-
1Academic Journal
المؤلفون: A. S. Mikhaylov, A. A. Mikhaylova, D. V. Hvaley, А. С. Михайлов, А. А. Михайлова, Д. В. Хвалей
المساهمون: The research was supported by State Assignment of the Institute of Geography RAS no. AAAA-A19-119022190170-1 (FMGE-2019-0008)., Исследование выполнено в рамках реализации государственного задания ИГ РАН № AAAA-A19-119022190170-1 (FMGE-2019-0008).
المصدر: Izvestiya Rossiiskoi Akademii Nauk. Seriya Geograficheskaya; Том 88, № 2 (2024); 119-134 ; Известия Российской академии наук. Серия географическая; Том 88, № 2 (2024); 119-134 ; 2658-6975 ; 2587-5566
مصطلحات موضوعية: Юг России, geography of innovation, spatial scientometrics, scientometric analysis, research network, publication activity, scientific potential, innovative development, South of Russia, Big South of Russia, география инноваций, пространственная наукометрия, исследовательская сеть, научные связи, публикационная активность
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://izvestia.igras.ru/jour/article/view/2718/1830; Алисов Н.В. География мировой науки // Вестн. Моск. ун-та. Серия 5. География. 1993. № 6. С. 7–16.; Бабурин В.Л., Земцов С.П. География инновационных процессов в России // Вестн. Моск. ун-та. Серия 5. География. 2013. № 5. С. 25–32.; Бабурин В.Л., Земцов С.П. Факторы патентной активности в регионах России // Мир экономики и управления. 2016. № 16 (1). С. 86–100.; Беляев Д.О., Мойсбургер П. География знания как одно из передовых направлений современной географической науки // Изв. РАН. Сер. геогр. 2011. № 2. С. 7–16.; Вольчик В.В., Маслюкова Е.В., Пантеева С.А. Исследование подходов к моделированию национальных инновационных систем // Экономические и социальные перемены: факты, тенденции, прогноз. 2021. № 14 (5). С. 135–150. https://doi.org/10.15838/esc.2021.5.77.8; Гарин Е.В. Основные факторы влияния на показатели уровня развития науки, образования, инновационной экономики // Вестн. Российского фонда фундаментальных исследований. 2018. № 3 (99). С. 100–112. https://doi.org/0.22204/2410-4639-2018-099-03-100-112; Горбанёв В.А., Кочуров Б.И. Проблемы территориального районирования России: национальные и международные аспекты // Вестн. МГИМО Ун-та. 2018. Т. 61. № 4. С. 23–54. https://doi.org/10.24833/2071-8160-2018-4-61-23-54; Дружинин А.Г. Юг России: понятийно-терминологическая концепция и территориальные реалии // Научная мысль Кавказа. 1999. № 3. С. 56–64.; Дружинин А.Г. Юг России в меняющемся геостратегическом контексте: важнейшие структурные компоненты и тренды (взгляд географа-обществоведа) // Научная мысль Кавказа. 2014. № 3 (79). С. 58–66.; Дружинин А.Г. Актуальные проблемы систематизации и унификации географической терминологии в исследованиях южно-российского регионогенеза // Научная мысль Кавказа. 2023. № 1 (113). С. 5–15.; Дружинин А.Г., Реднова И.Ф. Позиционирование регионов Юга России во взаимодействии России и Турции: внешнеторговый аспект // Южно-российский форум: экономика, социология, политология, социально-экономическая география. 2015. № 2 (11). С. 39–47.; Замятина Н.Ю. Образный рельеф России (по материалам официальных сайтов субъектов РФ) // Вестн. Евразии. 2006. № 2. С. 5–24.; Замятина Н.Ю., Пилясов А.Н. Концепция близости: зарубежный опыт и перспективы применения в России // Изв. РАН. Сер. геогр. 2017. № 3. С. 8–21. https://doi.org/10.7868/S037324441703001X; Земцов С.П., Бабурин В.Л., Баринова В.А. Как измерить неизмеримое? Оценка инновационного потенциала регионов России // Креативная экономика. 2015. № 9 (1). С. 35–52. https://doi.org/10.18334/ce.9.1.79; Земцов С.П., Баринова В.А., Мурадов А.К. Факторы региональной инновационной активности: анализ теоретических и эмпирических исследований // Инновации. 2016. № 5 (211). С. 64–73.; Земцов С.П., Смелов Ю.А. Факторы регионального развития в России: география, человеческий капитал или политика регионов // Журн. Новой экономической ассоциации. 2018. T. 40. № 4. C. 84–108. https://doi.org/10.31737/2221-2264-2018-40-4-4; Канева М.А., Унтура Г.А. Эволюция теорий и эмпирических моделей взаимосвязи экономического роста, науки и инноваций (Ч. 2) // Мир экономики и управления. 2018. № 18 (1). С. 5–17. https://doi.org/10.25205/2542-0429-2018-18-1-5-17; Корепанов Е.Н. Парадоксы в науке и инновациях // Вестн. Ин-та экономики РАН. 2019. № 1. С. 47–56. https://doi.org/10.24411/2073-6487-2019-10003; Михайлов А.С., Михайлова А.А., Хвалей Д.В. Разумный подход к развитию территориального капитала города: адаптивная политика с использованием географии знания // Вестн. Балтийского фед. ун-та им. И. Канта. Серия: Гуманитарные и общественные науки. 2020. № 2. С. 38–52.; Паникарова С.В., Власов М.В., Кузнецов П.Д. Оценка научной результативности университетов: институциональный подход // Университетское управление: практика и анализ. 2016. № 5 (105). С. 80–89. https://doi.org/10.15826/umj.2016.105.046; Пилясов А.Н., Клименко Н.А. Балтийский макрорегион: географические макроструктуры, специфика коммуникации, инновационный потенциал // Балтийский регион. 2011. № 3. С. 71–87. https://doi.org/10.5922/2074-9848-2011-3-8; Платонов В.В., Статовская Е.Ю., Статовский Д.А. Локализация инновационных процессов: за пределами концепции географической близости // Инновации. 2015. № 7 (201). С. 76–79.; Френц М., Ламберт Р. Открытые и закрытые инновации: сравнительный анализ национальных практик // Форсайт. 2019. № 2 (3). С. 16–31.; Adler P., Florida R., King K., Mellander C. The city and high-tech startups: The spatial organization of Schumpeterian entrepreneurship // Cities. 2019. Vol. 87. P. 121–130. https://doi.org/10.1016/j.cities.2018.12.013; Bathelt H., Malmberg A., Maskell P. Clusters and knowledge: Local buzz, global pipelines and the process of knowledge creation // Progress in Human Geography. 2004. Vol. 28. № 1. P. 31–56. https://doi.org/10.1191/0309132504ph469oa; Bottazzi L., Peri G. Innovation and spillovers in regions: Evidence from European patent data // European Economic Rev. 2003. Vol. 47. № 4. P. 687–710. https://doi.org/10.1016/S0014-2921(02)00307-0; Camagni R. Territorial capital, competitiveness and regional development. In: Handbook of regions and competitiveness / R. Huggins, P. Thompson (Eds.). Cheltenham: Edward Elgar Publ., 2017. P. 232–244. https://doi.org/10.4337/9781783475018.00016; Cooke P., Asheim B., Boschma R., Martin R., Schwartz D., Tödtling F. Handbook of regional innovation and growth. Cheltenham: Edward Elgar Publ., 2011. 648 p. https://doi.org/10.4337/9780857931504; De Noni I., Orsi L., Belussi F. The role of collaborative networks in supporting the innovation performances of lagging-behind European regions // Res. Policy. 2018. Vol. 47. № 1. P. 1–13. https://doi.org/10.1016/j.respol.2017.09.006; Feldman M.P., Avnimelech G. Knowledge spillovers and the geography of innovation – revisited: A 20 years’ perspective on the field on geography of innovation. In: Hand-book of research on innovation and entrepreneurship / D.B. Audretsch, O. Falck, S. Heblich, A. Lederer (Eds.). Cheltenham: Edward Elgar Publ., 2011. P. 150–160. https://doi.org/10.4337/9781849807760.00020; Gonçalves E., de Matos C.M., de Araújo I.F. Path-dependent dynamics and technological spillovers in the Brazilian regions // Applied Spatial Analysis and Policy. 2019. Vol. 12. № 3. P. 605–629. https://doi.org/10.1007/s12061-018-9259-5; Lorentzen A. Knowledge networks in local and global space // Entrepreneurship & Regional Development. 2008. Vol. 20. № 6. P. 533–545. https://doi.org/10.1080/08985620802462124; Morrison A., Rabellotti R., Zirulia L. When do global pipelines enhance the diffusion of knowledge in clusters? // Economic Geography. 2013. Vol. 89. № 1. P. 77–96. https://doi.org/10.1111/j.1944-8287.2012.01167.x; Mosconi F., D’Ingiullo D. Institutional quality and innovation: evidence from Emilia-Romagna // Economics of Innovation and New Technology. 2023. Vol. 32. № 2. P. 165–197. https://doi.org/10.1080/10438599.2021.1893140; Tödtling F., Grillitsch M., Höglinger C. Knowledge sourcing and innovation in Austrian ICT companies – how does geography matter? // Industry and Innovation. 2012. Vol. 19. № 4. P. 327–348. https://doi.org/10.1080/13662716.2012.694678; Tödtling F., Trippl M. Innovation and knowledge links in metropolitan regions: The case of Vienna. In: Metropolitan Regions. Advances in Spatial Science / J. Klaesson, B. Johansson, C. Karlsson (Eds.). Berlin, Heidelberg: Springer, 2013. P. 451–472. https://doi.org/10.1007/978-3-642-32141-2_19; Trippl M., Tödtling F., Lengauer L. Knowledge sourcing beyond buzz and pipelines: evidence from the Vienna software sector // Economic Geography. 2009. Vol. 85. № 4. P. 443–462. https://doi.org/10.1111/j.1944-8287.2009.01047.x; van den Broek J., Benneworth P., Rutten R. Institutionalization of cross-border regional innovation systems: The role of university institutional entrepreneurs // Regional Studies, Regional Science. 2019. Vol. 6. № 1. P. 55–69. https://doi.org/10.1080/21681376.2018.1562367; Zemtsov S., Kotsemir M. An assessment of regional innovation system efficiency in Russia: the application of the DEA approach // Scientometrics. 2019. Vol. 120. № 2. P. 375–404.; https://izvestia.igras.ru/jour/article/view/2718
-
2Academic Journal
المؤلفون: A. A. Mikhailova, K. A. Golovatyuk, D. I. Lagutina, A. T. Chernikova, E. Yu. Vasilieva, E. S. Bykova, T. L. Karonova, А. А. Михайлова, К. А. Головатюк, Д. И. Лагутина, А. Т. Черникова, Е. Ю. Васильева, Е. С. Быкова, Т. Л. Каронова
المساهمون: The study was carried out with the financial support of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation (Agreement No. 075-15-2022-301 dated 04/20/2022)., Исследование выполнено при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации (Соглашение № 075-152022-301 от 20.04.2022).
المصدر: Translational Medicine; Том 10, № 2 (2023); 69-76 ; Трансляционная медицина; Том 10, № 2 (2023); 69-76 ; 2410-5155 ; 2311-4495
مصطلحات موضوعية: 25(ОH)D, cholecalciferol supplementation, СOVID-19, vitamin D metabolism, терапия колекальциферолом, 1,25(ОH)2D
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/759/503; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/759/1641; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/759/1642; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/759/1643; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/759/1644; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/downloadSuppFile/759/1645; Kaufman H, Niles J, Kroll M, et al. SARS-CoV-2 positivity rates associated with circulating 25-hydroxyvitamin D levels. PLoS One. 2020;15(9):e0239252. doi:10.1371/journal.pone.0239252; Karonova T, Kudryavtsev I, Golovatyuk K, et al. Vitamin D Status and Immune Response in Hospitalized Patients with Moderate and Severe COVID-19. Pharmaceuticals (Basel). 2022;15(3):305. doi:10.3390/ph15030305; Kaya M, Pamukçu E, Yakar B. The role of vitamin D deficiency on COVID-19: a systematic review and meta-analysis of observational studies. Epidemiol Health. 2021;43:e2021074. doi:10.4178/epih.e2021074; Каронова Т.Л., Андреева А.Т., Головатюк К.А., и др. Инфицированность SARS-CoV-2 в зависимости от уровня обеспеченности витамином D. Проблемы Эндокринологии. 2021;67(5):20-28. https://doi.org/10.14341/probl12820].; Zaazouee MS, Eleisawy M, Abdalalaziz AM, et al. Hospital and laboratory outcomes of patients with COVID-19 who received vitamin D supplementation: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 2022;1-14. doi:10.1007/s00210-022-02360-x; Ling SF, Broad E, Murphy R, et al. High-Dose Cholecalciferol Booster Therapy is Associated with a Reduced Risk of Mortality in Patients with COVID-19: A Cross-Sectional Multi-Centre Observational Study. Nutrients. 2020;12(12):3799. doi:10.3390/nu12123799; Annweiler G, Corvaisier M, Gautier J, et al. Vitamin D Supplementation Associated to Better Survival in Hospitalized Frail Elderly COVID-19 Patients: The GERIA-COVID Quasi-Experimental Study. Nutrients. 2020;12(11):3377. doi:10.3390/nu12113377, 12, 3377.;].; Pike JW, Meyer MB, Lee SM, et al. The vitamin D receptor: contemporary genomic approaches reveal new basic and translational insights. J Clin Invest.2017;127(4):1146-1154. doi:10.1172/JCI88887; Cantorna MT, Snyder L, Lin YD, et al. Vitamin D and 1,25(OH)2D regulation of T cells. Nutrients. 2015;7(4):3011-21. doi:10.3390/nu7043011.; Van Etten E, Mathieu C. Immunoregulation by 1,25-dihydroxyvitamin D3: basic concepts. J Steroid Biochem Mol Biol. 2005;97(1-2):93-101. doi:10.1016/j.jsbmb.2005.06.002; Prietl B, Treiber G, Pieber TR, Amrein K. Vitamin D and immune function. Nutrients. 2013;5(7):2502-21. doi:10.3390/nu5072502. PMID: 23857223; Hansdottir S, Monick MM, Hinde SL, et al. Respiratory epithelial cells convert inactive vitamin D to its active form: potential effects on host defense. J Immunol. 2008;181(10):7090-7099. doi:10.4049/jimmunol.181.10.7090; Kreutz M, Andreesen R, Krause SW, yeah al. 1,25-dihydroxyvitamin D3 production and vitamin D3 receptor expression are developmentally regulated during differentiation of human monocytes into macrophages. Blood. 1993;82(4):1300-1307.; Barlow PG, Svoboda P, Mackellar A, et al. Antiviral activity and increased host defense against influenza infection elicited by the human cathelicidin LL-37. PLoS One. 2011;6(10):e25333. doi:10.1371/journal.pone.0025333; Zelzer S, Goessler W, Herrmann M. Measurement of vitamin D metabolites by mass spectrometry, an analytical challenge. J Lab Precis Med. 2018; 3:99–99. https://doi.org/10.21037/jlpm.2018.11.06; Karonova TL, Golovatyuk KA, Kudryavtsev IV, et al. Effect of Cholecalciferol Supplementation on the Clinical Features and Inflammatory Markers in Hospitalized COVID-19 Patients: A Randomized, Open-Label, Single-Center Study. Nutrients. 2022;14(13):2602. doi:10.3390/nu14132602; Головатюк К.А., Каронова Т.Л., Михайлова А.А., и др. Возможности применения колекальциферола в комплексной терапии в остром периоде COVID-19. Профилактическая медицина.2022;25(12):106–113] https://doi.org/10.17116/profmed202225121106; Povaliaeva A, Bogdanov V, Pigarova E, et al. Impaired Vitamin D Metabolism in Hospitalized COVID-19 Patients. Pharmaceuticals (Basel). 2022;15(8):906. doi:10.3390/ph15080906.; Skversky AL, Kumar J, Abramowitz MK, et al. Association of glucocorticoid use and low 25-hydroxyvitamin D levels: results from the National Health and Nutrition Examination Survey (NHANES): 2001-2006. J Clin Endocrinol Metab. 2011; 96(12):3838-45. doi:10.1210/jc.2011-1600.; Dhawan P, Christakos S. Novel regulation of 25-hydroxyvitamin D3 24-hydroxylase (24(OH)ase) transcription by glucocorticoids: cooperative effects of the glucocorticoid receptor, C/EBP beta, and the Vitamin D receptor in 24(OH)ase transcription. J Cell Biochem. 2010;110(6):1314-23. doi:10.1002/jcb.22645.; Akeno N, Matsunuma A, Maeda T, et al. Regulation of vitamin D-1alpha-hydroxylase and -24-hydroxylase expression by dexamethasone in mouse kidney. J Endocrinol. 200;164(3):339-48. doi:10.1677/joe.0.1640339.; Chapuy MC, Chapuy P, Meunier PJ. Calcium and vitamin D supplements: effects on calcium metabolism in elderly people. Am J Clin Nutr. 1987;46(2):324-328. doi:10.1093/ajcn/46.2.324; Barger-Lux MJ, Heaney RP, Dowell S, et al. Vitamin D and its major metabolites: serum levels after graded oral dosing in healthy men. Osteoporos Int. 1998;8(3):222-230. doi:10.1007/s001980050058.; Seamans KM, Cashman KD. Existing and potentially novel functional markers of vitamin D status: a systematic review. Am J Clin Nutr. 2009;89(6):1997S-2008S. doi:10.3945/ajcn.2009.27230D; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/759
-
3Academic Journal
المؤلفون: T. L. Karonova, I. N. Korsakov, A. A. Mikhailova, D. I. Lagutina, A. T. Chernikova, М. A. Vashukova, M. A. Smolnikova, D. A. Gusev, A. O. Konradi, E. V. Shlyakhto, Т. Л. Каронова, И. Н. Корсаков, А. А. Михайлова, Д. И. Лагутина, А. Т. Черникова, М. А. Вашукова, М. В. Смольникова, Д. А. Гусев, А. О. Конради, Е. В. Шляхто
المساهمون: Исследование выполнено при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации (Соглашение № 075-15-2022-301 от 20.04.2022 г.).
المصدر: Journal Infectology; Том 15, № 3 (2023); 60-66 ; Журнал инфектологии; Том 15, № 3 (2023); 60-66 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2023-15-3
مصطلحات موضوعية: SARS-CoV-2, machine learning, mathematical model, decision support system, машинное обучение, математическая модель, система поддержки принятия решений
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1542/1086; Стопкоронавирус: Официальная информация о коронавирусе в России: [Электронный ресурс]. URL: https://стопкоронавирус.рф/information. (Дата обращения: 26.04.2023).; Смирнов, А.Ю. Анализ смертности от коронавирусной инфекции в России / А.Ю. Смирнов // Народонаселение. – 2021 – T. 24, № 2 – C. 76–86.; Естественное движение населения в разрезе субъектов Российской Федерации за апрель 2023 года: [Электронный ресурс] // Росстат. URL: https://rosstat.gov.ru/storage/mediabank/EDN_04-2023.html. (Дата обращения: 26.04.2023).; Haldane V. et al. Health systems resilience in managing the COVID-19 pandemic: lessons from 28 countries //Nature Medicine. – 2021. – Т. 27. – №. 6. – С. 964-980.; Parra P.N.B, Atanasov V.A., Meurer J., et al. Data and Methodology Documentation for a COVID-19 Risk Calculator: Mortality Rates and Loss of Life Expectancy. SSRN; 2021; doi:10.2139/ssrn.3795802.; Michałowska J., Czernia D. Mask vs. No Mask Calculator [Электронный ресурс]// Omni Calculator. URL: https://www.omnicalculator.com/health/mask-vs-no-mask. (Дата обращения: 06.06. 2023).; Jehi L. et al. Development and validation of a model for individualized prediction of hospitalization risk in 4,536 patients with COVID-19 //PloS one. – 2020. – Т. 15. – №. 8. – С. e0237419.; Методические рекомендации ФАР «Анестезиолого-реанимационное обеспечение пациентов с новой коронавирусной инфекцией COVID-19», 2020.; Clinical management of COVID-19: interim guidance, 2020. [Электронный ресурс]// World Health Organization. URL: https://apps.who.int/iris/handle/10665/332196. (Дата обращения: 06.06.2023); Попова, К.Н. Шкала NEWS2 в практике работы инфекционного госпиталя для больных COVID-19. Внедрение и результаты / К.Н. Попова [и др.] // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2021. – Т. 18, № 1. – С. 7–16. doi:10.21292/2078-5658-2021-18-1-7-16; Корсаков, И.Н. Прогнозирование летального исхода у пациентов с установленным диагнозом COVID-19 / И.Н. Корсаков [и др.] // Научно-технический вестник информационных технологий, механики и оптики. – 2022. – Т. 22, № 5. – С. 970–981. doi:10.17586/2226-1494-2022-22-5-970-981; Komissarov A. B. et al. Genomic epidemiology of the early stages of the SARS-CoV-2 outbreak in Russia //Nature communications. – 2021. – Т. 12. – №. 1. – С. 649.; Kursa M. B., Rudnicki W. R. Feature selection with the Boruta package // Journal of statistical software. – 2010. – Т. 36. – С. 1-13.; Veldhuis L. et al. Early warning scores to assess the probability of critical illness in patients with COVID-19 // Emergency Medicine Journal. – 2021. – Т. 38. – №. 12. – С. 901-905.; Bakin E. A. et al. A precise score for the regular monitoring of COVID-19 patients condition validated within the first two waves of the pandemic // medRxiv. – 2021. – С. 2021.02. 09.21249859.; Калькулятор «Прогноз исходов острого периода COVID-19». Результаты международного регистра «Анализ динамики коморбидных заболеваний у пациентов, перенесших инфицирование SARS-CoV-2 (АКТИВ SARS-CoV-2)» [Электронный ресурс]// Евразийская ассоциация терапевтов. – URL : https://euat.ru/calc/calc2022. (Дата обращения: 06.06.2023).; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1542
-
4Academic Journal
المؤلفون: V. A. Malko, G. N. Bisaga, M. P. Topuzova, A. I. Vlasenko, O. A. Shcherbakova, A. G. Mikheeva, A. A. Mikhailova, D. I. Lagutina, T. L. Karonova, T. M. Alekseeva, В. А. Малько, Г. Н. Бисага, М. П. Топузова, А. И. Власенко, О. А. Щербакова, А. Г. Михеева, А. А. Михайлова, Д. И. Лагутина, Т. Л. Каронова, Т. М. Алексеева
المصدر: The Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 38, № 2 (2023); 198-208 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 38, № 2 (2023); 198-208 ; 2713-265X ; 2713-2927
مصطلحات موضوعية: постковидный синдром, coronavirus disease 2019, demyelinating diseases, Post-COVID syndrome, long COVID, новая коронавирусная инфекция, демиелинизирующие заболевания
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/1804/827; Wu Y., Xu X., Chen Z., Duan J., Hashimoto K., Yang L. et al. Nervous system involvement after infection with COVID-19 and other coronaviruses.Brain, Behav. Immun. 2020;8718–22. DOI:10.1016/j.bbi.2020.03.031.; Lima M., Siokas V., Aloizou A.-M., Liampas I., Mentis A.-F.A., Tsouris Zet al. Unraveling the possible routes of SARS-COV-2 invasion into the central nervous system. Curr. Treat Options Neurol. 2020;22(11):37DOI: 10.1007/s11940-020-00647-z.; Bsteh G., Assar H., Gradl C., Heschl B., Hiller M. S., Krajnc N. et al. Long-term outcome after COVID-19 infection in multiple sclerosis: a nation-wide multicenter matched-control study. Eur. J. Neurol. 2022:10.1111/ene.15477. DOI:10.1111/ene.15477.; Pugliatti M., Berger T., Hartung H.-P., Oreja-Guevara C., Bar-Or A. Multiple sclerosis in the era of COVID-19: disease course, DMTs and SARSCoV2 vaccinations. Current Opinion in Neurology. 2022;35(3):319–327.DOI:10.1097/WCO.0000000000001066.; Sormani M.P., De Rossi N., Schiavetti I., Carmisciano L., Cordioli C.,Moiola L. et al. Disease-modifying therapies and coronavirus disease 2019 severity in multiple sclerosis. Ann. Neurol. 2021;89(4):780–789.DOI:10.1002/ana.26028.; Bsteh G., Hegen H., Traxler G., Krajnc N., Leutmezer F., Di Pauli F. et al.Comparing humoral immune response to SARS-CoV2 vaccines in people with multiple sclerosis and healthy controls: An Austrian prospective multicenter cohort study. Eur. J. Neurol. 2022;29(5):1538–1544. DOI:10.1111/ene.15265.; Nalbandian A., Sehgal K., Gupta A., Madhavan M.V., McGroder C., Stevens J.S. et al. Post-acute COVID-19 syndrome. Nat. Med. 2021;27(4):601–615. DOI:10.1038/s41591-021-01283-z.; Bell M.L., Catalfamo C.J., Farland L.V., Ernst K.C., Jacobs E.T., Klimentidis Y.C. et al. Post-acute sequelae of COVID-19 in a non-hospitalized cohort: Results from the Arizona CoVHORT. PLoS One. 2021;16(8):e0254347. DOI:10.1371/journal.pone.0254347.; Garjani A., Middleton R.M., Nicholas R., Evangelou N. Recovery From COVID-19 in multiple sclerosis: a prospective and longitudinal cohort study of the United Kingdom Multiple Sclerosis Register. Neurol. Neuroimmunol. Neuroinflamm. 2021;9(1)e1118. DOI:10.1212/NXI.0000000000001118.; Czarnowska A., Kapica-Topczewska K., Zajkowska O., AdamczykSowa M., Kubicka-Bączyk K., Niedziela N. et al. Symptoms after COVID-19 infection in individuals with multiple sclerosis in Poland. J. Clin. Med. 2021;10(22):5225. DOI:10.3390/jcm10225225.; Salter A., Fox R.J., Newsome S.D., Halper J., Li D.K.B., Kanellis P. et al.Outcomes and risk factors associated with SARS-CoV-2 infection in a North American registry of patients with multiple sclerosis. JAMA Neurol. 2021;78(6):699–708. DOI:10.1001/jamaneurol.2021. 0688.; Klineova S., Harel A., Straus Farber R., DeAngelis T., Zhang Y,Hentz R. et al. Outcomes of COVID-19 infection in multiple sclerosis and related conditions: One-year pandemic experience of the multicenter New York COVID-19 Neuroimmunology Consortium (NYCNIC). Mult. Scler. Relat. Disord. 2021;55:103153. DOI:10.1016/j.msard.2021.103153.; Toscano S., Chisari C.G., Patti F. Multiple sclerosis, COVID-19 and vaccines: making the point. Neurol. Ther. 2021;10(2):627–649. DOI:10.1007/s40120-021-00288-7.; Kelly H., Sokola B., Abboud H. Safety and efficacy of COVID-19 vaccines in multiple sclerosis patients. J. Neuroimmunol. 2021;356:577599. DOI:10.1016/j.jneuroim.2021.577599.; Dreyer-Alster S., Menascu S., Mandel M., Shirbint E., Magalashvili D.,Dolev M. et al. COVID-19 vaccination in patients with multiple sclerosis: Safety and humoral efficacy of the third booster dose. J. Neurol. Sci.2022;434:120155. DOI:10.1016/j.jns.2022.120155.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/1804
-
5Academic Journal
المؤلفون: M. A. Zorkaltsev, V. D. Zavadovskaya, T. V. Saprina, M. A. Zamyshevskaya, V. D. Udodov, A. V. Shestakov, A. A. Mikhailova, Yu. N. Loyko, N. N. Musina, М. А. Зоркальцев, В. Д. Завадовская, Т. В. Саприна, М. А. Замышевская, В. Д. Удодов, А. В. Шестаков, А. А. Михайлова, Ю. Н. Лойко, Н. Н. Мусина
المساهمون: Источник финансирования. Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ в рамках научного проекта № 20-115-50333
المصدر: Bulletin of Siberian Medicine; Том 21, № 3 (2022); 166-180 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 21, № 3 (2022); 166-180 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2022-21-3
مصطلحات موضوعية: молекулярная визуализация, diabetic foot syndrome, osteomyelitis, angiosome, perfusion, microbiota, molecular imaging, синдром диабетической стопы, остеомиелит, ангиосома, перфузия, микробиота
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4919/3266; Lauri C., Leone A., Cavallini M., Signore A., Giurato L., Uccioli L. Diabetic foot infections: the diagnostic challenges. J. Clin. Med. 2020;9(6):1779. DOI:10.3390/jcm9061779.; Llewellyn A., Kraft J., Holton C., Harden M., Simmonds M. Imaging for detection of osteomyelitis in people with diabetic foot ulcers: A systematic review and meta-analysis. Eur. J. Radiol. 2020;131:109215. DOI:10.1016/j.ejrad.2020.109215.; Chantelaua E.A., Antoniou S., Zweck B., Haage P. Follow up of MRI bone marrow edema in the treated diabetic Charcot foot – a review of patient charts. Diabet. Foot Ankle. 2018;9(1):1466611. DOI:10.1080/2000625X.2018.1466611.; Ruiz-Bedoya C.A., Gordon O., Mota F. et al. Molecular imaging of diabetic foot infections: new tools for old questions. Int. J. Mol. Sci. 2019;20(23):5984. DOI:10.3390/ijms20235984.; Massel D.H., Jenkins N.W., Rush A.J. 3rd et al. MRI and clinical risk indicators for osteomyelitis. Foot and Ankle Specialist. 2014;14(5):415–426. DOI: 0.1177/1938640020921572.; Duryea D., Bernard S., Flemming D., Walker E., French C. Outcomes in diabetic foot ulcer patients with isolated T2 marrow signal abnormality in the underlying bone: should the diagnosis of «osteitis» be changed to «early osteomyelitis»? Skeletal Radiol. 2017;46(10):1327–1333. DOI:10.1007/s00256-017-2666-x.; Jang Y.H., Park S., Park Y.U., Kwack K.S., Jeon S.W., Lee H.Y. Multivariate analyses of MRI findings for predicting osteomyelitis of the foot in diabetic patients. Acta Radiol. 2020;61(9):1205–1212. DOI:10.1177/0284185119897351.; Kotecha H.M., Lo H.S., Vedantham S., Shin H., Cerniglia C.A. Abbreviated MRI of the foot in patients with suspected osteomyelitis. Emerg. Radiol. 2020;27(1):9–16. DOI:10.1007/s10140-019-01722-y.; La Fontaine J., Bhavan K., Jupiter D., Lavery L.A., Chhabra A. Magnetic resonance imaging of diabetic foot osteomyelitis: imaging accuracy in biopsy-proven disease. J. Foot Ankle Surg. 2021;60(1):17–20. DOI:10.1053/j.jfas.2020.02.012; Jbara M., Gokli A., Beshai S. et al. Does obtaining an initial magnetic resonance imaging decrease the reamputation rates in the diabetic foot? Diabet. Foot Ankle. 2016;7:31240. DOI:10.3402/dfa.v7.31240.; Lauri C., Glaudemans A.W.J.M., Signore A. Leukocyte imaging of the diabetic foot. Curr. Pharm. Des. 2018;24(12):1270– 1276. DOI:10.2174/1381612824666180227094116.; Diez A.I.G., Fuster D., Morata L. et al. Comparison of the diagnostic accuracy of diffusion-weighted and dynamic contrast-enhanced MRI with 18F-FDG PET/CT to differentiate osteomyelitis from Charcot neuro-osteoarthropathy in diabetic foot. Eur. J. Radiol. 2020;132:109299. DOI:10.1016/j.ejrad.2020.109299.; Çildağ M.B., Ertuğrul M.B., Köseoğlu Ö.F., Armstrong D.G. A Factor increasing venous contamination on bolus chase three-dimensional magnetic resonance imaging: Charcot neuroarthropathy. J. Clin. Imaging Sci. 2018;8:13. DOI:10.4103/jcis.JCIS_77_17.; Uccioli L., Meloni M., Izzo V., Giurato L., Merolla S., Gandini R. Critical limb ischemia: current challenges and future prospects. Vasc. Health Risk Manag. 2018;14:63–74. DOI:10.2147/VHRM.S125065.; Zamyshevskaya M., Zavadovskaya V., Zorkaltsev M., Udodov V., Grigorev E. 3D DCE-MRA of pedal arteries in patients with diabetes mellitus. Journal of Physics Conference Series. 2016;677(1):012010. DOI:10.1088/17426596/677/1/012010; Liao D., Xie L., Han Y. et al. Dynamic contrast-enhanced magnetic resonance imaging for differentiating osteomyelitis from acute neuropathic arthropathy in the complicated diabetic foot. Skeletal Radiol. 2018;47(10):1337–1347. DOI:10.1007/s00256-018-2942-4.; Zhang N., Fan Z., Luo N. et al. Noncontrast MR angiography (MRA) of infragenual arteries using flow-sensitive dephasing (FSD)-prepared steady-state free precession (SSFP) at 3.0 Tesla: comparison with contrast-enhanced MRA. J. Magn. Reson. Imaging. 2016;43(2):364–372. DOI:10.1002/jmri.25003.; Lam A., Perchyonok Y., Ranatunga D. et al. Accuracy of non-contrast quiescent-interval single-shot and quiescent-interval single-shot arterial spin-labelled magnetic resonance angiography in assessment of peripheral arterial disease in a diabetic population. J. Med. Imaging Radiat. Oncol. 2020;64(1):35–43. DOI:10.1111/1754-9485.12987.; Abdel Razek A.A.K., Samir S. Diagnostic performance of diffusion-weighted MR imaging in differentiation of diabetic osteoarthropathy and osteomyelitis in diabetic foot. Eur. J. Radiol. 2017;89:221–225. DOI:10.1016/j.ejrad.2017.02.015.; Eren M.A., Karakaş E., Torun A.N., Sabuncu T. The Clinical value of diffusion-weighted magnetic resonance imaging in diabetic foot infection. J. Am. Podiatr. Med. Assoc. 2019;109(4):277–281. DOI:10.7547/17-066.; Lauri C., Tamminga M., Glaudemans A.W.J.M. et al. Detection of Osteomyelitis in the Diabetic Foot by Imaging Techniques: A Systematic Review and Meta-analysis Comparing MRI, White Blood Cell Scintigraphy, and FDG-PET. Diabetes Care. 2017;40(8):1111–1120. DOI:10.2337/dc17-0532.; Signore A., Jamar F., Israel O., Buscombe J., Martin-Comin J., Lazzeri E. Clinical indications, image acquisition and data interpretation for white blood cells and anti-granulocyte monoclonal antibody scintigraphy: an EANM procedural guideline. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2018;45(10):1816–1831. DOI:10.1007/s00259-018-4052-x.; Lauri C., Glaudemans A.W.J.M., Campagna G. et al. Comparison of White Blood Cell Scintigraphy, FDG PET/CT and MRI in Suspected Diabetic Foot Infection: Results of a Large Retrospective Multicenter Study. J. Clin. Med. 2020;9(6):1645. DOI:10.3390/jcm9061645.; Ahmed N., Fatima S., Saeed M.A., Zia M., Irfan Ullah J. 99m Tc-ceftizoxime: synthesis, characterization and its use in diagnosis of diabetic foot osteomyelitis. J. Med. Imaging Radiat. Oncol. 2019;63(1):61–68. DOI:10.1111/1754-9485.12841.; Ankrah A.O., Klein H.C., Elsinga P.H. New imaging tracers for the infected diabetic foot (nuclear and optical imaging). Curr. Pharm. Des. 2018;24(12):1287–1303. DOI:10.2174/1381612824666180227094454.; Vouillarmet J., Moret M., Morelec I., Michon P., Dubreuil J. Application of white blood cell SPECT/CT to predict remission after a 6 or 12 week course of antibiotic treatment for diabetic foot osteomyelitis. Diabetologia. 2017;60(12):2486– 2494. DOI:10.1007/s00125-017-4417-x.; Jeffcoate W.J. Osteomyelitis of the foot: non-surgical management, SPECT/CT scanning and minimizing the duration of antibiotic use. Diabetologia. 2017;60(12):2337–2340. DOI:10.1007/s00125-017-4429-6.; Ahluwalia R., Bilal A., Petrova N. et al. The role of bone scintigraphy with SPECT/CT in the characterization and early diagnosis of stage 0 Charcot neuroarthropathy. J. Clin. Med. 2020;9(12):4123. DOI:10.3390/jcm9124123.; Yang H., Zhuang H., Rubello D., Alavi A. Mild-to-moderate hyperglycemia will not decrease the sensitivity of 18F-FDG PET imaging in the detection of pedal osteomyelitis in diabetic patients. Nucl. Med. Commun. 2016;37(3):259–262. DOI:10.1097/MNM.0000000000000434.; Glaudemans A.W.J.M., Jutte P.C., Cataldo M.A. et al. Consensus document for the diagnosis of peripheral bone infection in adults: a joint paper by the EANM, EBJIS, and ESR (with ESCMID endorsement). Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2019;46(4):957–970. DOI:10.1007/s00259-019-4262-x.; Удодов В.Д., Зоркальцев М.А., Завадовская М.А. и др. Гибридная ОФЭКТ/МРТ в диагностике синдрома диабетической стопы. Медицинская визуализация. 2016;2:36–42.; Meacock L., Petrova N.L., Donaldson A. et al. Novel semi quantitative bone marrow oedema score and fracture score for the magnetic resonance imaging assessment of the active Charcot foot in diabetes. J. Diabetes Res. 2017;2017:8504137. DOI:10.1155/2017/8504137.; Alvelo J.L., Papademetris X., Mena-Hurtado C. et al. Radiotracer imaging allows for noninvasive detection and quantification of abnormalities in angiosome foot perfusion in diabetic patients with critical limb ischemia and nonhealing wounds. Circ. Cardiovasc. Imaging. 2018;11(5):e006932. DOI:10.1161/CIRCIMAGING.117.006932; Mahendra M., Singh R. Diagnostic accuracy and surgi cal utility of MRI in complicated diabetic foot. J. Clin. Diagn. Res. 2017;11(7):RC01–RC04. DOI:10.7860/JCDR/2017/25902.10154.; Chou T.H., Atway S.A., Bobbey A.J., Sarac T.P., Go M.R., Stacy M.R. SPECT/CT imaging a noninvasive approach for evaluating serial changes in angiosome foot perfusion in critical limb ischemia. Adv. Wound Care (New Rochelle). 2020;9(3):103–110. DOI:10.1089/wound.2018.0924; Chen H.J., Roy T.L., Wright G.A. Perfusion measures for symptom severity and differential outcome of revascularization in limb ischemia: preliminary results with arterial spin labeling reactive hyperemia. J. Magn. Reson. Imaging. 2018;47(6):1578–1588. DOI:10.1002/jmri.25910.; Zheng J., Muccigrosso D., Zhang X. et al. Oximetric angiosome imaging in diabetic feet. J. Magn. Reson. Imaging. 2016;44(4):940–946. DOI:10.1002/jmri.25220.; Edalati M., Hastings M.K., Muccigrosso D. et al. Intravenous contrast-free standardized exercise perfusion imag ing in diabetic feet with ulcers. J. Magn. Reson. Imaging. 2019;50(2):474–480. DOI:10.1002/jmri.26570.; Stacy M.R., Qiu M., Papademetris X. et al. Application of BOLD Magnetic Resonance Imaging for Evaluating Regional Volumetric Foot Tissue Oxygenation: A Feasibility Study in Healthy Volunteers. Eur. J. Vasc. Endovasc. Surg. 2016;51(5):743–749. DOI:10.1016/j.ejvs.2016.02.008.; Forsythe R.O., Apelqvist J., Boyko E.J. et al. Performance of Prognostic Markers in the Prediction of Wound Hea ling or Amputation among Patients with Foot Ulcers in Diabetes: A Systematic Review. Diabetes/Metabolism Research and Reviews. 2020;36(Suppl.1):e3278. DOI:10.1002/dmrr.3278.; Lung C.W., Wu F.L., Liao F., Pu F., Fan Y. et al. Emerg ing technologies for the prevention and management of diabetic foot ulcers. J. Tissue Viability. 2020;29(2):61–68. DOI:10.1016/j.jtv.2020.03.003.; Golledge J., Fernando M., Lazzarini P. et al. The potential role of sensors, wearables and telehealth in the remote management of diabetes-related foot disease. Sensors. 2020;20(16):4527. DOI:10.3390/s20164527.; Bus S.A., Lavery L.A., Monteiro-Soares M. et al. Guidelines on the prevention of foot ulcers in persons with diabetes (IWGDF 2019 update). Diabetes Metab. Res. Rev. 2020;36 (Suppl.1):e3269. DOI:10.1002/dmrr.3269.; Lung C.W., Hsiao-Wecksler E.T., Burns S., Lin F., Jan Y.K. Quantifying dynamic changes in plantar pressure gradient in diabetics with peripheral neuropathy. Front Bioeng Biotechnol. 2016;4:54. DOI:10.3389/fbioe.2016.00054.; Bus S.A., Maas J.C., Otterman N.M. Lower-extremity dynamics of walking in neuropathic diabetic patients who wear a forefoot-offloading shoe. Clin. Biomech. (Bristol, Avon). 2017;50:21–26. DOI:10.1016/j.clinbiomech.2017.10.003; Abbott C.A., Chatwin K.E., Foden P. et al. Innovative intelligent insole system reduces diabetic foot ulcer recurrence at plantar sites: a prospective, randomised, proof-of-con cept study. Lancet Digit Health. 2019;1(6):e308–e318. DOI:10.1016/S2589-7500(19)30128-1.; Fernando M.E., Crowther R.G., Lazzarini P.A. et al. Gait in people with nonhealing diabetes-related plantar ulcers. Phys. Ther. 2019;99(12):1602–1615. DOI:10.1093/ptj/pzz119.; Brodie M.A., Okubo Y., Annegarn J., Wieching R., Lord S.R., Delbaere K. Disentangling the health benefits of walking from increased exposure to falls in older people using remote gait monitoring and multi-dimensional analysis. Physiol. Meas. 2017;38(1):45–62. DOI:10.1088/1361-6579/38/1/45; Lee S.H., Lee H.J., Chang W.H. et al. Gait performance and foot pressure distribution during wearable robot-assisted gait in elderly adults. J. Neuroeng. Rehabil. 2017;14(1):123. DOI:10.1186/s12984-017-0333-z.; Kang S., Cho H., Jeon D. et al. A Matrix metalloproteinase sensing biosensor for the evaluation of chronic wounds. Bio. Chip. J. 2019;13:323–332. DOI:10.1007/s1206-019-3403-4.; Luanraksa S., Jindatanmanusan P., Boonsiri T., Nimmanon T., Chaovanalikit T., Arnutti P. An MMP/TIMP ratio scoring system as a potential predictive marker of diabetic foot ulcer healing. J. Wound Care. 2018;27(12):849–855. DOI:10.12968/jowc.2018.27.12.849.; Krisp C., Jacobsen F., McKay M.J., Molloy M.P., Steinstraesser L., Wolters D.A. Proteome analysis reveals antiangiogenic environments in chronic wounds of diabetes mellitus type 2 patients. Proteomics. 2013;13(17):2670–2681. DOI:10.1002/pmic.201200502.; Jones J.I., Nguyen T.T., Peng Z., Chang M. Targeting MMP-9 in diabetic foot ulcers. Pharmaceuticals (Basel). 2019;12(2):79. DOI:10.3390/ph12020079.; Ramirez-Acuña J.M., Cardenas-Cadena S.A., Marquez Salas P.A. et al. Diabetic foot ulcers: current advances in antimicrobial therapies and emerging treatments. Antibiotics (Basel). 2019;8(4):193. DOI:10.3390/antibiotics8040193.; Shao M., Hussain Z., Thu H.E. et al. Emerging trends in therapeutic algorithm of chronic wound healers: recent advances in drug delivery systems, concepts-to-clinical application and future prospects. Critical Reviews in Therapeutic Drug Carrier Systems.2017;34(5):387–452. DOI:10.1615/critrevtherdrugcarriersyst.2017016957.; Jneid J., Cassir N., Schuldiner S. et al. Exploring the microbiota of diabetic foot infections with culturomics. Front Cell Infect. Microbiol. 2018;8:282. DOI:10.3389/fcimb.2018.00282.; Malone M., Johani K., Jensen S.O. et al. Next generation DNA sequencing of tissues from infected diabetic foot ulcers. eBioMedicine. 2017;21:142–149. DOI:10.1016/j.ebiom.2017.06.026.; Park J.U., Oh B., Lee J.P., Choi M.H., Lee M.J., Kim B.S. Influence of microbiota on diabetic foot wound in comparison with adjacent normal skin based on the clinical features. Biomed. Res. Int. 2019;2019:7459236. DOI:10.1155/2019/7459236.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4919
-
6Academic Journal
المؤلفون: E. V. Grigoryev, A. A. Mikhailova, D. L. Shukevich, G. P. Plotnikov, A. S. Radivilko, V. G. Matveeva, Е. В. Григорьев, А. А. Михайлова, Д. Л. Шукевич, Г. П. Плотников, А. С. Радивилко, В. Г. Матвеева
المصدر: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 8, № 2 (2019); 116-124 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 8, № 2 (2019); 116-124 ; 2587-9537 ; 2306-1278 ; 10.17802/2306-1278-2019-8-2
مصطلحات موضوعية: Фенотип хронического критического пациента, Critical conditions, Chronic critically ill patient phenotype, Критические состояния
وصف الملف: application/pdf
Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/569/417; Gill T.M., Gahbauer E.A., Han L., Allore H.G. Trajectories of disability in the last year of life. N Engl J Med. 2010;362(13):1173–80. doi:10.1056/NEJMoa0909087; Mehlhorn J., Freytag A., Schmidt K., Brunkhorst F.M., Graf J., Troitzsch U. et al. Rehabili-tation interventions for postintensive care syndrome: a systematic review. Crit Care Med. 2014;42(5):1263–71. doi:10.1097/CCM.0000000000000148; Griffiths J., Hatch R.A., Bishop J., Morgan K., Jenkinson C., Cuthbertson B.H. et al.An ex-ploration of social and economic outcome and associated healthrelatedquality of life after critical illness in general intensive care unit survivors: a 12-month followup study. Crit Care. 2013;17(3):R100. doi:10.1186/cc12745; Angus D.C., Carlet J., 2002 Brussels Roundtable Participants. Survivingintensive care: a report from the 2002 Brussels Roundtable. Intensive Care Med. 2003;29(3):368–77. doi:10.1007/s00134-002-1624-8; Барбараш Л.С., Попков А.Н., Херасков В.Ю., Плотников Г.П., Шукевич Д.Л., Григорьев Е.В. Эффективность заместительной почечной терапии при кардиогенном шоке, осложненном полиорганной недостаточностью. Общая реаниматология 2011, 7 (5): 32-35.doi:10.15360/1813-9779-2011-5-32.; Bellomo R., Kellum J.A., Ronco C. Acute kidney injury. Lancet. 2012;380:756–66.doi:10.1016/S0140-6736(11)61454-2; Payen D., Lukaszewicz A.C., Legrand M., Gayat E., Faivre V., Megarbane B. et al. A multi-centre study of acute kidney injury in severe sepsis and septic shock: association with in-flammatory phenotype and HLA genotype. PLoS One. 2012;7:e35838. doi:10.1371/journal.pone.0035838; Herridge M.S. Recovery and long-term outcome in acute respiratory distress syndrome. Crit Care Clin. 2011 Jul;27(3):685-704. doi:10.1016/j.ccc.2011.04.003.; Hill A.D., Fowler R.A., Pinto R., Herridge M.S., Cuthbertson B.H., Scales D.C. Long-term outcomes and healthcare utilization following critical illness-a population-based study. Crit Care. 2016 Mar 31;20:76. doi:10.1186/s13054-016-1248-y.; Iwashyna T.J., Viglianti E.M. Patient and PopulationLevel Approaches to Persistent Critical Illness and Prolonged Intensive Care Unit Stays. Crit Care Clin. 2018 Oct;34(4):493500. doi:10.1016/j.ccc.2018.06.001.; Kahn J. M., Werner R. M., Carson,S. S., Iwashyna, T. J. Variation in Long-Term Acute Care Hospital Use After Intensive Care. Medical Care Research and Review. 2012; 69(3), 339–350. doi:10.1177/1077558711432889; Григорьев Е.В., Матвеева В.Г., Шукевич Д.Л., Радивилко А.С., Великанова Е.А., Ханова М.Ю. Индуцированная иммуносупрессия в критических состояниях: диагности-ческие возможности в клинический практике. Бюллетень сибирской медицины 2019, 18(1): 18-30. doi:10.20538/1682-0363-2019-18-1.; Yang T., Li Z., Jiang L., Wang Y., Xi X. Risk factors for intensive care unit-acquired weak-ness: A systematic review and meta-analysis. Acta Neurol Scand. 2018 Aug;138(2):104-114. doi:10.1111/ane.12964. Epub 2018 May 29.doi:10.1111/ane.12964; Kaneki M. Metabolic inflammatory complex in sepsis: septic cachexia as a novel therapeu-tic target. Shock. 2017 Dec;48(6):600-609. doi:10.1097/SHK.0000000000000906; Chiumello D., Coppola S., Froio S., Gotti M. What's Next After ARDS: Long-Term Out-comes. Respiratory Care May 2016, 61 (5) 689-699; doi:10.4187/respcare.04644; Bagshaw S.M., Stelfox H.T., McDermid R.C., Rolfson D.B., Tsuyuki R.T., Baig N. et al. Association between frailty and short- and long-term outcomes among critically ill patients: a multicentre prospective cohort study. CMAJ. 2014;186(2):E95–102.; Forni L. G., Darmon M., Ostermann M., Oudemans-van Straaten H. M, Pettilä V., Prowle J. R., Schetz M., Joannidis M. Renal recovery after acute kidney injury. Intensive Care Med. 2017; 43(6): 855–866. doi:10.1007/s00134-017-4809-x; Annane D., Sharshar T. Cognitive decline after sepsis. Lancet Respir Med. 2015 Jan;3(1):61-9. doi:10.1016/S22132600(14)70246-2.; Пономаренко Г.Н., Щеголев А.В. Нейрореанимационная реабилитация – «понятийная смута» (перспективы системного развития ранних восстановительных мероприятий. Физиотерапия, бальнеология и реабилитация. 2015, 14 (5): 40-45.; Белкин А.А., Алашеев А.М., Левит А.Л., Халин А.В. Обоснование реанимационной реабилитации в профилактике и лечении синдрома «после интенсивной терапии» (ПИТ-синдром). Вестник восстановительной медицины. 2014; 1: 37-43.; Azoulay E., Vincent J.L., Angus D.C., Arabi Y.M., Brochard L., Brett S.J. et al. Recovery after critical illness: putting the puzzle together – a consensus of 29. Crit Care. 2017; 21(1): 296. doi:10.1186/s13054-017-1887-7; Аргунова Ю.А., Помешкина С.А., Иноземцева А.А. Возможности физических трени-ровок как фактора ишемического прекондиционирования перед выполнением коро-нарного шунтирования (обзор литературы). Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2017;(3):166174. https://doi.org/10.17802/2306-1278-2017-6-3-166-174.; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/569