., Tamminga C., Burrows H. Positron emission tomographic studies of regional cerebral glucose metabolism in idiopathic dystonia. Adv. Neurol. 1988; 50: 237–241.; Galardi G., Perani D., Grassi F., Bressi S., Amadio S., Antoni M., Comi G., Canal N., Fazio F. Basal ganglia and thalamo – cortical hypermetabolism in patients with spasmodic torticollis. Acta Neurologica Scand. 1996; 94: 172–176. DOI:10.1111/j.1600-0404.1996.tb07049.x.; Trost M., Carbon M., Edwards C., Ma Y., Raymond D., Mentis M.J., Moeller J.R., Bressman S.B., Eidelberg D. Primary dystonia: is abnormal functional brain architecture linked to genotype? Ann. Neurol. 2002; 52: 853–856. DOI:10.1002/ana.10418.; Gilman S., Junck L., Young A., Hichwa R., Markel D., Koeppe R., Ehrenkaufer R. Cerebral metabolic activity in idiopathic dystonia studied with positron emission tomography. Adv. Neurol. 1988; 50: 231–236.; Martin W., Stoessl A., Palmer M., Adam M., Ruth T., Grierson J., Pate B., Calne D. Pet scanning in dystonia. Adv. Neurol. 1988; 50: 223–229.; Otsuka M., Ichiya Y., Shima F., Kuwabara Y., Sasaki M., Fukumura T., Kato M., Masuda K., Goto I. Increased striatal 18 dopa uptake and normal glucose metabolism in idiopathic dystonia syndrome. J. Neurol. Sci. 1992; 111: 145–149.; Eidelberg D. Regional metabolic covariation in ITD with 18FDG PET. Mov. Disord. 1992; 2: 297.; Karbe H., Holthoff V., Rudolf J., Herholz K., Heiss W. Positron emission tomography demonstrates frontal cortex and basal ganglia hypometabolism in dystonia. Neurology. 1992; 42: 1540–1544.; Colebatch J., Findley L., Frackowiak R. Preliminary report: activation of the cerebellum in essential tremor. Lancet. 1990; 336: 1028–1030. DOI:10.1016/0140-6736(90)92489-5.; Jenkins I., Bain P., Colebatch J., Thompson P., Findley L., Frackowiak R., Marsden C., Brooks D. A positron emission tomography study of essential tremor: evidence for overactivity of cerebellar connections. Ann. Neurol. 1993; 34: 82–90. DOI:10.1002/ana.410340115.; Wills A., Jenkins I., Thomson P., Findley L., Brooks D. Red nuclear and cerebellar but no olivary activation associated with essential tremor: a positron emission tomographic study. Ann. Neurol. 1994; 36: 636–642. DOI:10.1002/ana.410360413.; Wills A., Jenkins I., Thompson P., Findley L., Brooks D. A positron emission tomography study of cerebral activation associated with essential and writing tremor. Arch. Neurol. 1995; 52 (3): 299–305. DOI:10.1001/archneur.1995.00540270095025.; Ha S., Yang Y., Song I., Chung Y., Oh J., Chung S. Changes in regional brain glucose metabolism measured with F-18-FDG-PET in essential tremor. Acta Radiol. 2015; 56: 482–486. DOI:10.1177/0284185114531414.; Sharifi S., Nederveen A., Booij J., Rootselaar A. Neuroimaging essentials in essential tremor: a systematic review. Neuroimage Clin. 2014; 5: 217–231. DOI:10.1016/j.nicl.2014.05.003.; Gerasimou G., Costa D.C., Papanastasiou E., Bostanjiopoulou S., Arnaoutoglou M., Moralidis E., Aggelopoulou T., Gotzamani-Psarrakou A. SPECT study with I-123-Ioflupane (DaTSCAN) in patients with essential tremor. Is there any correlation with Parkinson's disease? Ann. Nucl. Med. 2012; 26: 337–344. DOI:10.1007/s12149-012-0577-4.; Dellavedova L., Giorgetti A., Maffioli L. Impact of 123I-Ioflupane SPECT in Patient Management: Essential Tremor. Clin. Nuclear Med. 2016; 41 (3): 154–155. DOI:10.1097/RLU.0000000000001018.; Garraux G., Phillips C., Schrouff J., Kreisler A., Lemaire C., Degueldre C., Delcour C., Hustinx R., Luxen A., Destée A., Salmonet E. Multiclass classification of FDGPET scans for the distinction between Parkinson's disease and atypicalparkinsonian syndromes. Neuroimage Clin. 2013; 14: 883–893. DOI:10.1016/j.nicl.2013.06.004.; Burn D.J., Sawle G.V., Brooks D.J. Diferential diagnosis of Parkinson's disease, multiple system atrophy, and Steele-Richardson-Olszewski syndrome: discriminant analysis of striatal F-dopa PETdata. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatr. 1994; 57: 278–584. DOI:10.1136/jnnp.57.3.278.; Fischman A.J. Role of [F]-dopa-PET imaging in assessing movement disorders. Radiol. Clin. N. Am. 2005; 43: 93–106. DOI:10.1016/j.rcl.2004.08.002.; Darcourt J., Schiazza A., Sapin N., Dufour M., Ouvrier M., Benisvy D., Fontana X., Koulibaly P. F-FDOPA PET for the diagnosis of parkinsonian syndromes. Quarterly J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2014; 58: 355–365.; Gulcher J., Jonsson P., Kong A. Jeffrey R., Kristjánsson K., Frigge M., Kárason A., Einarsdóttir I., Stefánsson I., Einarsdóttir A., Sigurdardethttir S., Baldursson S., Björnsdóttir S., Hrafnkelsdóttir S., Jakobsson F., Benedickz J., Stefánsson K. Mapping of a familial essential tremor gene, FET 1, to chromosome 3q13. Nat. Genet. 1997; 17: 84–87. DOI:10.1038/ng0997-84.; https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/388

الاتاحة: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/388
https://doi.org/10.24835/1607-0763-2017-2-7-15

المؤلفون: Н. А. Костеников, А. В. Поздняков, В. Ф. Дубровская, О. Ю. Миролюбова, Ю. Р. Илющенко, А. А. Станжевский, N. A. Kostenikov, A. V. Pozdnyakov, V. F. Dubrovskaya, O. Yu. Mirolyubova, Yu. R. Ilyushchenko, A. A. Stanzhevsky

المصدر: Diagnostic radiology and radiotherapy ; Лучевая диагностика и терапия

مصطلحات موضوعية: gliomas, imaging modalities, molecular visualization, MSCT, MRI, MRS, SPECT, PET-СТ, & radiopharmaceuticals, глиомные опухоли, лучевые методы диагностики, молекулярная визуализация, МСКТ, МРТ, МРС, ОФЭКТ, ПЭТ-КТ, и РФП

Relation: https://openrepository.ru/article?id=387930

الاتاحة: https://openrepository.ru/article?id=387930
https://doi.org/10.22328/2079-5343-2019-10-2-15-23