المؤلفون: D. E. Reingardt, Yu. V. Ostankova, L. V. Lyalina, E. V. Anufrieva, A. V. Semenov, Areg A. Totolian, Д. Э. Рейнгардт, Ю. В. Останкова, Л. B. Лялина, Е. В. Ануфриева, А. В. Семенов, Арег А. Тотолян

المصدر: HIV Infection and Immunosuppressive Disorders; Том 15, № 4 (2023); 86-93 ; ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии; Том 15, № 4 (2023); 86-93 ; 2077-9828 ; 10.22328/2077-9828-2023-15-4

مصطلحات موضوعية: молекулярная диагностика, direct acting antivirals (DAAs), drug resistance, genotypes, mutations, molecular diagnostics, препараты прямого противовирусного действия (ПППД), лекарственная устойчивость, генотипы, мутации

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/855/574; World Health Organization. Hepatitis C. Key facts. http://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/hepatitis-c Access date: 15.11.2023.; World Health Organization. Global health sector strategy on viral hepatitis, 2016–2021: towards ending viral hepatitis. 2016. Available at: http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/246177/1/WHO-HIV-2016.06-eng.pdf. Access date: 13.11.2023.; Bertino G., Ardiri A., Proiti M., Rigano G., Frazzetto E., Demma S., Ruggeri MI., Scuderi L., Malaguarnera G., Bertino N., Rapisarda V., Di Carlo I., Toro A., Salomone F., Malaguarnera M., Bertino E, Malaguarnera M. Chronic hepatitis C: This and the new era of treatment // World J. Hepatol. 2016. Vol. 8, No. 2. Р. 92–106. doi:10.4254/wjh.v8.i2.92.; Jia Y., Yue W., Gao Q., Tao R., Zhang Y., Fu X. et al. Characterization of a novel hepatitis c subtype, 6xj, and its consequences for direct-acting antiviral treatment in yunnan, China // Microbiol. Spectr. 2021. Vol. 9, No. 1. Р. e0029721. doi:10.1128/Spectrum.00297-21.; Хорькова Е.В., Лялина Л.В., Микаилова О.М., Ковеленов А.Ю., Останкова Ю.В., Валутите Д.Э., Стасишкис Т.А., Цветков В.В., Новак К.Е., Ришняк О.Ю., Крицкая И.В., Буц Л.В., Тягунов Д.С. Актуальные вопросы эпидемиологического надзора за хроническими вирусными гепатитами B, C, D и гепатоцеллюлярной карциномой на региональном уровне. Здоровье населения и среда обитания // ЗНиСО. 2021. Т. 29, № 8. С. 76–84. doi:10.35627/2219-5238/2021-29-8-76-84.; Fried M.W., Shiffman M.L., Reddy K.R., Smith C., Marinos G., Gonçales F.L. Jr, Häussinger D., Diago M., Carosi G., Dhumeaux D., Craxi A., Lin A., Hoffman J., Yu J. Peginterferon alfa-2a plus ribavirin for chronic hepatitis C virus infection // N Engl J Med. 2002. Vol. 347(13. Р. 975– 982. doi:10.1056/NEJMoa020047.; Davoodi L., Masoum B., Moosazadeh M., Jafarpour H., Haghshenas M.R., Mousavi T. Psychiatric side effects of pegylated interferonand ribavirin therapy in Iranian patients with chronic hepatitis C: A meta-analysis // Exp. Ther. Med. 2018. Vol. 16, Nо. 2. Р. 971–978. doi:10.3892/etm.2018.6255.; Soriano V., Vispo E., Poveda E., Labarga P., Martin-Carbonero L., Fernandez-Montero J.V., Barreiro P. Directly acting antivirals against hepatitis C virus // J. Antimicrob. Chemother. 2011. Vol. 66, Nо. 8. Р. 1673–1686. doi:10.1093/jac/dkr215.; Aghemo A., De Francesco R. New horizons in hepatitis C antiviral therapy with direct-acting antivirals // Hepatology. 2013. Vol. 58, Nо. 1. Р. 428–438.; Milani A., Basimi P., Agi E., Bolhassani A. Pharmaceutical Approaches for Treatment of Hepatitis C virus // Curr. Pharm. Des. 2020. Vol. 26, Nо. 34. Р. 4304–4314. doi:10.2174/1381612826666200509233215.; Simmonds P. The origin of hepatitis C virus // Curr. Top. Microbiol Immunol. 2013. Vol. 369. Р. 1–15. doi:10.1007/978-3-642-27340-7_1.; Kanwal F., Kramer J.R., Ilyas J., Duan Z., El-Serag H.B. HCV genotype 3 is associated with an increased risk of cirrhosis and hepatocellular cancer in a national sample of U.S. Veterans with HCV // Hepatology. 2014. Vol. 60, Nо. 1. Р. 98–105. doi:10.1002/hep.27095.; Останкова Ю.В., Валутите Д.Э., Зуева Е.Б., Серикова Е.Н., Щемелев А.Н., Boumbaly S., Balde T.A., Семенов А.В. Первичные мутации лекарственной устойчивости вируса гепатита C у пациентов с впервые выявленной ВИЧ-инфекцией // Проблемы особо опасных инфекций. 2020. № 3. С. 97–105. doi:10.21055/0370-1069-2020-3-97-105.; Кичатова В.С., Кюрегян К.К. Современный взгляд на резистентность к препаратам прямого противовирусного действия при лечении вирусного гепатита С // Инфекционные болезни: Новости. Мнения. Обучение. 2019. Т. 8, № 2. С. 64–71. doi:10.24411/2305-3496-2019-12009.; Jackowiak P., Kuls K., Budzko L., Mania A., Figlerowicz M., Figlerowicz M. Phylogeny and molecular evolution of the hepatitis C virus // Infect. Genet Evol. 2014. Vol. 21. Р. 67–82. doi:10.1016/j.meegid.2013.10.021.; Ploss A., Dubuisson J. New advances in the molecular biology of hepatitis C virus infection: towards the identification of new treatment targets //Gut. 2012. Vol. 61, Nо. 1. Р. 25–35. doi:10.1136/gutjnl-2012-302048.; Von Massow G.G., Garcia-Cehic D., Gregori J. Whole-genome characterization and resistance-associated substitutions in a new HCV genotype 1 subtype // Infection and drug resistance. 2019. Vol. 12, No. 1. Р. 947–955. doi:10.2147/IDR.S195441.; Kalaghatgi P., Sikorski A.M., Knops E., Rupp D., Sierra S., Heger E., Neumann-Fraune M., Beggel B., Walker A., Timm J., Walter H., Obermeier M., Kaiser R., Bartenschlager R., Lengauer T. Geno2pheno[HCV] — A Web-based Interpretation System to Support Hepatitis C Treatment Decisions in the Era of Direct-Acting Antiviral Agents // PLoS One. 2016. Vol. 11, Nо. 5. Р. e0155869. doi:10.1371/journal.pone.0155869.; Nitta S., Asahina Ya., Matsuda М., Yamada N., Sugiyama R., Masaki T. Effects of Resistance-Associated NS5A Mutations in Hepatitis C Virus on Viral Production and Susceptibility to Antiviral Reagents // Scientific Reports. 2016. Vol. 6. Р. 34652. doi: https://doi.org/10.1038/srep34652.; Asahina Y., Izumi N., Enomoto N., Uchihara M., Kurosaki M., Onuki Y., Nishimura Y., Ueda K., Tsuchiya K., Nakanishi H Mutagenic effects of ribavirin and response to interferon/ribavirin combination therapy in chronic hepatitis C // J. Hepatol. 2005. Vol. 43. Р. 623–629. doi:10.1016/j.jhep.2005.05.032.; De Moraes L.N., Tommasini Grotto R.M., Valente G.T., de Carvalho Sampaio Н., Magro A.J., Fogaça L., Wolf I.R., Perahia D., Silva G.F., Simões R.P. A novel molecular mechanism to explain mutations of the HCV protease associated with resistance against covalently bound inhibitors // Virus Research. 2019. Vol. 274, No. 1. Р. 168–172. doi:10.1016/j.virusres.2019.197778.; Valutite D., Ostankova Y., Semenov A., Lyalina L., Totolian A. Distribution of Primary Resistance Mutations in Saint Petersburg in Patients with Chronic Hepatitis C // Diagnostics. 2022. Vol. 12, No. 5. Р. 1054–1067. doi:10.3390/diagnostics12051054.; Di Stefano М., Faleo G., Mohamed A.M.F., Morella S., Bruno S.R., Tundo P., Fiore J.R., Santantonio Т.А. Resistance Associated Mutations in HCV Patients Failing DAA Treatment // New Microbiologia. 2023. Vol. 44, No. 1. Р. 12–18.; Sarrazin C. Treatment failure with DAA therapy: importance of resistance // J. Hepatol. 2021. Vol. 74. Р. 1472–1482. doi:10.1016/j.jhep.2021.03.004.; https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/855

الاتاحة: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/855
https://doi.org/10.22328/2077-9828-2023-15-4-86-93

المؤلفون: T.A. L. Balde, Yu. V. Ostankova, S. Boumbaly, D. E. Valutite, V. S. Davydenko, A. N. Shchemelev, E. N. Shchemelev, E. B. Zueva, E. V. Anufrieva, E. V. Astapchik, O. V. Arbuzova, V. V. Skvoroda, D. A. Vasil’eva, E. V. Esaulenko, A. V. Semenov, Areg A. Totolian, Ю. В. Останкова, Д. Э. Валутите, В. С. Давыденко, А. Н. Щемелев, Е. Н. Серикова, Е. Б. Зуева, Е. В. Ануфриева, Е. В. Астапчик, О. В. Арбузова, В. В. Скворода, Д. А. Васильева, Е. В. Эсауленко, А. В. Семенов, Арег А. Тотолян

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3 (2023); 51-58 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3 (2023); 51-58 ; 2658-719X ; 0370-1069

مصطلحات موضوعية: Гвинейская Республика, HCV, HIV, serological markers, molecular-genetic markers, laboratory diagnostics, pregnant women, partners of pregnant women, Republic of Guinea, ВГС, ВИЧ, серологические маркеры, молекулярно-генетические маркеры, лабораторная диагностика, беременные женщины, партнеры беременных женщин

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1854/1405; World Health Organization. Hepatitis B. Key facts. [Электронный ресурс]. URL: http://www.who.int/news-room/factsheets/detail/hepatitis-b (дата обращения 08.09.2022).; World Health Organization. Hepatitis C. Key facts. [Электронный ресурс]. URL: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/hepatitis-c (дата обращения 08.09.2022).; World Health Organization. HIV. Key facts. [Электронный ресурс]. URL: https://cdn.who.int/media/docs/default-source/hq-hiv-hepatitis-and-stis-library/key-facts-hiv-2020.pdf?sfvrsn=582c3f6e_3 (дата обращения 08.09.2022).; Raizada A., Dwivedi S., Bhattacharya S. The hepatitis B, hepatitis C and HIV co-infection at an antiretroviral centre in Delhi. Trop. Doct. 2011; 41(3):154–6. DOI:10.1258/td.2011.100440.; Degenhardt L., Charlson F., Stanaway J., Larney S., Alexander L.T., Hickman M., Cowie B., Hall W.D., Strang J., Whiteford H., Vos T. Estimating the burden of disease attributable to injecting drug use as a risk factor for HIV, hepatitis C, and hepatitis B: findings from the Global Burden of Disease Study 2013. Lancet Infect. Dis. 2016; 16(12):1385–98. DOI:10.1016/S1473-3099(16)30325-5.; Roser М., Ritchie Н. HIV/AIDS. [Электронный ресурс]. URL: https://ourworldindata.org/hiv-aids (дата обращения 08.09.2022).; GBD 2019 Hepatitis B Collaborators. Global, regional, and national burden of hepatitis B, 1990–2019: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2019. Lancet Gastroenterol Hepatol. 2022; 7(9):796–829. DOI:10.1016/S2468-1253(22)00124-8.; The Polaris Observatory HCV Collaborators. Global change in hepatitis C virus prevalence and cascade of care between 2015 and 2020: a modelling study. Lancet Gastroenterol Hepatol. 2022; 7(5):396–415. DOI:10.1016/S2468-1253(21)00472-6.; Nkuoh G.N., Meyer D.J., Nshom E.M. Women’s attitudes toward their partners’ involvement in antenatal care and prevention of mother-to-child transmission of HIV in Cameroon, Africa. J. Midwifery Womens Health. 2013; 58(1):83–91. DOI:10.1111/j.1542-2011.2012.00208.x.; Hershow R.B., Zimba C.C., Mweemba O., Chibwe K.F., Phanga T., Dunda W., Matenga T., Mutale W., Chi B.H., Rosenberg N.E., Maman S. Perspectives on HIV partner notification, partner HIV self-testing and partner home-based HIV testing by pregnant and postpartum women in antenatal settings: a qualitative analysis in Malawi and Zambia. J. Int. AIDS Soc. 2019; 22 Suppl 3(Suppl Suppl 3):e25293. DOI:10.1002/jia2.25293.; Amano A., Musa A. Male involvement in PMTCT and associated factors among men whom their wives had ANC visit 12 months prior to the study in Gondar town, North west Ethiopia, December, 2014. Pan Afr. Med. J. 2016; 24:239. DOI:10.11604/pamj.2016.24.239.8460.; Drammeh B., Medley A., Dale H., De A.K., Diekman S., Yee R., Aholou T., Lasry A., Auld A., Baack B., Duffus W., Shahul E., Wong V., Grillo M., Al-Samarrai T., Ally S., Nyangulu M; MCHD2; Nyirenda R., Olivier J., Chidarikire T., Khanyile N., Kayange A.A., Rwabiyago O.E., Kategile U., Bisimba J., Weber R.A., Ncube G., Maguwu O., Pietersen I., Mali D., Dzinotyiweyi E., Nelson L., Bosco M.J., Dalsone K., Apolot M., Anangwe S., Soo L.K., Mugambi M., Mbayiha A., Mugwaneza P., Malamba S.S., Phiri A.; MCD28; Chisenga T., Boyd M., Temesgan C., Shimelis M., Weldegebreal T., Getachew M., Balachandra S., Eboi E., Shasha W., Doumatey N., Adjoua D., Meribe C., Gwamna J., Gado P., John-Dada I., Mukinda E., Lukusa L.F.K., Kalenga L., Bunga S., Achyut V., Mondi J., Loeto P., Mogomotsi G., Ledikwe J., Ramphalla P., Tlhomola M., Mirembe J.K., Nkwoh T., Eno L., Bonono L., Honwana N., Chicuecue N., Simbine A., Malimane I., Dube L., Mirira M., Mndzebele P., Frawley A., Cardo Y.M.R., Behel S. Sex differences in HIV testing – 20 PEPFAR-supported sub-Saharan African countries, 2019. MMWR Morb. Mortal. Wkly Rep. 2020; 69(48):1801–6. DOI:10.15585/mmwr.mm6948a1.; Guinea Population. [Электронный ресурс]. URL: https://countrymeters.info/en/Guinea (дата обращения 18.08.2022).; Chersich M.F., Gray G., Fairlie L,, Eichbaum Q., Mayhew S., Allwood B., English R., Scorgie F., Luchters S., Simpson G., Haghighi M.M., Pham M.D., Rees H. COVID-19 in Africa: care and protection for frontline healthcare workers. Global. Health. 2020; 16(1):46. DOI:10.1186/s12992-020-00574-3.; Найденова Е.В., Лопатин A.A., Сафронов В.A., Коломоец Е.В., Левковский A.E., Силла А.Л., Старшинов В.A., Щербакова С.А., Малеев В.В. Обеспечение биологической безопасности при проведении противоэпидемических мероприятий в период ликвидации эпидемии лихорадки Эбола в Гвинейской Республике. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2018; 7(3):102–8. DOI:10.24411/2305-3496-2018-13015.; Коломоец Е.В., Ицков Я.Ю., Найденова Е.В., Konomou V., Keita S., Lamah R. Создание и обеспечение функционирования госпитальной сети для лечения больных COVID-19 в Гвинейской Республике. Проблемы особо опасных инфекций. 2021; 3:66–71. DOI:10.21055/0370-1069-2021-3-66-71.; Annuaire Statistique 2021. [Электронный ресурс]. URL: http://www.stat-guinee.org/images/Documents/Publications/INS/annuelles/annuaire/Annuaire_Statistique_2021_vf.pdf (дата обращения 20.08.2022).; Leno N.N., Delamou A., Koita Y., Diallo T.S., Kaba A., Delvaux T., Van Damme W., Laga M. Ebola virus disease outbreak in Guinea: what effects on prevention of mother-to-child transmission of HIV services? Reprod. Health. 2018; 15(1):60. DOI:10.1186/s12978-018-0502-y.; Camara B.S., Delamou A., Diro E., Béavogui A.H., El Ayadi A.M., Sidibé S., Grovogui F.M., Takarinda K.C., Bouedouno P., Sandouno S.D., Okumura J., Baldé M.D., Van Griensven J., Zachariah R. Effect of the 2014/2015 Ebola outbreak on reproductive health services in a rural district of Guinea: an ecological study. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 2017; 111(1):22–9. DOI:10.1093/trstmh/trx009.; Balde T.A.L., Boumbaly S., Серикова Е.Н., Валутите Д.Э., Щемелев А.Н., Останкова Ю.В., Зуева Е.Б., Семенов А .В. Сравнительный анализ вертикального риска передачи некоторых гемоконтактных инфекций в Гвинейской Республике. Проблемы особо опасных инфекций. 2021; 1:87–94. DOI:10.21055/0370-1069-2021-1-87-94.; Останкова Ю.В., Серикова Е.Н., Семенов А.В., Тотолян А рег А . Метод выявления в биологическом материале ДНК вируса гепатита В при низкой вирусной нагрузке на основе гнездовой ПЦР с детекцией по трем вирусным мишеням в режиме реального времени. Клиническая лабораторная диагностика. 2022; 67(9):530–7. DOI:10.51620/0869-2084-2022-67-9-530-537.; Mbange A.E., Kaba D., Diouara A.A.M., Diop-Ndiaye H., Ngom-Ngueye N.F., Dieng A., Lo S., Toure K.N., Fall M., Mbacham W.F., Diallo M.S., Cisse M., Mboup S., Kane C.T. Surveillance of transmitted HIV-1 antiretroviral drug resistance in the context of decentralized HIV care in Senegal and the Ebola outbreak in Guinea. BMC Res. Notes. 2018; 11(1):723. DOI:10.1186/s13104-018-3804-9.; Ingasia L.A.O., Kostaki E.G., Paraskevis D., Kramvis A. Global and regional dispersal patterns of hepatitis B virus genotype E from and in Africa: A full-genome molecular analysis. PLoS One. 2020; 15(10):e0240375. DOI:10.1371/journal.pone.0240375.; Clifford G.M., Waterboer T., Dondog B., Qiao Y.L., Kordzaia D., Hammouda D., Keita N., Khodakarami N., Raza S.A., Sherpa A.T., Zatonski W., Pawlita M., Plummer M., Franceschi S. Hepatitis C virus seroprevalence in the general female population of 9 countries in Europe, Asia and Africa. Infect. Agent. Cancer. 2017; 12:9. DOI:10.1186/s13027-017-0121-1.; Naughton B., Bulterys M.A., Mugisha J., Mujugira A., Boyer J., Celum C., Weiner B., Sharma M. ‘If there is joy… I think it can work well’: a qualitative study investigating relationship factors impacting HIV self-testing acceptability among pregnant women and male partners in Uganda. BMJ Open. 2023; 13(2):e067172. DOI:10.1136/bmjopen-2022-067172.; UNAIDS data 2020. UNAIDS. Jul 2020. [Электронный ресурс]. URL: https://www.unaids.org/en/resources/documents/2020/unaids-data (дата обращения 18.08.2022).; Bekolo C.E., Soumah M.M., Tiemtore O.W., Diallo A., Yuma J.D., Di Stefano L., Metcalf C., Cisse M. Assessing the outcomes of HIV-infected persons receiving treatment for Kaposi sarcoma in Conakry-Guinea. BMC Cancer. 2017; 17(1):806. DOI:10.1186/s12885-017-3771-x.; Shchemelev A.N., Boumbaly S., Ostankova Y.V., Zueva E.B., Semenov A.V., Totolian A.A. Prevalence of drug resistant HIV-1 forms in patients without any history of antiretroviral therapy in the Republic of Guinea. J. Med. Virol. 2022; 95(1):e28184. DOI:10.1002/jmv.28184.; Бумбали С., Серикова Е.Н., Семенов А.В., Останкова Ю.В., Валутите Д.Э., Щемелев А.Н., Зуева Е.Б., Балде Т.А.Л., Баимова Р.Р., Тотолян А .А. Значимость лабораторной диагностики парентеральных вирусных гепатитов в Гвинейской Республике. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2021; 98(4):440–9. DOI:10.36233/0372-9311-116.; Sanjuán R. The social life of viruses. Annu. Rev. Virol. 2021; 8(1):183–99. DOI:10.1146/annurev-virology-091919-071712.; Huy B.V., Vernavong K., Kính N.V. HBV and HCV coinfection among HIV/AIDS patients in the National hospital of tropical diseases, Vietnam. AIDS Res. Treat. 2014; 2014:581021. DOI:10.1155/2014/581021.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1854

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1854
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2023-3-51-58

المؤلفون: N. P. Gorbunov, A. V. Zhakhov, I. N. Gorbunova, A. M. Milichkina, I. V. Drozd, A. V. Gubanova, E. M. Danilova, R. N. Kuznecova, T. V. Savin, A. G. Burtseva, N. V. Pigareva, A. M. Ischenko, Areg A. Totolian, Н. П. Горбунов, А. В. Жахов, И. Н. Горбунова, А. М. Миличкина, И. В. Дрозд, А. В. Губанова, Е. М. Данилова, Р. Н. Кузнецова, Т. В. Савин, А. Г. Бурцева, Н. В. Пигарева, А. М. Ищенко, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 25, № 5 (2023); 1197-1204 ; Медицинская иммунология; Том 25, № 5 (2023); 1197-1204 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: корелляционный анализ, monoclonal antibody, enzyme immunoassay, turbidimetry, calibrator, correlation analysis, моноклональное антитело, иммуноферментный анализ, турбидиметрия, калибратор

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2794/1756; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/11707; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/11709; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/11710; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/11711; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/11713; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/11714; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/11716; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/11717; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/11723; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/12240; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/12241; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/12242; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/12243; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/12262; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/12268; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/12270; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/12271; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/12272; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/12278; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2794/12279; Borisova N.V., Sokurenko S.I. Classification, diagnosis, and approach, to treatment for angioedema. Clinical Practice, 2014, Vol. 10, no. 3, pp. 71-79. (In Russ.); Davis A.E., III, Mejia P., Lu F. Biological activities of C1 inhibitor. Mol. Immunol., 2008, Vol. 45, no. 16, pp. 4057-4063.; Drouet C., Lopez-Lera A., Ghannam A., Lopez-Trascasa M., Cichon S., Ponard D., Parsopoulou F., Grombirikova H., Freiberger T., Rijavec M., Veronez C.L., Pesquero J.B., Germenis A.E. SERPING1 variants and C1- INH biological function: a close relationship with C1-INH-HAE. Front. Allergy, 2022, Vol. 3, 835503. doi:10.3389/falgy.2022.835503; Karnaukhova E. C1-Inhibitor: structure, functional diversity and therapeutic development. Curr. Med. Chem., 2022, Vol. 29, no. 3, pp. 467-488.; Tange C.E., Kaur A., Verma N., Hickey A., Grigoriadou S., Scott C., Kiani S., Steven R., Ponsford M., El- Shanawany T., Jolles S., Harding S., Parker A.R. Quantification of human C1 esterase inhibitor protein using an automated turbidimetric immunoassay, J. Clin. Lab. Anal., 2019, Vol. 33, no. 1, e22627. doi:10.1002/jcla.22627.; Wagenaar-Bos I.G.A., Drouet C., Aygoren-Pursun E., et al. Functional Ci-inhibitor diagnostics in hereditary angioedema: assay evaluation and recommendations. J. Immunol. Methods, 2008, Vol. 338, no. 1-2, pp. 14-20.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2794

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2794
https://doi.org/10.15789/1563-0625-QOC-2794

المؤلفون: Z. R. Korobova, Areg A. Totolian, З. Р. Коробова, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 25, № 4 (2023); 773-778 ; Медицинская иммунология; Том 25, № 4 (2023); 773-778 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: дендритные клетки, COVID-19, chemokines, multiplex analysis, post-COVID, dendritic cells, хемокины, мультиплексный анализ, постковидный синдром

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2804/1691; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11768; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11769; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11770; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11771; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11772; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11773; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11774; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/11775; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/12214; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2804/12232; Арсентьева Н.А., Любимова Н.Е., Бацунов О.К., Коробова З.Р., Станевич О.В., Лебедева А.А., Воробьев Е.А., Воробьева С.В., Куликов А.Н., Лиознов Д.А., Шарапова М.А., Певцов Д.Э., Тотолян А.А. Цитокины в плазме крови больных COVID-19 в острой фазе заболевания и фазе полного выздоровления. Медицинская иммунология. 2021;23(2):311-326.; Arsentieva N.A., Liubimova N.E., Batsunov O.K., et al. Predictive value of specific cytokines for lethal COVID-19 outcome // Russian Journal of Infection and Immunity. - 2022. - Vol. 12. - N. 5. - P. 859-868.; Boechat JL, Chora I, Morais A, Delgado L. The immune response to SARS-CoV-2 and COVID-19 immunopathology - Current perspectives. Pulmonology. 2021 Sep-Oct;27(5):423-437.; Borczuk, A.C., Yantiss, R.K. The pathogenesis of coronavirus-19 disease. J Biomed Sci 29, 87 (2022).; Chang T, Yang J, Deng H, Chen D, Yang X, Tang ZH. Depletion and Dysfunction of Dendritic Cells: Understanding SARS-CoV-2 Infection. Front Immunol. 2022 Feb 21;13:843342.; Ghizlane EA, Manal M, Abderrahim EK, Abdelilah E, Mohammed M, Rajae A, Amine BM, Houssam B, Naima A, Brahim H. Lymphopenia in Covid-19: A single center retrospective study of 589 cases. Ann Med Surg (Lond). 2021 Sep;69:102816.; Korobova ZR, Arsentieva NA, Liubimova NE, Batsunov OK, Dedkov VG, Gladkikh AS, Sharova AA, Adish Z, Chernykh EI, Kaschenko VA, Ratnikov VA, Gorelov VP, Stanevich OV, Kulikov AN, Pevtsov DE, Totolian AA. Cytokine Profiling in Different SARS-CoV-2 Genetic Variants. Int J Mol Sci. 2022 Nov 16;23(22):14146.; Liu YC, Kuo RL, Shih SR. COVID-19: The first documented coronavirus pandemic in history. Biomed J. 2020 Aug;43(4):328-333.; Merad M, Blish CA, Sallusto F, Iwasaki A. The immunology and immunopathology of COVID-19. Science. 2022 Mar 11;375(6585):1122-1127.; Salamanna F, Maglio M, Landini MP, Fini M. Body Localization of ACE-2: On the Trail of the Keyhole of SARS-CoV-2. Front Med (Lausanne). 2020 Dec 3;7:594495.; Tufa A, Gebremariam TH, Manyazewal T, Getinet T, Webb DL, Hellström PM, Genet S. Inflammatory mediators profile in patients hospitalized with COVID-19: A comparative study. Front Immunol. 2022 Jul 25;13:964179.; Ubanako P, Xelwa N, Ntwasa M. LPS induces inflammatory chemokines via TLR-4 signalling and enhances the Warburg Effect in THP-1 cells. PLoS One. 2019 Sep 27;14(9):e0222614.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2804

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2804
https://doi.org/10.15789/1563-0625-MCD-2804

المؤلفون: A. Yu. Popova, V. S. Smirnov, S. A. Egorova, I. V. Drozd, A. M. Milichkina, A. M. Dashkevich, Z. S. Nurmatov, G. G. Melik-Andreasyan, M. M. Ruziev, Areg A. Totolian, А. Ю. Попова, В. С. Смирнов, С. А. Егорова, И. В. Дрозд, А. М. Миличкина, А. М. Дашкевич, З. Ш. Нурматов, Г. Г. Мелик-Андреасян, М. М. Рузиев, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 25, № 4 (2023); 759-766 ; Медицинская иммунология; Том 25, № 4 (2023); 759-766 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: эпидемиология, herd immunity, COVID-19, pandemic, vaccine-induced immunity, public health, популяционный иммунитет, пандемия, вакцинальный иммунитет

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2867/1689; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2867/12542; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2867/12543; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2867/12544; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2867/12546; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2867/12547; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2867/12548; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2867/12549; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2867/12550; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2867/12600; Cristiani L., Mancino E., Matera L., Nenna R., Pierangeli A., Scagnolari C., Midulla F. Will children reveal their secret? The coronavirus dilemma. Eur. Respir. J., 2020, 2000749. doi:10.1183/13993003.00749-2020.; Crotty S. Hybrid immunity. Science, 2021, Vol. 372, no. 6549, pp. 1392-1393.; Hendricks C.L., Green R.J. COVID-19 in children: Should we be worried? S. Afr. Med. J., 2020, Vol. 110, no. 9, pp. 864–868.; Plans-Rubió P. Percentages of vaccination coverage required to establish herd immunity against SARSCoV-2. Vaccines (Basel), 2022, Vol. 10, no. 5, 736. doi:10.3390/vaccines10050736.; Popova A.Yu., Andreeva E.E., Babura E.A., Balakhonov S.V., Bashketova N.S., Bulanov M.V., Valeullina N.N., Goryaev D.V., Detkovskaya N.N., Ezhlova E.B., Zaitseva N.N., Istorik O.A., Kovalchuk I.V., Kozlovskikh D.N., Kombarova S.Yu., Kurganova O.P., Kutyrev V.V., Lomovtsev A.E., Lukicheva L.A., Lyalina L.V., Melnikova A.A., Mikailova O.M., Noskov A.K., Noskova L.N., Oglezneva E.E., Osmolovskaya T.P., Patyashina M.A., Penkovskaya N.A., Samoilova L.V., Smirnov V.S., Stepanova T.F., Trotsenko O.E., Totolian Areg A. Features of developing SARS-CoV-2 nucleocapsid protein population-based seroprevalence during the first wave of the COVID-19 epidemic in Russia. Russian Journal of Infection and Immunity, 2021, Vol. 11, no. 2, pp. 297-323. (In Russ.); Popova A.Y., Tarasenko A.A., Smolenskiy V.Yu., Egorova S.A., Smirnov V.S., Dashkevich A.M., Svetogor T.N., Glinskaya I.N., Skuranovich A.L., Milichkina A.M., Dronina A.M., Samoilovich E.O., Khamitova I.V., Semeiko G.V., Amvrosyeva T.V., Shmeleva N.P., Rubanik L.V., Esmanchik O.P., Karaban I.A., Drobyshevskaya V.G., Sadovnikova G.V., Shilovich M.V., Podushkina E.A., Kireichuk V.V., Petrova O.A., Bondarenko S.V., Salazhkova I.F., Tkach L.M., Shepelevich L.P., Avtukhova N.L., Ivanov V.M., Babilo A.S., Navyshnaya M.V., Belyaev N.N., Zueva E.V., Volosar L.A., Verbov V.N., Likhachev I.V., Zagorskaya T.O., Morozova N.F., Korobova Z.R., Gubanova A.V., Totolian Areg A. Herd immunity to SARS-CoV-2 among the population of the Republic of Belarus amid the COVID-19 pandemic. Russian Journal of Infection and Immunity, 2021, Vol. 11, no. 5, pp. 887-904. (In Russ.); Popova A.Y., Smirnov V.S., Andreeva E.E., Babura E.A., Balakhonov S.V., Bashketova N.S., Bugorkova S.A., Bulanov M.V., Valeullina N.N., Vetrov V.V., Goryaev D.V., Detkovskaya T.N., Ezhlova E.B., Zaitseva N.N., Istorik O.A., Kovalchuk I.V., Kozlovskikh D.N., Kombarova S.Y., Kurganova O.P., Lomovtsev A.E., Lukicheva L.A., Lyalina L.V., Melnikova A.A., Mikailova O.M., Noskov A.K., Noskova L.N., Oglezneva E.E., Osmolovskaya T.P., Patyashina M.A., Penkovskaya N.A., Samoilova L.V., Stepanova T.F., Trotsenko O.E., Totolian Areg A. SARS‐CoV‐2 seroprevalence structure of the russian population during the COVID‐19 Pandemic. Viruses, 2021, Vol. 13, 1648. doi:10.3390/v13081648; Popova A.Yu., Totolian A.A. Methodology for assessing herd immunity to the SARS-CoV-2 virus in the context of the COVID-19 pandemic. Russian Journal of Infection and Immunity, 2021, Vol. 11, no. 4, pp. 609-616. (In Russ.); Popova A.Y., Smirnov V.S., Andreeva E.E., Arbuzova T.V., Babura E.A., Balakhonov S.V., Bashketova N.S., Bugorkova S.A., Bulanov M.V., Valeullina N.N., Goryaev D.V., Gubanova A.V., Detkovskaya N.N., Ezhlova E.B., Zhimbayeva O.B., Zaitseva N.N., Zueva E.V., Ivanov V.A., Istorik O.A., Kovalchuk I.V., Kozlovskikh D.N., Kombarova S.Y., Kurganova O.P., Lomovtsev A.E., Lukicheva L.A., Melnikova A.A., Mikailova O.M., Milichkina A.M., Noskov A.K., Noskova L.N., Oglezneva E.E., Osmolovskaya T.P., Patyashina M.A., Penkovskaya N.A., Petrova O.A., Razumovskaya A.P., Samoilova L.V., Stepanova T.F., Trotsenko O.E., Khamitova I.V., Totolian Areg A. Seroprevalence of antibodies to SARS-CoV-2 in children against the background of the COVID-19 epidemic in Russia. Pediatria n.a. G.N. Speransky, 2022, Vol. 101, no. 3, pp. 85–97.; Popova A.Y., Kasymov O.T., Smolenski V.Y., Smirnov V.S., Egorova S.A., Nurmatov Z.S. Milichkina A.M., Suranbaeva G.S., Kuchuk T.E., Khamitova I.V., Zueva E.V., Ivanov V.A., Nuridinova Z.N., Derkenbaeva A.A., Drobyshevskaya V.G., Sattarova G.Z., Kaliev M.T., Gubanova A.V., Zhimbaeva O.B., Razumovskaya A.P., Verbov V.N., Likhachev I.V., Krasnov A.V., Totolian Areg A. SARS-CoV-2 herd immunity of the Kyrgyz population in 2021. Med. Microbiol. Immunol., 2022, Vol. 211, no. 4, pp. 195-210.; Popova A.Yu., Smirnov V.S., Egorova S.A., Abdullozoda J.A., Ruziev M.M., Milichkina A.M., Ivanov V.A., Vokhidov S.D., Ramsay E.S., Mullodzhanova M.M., Drozd I.V., Kholova B.T., Krasnov A.A., Jafarov N.D., Zhimbayeva O.B., Gubanova A.V., Razumovskaya A.P., Drobyshevskaya V.G., Totolian Areg A. Achievement of maximal SARS-CoV-2 collective immunity among the Tajik population by March 2022. Medical Immunology (Russia), 2023, Vol. 25, no. 1, pp. 193-214. (In Russ.) doi:10.15789/1563-0625-AOM-2630.; Popova A.Yu., Smirnov V.S., Egorova S.A., Vanyan A.V., Milichkina A.M., Bakunts N.G., Drozd I.V., Abovyan R.A., Ivanov V.A., Melik-Andreasyan G.G., Ramsay E.S., Palozyan G.H., Arbuzova T.V., Keshishyan A.S., Zhimbayeva O.B., Petrova O.A., Gubanova A.V., Razumovskaya A.P., Totolian Areg A. SARS-CoV-2 collective immunity among the population of the Republic of Armenia. Russian Journal of Infection and Immunity , 2023, Vol. 13, no. 1, pp. 75-90. (In Russ.); Rao V., Thakur S., Rao J., Arakeri G., Brennan P.A., Jadhav S., Sayeed M.S., Rao G. Mesenchymal stem cells-bridge catalyst between innate and adaptive immunity in COVID 19. Med. Hypotheses, 2020, Vol. 143, 109845. doi:10.1016/j.mehy.2020.109845.; Smirnov V.S., Lyalina L.V., Milichkina A.M., Khamitova I.V., Zueva E.V., Ivanov V.A., Zaguzov V.S., Totolian Areg A. Longitudinal randomized cohort study of SARS-CoV-2 antibody seroprevalence in the St. Petersburg population. Viruses, 2022, Vol. 14, 913. doi:10.3390/v14050913.; Totolian Areg A., Smirnov V.S., Krasnov A.A., Ramsay E.S., Dedkov V.G., Popova A.Y. COVID-19 case numbers as a function of regional testing strategy, vaccination coverage, and vaccine type. research square. Preprint. doi: 0.21203/rs.3.rs-2183670/v1.; Xia Y., Zhong L., Tan J., Zhang Z., Lyu J., Chen Y., Zhao A., Huang L., Long Z., Liu N.-N., Wang H., Li1 S. How to understand “Herd Immunity” in COVID-19 pandemic. Front Cell Dev. Biol., 2020, Vol. 8, 547314. doi:10.3389/fcell.2020.547314.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2867

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2867
https://doi.org/10.15789/1563-0625-PIT-2867

المؤلفون: Yu. V. Ostankova, V. S. Davydenko, A. N. Shchemelev, E. B. Zueva, P. A. Virolainen, Areg A. Totolyan, Ю. В. Останкова, В. С. Давыденко, А. Н. Щемелев, Е. Б. Зуева, П. А. Виролайнен, Арег А. Тотолян

المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3 (2022); 120-128 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3 (2022); 120-128 ; 2658-719X ; 0370-1069

مصطلحات موضوعية: генотипическая диагностика, HIV co-receptor tropism, CCR5, CXCR4, CCR5 receptor antagonists, env gene, genotypic diagnostics, корецепторный тропизм ВИЧ, антагонисты рецептора CCR5, ген env

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1733/1328; UNAIDS data 2021. [Электронный ресурс]. URL: https://www.unaids.org/en/resources/documents/2021/2021_unaids_data (дата обращения 31.05.2022).; Rhee S.Y., Kassaye S.G., Jordan M.R., Kouamou V., Katzenstein D., Shafer R.W. Public availability of HIV-1 drug resistance sequence and treatment data: a systematic review. Lancet Microbe. 2022; 3(5):e392-e398. DOI:10.1016/S26665247(21)00250-0.; Aiamkitsumrit B., Dampier W., Antell G., Rivera N., Martin-Garcia J., Pirrone V., Nonnemacher M.R., Wigdahl B. Bioinformatic analysis of HIV-1 entry and pathogenesis. Curr. HIV Res. 2014; 12(2):132–61. DOI:10.2174/1570162x12666140526121746.; Riemenschneider M., Cashin K.Y., Budeus B., Sierra S., Shirvani-Dastgerdi E., Bayanolhagh S., Kaiser R., Gorry P.R., Heider D. Genotypic prediction of co-receptor tropism of HIV-1 subtypes A and C. Sci. Rep. 2016; 6:24883. DOI:10.1038/srep24883.; Щемелев А.Н., Семенов А.В., Останкова Ю.В., Зуева Е.Б., Валутите Д.Э., Семенова Д.А., Давыденко В.С., Тотолян А.А. Генетическое разнообразие и мутации лекарственной устойчивости ВИЧ-1 в Ленинградской области. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2022; 99(1):28–37. DOI:10.36233/0372-9311-216.; Лопатухин А.Э., Киреев Д.Е., Поляков А.Н., Букин Е.К., Kaiser R., Luebke N., Куевда Д.А., Шипулин Г.А. Первый опыт применения стандартизированной генотипической методики определения тропизма ВИЧ. Клиническая лабораторная диагностика. 2013; 6:46–8.; Kumar S., Stecher G., Tamura K. MEGA7: Molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Mol. Biol. Evol. 2016; 33(7):1870–4. DOI:10.1093/molbev/msw054.; Struck D., Lawyer G., Ternes A.-M., Schmit J.-C., Bercoff D.P. COMET: adaptive context-based modeling for ultrafast HIV-1 subtype identification. Nucleic Acids Res. 2014; 42(18):e144. DOI:10.1093/nar/gku739.; Seclén E., Garrido C., González M.M., González-Lahoz J., de Mendoza C., Soriano V., Poveda E. High sensitivity of specific genotypic tools for detection of X4 variants in antiretroviral-experienced patients suitable to be treated with CCR5 antagonists. J. Antimicrob. Chemother. 2010; 65(7):1486–92. DOI:10.1093/jac/dkq137.; Попова Е.С., Сорокина Т.А. Информационный бюллетень центра по профилактике и борьбе со СПИД и инфекционными заболеваниями Государственного автономного учреждения здравоохранения Архангельской области «Архангельский клинический кожно-венерологический диспансер». 2018. № 1(38). [Электронный ресурс]. URL: http://www.kotlasgb.ru/for_patients/profilact/2017%20%D0%B3%D0%BE%D0%B4%20%D0%98%D0%BD%D1%84%D0%BE%D1%80%D0%BC%20%D0%B1%D1%8E%D0%BB%D0%BB%D0%B5%D1%82%D0%B5%D0%BD%D1%8C.doc (дата обращения 04.06.2022).; Бобкова М.Р. Лекарственная устойчивость ВИЧ. М.: Человек; 2014. 288 с.; Останкова Ю.В., Щемелев А.Н., Зуева Е.Б., Чурина М.А., Валутите Д.Э., Семенов А.В. Молекулярная эпидемиология и фармакорезистентность ВИЧ у пациентов с вирусологической неэффективностью антиретровирусной терапии в Архангельской области. ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии. 2019; 11(4):79–90. DOI:10.22328/2077-9828-2019-11-4-79-90.; Martínez-Montesinos Y., Kourí-Cordellá V., Pérez-Santos L., Han R., Pintos-Saavedra Y., Alemán-Campos Y., Soto-Brito Y., Baños-Morales Y., Caturla-Fernández Y. Subtype-dependent coreceptor tropism in Cuban HIV-1-infected patients: implications for maraviroc treatment. MEDICC Rev. 2021; 23(3-4):29–36. DOI:10.37757/MR2021.V23.N3.6.; Chen X., Wang Z.X., Pan X.M. HIV-1 tropism prediction by the XGboost and HMM methods. Sci. Rep. 2019; 9(1):9997. DOI:10.1038/s41598-019-46420-4.; Archer J., Braverman M.S., Taillon B.E., Desany B., James I., Harrigan P.R., Lewis M., Robertson D.L. Detection of low-frequency pretherapy chemokine (CXC motif) receptor 4 (CXCR4)-using HIV-1 with ultra-deep pyrosequencing. AIDS. 2009; 23(10):1209– 18. DOI:10.1097/QAD.0b013e32832b4399.; Brumme Z.L., Goodrich J., Mayer H.B., Brumme C.J., Henrick B.M., Wynhoven B., Asselin J.J., Cheung P.K., Hogg R.S., Montaner J.S., Harrigan P.R. Molecular and clinical epidemiology of CXCR4-using HIV-1 in a large population of antiretroviralnaive individuals. J. Infect. Dis. 2005; 192(3):466–74. DOI:10.1086/431519.; Schuitemaker H., Van’t Wout A. B., Lusso P. Clinical significance of HIV-1 coreceptor usage. J. Transl. Med. 2011; 9 (Suppl 1):S5. DOI:10.1186/1479-5876-9-S1-S5.; Nyamache A.K., Muigai A.W.T., Ng'ang'a Z., Khamadi S.A. Profile of HIV type 1 coreceptor tropism among Kenyan patients from 2009 to 2010. AIDS Res. Hum. Retroviruses. 2013; 29(8):1105–9. DOI:10.1089/aid.2012.0284.; Esbjörnsson J., Månsson F., Martínez-Arias W., Vincic E., Biague A.J., da Silva Z.J., Fenyö E.M., Norrgren H., Medstrand P. Frequent CXCR4 tropism of HIV-1 subtype A and CRF02_AG during late-stage disease – indication of an evolving epidemic in West Africa. Retrovirology. 2010; 7:23. DOI:10.1186/1742-4690-7-23.; Лебедев А.В., Нешумаев Д.А., Казеннова Е.В., Лаповок И.А., Лага В.Ю., Туманов А.С., Глущенко Н.В., Плотникова Ю.К., Пономарева О.А., Ярыгина Е.И., Бобкова М.Р. Сравнительный анализ генетических вариантов ВИЧ-1, циркулировавших в Иркутской области в 1999 и 2012 гг. Вопросы вирусологии. 2016; 61(3):112–8. DOI:10.18821/0507-4088-2016-61-3-112-118.; Матиевская Н.В., Киреев Д.Е., Дмитрюкова М.Ю., Токунова И.О., Кондратович И.А. Клинико-иммунологические и эпидемиологические особенности ВИЧ-инфекции в зависимости от тропизма ВИЧ-1. ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии. 2015; 7(1):52–9.; Котова В.О., Балахонцева Л.А., Янович О.А., Липская Н.А., Ломакина Е.А., Герец А.Г., Давудова И.В., Кузьменко Е.В., Кожевников А.А., Троценко О.Е. Результаты исследования тропизма ВИЧ-1 у ВИЧ-инфицированных Дальневосточного федерального округа Российской Федерации. Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2015; 28:61–6.; Васильев А.В., Казеннова Е.В., Бобкова М.Р. Анализ распространенности мутаций устойчивости к препаратамантагонистам корецептора CCR5 среди вариантов ВИЧ-1 в России. Вопросы вирусологии. 2011; 56(3):32–7.; Lewis M.E., Jubb B., Simpson P., Lopatukhin A., Kireev D., Bobkova M., Craig C., van der Ryst E., Westby M., Butler S.L. Highly prevalent Russian HIV-1 V3-loop sequence variants are susceptible to maraviroc. Antivir. Chem. Chemother. 2021; 29:20402066211025156. DOI:10.1177/20402066211025156.; Kitawi R.C., Hunja C.W., Aman R., Ogutu B.R., Muigai A.W., Kokwaro G.O., Ochieng W. Partial HIV C2V3 envelope sequence analysis reveals association of coreceptor tropism, envelope glycosylation and viral genotypic variability among Kenyan patients on HAART. Virol. J. 2017; 14(1):29. DOI:10.1186/s12985-017-0703-y.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1733

الاتاحة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1733
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2022-3-120-128

المؤلفون: N. A. Pechnikova, Yu. V. Ostankova, Areg A. Totolian, Н. А. Печникова, Ю. В. Останкова, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 24, № 5 (2022); 1027-1046 ; Медицинская иммунология; Том 24, № 5 (2022); 1027-1046 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: анализ in silico, primary immunodeficiencies, hereditary angioedema, candidate genes, pathogenetically significant mutations, in silico analysis, первичные иммунодефициты, наследственный ангиоотек, гены-кандидаты, патогенетически значимые мутации

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2579/1604; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/9994; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/9995; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/9996; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/9997; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/9998; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/9999; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10000; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10001; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10002; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10003; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10004; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10005; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10006; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10007; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10008; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10009; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10010; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10011; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10012; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10013; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10027; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10028; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10029; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10030; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10031; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2579/10064; Бодня О.С., Демина Д.В., Кузьменко Н.Б., Латышева Е.А., Латышева Т.В., Миличкина А.М., Пампура А.Н., Сизякина Л.П., Тотолян А.А., Уханова О.П., Федотова Н.В., Фомина Д.С. Долгосрочная профилактика наследственного ангиоотёка в России: резолюция Совета экспертов // Российский аллергологический журнал, 2021. Т. 18. №3. C. 126-130.; Мухина А.А., Кузьменко Н.Б., Родина Ю.А., Хорева А.Л., Моисеева А.А., Швец О.А., Кондратенко И.В., Латышева Т.В., Латышева Е.А., Костинова А.М., Пащенко О.Е., Пампура А.Н., Зиновьева Н.В., Зимин С.Б., Ильина Н.И., Бологов А.А., Продеус А.П., Балашов Д.Н., Фомина Д.С., Деордиева Е.А., Кутлянцева А.Ю., Вахлярская С.С., Барычева Л.Ю., Куба нова Л.Т., Хачирова Л.С., Сибгатулина Ф.И., Тузанкина И.А., Болков М.А., Шахова Н.В., Камалтынова Е.М., Хайруллина Р.М., Кальметьева Л.Р., Пролыгина Д.Д., Давлетбаева Г.А., Мирсаяпова И.А., Сулима Е.И., Гусева М.Н., Тотолян А.А., Миличкина А.М., Кузнецова Р.Н., Рычкова О.А., Кузьмичева К.П., Грахова М.А., Селезнева О.С., Юдина Н.Б., Орлова Е.А., Самофалова Т.В., Букина Т.В., Мигачева Н.Б., Жестков А.В., Бармина Е.В., Парфенова Н.А., Исакова С.Н., Аверина Е.В., Сазонова И.В., Старикова С.Ю., Шилова Т.В., Асекретова Т.В., Супрун Р.Н., Клещенко Е.И., Лебедев В.В., Демихова Е.В., Демихов В.Г., Калинкина В.А., Тимофеева Е.В., Ермакова А.С., Павлова Т.Б., Шинкарева В.М., Горенькова А.В., Дурягина С.Н., Смолева И.В., Александрова Т.П., Бамбаева З.В., Филиппова М.А., Грачева Е.М., Цывкина Г.И., Ефременков Е.В., Машковская Д.В., Яровая И.В., Алексеенко В.А., Фисюн И.В., Молокова Г.В., Троицкая Е.В., Гольцман Е.А., Пяткина Л.И., Власова Е.В., Уханова О.П., Чернышова Е.Г., Васильева М.М., Лаба О.М., Володина Е.В., Ипатова М.Г., Воронин К.А., Гуркина М.В., Щербина А.Ю., Новичкова Г.А., Румянцев А.Г. Эпидемиология первичных иммунодефицитов в Российской Федерации // Педиатрия им. Г.Н. Сперанского. 2020. Т. 99, № 2. С. 16-32.; Тузанкина И.А., Каракина М.Л., Власова Е.В. Анализ клинических проявлений дебюта первичных иммунодефицитов у взрослых // Медицинская иммунология, 2014. Т. 16, № 4. C. 367-374. doi:10.15789/1563-0625-2014-4-367-374.; Agostoni A., Aygören-Pürsün E., Binkley K.E., Blanch A., Bork K., Bouillet L., Bucher C., Castaldo A.J., Cicardi M., Davis A.E., de Carolis C., Drouet C., Duponchel C., Farkas H., Fáy K., Fekete B., Fischer B., Fontana L., Füst G., Giacomelli R., Gröner A., Hack C.E., Harmat G., Jakenfelds J., Juers M., Kalmár L., Kaposi P.N., Karádi I., Kitzinger A., Kollár T., Kreuz W., Lakatos P., Longhurst H.J., Lopez-Trascasa M., Martinez-Saguer I., Monnier N., Nagy I., Németh E., Nielsen E.W., Nuijens J.H., O’grady C., Pappalardo E., Penna V., Perricone C., Perricone R., Rauch U., Roche O., Rusicke E., Späth P.J., Szendei G., Takács E., Tordai A., Truedsson L., Varga L., Visy B., Williams K., Zanichelli A., Zingale L. Hereditary and acquired angioedema: problems and progress: proceedings of the third C1 esterase inhibitor deficiency workshop and beyond. J. Allergy Clin. Immunol., 2004, Vol. 114, no. 3 Suppl., pp. S51-131.; Ariano A., D’Apolito M., Bova M., Bellanti F., Loffredo S., D’Andrea G., Intrieri M., Petraroli A., Maffione A.B., Spadaro G., Santacroce R., Margaglione M. A myoferlin gain-of-function variant associates with a new type of hereditary angioedema. Allergy, 2020, Vol. 75, no. 11, pp. 2989-2992.; Bafunno V., Firinu D., D’Apolito M., Cordisco G., Loffredo S., Leccese A., Bova M., Barca M.P., Santacroce R., Cicardi M., del Giacco S., Margaglione M. Mutation of the angiopoietin-1 gene (ANGPT1) associates with a new type of hereditary angioedema. J. Allergy Clin. Immunol., 2018. Vol. 141, no. 3, pp. 1009-1017.; Bork K., Wulff K., Möhl B.S., Steinmüller-Magin L., Witzke G., Hardt J., Meinke P. Novel hereditary angioedema linked with a heparan sulfate 3-O-sulfotransferase 6 gene mutation. J. Allergy Clin. Immunol., 2021, Vol. 148, no. 4, pp. 1041-1048.; Bova M., de Feo G., Parente R., De Pasquale T., Gravante C., Pucci S., Nettis E., Triggiani M. Hereditary and Acquired Angioedema: Heterogeneity of Pathogenesis and Clinical Phenotypes. Int. Arch. Allergy Immunol., 2018. Vol. 175, no. 3, pp. 126-135.; Bousfiha A., Jeddane L., Picard C., Al-Herz W., Ailal F., Chatila T., Cunningham-Rundles C., Etzioni A., Franco J.L., Holland S.M., Klein C., Morio T., Ochs H.D., Oksenhendler E., Puck J., Torgerson T.R., Casanova J.L., Sullivan K.E., Tangye S.G. Human inborn errors of immunity: 2019 Update of the IUIS Phenotypical Classification. J. Clin. Immunol., 2020, Vol. 40, no. 1, pp. 66-81.; Busse P.J., Christiansen S.C. Hereditary Angioedema. N. Engl. J. Med., 2020, Vol. 382, pp. 1136-1148.; Caballero T., Baeza M.L., Cabañas R., Campos A., Cimbollek S., Gómez-Traseira C. Spanish Study Group on Bradykinin-Induced Angioedema (SGBA). Consensus statement on the diagnosis, management, and treatment of angioedema mediated by bradykinin. Part II. Treatment, follow-up, and special situations. J. Investig. Allergol. Clin. Immunol., 2011, Vol. 21, no. 6, pp. 422-441.; Cao Y., Liu S., Zhi Y. Advances in the pathogenesis of hereditary angioedema. Zhongguo yi xue ke xue Yuan xue bao, 2020, Vol. 42, no. 5, pp. 686-690. (In Chinese); Craig T. Triggers and short-term prophylaxis in patients with hereditary angioedema. Allergy Asthma Proc., 2020, Vol. 41, pp. S30-S34.; de Maat S., Joseph K., Maas C., Kaplan A.P. Blood Clotting and the Pathogenesis of Types I and II Hereditary Angioedema. Clin. Rev. Allergy Immunol., 2021, Vol. 60, no. 3, pp. 348-356.; Ferrara A.L., Cristinziano L., Petraroli A., Bova M., Gigliotti M. C., Marcella S., Modestino L., Varricchi G., Braile M., Galdiero M.R., Spadaro G., Loffredo S. Roles of immune cells in hereditary angioedema. Clin. Rev. Allerg. Immunol., 2021, Vol. 60, pp. 369-382.; Franz M., Rodriguez H., Lopes C., Zuberi K., Montojo J., Bader G.D., Morris Q. GeneMANIA update 2018. Nucleic Acids Res., 2018, Vol. 46, no. W1, pp. W60-W64.; Germenis A.E., Margaglione M., Pesquero J.B., Farkas H., Cichon S., Csuka D., Lera A.L., Rijavec M., Jolles S., Szilagyi A., Trascasa M.L., Veronez C.L., Drouet C., Zamanakou M.; Hereditary Angioedema International Working Group. International Consensus on the Use of Genetics in the Management of Hereditary Angioedema. J. Allergy Clin. Immunol. Pract., 2020, Vol. 8, no. 3, pp. 901-911.; Kalmаr L., Hegedüs T., Farkas H., Nagy M., Tordai A. HAEdb: a novel interactive, locus-specific mutation database for the C1 inhibitor gene. Hum. Mutat., 2005, Vol. 25, no. 1, pp. 1-5.; Kaplan A.P., Joseph K. Pathogenesis of Hereditary Angioedema: The Role of the Bradykinin-Forming Cascade. Immunol. Allergy Clin. North Am., 2017, Vol. 37. no. 3. pp. 513-525.; Kim C.Y., Baek S., Cha J., Yang S., Kim E., Marcotte E.M., Hart T., Lee I. HumanNet v3: an improved database of human gene networks for disease research. Nucleic Acids Res., 2022, Vol. 50, no. D1, pp. D632-D639.; Loffredo S., Bova M., Suffritti C., Borriello F., Zanichelli A., Petraroli A., Varricchi G., Triggiani M., Cicardi M., Marone G. Elevated plasma levels of vascular permeability factors in C1 inhibitor-deficient hereditary angioedema. Allergy, 2016, Vol. 71, no. 7, pp. 989-996.; Maetzel A., Smith M.D., Duckworth E.J., Hampton S.L., De Donatis G.M., Murugesan N., Rushbrooke L.J., Li L., Francombe D., Feener E.P., Yea C.M. KVD900, an oral on-demand treatment for hereditary angioedema: Phase 1 study results. J. Allergy Clin. Immunol., 2022, Vol. 149, no. 6, pp. 2034-2042.; Margaglione M., D’Apolito M., Santocroce R., Maffione A.B. Hereditary angioedema: Looking for bradykinin production and triggers of vascular permeability. Clin. Exp. Allergy, 2019, Vol. 49, no. 11, pp. 1395-1402.; Maurer M., Grattan C.E.H., Zuraw B.L. Urticaria and angioedema without wheals. Allergy (Fourth Edition), 2012, pp. 247-261.; Mendoza-Alvarez A., Muñoz-Barrera A., Rubio-Rodríguez L.A., Marcelino-Rodriguez I., Corrales A., Iñigo-Campos A., Callero A., Perez-Rodriguez E., Garcia-Robaina J.C., González-Montelongo R., Lorenzo-Salazar J.M., Flores C. Interactive Web-Based Resource for Annotation of Genetic Variants Causing Hereditary Angioedema (HADA): Database Development, Implementation, and Validation. J. Med. Internet Res., 2020, Vol. 22, no. 10, e19040. doi:10.2196/19040.; Mukhina A.A., Kuzmenko N.B., Rodina Y.A., Kondratenko I.V., Bologov A.A., Latysheva T.V., Prodeus A.P., Pampura A.N., Balashov D.N., Ilyina N.I., Latysheva E.A., Deordieva E.A., Shvets O.A., Deripapa E.V., Abramova I.N., Pashenko O.E., Vahlyarskaya S.S., Zinovyeva N.V., Zimin S.B., Skorobogatova E.V., Machneva E.B., Fomina D.S., Ipatova M.G., Barycheva L.Y., Khachirova L.S., Tuzankina I.A., Bolkov M.A., Shakhova N.V., Kamaltynova E.M., Sibgatullina F.I., Guseva M.N., Kuznetsova R.N., Milichkina A.M., Totolian A.A., Kalinina N.M., Goltsman E.A., Sulima E.I., Kutlyanceva A.Y., Moiseeva A.A., Khoreva A.L., Nesterenko Z., Tymofeeva E.V., Ermakova A., Proligina D.D., Kalmetieva L.R., Davletbaieva G.A., Mirsayapova I.A., Richkova O.A., Kuzmicheva K.P., Grakhova M.A., Yudina N.B., Orlova E.A., Selezneva O.S., Piskunova S.G., Samofalova T.V., Bukina T.V., Pechkurova A.D., Migacheva N., Zhestkov A., Barmina E.V., Parfenova N.A., Isakova S.N., Averina E.V., Sazonova I.V., Starikova S.Y., Shilova T.V., Asekretova T.V., Suprun R.N., Kleshchenko E.I., Lebedev V.V., Demikhova E.V., Demikhov V.G., Kalinkina V.A., Gorenkova A.V., Duryagina S.N., Pavlova T.B., Shinkareva V.M., Smoleva I.V., Aleksandrova T.P., Bambaeva Z.V., Philippova M.A., Gracheva E.M., Tcyvkina G.I., Efremenkov A.V., Mashkovskaya D., Yarovaya I.V., Alekseenko V.A., Fisyun I.V., Molokova G.V., Troitskya E.V., Piatkina L.I., Vlasova E.V., Ukhanova O., Chernishova E.G., Vasilieva M., Laba O.M., Volodina E., Safonova E.V., Voronin K.A., Gurkina M.V., Rumyantsev A.G., Novichkova G.A., Shcherbina A.Y. Primary Immunodeficiencies in Russia: Data From the National Registry. Front. Immunol., 2020, Vol. 11, 1491. doi:10.3389/fimmu.2020.01491.; Nzeako U.C., Frigas E., Tremaine W.J. Hereditary angioedema: a broad review for clinicians. Arch. Intern. Med., 2001, Vol. 161, no. 20, pp. 2417-2429.; Patel G., Pongracic J.A. Hereditary and acquired angioedema. Allergy Asthma Proc., 2019. Vol. 40, no. 6, pp. 441-445.; Ponard D., Gaboriaud C., Charignon D., Ghannam A., Wagenaar-Bos I.G.A., Roem D., López-Lera A., López-Trascasa M., Tosi M., Drouet C. SERPING1 mutation update: Mutation spectrum and C1 Inhibitor phenotypes. Hum. Mutat., 2020, Vol. 41, no. 1, pp. 38-57.; Rosi-Schumacher M., Shah S.J., Craig T., Goyal N. Clinical manifestations of hereditary angioedema and a systematic review of treatment options. Laryngoscope Investig. Otolaryngol., 2021, Vol. 6, no. 3, pp. 394-403.; Santacroce R., D’Andrea G., Maffione A.B., Margaglione M., d’Apolito M. The Genetics of Hereditary Angioedema: A Review. J. Clin. Med., 2021, Vol. 10, no. 9, 2023. doi:10.3390/jcm10092023.; Veronez C.L., Csuka D., Sheikh F.R., Zuraw B.L., Farkas H., Bork K. The Expanding Spectrum of Mutations in Hereditary Angioedema. J. Allergy Clin. Immunol. Pract., 2021, Vol. 9, no. 6, pp. 2229-2234.; Warde-Farley D., Donaldson S.L., Comes O., Zuberi K., Badrawi R., Chao P., Franz M., Grouios C., Kazi F., Lopes C.T., Maitland A., Mostafavi S., Montojo J., Shao Q., Wright G., Bader G.D., Morris Q. The GeneMANIA prediction server: biological network integration for gene prioritization and predicting gene function. Nucleic Acids Res., 2010, Vol. 38, pp. W214-220.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2579

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2579
https://doi.org/10.15789/1563-0625-AOB-2579

المؤلفون: L. N. Bubnova, I. E. Pavlova, A. S. Berkos, M. A. Terentyeva, T. V. Glazanova, L. V. Erokhina, E. V. Belyaeva, A. V. Chechetkin, N. S. Bashketova, I. G. Chkhindzheria, M. А. Kozhemyakina, D. V. Azarov, R. N. Kuznetsova, Areg A. Totolyan, Л. Н. Бубнова, И. Е. Павлова, А. С. Беркос, М. А. Терентьева, Т. В. Глазанова, Л. В. Ерохина, Е. В. Беляева, А. В. Чечеткин, Н. С. Башкетова, И. Г. Чхинджерия, М. А. Кожемякина, Д. В. Азаров, Р. Н. Кузнецова, Арег А. Тотолян

المساهمون: нет

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 23, № 3 (2021); 523-532 ; Медицинская иммунология; Том 23, № 3 (2021); 523-532 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: гаплотипы, HLA, alleles, haplotypes, аллели

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2334/1391; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8123; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8124; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8125; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8126; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8127; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8128; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8129; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8130; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8131; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8132; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8165; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2334/8196; Бубнова Л.Н., Беляева Е.В., Беркос А.С., Ерохина Л.В. Регистр доноров гемопоэтических стволовых клеток Санкт-Петербурга // Вестник гематологии, 2005. Т. 1, № 1. С. 33-37.; Павлова И.Е., Глазанова Т.В., Рыжевнина Ю.Е., Кузнецов К.В., Петровская М.Н., Кузнецов С.И., Воронова И.В., Беляева Е.В., Розанова О.Е., Беркос А.С., Моисеева Л.М., Ерохина Л.В., Бакай В.В., Чечет-кин А.В., Бубнова Л.Н. Иммуногенетическая характеристика потенциальных доноров гемопоэтических стволовых клеток Поволжья // Трансфузиология, 2018. Т. 21, № 3. С. 25-37.; Павлова И.Е., Глазанова Т.В., Рыжевнина Ю.Е., Беляева Е.В., Беркос А.С., Моисеева Л.М., Ерохина Л.В., Бакай В.В., Чечеткин А.В., Бубнова Л.Н. Иммуногенетическая характеристика доноров крови г. Санкт-Петербурга, выразивших свое согласие стать донорами гемопоэтических стволовых клеток // Трансфузиология, 2017. Т. 8, № 2. С. 31-40.; Bubnova L.N., Zaitseva G.A., Erokhina L.V., Berkos A.S., Reutova N.V A comparative study of HLA-A and HLA-В antigens and haplotype distribution among donors of hematopoietic stem cells from Russian and German regions. Cellular Therapy and Transplantation, 2008, Vol. 1, no. 1, pp. 28-34.; de Sousa E., Ligeiro D., Lerias J., Zhang C., Agrati C., Osman M., El-Kafrawy S.A., Azhar E.I., Ippolito G., Wang F.S., Zumla A., Maeurer M. Mortality in COVID-19 disease patients: correlating the association of major histocompatibility complex (MHC) with severe acute respiratory syndrome 2 (SARS-CoV-2) variants. Int. J. Infect. Dis., 2020, Vol. 98, pp. 454-459.; Iturrieta-Zuazo I., Geraldine Rita C., Garcla-Soidan A., de Malet Pintos-Fonseca A., Alonso-Alarcon N., Pariente-Rodrlguez R., Tejeda-Velarde A., Serrano-Villar S., Castaner-Alabau J., Nieto-Ganana I. Possible role of HLA class-I genotype in SARS-CoV-2 infection and progression: a pilot study in a cohort of Covid-19 Spanish patients. Clin. Immunol., 2020, Vol. 219, 108572. doi:10.1016/j.clim.2020.108572.; Littera R., Campagna M., Deidda S., Angioni G., Cipri S., Melis M., Firinu D., Santus S., Lai A., Porcella R., Lai S., Rassu S., Scioscia R., Meloni F., Schirru D., Cordeddu W, Kowalik M.A., Serra M., Ragatzu P, Carta M.G., Del Giacco S., Restivo A., Deidda S., Orru S., Palimodde A., Perra R., Orru G., Conti M., Balestrieri C., Serra G., Onali S., Marongiu F., Perra A., Chessa L. Human leukocyte antigen complex and other immunogenetic and clinical factors influence susceptibility or protection to SARS-CoV-2 infection and severity of the disease course. The sardinian experience. Front. Immunol., 2020, Vol. 11, 605688. doi:10.3389/fimmu.2020.605688.; Lorente L., Martin M., Franco A., Barrios Y., Caceres J., Sole-Violan J., Perez A., Marcos J., Ramos Y., Ramos-Gomez L., Ojeda N., Jimenez A. HLA genetic polymorphisms and prognosis of patients with COVID-19. Med. Intensiva, 2021, Vol. 45, no. 2, pp. 96-103.; Nguyen A., David J., Maden S., Wood M., Weeder B., Nellore A., Thompson R. Human leukocyte antigen susceptibility map for severe acute respiratory syndrome Coronavirus 2. J. Virol., 2020, Vol. 94, no. 13, e00510-20. doi:10.1128/JVI.00510-20.1128/JVI.00510-20.; Novelli A., Andreani M., Biancolella M., Liberatoscioli L., Passarelli C., Colona V, Rogliani P, Leonardis F. HLA allele frequencies and susceptibility to COVID-19 in a group of 99 Italian patients. HLA, 2020, Vol. 96, no. 5, pp. 610-614.; Rosenbaum J., Hamilton H., Weisman M., Reveille J., Winthrop K., Choi D. The effect of HLA-B27 on susceptibility and severity of COVID-19. J. Rheumatol., 2020, 200939. doi:10.3899/jrheum.200939; Sakuraba A., Haider H., Sato T. Population difference in allele frequency of HLA-C*05 and its correlation with COVID-19 mortality. Viruses, 2020, Vol. 12, no. 11, 1333. doi:10.3390/v12111333.; Shomuradova A., Vagida M., Sheetikov S., Zornikova K., Kiryukhin D., Titov A., Peshkova I., Khmelevskaya A., Dianov D., Malasheva M., Shmelev A., Serdyuk Y., Bagaev D., Pivnyuk A., Shcherbinin D., Maleeva A., Shakirova N., Pilunov A., Malko D., Khamaganova E., Biderman B., Ivanov A., Shugay M., Efimov G. SARS-CoV-2 epitopes are recognized by a public and diverse repertoire of human T cell receptors. Immunity, 2020, Vol. 53, pp. 1245-1257.; Wang W., Zhang W., Zhang J., He J., Zhu F. Distribution of HLA allele frequencies in 82 Chinese individuals with coronavirus disease-2019 (COVID-19). HLA, 2020, Vol. 96, no. 2, pp. 194-196.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2334

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2334
https://doi.org/10.15789/1563-0625-DPO-2334

المؤلفون: N. M. Lazareva, O. P. Baranova, I. V. Kudryavtsev, N. A. Arsentieva, N. E. Liubimova, T. P. Ses’, M. M. Ilkovich, Areg A. Totolian, Н. М. Лазарева, О. П. Баранова, И. В. Кудрявцев, Н. А. Арсентьева, Н. Е. Любимова, Т. П. Сесь, М. М. Илькович, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 23, № 1 (2021); 73-86 ; Медицинская иммунология; Том 23, № 1 (2021); 73-86 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: плазма крови, chemokines, CXCL9, CXCL10, CXCL11, CXCR3 ligands, peripheral blood, plasma, хемокины, CXCR3 лиганды

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2181/1346; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7378; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7379; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7380; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7381; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7382; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7383; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7384; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7385; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7386; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7387; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7388; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2181/7389; Арсентьева Н.А., Семенов А.В., Жебрун Д.А., Васильева Е.В., Тотолян А.А. Роль хемокинового рецептора CXCR3 и его лигандов при некоторых иммунопатологических состояниях // Медицинская иммунология, 2019. Т. 21, № 4. С. 617-632. doi:10.15789/1563-0625-2019-4-617-632.; Баранова О.П., Кудрявцев И.В., Лазарева Н.М., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Цитотоксические Т-лимфоциты при хроническом течении саркоидоза // Российский иммунологический журнал, 2018. Т. 12 (21), № 4. С. 605-608.; Илькович М.М. Диффузные паренхиматозные заболевания легких. М.: ГЕОТАР-Медиа, 2021. 440 с. [Ilkovich M.M. Diffuse parenchymal lung diseases]. Moscow: GEOTAR-Media, 2021. 440 p.; Кудрявцев И.В., Борисов А.Г., Кробинец И.И., Савченко А.А., Серебрякова М.К., Тотолян А.А. Хемокиновые рецепторы на Т-хелперах различного уровня дифференцировки: основные субпопуляции // Медицинская иммунология, 2016. T. 18, № 3. С. 239-250. doi:10.15789/1563-0625-2016-3-239-250.; Лазарева Н.М., Кудрявцев И.В., Баранова О.П., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Субпопуляционный состав цитотоксических Т-лимфоцитов периферической крови при саркоидозе // Российский иммунологический журнал, 2018. Т. 12 (21), № 3. С. 348-353.; Лазарева Н.М., Кудрявцев И.В., Баранова О.П., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Анализ субпопуляций В-лимфоцитов в периферической крови больных саркоидозом при разной степени активности заболевания // Медицинская иммунология, 2019. Т. 21, № 6. С. 1081-1098. doi:10.15789/1563-0625-2019-6-1081-1098.; Лазарева Н.М., Баранова О.П., Кудрявцев И.В., Арсентьева Н.А., Любимова Н.Е., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Особенности цитокинового профиля при саркоидозе // Медицинская иммунология, 2020. Т. 22, № 5. С. 993-1002. doi:10.15789/1563-0625-FOC-2064.; Aksoy M.O., Yang Y., Ji R., Reddy P.J., Shahabuddin S., Litvin J., Rogers T.J., Kelsen S.G. CXCR3 surface expression in human airway epithelial cells: cell cycle dependence and effect on cell proliferation. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol., 2006, Vol. 290, no. 5, pp. 909-918.; Antonelli A., Ferrari S.M., Frascerra S. et al. Increase of circulating CXCL9 and CXCL11 associated with euthyroid or subclinically hypothyroid autoimmune thyroiditis. J. Clin. Endocrinol. Metab., 2011, Vol. 96, pp. 1859-1863.; Antonelli A., Ferrari S.M., Frascerra S. et al. Circulating chemo-kine (CXC motif) ligand (CXCL) 9 is increased in aggressive chronic autoimmune thyroiditis, in association with CXCL10. Cytokine, 2011, Vol. 55, pp. 288-293.; Arger N.K., Ho M., Woodruff P.G., Koth L.L. Serum CXCL11 correlates with pulmonary outcomes and disease burden in sarcoidosis. Respir. Med., 2019, Vol. 152, pp. 89-96.; Arger N.K., Ho M.E., Allen I.E., Benn B.S., Woodruff P.G., Koth L.L. CXCL9 and CXCL10 are differentially associated with systemic organ involvement and pulmonary disease severity in sarcoidosis. Respir. Med., 2020, Vol. 161, 105822. doi:10.1016/j.rmed.2019.105822.; Bertolini T.B., Piñeros A.R., Prado R.Q., Gembre A.F., Ramalho L.N.Z., Alves-Filho J.C., Bonato V.L.D. CCR4-dependent reduction in the number and suppressor function of CD4+Foxp3+ cells augments IFN-γ-mediated pulmonary inflammation and aggravates tuberculosis pathogenesis. Cell Death Dis., 2018, Vol. 10, no. 1, 11. doi:10.1038/s41419-018-1240-3.; Broos C.E., van Nimwegen M., Hoogsteden H.C., Hendriks R.W., Kool M., van den Blink B. Granuloma formation in pulmonary sarcoidosis. Front. Immunol., 2013, Vol. 10, no. 4, 437. doi:10.3389/fimmu.2013.00437.; Chappell A.G., Cheung W.Y., Hutchings H.A. Sarcoidosis: a long-term follow up study. Sarcoidosis Vasc. Diffuse. Lung. Dis., 2000, Vol. 17, no. 2, pp. 167-173.; Cole K.E., Strick C.A., Paradis T.J., Ogborne K.T., Loetscher M., Gladue R.P., Lin W., Boyd J.G., Moser B., Wood D.E., Sahagan B.G., Neote K. Interferoninducible T cell alpha chemoattractant (I-TAC): a novel non-ELR CXC chemokine with potent activity on activated T cells through selective high affinity binding to CXCR3. J. Exp. Med., 1998, Vol. 187, no. 12, pp. 2009-2021.; Colvin R.A., Campanella G.S., Sun J., Luster A.D. Intracellular domains of CXCR3 that mediate CXCL9, CXCL10, and CXCL11 function. J. Biol. Chem., 2004, Vol. 279, no. 29, pp. 30219-30227.; Cooke G., Govender P., Watson C.J., Armstrong M.E., O’Dwyer D.N., Keane M.P., King R., Tynan A., Dunn M., Donnelly S.C. Sarcoidosis, alveolar β-actin and pulmonary fibrosis. QJM, 2013, Vol. 106, no. 10, pp. 897-902.; Fallahi P., Ferri C., Ferrari S.M. et al. Cytokines and HCV-related disorders. Clin. Dev. Immunol., 2012, Vol. 2012, 468107. doi:10.1155/2012/468107.; Garcia-Lopez M.A., Sanchez-Madrid F., Rodriguez-Frade J.M., Mellado M., Acevedo A., Garcia M.I., Albar J.P., Martinez C., Marazuela M. CXCR3 chemokine receptor distribution in normal and inflamed tissues: expression on activated lymphocytes, endothelial cells, and dendritic cells. Lab. Invest., 2001, Vol. 81, pp. 409-418.; Geyer A.I., Kraus T., Roberts M., Wisnivesky J., Eber C.D., Hiensch R., Moran T.M. Plasma level of interferon γ induced protein 10 is a marker of sarcoidosis disease activity. Cytokine, 2013, Vol. 64, no. 1, pp. 152-157.; Groom J.R., Luster A.D. CXCR3 ligands: redundant, collaborative and antagonistic functions. Immunol. Cell Biol., 2011, Vol. 89, no. 2, pp. 207-215.; Hunninghake G.W., Costabel U., Ando M., Baughman R., Cordier J.F., du Bois R., Eklund A., Kitaichi M., Lynch J., Rizzato G., Rose C., Selroos O., Semenzato G., Sharma O.P. ATS/ERS/WASOG statement on sarcoidosis. American thoracic society/European respiratory society/world association of sarcoidosis and other granulomatous disorders. Sarcoidosis Vasc. Diffuse. Lung. Dis., 1999, Vol. 16, no. 2, pp. 149-173.; Jiang D., Huang X., Geng J., Dong R., Li S., Liu Z., Wang C., Dai H. Pulmonary fibrosis ina mouse model of sarcoid granulomatosis induced by booster challenge with Propionibacterium acnes. Oncotarget, 2016, Vol. 7, no. 23, pp. 33703-33714.; Kishi J., Nishioka Y., Kuwahara T., Kakiuchi S., Azuma M., Aono Y., Makino H., Kinoshita K., Kishi M., Batmunkh R., Uehara H., Izumi K., Sone S. Blockade of Th1 chemokine receptors ameliorates pulmonary granulomatosis in mice. Eur. Respir. J., 2011, Vol. 38, no. 2, pp. 415-424.; Kriegova E., Fillerova R., Tomankova T., Hutyrova B., Mrazek F., Tichy T., Kolek V., du Bois R.M., Petrek M. T-helper cell type-1 transcription factor T-bet is upregulated in pulmonary sarcoidosis. Eur. Respir. J., 2011, Vol. 38, no. 5, pp. 1136-1144.; Lacotte S., Brun S., Muller S. et al. CXCR3, inflammation, and autoimmune diseases. Ann. N. Y. Acad. Sci., 2009, Vol. 1173, pp. 310-317.; Lasagni L., Francalanci M., Annunziato F., Lazzeri E., Giannini S., Cosmi L., Sagrinati C., Mazzinghi B., Orlando C., Maggi E., Marra F., Romagnani S., Serio M., Romagnani P. An alternatively spliced variant of CXCR3 mediates the inhibition of endothelial cell growth induced by IP-10, Mig, and I-TAC, and acts as functional receptor for platelet factor 4. J. Exp. Med., 2003, Vol. 197, pp. 1537-1549.; Lee E.Y., Lee Z.H., Song Y.W. The interaction between CXCL10 and cytokines in chronic inflammatory arthritis. Autoimmun. Rev., 2013, Vol. 12, pp. 554-557.; Medoff B.D., Wain J.C., Seung E., Jackobek R., Means T.K., Ginns L.C., Farber J.M., Luster A.D. CXCR3 and its ligands in a murine model of obliterative bronchiolitis: regulation and function. J. Immunol., 2006, Vol. 176, no. 11, pp. 7087-7095.; Mollers M., Aries S.P., Dromann D., Mascher B., Braun J., Dalhoff K. Intracellular cytokine repertoire in different T cell subsets from patients with sarcoidosis. Thorax, 2001, Vol. 56, no. 6, pp. 487-493.; Muehlinghaus G., Cigliano L., Huehn S., Peddinghaus A., Leyendeckers H., Hauser A.E. Regulation of CXCR3 and CXCR4 expression during terminal differentiation of memory B cells into plasma cells. Blood, 2005, Vol. 105, pp. 3965-3971.; Nishioka Y., Manabe K., Kishi J. et al. CXCL9 and 11 in patients with pulmonary sarcoidosis: a role of alveolar macrophages. Clin. Exp. Immunol., 2007, Vol. 149, pp. 317-326.; Nureki S., Miyazaki E., Ando M., Ueno T., Fukami T., Kumamoto T., Sugisaki K., Tsuda T. Circulating levels of both Th1 and Th2 chemokines are elevated in patients with sarcoidosis. Respir. Med., 2008, Vol. 102, no. 2, pp. 239-247.; Ohmori Y., Wyner L., Narumi S., Armstrong D., Stoler M., Hamilton T.A. Tumor necrosis factor-alpha induces cell type and tissue-specific expression of chemoattractant cytokines in vivo. Am. J. Pathol., 1993, Vol. 142, no. 3, pp. 861-870.; Piotrowski W.J., Młynarski W., Fendler W. et al. Chemokine receptor CXCR3 ligands in bronchoalveolar lavage fluid: associations with radiological pattern, clinical course, and prognosis in sarcoidosis. Pol. Arch. Med. Wewn., 2014, Vol. 124, pp. 395-402.; Prasse A., Georges C.G., Biller H., Hamm H., Matthys H., Luttmann W., Virchow J.C. Th1 cytokine pattern in sarcoidosis is expressed by bronchoalveolar CD4+ and CD8+ T cells. Clin. Exp. Immunol., 2000, Vol. 122, no. 2, pp. 241-248.; Proost P., Verpoest S., Van de Borne K., Schutyser E., Struyf S., Put W., Ronsse I., Grillet B., Opdenakker G., van Damme J. Synergistic induction of CXCL9 and CXCL11 by Toll-like receptor ligands and interferon-gamma in fibroblasts correlates with elevated levels of CXCR3 ligands in septic arthritis synovial fluids. J. Leukoc. Biol., Vol. 75, no. 5, pp. 777-784.; Proost P., Vynckier A.K., Mahieu F., Put W., Grillet B., Struyf S., Wuyts A., Opdenakker G., Van Damme J. Microbial Toll-like receptor ligands differentially regulate CXCL10/IP-10 expression in fibroblasts and mononuclear leukocytes in synergy with IFN-gamma and provide a mechanism for enhanced synovial chemokine levels in septic arthritis. Eur. J. Immunol., 2003, Vol. 33, no. 11, pp. 3146-3153.; Ragusa F. Sarcoidosis and Th1 chemokines. Clin Ter., 2015, Vol. 166, no. 1, pp. e72-e76.; Ragusa F. Sarcoidosis and the Th1 chemokine MIG. Clin Ter., 2018, Vol. 169, no. 6, pp. e308-e313.; Sakthivel P., Bruder D. Mechanism of granuloma formation in sarcoidosis. Curr. Opin. Hematol., 2017, Vol. 24, no. 1, pp. 59-65.; Smit M.J., Verdijk P., van der Raaij-Helmer E.M. et al. CXCR3-mediated chemotaxis of human T cells is regulated by a Gi- and phospholipase C-dependent pathway and not via activation of MEK/p44/p42 MAPK nor Akt/PI-3 kinase. Blood, 2003, Vol. 102, pp. 1959-1965.; Strieter R.M., Burdick M.D., Gomperts B.N., Belperio J.A., Keane M.P. CXC chemokines in angiogenesis. Cytokine Growth Factor Rev., 2005, Vol. 16, no. 6, pp. 593-609.; Su R., Nguyen M.L., Agarwal M.R., et al. Interferon-inducible chemokines reflect severity and progression in sarcoidosis. Respir. Res., 2013, Vol. 14, 121. doi:10.1186/1465-9921-14-121.; Takeuchi M., Oh-I K., Suzuki J. et al. Elevated serum levels of CXCL9/monokine induced by interferon-gamma and CXCL10/interferon-gamma-inducible protein-10 in ocular sarcoidosis. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci., 2006, Vol. 47, pp. 1063-1068.; Torraca V., Cui C., Boland R., Bebelman J.P., van der Sar A.M., Smit M.J., Siderius M., Spaink H.P., Meijer A.H. The CXCR3-CXCL11 signaling axis mediates macrophage recruitment and dissemination of mycobacterial infection. Dis. Model. Mech., 2015, Vol. 8, no. 3, pp. 253-269.; van Raemdonck K., van den Steen P.E., Liekens S., van Damme J., Struyf S. CXCR3 ligands in disease and therapy. Cytokine Growth Factor Rev., 2015, Vol. 26, no. 3, pp. 311-327.; Xanthou G., Duchesnes C.E., Williams T.J., Pease J.E. CCR3 functional responses are regulated by both CXCR3 and its ligands CXCL9, CXCL10 and CXCL11. Eur. J. Immunol., 2003, Vol. 33, no. 8, pp. 2241-2250.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2181

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2181
https://doi.org/10.15789/1563-0625-CCR-2181

المؤلفون: N. M. Lazareva, O. P. Baranova, I. V. Kudryavtsev, N. A. Arsentieva, N. E. Liubimova, T. P. Ses’, M. M. Ilkovich, Areg A. Totolian, Н. М. Лазарева, О. П. Баранова, И. В. Кудрявцев, Н. А. Арсентьева, Н. Е. Любимова, Т. П. Сесь, М. М. Илькович, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 22, № 5 (2020); 993-1002 ; Медицинская иммунология; Том 22, № 5 (2020); 993-1002 ; 2313-741X ; 1563-0625

مصطلحات موضوعية: плазма крови, cytokines, chemokines, growth factors, peripheral blood plasma, цитокины, хемокины, ростовые факторы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2064/1318; Баранова О.П., Кудрявцев И.В., Лазарева Н.М., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Цитотоксические Т-лимфоциты при хроническом течении саркоидоза // Российский иммунологический журнал, 2018. Т. 12 (21), № 4. С. 605-608.; Илькович М.М. Интерстициальные и орфанные заболевания легких. М.: ГЕОТАР-Медиа, 2016. 560 с.; Кудрявцев И.В., Борисов А.Г., Кробинец И.И., Савченко А.А., Серебрякова М.К., Тотолян А.А. Хемокиновые рецепторы на Т-хелперах различного уровня дифференцировки: основные субпопуляции // Медицинская иммунология, 2016. T. 18, № 3. С. 239-250. doi:10.15789/1563-0625-2016-3-239-250.; Кудрявцев И.В., Лазарева Н.М., Баранова О.П., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Особенности экспрессии CD57 цитотоксическими Т-лимфоцитами при саркоидозе // Российский иммунологический журнал, 2018. Т. 12 (21), № 3. С. 329-334.; Кудрявцев И.В., Лазарева Н.М., Баранова О.П., Головкин А.С., Исаков Д.В., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Экспрессия CD39 регуляторными Т-лимфоцитами при хроническом и остром саркоидозе // Медицинская иммунология, 2019. Т. 21, № 3. С. 467-478. doi:10.15789/1563-0625-2019-3-467-478.; Лазарева Н.М., Кудрявцев И.В., Баранова О.П., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Субпопуляционный состав цитотоксических Т-лимфоцитов периферической крови при саркоидозе // Российский иммунологический журнал, 2018. Т. 12 (21), № 3. С. 348-353.; Лазарева Н.М., Кудрявцев И.В., Баранова О.П., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Анализ субпопуляций В-лимфоцитов в периферической крови больных саркоидозом при разной степени активности заболевания // Медицинская иммунология, 2019. Т. 21, № 6. С. 1081-1098. doi:10.15789/1563-0625-2019-6-1081-1098.; Aksoy M.O., Yang Y., Ji R., Reddy P.J., Shahabuddin S., Litvin J., Rogers T.J., Kelsen S.G. CXCR3 surface expression in human airway epithelial cells: cell cycle dependence and effect on cell proliferation. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol., 2006, Vol. 290, no. 5, pp. 909-918.; Arger N.K., Ho M.E., Allen I.E., Benn B.S., Woodruff P.G., Koth L.L. CXCL9 and CXCL10 are differentially associated with systemic organ involvement and pulmonary disease severity in sarcoidosis. Respir. Med., 2020, Vol. 161, 105822. doi:10.1016/j.rmed.2019.105822.; d’Ambrosio D., Albanesi C., Lang R., Girolomoni G., Sinigaglia F. and Laudanna C. Quantitative differences in chemokine receptor engagement generate diversity in integrin-dependent lymphocyte adhesion. J. Immunol., 2002, Vol. 169, pp. 2303-2312.; Garcia-Lopez M.A., Sanchez-Madrid F., Rodriguez-Frade J.M., Mellado M., Acevedo A., Garcia M.I., Albar J.P., Martinez C., Marazuela M. CXCR3 chemokine receptor distribution in normal and inflamed tissues: expression on activated lymphocytes, endothelial cells, and dendritic cells. Lab. Invest., 2001, Vol. 81, pp. 409-418.; Greaves S.A., Atif S.M., Fontenot A.P. Adaptive immunity in pulmonary sarcoidosis and chronic beryllium disease. Front. Immunol., 2020, Vol. 11, 474. doi:10.3389/fimmu.2020.00474.; Groom J.R., Luster A.D. CXCR3 ligands: redundant, collaborative and antagonistic functions. Immunol. Cell Biol., 2011, Vol. 89, no. 2, pp. 207-215.; Kobak S. Sarcoidosis: a rheumatologist’s perspective. Ther. Adv. Musculoskelet. Dis., 2015, Vol. 7, no. 5, pp. 196-205.; Miedema J.R., Kaiser Y., Broos C.E., Wijsenbeek M.S., Grunewald J., Kool M. Th17-lineage cells in pulmonary sarcoidosis and Löfgren’s syndrome: friend or foe? J. Autoimmun., 2018, Vol. 87, pp. 82-96.; Muehlinghaus G., Cigliano L., Huehn S., Peddinghaus A., Leyendeckers H., Hauser A.E. Regulation of CXCR3 and CXCR4 expression during terminal differentiation of memory B cells into plasma cells. Blood, 2005, Vol. 105, pp. 3965-3971.; Nguyen C.T.H., Kambe N., Ueda-Hayakawa I., Kishimoto I., Ly N.T.M., Mizuno K., Okamoto H. TARC expression in the circulation and cutaneous granulomas correlates with disease severity and indicates Th2-mediated progression in patients with sarcoidosis. Allergol. Int., 2018, Vol. 67, no. 4, pp. 487-495.; Nishioka Y., Manabe K., Kishi J., Wang W., Inayama M., Azuma M., Sone S. CXCL9 and 11 in patients with pulmonary sarcoidosis: a role of alveolar macrophages. Clin. Exp. Immunol., 2007, Vol. 149, pp. 317-326.; Nureki S., Miyazaki E., Ando M., Ueno T., Fukami T., Kumamoto T., Sugisaki K., Tsuda T. Circulating levels of both Th1 and Th2 chemokines are elevated in patients with sarcoidosis. Respir. Med., 2008, Vol. 102, no. 2, pp. 239-247.; Piotrowski W.J., Kiszałkiewicz J., Górski P., Antczak A., Górski W., Pastuszak-Lewandoska D., MigdalskaSęk M., Domańska-Senderowska D., Nawrot E., Czarnecka K.H., Kurmanowska Z., Brzeziańska-Lasota E. Immunoexpression of TGF-β/Smad and VEGF-A proteins in serum and BAL fluid of sarcoidosis patients. BMC Immunol., 2015, Vol. 16, 58. doi:10.1186/s12865-015-0123-y.; Ragusa F. Sarcoidosis and Th1 chemokines. Clin Ter., 2015, Vol. 166, no. 1, pp. 72-76.; Sakthivel P., Bruder D. Mechanism of granuloma formation in sarcoidosis. Curr. Opin. Hematol., 2017, Vol. 24, no. 1, pp. 59-65.; Strieter R.M., Burdick M.D., Gomperts B.N., Belperio J.A., Keane M.P. CXC chemokines in angiogenesis. Cytokine Growth Factor Rev., 2005, Vol. 16, no. 6, pp. 593-609.; Su R., Nguyen M.L., Agarwal M.R., Kirby C., Nguyen C.P., Ramstein J., Darnell E.P., Gomez A.D., Ho M., Woodruff P.G., Koth L.L. Interferon-inducible chemokines reflect severity and progression in sarcoidosis. Respir. Res., 2013, Vol. 14, 121. doi:10.1186/1465-9921-14-121.; Torraca V., Cui C., Boland R., Bebelman J.P., van der Sar A.M., Smit M.J., Siderius M., Spaink H.P., Meijer A.H. The CXCR3-CXCL11 signaling axis mediates macrophage recruitment and dissemination of mycobacterial infection. DMM, 2015, Vol. 8, no. 3, pp. 253-269.; Tuleta I., Biener L., Pizarro C., Nickenig G., Skowasch D. Proangiogenic and profibrotic markers in pulmonary sarcoidosis. Adv. Exp. Med. Biol., 2018, Vol. 1114, pp. 57-66.; Ziora D., Jastrzębski D., Adamek M., Czuba Z., Kozielski J.J., Grzanka A., Kasperska-Zajac A. Circulating concentration of markers of angiogenic activity in patients with sarcoidosis and idiopathic pulmonary fibrosis. BMC Pulm Med., Vol. 2015, Vol. 15, 113. doi:10.1186/s12890-015-0110-3.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2064

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2064
https://doi.org/10.15789/1563-0625-FOC-2064

المؤلفون: V. V. Basina, N. A. Arsentieva, O. K. Batsunov, N. E. Lyubimova, A. V. Semenov, E. V. Esaulenko, Areg A. Totolian, В. В. Басина, Н. А. Арсентьева, О. К. Бацунов, Н. Е. Любимова, А. В. Семенов, Е. В. Эсауленко, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 21, № 1 (2019); 107-120 ; Медицинская иммунология; Том 21, № 1 (2019); 107-120 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2019-1

مصطلحات موضوعية: предиктор исхода терапии, antiviral therapy, chemokines, fibrosis, MIP-3α, TNFα, CTL CXCR3+, NK CXCR3+, therapy outcome, противовирусная терапия, хемокины, фиброз

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1704/1105; Арсентьева Н.А., Семенов А.В., Любимова Н.Е., Останков Ю.В., Елезов Д.С., Кудрявцев И.В., Басина В.В., Эсауленко Е.В., Козлов К.В., Жданов К.В., Тотолян А.А. Хемокиновые рецепторы CXCR3 и CCR6 и их лиганды в печени и крови больных хроническим вирусным гепатитом С // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 2015. Т. 160, № 8. C. 218-222. [Arsentyeva N.A., Semenov A.V., Lyubimova N.E., Ostankov Yu.V., Elezov D.S., Kudryavtsev I.V., Basina V.V., Esaulenko E.V., Kozlov K.V., Zhdanov K.V., Totolian A.A. Chemokine receptors CXCR3 and CCR6 and their ligands in the liver and blood of patients with chronic hepatitis C. Byulleten eksperimentalnoy biologii i meditsiny = Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 2015, Vol. 160, no. 8, pp. 218-222.(In Russ.)]; Астанина Н.С., Оспельникова Т.П., Киселев О.И., Эсауленко Е.В., Ершов Ф.И. Хронический гепатит С: прогноз эффективности противовирусной терапии // Цитокины и воспаление, 2012. Т. 11, № 1. С. 119-122. [Astanina N.S., Ospelnikova T.P., Kiselev O.I., Esaulenko E.V., Ershov F.I. Chronic hepatitis C: prediction of antiviral therapy effectiveness. Tsitokiny i vospalenie = Cytokines and Inflammation, 2012, Vol. 11, no. 1, pp. 119-122. (In Russ.)]; Жданов К.В., Гусев Д.А., Чирский В.С., Сысоев К.А., Якубовская Л.А., Шахманов Д.М., Тотолян А.А. Хроническая HCV-инфекция и экспрессия мРНК СС-хемокинов и их рецепторов // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии, 2008. № 4. C. 73-78. [Zhdanov K.V., Gusev D.A., Chirsky V.S., Sysoev K.A., Yakubovskaya L.A., Shakhmanov D.M., Totolian A.A. Chronic HCV-infection and expression of mRNA of CC-chemokines and their receptors. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 2008, no. 4, pp. 73-78.(In Russ.)]; Пименов Н.Н., Чуланов В.П., Комарова С.В., Карандашова И.В., Неверов А.Д., Михайловская Г.В., Долгин В.А., Лебедева Е.Б., Пашкина К.В., Коршунова Г.С. Гепатит С в России: эпидемиологическая характеристика и пути совершенствования диагностики и надзора // Эпидемиология и инфекционные болезни, 2012. № 3. С. 4-10. [Pimenov N.N., Chulanov V.P., Komarova S.V., Karandashova I.V., Neverov A.D., Mikhailovskaya G.V., Dolgin V.A., Lebedeva E.B., Pashkina K.V., Korshunova G.S. Hepatitis C in Russia: epidemiological characteristics and ways to improve diagnostics and surveillance. Epidemiologiya i infektsionnye bolezni = Epidemiology and Infectious Diseases, 2012, no. 3, pp. 4-10.(In Russ.)]; Постановление Правительства Российской Федерации от 1 декабря 2004 года № 715 «Об утверждении перечня социально значимых заболеваний и перечня заболеваний, представляющих опасность для окружающих (с изменениями на 13 июля 2012 года)». [Decree of the Government of the Russian Federation No. 715 of December 1, 2004 “On approval of the list of socially significant diseases and the list of diseases that are dangerous for others (as amended on July 13, 2012)”].; Сысоев К.А., Чухловин А.Б., Тотолян А.А. Диагностическая роль определения хемокинов и их рецепторов при хроническом гепатите С // Клиническая лабораторная диагностика, 2013. T. 2. C. 23-29. [Sysoev K.A., Chukhlovin A.B., Totolyan A.A. Diagnostic role of the determination of chemokines and their receptors in chronic hepatitis C. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika = Russian Clinical Laboratory Diagnostics, 2013, Vol. 2, pp. 23-29. (In Russ.)]; Эсауленко Е.В., Никитина О.Е. Обоснование необходимости тройной терапии хронического гепатита С // Инфекционные болезни, 2013. Т. 11, № 2. С. 69-73. [Esaulenko E.V., Nikitina O.E. Rationale of the necessity of triple therapy for chronic hepatitis С. Infektsionnye bolezni = Infectious Diseases, 2013, Vol. 11, no. 2, pp. 69-73.(In Russ.)]; Эсауленко Е.В., Павлова О.О., Го А.А., Осе И.В. Эффективность нового отечественного интерферона альфа-2b в терапии хронического гепатита С: результаты открытого рандомизированного сравнительного исследования // Клинические перспективы гастроэнтерологии, гепатологии, 2007. № 1. С. 29-34. [Esaulenko E.V., Pavlova O.O., Go A.A., Ose I.V. Efficacy of local drug “Altevir ® ” (interferon alpha-2b) in therapy of chronic hepatitis C: results of the open randomized comparative study. Klinicheskie perspektivy gastroenterologii, gepatologii = Clinical Prospects Gastroenterology, Hepatology, 2007, no. 1, pp. 29-34.(In Russ.)]; Ющук Н.Д., Климова Е.А., Знойко О.О., Кареткина Г.Н., Максимов С.Л., Маев И.В. Вирусные ге-патиты: клиника, диагностика, лечение. М.: ГОЭТАР-Медиа, 2011. 162 с. [Yushchuk N.D., Klimova E.A., Znoyko O.O., Karetkina G.N., Maksimov S.L., Maev I.V. Viral hepatitis: clinic, diagnosis, treatment]. Moscow: GOETAR-Media, 2011. 162 p.; Antonelli A., Ferri C., Fallahi P., Ferrari S.M., Frascerra S., Franzoni F., Galetta F., Zignego A.L., Ferrannini E. CXCL10 and CCL2 serum levels in patients with mixed cryoglobulinaemia and hepatitis C. Dig. Liver Dis., 2009, Vol. 41, pp. 42-48.; Apolinario A., Diago M., Lo Iacono O., Lorente R., Pérez C., Majano P.L., Clemente G., García-Monzón C. Increased circulating and intrahepatic T-cell-specific chemokines in chronic hepatitis C: relationship with the type of virological response to peginterferon plus ribavirin combination therapy. Aliment. Pharmacol. Ther., 2004, Vol. 19, no. 5, pp. 551-562.; Bengsch B., Thimme R. CD8 + T-cell differentiation in chronic HCV infection. Future Virol., 2011, Vol. 6, pp. 249-258.; Butera D., Marukian S., Iwamaye A.E. Hembrador E., Chambers Th.J., di Bisceglie A.M., Charles E.D., Talal A.H., Jacobson I.M., Rice Ch.M., Dustin L.B. Plasma chemokine levels correlate with the outcome of antiviral therapy in patients with hepatitis C.Blood, 2005, Vol. 106, no. 4, pp. 1175-1182.; Chisari F.V., Ferrari C. Hepatitis B virus immunopathogenesis. Annu. Rev. Immunol., 1995, Vol. 13, pp. 29-60.; Feld J.J., Hoofnagle J.H. Mechanism of action of interferon and ribavirin in treatment of hepatitis C. Nature, 2005, Vol. 436, pp. 967-972.; He Y., Guo Y., Zhou Y., Zhang Y., Fan Ch., Ji G., Wang Y., Ma Zh., Lian J., Hao Ch., Yao Zh.Q., Jia Zh. CD100 up-regulation induced by interferon-αon B cells is related to hepatitis C virus infection. PLoS ONE, 2014, Vol. 9, no. 12, e113338. doi:10.1371/journal.pone.0113338.; Hellier S., Frodsham A.J., Hennig B.J., Klenerman P., Knapp S., Ramaley P., Satsangi J., Wright M., Zhang L., Thomas H.C., Thursz M., Hill A.V.S. Association of genetic variants of the chemokine receptor CCR5 and its ligands, RANTES and MCP-2, with outcome of HCV infection. Hepatology, 2003, Vol. 38, pp. 1468-1476.; Heydtmann M., Shields Ph., McCaughan G., David A. Cytokines and chemokines in the immune response to hepatitis C infection. Curr. Opin. Infect. Dis., 2001, Vol. 14, p. 279.; Houghton M., Abrignani S. Prospects for a vaccine against the hepatitis C virus. Nature, 2005, Vol. 436, p. 961.; Kamal S.M., Ismail A., Graham C.S., He Q., Rasenack J.W., Peters T., Tawil A.A., Fehr J.J., Khalifa K.S., Madwar M.M., Koziel M.J. Pegylated interferon alpha therapy in acute hepatitis C: relation to hepatitis C virusspecific T cell response kinetics. Hepatology, 2004, Vol. 39, pp. 1721-1731.; Kamal S.M., Fehr J., Roesler B., Peters T., Rasenack J.W. PEG interferon alone or with ribavirin enhances HCV-specific CD4 T-helper 1 responses in patients with chronic hepatitis C. Gastroenterology, 2002, Vol. 123, pp. 1070-1083.; Keeffe E.B., Hollinger F.B. Therapy of hepatitis C: Consensus interferon trials. Hepatology, 1997, Vol. 26, pp. 101S-107S.; Marra F., Romanelli R.G., Giannini C., Failli P., Pastacaldi S., Arrighi M.C., Pinzani M., Laffi G., Montalto P., Gentilini P. Monocyte chemotactic protein-1 as a chemoattractant for human hepatic stellate cells. Hepatology, 1999, Vol. 29, pp. 140-148.; Mizuochi T., Ito M., Saito K., Kasai M., Kunimura T., Morohoshi T., Momose H., Hamaguchi I., Takai K., Iino Sh., Suzuki M., Mochida S., Ikebuchi K., Yamaguchi K. Possible recruitment of peripheral blood CXCR3 + CD27+ CD19+ B cells to the liver of chronic hepatitis C patients. J. Interferon Cytokine Res., 2010, Vol. 30, pp. 243-251.; Napoli J., Bishop G.A., McGuinness P.H., Painter D.M., McCaughan G.W. Progressive liver injury in chronic hepatitis C infection correlates with increased intrahepatic expression of Th1-associated cytokines. Hepatology, 1996, Vol. 24, pp. 759-765.; Negro F., Alberti A. The global health burden of hepatitis C virus infection. Liver Int., 2011, Vol. 31, pp. 1-3.; Oliveira I., Carvalho L., Schinoni M., Paraná R., Atta A.M., Atta M.L.B. Peripheral lymphocyte subsets in chronic hepatitis C: Effects of 12 weeks of antiviral treatment with interferon-alpha plus ribavirin. Microb. Pathog., 2016, Vol. 91, pp. 155-160.; Peters M., Vierling J., Gershwin M.E., Milich D., Chisari F.V., Hoofnagle J.H. Immunology and the liver. Hepatology, 1991, Vol. 13, pp. 977-994.; R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing. Vienna, Austria, 2017. https://www.R-project.org.; Rahman F., Heller Th., Sobao Y., Mizukoshi E., Nascimbeni M., Alter H., Herrine S., Hoofnagle J., Liang T.J., Rehermann B. Effects of antiviral therapy on the cellular immune response in acute hepatitis C. Hepatology, 2004, Vol. 40, pp. 87-97.; Rehermann B., Nascimbeni M. Immunology of hepatitis B virus and hepatitis C virus infection.Nat. Rev. Immunol., 2005, Vol. 5, pp. 215-229.; Shields P.L., Morland C.M., Salmon M., Shixin Q., Hubscher S.G., Adams D.H. Chemokine and chemokine receptor interactions provide a mechanism for selective T cell recruitment to specific liver compartments within hepatitis C-infected liver.J. Immunol., 1999, Vol. 163, no. 11, pp. 6236-6243.; Soldevila B., Alonso N., Martines-Arconada M., Morillas R.M., Planas R., Sanmartí A.M., MartínezCáceres E.M. A prospective study of T- and B-lymphocyte subpopulations, CD81 expression levels on B cells and regulatory CD4 + CD25+ CD127low/-FoxP3 + T cells in patients with chronic HCV infection during pegylated interferonalpha2a plus ribavirin treatment. J. Viral Hepat., 2011, Vol. 18, pp. 384-392.; Trabaud M.A., Bailly F., Si-Ahmed S.N., Chevallier P., Sepetjan M., Colucci G., Trépo C. Comparison of HCV RNA assays for the detection and quantification of hepatitis C virus RNA levels in serum of patients with chronic hepatitis C treated with interferon.J. Med. Virol., 1997, Vol. 52, pp. 105-112.; Yamauchi K., Akbar S.M.F., Horiike N., Michitaka K., Onji M. Increased serum levels of macrophage inflammatory protein-3αin chronic viral hepatitis: prognostic importance of macrophage inflammatory protein-3αduring interferon therapy in chronic hepatitis C. J. Viral Hepat., 2002, Vol. 9, no. 3, pp. 213-220.; Wald O., Weiss I.D., Galun E., Peled A. Chemokines in hepatitis C virus infection: Pathogenesis, prognosis and therapeutics. Cytokine, 2007, Vol. 39, pp. 50-62.; Wiegand J., Cornberg M., Aslan N., Schlaphoff V., Sarrazin C., Kubitschke A., Buggisch P., Ciner A., Jaeckel E., Manns M.P., Wedemeyer H. Fate and function of hepatitis-C-virus-specific T-cells during peginterferonalpha2b therapy for acute hepatitis C. Antivir. Ther., 2007, Vol. 12, no. 3, p. 303.; World Health Organization [Электронный ресурс]: сайт. Режим доступа: http://www.who.int/hepatitis/en/. Дата обращения: 13.11.2016. [World Health Organization [Electronic resource]. Access mode: http://www.who.int/hepatitis/en/. 13.11.2016].; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1704

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1704
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-1-107-120

المؤلفون: E. V. Zueva, I. V. Khamitova, A. M. Melichkina, L. L. Lazarenko, L A. Bakanina, Areg A. Totolian, Е. В. Зуева, И. В. Хамитова, А. М. Меличкина, Л. Л. Лазаренко, Л. А. Баканина, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 21, № 5 (2019); 997-1004 ; Медицинская иммунология; Том 21, № 5 (2019); 997-1004 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2019-5

مصطلحات موضوعية: кожные пробы, inhalation allergens, Phadia, Immulite, skin tests, ингаляционные аллергены

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1804/1201; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1804/5147; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1804/5148; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1804/5149; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1804/5150; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1804/5151; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1804/5152; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1804/5153; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1804/5154; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1804/5155; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1804/5296; Банержи А. Медицинская статистика понятным языком. М.: Практическая медицина, 2007. 287 с.; Гущин И.С. Немедленная аллергия клетки. М.: Медицина, 1976. 176 с.; Зайцев В.М., Савельев С.И. Практическая медицинская статистика: учебное пособие. Тамбов: Цифра, 2013. 580 с.; Клиническая аллергология и иммунология: руководство для практикующих врачей. Под ред. Л.А. Горячкиной, К.П. Кашкина. М.: Миклош, 2011. 430 c.; Общая аллергология. Т. 1. Под ред. Г.Б. Федосеева. СПб.: Нормед-Издат, 2001. 816 с.; Bulat Lokas S., Plavec D., Rikić Pišković J., Živković J., Nogalo B., Turkalj M. Allergen-specific IgE measurement: intermethod comparison of two assay systems in diagnosing clinical allergy. J. Clin. Lab. Anal., 2017, Vol. 31, no. 3, 9 p.; Kleine-Tebbe J., Eickholt M., Gätjen M., Brunnée T., O’Connor A., Kunkel G. Comparison between MAGIC-LITE and CAP-system: two automated specific IgE antibody assays. Clin. Exp. Allergy, 1992, Vol. 22, no. 4, pp. 475-484.; Lee Y.W., Sohn J.H., Lee J.H., Hong C.S., Park J.W. Allergen-specific IgE measurement with the IMMULITE 2000 system: intermethod comparison of detection performance for allergen-specific IgE antibodies from Korean allergic patients. Clin. Chim. Acta., 2009, Vol. 401, pp. 25-32.; Liccardi G., Dente B., Triggiani M., Russo M., Diamare F., Massari A., Pinzarrone R., d’Isanto R., Letizia M., d’Amato M., d’Amato G. A multicenter evaluation of the CARLA System for the measurement of specific IgE antibodies with other different methods and skin prick tests. J. Invest. Allergol. Clin. Immunol., 2002, Vol. 12, no. 4, pp. 235-241.; Hong S.D., Ryu G., Seo M.Y., Jeong J.I., Kim H.Y., Chung S.K., Dhong H.J. Optimal cut-off values of allergen-specific immunoglobulin E to house dust mites and animal dander based on skin-prick test results: analysis in 16,209 patients with allergic rhinitis. Am. J. Rhin. Allergy, 2018, Vol. 32, pp. 23-26.; Park K.H., Lee J., Sim D.W., Lee S.C. Comparison of singleplex specific IgE detection immunoassays: ImmunoCAP Phadia 250 and Immulite 2000 3gAllergy. Ann. Lab. Med., 2018, Vol. 38, pp. 23-31.; Plebani M., Bernardi D., Basso D., Borghesan F., Faggian D. Measurement of specific immunoglobulin E: inter-method comparison and standardization. Clin. Chem., 1998, Vol. 44, pp. 1974-1979.; Ricci G., Capelli M., Miniero R., Menna G., Zannarini L., Dillon P., Masi M. A comparison of different allergometric tests skin prick test, Pharmacia UniCAP and ADVIA Centaur, for diagnosis of allergic diseases in children. Allergy, 2003, Vol. 58, pp. 38-45.; Rowe D.S., Grab B., Anderson S.G. An International Reference Preparation for human serum immunoglobulin E. Bull. World Health Organ., 1973, Vol. 49, no. 3, pp. 320-321.; Sohn M.H., Lee S.Y., Lee K.E., Kim K.E. Comparison of VIDAS stallertest and pharmacia CAP assay for detection of specific IgE antibodies in allergic children. Ann. Clin. Lab. Sci., 2005, Vol. 35, no. 1, pp. 318-322.; Wang J., Godbold J.H., Sampson H.A. Correlation of serum allergy (IgE) tests performed by different assay systems. J. Allergy Clin. Immunol., 2008, Vol. 121, pp. 1219-1224.; Wide L., Bennich H., Johansson S.G. Diagnosis of allergy by an in-vitro test for allergen antibodies. Lancet, 1967, Vol. 2, pp. 1105-1107.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1804

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1804
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-5-997-1004

المؤلفون: N. A. Arsentieva, A. V. Semenov, D. A. Zhebrun, E. V. Vasilyeva, Areg A. Totolian, Н. А. Арсентьева, А. В. Семенов, Д. А. Жебрун, Е. В. Васильева, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 21, № 4 (2019); 617-632 ; Медицинская иммунология; Том 21, № 4 (2019); 617-632 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2019-4

مصطلحات موضوعية: туберкулез, CXCR3, IFNγ-indused ligands, hepatitis C, rheumatoid arthritis, tuberculosis, IFNγ-зависимые лиганды, гепатит С, ревматоидный артрит

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1755/1160; Арсентьева Н.А., Семенов А.В., Тотолян A.A. Роль полиморфизма генов цитокинов при вирусном гепатите С // Инфекция и иммунитет, 2012. T. 2, № 4. С. 687-698. doi:10.15789/2220-7619-2012-4-687-698.; Арсентьева Н.А., Кудрявцев И.В., Елезов Д.С., Семенов А.В., Эсауленко Е.В., Басина В.В., Тотолян А.А. Экспрессия хемокинового рецептора CXCR3 на субпопуляциях В-лимфоцитов периферической крови больных хроническим вирусным гепатитом С // Медицинская иммунология, 2013. T. 15, № 5. С. 471- 476 doi:10.15789/1563-0625-2013-5-471-476.; Арсентьева Н.А., Семенов А.В., Любимова Н.Е., Басина В.В., Эсауленко Е.В., Козлов К.В., Жданов К.В., Тотолян А.А. Содержание цитокинов и хемокинов в плазме крови больных хроническим вирусным гепатитом С // Российский иммунологический журнал, 2015. Т. 9, № 18. С. 83-92.; Арсентьева Н.А., Семенов А.В., Любимова Н.Е., Останкова Ю.В., Елезов Д.С., Кудрявцев И.В., Басина В.В., Эсауленко Е.В., Козлов К.В., Жданов К.В., Тотолян А.А. Хемокиновые рецепторы CXCR3 и CCR6 и их лиганды в печени и крови больных хроническим вирусным гепатитом С // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 2015. Т. 160, № 8. С. 218-222.; Васильева Е.В., Вербов В.Н., Никитина И.Ю., Любимова Н.Е., Арсентьева Н.А., Семенов А.В., Лядова И.В., Тотолян А.А. Информативность определения спонтанной и специфической продукции цитокинов для оценки активности туберкулезного процесса // Вестник уральской медицинской академической науки, 2012. T. 4, № 41. C. 99-100.; Васильева Е.В., Вербов В.Н., Ивановский В.Б., Жемкова М.Ф., Никитина И.Ю., Лядова И.В., Тотолян А.А. Комбинированное определение спонтанной и антигениндуцированной продукции цитокинов для дифференциальной диагностики активного туберкулеза легких и латентной туберкулезной инфекции // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии, 2013. T. 4. C. 77-85.; Васильева Е.В., Лапин С.В., Блинова Т.В., Никитина И.Ю., Лядова И.В., Вербов В.Н., Тотолян Арег А. Сравнительная ценность квантиферонового теста, неоптерина и специфических противотуберкулезных антител для клинико-лабораторной диагностики туберкулеза легких // Клиническая лабораторная диагностика, 2013. T. 5. C. 21-26.; Васильева Е.В., Паукер М.Н., Грицай И.Ю., Прибыток Е.В., Вербов В.Н., Тотолян А.А. Возможности и ограничения теста Quantiferon TB-Gold in tube в лабораторной диагностике туберкулеза легких // Туберкулез и болезни легких, 2013. Т. 2. C. 13-17.; Васильева Е.В., Вербов В.Н., Тотолян А.А. Иммунологические методы в дифференциальной диагностике активного туберкулеза легких и латенной туберкулезной инфекции // Медицинский альянс, 2015. T. 1. C. 92-93.; Васильева Е.В., Пантелеев А.М., Вербов В.Н., Тотолян А.А. Значение квантиферонового теста и IP-10 в диагностике туберкулеза у пациетов с ВИЧ-инфекцией // Медицинская иммунология, 2015. T. 17. C. 131-132. doi:10.15789/1563-0625-2015-3s-129-144.; Елезов Д.С., Кудрявцев И.В., Арсентьева Н.А., Семенов А.В., Эсауленко Е.В., Басина В.В., Тотолян А.А. Анализ субпопуляций Т-хелперов периферической крови больных хроническим вирусным гепатитом С, экспрессирующих хемокиновые рецепторы CXCR3 и CCR6 и активационные маркеры CD38 и HLA-DR // Инфекция и иммунитет, 2013. T. 3, № 4. C. 327-334. doi:10.15789/2220-7619-2013-4-327-334.; Елезов Д.С., Кудрявцев И.В., Арсентьев Н.А., Басин В.В., Эсауленко Е.В., Семенов А.В., Тотолян А.А. Анализ популяций Т-хелперных клеток памяти, экспрессирующих хемокиновые рецепторы CXCR3 и CCR6, в периферической крови больных хроническим вирусным гепатитом С // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 2015. T. 160, № 8. C. 204-208.; Жебрун, Д.А., Маслянский А.Л., Титов А.Г., Патрухин А.П., Костарева А.А., Гольцева И.С, Тотолян A.A. Определение мРНК ангиогенных и ангиостатических хемокинов и их рецепторов в синовиальной оболочке методом количественной ПЦР в реальном времени // Медицинская иммунология, 2013. Т. 15, № 6. C. 525-534. doi:10.15789/1563-0625-2013-6-525-534.; Жебрун Д.А., Тотолян A.A., Маслянский А.Л., Титов А.Г., Патрухин А.П., Костарева А.А., Гольцева И.С. Синтез ангиогенных и ангиостатических CXC-хемокинов и их рецепторов в синовиальной оболочке при ревматоидном артрите // Цитокины и воспаление, 2014. Т. 13, № 2. С. 39-44.; Жебрун Д.А., Маслянский А.Л., Титов А.Г., Патрухин А.П., Костарева А.А., Гольцева И.С., Арсентьева Н.А., Любимова Н.С., Тотолян А.А. Содержание некоторых хемокинов в нормальной синовиальной жидкости // Медицинская иммунология, 2014. T. 16, № 2. C. 189-194. doi:10.15789/1563-0625-2014-2-189-194.; Жебрун Д.А., Маслянский А.Л., Титов А.Г., Патрухин А.П., Костарева А.А., Гольцева И.С., Арсентьева Н.А., Любимова Н.Е., Тотолян А.А. Содержание хемокинов, регулирующих ангиогенез, в синовиальной жидкости больных ревматоидным артритом // Научно-практическая ревматология, 2015. T. 1, № 53. C. 58- 62.; Кудрявцев И.В., Борисов А.Г., Кробинец И.И., Савченко А.А., Серебрякова М.К., Тотолян А.А. Хемокиновые рецепторы на Т-хелперах различного уровня дифференцировки: основные субпопуляции // Медицинская иммунология, 2016. T. 18, № 3. С. 239-250. doi:10.15789/1563-0625-2016-3-239-250.; Никитин В.Ю., Сухина И.А., Цыган В.Н., Гусев Д.А. Иммунологическая характеристика стадий хронического гепатита С и оценка факторов иммунной системы как прогностических критериев течения заболевания // Журнал инфектологии, 2009. T. 1, № 1. C. 30-40.; Семенов А.В., Арсентьева Н.А., Елезов Д.С., Кудрявцев И.В., Эсауленко Е.В., Тотолян А.А. Особенности популяционного состава CXCR3-положительных лимфоцитов периферической крови больных хроническим вирусным гепатитом С // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии, 2013. T. 6. C. 69-75.; Семенов А.В., Арсентьева Н.А., Любимова Н.Е., Тюленев С.В., Басина В.В., Эсауленко Е.В., Тотолян А.А. Роль цитокинов и хемокинов в лабораторной диагностике хронического вирусного гепатита С // Клиническая лабораторная диагностика, 2015. T. 60, № 8. C. 45-51.; Ярилин А.А. Иммунология. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2010. 749 c.; Antonelli A., Ferrari S.M., Giuggioli D., Ferrannini E., Ferri C., Fallahi P. Chemokine (C-X-C motif) ligand (CXCL)10 in autoimmune diseases. Autoimmun. Rev., 2014, Vol. 13, no. 3, pp. 272-280.; Azzurri A., Sow O.Y., Amedei A., Bah B., Diallo S., Peri G., Benagiano M., d’Elios M.M., Mantovani A., del Prete G. IFN-gamma-inducible protein 10 and pentraxin 3 plasma levels are tools for monitoring inflammation and disease activity in Mycobacterium tuberculosis infection. Microbes Infect., 2005, Vol. 7, no. 1, pp. 1-8.; Bachelerie F., Graham G.J., Locati M., Mantovani A., Murphy P.M., Nibbs R., Rot A., Sozzani S., Thelen M. New nomenclature for atypical chemokine receptors. Nat. Immunol., 2014, Vol. 15, pp. 207-208.; Bacon K., Baggiolini M., Broxmeyer H., Horuk R., Lindley I., Mantovani A., Maysushima K., Murphy P., Nomiyama H., Oppenheim J., Rot A., Schall T., Tsang M., Thorpe R., van Damme J., Wadhwa M., Yoshie O., Zlotnik A., Zoon K. Chemokine/chemokine receptor nomenclature. J. Interferon Cytokine Res., 2002, Vol. 22, pp. 1067-1068.; Balestrieri M.L., Balestrieri A., Mancini F.P., Napoli C. Understanding the immunoangiostatic CXC chemokine network. Cardiovasc Res., 2008, Vol. 78, pp. 250-256.; Barash U., Zohar Y., Wildbaum G., Beider K., Nagler A., Karin N., Ilan N., Vlodavsky I. Heparanase enhances myeloma progression via CXCL10 downregulation. Leukemia, 2014, Vol. 28, no. 11, pp. 2178-2187.; Berchiche Y.A., Sakmar T.P. CXC chemokine receptor 3 alternative splice variants selectively activate different signaling pathways. Mol. Pharmacol., 2016, Vol. 90, pp. 483-495.; Blauenfeldt T., Petrone L., Del Nonno F., Baiocchini A., Falasca L., Chiacchio T., Bondet V., Vanini V., Palmieri F., Galluccio G., Casrouge A., Eugen-Olsen J., Albert M.L., Goletti D., Duffy D., Ruhwald M.Н. Interplay of DDP4 and IP-10 as a Potential Mechanism for Cell Recruitment to Tuberculosis Lesions. Front. Immunol., 2018, Vol. 9, p. 1456.; Bowen D.G., Walker C.M. Adaptive immune responses in acute and chronic hepatitis C virus infection. Nature, 2005, Vol. 436, no. 7053, pp. 946-952.; Butcher E.C., Picker L.J. Lymphocyte homing and homeostasis. Science, 1996, Vol. 272, no. 5258, pp. 60-66.; Casrouge A., Decalf J., Ahloulay M., Lababidi C., Mansour H., Vallet-Pichard A., Mallet V., Mottez E., Mapes J., Fontanet A., Pol S., Albert M.L. Evidence for an antagonist form of the chemokine CXCL10 in patients chronically infected with HCV. J. Clin. Invest., 2011, Vol. 121, no. 1, pp. 308-317.; Cole K.E., Strick C.A., Paradis T.J., Ogborne K.T., Loetscher M., Gladue R.P., Lin W., Boyd J.G., Moser B., Wood D.E., Sahagan B.G., Neote K. Interferon-inducible T cell alpha chemoattractant (I-TAC): a novel non-ELR CXC chemokine with potent activity on activated T cells through selective high affinity binding to CXCR3. J. Exp. Med., 1998, Vol. 187, pp. 2009-2021.; Corsiero E., Nerviani A., Bombardieri M., Pitzalis C. Ectopic lymphoid structures: powerhouse of autoimmunity. Front. Immunol., 2016, Vol. 7, p. 430.; Dai X., Tan Y., Cai S., Xiong X., Wang L., Ye Q., Yan X., Ma K., Cai L. The role of CXCR7 on the adhesion, proliferation and angiogenesis of endothelial progenitor cells. J. Cell Mol. Med., 2011, Vol. 15, pp. 1299-1309.; Dominguez M., Miquel R., Colmenero J., Moreno M., Garcia-Pagan J.C., Bosch J., Arroyo V., Ginès P., Caballería J., Bataller R. Hepatic expression of CXC chemokines predicts portal hypertension and survival in patients with alcoholic hepatitis. Gastroenterology, 2009, Vol. 136, pp. 1639-1650.; Ehlert J.E., Addison C.A., Burdick M.D., Kunkel S.L., Strieter R.M. Identification and partial characterization of a variant of human CXCR3 generated by posttranscriptional exon skipping. J. Immunol., 2004, Vol. 173, pp. 6234- 6240.; Ejaeidi A.A., Craft B.S., Puneky L.V., Lewis R.E., Cruse J.M. Hormone receptor-independent CXCL10 production is associated with the regulation of cellular factors linked to breast cancer progression and metastasis. Exp. Mol. Pathol., 2015, Vol. 99, no. 1, pp. 163-172.; Erdem H., Pay S., Musabak U., Simsek I., Dinc A., Pekel A., Sengul P.S. Synovial angiostatic non-ELR CXC chemokines in inflammatory arthritides: does CXCL4 designate chronicity of synovitis? Rheumatol. Int., 2007, Vol. 27, pp. 969-973.; Fahey S., Dempsey E., Long A. The role of chemokines in acute and chronic hepatitis C infection. Cell. Mol. Immunol., 2014, Vol. 11, pp. 25-40.; Farber J.M. A macrophage mRNA selectively induced by gamma-interferon encodes a member of the platelet factor 4 family of cytokines. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1990, Vol. 87, pp. 5238-5242.; Furuya M., Yoneyama T., Miyagi E., Tanaka R., Nagahama K., Miyagi Y., Nagashima Y., Hirahara F., Y., Aoki I. Differential expression patterns of CXCR3 variants and corresponding CXC chemokines in clear cell ovarian cancers and endometriosis. Gynecol. Oncol., 2011, Vol. 122, pp. 648-655.; Garcia-Lopez M.A., Sanchez-Madrid F., Rodriguez-Frade J.M., Mellado M., Acevedo A., Garcia M.I., Albar J.P., Martínez C., Marazuela M. CXCR3 chemokine receptor distribution in normal and inflamed tissues: expression on activated lymphocytes, endothelial cells, and dendritic cells. Lab. Invest., 2001, Vol. 81, pp. 409-418.; Groom J.R., Luster A.D. CXCR3 ligands: redundant, collaborative and antagonistic functions. Immunol. Cell Biol., 2011, Vol. 89, pp. 207-215.; Handel T.M., Johnson Z., Crown S.E., Lau E.K., Proudfoot A.E. Regulation of protein function by glycosaminoglycans – as exemplified by chemokines. Annu. Rev. Biochem., 2005, Vol. 74, pp. 385-410.; Hartl D., Krauss-Etschmann S., Koller B., Hordijk P.L., Kuijpers T.W., Hoffmann F., Hector A., Eber E., Marcos V., Bittmann I., Eickelberg O., Griese M., Roos D. Infiltrated neutrophils acquire novel chemokine receptor expression and chemokine responsiveness in chronic inflammatory lung diseases. J. Immunol., 2008, Vol. 18, pp. 8053-8067.; Helbig K.J., Ruszkiewicz A., Semendric L., Harley H.A., McColl S.R., Beard M.R. Expression of the CXCR3 ligand I-TAC by hepatocytes in chronic hepatitis C and its correlation with hepatic inflammation. Hepatology, 2004, Vol. 39, pp. 1220-1229.; Jinquan T., Jing C., Jacobi H.H., Reimert C.M., Millner A., Quan S., Quan S., Hansen J.B., Dissing S., Malling H.J., Skov P.S., Poulsen L.K. CXCR3 expression and activation of eosinophils: role of IFN-gamma-inducible protein-10 and monokine induced by IFN-gamma. J. Immunol., 2000, Vol. 165, pp. 1548-1556.; Juffermans N.P., Verbon A., van Deventer S.J., van Deutekom H., Belisle J.T., Ellis M.E., Speelman P., van der Poll T. Elevated chemokine concentrations in sera of human immunodeficiency virus (HIV)-seropositive and HIV-seronegative patients with tuberculosis: a possible role for mycobacterial lipoarabinomannan. Infect. Immun., 1999, Vol. 67, pp. 4295-4297.; Kaplan G., Luster A.D., Hancock G., Cohn Z.A. The expression of a gamma interferon-induced protein (IP- 10) in delayed immune responses in human skin. J. Exp. Med., 1987, Vol. 166, pp. 1098-1108.; Keeley E.C., Mehrad B., Strieter R.M. Chemokines as mediators of tumor angiogenesis and neovascularization. Exp. Cell Res., 2011, Vol. 317, pp. 685-690.; Kim C.H., Rott L., Kunkel E.J., Genovese M.C., Andrew D.P., Wu L., Butcher E.C. Rules of chemokine receptor association with T cell polarization in vivo. J. Clin. Invest., 2001, Vol. 108, no. 9, pp. 1331-1339.; Koch M.A., Tucker-Heard G., Perdue N.R., Killebrew J.R., Urdahl K.B., Campbell D.J. The transcription factor T-bet controls regulatory T cell homeostasis and function during type 1 inflammation. Nat. Immunol., 2009, Vol. 10, pp. 595-602.; Korniejewska A., McKnight A.J., Johnson Z., Watson M.L., Ward S.G. Expression and agonist responsiveness of CXCR3 variants in human T lymphocytes. Immunology, 2011, Vol. 132, pp. 503-515.; Kuo J.H., Chen Y.P., Liu J.S., Dubrac A., Quemener C., Prats H., Bikfalvi A., Wu W.G., Sue S.C. Alternative C-terminal helix orientation alters chemokine function: structure of the anti-angiogenic chemokine, CXCL4L1.J. Biol. Chem., 2013, Vol. 288, pp. 13522-13533.; Lane B.R., King S.R., Bock P.J., Strieter R.M., Coffey M.J., Markovitz D.M. The C-X-C chemokine IP-10 stimulates HIV-1 replication. Virology, 2003, Vol. 307, no. 1, pp. 122-134.; Larrubia J.R., Benito-Martinez S., Calvino M., Sanz-de-Villalobos E., Parra-Cid T. Role of chemokines and their receptors in viral persistence and liver damage during chronic hepatitis C virus infection. World J. Gastroenterol., 2008, Vol. 14, pp. 7149-7159.; Lasagni L., Francalanci M., Annunziato F., Lazzeri E., Giannini S., Cosmi L., Sagrinati C., Mazzinghi B., Orlando C., Maggi E., Marra F., Romagnani S., Serio M., Romagnani P. An alternatively spliced variant of CXCR3 mediates the inhibition of endothelial cell growth induced by IP-10, Mig, and I-TAC, and acts as functional receptor for platelet factor 4. J. Exp. Med., 2003, Vol. 197, pp. 1537-1549.; Lasagni L., Grepin R., Mazzinghi B., Lazzeri E., Meini C., Sagrinati C., Liotta F., Frosali F., Ronconi E., Alain-Courtois N., Ballerini L., Netti G.S., Maggi E., Annunziato F., Serio M., Romagnani S., Bikfalvi A., Romagnani P. PF-4/CXCL4 and CXCL4L1exhibit distinct subcellular localization and a differentially regulated mechanism of secretion. Blood, 2007, Vol. 109, pp. 4127-4134.; Lee H.H., Farber J.M. Localization of the gene for the human MIG cytokine on chromosome 4q21 adjacent to INP10 reveals a chemokine “mini-cluster”. Cytogenet. Cell Genet., 1996, Vol. 74, pp. 255-258.; Lee K., Chung W., Jung Y., Kim Y., Park J., Sheen S., Park K. CXCR3 ligands as clinical markers for pulmonary tuberculosis. Int. J. Tuberc. Lung Dis., 2015, Vol. 19, no. 2, pp. 191-199.; Loetscher M., Gerber B., Loetscher P., Jones S.A., Piali L., Clark-Lewis I., Baggiolini M., Moser B. Chemokine receptor specific for IP10 and mig: structure, function, and expression in activated T-lymphocytes. J. Exp. Med., 1996, Vol. 184, pp. 963-969.; Loetscher M., Loetscher P., Brass N., Meese E., Moser B. Lymphocyte-specific chemokine receptor CXCR3: regulation, chemokine binding and gene localization. Eur. J. Immunol., 1998, Vol. 28, pp. 3696-3705.; Loos T., Dekeyzer L., Struyf S., Schutyser E., Gijsbers K., Gouwy M., Fraeyman A., Put W., Ronsse I., Grillet B., Opdenakker G., van Damme J., Proost P. TLR ligands and cytokines induce CXCR3 ligands in endothelial cells: enhanced CXCL9 in autoimmune arthritis. Lab. Invest., 2006, Vol. 86, pp. 902-916.; Luster A.D., Unkeless J.C., Ravetch J.V. Gamma-interferon transcriptionally regulates an early-response gene containing homology to platelet proteins. Nature, 1985, Vol. 315, pp. 672-676.; Luster A.D., Greenberg S.M., Leder P. The IP-10 chemokine binds to a specific cell surface heparan sulfate site shared with platelet factor 4 and inhibits endothelial cell proliferation. J. Exp. Med., 1995, Vol. 182, pp. 219-231.; Marra F. Chemokines in liver inflammation and fibrosis. Front. Biosci., 2002, Vol. 7, pp. 1899-1914.; Metzemaekers M., van Damme J., Mortier A., Proost P. Regulation of chemokines activity – a focus on the role of dipeptidyl peptidase IV/CD26. Front. Immunol., 2016, Vol. 7, p. 483.; Mizuochi T., Ito M., Saito K., Kunimura T., Morohoshi T., Momose H., Hamaguchi I., Takai K., Iino S., Suzuki M., Mochida S., Ikebuchi K., Yamaguchi K. Possible recruitment of peripheral blood CXCR3+ CD27+CD19+B cells to the liver of chronic hepatitis C patients. J. Interferon Cytokine Res., 2010, Vol. 30, no. 4, pp. 243-251.; Mlecnik B., Tosolini M., Charoentong P., Kirilovsky A., Bindea G., Berger A., Camus M., Gillard M., Bruneval P., Fridman W.H., Pagès F., Trajanoski Z., Galon J. Biomolecular network reconstruction identifies T-cell homing factors associated with survival in colorectal cancer. Gastroenterology, 2010, Vol. 138, no. 4, pp. 1429-1440.; Moelants E.A., Mortier A., van Damme J., Proost P. In vivo regulation of chemokine activity by posttranslational modification. Immunol. Cell Biol., 2013, Vol. 91, pp. 402-407.; Moir S., Ho J., Malaspina A., Wang W., DiPoto A.C. Evidence for HIV-associated B cell exhaustion in a dysfunctional memory B cell compartment in HIV-infected individuals. J. Exp. Med., 2008, Vol. 205, no. 8, pp. 1797- 1805.; Mortier A., van Damme J., Proost P. Overview of the mechanisms regulating chemokine activity and availability. Immunol. Lett., 2012, Vol. 154, pp. 2-9.; Muehlinghaus G., Cigliano L., Huehn S., Peddinghaus A., Leyendeckers H., Hauser A.E., Regulation of CXCR3 and CXCR4 expression during terminal differentiation of memory B cells into plasma cells. Blood, 2005, Vol. 105, pp. 3965-3971.; Nawaz M.I., van Raemdonck K., Mohammad G., Kangave D., van Damme J., Abu El-Asrar A.M., Struyf S. Autocrine CCL2, CXCL4, CXCL9 and CXCL10 signal in retinal endothelial cells and are enhanced in diabetic retinopathy. Exp. Eye Res., 2013, Vol. 109, pp. 67-76.; Ohmori Y., Hamilton T.A. The interferon-stimulated response element and a kappa B site mediate synergistic induction of murine IP-10 gene transcription by IFN-gamma and TNF-alpha. J. Immunol., 1995, Vol. 154, no. 10, pp. 5235-5244.; Opdenakker G., Proost P., van Damme J. Microbiomic and posttranslational modifications as preludes to autoimmune diseases. Trends Mol. Med., 2016, Vol. 22, pp. 746-757.; Patel D.D., Zachariah J.P., Whichard L.P. CXCR3 and CCR5 ligands in rheumatoid arthritis synovium. Clin. Immunol., 2001, Vol. 98, pp. 39-45.; Petrucci R., Abu Amer N., Gurgel R.Q., Sherchand J.B., Doria L., Lama C., Ravn P., Ruhwald M., Yassin M., Harper G., Cuevas L.E. Interferon gamma, interferon-gamma-induced-protein 10, and tuberculin responses of children at high risk of tuberculosis infection. Pediatr Infect. Dis. J., 2008, Vol. 27, no. 12, pp. 1073-1707.; Pharoah D.S., Varsani H., Tatham R.W., Newton K.R., de Jager W., Prakken B.J. Expression of the inflammatory chemokines CCL5, CCL3 and CXCL10 in juvenile idiopathic arthritis, and demonstration of CCL5 production by an atypical subset of CD8+ T cells. Arthritis Res. Ther., 2006, Vol. 8, no. 2, R50. doi:10.1186/ar1913.; Poggi A., Zancolli M., Catellani S., Borsellino G., Battistini L., Zocchi M.R. Migratory pathways of gammadelta T cells and response to CXCR3 and CXCR4 ligands: adhesion molecules involved and implications for multiple sclerosis pathogenesis. Ann. N. Y. Acad. Sci., 2007, Vol. 1107, pp. 68-78.; Proost P., Vynckier A.K., Mahieu F., Put W., Grillet B., Struyf S., Wuyts A., Opdenakker G., van Damme J. Microbial Toll like receptor ligands differentially regulate CXCL10/IP-10 expression in fibroblasts and mononuclear leukocytes in synergy with IFN-gamma and provide a mechanism for enhanced synovial chemokine levels in septic arthritis. Eur. J. Immunol., 2003, Vol. 33, pp. 3146-3153.; Proost P., Verpoest S., van de Borne K., Schutyser E., Struyf S., Put W., Ronsse I., Grillet B., Opdenakker G., van Damme J. Synergistic induction of CXCL9 and CXCL11 by Toll-like receptor ligands and interferon-gamma in fibroblasts correlates with elevated levels of CXCR3 ligands in septic arthritis synovial fluids. J. Leukoc. Biol., 2004, Vol. 75, pp. 777-784.; Racanelli V., Frassanito M.A., Leone P., Galiano M., de Re V., Silvestris F., Dammacco Racanelli F. Antibody production and in vitro behavior of CD27-defined B-cell subsets: persistent hepatitis C virus infection changes the rules. J. Virol., 2006, Vol. 80, no. 8, pp. 3923-3934.; Reinhart T.A. Chemokine induction by HIV-1: recruitment to the cause. Trends Immunol., 2003, Vol. 24, no. 7, pp. 351-353.; Rhode A., Pauza M.E., Barral A.M., Rodrigo E., Oldstone M.B., von Herrath M.G. Christen U. Islet-specific expression of CXCL10 causes spontaneous islet infiltration and accelerates diabetes development. J. Immunol., 2005, Vol. 175, pp. 3516-3524.; Romagnani P., Lasagni L., Annunziato F., Serio M., Romagnani S. CXC chemokines: the regulatory link between inflammation and angiogenesis. Trends Immunol., 2004, Vol. 25, pp. 201-209.; Rosenkilde M.M., Schwartz T.W. The chemokine system – a major regulator of angiogenesis in health and disease. APMIS, 2004, Vol. 112, pp. 481-495; Russo R.C., Garcia C.C., Teixeira M.M., Amaral F.A. The CXCL8/IL-8 chemokine family and its receptors in inflammatory diseases. Expert Rev. Clin. Immunol., 2014, Vol. 10, pp. 593-619.; Sahin H., Borkham-Kamphorst E., do O N.T., Berres M.L., Kaldenbach M., Schmitz P., Weiskirchen R., Liedtke C., Streetz K.L., Maedler K., Trautwein C., Wasmuth H.E. Proapoptotic effects of the chemokine, CXCL 10 are mediated by the noncognate receptor TLR4 in hepatocytes. Hepatology, 2013, Vol. 57, no. 2, pp. 797-805.; Schulthess F.T., Paroni F., Sauter N.S., Shu L., Ribaux P., Haataja L., Strieter R.M., Oberholzer J., King C.C., Maedler K. CXCL10 impairs beta cell function and viability in diabetes through TLR4 signaling. Cell Metab., 2009, Vol. 9, pp. 125-139.; Shute J. Glycosaminoglycan and chemokine/growth factor interactions. Handb. Exp. Pharmacol., 2012, Vol. 207, pp. 307-324.; Struyf S., Salogni L., Burdick M.D., Vandercappellen J., Gouwy M., Noppen S., Proost P., Opdenakker G., Parmentier M., Gerard C., Sozzani S., Strieter R.M., van Damme J. Angiostatic and chemotactic activities of the CXC chemokine CXCL4L1 (platelet factor-4 variant) are mediated by CXCR3. Blood, 2011, Vol. 117, pp. 480-488.; Szabo S.J., Kim S.T., Costa G.L., Zhang X., Fathman C.G., Glimcher L.H. A novel transcription factor, T-bet, directs Th1 lineage commitment. Cell, 2000, Vol. 100, pp. 655-669.; Tacke F., Zimmermann H.W., Berres M.L., Trautwein C., Wasmuth H.E. Serum chemokines receptor CXCR3 ligands are associated with progression, organ dysfunction and complications of chronic liver diseases. Liver Int., 2011,Vol. 31, no. 6, pp. 840-849.; Taqueti V.R., Grabie N., Colvin R., Pang H., Jarolim P., Luster A.D., Glimcher L.H., Lichtman A.H. T-bet controls pathogenicity of CTLs in the heart by separable effects on migration and effector activity. J. Immunol., 2006, Vol. 177, pp. 5890-5901.; Tensen C.P., Flier J., van der Raaij-Helmer E.M., Sampat-Sardjoepersad S., van der Schors R.C., Leurs R., Scheper R.J., Boorsma D.M., Willemze R. Human IP-9: a keratinocyte-derived high affinity CXC-chemokine ligand for the IP-10/Mig receptor (CXCR3). J. Invest Dermatol., 1999, Vol. 112, pp. 716-722.; Tworek D., Kuna P., Młynarski W., Gorski P., Pietras T., Antczak A. MIG (CXCL9), IP-10 (CXCL10) and I-TAC (CXCL11) concentrations after nasal allergen challenge in patients with allergic rhinitis. Arch. Med. Sci., 2013, Vol. 9, no. 5, pp. 849-853.; van Raemdonck K., van den Steen P.E., Liekens S., van Damme J., Struyf S. CXCR3 ligands in disease and therapy. Cytokine Growth Factor Rev., 2015, Vol. 26, pp. 311-327.; Wasmuth H.E., Lammert F., Zaldivar M.M., Weiskirchen R., Hellerbrand C., Scholten D., Berres M.L., Zimmermann H., Streetz K.L., Tacke F., Hillebrandt S., Schmitz P., Keppeler H., Berg T., Dahl E., Gassler N., Friedman S.L., Trautwein C. Antifibrotic effects of CXCL9 and its receptor CXCR3 in livers of mice and humans. Gastroenterology, 2009, Vol. 137, pp. 309-319.; Yamamoto T., Chikugo T., Tanaka Y. Elevated plasma levels of beta-thromboglobulin and platelet factor 4 in patients with rheumatic disorders and cutaneous vasculitis. Clin. Rheumatol., 2002, Vol. 21, pp. 501-504.; Yan X.J., Dozmorov I., Li W., Yancopoulos S., Sison C., Centola M., Jain P., Allen S.L., Kolitz J.E., Rai K.R., Chiorazzi N., Sherry B. Identification of outcome-correlated cytokine clusters in chronic lymphocytic leukemia. Blood, 2011, Vol. 118, no. 19, pp. 5201-5210.; Zaldivar M.M., Pauels K., von Hundelshausen P., Berres M.L., Schmitz P., Bornemann J., Kowalska M.A., Gassler N., Streetz K.L., Weiskirchen R., Trautwein C., Weber C., Wasmuth H.E. CXC chemokine ligand 4 (Cxcl4) is a platelet-derived mediator of experimental liver fibrosis. Hepatology, 2010, Vol. 51, pp. 1345-1353.; Zeng Y.J., Lai W., Wu H., Liu L., Xu H.Y., Chu Z.H. Neuroendocrine-like cells-derived CXCL10 and CXCL11 induce the infiltration of tumor-associated macrophage leading to the poor prognosis of colorectal cancer. Oncotarget., 2016, Vol. 7, no. 19, pp. 27394-27407.; Zeremski M., Dimova R., Brown Q., Jacobson I.M., Markatou M., Talal A.H. Peripheral CXCR3-associated chemokines as biomarkers of fibrosis in chronic hepatitis C virus infection. J. Infect. Dis., 2009, Vol. 200, no. 11, pp. 1774-1780.; Zhang L., Hao C.Q., Miao L., Dou X.G. Role of Th1/Th2 cytokines in serum on the pathogenesis of chronic hepatitis C and the outcome of interferon therapy. Genet. Mol. Res., 2014, Vol. 13, no. 4, pp. 9747-9755.; Zlotnik A., Yoshie O. Chemokines: a new classification system and their role in immunity. Immunity, 2000, Vol. 12, pp. 121-127.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1755

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1755
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-4-617-632

المؤلفون: O. Yu. Tkachenko, S. V Lapin, A. A. Shmonin, L. N. Solovyova, E. A. Bondareva, S. A. Selkov, S. V. Chepanov, Areg A. Totolian, Dirk Roggenbuck, О. Ю. Ткаченко, С. В. Лапин, А. А. Шмонин, Л. H. Соловьева, E. А. Бондарева, С. А. Сельков, С. В. Чепанов, Арег А. Тотолян, Дирк Роггенбук

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 20, № 5 (2018); 753-762 ; Медицинская иммунология; Том 20, № 5 (2018); 753-762 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2018-5

مصطلحات موضوعية: новые методы, antiphospholipid antibodies, enzyme-linked immunosorbent assays, multi-line dot assay, new methods, антифосфолипидные антитела, иммуноферментный анализ, лайнблоттинг

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1644/1068; Лапин С.В., Мазинг А.В., Булгакова Т.В., Маслянский А.Л., Иливанова Е.П., Козаренко А.А., Тотолян А.А. Аналитические и диагностические характеристики отечественной тест-системы для выявления антител к циклическому цитруллиновому пептиду // Клиническая лабораторная диагностика, 2011. № 12. С. 12-17.; Лапин С.В., Тотолян А.А. Иммунологическая лабораторная диагностика аутоиммунных заболеваний. СПб.: Человек, 2006. 128 с.; Лапин С.В., Тотолян А.А. Иммунологическая лабораторная диагностика аутоиммунных заболеваний. СПб.: Человек, 2010. 272 с.; Созина А.В., Иливанова Е.П., Шульман А.М., Шульман М.А., Шемеровская Т.Г., Лапин С.В., Тотолян А.А. Клинико-диагностическое значение выявления антинуклеарного фактора, антител к двуспиральной ДНК и кардиолипину у больных системной красной волчанкой // Клиническая лабораторная диагностика, 2008. № 5. C. 44-47.; Созина А.В., Неустроева Ю.А., Тихомирова Т.А., Лапин С.В. Сочетанная встречаемость аутоантител у больных с диффузными болезнями соединительной ткани // Медицинская иммунология, 2007. Т. 9, № 1. С. 69-76. doi:10.15789/1563-0625-2007-1-69-76.; Роггенбук Д., Ширак П., Сак У., Лапин С.В., Мазинг А.В., Тотолян Арег А. Новые подходы к стандартизации выявления аутоантител в лабораторной диагностике аутоиммунных ревматических заболеваний // Медицинская иммунология, 2014. Т. 16, № 3. С. 221-226. doi:10.15789/1563-0625-2014-3-221-226.; Ткаченко О.Ю., Лапин С.В, Лазарева Н.М., Шмонин А.А., Соловьева Л.Н., Бондарева Е.А., Сельков С.А., Чепанов С.В., Тотолян А.А. Сравнительный анализ иммунологических методов детекции антифосфолипидных антител // Клиническая лабораторная диагностика, 2017. Т. 62, № 1. С. 40-44.; Ambrosino P., Lupoli R., Spadarella G., Tarantino P., di Minno A., Tarantino L., di Minno M.N. Autoimmune liver diseases and antiphospholipid antibodies positivity: A meta-analysis of literature studies. J. Gastrointest. Liver Dis., 2015, Vol. 24, no. 1, pp. 25-34.; Dalekos G.N., Zachou K., Liaskos C. The antiphospholipid syndrome and infection. Curr. Rheumatol. Rep., 2001, Vol. 3, no. 4, pp. 277-285.; Devreese K.M., Pierangeli S.S., de Laat B., Tripodi A., Atsumi T., Ortel T.L.; Subcommittee on Lupus Anticoagulant/Phospholipid/Dependent Antibodies. Testing for antiphospholipid antibodies with solid phase assays: guidance from the SSC of the IS TH. J. Thromb. Haemost., 2014, Vol. 12, no. 5, pp. 792-795.; Egerer K., Roggenbuck D., Büttner T., Lehmann B., Kohn A., von Landenberg P., Hiemann R., Feist E., Burmester G.R., Dörner T. Single-step autoantibody profiling in antiphospholipid syndrome using a multi-line dot assay. Arthritis Res. Ther., 2011, Vol. 13, no. 4, R118. doi:10.1186/ar3421.; Galli M., Comfurius P., Maassen C., Hemker H.C., de Baets M.H., van Breda-Vriesman P.J., Barbui T., Zwaal R.F., Bevers E.M. Anticardiolipin antibodies (ACA) directed not to cardiolipin but to a plasma protein cofactor. Lancet, 1990, Vol. 335, no. 8705, pp. 1544-1547.; Harris E.N., Gharavi A.E., Boey M.L., Patel B.M., Mackworth-Young C.G., Loizou S., Hughes G.R. Anticardiolipin antibodies: detection by radioimmunoassay and association with thrombosis in systemic lupus erythematosus. Lancet, 1983, Vol. 322, no. 8361, pp. 1211-1214.; Jeleniewicz R., Majdan M., Targońska-Stępniak B., Dryglewska M. Prevalence of antiphospholipid antibodies in rheumatoid arthritis patients and relationship with disease activity. Pol. Arch. Med. Wewnętrznej, 2012, Vol. 122, no. 10, pp. 480-486.; Krilis S.A., Giannakopoulos B. Laboratory methods to detect antiphospholipid antibodies. Hematology Am. Soc. Hematol. Educ. Program, 2014, Vol. 2014, no. 1, pp. 321-328.; Meroni P., Chighizola C., Rovelli F., Gerosa M. Antiphospholipid syndrome in 2014: more clinical manifestations, novel pathogenic players and emerging biomarkers. Arthritis Res. Ther., 2014, Vol. 16, no. 2, p. 209.; Meroni P.L., Borghi M.O., Raschi E., Tedesco F. Pathogenesis of antiphospholipid syndrome: understanding the antibodies. Nat. Rev. Rheumatol., 2011, Vol. 7, no. 6, pp. 330-339.; Misasi R., Capozzi A., Longo A., Recalchi S., Lococo E., Alessandri C., Conti F., Valesini G., Sorice M. New antigenic targets and methodological approaches for refining laboratory diagnosis of antiphospholipid syndrome. J. Immunol. Res., 2015, Vol. 2015, 858542. doi:10.1155/2015/858542.; Miyakis S., Lockshin M.D., Atsumi T., Branch D.W., Brey R.L., Cervera R., Derksen R.H., de Groot P.G., Koike T., Meroni P.L., Reber G., Shoenfeld Y., Tincani A., Vlachoyiannopoulos P.G., Krilis S.A. International consensus statement on an update of the classification criteria for definite antiphospholipid syndrome (APS). Thromb. Haemost., 2006, Vol. 4, no. 2, pp. 295-306.; Neville C., Rauch J., Kassis J., Chang E.R., Joseph L., le Comte M., Fortin P.R. Thromboembolic risk in patients with high titre anticardiolipin and multiple antiphospholipid antibodies. Thromb. Haemost., 2003, Vol. 90, no. 1, pp. 108-115.; Otomo K., Atsumi T., Amengual O., Fujieda Y., Kato M., Oku K., Horita T., Yasuda S., Koike T. Efficacy of the antiphospholipid score for the diagnosis of antiphospholipid syndrome and its predictive value for thrombotic events. Arthritis Rheum., 2012, Vol. 64, no. 2, pp. 504-512.; Pengo V., Biasiolo A., Pegoraro C., Cucchini U., Noventa F., Iliceto S. Antibody profiles for the diagnosis of antiphospholipid syndrome. Thromb. Haemost., 2005, Vol. 93, no. 6, pp. 1147-1152.; Pengo V., Ruffatti A., Legnani C., Testa S., Fierro T., Marongiu F., de Micheli V., Gresele P., Tonello M., Ghirarduzzi A., Bison E., Denas G., Banzato A., Padayattil Jose S., Iliceto S. Incidence of a first thromboembolic event in asymptomatic carriers of high risk antiphospholipid antibody profile: a multicenter prospective study. Blood, 2011, Vol. 118, no. 17, pp. 4714-4718.; Petri M., Orbai A.M., Alarcón G.S., Gordon C., Merrill J.T., Fortin P.R., Bruce I.N., Isenberg D., Wallace D.J., Nived O., Sturfelt G., Ramsey-Goldman R., Bae S.C., Hanly J.G., Sánchez-Guerrero J., Clarke A., Aranow C., Manzi S., Urowitz M., Gladman D., Kalunian K., Costner M., Werth V.P., Zoma A., Bernatsky S., Ruiz-Irastorza G., Khamashta M.A., Jacobsen S., Buyon J.P., Maddison P., Dooley M.A., van Vollenhoven R.F., Ginzler E., Stoll T., Peschken C., Jorizzo J.L., Callen J.P., Lim S.S., Fessler B.J., Inanc M., Kamen D.L., Rahman A., Steinsson K., Franks A.G. Jr, Sigler L., Hameed S., Fang H., Pham N., Brey R., Weisman M.H., McGwin G. Jr, Magder L.S. Derivation and validation of the systemic lupus international collaborating clinics classification criteria for systemic lupus erythematosus. Arthritis Rheum., 2012, Vol. 64, no. 8, pp. 2677-2686.; Ruiz-Irastorza G., Crowther M., Branch W., Khamashta M.A. Antiphospholipid syndrome. Lancet, 2010, Vol. 376, no. 9751, pp. 1498-1509.; Sciascia S., Sanna G., Murru V., Roccatello D., Khamashta M.A., Bertolaccini M.L. The global antiphospholipid syndrome score in primary APS. Rheumatol. (United Kingdom), 2014, Vol. 54, no. 1, pp. 134-138.; Touré A.O., Ly F., Sall A., Diatta A., Gadji M., Seck M., Faye B., Dieye T., Diop S. Antiphospholipid antibodies and systemic scleroderma. Turkish J. Haematol., 2013, Vol. 30, no. 1, pp. 32-36.; Zhou Y., Ying Z., Li R., Zhu J., Li Z. Clinical and immunological relevance of antiphospholipid antibodies in patients with lymphoma. Zhonghua Yi Xue Za Zhi, 2011, Vol. 91, no. 37, pp. 2607-2610.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1644

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1644
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2018-5-753-762

المؤلفون: A. L. Maslyansky, D. A. Zhebrun, A. G. Titov, A. P. Patrukhin, A. A. Kostareva, I. S. Goltseva, Areg. A. Totolyan, А. Л. Маслянский, Д. А. Жебрун, А. Г. Титов, А. П. Патрухин, А. А. Костарева, И. С. Гольцева, Арег. А. Тотолян

المصدر: Rheumatology Science and Practice; Vol 54, No 1 (2016); 10-15 ; Научно-практическая ревматология; Vol 54, No 1 (2016); 10-15 ; 1995-4492 ; 1995-4484 ; 10.14412/rsp20161

مصطلحات موضوعية: хемокины, osteoarthritis, synovial membrane, expression, biomarker, RANTES, CXCR5, cytokines, chemokines, остеоартроз, синовиальная оболочка, экспрессия, биомаркер, СXСR5, цитокины

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/2163/1385; Каратеев ДЕ, Александрова ЕН, Демидова ИВ и др. Антицитруллиновые антитела и данные магнитно-резонансной томографии суставов кисти у больных ранним артритом. Терапевтический архив. 2008;80(10):72-6 [Karateev DE, Aleksandrova EN, Demidova IV, et al. Anticitrullin antibodies and data of magnetic resonance imaging of hand joints in patients with early arthritis. Terapevticheskii arkhiv. 2008;80(10):72-6 (In Russ.)].; Жебрун ДА, Тотолян АА, Маслянский АЛ и др. Синтез ангиогенных и ангиостатических СXС-хемокинов и их рецепторов в синовиальной оболочке при ревматоидном артрите. Цитокины и воспаление. 2014;13(2):39-44 [Zhebrun DA, Totolyan AA, Maslyanskii AL, et al. Synthesis of endogenous angiostatic and CXC chemokines and their receptors in synovium in rheumatoid arthritis. Tsitokiny i vospalenie. 2014;13(2):39-44 (In Russ.)].; Altman R, Asch E, Bloch D, et al. Development of criteria for the classification and reporting of osteoarthritis. Classification of osteoarthritis of the knee. Diagnostic and Therapeutic Criteria Committee of the American Rheumatism Association. Arthritis Rheum. 1986;29(8):1039-49. doi:10.1002/art.1780290816; Жебрун ДА, Маслянский АЛ, Титов АГ и др. Определение мРНК ангиогенных и ангиостатических хемокинов и их рецепторов в синовиальной оболочке методом количественной ПЦР в реальном времени. Медицинская иммунология. 2013;15(6):525-34 [Zhebrun DA, Maslyanskii AL, Titov AG, et al. Determination of mRNA of angiogenic and angiostatic chemokines and their receptors in the synovium by quantitative real-time PCR. Meditsinskaya immunologiya. 2013;15(6):525-34 (In Russ.)]. doi: /10.15789/1563-0625-2013-6-525-534; Corsiero E, Bombardieri M, Manzo A, et al. Role of lymphoid chemokines in the development of functional ectopic lymphoid structures in rheumatic autoimmune diseases. Immunol Lett. 2012;145(1-2):62-7. doi:10.1016/j.imlet.2012.04.013; Kokebie R, Aggarwal R, Lidder S, et al. The role of synovial fluid markers of catabolism and anabolism in osteoarthritis, rheumatoid arthritis and asymptomatic organ donors. Arthritis Res Ther. 2011;13(2):R50. doi:10.1186/ar3293; Маслянский АЛ, Лапин СВ, Мазинг АВ и др. Диагностическая значимость серологических маркеров ревматоидного артрита. Научно-практическая ревматология. 2012;50(5):20-4 [Maslaynski AL, Lapin SV, Mazing AV, et al. Diagnostic value of serological markers of rheumatoid arthritis. Nauchno-prakticheskaya revmatologiya = Rheumatology Science and Practice. 2012;50(5):20-4 (In Russ.)]. doi:10.14412/1995-4484-2012-1175; Маслянский АЛ, Мазуров ВИ, Зоткин ЕГ и др. Анти-В-клеточная терапия аутоиммунных заболеваний. Медицинская иммунология. 2007;9(1):15-34 [Masliansky AL, Mazurov VI, Zotkin EG, et al. Anti-B-cell therapy of autoimmune diseases. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology. 2007;9(1):15-34 (In Russ.)]. doi:10.15789/1563-0625-2007-1-15-34; Humby F, Bombardieri M, Manzo A, et al. Ectopic lymphoid structures support ongoing production of class-switched autoantibodies in rheumatoid synovium. PLoS Med. 2009;6(1):e1. doi:10.1371/journal.pmed.0060001; Bugatti S, Manzo A, Vitolo B, et al. High expression levels of the B cell chemoattractant CXCL13 in rheumatoid synovium are a marker of severe disease. Rheumatology (Oxford). 2014;53(10):1886-95. doi:10.1093/rheumatology/keu163; Grassi F, Cristino S, Toneguzzi S, et al. CXCL12 chemokine upregulates bone resorption and MMP-9 release by human osteoclasts: CXCL12 levels are increased in synovial and bone tissue of rheumatoid arthritis patients. J Cell Physiol. 2004;199(2):244-51. doi:10.1002/jcp.10445; Hansen IB, Ellingsen T, Hornung N, et al. Plasma level of CXC-chemokine CXCL12 is increased in rheumatoid arthritis and is independent of disease activity and methotrexate treatment. J Rheumatol. 2006;33(9):1754-9.; Loeuille D, Chary-Valckenaere I, Champigneulle J, et al. Macroscopic and microscopic features of synovial membrane inflammation in the osteoarthritic knee: correlating magnetic resonance imaging findings with disease severity. Arthritis Rheum. 2005;52(11):3492-501. doi:10.1002/art.21373; Chen B, Deng Y, Tan Y, et al. Association between severity of knee osteoarthritis and serum and synovial fluid interleukin 17 concentrations. J Int Med Res. 2014;42(1):138-44. doi:10.1177/0300060513501751; Hampel U, Sesselmann S, Iserovich P, et al. Chemokine and cytokine levels in osteoarthritis and rheumatoid arthritis synovial fluid. J Immunol Methods. 2013;396(1-2):134-9. doi:10.1016/j.jim.2013.08.007; Borzi RM, Mazzetti I, Macor S, et al. Flow cytometric analysis of intracellular chemokines in chondrocytes in vivo: constitutive expression and enhancement in osteoarthritis and rheumatoid arthritis. FEBS Lett. 1999;455(3):238-42. doi:10.1016/S0014-5793(99)00886-8; Kanbe K, Takagishi K, Chen Q. Stimulation of matrix metalloprotease 3 release from human chondrocytes by the interaction of stromal cell-derived factor 1 and CXC chemokine receptor 4. Arthritis Rheum. 2002;46(1):130-7. doi:10.1002/1529-0131(200201)46:13.0.CO;2-D; Lisignoli G, Cristino S, Toneguzzi S, et al. IL1beta and TNFalpha differently modulate CXCL13 chemokine in stromal cells and osteoblasts isolated from osteoarthritis patients: evidence of changes associated to cell maturation. Exp Gerontol. 2004;39(4):659-65. doi:10.1016/j.exger.2003.09.030; Lee SS, Joo YS, Kim WU, et al. Vascular endothelial growth factor levels in the serum and synovial fluid of patients with rheumatoid arthritis. Clin Exp Rheumatol. 2001;19(3):321-4.; Haywood L, McWilliams DF, Pearson CI, et al. Inflammation and angiogenesis in osteoarthritis. Arthritis Rheum. 2003;48(8):2173-7. doi:10.1002/art.11094; https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/2163

الاتاحة: https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/2163
https://doi.org/10.14412/1995-4484-2016-10-15

المؤلفون: I. V. Kudryavtsev, A. G. Borisov, I. I. Krobinets, A. A. Savchenko, M. K. Serebriakova, Areg A. Totolian, И. В. Кудрявцев, А. Г. Борисов, И. И. Кробинец, А. А. Савченко, М. К. Серебрякова, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 18, № 3 (2016); 239-250 ; Медицинская иммунология; Том 18, № 3 (2016); 239-250 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2016-3

مصطلحات موضوعية: CCR6 и CXCR3, T helper subsets, CCR4 and CXCR5, CCR6 and CXCR3, субпопуляции Т-хелперов, CCR4 и CXCR5

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1036/858; Байдун Л.А., Зурочка А.В., Тотолян Арег А., Хайдуков С.В. Стандартизованная технология «Исследование субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови с применением проточных цитофлюориметров-анализаторов» (проект) // Медицинская иммунология, 2012. Т. 14, № 3 С. 255-268. [Baydun L.A., Zurochka A.V., Totolian Areg A., Khaidukov S.V. Stadartizovannaya tekhnologiya “issledovatie subpopuliasionnogo soslava limphocytov pirifericheskoy krovi s primenemiem protochnih cytophluorimetrovanalizatorov (proekt). Meditsinskaya Immunologiya = Medical immunology (Russia), 2012, Vol. 14, no. 3, pp.255-268. (In Russ.)] http://dx.doi.org/10.15789/1563-0625-2012-3-255-268; Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в медицине и биологии. Екатеринбург: РИО УрО РАН, 2013. 552 с. [Zurochka A.V., Khaidukov S.V., Kudryavtsev I.V., Chereshnev V.A. Flow cytometry in medicine and biology]. Ekaterinburg: RIO UrORAN, 2013. 552 p. (In Russ.); Елезов Д.С., Кудрявцев И.В., Арсентьева Н.А., Семенов А.В., Эсауленко Е.В., Басина В.В., Тотолян Арег А. Анализ субпопуляций Т-хелперов периферической крови больных хроническим вирусным гепатитом С, экспрессирующих хемокиновые рецепторы CXCR3 и CCR6 и активационные маркеры CD38 и HLA-DR // Инфекция и иммунитет, 2013. Т. 3, № 4. С. 327-334. [Elezov D.S., Kudryavtsev I.V., Arsentieva N.A., Semenov A.V., Esaulenko E.V., Basina V.V., Totolian Areg A. Analysis of T-helper subsets of peripheral blood of patients with chronic hepatitis c expressing chemokine receptors CXCR3 and CCR6 and activation markers CD38 and HLA-DR. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2013, Vol. 3. no. 4, pp. 327-334. (In Russ.)]; Елезов Д.С., Кудрявцев И.В., Арсентьев Н.А., Басин В.В., Эсауленко Е.В., Семенов А.В., Тотолян А.А. Анализ популяций Т-хелперных клеток памяти, экспрессирующих хемокиновые рецепторы CXCR3 и CCR6, в периферической крови больных хроническим вирусным гепатитом С // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 2015. Т. 160, № 8. С. 204-208. [Elezov D.S., Kudryavtsev I.V., Arsent’ev N.A., Basin V.V., Esaulenko E.V., Semenov A.V., Totolian A.A. Analysis of Populations of Memory T-Helper Cells Expressing CXCR3 and CCR6 Chemokine Receptors in Peripheral Blood of Patients with Chronic Viral Hepatitis C. Byulleten` eksperimental`noy biologii i meditsiny = Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 2015, Vol. 60, no. 2, pp. 238-242. (In Russ.)]; Кудрявцев И.В. Т-клетки памяти: основные популяции и стадии дифференцировки // Российский иммунологический журнал, 2014. Т. 8, № 4 (17). С. 947-964. [Kudryavtsev I.V. Memory T cells: major populations and stages of differentiation. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Immunology, 2014, Vol. 8, no. 4, pp. 947-964. (In Russ.)]; Кудрявцев И.В., Савицкий В.П. Многоцветный анализ основных субпопуляций Т-хелперов и цитотоксических Т-клеток методом проточной цитофлуориметрии // Российский иммунологический журнал, 2012. Т. 6, № 3 (1) (14). С. 94-97. [Kudryavtsev I.V., Savitsky V.P. Multicolor flow cytometric analysis of the main subpopulations of T-helpers and cytotoxic T-cells from peripheral blood. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Immunology, 2012, Vol. 6, no. 3 (1) (14), pp. 94-97. (In Russ.)]; Кудрявцев И.В., Субботовская А.И. Опыт измерения параметров иммунного статуса с использованием шести-цветного цитофлуоримерического анализа // Медицинская иммунология, 2015. Т. 17, № 1. С. 19-26. [Kudryavtsev I.V., Subbotovskaya A.I. Application of six- color flow cytometric analysis for immune profile monitoring. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2015, Vol. 17, no. 1, pp. 19-26 (In Russ.)] http://dx.doi.org/10.15789/1563-0625-2015-1-19-26; Сохоневич Н.А., Хазиахматова О.Г., Юрова К.А., Шуплетова В.В., Литвинова Л.С. Фенотипическая характеристика и функциональные особенности Т- и В-клеток иммунной памяти // Цитология, 2015. Т. 57, № 5. С. 311-318. [Sokhonevich N.A., Khaziakhmatova O.G., Yurova K.A., Shupletsova V.V., Litvinova L.S. Phenotypic characterization and functional features of memory T- and B-cells. Tsitologiya = Cytology, 2015, Vol. 57, no. 5, pp. 311-318. (In Russ.)]; Тотолян А.А. Роль хемокинов и их рецепторов в иммунорегуляции // Иммунология, 2001. № 5. С. 7-15. [Totolian A.A. The pole of chemokines and their receptors in immunoregulation. Immunologiya = Immunology, 2011, no. 5, pp. 7-15. (In Russ.)]; Acosta-Rodriguez E.V., Rivino L., Geginat J., Jarrossay D., Gattorno M., Lanzavecchia A., Sallusto F., Napolitani G. Surface phenotype and antigenic specificity of human interleukin 17-producing T helper memory cells. Nat. Immunol., 2007, Vol. 8, no. 6, pp. 639-646.; Annunziato F., Cosmi L., Santarlasci V., Maggi L., Liotta F., Mazzinghi B., Parente E., Filì L., Ferri S., Frosali F., Giudici F., Romagnani P., Parronchi P., Tonelli F., Maggi E., Romagnani S. Phenotypic and functional features of human Th17 cells. J. Exp. Med., 2007, Vol. 204, no. 8, pp. 1849-1861.; Brodie T., Brenna E., Sallusto F. OMIP-018: chemokine receptor expression on human T helper cells. Cytometry A, 2013, Vol. 83, no. 6, pp. 530-532.; Crotty S. Follicular helper CD4 T cells (TFH). Ann. Rev. Immunol., 2011, Vol. 29, pp. 621-663.; D’Ambrosio D., Albanesi C., Lang R., Girolomoni G., Sinigaglia F., Laudanna C. Quantitative differences in chemokine receptor engagement generate diversity in integrin-dependent lymphocyte adhesion. J. Immunol., 2002, Vol. 169, pp. 2303-2312.; Dieu M.C., Vanbervliet B., Vicari A., Bridon J.M., Oldham E., Ait-Yahia S., Briere F., Zlotnik A., Lebecque S., Caux C. Selective recruitment of immature and mature dendritic cells by distinct chemokines expressed in different anatomic sites. J. Exp. Med., 1998, Vol. 188, no. 2, pp. 373-386.; Duhen T., Geiger R., Jarrossay D., Lanzavecchia A., Sallusto F. Production of interleukin 22 but not interleukin 17 by a subset of human skin-homing memory T cells. Nat. Immunol., 2009, Vol. 10, no. 8, pp. 857-863.; Espinosa-Ortega F., Gomez-Martin D., Santana-De Anda K., Romo-Tena J., Villaseñor-Ovies P., Alcocer-Varela J. Quantitative T cell subsets profile in peripheral blood from patients with idiopathic inflammatory myopathies: tilting the balance towards proinflammatory and pro-apoptotic subsets. Clin. Exp. Immunol., 2015, Vol. 179, no. 3, pp. 520-528.; Gattinoni L., Lugli E., Ji Y., Pos Z., Paulos C.M., Quigley M.F., Almeida J.R., Gostick E., Yu Z., Carpenito C., Wang E., Douek D.C., Price D.A., June C.H., Marincola F.M., Roederer M., Restifo N.P. A human memory T cell subset with stem cell-like properties. Nat. Med., 2011, Vol. 17, no. 10, pp. 1290-1297.; Geginat J., Paroni M., Maglie S., Alfen J.S., Kastirr I., Gruarin P., De Simone M., Pagani M., Abrignani S. Plasticity of human CD4 T cell subsets. Front. Immunol., 2014, Vol. 5, p. 630.; Groom J.R., Luster A.D. CXCR3 ligands: redundant, collaborative and antagonistic functions. Immunol. Cell Biol., 2011, Vol. 89, no. 2, pp. 207-215.; Hoerning A., Kohler S., Jun C., Lu J., Fu J., Tebbe B., Dolff S., Feldkamp T., Kribben A., Hoyer P.F., Witzke O. Cyclosporin but not everolimus inhibits chemokine receptor expression on CD4+ T cell subsets circulating in the peripheral blood of renal transplant recipients. Clin. Exp. Immunol., 2012, Vol. 168, no. 2, pp. 251-259.; Korn T., Oukka M., Kuchroo V., Bettelli E. Th17 cells: effector T cells with inflammatory properties. Semin. Immunol., 2007, Vol. 19, no. 6, pp. 362-371.; Lecureuil C., Combadiere B., Mazoyer E., Bonduelle O., Samri A., Autran B., Debre P., Combadiere C. Trapping and apoptosis of novel subsets of memory T lymphocytes expressing CCR6 in the spleen of HIV-infected patients. Blood, 2007, Vol. 109, no. 9, pp. 3649-3657.; Le Coz C., Joublin A., Pasquali J.L., Korganow A.S., Dumortier H., Monneaux F. Circulating TFH subset distribution is strongly affected in lupus patients with an active disease. PLoS One, 2013, Vol. 8, no. 9, e75319.; Mahnke Y.D., Roederer M. Optimizing a multicolor immunophenotyping assay. Clin. Lab. Med., 2007, Vol. 27, pp. 469-485.; Morita R., Schmitt N., Bentebibel S.E., Ranganathan R., Bourdery L., Zurawski G., Foucat E., Dullaers M., Oh S., Sabzghabaei N., Lavecchio E.M., Punaro M., Pascual V., Banchereau J., Ueno H. Human blood CXCR5(+) CD4(+) T cells are counterparts of T follicular cells and contain specific subsets that differentially support antibody secretion. Immunity, 2011, Vol. 34, no. 1, pp. 108-121.; Murphy K.M., Reiner S.L. The lineage decisions of helper T cells. Nat. Rev. Immunol, 2002, Vol. 2, no. 12, pp. 933-944.; Rivino L., Messi M., Jarrossay D., Lanzavecchia A., Sallusto F., Geginat J. Chemokine receptor expression identifies Pre-T helper (Th)1, Pre-Th2, and nonpolarized cells among human CD4+ central memory T cells. J. Exp. Med., 2004, Vol. 200, no. 6, pp. 725-735.; Sallusto F., Lanzavecchia A. Understanding dendritic cell and T-lymphocyte traffic through the analysis of chemokine receptor expression. Immunol. Rev., 2000, Vol. 177, pp. 134-140.; Sallusto F., Lenig D., Forster R., Lipp M., Lanzavecchia A. Two subsets of memory T lymphocytes with distinct homing potentials and effector functions. Nature, 1999, Vol. 401, no. 6754, pp. 708-712.; Schaerli P., Willimann K., Lang A.B., Lipp M., Loetscher P., Moser B. CXC chemokine receptor 5 expression defines follicular homing T cells with B cell helper function. J. Exp. Med., 2000, Vol. 192, no. 11, pp. 1553-1562.; Shah K., Lee W.W., Lee S.H., Kim S.H., Kang S.W., Craft J., Kang I. Dysregulated balance of Th17 and Th1 cells in systemic lupus erythematosus. Arthritis Res. Ther., 2010, Vol. 12, no. 2, R53.; Wang Q., Zhai X., Chen X., Lu J., Zhang Y., Huang Q. Dysregulation of circulating CD4+CXCR5+ T cells in type 2 diabetes mellitus. APMIS, 2015, Vol. 123, no. 2, pp. 146-151.; Zhang H.H., Song K., Rabin R.L., Hill B.J., Perfetto S.P., Roederer M., Douek D.C., Siegel R.M., Farber J.M. CCR2 identifies a stable population of human effector memory CD4+ T cells equipped for rapid recall response. J. Immunol., 2010, Vol. 185, no. 11, pp. 6646-6663.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1036

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1036
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2016-3-239-250

المؤلفون: M. Yu. Pervakova, S. V. Lapin, E. A. Surkova, O. Yu. Tkachenko, A. I. Budkova, V. I. Guseva, O. N. Titova, V. L. Emanuel, Areg A. Totolian, М. Ю. Первакова, С. В. Лапин, Е. А. Суркова, О. Ю. Ткаченко, А. И. Будкова, В. И. Гусева, О. Н. Титова, В. Л. Эмануэль, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 18, № 6 (2016); 537-544 ; Медицинская иммунология; Том 18, № 6 (2016); 537-544 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2016-6

مصطلحات موضوعية: дефицит альфа-1-антитрипсина, alpha-1-antitrypsin, cytokine, alpha-1-antitrypsin phenotype, alpha-1-antitrypsin deficiency, альфа-1-антитрипсин, цитокин, фенотип альфа-1-антитрипсина

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1134/888; Шевченко О.П. Белки острой фазы воспаления. Лаборатория, 1996, № 1. С. 10-17. [Shevchenko O.P. Acute phase proteins. Laboratoriya = Laboratory, 1996, no. 1, pp. 10-17. (In Russ.]); Stoller J.K., Lacbawan F.L., Aboussouan L.S. Alpha-1 antitrypsin deficiency. Gene reviews, 2006.; Lockett A.D., van Demark M., Gu Y., Schweitzer K.S., Sigua N., Kamocki K., Fijalkowska I., Garrison J., Fisher A.J., Serban K., Wise R.A., Flotte T.R., Mueller C., Presson R.G.Jr., Petrache H.I., Tuder R.M., Petrache I. Effect of cigarette smoke exposure and structural modifications on the alpha-1 Antitrypsin interaction with caspases. Mol. Med., 2012, Vol. 18, pp. 445-454.; Feng Y., Xu J., Zhou Q., Wang R., Liu N., Wu Y., Yuan H., Che H. Alpha-1 Antitrypsin prevents the development of preeclampsia through suppression of oxidative stress. Front Physiol., 2016, Vol. 7, p. 176.; Stockley R.A. The multiple facets of alpha-1-antitrypsin. Ann. Transl. Med., 2015, Vol. 3, no. 10, p. 130.; Zampronio A.R., Soares D.M., Souza G.E. Central mediators involved in the febrile response: effects of antipyretic drugs. Temperature (Austin), 2015, Vol. 2, no. 4, pp. 506-521.; Koo J.B., Han J.S. Cigarette smoke extract-induced interleukin-6 expression is regulated by phospholipase D1 in human bronchial epithelial cells. J. Toxicol. Sci., 2016, Vol. 41, no. 1, pp. 77-89.; de Carvalho F.O., Felipe F.A., de Melo Costa A.C., Teixeira L.G., Silva É.R., Nunes P.S., Shanmugam S., de Lucca Junior W., Quintans J.S., de Souza Araújo A.A. Inflammatory mediators and oxidative stress in animals subjected to smoke inhalation: a systematic review. Lung, 2016.; Ansarin K., Rashidi F., Namdar H., Ghaffari M., Sharifi A. Echocardiographic evaluation of the relationship between inflammatory factors (IL6, TNFalpha, hs-CRP) and secondary pulmonary hypertension in patients with COPD. A Cross Sectional Study. Pneumologia, 2015, Vol. 64, no. 3, pp. 31-35.; Chen Z., Shao X., Dou X., Zhang X., Wang Y., Zhu C., Hao C., Fan M., Ji W., Yan Y. Role of the mycoplasma pneumoniae/interleukin-8/neutrophil axis in the pathogenesis of pneumonia. PLoS One, 2016, Vol. 11, no. 1, p. e0146377.; Majak P. Tumor necrosis factor alpha as an asthma biomarker in early childhood. Pneumonol. Alergol. Pol., 2016, Vol. 84, no. 3, pp. 143-144.; Cosmi L., Liotta F., Annunziato F. Th17 regulating lower airway disease. Curr Opin Allergy Clin. Immunol., 2016, Vol. 16, no. 1, pp. 1-6.; Miossec P., Korn T., Kuchroo V.K. Interleukin-17 and type 17 helper T cells. N. Engl. J. Med., 2009, Vol. 361, no. 9, pp. 888-898.; Ortiz G, Salica J.P., Chuluyan E.H., Gallo J.E. Diabetic retinopathy: could the alpha-1 antitrypsin be a therapeutic option? Biol. Res., 2014, Vol. 47, p. 58.; Lewis E.C., Shapiro L., Bowers O.J., Dinarello C.A. Alpha1-antitrypsin monotherapy prolongs islet allograſt survival in mice. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2005, Vol. 102, no. 34, pp. 12153-12158.; Subramaniyam D., Virtala R., Pawłowski K., Clausen I.G., Warkentin S., Stevens T., Janciauskiene S. TNF-alpha-induced self expression in human lung endothelial cells is inhibited by native and oxidized alpha1-antitrypsin. Int. J. Biochem. Cell Biol., 2008, Vol. 40, no. 2, pp. 258-271.; Bergin D.A., Reeves E.P., Hurley K., Wolfe R., Jameel R., Fitzgerald S., McElvaney N.G. The circulating proteinase inhibitor alpha-1 antitrypsin regulates neutrophil degranulation and autoimmunity. Sci. Transl. Med., 2014, Vol. 6, no. 217, p. 217ra1.; Pott G.B., Chan E.D., Dinarello C.A., Shapiro L. Alpha-1-antitrypsin is an endogenous inhibitor of proinflammatory cytokine production in whole blood. J. Leukoc. Biol., 2009, Vol. 85, no. 5, pp. 886-895.; Subramanian S., Shahaf G., Ozeri E., Miller L.M., Vandenbark A.A., Lewis E.C., Offner H. Sustained expression of circulating human alpha-1 antitrypsin reduces inflammation, increases CD4+FoxP3+ Treg cell population and prevents signs of experimental autoimmune encephalomyelitis in mice. Metab. Brain Dis., 2011, Vol. 26, no. 2, pp. 107-113.; Stone H., McNab G., Wood A.M., Stockley R.A., Sapey E. Variability of sputum inflammatory mediators in COPD and alpha1-antitrypsin deficiency. Eur. Respir. J., 2012, Vol. 40, no. 3, pp. 561-569.; Seixas S., Garcia O., Trovoada M.J., Santos M.T., Amorim A., Rocha J. Patterns of haplotype diversity within the serpin gene cluster at 14q32.1: insights into the natural history of the alpha1-antitrypsin polymorphism. Hum. Genet., 2001, Vol. 108, no. 1, pp. 20-30.; Keren D.F. Protein electrophoresis in clinical diagnosis. Ed. A. London, 2003, pp. 71-77.; Salahuddin P. Genetic variants of alpha1-antitrypsin. Curr. Protein Pept. Sci., 2010, Vol. 11, no. 2, pp. 101-117.; Olfert I.M., Malek M.H., Eagan T.M., Wagner H., Wagner P.D. Inflammatory cytokine response to exercise in alpha-1-antitrypsin deficient COPD patients ‘on’ or ‘off’ augmentation therapy. BMC Pulm. Med., 2014, Vol. 14, p. 106.; Pervakova M.Yu., Emanuel V.L., Titova O.N., Lapin S.V., Mazurov V.I., Belyaeva I.B., Chudinov A.L., Blinova T.V., Surkova E.A. The diagnostic value of alpha-1-antitrypsin phenotype in Patients with granulomatosis with polyangiitis. International Journal of Rheumatology, 2016, pp. 1-5.; Pervakova M.Y., Emanuel V.L., Surkova E.A., Mazing A.V., Lapin S.V., Kovaleva I.S., Sysoeva S.N. The comparison of techniques of electrophoresis, immune turbidynamic measurement and phenotyping of alpha-1-antitrypsin for diagnostic of alpha-1-antitrypsin insufficiency. Clin. Lab. Diagn., 2015, Vol. 10, pp. 28-32.; Mahr A.D., Edberg J.C., Stone J.H., Hoffman G.S., St Clair E.W., Specks U., Dellaripa P.F., Seo P., Spiera R.F., Rouhani F.N., Brantly M.L., Merkel P.A. Alpha(1)-antitrypsin deficiency-related alleles Z and S and the risk of Wegener’s granulomatosis. Arthritis Rheum., 2010, Vol. 62, no. 12, pp. 3760-3767.; American Thoracic Society/European Respiratory Society statement: standards for the diagnosis and management of individuals with alpha-1 antitrypsin deficiency. Am. J. Respir. Crit. Care Med., 2003, Vol. 168, no. 7, pp. 818-900.; Duan M.C., Zhang J.Q., Liang Y., Liu G.N., Xiao J., Tang H.J., Liang Y. Infiltration of IL-17-producing T cells and Treg cells in a mouse model of smoke-induced emphysema. Inflammation, 2016.; Singh D. Chronic Obstructive Pulmonary Disease, Neutrophils and Bacterial Infection: A complex web involving IL-17 and IL-22 unravels. EBioMedicine, 2015, Vol. 2, no. 11, pp. 1580-1581.; Chen Q.R., Wang L.F., Xia S.S., Zhang Y.M., Xu J.N., Li H., Ding Y.Z. Role of interleukin-17A in early graſt rejection aſter orthotopic lung transplantation in mice. J. Thorac. Dis., 2016, Vol. 8, no. 6, pp. 1069-1079.; Bergin D.A., Reeves E.P., Meleady P., Henry M., McElvaney O.J., Carroll T.P., Condron C., Chotirmall S.H., Clynes M., O’Neill S.J., McElvaney N.G. Alpha-1 Antitrypsin regulates human neutrophil chemotaxis induced by soluble immune complexes and IL-8. J Clin. Invest., 2010, Vol. 120, no. 12, pp. 4236-4250.; Aldonyte R., Eriksson S., Piitulainen E., Wallmark A., Janciauskiene S. Analysis of systemic biomarkers in COPD patients. COPD, 2004, Vol. 1, no. 2, pp. 155-164.; Honda K., Wada H., Nakamura M., Nakamoto K., Inui T., Sada M., Koide T., Takata S., Yokoyama T., Saraya T., Kurai D., Ishii H., Goto H., Takizawa H. IL-17A synergistically stimulates TNF-alpha-induced IL-8 production in human airway epithelial cells: A potential role in amplifying airway inflammation. Exp. Lung. Res., 2016, Vol. 42, no. 4, pp. 205-216.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1134

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1134
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2016-6-537-544

المؤلفون: СЕМЕНОВ А.В., ОСТАНКОВА ЮЛИЯ ВЛАДИМИРОВНА, НОГОЙБАЕВА К.А., КАСЫМБЕКОВА К.Т., ЛАВРЕНТЬЕВА И.Н., ТОБОКАЛОВА С.Т., АРЕГ А. ТОТОЛЯН

مصطلحات موضوعية: ГЕПАТИТ D,ГЕПАТИТ В,СОЧЕТАННАЯ ИНФЕКЦИЯ,МОЛЕКУЛЯРНАЯ ЭПИДЕМИОЛОГИЯ,СЕКВЕНИРОВАНИЕ,КЫРГЫЗСТАН,HEPATITIS D,HEPATITIS B,CO-INFECTION,MOLECULAR EPIDEMIOLOGY,SEQUENCING,KYRGYZSTAN

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/osobennosti-molekulyarnoy-epidemiologii-sochetannoy-infektsii-vgb-vgd-v-kyrgyzstane
http://cyberleninka.ru/article_covers/16683598.png

المؤلفون: V. D. Nazarov, S. V. Lapin, E. A. Surkova, E. P. Evdoshenko, G. S. Makshakov, Areg A. Totolian, В. Д. Назаров, С. В. Лапин, Е. А. Суркова, Е. П. Евдошенко, Г. С. Макшаков, Арег А. Тотолян

المصدر: Medical Immunology (Russia); Том 17, № 3 (2015); 235-244 ; Медицинская иммунология; Том 17, № 3 (2015); 235-244 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2015-3

مصطلحات موضوعية: цереброспинальная жидкость, free light chains, clinically isolated syndrome, oligoclonal bands, cerebrospinal fluid, свободные легкие цепи, клинически изолированный синдром, олигоклональные полосы

وصف الملف: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/888/800; Бойко А.Н., Фаворова О.О., Кулакова О.Г., Гусев Е.И. Эпидемиология и этиология рассеянного склероза. В кн.: Рассеянный склероз, ред. Гусев Е.И., Завалишин И.А., Бойко А.Н. М., 2004. С. 7-42. [Boyko A.N., Favorova O.O., Kulakova O.G., Gusev E.I. Epidemiology and etiology of multiple sclerosis. Edited by Gusev E.I., Zavalishin I.A., Boyko A.N.]. Moscow, 2004, pp. 7-42.; Лапин С. В., Евдошенко Е. П. Лабораторные методы диагностики рассеянного склероза и других неврологических заболеваний // Справочник заведующего КДЛ, 2011. № 1. C. 22-32. [Lapin S.V., Evdoshenko E.P. Laboratory diagnostic of multiple sclerosis and other neurologic diseases. Spravochnik zaveduyushchego KDL = Handbook of Clinical Diagnostic Laboratory, 2011, no. 1, pp. 22-32. [In Russ.]; Тотолян Н.А., Грязева И.В., Климович В.Б., Скоромец А.А. Содержание свободных легких цепей иммуноглобулинов в ликворе и значение его определения для дифференциальной диагностики рассеянного склероза // Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова, 1994, № 94. C. 49-53. [Totolian N.A., Griazeva I.V., Klimovich V.B., Skoromets A.A. The content of free light-chain immunoglobulins in the cerebrospinal fluid and the importance of its determination for the differential diagnosis of multiple sclerosis. Zhurnal nevrologii i psikhiatrii im. S.S. Korsakova = S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry, 1994, no. 94, pp. 49-53. [In Russ.]; Тотолян Н.А., Грязева И.В., Климович В.Б., Тотолян А.А. Интратекальный синтез свободных легких цепей иммуноглобулинов и его связь с другими иммунными нарушениями у больных рассеянным склерозом // Иммунология, 1994. № 1. C. 54-57. [Totolian N.A., Griazeva I.V., Klimovich V.B., Totolian A.A. Intrathecal synthesis of free light chains of immunoglobulins and its connection with other immunological aberration in patients with multiple sclerosis. Immunologiya = Immunology, 1994, no. 1, pp. 54-57. [In Russ.]; Тотолян Н.А., Грязева И.В., Климович В.Б., Тотолян А.А. Свободные легкие цепи иммуноглобулинов в биологических жидкостях больных рассеянным склерозом // Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова, 1997. № 5. C. 34-38. [Totolian N.A., Griazeva I.V., Klimovich V.B., Totolian A.A. Free light-chain immunoglobulins in the biological fluids of patients with multiple sclerosis. Zhurnal nevrologii i psikhiatrii im. S.S. Korsakova = S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry, 1997, Vol. 97, pp. 34-38. [In Russ.]; Тотолян Н.А., Скоромец А.А., Барбас И.М., Трофимова Т.Н., Тотолян А.А. Актуальные практические вопросы диагностики рассеянного склероза // Ученые записки, 2000. Т. 7, № 3. C. 37-48. [Totolian N.A., Skoromets A.A., Barbas I.M., Trophimova T.N., Totolian A.A. Current practical questions of diagnosis of multiple sclerosis. Uchenye zapiski= Scientific Notes, 2007, Vol. 3, pp. 37-48. [In Russ.]; Тотолян Н.А., Готовчиков А.А., Лапин С.В., Максимов И.В., Кодзаева А.Ю., Прахова Л.Н., Ильвес А.Г., Скоромец А.П., Тотолян А.А., Скоромец А.А. Интратекальный синтез иммуноглобулинов в диагностике и дифференциальной диагностике рассеянного склероза // Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова, 2012. Т. 112. C. 73-86. [Totolian N.A., Gotovchikov A.A., Lapin S.V., Maksimov I.V., Kodzaeva A.Yu., Prakhova L.N., Il’ves A.G, Skoromets A.P., Totolian A.A., Skoromets A.A . Intrathecal immunoglobulin production in the diagnosis and differential diagnosis of multiple sclerosis. Zhurnal nevrologii i psikhiatrii im. S.S. Korsakova = S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry, 2012, Vol. 112, pp. 73-86. [In Russ.]; A.P.D. Henderson, M.H. Barnett, J.D.E. Parratt, and J.W. Prineas. Multiple sclerosis: distribution of inflammatory cells in newly forming lesions. Annals of Neurology, 2009, Vol. 66, no. 6, pp. 739-753.; Anderson M., Alverez-Cermeno J., Bernardi G. CSF in the diagnosis of MS: a consensus report. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry, 1994, Vol. 57, pp. 897-902.; Arneth B., Birklein F. High sensitivity of free lambda and free kappa light chains for detection of intrathecal immunoglobulin synthesis in cerebrospinal fluid. Acta Neurol. Scand., 2009, Vol. 119, pp. 39-44.; Brian G.M. Durie, Robert Kyle, Andrew Belch, William Bensinger, Joan Blade, Mario Boccadoro. J. Anthony Child, Raymond Comenzo Myeloma management guidelines. A consensus report from the scientific advisors of the international myeloma foundation. Hematology Journal, 2003, Vol. 4, pp. 379-398.; Clinical Neuroimmunology: Multiple Sclerosis and Related Disorders. Edited by Syed A. Rizvi, Patricia K. Coyle. Current Clinical Neurology, 2011.; Dobson R., Ramagopalan S., Davis A. Cerebrospinal fluid oligoclonal bands in multiple sclerosis and clinically isolated syndromes: a meta-analysis of prevalence, prognosis and effect of latitude. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry, 2013, Vol. 84, pp. 909-914.; Dobson R., Topping J., Davis A., Thompson E., Giovannoni G. Cerebrospinal fluid and urinary biomarkers in multiple sclerosis. Acta Neurol. Scand., 2013, Vol. 128, pp. 321-327.; Duranti F., Pieri M., Centonze D., Buttari F., Bernardini S., Dessi M. Determination of κFLC and κ Index in cerebrospinal fluid: a valid alternative to assess intrathecal immunoglobulin synthesis. J. Neuroimmunol., 2013, Vol. 263.; Makbule S., Hayrettin T., Florian L., Stefan P., Rehaneh M., Markus O., Johannes B. Cerebrospinal Fluid Immunoglobulin Kappa Light Chain in Clinically Isolated Syndrome and Multiple Sclerosis. PLoS One., 2014, Vol. 9, p. 4.; Fischer C., Arneth B., Koehler J., Lotz J., Lackner K.J. Kappa free light chains in cerebrospinal fluid as markers of intrathecal immunoglobulin synthesis. Clin Chem., 2004, Vol. 50, pp. 1809-1813.; Gottenberg J.E., Aucouturier F., Goetz J., Sordet C., Jahn I., Busson M., Cayuela J.M., Sibilia J., Mariette X. Serum immunoglobulin free light chain assessment in rheumatoid arthritis and primary Sjogren›s syndrome. Ann. Rheum. Dis., 2007, Vol. 66, pp. 23-27.; Petzold A. Intrathecal oligoclonal IgG synthesis in multiple sclerosis. J. Neuroimmunol., 2013, p. 262.; Polman C.H., Reingold S.C., Banwell B., Clanet M., Cohen J.A., Filippi M., Fujihara K., Havrdova E., Hutchinson M., Kappos L., Lublin F.D., Montalban X., O›Connor P., Sandberg-Wollheim M., Thompson A.J., Waubant E., Weinshenker B., Wolinsky. Diagnostic criteria for multiple sclerosis: 2010 revisions to the McDonald criteria. J.S. Ann. Neurol., 2011, Vol. 69, pp. 292-302.; Polman C.H., Reingold S.C., Edan G., Filippi M., Hartung H.P., Kappos L., Lublin F.D., Metz L.M., McFarland H.F., O›Connor P.W., Sandberg-Wollheim M., Thompson A.J., Weinshenker B.G., Wolinsky J.S. Diagnostic criteria for multiple sclerosis: 2005 revisions to the «McDonald Criteria». Ann Neurol, 2005, Vol. 58, no. 6, pp. 840-846.; Rinker J.R., Trinkaus K., Cross A.H. Elevated CSF free kappa light chains correlate with disability prognosis in multiple sclerosis. Neurology, 2006, Vol. 67, pp. 1288-1290.; Bradwell A.R., Carr-Smith H.D., Mead G.P. Highly sensitive, automated immunoassay for immunoglobulin free light chains in serum and urine. Clin. Chem., 2001, Vol. 47, pp. 673-680.; Stefan Presslauer, Dejan Milosavljevic, Wolfgang Huebl, Silvia Parigger, Gabriele Schneider-Koch, Thomas Bruecke. Kappa Free Light Chains: Diagnostic and Prognostic Relevance in MS and CIS. PLoS One, 2014, Vol. 9.; Tintoré M., Rovira A., Río J., Tur C., Pelayo R., Nos C., Téllez N., Perkal H., Comabella M., Sastre-Garriga J., Montalban X. Do oligoclonal bands add information to MRI in first attacks of multiple sclerosis? Neurology, 2008, Vol. 70, pp.1079-1083.; Totolian N.A., Griazeva I.V., Totolian A.A., Klimovich V.B. Intrathecal free light chains of immunoglobulins in parainfectious conditions: comparison with multiple sclerosis. 14th Congress ECTRIMS, 9-12 Sep. 1998, Stockholm, Sweden, Poster 2113.; Villar L.M., Espino M., Costa-Frossard L., Muriel A, Jimenez J. High levels of cerebrospinal fluid free kappa chains predict conversion to multiple sclerosis. Clin. Chim. Acta, 2012, Vol. 413, pp. 1813-1816. 28. Wildemann B., Oschmann P., Reiber H. Laboratory diagnosis in neurology. Stuttgart: ThiemeVerlag, 2010, pp. 452-456.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/888

الاتاحة: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/888
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2015-3-235-244

المؤلفون: СЕМЕНОВ А.В., ОСТАНКОВА ЮЛИЯ ВЛАДИМИРОВНА, ГЕРАСИМОВА В.В., БИЧУРИНА М.А., КОЗЛОВ А.В., МУКОМОЛОВ С.Л., АРЕГ А. ТОТОЛЯН

مصطلحات موضوعية: ГЕПАТИТ С,ГЕНОТИПИРОВАНИЕ,СЕКВЕНИРОВАНИЕ,ГЕНОТИП,СУБТИП,МОЛЕКУЛЯРНАЯ ЭПИДЕМИОЛОГИЯ,ФИЛОГЕНИЯ,РЕСПУБЛИКА САХА (ЯКУТИЯ),HEPATITIS C,GENOTYPING,SEQUENCING,GENOTYPE,SUBTYPE,MOLECULAR EPIDEMIOLOGY,PHYLOGENY,REPUBLIC SAKHA (YAKUTIA)

وصف الملف: text/html

الاتاحة: http://cyberleninka.ru/article/n/molekulyarno-epidemiologicheskie-osobennosti-izolyatov-virusa-gepatita-c-iz-raznyh-regionov-respubliki-saha-yakutiya
http://cyberleninka.ru/article_covers/16434661.png